EA033717B1 - Способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток и фармацевтическая композиция для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток - Google Patents

Способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток и фармацевтическая композиция для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток Download PDF

Info

Publication number
EA033717B1
EA033717B1 EA201300817A EA201300817A EA033717B1 EA 033717 B1 EA033717 B1 EA 033717B1 EA 201300817 A EA201300817 A EA 201300817A EA 201300817 A EA201300817 A EA 201300817A EA 033717 B1 EA033717 B1 EA 033717B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
cells
stem cells
bone marrow
treprostinil
forskolin
Prior art date
Application number
EA201300817A
Other languages
English (en)
Other versions
EA201300817A1 (ru
Inventor
Michael Freissmuth
Eva-Maria Zebedin-Brandl
Christian Bergmayr
Filza Hussain
Original Assignee
Scipharm Sarl
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=44146841&utm_source=***_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=EA033717(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Scipharm Sarl filed Critical Scipharm Sarl
Publication of EA201300817A1 publication Critical patent/EA201300817A1/ru
Publication of EA033717B1 publication Critical patent/EA033717B1/ru

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/28—Bone marrow; Haematopoietic stem cells; Mesenchymal stem cells of any origin, e.g. adipose-derived stem cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/557—Eicosanoids, e.g. leukotrienes or prostaglandins
    • A61K31/558—Eicosanoids, e.g. leukotrienes or prostaglandins having heterocyclic rings containing oxygen as the only ring hetero atom, e.g. thromboxanes
    • A61K31/5585—Eicosanoids, e.g. leukotrienes or prostaglandins having heterocyclic rings containing oxygen as the only ring hetero atom, e.g. thromboxanes having five-membered rings containing oxygen as the only ring hetero atom, e.g. prostacyclin
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A61P35/02—Antineoplastic agents specific for leukemia
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0647—Haematopoietic stem cells; Uncommitted or multipotent progenitors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/01—Modulators of cAMP or cGMP, e.g. non-hydrolysable analogs, phosphodiesterase inhibitors, cholera toxin
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

Настоящее изобретение направлено на способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток (HSC) для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток, который включает получение образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки, смешивание указанного образца по меньшей мере с одним аналогом простациклина, выбранным из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином, где соотношение аналога простациклина и форсколина составляет 1:3, и инкубирование указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимулирования Gальфа-пути передачи сигнала в указанных клетках. Изобретение также направлено на фармацевтическую композицию для улучшения приживления HSC после трансплантации у пациентов с заболеваниями костного мозга, которая включает по меньшей мере один аналог простациклина, выбранный из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста, берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином и стимулированные гемопоэтические стволовые клетки, полученные предложенным способом. Изобретение также направлено на применение предложенной композиции для лечения индивидуумов, страдающих от заболевания костного мозга.

