EA017583B1

EA017583B1 - Закрепленные на матрице пептидомиметики

Info

Publication number: EA017583B1
Application number: EA200901178A
Authority: EA
Inventors: Стивен Дж. Демарко; Решми Мухерджи; Керстин Меле; Джон Энтони Робинсон; Хайко Хенце; Барбара Романьоли; Даниэль Обрехт; Франк Гомберт; Кристиан Лудин; Ян Вим Врейблуд
Original assignee: Полифор Лтд.; Универзитет Цюрих
Priority date: 2007-02-28
Filing date: 2007-02-28
Publication date: 2013-01-30
Also published as: PT2132221E; US20100048463A1; US20200399317A1; AU2007348171B2; ES2349879T3; MX2009008843A; KR20100014596A; ATE475667T1; US20180127467A1; BRPI0721259A2; US8921325B2; US20150080317A1; US20190100558A1; DK2132221T3; CN101641372A; BRPI0721259B1; KR101479148B1; US20130150299A1; HK1138011A1; US11421001B2

Abstract

Закреплённые на матрице 3-шпилечные пептидомиметики цикло(-Tyr-His-X-Cys-Ser-Ala-Pro-Dab-Arg-Tyr-Cys-Tyr-Gln-Lys-Pro-Pro), дисульфидная связь между Cys4 и Cys11, и их фармацевтически приемлемые соли, где X представляет собой Ala или Tyr, имеют антагонистические свойства в отношении CXCR4 и могут применяться для предотвращения ВИЧ инфекций у здоровых людей или замедления и прекращения развития вируса у инфицированных пациентов; или когда рак опосредован или является результатом активности рецептора CXCR4; или когда иммунологические заболевания опосредованы или являются результатом активности рецептора CXCR4; или для лечения иммуносупрессии; или в частности для мобилизации стволовых клеток периферической крови и/или мезенхимальных стволовых клеток (МСК) и/или других стволовых клеток, удержание которых зависит от CXCR4 рецептора. Эти 3-шпилечные пептидомиметики могут быть произведены с помощью способа, который основан на стратегии смешанного твердо-жидкофазного синтеза, применяя методы, которые хорошо известны специалистам в пептидной химии.

Description

Изобретение обеспечивает закреплённые на матрице β-шпилечные пептидомиметики, которые имеют антагонистическую активность в отношении СХСВ4 и которые, в общем, описаны, но не раскрыты конкретно в АО 2004/096840 А1.

β-шпилечные пептидомиметики по изобретению представляют собой цикло(-Туг-Н18-Х-Сук-8егА1а-^сРго-ОаЬ-Агд-Туг-Су8-Туг-С1п-Гу8-^сРго-Рго), дисульфидная связь между Сук4 и Сук11, и их фармацевтически приемлемые соли, где X - это А1а или Туг.

В соответствии с изобретением, вышеупомянутые β-шпилечные пептидомиметики и их фармацевтически разрешенные соли могут быть приготовлены способом, содержащим следующие этапы:

(a) соединение функционализированной специальным образом твёрдой подложки с соответствующим образом Ν-защищённой производной Рго;

(b) удаление Ν-защитной группы из продукта, полученного на стадии (а);

(c) соединение полученного таким образом продукта с соответствующим образом Ν-защищённой производной ^сРго;

(б) удаление Ν-защитной группы из продукта, полученного таким образом;

(е) соединение полученного таким образом продукта с соответствующим образом Ν-защищённой производной аминокислоты, которая в желаемом конечном продукте находится в положении 14, то есть Ьук, причем аминогруппа, находящаяся в ее боковой цепи, также защищена соответствующим образом;

(I) удаление Ν-защитной группы из продукта, полученного таким образом;

(д) осуществление стадий, по существу, соответствующих стадиям (е) и (Г), но с применением соответствующим образом Ν-защищённых производных аминокислот, которые в желаемом конечном продукте находятся в положениях 13-1, то есть С1и, Туг, Сук, Туг, Агд, ИаЬ, ^сРго, А1а, 8ег, Сук, А1а или Туг, Н18 и Туг, причем любая функциональная группа, которая может присутствовать в указанных Νзащищённых производных аминокислот, также защищена соответствующим образом;

(II) формирование дисульфидного β-стрендового соединения между боковыми цепями цистеиновых остатков в положениях 4 и 11;

(ί) отделение полученного таким образом продукта от твёрдой подложки;

(ί) циклизация продукта, отделенного от твёрдой подложки;

(k) удаление всех защитных групп, связанных с функциональными группами всех членов цепи из аминокислотных остатков; и (l) при желании, превращение полученного таким образом продукта в фармацевтически приемлемые соли или превращение фармацевтически приемлемых или неприемлемых солей, полученных таким образом, в соответствующее свободное соединение или в другую фармацевтически приемлемую соль.

Стадии вышеизложенного способа могут быть осуществлены методами, которые хорошо известны всем специалистам в химии пептидов.

β-шпилечные пептидомиметики по настоящему изобретению могут применяться в широком диапазоне применений для предотвращения ВИЧ-инфекции у здоровых людей или замедления и прекращения развития вируса у инфицированных пациентов; или когда рак опосредован или является результатом активности рецептора СХСК4-; или когда иммунологические заболевания опосредованы или являются результатом активности рецептора СХСК4-; или для лечения иммуносупрессии; или для лечения воспаления, или для мобилизации стволовых клеток периферической крови и/или мезенхимальных стволовых клеток (МСК) и/или других стволовых клеток, удержание которых зависит от СХСВ4 рецептора.

β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут вводиться сами по себе или могут применяться в виде соответствующей композиции вместе с носителями, разбавителями или эксципиентами, хорошо известными в области техники.

В частности, β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут применяться при лечении для увеличения секреции гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) из костного мозга, который будет применяться в аллогенной или аутологической трансплантации.