Description

Настоящее изобретение предоставляет способ улучшенного приживления гемопоэтических стволовых клеток путем предварительной обработки ex vivo, включающий стадии получения образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки, добавления аналога простациклина для получения смеси, стадию инкубации указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимуляции G альфа,пути передачи сигнала в указанных клетках, и необязательно выделения указанных стимулированных клеток.
Дополнительно предоставляется композиция, содержащая трепростинил, для использования при лечении индивидуумов, подвергающихся трансплантации гемопоэтических стволовых клеток.
Гемопоэтические стволовые клетки (HSC) являются первичными клетками, способными к регенерации всех компонентов крови на протяжении жизни индивидуума, урановешивающими свое самообновление с дифференцировкой клеток-потомков. Местоположение HSC перемещается в ходе развития, и они циркулируют на всем протяжении жизни млекопитающих, входя и выходя из кровотока, чтобы занять нишу костного мозга в ходе последовательных стадий хоуминга, приживления и удержания. Хоуминг представляет собой процесс, путем которого донорные стволовые клетки попадают в костный мозг, а приживление стволовых клеток подразумевает их рост в костном мозге.
Гемопоэтические стволовые клетки обладают лечебными возможностями благодаря своей способности восстанавливать клетки крови и иммунной системы у реципиентов трансплантата. Кроме того, HSC обладают способностью образовывать клетки других тканей, таких как мозг, мышцы и печень. Методы аутологичной и аллогенной трансплантации костного мозга человека в настоящее время используются в качестве терапии таких заболеваний, как лейкемия, лимфома и других опасных для жизни заболеваний. Для таких операций должно быть выделено большое количество донорного костного мозга, чтобы обеспечить достаточное количество HSC для приживления.
Для заселения ниши костного мозга in vivo гемопоэтическими стволовыми клетками необходим Gas-преобразованный сигнал (1). Эти недавние данные подтверждают более ранние in vitro эксперименты, показавшие, что активация Gas способствует выживанию и дифференцировке гемопоэтических стволовых клеток (2,3). Gas представляет собой связывающую гуаниновый нуклеотид a-субъединицу гетеротримерного G-белка, который стимулирует все 9 изоформ мембраносвязанной аденилатциклазы млекопитающих. Gas может быть конститутивно активирована ex vivo/in vitro при помощи обработки клеток холерным токсином, поскольку холерный токсин АДФ-рибозилирует каталитический остаток аргинина 186/187/201 /202 (R , точный номер аргинина зависит от сплайс-варианта Gas); интактный остаток аргинина необходим для гидролиза GTP и приводит к дезактивации Gas (4). Улучшенное приживление действительно может наблюдаться после предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток холерным токсином: в костном мозге насчитывалось приблизительно в два раза больше (Lin-) клеток-предшественников, если препарат стволовых клеток был предварительно обработан холерным токсином (1).
Однако для препаратов стволовых клеток для пациентов, подвергающихся трансплантации костного мозга, холерный токсин был бы крайне неблагоприятным. Холерный токсин (СТ), особенно его нетоксичный фрагмент пентамерной B субъединицы (СТВ), является мукозным адъювантом, имеющим сильные иммуномодулирующие свойства как in vivo, так и in vitro, и представляет собой один из наиболее сильных мукозных иммуногенов. Холерный токсин и СТВ вызывают сильное образование IgA антител в кишечнике и длительную иммунологическую память. На этом основании СТВ стал важным компонентом недавно разработанных пероральных вакцин против холеры и диареи, вызванной энтеротоксигенными Е. coli. Сильную иммуногенность СТ и СТВ в значительной степени можно объяснить их способностью связываться с рецепторами на поверхности слизистой оболочки кишечника.
Дополнительно в течение естественного хода инфекции пентамерная часть B молекулы токсина связывается с поверхностью эпителиальных клеток кишечника и быстро эндоцитируется вместе с A субъединицей. Будучи эндоцитированной, каталитически активная А-субъединица отделяется от пентамерной части B и проникает в клетку сквозь пору, образованную B-субъединицей. Внутри клетки она постоянно рибозилирует Gs альфа-субъединицу гетеротримерного G-белка, приводя к конститутивной продукции цАМФ. Это, в свою очередь, приводит к секреции H2O, Na+, K+, Cl- и HCO3 - в просвет тонкого кишечника, что обусловливает быструю дегидратацию и другие особенности, обусловленные холерой. При внутривенном введении холерный токсин поглощается большинством клеток (только некоторые клетки защищены специфическими барьерами, таким как гематоэнцефалический барьер). Соответственно, при этом будет наблюдаться увеличение цАМФ в большинстве клеток тела и множество побочных эффектов (от тахикардии до вазодилатации, мышечного тремора, гипергликемии и т.д.).
Таким образом, эти эффекты делают холерный токсин нецелесообразным для медицинского применения в отношении стимуляции гемопоэтических стволовых клеток.
Однако терапевтическая значимость стимулирования стволовых клеток является существенной при выполнении гетерологичной трансплантации костного мозга (т.е. гемопоэтических стволовых клеток, взятых у иммуносовместимых доноров) и является стандартной процедурой, используемой для лечения людей, страдающих от лейкемии, для лечения людей с генетическими дефектами в компартменте клеток крови (например, гемоглобинопатией, такой как талассемия; нарушениями функции нейтрофильных гра
- 1 033717 нулоцитов и т.д.).
Это также важно в связи с тем, что аутологичная трансплантация костного мозга является стандартной процедурой, которая используется для того, чтобы увеличить терапевтическое окно цитотоксических лекарственных средств, и тем самым сделать возможной высокодозовую интенсивную химиотерапию (5,6).
Гемопоэтические стволовые клетки экспрессируют все четыре рецептора простагландина Е (EP1-4). Предварительная обработка гемопоэтических стволовых клеток (диметилированным) простагландином Е2 увеличивает их приживление (7,8). Это воздействие опосредуется каноническим Gas-зависимым путем передачи сигнала, поскольку цАМФ-индуцированная активация протеинкиназы A (РКА) синергична с Wnt-зависимыми сигналами стабилизации β-катенина (9).
Имплантация мононуклеарных клеток (MNCs) аутологичного костного мозга (ВМ) может быть улучшена с помощью берапроста натрия на модели кролика согласно Otsuka et al. Целью этого исследования являлось поддержание развития артерий при периферической ишемии и ишемии миокарда. Гемопоэтические стволовые клетки, однако, представляют собой специфический тип клеток костного мозга (16).
Сочетание терапии стволовыми клетками и фармакологического лечения описано Madonna et al., когда простациклин испытывали в ADSC миокардиальном приживлении после внутрикоронарного введения (17).
Ishii M. et al. раскрывают, что замедленное высвобождение простациклина увеличивает проангиогенную функцию мезенхимальных стволовых клеток и рост мышечных клеток в ишемической ткани (18).
WO 2006/017169 описывает имплантируемый сенсор с биологически совместимым покрытием для контролирования роста ткани, которое может содержать среди прочего аналоги простациклина.
Ингибирующее действие цикапроста или илопроста на синтез тканевого фактора, фактора некроза опухоли и интерлейкина-1 β в клетках ТНР1 человека описано в Crutchley D. et al. (19).
Локализация стволовых клеток после трансплантации является критическим показателем успешности трансплантации. B настоящее время для трансплантации необходимо большое количество стволовых клеток, поскольку стволовые клетки не всегда успешно приживаются в костном мозге и имеется длинный период аплазии костного мозга, приводящий к снижению зрелых клеток крови.
Таким образом, до сих пор востребованным является предоставление способов и композиций для стимуляции HSC с целью увеличения хоуминга, приживления и удержания выделенных HSC в костномозговых нишах субъектов, подвергающихся трансплантации костного мозга.
Данная проблема решается с помощью вариантов осуществления настоящего изобретения.
Краткое описание изобретения
Первый аспект настоящего изобретения предусматривает способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток (HSC) для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток, включающий следующие стадии:
a) получение образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки;
b) смешивание указанного образца по меньшей мере с одним аналогом простациклина, выбранным из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином, где соотношение аналога простациклина и форсколина составляет 1:3, для получения смеси;
c) инкубирование указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимулирования G альфа?,-пути передачи сигнала в указанных клетках.
Согласно изобретению способ дополнительно включает выделение стимулированных клеток.
Согласно изобретению указанный образец является костным мозгом.
Согласно изобретению указанные стволовые клетки получают из пуповинной крови, донорного костного мозга или плаценты.
Второй аспект настоящего изобретения предусматривает фармацевтическую композицию для улучшения приживления HSC после трансплантации у пациентов с заболеваниями костного мозга, включающую по меньшей мере один аналог простациклина, выбранный из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином, и стимулированные гемопоэтические стволовые клетки, полученные способом по изобретению.
Согласно изобретению композиция изготовлена в форме для внутривенного введения.
Третий аспект настоящего изобретения предусматривает применение композиции по изобретению для лечения индивидуумов, страдающих от заболевания костного мозга.
Согласно изобретению заболевание костного мозга представляет собой лейкоз, гемоглобинопатию, нарушение функции нейтрофильных гранулоцитов или заболевания костного мозга, вызванные химиотерапией или облучением.
Согласно изобретению композиция используется после трансплантации костного мозга.
Краткое описание чертежей
Фиг. 1. Исследование Lin+ клеточной популяции, удержанной магнитными частицами. Ось х (обозначенная АРС-С7-А) показывает флуоресценцию, зарегистрированную с помощью смеси антител к
- 2 033717 маркерам направления дифференцировки: CD3e для T-клеток, CD45R(=B220) для B-клеток, CD11b и Ly6G/Ly-6C (Gr-1) для миелоидного (моноцитарного/гранулоцитарного) направления дифференцировки, Ter-119 для эритроидного направления дифференцировки. Ось у представляет собой флуоресценцию, зарегистрированную в отношении антител к рецептору мышиного фактора стволовых клеток c-Kit. Очевидно, что левый верхний квадрант (показывающий клетки, отрицательные по c-Kit+ и маркеру направления дифференцировки) обеднен клетками.
Фиг. 2. Исследование Lin- клеточной популяции, которая не связалась с магнитными частицами. Как на фиг. 1, ось х (обозначенная АРС-С7-А) указывает флуоресценцию, зарегистрированную с помощью смеси антител к маркерам направления дифференцировки: CD3e для T-клеток, CD45R(=B220) для веток, CD11b и Ly-6G/Ly-6C (Gr-1) для миелоидного (моноцитарного/гранулоцитарного) направления дифференцировки, Ter-119 для эритроидного направления дифференцировки. Ось у представляет собой флуоресценцию, зарегистрированную в отношении антител к рецептору мышиного фактора стволовых клеток c-Kit. Очевидно, что нижний квадрант (показывающий клетки, отрицательные по c-Kit и положительные по маркерам направления дифференцировки) обеднен клетками и что клетки преимущественно обнаруживаются в верхнем левом квадранте, где следовало ожидать положительные по с-Kit и отрицательные по маркерам направления дифференцировки клетки.
Фиг. 3 показывает исследование Lin+ (фиг. 3A) и Lin- клеточных популяций (фиг. 3B) на наличие Sca-1 и c-Kit. Панели 3A и 3B демонстрируют клетки, удержанные на магнитных частицах (охарактеризованные на фиг. 1) и находящиеся в элюате (охарактеризованные на фиг. 2). Они были окрашены, как указано в разделе Методы, и проанализированы на наличие одновременно c-Kit (PerCP-Cy5-5-A, ось у) и Sca-1 (PE-Cу7-A, ось х). Очевидно, что положительные по маркерам направления дифференцировки клетки, проанализированные на панели A, обнаруживаются в левом нижнем квадранте, т.е. они лишены как c-Kit, так и Sca-1. Напротив, клетки на панели B преимущественно находятся в верхних квадрантах, т.е. они имеют высокие уровни или c-Kit (верхний левый квадрант) или и c-Kit и Sca-1 (верхний правый квадрант), как и предполагалось для популяции гемопоэтических стволовых клеток и некоммитированных предшественников.
Фиг. 4. Накопление циклического АМФ в (Lin-, c-Kit+, Sca1+) гемопоэтических стволовых клетках после стимуляции форсколином, трепростинилом, илопростом, берапростом или сочетанием форсколина и простаноидов. Lin- клетки (7х105/анализ) инкубировали в присутствии [3Щаденина для того, чтобы предварительно метаболически пометить пул адениновых нуклеотидов в соответствии с Методами. Клетки инкубировали в отсутствие (левый столбик, помеченный 0) и в присутствии указанных соединений. Накопленный [3И]цАМФ очищали путем последовательной хроматографии на колонках с Dowex AG50-X8 и оксидом аллюминия и определяли количество методом жидкостно-сцинтилляционых измерений. Данные представляют собой среднее ±S.D. (среднеквадратическое отклонение) (n=4).
Фиг. 5. Кривая концентрация-ответ для индуцированного трепростинилом накопления цАМФ в (Lin-, c-Kit+, Sca1+) гемопоэтических стволовых клетках. Условия анализа соответствовали обозначениям на фиг. 4. Данные представляют собой среднее ±S.D. (n=2).