Срочное лечение с помощью инфузированных ГСК широко применяются для восстановления иммунных функций у пациентов, которые подверглись миелоаблативной терапии при лечении таких онкологических заболеваний, таких как множественная миелома и неходжкинская лимфома. Пациенты или доноры подвергаются воздействию веществ, мобилизующих ГСК, таких как соединение по изобретению, и впоследствии клетки собирают из периферической крови посредством афереза. ГСК трансплантируются обратно пациенту (аутологическая трансплантация) после, например, химиотерапии, или от донора реципиенту (аллогенная трансплантация), таким образом, способствуя восстановлению иммунной функции (ГгийаиГ е! а1., Вг.ГНаета!о1. 122, 360-375 (2003)).

Другие применения ГСК терапии включает в себя, но не ограничивается этим, терапевтический ангиогенез в случае, например, сердечного приступа (8йерйегб ВМ е! а1., В1ооб 2006, 108(12):3662-3667).

β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут также применяться для лечения или предупреждения ВИЧ-инфекций или рака, такого как рак груди, рак мозга, рак простаты, рак легких, рак почки, нейробластома, неходжкинской лимфома, рак яичников, множественная миелома, хроническая лимфоидная лейкемия, рак поджелудочной железы, меланома, ангиогенез и гемопоэтические ткани; или та

- 1 017583 ких воспалительных нарушений как астма, аллергический ринит, болезни гиперчувствительности легких, гиперчувствительный пневмонит, эозинофильная пневмония, гиперчувствительность замедленного типа, интерстициальное заболевание легких (ИЗЛ), идиопатический легочный фиброз, ИЗЛ, связанный с ревматоидным артритом, системная красная волчанка, анкилозирующий спондилит, заболевание периферических сосудов, системный склероз, синдром Шегрена, болезнь Гиппеля-Линдау, системные анафилактические реакции или реакции гиперчувствительности, аллергия на лекарства, ревматоидный артрит, псориатический артрит, синдром Бехчета, мукозит, болезнь Крона, множественный склероз, миастения гравис, юношеский диабет, гломерулонефрит, аутоиммунный тиреоидит, отторжение трансплантата, включая отторжение гомотрансплантат или реакцию трансплантат против хозяина, воспалительные заболевания кишечника, воспалительные дерматозы; либо для лечения иммуносупрессии, включая иммуносупрессию, вызванную отторжением трансплантата.

β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут вводиться отдельно, в виде смесей более чем одного β-шпилечного пептидомиметика, в комбинации с другими агентами, мобилизирующими ГСК, или с анти-ВИЧ агентами, или с противомикробными агентами, или с противовоспалительными препаратами, и/или в комбинации с другими активными фармацевтически активными агентами в зависимости от конкретного случая.

Фармацевтические композиции, содержащие β-шпилечные пептидомиметики по изобретению, могут быть произведены посредством обычных способов смешивания, растворения, гранулирования, изготовления оболочечных таблеток, растирания в порошок мокрым способом, эмульгации, инкапсуляции, включения или лиофилизации. Фармацевтические композиции могут быть составлены обычным способом, применяя один или более физиологически приемлемых носителей, разбавителей, эксципиентов или вспомогательных веществ, которые способствуют преобразованию β-шпилечных пептидомиметиков в препараты, которые могут применяться фармацевтически. Соответствующий состав зависит от выбранного способа введения.

Для местного введения β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут быть приготовлены в виде растворов, гелей, мазей, кремов, суспензий и т.д., хорошо известных в данной области техники.

Системные препараты включают препараты, разработанные для введения посредством инъекции, например подкожного, внутривенного, внутримышечного введения, интратекальная или интраперитонеальная инъекция, а также препараты, разработанные для трансдермального, трансмукозального, перорального или пульмонарного введения.

Для инъекций β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут быть приготовлены в водных растворах, предпочтительно в физиологически совместимых буферах, таких как раствор Хенкса, раствор Рингера или физиологический раствор. Растворы могут содержать структурирующие агенты, такие как суспензирующие, стабилизирующие и/или диспергирующие агенты.

Альтернативно, β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут быть в форме порошка для соединения с подходящей средой, например апирогенной стерильной водой, перед применением.

Для трансмукозального введения в состав могут входить пенетранты, соответствующие барьеру, который необходимо преодолеть, известные в области техники.

Для перорального введения, соединения могут быть легко получены путем комбинирования βшпилечных пептидомиметиков по изобретению с фармацевтически приемлемыми носителями, хорошо известными в области техники. Такие носители делают возможным получение β-шпилечных пептидомиметиков по изобретению в виде таблеток, пилюль, драже, капсул, жидкостей, гелей, сиропов, гидросмесей, суспензий и т.д., для перорального приема пациентом, подлежащим лечению. Для таких пероральных препаратов, как, например, порошки, капсулы и таблетки, подходящие эксципиенты включают наполнители, такие как сахара, например лактоза, сахароза, маннит и сорбит; целлюлозные препараты, такие как кукурузный крахмал, пшеничный крахмал, рисовый крахмал, картофельный крахмал, желатин, трагакантовая камедь, метилцеллюлоза, гидроксипропилметилцеллюлоза, натрийкарбоксиметилцеллюлоза; гранулирующие агенты; и связывающие агенты. При желании могут быть добавлены дезинтегрирующие агенты, такие как поперечно-связанные поливинилпирролидоны, агар или альгиновая кислота или её соль, такая как альгинат натрия. При желании твёрдые лекарственные формы могут быть покрыты сахарной или энтеросолюбильной оболочкой, применяя стандартные методы.

Для жидких пероральных препаратов, таких как, например, суспензии, эликсиры и растворы, подходящие носители, эксципиенты и разбавители включают воду, гликоли, масла, спирты и т.д. Помимо этого могут быть добавлены ароматизирующие вещества, консерванты, красители и тому подобное.

Для буккального введения композиция может принимать форму таблеток, лепешек и т. д., полученных обычными способами.

Для введения путем ингаляции β-шпилечные пептидомиметики по изобретению обычно получают в виде аэрозольных спреев в упаковке под давлением или с распылителем, с применением подходящего газа вытеснителя, например, дихлордифторметан, трихлорфторметан, углекислый газ или другой подходящий газ. В случае аэрозоля под давлением для определение единицы дозы может быть создан клапан для доставки измеренного количества. Могут быть созданы капсулы и картриджи, например желатино

- 2 017583 вые, для применения в ингаляторе или вдувателе, содержащие порошкообразную смесь β-шпилечных пептидомиметиков по изобретению и подходящую порошкообразную основу, такую как лактоза или крахмал.

Соединения также могут входить в состав ректальных или вагинальных композиций, таких как суппозитории, вместе с подходящими суппозиторными основами, такими как какао масло или другие глицериды.

Помимо вышеупомянутых препаратов, β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут также быть получены в виде депо-препаратов. Такие долгодействующие препараты могут вводиться путем имплантации (например, подкожно или внутримышечно) или путём внутримышечной инъекции. Для производства таких депо-препаратов β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут быть включены в подходящие полимерные или гидрофобные материалы (например, эмульсия в приемлемом масле), или ионообменные смолы, либо могут быть получены в виде умеренно растворимых солей.

Более того, могут применяться другие фармацевтические системы доставки, такие как липосомы и эмульсии, хорошо известные в области техники. Также могут применяться определенные органические растворители, такие как диметилсульфоксид. Кроме того, β-шпилечные пептидомиметики по изобретению могут доставляться с применением систем с замедленным высвобождением, таких как полупроницаемые матрицы из твёрдых полимеров, содержащих терапевтический агент. Различные материалы с замедленным высвобождением были установлены и хорошо известны специалистам в данной области. Капсулы замедленного высвобождения могут, в зависимости от их химической природы, высвобождать соединения от нескольких недель до более чем 100 дней. В зависимости от химической природы и биологической стабильности терапевтического агента, могут быть проведены дополнительные процедуры с целью стабилизации белка.

Так как β-шпилечные пептидомиметики по изобретению содержат заряженные остатки, они могут быть включены в любые вышеописанные препараты как таковые или в виде фармацевтически приемлемых солей. Фармацевтически приемлемые соли преимущественно более растворимы в воде и других протонных растворителях, чем соответствующая свободная форма. В частности, подходящие фармацевтически приемлемые соли включают в себя соли, например, карбоновой, фосфоновой, сульфоновой и сульфаминовой кислот, например, уксусной кислоты, пропионовой кислоты, каприловой кислоты, каприновой кислоты, додекановой кислоты, гликолевой кислоты, молочной кислоты, фумаровой кислоты, янтарной кислоты, адипиновой кислоты, пимелиновой кислоты, пробковой кислоты, азелаиновой кислоты, яблочной кислоты, винной кислоты, лимонной кислоты, аминокислот, таких как глютаминовой или аспарагиновой кислоты, малеиновой кислоты, гидроксималеиновой кислоты, метилмалеиновой кислоты, циклогексанкарбоновой кислоты, адамантанкарбоновой кислоты, бензойной кислоты, салициловой кислоты, 4-аминосалициловой кислоты, фталевой кислоты, фенилуксусной кислоты, миндальной кислоты, коричной кислоты, метан- или этансульфоновой кислоты, 2-гидроксиэтансульфоновой кислоты, этан-1,2дисульфоной кислоты, бензолсульфоновой кислоты, 2-нафталенсульфоновой кислоты, 1,5-нафталендисульфоновой кислоты, 2, 3- или 4-метилбензолсульфоновой кислоты, метилсерной кислоты, этилсерной кислоты, додецилсерной кислоты, Ν-циклогексилсульфаминовой кислоты, Ν-метил-, Ν-этил- или Νпропилсульфаминовой кислоты, и других органических протонных кислот, таких как аскорбиновая кислота. Подходящими неорганическими кислотами являются, например, галогеноводородные кислоты, такие как хлороводородная кислота, серная кислота и фосфорная кислоты.

β-шпилечные пептидомиметики по изобретению либо в свободной форме, либо в форме их фармацевтически приемлемых солей или композиций будут как правило, применяться в количестве, эффективном для достижения необходимого результата. Нужно понимать, что применяемое количество будет зависеть от конкретного применения.

Для местного введения для лечения или профилактики ВИЧ-инфекции, терапевтически эффективная доза может быть определена, например, в анализах ίη νίίτο, описанных в примерах. Лечение проводиться при явной ВИЧ-инфекции или даже когда ВИЧ-инфекция не очевидна. Специалист в данной области техники будет в состоянии определить терапевтически эффективные количества для местного лечения ВИЧ-инфекции без неоправданного экспериментирования.

Для системного введения терапевтически эффективная доза может быть оценена исходя из анализов ίη νίίτο. Например, доза может быть сформулирована на основе экспериментов на животных моделях для достижения интервала циркулирующей концентрации β-шпилечных пептидомиметиков, который будет включать в себя 1С₅₀, определенную в клеточной культуре (т.е. такую концентрацию тестируемого соединения, которая вызывает гибель 50% культуры клеток). Такая информация может применяться для определения более точного определения полезных для человека доз.

Начальные дозировки могут быть также определены исходя из данных ίη νίνο, например, животные модели, применяя методы, хорошо известные в области техники. Специалист в данной области техники сможет без труда оптимизировать введение препарата человеку, основываясь на данных экспериментов на животных.

Количества доз для применения в качестве анти-ВИЧ агентов могут быть подобраны индивидуаль

- 3 017583 но для того, чтобы обеспечить достаточный для поддержания терапевтического эффекта уровень βшпилечных пептидо-миметиков в плазме. Терапевтически эффективные уровни в сыворотке могут быть достигнуты путем введения многократных доз каждый день.