Фиг. 6. Ex vivo обработка гемопоэтических стволовых клеток трепростинилом приводит к улучшенному приживлению костного мозга у летально облученных мышей. Гемопоэтические стволовые клетки, приготовленные как на фиг. 3, предварительно обрабатывали указанными соединениями (FSK, форсколин) в соответствии с Методами. Количество лейкоцитов было определено при помощи FACS. Указано число исследованных животных.
Фиг. 7. Отношение Ly5.2 и Ly5.1 положительных клеток крови через 16 недель после трансплантации костного мозга. Ly5.1 клетки были предварительно обработаны СТХ или трепростинилом и форсколином.
Фиг. 8. Отношение Ly5.2 и Ly5.1 положительных клеток крови через 16 недель после трансплантации костного мозга. Ly5.2 клетки были предварителньо обработаны СТХ или трепростинилом и форсколином.
Подробное описание изобретения
Предоставляемые методы и способы увеличения хоуминга и приживления HSC в микроокружении костного мозга имеют вполне определенное биологическое и медицинское значение. Локализация стволовых клеток после трансплантации крайне важна для клинических процедур, так как на сегодняшний день для клинической трансплантации требуются огромные количества стволовых клеток, что приводит, таким образом, к необходимости больших количеств донорских клеток. Такие способы также весьма полезны, поскольку значительное число аутологичных донорских трансплантатов содержит недостаточное количество стволовых клеток, или HSC. Также пациенты часто не могут найти гистосовместимых доноров, что подчеркивает необходимость способов и композиций для снижения числа HSC, необходимых для успешной трансплантации. Возможность улучшить хоуминг и приживление HSC in vitro или ex vivo дает возможность отбора меньшего количества клеток у доноров, тем самым уменьшая время и дискомфорт, связанные со сбором костномозговых/периферических стволовых клеток, и увеличивая число добровольных доноров HSC.
- 3 033717
Настоящее изобретение, таким образом, предоставляет способ улучшенного приживления HSC путем предварительной обработки HSC ex vivo, включающий стадии: a) получения образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки; b) добавления по меньшей мере одного аналога простациклина для получения смеси; c) инкубации указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимуляции G альфа,-пути передачи сигнала в указанных клетках; d) необязательно выделения указанных стимулированных клеток или использования указанной смеси, содержащей указанные стимулированные клетки, для дальнейшего использования, например для лечения или трансплантации.
В частности, аналог простациклина выбирают из группы трепростинила, илопроста, берапроста и цикапрост или их фармацевтически приемлемых солей.
Трепростинил является синтетическим аналогом простациклина. Трепростинил коммерчески доступен как Ремодулин™. Трепростинил представляет собой мононатриевую соль (1R,2R,3aS,9aS)-[[2,3,3a,4,9,9агексагидро-2-гидрокси-1-[(3S)-3-гидроксиоктил]-1H-бенз[f]инден-5-ил]окси]уксусной кислоты.
Илопрост коммерчески доступен как Иломедин и представляет собой 5-{(B)-(1S,5S,6R,7R)-7гидрокси-6[(Е)-(3S,4RS)-3-гидрокси-4-метил-1-октен-6-инил]би-цикло[3.3.0]октан-3-илиден}валериановую кислоту.
Берапрост представляет собой 2,3,3а,8Ь-тетрагидро-2-гидрокси-1-(3-гидрокси-4-метил-1-октен-6инил)-1Н-циклопента(Ь)бензофуран-5-бутановую кислоту.
Цикапрост представляет собой 2-[(2E)-2-[(3aS,4S,5R,6aS)-5-гидрокси-4-[(3S,4S)-3-гидрокси-4метилнона-1,6-диинил]-3,3а,4,5,6,6а-гексагидро-1Н-пентален-2-илиден] этокси]уксусную кислоту.
В соответствии с одним вариантом осуществления по меньшей мере два, в частности по меньшей мере три различных аналога простациклина могут использоваться для указанного способа. Альтернативно два, три, четыре, пять, или шесть, или даже больше различных аналогов простациклина могут использоваться для указанного способа. Данный способ преимущественно предоставляет стимулированные клетки, которые могут непосредственно вводиться индивидуумам и которые не проявляют каких-либо нежелательных побочных эффектов благодаря большим количествам неселективных цАМФстимулирующих агентов.
В соответствии с дополнительным вариантом осуществления изобретения предоставляется способ улучшенного приживления гемопоэтических стволовых клеток с помощью предварительной боработки ex vivo, включающий следующие стадии:
a) получения образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки;
b) добавления аналога простациклина и форсколина для получения смеси;
c) инкубации указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимуляции G альфа,пути передачи сигнала в указанных клетках;
d) и необязательно выделения указанных стимулированных клеток;
e) и необязательно выделения и/или концентрирования указанных стимулированных клеток.
В соответствии с отдельным вариантом осуществления изобретения соотношение аналога простациклина и форсколина может приблизительно составлять 1:3. HSC, обработанные форсколином и аналогами простациклина, могут быть очищены перед реимплантацией, однако, эти HSC также могут быть реимплантированы без дополнительных стадий очистки, так как небольшие количества форсколина могут присутствовать, но не вызывать какие-либо негативные побочные эффекты.
Альтернативно к стволовым клеткам может добавляться комбинация трепростинила с одним из числа илопроста, берапроста или цикапроста. Альтернативно трепростинил может дабавляться в сочетании с более чем одним или, например, с двумя, тремя, четырьмя или пятью другими аналогами простациклина, например, без ограничения, илопростом, берапростом, или цикапростом, или их физиологически приемлемыми солями.
В соответствии с отдельным вариантом осуществления для использования при исследованиях на животных или лечении животных агент, усиливающий цАМФ (энхансер), такой как форсколин и/или холерный токсин, может быть дополнительно добавлен к HSC или смеси HSC/трепростинил, илопрост, цикапрост или берапрост до инкубации.
Период времени, необходимый для стимулирования G альфа,-пути передачи сигнала в указанных клетках, может быть измерен с помощью известных методов, например путем измерений цАМФ, которых существует множество вариаций: RIA, метод резонансного переноса энергии флуоресценции (FRET) с EPAC (epac1) (Ponsiouen В. et al, EMBO reports, 5, 12, 1176-1180 (2004)), радиохимические методы и т.д. Стимулированные клетки, в которых имеет место G альфа,-путь передачи сигнала, могут быть отобраны или отделены от нестимулированных клеток способами, известными в данной области техники, такими как цАМФ-репортер на основе FRET.
В соответствии с вариантом осуществления изобретения время инкубации составляет примерно от 1 до 60 мин, предпочтительно примерно от 2 до 30 мин.
цАМФ-зависимый путь является путем, необходимым для оказания содействия приживлению гемопоэтических стволовых клеток. Изобретателями было показано, что аналог простациклина способен вызывать повышение цАМФ в гемопоэтических стволовых клетках. Это достигается за счет активации множества рецепторов, т.е. IP- и EP-рецепторов, что приводит к повышению G альфа,-передачи сигнала.
- 4 033717
Соответственно, аналоги простациклина, подобные трепростинилу, илопросту, цикапросту или берапросту, более эффективно увеличивают уровень цАМФ.
В соответствии с конкретным вариантом осуществления трепростинил является предпочтительным аналогом простациклина, используемым согласно способу настоящего изобретения.
Альтернативно в определенных способах и композициях изобретения также может быть добавлен по меньшей мере один агент, выбранный из энхансера циклического АМФ (цАМФ) или лиганда рецептора простагланлина EP. Примеры энхансеров цАМФ включают, но не ограничиваются этим, дибутирилцАМФ (DB-цАМФ), форболовый эфир, форсколин, скларелин, 8-бром-цАМФ, холерный токсин (СТ), аминофиллин, 2,4 динитрофенол (DNP), норэпинефрин, эпинефрин, изопротеренол, изобутилметилксантин (IBMX), кофеин, теофилин (диметилксантин), дофамин, ролипрам, простагландин Ej, простагландин E2, гипофизарный активирующий аденилатциклазу полипептид (РАСАР) и вазоактивный полипептид кишечника (VIP), наряду с прочими, известными в данной области техники, могут быть добавлены к стволовым клеткам, или смесям стволовые клетки/трепростинил или стволовые клетки/трепростинил, илопрост, цикапрост и/или берапрост перед инкубацией. Примеры энхансеров цАМФ также включают цАМФ и аналоги цАМФ, такие как sp-5,6-DCl-BIMPS (BIMPS), в числе прочих.
В соответствии с отдельным вариантом осуществления изобретения форсколин, и/или холерный токсин, или A субъединица холерного токсина дополнительно добавляются к стволовым клеткам или к смеси стволовые клетки/трепростинил перед инкубацией.
В отдельном варианте осуществления указанные энхансеры цАМФ используются для проведения обработки стволовых клеток животных или для проведения исследований на животных с учетом приживления стволовых клеток.
Относительно аналогов простациклина в соответствии с настоящим изобретением термин аналоги простациклина включает также производные и аналоги указанных веществ.
Термины аналог или производное относятся к химической молекуле, которая сходна с другим химическим веществом по структуре и функции, часто структурно отличающимся отдельным элементом или группой, которая может отличаться вследствие модификации более чем одной группы (например, 2, 3 или 4 групп), если она сохраняет ту же самую функцию, как исходное химическое вещество. Такие модификации являются обычными для специалистов и включают, например, дополнительные или замещенные химические фрагменты, такие как сложные эфиры или амиды кислоты, защитные группы, такие как бензильная группа для спирта или тиола, и трет-бутоксилкарбонильные группы для амина. Также включаются модификации алкильных боковых цепей, такие как алкильные замещения (например, метил, диметил, этил и т.д.), модификации уровня насыщенности и ненасыщенности боковых цепей и введение модифицированных групп, таких как замещенный фенил и феноксигруппа. Производные также могут включать коньюгаты, такие как молекулы биотина или авидина, ферменты, такие как пероксидаза хрена и тому подобное, и радиоизотопно-меченые, биолюминесцентные, хемолюминесцентные или флуоресцентные фрагменты. Кроме того, фрагменты могут быть добавлены к описанным здесь веществам для изменения их фармакокинетических свойств, накпример для увеличения времени полужизни in vivo или ex vivo или увеличения их способности проникать в клетку, в числе прочих желаемых свойств. Также включаются пролекарства, известные как усиливающие многочисленные желательные свойства фармацевтических препаратов (например, растворимость, биологическую доступность, свойства, необходимые при произодстве, и т.д.).
Термин производное также включает изменения исходной последовательности, включая добавления, удаления и/или замещения, которые предоставляют функционально эквивалентные или функционально улучшенные молекулы.
В соответствии с отдельным вариантом осуществления изобретения производное трепростинила выбирают из группы кислотных производных трепростинила, пролекарств трепростинила, полиморфов трепростинила или изомеров трепростинила.
Аналогично илопрост, цикапрост или берапрост могут представлять собой производные из группы кислотных производных, пролекарств, их полиморфов или изомеров.
Термин гемопоэтические стволовые клетки (HSC) или более общий термин стволовые клетки следует понимать как эквивалентные термины в описании настоящего изобретения, которые обычно относятся к плюрипотентным или мультипотентным стволовым клеткам, которые дают начало типам клеток крови, включая миелоидное (например, моноциты и макрофаги, нейтрофилы, базофилы, эозинофилы, эритроциты, мегакариоциты/тромбоциты, дендритные клетки) и лимфоидное направления дифференцировки (например, T-клетки, B-клетки, NK-клетки), и другим известным в данной области техники. Стволовые клетки, как правило, характеризуются способностью образовывать множество типов клеток (т.е. мультипотентностью) и способностью к самообновлению. Однако также могут включаться олигопотентные и унипотентные предшественники. Гемопоэз обычно относится к процессу клеточной дифференцировки или образованию специализированных клеток крови из HSC. B ходе развития гемопоэз перемещается из эмбриональной печени в костный мозг, который затем остается местом гемопоэза на всем протяжении зрелости. После упрочивания в костном мозге HSC не распределяются беспорядочно по всей полости кости. B значительной степени HSC обычно обнаруживаются в непосредственной близости
- 5 033717 к эндостальной поверхности. Число более зрелых стволовых клеток увеличивается при удалении от поверхности кости.
Гемопоэтические ткани содержат клетки, способные к долговременной и кратковременной регенерации, а также коммитированные мультипотентные, олигопотентные и унипотентные клетки-предшественники.
В частности, образец, содержащий HSC, может представлять собой костный мозг.
HSC могут быть получены известными способами из любого источника, который известен как содержащий HSC, в частности из периферической крови, пуповины или пуповинной крови, плаценты и костного мозга. Альтернативно также возможны такие источники как эмбриональная печень, эмбриональная селезенка и аорта-гонадо-мезонефрос животных. HSC человеческого происхождения являются предпочтительными для способов и композиций изобретения. Например, HSC можно найти в костном мозге взрослых, включая бедренные кости, шейку бедра, ребра, грудину и другие кости. HSC можно получить непосредственно путем отбора из бедра при помощи иглы и шприца или из крови, часто после предварительной обоработки цитокинами, такими как G-CSF (гранулоцитарные колоние-стимулирующие факторы), которые вызывают высвобождение клеток из костно-мозгового компартмента.
HSC могут быть идентифицированы в соответствии с определенными фенотипическими или генотипическими маркерами. Например, HSC могут быть идентифицированы по их малому размеру, отсутствию маркеров направления диффренцировки (lin), низкому окрашиванию (боковая популяция) витальными красителями, такими как родамин 123 (rho10) или Hoechst 33342, и присутствию различных антигенных маркеров на их поверхности, многие из которых относятся к группе кластера дифференцировки (например, CD5, CD11b, CD34, CD38, CD90, CD133, CD105, CD45, GR-1 (=Ly-6G/C), 7-4, Ter-119 и c-kit). HSC преимущественно являются отрицательными по маркерам, которые обычно используются для определения направления дифференцировки и, таким образом, часто относятся к lin(-) клеткам. Большая часть HSC человека может быть охарактеризована как CD5+, CD45R (В220)+, CD11+, GR-1+, CD34+, CD59+, Thyl/CD90+, CD38lo/~, C-kit/CD117+ и lin(-). Однако не все стволовые клетки учитываются с помощью этих комбинаций, поскольку определенные HSC являются CD347+ и CD38+. Также некоторые исследования предполагают, что на поверхности наиболее ранних стволовых клеток может отсутствовать c-kit.
Для очистки lin(-) HSC посредством проточной цитометрии, или FACS может использоваться набор антител к маркерам направления дифференцировки зрелых клеток в отношении истощения lin(+) клеток или поздних мультипотентных предшественников (МРР), включая, например, антитела к ПО3эпсилон, CD5, CD45R, CD11b, CD16, GR-1, 7-4 и Ter-119, CD13, CD32 и CD33, CD71, CD19, CD61, Мас-1 (CD1 lb/CD18), Gr-I, 117Ra, CD3, CD4, CD5 и CD8 в числе прочих, известных в данной области техники. B данной области техники известны дополнительные способы очистки, например способы, использующие определенные характерные особенности сигнальных молекул активации лимфоцитов (SLAM) семейства молекул клеточной поверхности.
HSC, будь то клетки из пуповинной крови, костного мозга, периферической крови или другого источника, могут расти или размножаться в любой подходящей, коммерчески доступной или изготовленной по заказу определенной среде, с сывороткой или без сыворотки. HSC из человеческого источника представляют собой предпочтительные варианты осуществления изобретения. Например, в определенных вариантах осуществления в бессывороточной среде может применяться альбумин и/или трансферрин. Кроме того, могут быть включены цитокины, такие как Flt-3 лиганд, фактор стволовых клеток (SCF) и тромбопоэтин (ТРО) в числе других. HSC также могут выращиваться в сосудах, таких как биореакторы. Среда, подходящая для ex vivo экспансии HSC, также может содержать поддерживающие HSC клетки, такие как стромальные клетки (например, лимфоретикулярные стромальные клетки), которые могут быть получены, например при дезагрегации лимфоидной ткани, и которые демонстрируют поддержание in vitro, ex vivo и in vivo сохранения, роста и дифференцировки HSC, а также их потомков.
Пуповинная кровь или кровь из пупочной вены обычно имеет отношение к относительно небольшому количеству крови (приблизительно до 180 мл), полученной от новорожденного, которая возвращается в неонатальную циркуляцию. Пуповинная кровь богата HSC и может быть собрана и сохранена для последующего использования в соответствии с методами, известными в данной области техники.
Термины ex vivo или in vitro относятся к активностям, имеющим место вне организма, таким как экспериментальные работы или измерения, сделанные в или на живой ткани в искусственной окружающей среде вне организма, предпочтительно с минимальными изменениями естественных условий. B некоторых вариантах осуществления такие ткани или клетки могут быть собраны, заморожены и позже разморожены для обработки ex vivo. Эксперименты с культурой ткани или процедуры, продолжающиеся дольше нескольких дней с использованием живых клеток или ткани, в большинстве случаев принято считать процедурами in vitro, хотя этот термин может использоваться взаимозаменяемым образом с термином ex vivo. Перечисления ex vivo введение, ex vivo обработка или ex vivo терапевтическое использование относятся в основном к медицинским процедурам, в которых один или более органов, клеток или тканей получены от живого или только что умершего субъекта, необязательно очищены/обогащены, подвергнуты обработке или операции с целью воздействовать на стволовые клетки (например, стадия ex vivo введения, которая предполагает инкубацию клеток с композицией настоящего
- 6 033717 изобретения для увеличения способности HSC прививаться), и затем введены тому же самому или другому живому субъекту после необязательной обработки или процедуры.
Такие ex vivo терапевтические варианты применения также могут включать необязательную стадию in vivo обработки или методическую стадию, такую как введение композиции изобретения один или более раз живому субъекту после введения органа, клеток или ткани. Для этих вариантов осуществления предусматривается и местное, и системное применение в соответствии с хорошо известными в данной области техники методами. Количество трепростинила или количество смеси, содержащей трепростинил и стимулированные стволовые клетки, необязательно вместе с дополнительными средствами, вводимое субъекту, зависит от характерных особенностей этого субъекта, таких как общее состояние здоровья, возраст, пол, вес тела и переносимость лекарственных средств, а также степень, тяжесть и тип реакции на трепростинил и/или клеточный трансплантат.
В соответствии с конкретным вариантом осуществления изобретения композиция, содержащая аналог простациклина, предоставляется для использования при лечении индивидуумов, подвергающихся трансплантации гемопоэтических стволовых клеток.
В соответствии с предпочтительным вариантом осуществления композиция содержит аналог простациклина, выбранный из группы трепростинила, илопроста, цикапроста и берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, конкретнее она содержит трепростинил.
Композиция по изобретению также может содержать трепростинил вместе с одним или более из числа илопроста, цикапроста или берапроста. Альтернативно композиция может содержать илопрост в сочетании с одним или более из числа трепростинила, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей. Альтернативно композиция может содержать берапрост в сочетании с одним или более из числа трепростинила, цикапроста, или илопроста, или их фармацевтически приемлемых солей. Альтернативно композиция может содержать цикапрост в сочетании с одним или более из числа трепростинила, берапроста, или илопроста, или их фармацевтически приемлемых солей.
Указанные субъекты могут страдать от какой-либо болезни костного мозга, т.е. заболевания, при котором нормальная архитектура костного мозга смещена злокачественными новообразованиями, апластической анемией или инфекциями, приводящими к снижению продукции клеток крови и тромбоцитов. Указанные заболевания костного мозга могут представлять собой, например, лейкоз, дефект компартмента клеток крови или необходимость трансплантации костного мозга после химиотерапии или лечения облучением.
Конкретнее дефект компартмента клеток крови может являться гемоглобинопатией, подобной талассемии, или нарушениями функции нейтрофильных гранулоцитов. Кроме того, настоящее изобретение предусматривает использование для лечения индивидуумов, страдающих от заболевания костного мозга, например вследствие химиотерапии или облучения, и при этом подвергающихся трансплантации гемопоэтических стволовых клеток, путем введения по меньшей мере одного аналога простациклина в течение ограниченного периода времени после трансплантации костного мозга.
Лечение субъектов, подвергающихся трансплантации костного мозга, с использованием по меньшей мере одного аналога простациклина, по меньшей мере одного аналога простациклина вместе с одним или более, в частности двумя, более конкретно тремя энхансерами цАМФ или смеси, содержащей по меньшей мере один, в частности два, более конкретно три аналога простациклина, и стимулированных стволовых клеток, необязательно вместе с дополнительными средствами, такими как один или более энхансеров цАМФ, также рассматривается настоящим изобретением.
Конкретнее энхансер цАМФ может являться форсколином.
По меньшей мере один аналог простациклина может использоваться для улучшения приживления человеческих HSC во время трансплантации костного мозга или после восстановления костного мозга с использованием HSC. Ускоренное приживление сокращает период, во время которого субъекты чувствительны к потенциально летальным инфекциям, кровотечению и другим серьезным осложнениям. Следовательно, аналог простациклина должен быть полезным методом лечения, предназначенным для предварительной обработки донорного костного мозга с целью увеличения приживления костного мозга (т.е. путем уменьшения числа необходимых клеток и сокращения продолжительности аплазии костного мозга).
В частности, аналог простациклина выбирают из группы трепростинила, илопроста, цикапроста, или берапроста, или их фармацевтически приемлемых солей. Конкретнее трепростинил является предпочтительным для применения аналогом простациклина.
Длительное лечение субъектов в течение нескольких дней после трансплантации костного мозга аналогом простациклина должно давать в результате улучшенные клинические результаты в виде улучшения приживления (т.е. путем уменьшения числа необходимых клеток и сокращения продолжительности аплазии костного мозга).
Таким образом, в соответствии с конкретным вариантом осуществления лечение проводят в течение по меньшей мере пяти дней после трансплантации, конкретнее в течение по меньшей мере 10 дней, еще конкретнее в течение по меньшей мере 14 дней после трансплантации.
В соответствии с альтернативным вариантом осуществления изобретения рассматривается композиция, содержащая один или более чем один аналог простациклина и стимулированные гемопоэтические
- 7 033717 стволовые клетки.
Альтернативно в определенных вариантах осуществления к композиции может добавляться средство, выбранное из энхансера циклического АМФ (цАМФ) или лиганда рецептора простагландина EP. B соответствии с отдельным вариантом осуществления композиция по изобретению также может содержать форсколин.
В частности, композиции изобретения являются фармацевтическими композициями.
В указанных композициях могут содержаться дополнительные фармацевтически приемлемые эксципиенты (вспомогательные вещества), известные в данной области техники.
Количество аналога простациклина зависит от терапевтического средства или метода приготовления стимулированных HSC. B частности, эффективное количество трепростинила для терапевтических вариантов применения составляет по меньшей мере 1,0 нг/кг веса тела.
Композиция по изобретению может вводиться субъекту любым способом, применяемым и известным в данной области техники. Конкретнее обеспечивается внутривенное или подкожное введение.
Указанная композиция может находиться в форме для перорального приема, выбранной из группы форм с длительным высвобождением, таблеток или капсул.
Предшествующее описание станет полностью понятным на основании следующих примеров. Однако такие примеры являются лишь характерными примерами применения на практике одного или более варианов осуществления настоящего изобретения, и их не следует понимать как ограничивающие рамки изобретения.
Примеры
Пример 1.
Материалы и методы
Выделение костномозговых стволовых клеток
Десять мышей (C57BL/6) умерщвляли смещением шейных позвонков. Трубчатые кости задних конечностей (т.е. бедренные и болшеберцовые) освободили от мышц и соединительной ткани и промыли средой RPMI, используя шприц и иглу 271/2 G. Клеточную суспензию освободили от видимой соединительной ткани, собрали и перенесли в центрифужные пробирки. Клетки собрали центрифугированием (1200 об/мин/~100 g в течение 5 мин) и ресуспендировали в 3 мл буфера, лизирующего эритроциты (0,15 М NH4Cl; 10 мМ KHCO3; 0,1 мМ EDTA, значение pH от 7,2 до 7,4). Суспензию клеток инкубировали в течение 2 мин при 20°C, а затем 4 мин на льду. После этого добавили RPMI (10 мл) и клетки собрали центрифугированием и подсчитали. Типично выход клеток составлял 3х107/мышь.
Клетки ресуспендировали в ледяном PBS (фосфатно-солевом буфере), содержащем 2% FCS (эмбриональная телячья сыворотка) при плотности клеток 2,5х108 клеток/мл, к которым добавили смесь биотинилированных антител (набор Lineage Cell Depletion Kit от Miltenyi Biotec), содержащую линиеспецифические антитела к CD5, CD45R (В220), CD11b, GR-1 (=Ly-6G/C), 7-4 и Ter-119 при отношении 0,1 мл раствора антител на 108 клеток. Клетки инкубировали с антителами в течение 20 мин на льду и осадили центрифугированием. После ресуспендирования к суспензии клеток добавили (3,3х108 клеток/мл) вторичные антибиотин-покрытые микробусины (0,2 мл/108 клеток, предоставленные с набором (Lineage Cell Depletion Kit от Miltenyi Biotec), а смесь инкубировали в течение 15 мин на льду. После этого образец развели в MACS-буфере (30 мл), клетки собрали центрифугированием и ресуспендировали в 6 мл MACS-буфера. Эту суспензию загрузили на предварительно заправленные LS колонки, которые содержали ферромагнитные частицы, покрытые совместимым с клетками пластмассовым материалом. Как правило, использовали три колонки (2 мл суспензии клеток/колонка). Элюат содержал клетки, отрицательные по линейному маркеру (клетки Lin-), тогда как линейно-коммитированные клетки удерживались на колонке. Клетки осаждали центрифугированием и ресуспендировали в мл PBS.