В случаях местного применения или избирательного поглощения, эффективная локальная концентрация β-шпилечных пептидомиметиков по изобретению не может быть связана с концентрацией плазмы. Специалист в данной области техники сможет оптимизировать терапевтически эффективные дозы для местного применения, не прибегая к неоправданным экспериментам.

Конечно же, количество вводимых β-шпилечных пептидомиметиков будет зависеть от самого объекта лечения, от его массы, серьезности заболевания, от способа введения и решений лечащего врача.

Анти-ВИЧ терапия может периодически повторяться, если инфекция обнаруживается или даже если инфекция не обнаруживается. Терапия может проводиться самостоятельно или в комбинации с другими лекарственными средствами, такими как, например, другие анти-ВИЧ агенты или противоопухолевые агенты или другие противомикробные агенты.

Как правило, терапевтически эффективная доза β-шпилечных пептидомиметиков, описанных здесь, будет обеспечивать терапевтическую пользу, не оказывая существенного токсического эффекта.

Токсичность β-шпилечных пептидомиметиков по изобретению может быть определена стандартными фармацевтическими методами в клеточных культурах или на экспериментальных животных, например, определением ЬП₅₀ (доза, смертельная для 50% популяции) или ЬЭ₁₀₀ (доза, смертельная для 100% популяции). Соотношение доз токсического и терапевтического эффектов - терапевтический индекс. Предпочтительными являются соединения с высоким терапевтическим индексом. Данные испытаний на клеточной культуре и исследований на животных могут применяться при подборе нетоксического для людей интервала доз. Дозировка β-шпилечных пептидомиметиков по изобретению предпочтительно находится в диапазоне циркулирующих концентраций, который включает эффективную дозу с небольшим токсическим эффектом или без него. Дозировка может измениться в пределах этого диапазона в зависимости от применяемой лекарственной формы и пути введения. Точная рецептура, способ введения и доза могут быть выбраны исходя из состояния пациента непосредственно лечащим врачом (см., например, Είη§1 с1 а1. 1975, ίη: Тйс Рйаттасо1од1са1 Вак15 о£ Тйегареийск, СЬ.1, р.1).

Следующие примеры иллюстрируют изобретение более детально, но не призваны ограничить его объем каким-либо образом. Список применяемых в этих Примерах сокращений:

НВТи:1-бензотриазол-1-ил-тетраметилурония гексафторфосфат (Кпогг е1 а1. Те(гаЬедгоп 1_еИ, 1989, 30, 1927-1930);

НОВ1: 1-гидроксибензотриазол;

ϋΙΕΑ: диизопропилэтиламин; НОАТ; 7-аза-1 -гидроксибензотриазол; НАТи:О-(7-аза-бензотриазол-1-ил)-Ы,И,М’,Н’тетраметилурония гексафторфосфат (Сагр1по е(а1. ТеКаЬедгоп ЬеН. 1994, 35, 2279-2281).

1. Синтез пептидов.

Связывание первого защищенного аминокислотного остатка со смолой 0,5 г 2-хлортритилхлоридной смолы (100-200 меш, сополи(стирол-1% ОУВ)полимерный матрикс, Са1. Νο. 01-64-0114, Νονηόίοсйет, Мегск Вюка-епсек Ыб.) (Ваг1ок е! а1. Тейайебгоп Ьей. 1989, 30, 3943-3946) (1.4 ммоль/г, 0.7 ммоль) было помещено в сухую колбу. Смолу суспендировали в СН₂С1₂ (2,5 мл) и позволили ей набухать при комнатной при постоянном перемешивании в течение 30 мин. Смолу обработали 0,49 ммоль (0,7 экв.) первого соответствующим образом защищенного аминокислотного остатка и 448 мкл (4 экв.) диизопропилэтиламина (ΌΙΕΑ) в СН₂С1₂ (2,5 мл), смесь взбалтывали при 25°С в течение 4 ч. 30 мл смолы (СШСЕ/МеОН/ЭША: 17/2/1) взбалтывали в течение 30 минут; затем промывали в следующем порядке: СН₂С1₂ (Ιχ), ΏΜΕ (Ιχ), СН₂С1₂ (Ιχ), МеОН (Ιχ), СН₂С1₂ (Ιχ), МеОН (Ιχ), СН₂С1₂ (2χ), Εΐ₂Ο (2χ), а затем сушили в вакууме в течение 6 часов. Загрузка типично составляла 0,6-0,9 ммоль/г.

Была приготовлена следующая предварительно нагруженная смола: Етос-Рго-2-хлортритиловая смола.

Синтез полностью защищенного пептидного фрагмента

Синтез проводили в пептидном синтезаторе 8уго (МиШ8упТесй СтЬН), применяя 24-96 реакционных сосудов. В каждый сосуд поместили около 60 мг (масса смолы до загрузки) вышеупомянутой смолы. Далее реакционные сосуды запрограммировали и были выполнены нижеследующие стадии:

Стадия	Реагент	Время
1	СН₂С1г, промывка и набухание (вручную)	1x3 мин
2	ОМЕ, промывка и набухание	1 х 60 мин
3	40 % пиперидин/ОМГ	2x5 мин

- 4 017583

4	ЦМЕ, промывка.	5x1 мин
5	5 экв аминокислоты.Егпос /ЭМЕ + 5 экв. нвти + 10 экв. ШЕА	2 х 60 мин
6	ЦМЕ, промывка	5x1 мин
7	40 % пиперидин/ЦМЕ	2x5 мин
8	ЦМЕ, промывка	5x1 мин
9	СЕБСй, промывка (в конце синтеза)	1*3 мин

Стадии 3-6 многократно повторяли для добавления каждой аминокислоты.