Типичный выход составлял 7х 105 Lin- клеток/мышь.
Флуоресцентно-активируемая сортировка клеток (FACS-анализ)
Антитела, используемые для окрашивания маркеров клеточной поверхности, были получены из следующих источников: набор мышиных линейных антител был получен от Becton Dickinson Biosciences (BD 559971, содержащий в биотинированной форме анти-CD3ε, анти-CD11b, анти-CD45R, анти-Ly6G/Ly-6c, анти-Ter-119), аффинно очищенные крысиные антимышиные CD16/CD32 (mouse FcyII/III block, BD 553142) и флуоресцентный краситель стрептавидин-аллофикоцианин-Су7 (стрептавидин АРС-Су7, BD554063) также были от компании Becton Dickinson Biosciences. Фикоэритрин(РЕ)-Су7-меченые антимышиные Ly6A/E (=антиген стволовых клеток-1 = Sea1) PE-Cy7 (катал. № 25-5981-82) и РЕ-Су5 антимышиные CD117 (c-Kit) (катал. № 15-1171-81) были от компании eBiosciences.
Сразу после MACS 1х106 линейно-положительных (Lin+) и отрицательных (Lin-) клеток перенесли в FACS пробирки и держали на льду в 50 мк PBS. B это время следующие FACS антитела развели (1:50) и смешали в PBS: анти CD16/CD32 очищенные (для блокирования Fc-рецепторов), биотинилированные анти-CD3ε, биотинилированные анти-CD11b, биотинилированные анти-CD45R, биотинилированные анin-Ly-6G/Ly-6C и биотинилированные анти-Ter-119, меченые стрептавидином АРС-Су7, РЕ-Су7меченые анти-Sca-1, РЕ-Су5-меченые анти-c-kit. Этот мастер-микс (смесь) (50 мкл) добавляли к каждому
- 8 033717 образцу, который затем перемешивали с помощью слабого потряхивания и инкубировали при 4°C в темноте в течение 15 мин. После этого клетки собирали центрифугированием, промывали в 2 мл PBS и ресуспендировали в PBS. Образцы анализировали на приборе FACS Canto II (Becton Dickinson). Использовали установку дискриминационного окна как указано далее: ворота для живых клеток были установлены путем регистрации переднего и бокового рассеяния. Живые клетки дополнительно различали на основе экспрессии линейных маркеров (т.е., CD11b, CD45R, Ly-6G/Ly-6C, Ter-119). Это давало возможность установления ворот для Lin- клеток, которые дополнительно анализировали в отношении экспрессии Sca-1 и c-Kit.
Анализ накопления [3И]цАМФ
Lin- /Sca1+-клетки инкубировали в 1 мл среды для стволовых клеток (Stem Span SFEM, Stem Cell Tech #09650), содержащей по 0,5 мг/л бензилпенициллина и стрептомицина, по 50 нг/мл мышиного фактора стволовых клеток (mSCF), человеческого Flt-3, hIL-11 50 нг/мл, m-IL3 (10 нг/мл) (все от компании PreProTech), 10 мкг/мл аденозиндезаминазы (Roche) и [3И]аденин (Perkin Elmer, 1 мкО/мл). Преинкубация продолжалась в течение 4 ч при 37°C. Затем клетки стримулировали разными веществами (форсколином, трепростинилом и другими простаноидами; холерным токсином) в течение 1 ч. Затем клетки осадили центрифугированием (5 мин при 100 g), среду удалили и осадок лизировали в ледяной 2,5% хлорной кислоте (0,9 мл), содержащей 0,1 мМ цАМФ, держали на льду в течение 1 ч и нейтрализовали 4,2 М КОН (0,1 мл)). Клетки, положительные по линейным маркерам, предварительно инкубировали аналогичным образом, но в среде, содержавшей RMPI вместо бессывороточной среды для стволовых клеток. АМФ и цАМФ разделили с помощью последовательной хроматографии на колонках, содержащих Dowex AG50-X8 и нейтральную окись алюминия (12).
Тот факт, что различия можно видеть только в присутствии форсколина, представляет собой техническую проблему - без повышения чувствительности форсколином (т.е. при его отсутствии) сигнал является недостаточным, чтобы видеть какие-либо различия между разными соединениями, т.е. илопростом, берапростом и трепростинилом. Повышение чувствительности означает, что клетки становятся более чувствительными (сенсибилизируются) к рецепторному ответу, так как эти клетки содержат чрезвычайно низкий уровень цАМФ.
По концентрационной кривой (фиг. 5) для трепростинила можно видеть, что увеличение цАМФ является существенным без добавления форсколина.
Трансплантация костного мозга
Изогенных мышей-реципиентов подвергали летальному облучению. Если этих мышей не спасти путем внутривенного введения гемопоэтических стволовых клеток, они погибают в течение первых двух недель. Lin- (Scal+ и c-Kit+) гемопоэтические стволовые клетки были приготовлены, как описано выше, и были предварительно обработаны ex vivo в отсутствие и присутствии 10 мкМ трепростинила, комбинации трепростинил +30 мкМ форсколин (FSK), 10 мкг/мл холерного токсина в течение 1 ч при 37°C. После этого клетки (3х105/мышь) вводили через хвостовую вену. Подсчет лейкоцитов проводили с помощью FACS. Подсчет лейкоцитов проводили каждые 5 дней, начиная с 9 дня (когда количество лейкоцитов было ~1 г/л).
Результаты
Очистка гемопоэтических стволовых клеток
Использование метода на основе MACS позволяет удержать положительные по линейным маркерам (Lin+) клетки на магнитных частицах и дает возможность выделения клеток, отрицательных по линейным маркерам (Lin-): свойства клеточной популяции были охарактеризованы при помощи FACS. MACSзадержанная популяция клеток действительно была обогащена клетками, которые были окрашены линейно-специфическими маркерами и были лишены рецептора стволовых клеток c-Kit/CD 117 (фиг. 1).
В противоположность этому, клетки, выделенные из элюата колонки, преимущественно были обнаружены в верхнем левом квадранте, т.е. они показывали высокий уровень c-Kit и были лишены АРССу7-А флуоресценции, что свидетельствовало об истощении линейных маркеров (фиг. 2).
Популяции клеток дополнительно оценивали путем двойного окрашивания и c-Kit и Sca-1 (антиген стволовых клеток-1): линейно-положительные клетки были лишены этих двух маркеров (фиг. 3A), в то время как линейно-отрицательная фракция экспрессировала высокие уровни c-Kit или сочетания c-Kit и Sca-1 (фиг. 3B).
Накопление циклического АМФ в клетках c-Kit+ и Scal+
Пул адениновых нуклеотидов гемопоэтических стволовых клеток (c-Kit+ и Sca-1+ популяция, смотри фиг. 3B) метаболичеси пометили [3В]аденином и проверили их ответ на трепростинил и другие агонисты простагландинового рецептора. Поскольку эти клетки показывают весьма умеренный цАМФ-ответ, фермент сенсибилизировали путем использования форсколина. Этот дитерпен связывается в псевдосубстратной щели между каталитическими С1 и С2 доменами аденилатциклазы и делает различные изоформы фермента более легко реагирующими на стимулирующий G белок Gas (13-15). Как видно из фиг. 4, трепростинил, берапрост и илопрост как таковые (per se) вызывали умеренное накопление цАМФ, сравнимое по величине с накоплением, вызванным форсколином 30 мкМ. Однако в сочетании с форсколином
- 9 033717 трепростинил вызывал увеличение уровня цАМФ, превосходящее увеличение, вызванное IP-(I простаноид) рецептор-специфическими соединениями илопрост и берапрост. Это можно объяснить, если принять во внимание действие трепростинила на EP(B простаноид)-рецепторы (10). Трепростинил вызывал зависимое от концентрации накопление цАМФ в пределах от 0,1 до 10 мкМ (фиг. 5). Значение EC50 находилось в пределах 0,3 мкМ. Трепростинил оказался неспособным повысить уровень цАМФ в Lin+ фракции гемопоэтических клеток (данные не показаны).
Восстановление костного мозга гемопоэтическими стволовыми клетками (Lin-, c-Kit+, Scal+)
Летально облученных мышей восстанавливали с помощью внутривенной инъекцией 3х105 Lin-, cKit+, Scal+ клеток. Количество лейкоцитов начинало увеличиваться с самого низкого уровня на 9 день и медленно увеличивалось в течение последующих нескольких недель. Уровень лейкоциов в день 60 после инъекции гемопоэтических стволовых клеток был выбран в качестве релевантной конечной точки, так как через 60 дней циркулирующие лейкоциты могли продуцироваться только прижившимися гемопоэтическими стволовыми клетками. Как видно на фиг. 6, мыши, инъецированные предварительно обработанными трепростинилом гемопоэтическими стволовыми клетками, имели существенно более высокие уровни циркулирующих лейкоцитов, чем получившие обработанные носителем гемопоэтические стволовые клетки (р<0,05, t-критерий Стьюдента для непарных данных).
В качестве дополнительного контроля животным инъецировали (i) клетки, обработанные холерным токсином, поскольку он является наиболее эффективным и стойким активатором Gas, (ii) форсколином, поскольку, как указано выше, он непосредственно активирует изоформы аденилатциклазы, (ш) комбинацией форсколина и трепростинила.
Очевидно, что трепростинил был также эффективен в качестве положительного контроля как и холерный токсин, который, как было установлено, является эффективным ex vivo воздействием (1,2).
Пример 2.
Выделение костномозговых стволовых клеток
Мышей C57BL/6 и B6SJL забивали и выделяли костномозговые стволовые клетки, как описано в примере 1.
Предварительная обработка выделенных стволовых клеток in vitro
Костномозговые стволовые клетки, полученные от мышей C57BL/6 или C6SJL, предварительно обрабатывали in vitro холерным токсином (СТХ) или комбинацией трепростинил+форсколин (FSK), и стволовые клетки пометили Ly5.2 или Ly5.1.
В первом эксперименте костномозговые стволовые клетки от C57BL/6 мышей использовали без предварительной обработки, а стволовые клетки пометили Ly5.2. Костномозговые стволовые клетки от C6JL были предварительно обработаны in vitro холерным токсином или комбинацией трепростинил+форсколин, а стволовые клетки пометили Ly5.1.
Для сравнительных исследований смесь клеток 1:1 Ly5.1+ и Ly5.2+ вводили мышам путем трансплантации костного мозга, и с самого начала было измерено соотношение Ly5.2 и Ly5.1 положительных клеток крови. Далее через 16 недель после трансплантации костного мозга был измерен рост (разрастание) клеток крови. Результаты показаны на фиг. 7, на которой ясно видно, что предварительно обработанные трепростинилом/FSK клетки (Ly5.1+) показывают значительно увеличенное разрастание по сравнению с необработанными клетками и клетками, предварительно обработанными СТ.
Во втором эксперименте костномозговые стволовые клетки от C57BL/6 предварительно обработали in vitro холерным токсином или комбинацией трепростинил+форсколин, а стволовые клетки пометили Ly5.2. Костномозговые стволовые клетки от C6JL мышей, помеченные Ly5.1, использовали без какойлибо предварительной обработки.
И в этом случае для сравнительных исследований смесь клеток 1:1 Ly5.1+ и Ly5.2+ вводили мышам путем трансплантации костного мозга, и с самого начала было измерено соотношение Ly5.2 и Ly5.1 положительных клеток крови. Затем через 16 недель после трансплантации костного мозга было измерено разрастание клеток крови. Результаты показаны на фиг. 8, где вновь явно видно, что предварительно обработанные трепростинилом/FSK клетки (Ly5.2+) показывают значительно увеличенное разрастание по сравнению с необработанными клетками и клетками, предварительно обработанными СТ. Таким образом, можно видеть, что эффект трепростинила и форсколина не зависит от источника происхождения клеток костного мозга.
Таким образом, комбинация трепростинила и форсколина увеличивает приживление гемопоэтических стволовых клеток и является столь же или даже более эффективным, как и предварительная обработка холерным токсином.
- 10 033717
Ссылки.
1. Adams GB, Alley IR, Chung UI, Chabner KT, Jeanson NT, Lo Celso C, Marsters ES, Chen M, Weinstein LS, Lin CP, Kronenberg HM, Scadden DT (2009) Haematopoietic stem cells depend on Gas-mediated signalling to engraft bone marrow. Nature 459:103-107.
2. Dexter TM, Whetton AD, Heyworth CM (1985) Inhibitors of cholera toxin-induced adenosine diphosphate ribosylation of membrane-associated proteins block stem cell differentiation. Blood 65:1544-1548.
3. Long MW, Heffner CH, Gragowski LL (1988) Cholera toxin and phorbol diesters synergistically modulate murine hematopoietic progenitor cell proliferation Exp Hematol. 16:195-200.
4. Freissmuth M, Gilman AG (1989) Mutations of Gsa designed to alter the reactivity of the protein with bacterial toxins. Substitutions at ARG187 result in loss of GTPase activity. J Biol Chem 264:21907-21914
5. Aksentijevich I, Flinn I (2002) Chemotherapy and bone marrow reserve: lessons learned from autologous stem cell transplantation. Cancer Biother Radiopharm 17:399-403.
6. Awedan AA (2002) High intensity regimens with autologous hematopoietic stem cell transplantation as treatment of multiple myeloma. Ann Transplant 7:38-43.
7. North ТЕ, Goessling W, Walkley CR, Lengerke C, Kopani KR, Lord AM, Weber GJ, Bowman TV, Jang IH, Grosser T, Fitzgerald GA, Daley GQ, Orkin SH, Zon LI (2007) Prostaglmn E2 regulates vertebrate haematopoietic stem cell homeostasis. Nature 447:10071011.
8. Hoggatt J, Singh P, Sampath J, Pelus LM (2009) Prostaglmn E2 enhances hematopoietic stem cell homing, survival, and proliferation. Blood 113:5444-5455.
9. Goessling W, North ТЕ, Loewer S, Lord AM, Lee S, Stoick-Cooper CL, Weidinger G, Puder M, Daley GQ, Moon RT, Zon LI (2009) Genetic interaction of PGE2 and Wnt signaling regulates developmental specification of stem cells и regeneration. Cell 136:1136-1147.
10. Aronoff DM, Peres CM, Serezani CH, Ballinger MN, Carstens JK, Coleman N, Moore BB, Peebles RS, Faccioli LH, Peters-Golden M (2007) Synthetic prostacyclin analogs differentially regulate macrophage function via distinct analog-receptor binding specificities. J Immunol 178:1628-1634.
11. Kiriyama M, Ushikubi F, Kobayashi T, Hirata M, Sugimoto Y, и Narumiya S (1997) Ligand binding specificities of the eight types and subtypes of the mouse prostanoid receptors expressed in Chinese hamster ovary cells. Br J Pharmacol 122:217-224
12. Johnson RA, Alvarez, R, Salomon, Y. (1994) Determination of adenylyl cyclase