Аналитический способ

Время удержания при ВЭЖХ (ВТ, в минутах) определяли, применяя колонку 1ирйег Рго1ео 90 А, 150 х 2.0 мм (соб. 00Р-4396-В0 - Рйепотепех) со следующими растворителями: А (Н₂О + 0.1% ТРА) и В (СН₃СЫ+ 0.1% ТРА) и градиент: 0 мин: 95%А, 5%В; 0.5 мин: 95%А, 5%В; 20 мин: 40%А, 60%В; 21 мин: 0%А, 100%В; 23 мин: 0%А, 100%В; 23.1 мин: 95%А, 5%В; 31 мин: 95%А, 5%В.

Формирование дисульфидного β-стрендового соединения

После завершения синтеза, смолу оставили набухать на 1 ч в 3 мл обезвоженного ΌΜΡ. Далее в реакцию добавили 10 экв. раствора йода в ΌΜΡ (6 мл) с последующим перемешиванием в течение 1,5 ч. Смолу отфильтровали, и добавили свежий раствор йода (10 экв.) в ΌΜΡ (6 мл), с последующим перемешиванием в течение еще 3 ч. Далее смолу отфильтровали и промыли ΌΜΡ (3х) и СН₂С1₂ (3х).

Расщепление, циклизация основной цепи, снятие защиты и очистка пептида

После формирования дисульфидного β-стрендового соединения, смолу суспендировали в 1 мл (0,14 ммоль) 1% ТРА в СН₂С1₂ (об./об.) в течение 3 мин и отфильтровали, фильтрат был нейтрализован при добавлении 1 мл (1,15 ммоль) 20%ΌΙΕΑ в СН₂С1₂ (об./об.). Процедуру повторили дважды для того, чтобы расщепление прошло полностью. Смолу промыли трижды в 1 мл СН2С12. Слой СН2С12 выпарили до сухости.

После удаления летучих веществ в пробирку добавили 8 мл обезвоженного ΌΜΡ. Далее 2 экв. НАТи в обезвоженном ΌΜΡ (1 мл) и 4 экв. ΌΙΡΕΑ в обезвоженном ΌΜΡ (1 мл) были добавлены к пептиду, затем реакционную смесь оставили перемешиваться на 16 ч. Летучие вещества выпарили до сухости. Неочищенные циклизованные пептиды растворили в 7 мл СН₂С1₂ и экстрагировали при помощи 10% ацетонитрила в воде (4,5 мл) три раза. Слой СН2С12 выпарили до сухости. Для полного снятия защиты с пептида добавили 3 мл смеси для реакции расщепления ТЕА:Т1§:Н₂О (95:2.5:2.5), и смесь хранили в течение 2,5 ч. Летучие вещества выпарили до сухости и неочищенный пептид растворили в 20% АсОН в воде (7 мл) и экстрагировались при помощи изопропилового эфира (4 мл) трижды. Водный слой собрали и выпарили до сухости, и остаток очистили с помощью препаративного обращеннофазного ВЭЖХ. После лиофилизации получили продукты в виде белых порошков и проанализирован при помощи аналитического способа ВЭЖХ-ΕδΙ-Μδ, описанного выше. Аналитические данные, содержащие чистоту после препаративной ВЭЖХ и ΕδΙ-Μδ, приводятся.

Пример 1. Пептид был синтезирован начиная с аминокислоты Ь-Рго, которая была привита к смоле. Исходная смола Етос-Рго-2-хлортритиловая смола была приготовлена, как описано выше. Линейный пептид синтезировали на твердой подложке в соответствии с методикой, описанной выше в следующей последовательности: Смола-Рго-^сРго-Ьу8-С1п-Туг-Су8-Туг-Агд-ОаЬ-^сРго-А1а-8ег-Су8-А1а-Нщ-Туг. Дисульфидное β-стрендовое соединение вводили как описано выше. Продукт отделили от смолы, циклизовали, сняли и очистили, как указано, с помощью препаративной обращенно-фазной ЬС-Μδ. После лиофилизации был получен продукт в виде белого порошка, который проанализировали аналитическим способом ВЭЖХ-ΕδΙ-Μδ, описанным выше ([М+2Н]²⁺: 933.1; ВТ: 10.47; УФ-чистота: 72%).

Пример 2. Пептид был синтезирован начиная с аминокислоты Ь-Рго, которая была привита к смоле. Исходная Етос-Рго-2-хлортритиловая смола была получена, как описано выше. Линейный пептид синтезировали на твердой подложке в соответствии с методикой, описанной выше в следующей последовательности: Смола-Рго-^сРго-Ьу8-С1п-Туг-Су8-Туг-Агд-ОаЬ-^сРго-А1а^ег-Су8-А1а-Нщ-Туг. Дисульфидное βстрендовое соединение ввели, как описано выше. Продукт отделили от смолы, циклизовали, сняли защиту и очистили, как указано, с помощью препаративной обращенно-фазной ЬС-Μδ. После лиофилизации получили продукт в виде белого порошка и проанализировали его с помощью аналитического способа ВЭЖХ-ΕδΙ-Μδ, описанного выше ([М+2Н]²⁺: 978,6; ВТ: 10.95; УФ-чистота: 82%).

2. Биологические способы.

2.1. Получение пептидов.

Лиофилизированные пептиды взвесили на весах ΜΦιόΦιΕ-ιι^ (Μей1е^ МТ5) и растворили в стерильной воде до конечной концентрации 1 мМ, если иного не установлено. Стоковые растворы хранили при +4°С при защите от света.

2.2. Са²⁺ анализ: антагонистическая активность пептидов в отношении СХСВ4.

Увеличение внутриклеточного кальция контролировали, применяя Ρ^χ^ΐ^η 384 (Μо1еси1а^ Эе

- 5 017583 у1сек, 8ипиууа1е, СА) для анализа пептидов на антагонистическую активность в отношении СХСК.4 активности в мышиной пре-В клеточной линии 300-19 стабильно трансфецированной СХСК.4 человека (см. ссылки 1, 2, 3, приведенные ниже. Клетки массово загружали с Са1ешш 3 Аккау кй (Мо1еси1аг Эеуюек) в аналитическом буфере (сбалансированный солевой раствор Хенкса, НВ88, 20мМ НЕРЕ8, рН 7.4, 0.1% В8А) в течение 1 ч при комнатной температуре, и затем 200000 меченых клеток были перенесены на 96луночные аналитические чёрные планшеты (Сок1ат Νο. 3603). 20-кратно концентрированный раствор пептида в аналитическом буфере добавили к клеткам и весь планшет центрифугировали для осаждения клеток на дно лунок. Мобилизацию кальция, индуцированную 10 нМ фактора-1, получаемого из стромальных клеток (8ΌΕ-1), измеряли в Е1ехк1айоп 384 (возбуждение, 485 нМ, эмиссия, 525 нМ) в течение 90 с. Максимальное увеличение флуоресцентного ответа относительно базового уровня применяли для вычисления антагонистической активности. Данные для кривой зависимости эффекта от дозы (концентрация антагониста от процента максимального ответа) были соотнесены с четырьмя параметрами логистического уравнения при помощи 8ойтахРто 4.6 (Мо1еси1аг Эеуюек). исходя из которого были вычислены значения 1С50%.

2.3. ЕЮЗ-Аккау™.

Данный анализ выполняли в соответствии со ссылкой 5, приведенной ниже. Стоковые растворы пептидов (10 мкМ) получали путем растворения пептидов в 10 мкМ Тпк-НС'1 при комнатной температуре. Стоковые растворы хранили при +4°С с защитой от света. Рабочие растворы получали непосредственно перед экспериментом путём серии разбавлений в фосфатном солевом буфере (РВ8) и добавляли в конечном объеме 10 мкл непосредственно в клеточные культуры. После 48-часовой сокультивации культуры клеток промыли фосфатным солевым буфером и затем в течение 5 мин действовали на них раствором глутаральдегида/формальдегида (0,2%/2%) в РВ8. Для фотометрического количественного анализа фиксированные клеточные культуры впоследствии инкубировали с ортонитрофенилгалактопиранозидом (ШРС) в качестве субстрата β-галактозидазы, который был ферментативно превращен в хромофор ортонитрофенол (ΟΝΓ). Данные были получены путем измерения оптической плотности растворов в лунках при длине волны 405 нм, применяя ридер 96 луночных планшетов 1ЕМ8.

2.4. Анализ цитотоксичности.

Цитотоксическое воздействие пептидов на клетки НЕЬА (Асс57) и СО8-7 (СКЕ-1651) определялся при помощи анализа уменьшения МТТ (см. ссылки 6 и 7, приведенные ниже). Кратное описание способа: клетки НЕЬА и СО8-7 засеяли на 96-луночные планшеты в количествах соответственно 7,0х10³ и 4,5х10³ клеток на одну лунку, и оставили на 24 ч при 37°С и 5% содержании СО₂. В этой точке, нулевое время (Τζ) определяли с помощью уменьшения МТТ (см. ниже). Из оставшихся лунок удалили супернатант, и в каждую добавили свежую среду и пептиды в серии последовательных разведений: 12,5 мкМ, 25 мкМ и 50 мкМ. Эксперимент с каждой из концентраций провели трижды. Инкубацию клеток продолжали 48 ч при 37°С и 5% СО₂. Лунки промыли РВ8 один раз и затем в каждую лунку добавили 100 мкл МТТ-реагента (0,5мг/мл в среде КРМ11640 и, соответственно, ЭМЕМ). Далее инкубировали при 37°С в течение 2 ч, затем среда была удалена и в каждую лунку добавили по 100 мкл изопропанола. Поглощение солюбилизированного продукта измеряли при 595 нм (ОЭ₅₉5 пептид). Для каждой концентрации было посчитано среднее значение по трем повторениям. Процент роста вычисляли следующим образом: (ΟΌ₅₉₅ ^^^-ΟΌ5₉5Τζ-ΟΌ₅₉5 Пустая лунка)/(Ο^₅₉₅Τζ-Ο^₅₉₅ Пустая лунка)х100% и был нанесен на график для каждой концентрации пептида.

Значения ЬС₅₀ (летальная концентрация, определенная как концентрация, которая убивает 50% клеток) определяли для каждого пептида, применяя функцию линий тренда программы ЕХСЕЬ (Мтстокой ОГПсе 2000) для концентраций (50, 25, 12.5 и 0 мкМ), соответствующие проценты роста и значение - 50 (=ΤΚЕN^(С_5ο:С_ο.%_5ο:%_ο.-50)). Концентрация С150 (ингибиро-вание роста) была вычислена для каждого пептида, применяя функцию линий тренда для концентраций (50, 25, 12.5 и 0 мкМ), соответствующие проценты и значение 50 (=ΤΚЕN^(С₅₀:С₀.%₅₀:%_^.50)).

2.5. Клеточная культура.

Клетки ССК5 культивировали в среде ЭМЕМ при добавлении 4500 мг/мл глюкозы, 10% эмбриональной сыворотки телят (ЕВ8), 50 ед/мл пенициллина и 50 мкг/мл стрептомицина (Пен/Стрепт). Клетки Ни1/4-3 поддерживали в среде КРМ1, 10% ЕВ8, с добавлением Пен/Стрепт и 10мМ НЕРЕ8. Клетки НЕЬА и ССКЕ-СЕМ культивировали в среде КРМ11640 с добавлением 5% ЕВ8, Пен/Стрепт и 2мМ Ьглутамина. Все клеточные линии выращивали при 37°С и 5% СО2. Клеточные среды, добавки к средам, РВ8-буфер, НЕРЕ8, Пен/Стрепт, Ь-глутамин и сыворотки были приобретены у С1Ьсо (Райкеу, ИК). Остальные реактивы произведены компанией Мегск (Эатт81аб1, Сегтапу).