Claims (9)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток (HSC) для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток, включающий следующие стадии:
    a) получение образца, содержащего гемопоэтические стволовые клетки;
    b) смешивание указанного образца по меньшей мере с одним аналогом простациклина, выбранным из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином, где соотношение аналога простациклина и форсколина составляет 1:3, для получения смеси;
    c) инкубирование указанной смеси в течение периода времени, достаточного для стимулирования G альфа8-пути передачи сигнала в указанных клетках.
  2. 2. Способ по п.1, дополнительно включающий выделение стимулированных клеток.
  3. 3. Способ по п.1 или 2, в котором указанный образец является костным мозгом.
    - 11 033717
  4. 4. Способ по п.1 или 2, в котором указанные стволовые клетки получают из пуповинной крови, донорного костного мозга или плаценты.
  5. 5. Фармацевтическая композиция для улучшения приживления HSC после трансплантации у пациентов с заболеваниями костного мозга, включающая по меньшей мере один аналог простациклина, выбранный из группы, состоящей из трепростинила, илопроста, цикапроста или берапроста или их фармацевтически приемлемых солей, вместе с форсколином, и стимулированные гемопоэтические стволовые клетки, полученные способом по любому из пп.1-4.
  6. 6. Композиция по п.5, изготовленная в форме для внутривенного введения.
  7. 7. Применение композиции по п.5 для лечения индивидуумов, страдающих от заболевания костного мозга.
  8. 8. Применение по п.7, в котором заболевание костного мозга представляет собой лейкоз, гемоглобинопатию, нарушение функции нейтрофильных гранулоцитов или заболевания костного мозга, вызванные химиотерапией или облучением.
  9. 9. Применение по любому из пп.7, 8, где композиция используется после трансплантации костного мозга.
EA201300817A 2011-01-13 2012-01-13 Способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток и фармацевтическая композиция для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток EA033717B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP11150835 2011-01-13
PCT/EP2012/050484 WO2012095511A1 (en) 2011-01-13 2012-01-13 Method for enhancing engraftment of haematopoetic stem cells