2.6. Гемолиз.

Пептиды были протестированы на гемолитическую активность против красных клеток крови человека (11РВС). Свежие 11КВС трижды промыли соляным фосфатным буфером (РВ8) посредством центрифугирования (10 мин, 2000д). Пептиды в концентрации 100 мкМ инкубировали вместе с 20% (объем/объем) 11КВС в течение 1 ч при 37°С. Конечная концентрация эритроцитов составила около 0,9х10⁹клеток на 1 мл. Значение 0% относительно 100% лизиса клеток определяли при инкубации ЕКВС в при

- 6 017583 сутствии РВЗ самого по себе и соответственно при добавлении 0,1% раствора Ττίΐοη-Χ100 в воде соответственно. Образцы центрифугировали и супернатант 20-кратно разбавляли РВЗ-буфером, и измеряли оптическую плотность (ΟΌ) образцов при длине волны 540 нм. При 100% лизисе клеток оптическая плотность (ΟΌ₅₄₀Η₂Ο) равнялась приблизительно 1,3-1,8. Процент гемолиза был подсчитан следующим образом: ΟΌ₅₄₀ пеитид/ОП₅₄₀Н₂О)х 100%.

2.7. Хемотаксический анализ (Анализ миграции клеток).

Хемотаксический ответ клеток ССКЕ-СЕМ на градиент получаемого из стромальных клеток фактора-1а (8ΌΡ-1) был определен при помощи одноразовых аналитических планшетов фирмы ЫеигоргоЬе (размер пор 5 мкм) (ОаййегзЬшд, МО) в соответствии с инструкциями производителя и содержащимися здесь ссылками (главным образом ссылка 8, приведенная ниже). Кратко, одну колбу объёмом 175 см³единожды промыли фосфатным солевым буфером Дульбекко (ИРВ8) и трипсинизировали в течение 10 мин, либо до тех пока клетки не поднимутся. Трипсин нейтрализовали добавлением свежей среды, содержащей сыворотку, и клетки осадили центрифугированием, промыли единожды ΌΡΒ8 и ресуспендировали при 1-0.5х10⁷ кл./мл в КРМ1 с 0,5% бычьего сывороточного альбумина (ВЗА). 45 мкл суспензии клеток смешали с 5 мкл 10-кратно концентрированного РЕМ пептида, растворенного в той же аналитической среде. 35 мкл этой смеси нанести на поверхность аналитического фильтра. Далее клетки мигрировали (при 37°С) в нижнюю камеру аналитического планшета, содержащую 1нМ 8ΌΡ-1. Спустя 4 ч, фильтр удалили, к мигрировавшим клеткам добавили МТТ до конечной концентрации 0,5 мг/мл и инкубировали ещё 4 ч. После маркирования клеток МТТ вся среда была удалена, и к клеткам было добавлено 100 мкл изопропанола с 10 мМ НС1. Оптическое поглощение при длине волны 595 нм (АВ8595) было измерено при помощи планшетного ридера Тесап Оешоз с применением программного обеспечения Маде11ап. Число мигрировавших клеток было определено исходя из сравнения значений АВ8595 со стандартной кривой, построенной исходя из известного количества клеток в аналитическом планшете, и было соотнесено с концентрацией 8ΌΡ-1, чтобы получить сигмовидную кривую и определить значения 1С₅₀. Значения 1С₅₀ были определены при помощи функции линий тренда в Мюгозой Ехсе1 путём построения логарифмической кривой по усреднённым точкам экспериментальных данных.

2.8. Стабильность плазмы.

405 мкл раствора плазма/альбумин поместили в полипропиленовую(РР) пробирку, затем смешали с 45 мкл соединения из 100 мкМ раствора В, полученного путём смешивания 135 мкл РВ8 и 15 мкл 1 мМ раствора пептидов в РВ8, рН 7.4. Аликвоты по 150 мкл были помещены в отдельные лунки планшета с фильтром 10 кДа (Мййроге МАРРВ 1010 Вюшах шешЬтапе). Для 0-минутных контролей: 270 мкл РВ8 поместили в полипропиленовую пробирку, добавили 30 мкл стокового раствора В и перемешали на вортексе. 150 мкл контрольного раствора поместили в одну лунку планшета с фильтром и применяли в качестве отфильтрованного контроля.

Ещё 150 мкл контрольного раствора поместили сразу в принимающую лунку (служащей для фильтрата) и применяли в качестве неотфильтрованного контроля. Целую плашку, включая крышку от испарения, инкубировали 60 мин при 37°С. Образцы плазмы (плазма крысы: Наг1ап Зега 1аЬ ИК, плазма человека: ВйПзрепбе/егИгшп ΖιιπΟι) центрифугировали по меньшей мере в течение 2 ч при 4300 об/мин (3500 д) и 15 минут надлежащим образом для получения 100 мкл фильтрата. Для образцов сывороточного альбумина (свежеприготовленный альбумин человека: 81дта А-4327, альбумин крысы: 81дта А-6272, оба альбумина при концентрации 40 мг/мл в РВЗ) достаточно центрифугировать 1 ч. Фильтраты в принимающем полипропиленовом планшете проанализировали при помощи ЬС/МЗ следующим образом: Колонка: 1ирйет С1 8 (Рйепотепех), подвижная фаза: (А) 0,1% муравьиной кислоты в воде и (В) ацетонитрил, градиент: 5%-100% (Б) за 2 мин, ионизация электроспреем, детекция МКМ (тройной квадруполь). Были определены области пиков и значения трёх опытов были усреднены. Связывание выражали в проценте от (отфильтрованного и неотфильтрованного в нулевой точке) контроля 1 и 2 по формуле: 100(100 * Т₆₀/Т₀). Затем вычисляли среднее по этим значениям (см. ссылку 9, приведенную ниже).