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA201300817A1 EA201300817A1 (ru) 2013-11-29
EA033717B1 true EA033717B1 (ru) 2019-11-19

Family

ID=44146841

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201300817A EA033717B1 (ru) 2011-01-13 2012-01-13 Способ ex vivo предварительной обработки гемопоэтических стволовых клеток и фармацевтическая композиция для улучшения приживления гемопоэтических стволовых клеток

Country Status (19)

Country Link
US (1) US10213464B2 (ru)
EP (1) EP2663313B1 (ru)
JP (2) JP6110309B2 (ru)
KR (1) KR101950526B1 (ru)
CN (1) CN103379907B (ru)
AU (1) AU2012206517B2 (ru)
BR (1) BR112013017878B1 (ru)
CA (1) CA2824113C (ru)
CL (1) CL2013002034A1 (ru)
DK (1) DK2663313T3 (ru)
EA (1) EA033717B1 (ru)
ES (1) ES2693622T3 (ru)
IL (1) IL227331A (ru)
PL (1) PL2663313T3 (ru)
PT (1) PT2663313T (ru)
SG (1) SG191908A1 (ru)
UA (1) UA113284C2 (ru)
WO (1) WO2012095511A1 (ru)
ZA (1) ZA201304743B (ru)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6901823B2 (ja) * 2012-08-01 2021-07-14 ユナイテッド セラピューティクス コーポレイション 間葉系幹細胞による肺動脈性高血圧症の処置
US9505737B2 (en) 2013-01-11 2016-11-29 Corsair Pharma, Inc. Treprostinil derivative compounds and methods of using same
ES2927844T3 (es) 2013-01-11 2022-11-11 Corsair Pharma Inc Profármacos de treprostinil
AU2015217142B2 (en) * 2014-02-12 2020-04-09 7 Hills Pharma LLC Compositions and methods to improve the homing and grafting of hematopoetic stem cells
AU2015249751A1 (en) * 2014-04-23 2016-11-10 Texas Heart Institute Methods of enhancing stem cell engraftment
LT3250202T (lt) * 2015-01-27 2021-06-25 SciPharm S.à r.l. Kompozicija, skirta naudoti kraujodaros kamieninių ląstelių po transplantacijos prigijimo pagerinimui
US9643911B2 (en) 2015-06-17 2017-05-09 Corsair Pharma, Inc. Treprostinil derivatives and compositions and uses thereof
US9394227B1 (en) 2015-06-17 2016-07-19 Corsair Pharma, Inc. Treprostinil derivatives and compositions and uses thereof
US10898494B2 (en) 2016-05-05 2021-01-26 Liquidia Technologies, Inc. Dry powder treprostinil for the treatment of pulmonary hypertension
CN109727671B (zh) * 2018-12-28 2021-07-09 广东省心血管病研究所 一种鉴定造血干细胞移植术效果的信息分析***及方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006017169A2 (en) * 2004-07-09 2006-02-16 Cardiac Pacemakers, Inc. Implantable sensor with biocompatible coating for controlling tissue growth
WO2011015630A1 (en) * 2009-08-07 2011-02-10 Scipharm Sàrl Composition for the treatment of cystic fibrosis

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6441245B1 (en) 1997-10-24 2002-08-27 United Therapeutics Corporation Process for stereoselective synthesis of prostacyclin derivatives
US6242482B1 (en) * 2000-06-05 2001-06-05 United Therapeutics Corporation Prostaglandin compounds and derivatives thereof, compositions containing the same and method of using the same for the treatment of congestive heart failure
US20070065414A1 (en) * 2005-09-16 2007-03-22 Boston Scientific Scimed, Inc. Enhanced delivery of cells
EP3424507A1 (en) * 2006-03-24 2019-01-09 Children's Medical Center Corporation Method to modulate hematopoietic stem cell growth
JP5426389B2 (ja) * 2006-10-20 2014-02-26 チルドレンズ メディカル センター コーポレーション 組織の再生を亢進するための方法
KR101587071B1 (ko) * 2008-07-23 2016-01-20 도레이 카부시키가이샤 만성 신부전 처치제
CN102164487A (zh) * 2008-09-25 2011-08-24 阿拉迪姆公司 曲前列素的深肺部递送
AU2009313290B2 (en) 2008-11-06 2016-04-21 Indiana University Research & Technology Corporation Materials and methods to enhance hematopoietic stem cells engraftment procedures
JP5836262B2 (ja) * 2009-03-19 2015-12-24 フェイト セラピューティクス， インコーポレイテッド サイクリックａｍｐエンハンサーおよび／またはｅｐリガンドを含む組成物、ならびにこれを調製および使用する方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006017169A2 (en) * 2004-07-09 2006-02-16 Cardiac Pacemakers, Inc. Implantable sensor with biocompatible coating for controlling tissue growth
WO2011015630A1 (en) * 2009-08-07 2011-02-10 Scipharm Sàrl Composition for the treatment of cystic fibrosis

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CRUTCHLEY D. J., CONANAN L. G., QUE B. G.: "EFFECTS OF PROSTACYCLIN ANALOGS ON THE SYNTHESIS OF TISSUE FACTOR, TUMOR NECROSIS FACTOR-ALPHA AND INTERLEUKIN-1BETA IN HUMAN MONOCYTIC THP-1 CELLS.", JOURNAL OF PHARMACOLOGY AND EXPERIMENTAL THERAPEUTICS, AMERICAN SOCIETY FOR PHARMACOLOGY AND EXPERIMENTAL THERAPEUTICS, US, vol. 271., no. 01., 1 October 1994 (1994-10-01), US, pages 446 - 451., XP002071737, ISSN: 0022-3565 *
GREGOR B. ADAMS, IAN R. ALLEY, UNG-IL CHUNG, KARISSA T. CHABNER, NATHANIEL T. JEANSON, CRISTINA LO CELSO, EMILY S. MARSTERS, MIN C: "Haematopoietic stem cells depend on Gαs-mediated signalling to engraft bone marrow", NATURE, �MACMILLAN JOURNALS LTD., ETC.|, vol. 459, no. 7243, 7 May 2009 (2009-05-07), pages 103 - 107, XP055002062, ISSN: 00280836, DOI: 10.1038/nature07859 *
ISHII, M. ; NUMAGUCHI, Y. ; OKUMURA, K. ; KUBOTA, R. ; MA, X. ; MURAKAMI, R. ; NARUSE, K. ; MUROHARA, T.: "Mesenchymal stem cell-based gene therapy with prostacyclin synthase enhanced neovascularization in hindlimb ischemia", ATHEROSCLEROSIS, ELSEVIER, AMSTERDAM, NL, vol. 206, no. 1, 1 September 2009 (2009-09-01), AMSTERDAM, NL, pages 109 - 118, XP026519542, ISSN: 0021-9150, DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2009.02.023 *
J. HOGGATT, SINGH P., SAMPATH J., PELUS L. M.: "Prostaglandin E2 enhances hematopoietic stem cell homing, survival, and proliferation", BLOOD, vol. 113, no. 22, 28 May 2009 (2009-05-28), pages 5444 - 5455, XP055002065, ISSN: 00064971, DOI: 10.1182/blood-2009-01-201335 *
OTSUKA, H. ; AKASHI, H. ; MUROHARA, T. ; OKAZAKI, T. ; SHINTANI, S. ; TAYAMA, K. ; SASAKI, K.I. ; IMAIZUMI, T. ; AOYAGI, S.: "The Prostacyclin Analog Beraprost Sodium Augments the Efficacy of Therapeutic Angiogenesis Induced by Autologous Bone Marrow Cells", ANNALS OF VASCULAR SURGERY, ELSEVIER, AMSTERDAM, NL, vol. 20, no. 5, 1 September 2006 (2006-09-01), AMSTERDAM, NL, pages 646 - 652, XP024920915, ISSN: 0890-5096, DOI: 10.1007/S10016-006-9100-5 *
R. MADONNA: "Prostacyclin improves transcoronary myocardial delivery of adipose tissue-derived stromal cells", EUROPEAN HEART JOURNAL, NO LONGER PUBLISHED BY ELSEVIER, vol. 27, no. 17, 1 January 2006 (2006-01-01), pages 2054 - 2061, XP055002018, ISSN: 0195668X, DOI: 10.1093/eurheartj/ehl154 *
TRISTA E. NORTH, WOLFRAM GOESSLING, CARL R. WALKLEY, CLAUDIA LENGERKE, KAMDEN R. KOPANI, ALLEGRA M. LORD, GERHARD J. WEBER, TERESA: "Prostaglandin E2 regulates vertebrate haematopoietic stem cell homeostasis", NATURE, �MACMILLAN JOURNALS LTD., ETC.|, vol. 447, no. 7147, 21 June 2007 (2007-06-21), pages 1007 - 1011, XP055002054, ISSN: 00280836, DOI: 10.1038/nature05883 *
WOLFRAM GOESSLING, ROBYN�S. ALLEN, XIAO GUAN, PING JIN, NAOYA UCHIDA, MICHAEL DOVEY, JAMES�M. HARRIS, MARK�E. METZGER, AYLIN�C. BO: "Prostaglandin E2 Enhances Human Cord Blood Stem Cell Xenotransplants and Shows Long-Term Safety in Preclinical Nonhuman Primate Transplant Models", CELL STEM CELL, ELSEVIER, CELL PRESS, vol. 8, no. 4, 1 April 2011 (2011-04-01), pages 445 - 458, XP055002056, ISSN: 19345909, DOI: 10.1016/j.stem.2011.02.003 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN103379907A (zh) 2013-10-30
US10213464B2 (en) 2019-02-26
EP2663313B1 (en) 2018-08-08
IL227331A (en) 2017-12-31
KR20140005956A (ko) 2014-01-15
EA201300817A1 (ru) 2013-11-29
ES2693622T3 (es) 2018-12-13
DK2663313T3 (en) 2018-11-26
JP2014507409A (ja) 2014-03-27
BR112013017878B1 (pt) 2021-08-31
EP2663313A1 (en) 2013-11-20
CN103379907B (zh) 2018-01-09
JP6110309B2 (ja) 2017-04-05
AU2012206517B2 (en) 2016-12-01
CL2013002034A1 (es) 2014-03-21
CA2824113C (en) 2020-04-14
IL227331A0 (en) 2013-09-30
KR101950526B1 (ko) 2019-02-20
NZ612450A (en) 2015-03-27
CA2824113A1 (en) 2012-07-19
SG191908A1 (en) 2013-08-30
BR112013017878A8 (pt) 2018-01-09
PT2663313T (pt) 2018-10-23
BR112013017878A2 (ru) 2017-08-15
AU2012206517A1 (en) 2013-08-01
UA113284C2 (xx) 2017-01-10
US20130344038A1 (en) 2013-12-26
JP2017046707A (ja) 2017-03-09
WO2012095511A1 (en) 2012-07-19
PL2663313T3 (pl) 2019-01-31
ZA201304743B (en) 2014-09-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10213464B2 (en) Method for enhancing engraftment of haematopoetic stem cells
AU2016212090B2 (en) Composition for use in increasing engraftment efficacy of haematopoetic stem cells after transplantation
US9522917B2 (en) Bruton&#39;s tyrosine kinase inhibitors for hematopoietic mobilization
EP3533445A1 (en) Compositions comprising cyclic amp enhancers and/or ep ligands, and methods of preparing and using the same
van Os et al. Engraftment of syngeneic bone marrow is not more efficient after intrafemoral transplantation than after traditional intravenous administration
NZ612450B2 (en) Method for enhancing engraftment of haematopoetic stem cells
Ikushima et al. Blood First Edition Paper, prepublished online January 11, 2013; DOI 10.1182/blood-2012-06-437889

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ KZ KG MD TJ TM