3.0. Исследования ш у1уо.

3.1. Максимальная толерантная доза у мышей.

а) В предварительном изучении соединение, описанное в примере 1, диспергированное в воде для инъекций или в 0,9% физиологическом растворе, вводили посредством внутривенной инъекции при следующих уровнях доз: 35, 50, 70, 85, 100, 150, 250 и 500 мг/кг группам, состоящим из одной самки и одного самца мыши (Сг1:СЭ1(1СК.)). Помимо этого, две группы, содержащим по 2 самца и 2 самки мыши, получили уровни доз 90 и 100 мг/кг соответственно, и доза 50 мг/кг была повторена в группе, содержащей 1 самца и 1 самку мыши.

2) Исследования максимальной толерантной дозы для соединения примера 2 осуществлялись на мышах СЭ1 (3 мыши в группе) применяя внутривенное, внутрибрюшинное и подкожное введение.

3.2. Повторные изучения токсичности на мышах.

Исследование токсического эффекта и токсикокинетики соединения, описанного в примере 1, проводили путём ежедневного введения внутривенной инъекции мышам в течение, по меньшей мере, 14 дней. Группы из 12 самцов и 12 самок Сг1:СЭ1(1СК.) получали либо контрольную инъекцию (50 мМ на

- 7 017583 трий дигидроортофосфатный буфер, содержащий 0,9% мас./об. хлорида натрия), либо следующие дозы препарата РОБ6326: 8, 24 или 40 мг/кг/день, при объеме дозы 5 мл/кг. Исследование каждой дозы проводились на 24 мышах каждого пола на группу. Оценку токсического эффекта проводили исходя из смертности, клинических признаков, массы тела, аппетита, офтальмологического осмотра, клинических и анатомических патологий и токсикокинетических показателей.

3.3. Мобилизация стволовых клеток.

а) Мышиная модель.

Цель исследования заключалась в оценке способности соединения, описанного в примерах 1 и 2, мобилизовать гемопоэтические клетки-предшественники из костного мозга мыши в периферическую кровь, применяя ίη νίΐτο исследования гемопоэтической колонии. Для людей точная информация о мобилизации клеток-предшественников обеспечивалась посредством анализа колониеобразующие единицы гранулоцитов-моноцитов (СРИ-СМ) или путём определения избытка СИ34)(+)-клеток при помощи РЛС8-анализа (см. ссылку 10 ниже). На мышах СЭ34 не является характерным маркером для стволовых клеток, поэтому на этой модели, как правило, используется СРИ-СМ (см. ссылку 11, приведенную ниже).

Для оценки способности соединений, описанных в примерах 1 и 2, мобилизовать мышиные стволовые клетки (СРИ-СМ), самки С3Н/Не) Цасккоп ЬаЬотаЮту) получали подкожную инъекцию (доза 5 мг/кг) соединений, описанных в примерах 1 и 2, и в качестве контроля ΆΜΌ3100 (Вгохтеуег с1 а1., 1 Ехр Меб 201, 1307-1318), (в настоящее время проходящий III стадию клинических испытаний) для мобилизации стволовых клеток. В каждой точке времени у 5 животных каждой группы забирали образцы крови и определяли в них количество ядерных клеток с помощью стандартных анализов.

Б) Обезьянья модель.

Была проведена оценка мобилизации гемопоэтических стволовых клеток периферической крови яванских макак (Масаса 1а8С1Си1ап8). Вещество, описанное в примере 1, вводили 4 обезьянам (2 самца и 2 самки) путём медленной болюсной внутривенной инъекции в течение 2 мин, и определяли количество СИ34(+)-клеток при помощи РЛС8-анализа. Помимо этого осуществляли забор образцов крови для исследования токсикокинетики.

4.0. Результаты.

Результаты экспериментов, описанных в п.2.2-2.8, отражены в нижеследующих табл. 1 и 2.

Таблица 1

В-во	1С5о(нМ), Анализ Са²⁺	РЮ5 1С₆о (нЛЛ)	Цитотоксичность ЬС5о/Й15О, клетки Не1а	Гемолизис в ЮОмкМ	Юзо (мкМ) Анализ миграции клеток
1	5,5	н.у.	>50	0,6	н.у.
2	4,1	24,7	94	0,3	0,5

н. у. - не установлено.

Таблица 2

Пример	Устойчивость плазмы человека 1 % (мин)	Устойчивость плазмы крысы 1 % (мин)
1	>240	>240
2	>300	>300

Результаты экспериментов, описанных в п.3.1-3.3., приведены ниже.

4.1. Изучение максимальной толерантной дозы (МТД) на мышах.

а) Изучение МТД, соединение примера 1.

Было обнаружено, что точный минимальный уровень летальной внутривенной дозы у мышей превышает 90 мг/кг.

б) Изучение МТД, соединение примера 2.

Самая высокая доза, протестированная для всех трех путей введения, составила болюс 120 мг/кг. При такой дозе все животные выживали и наблюдались только сглаженные, неярко выраженные симптомы. Были выявлены следующие симптомы: небольшая поведенческая депрессия, небольшой цианоз, увеличение глубины дыхания и мышечная релаксация.

4.2. 14-дневное изучение токсичности и токсикокинетики внутривенной инъекции.

Уровень ΝΟΑΕΕ для соединения, описанного в примере 1, после внутривенного введения мышам составил 40 мг/кг/день.

Не было обнаружено никакого значительного влияния лечения на вес тела, изменение веса тела или аппетита, а также значительного влияния лечения не было обнаружено при офтальмологических обследования, которые проводились в течение заключительной недели фазы дозирования.

Введение соединения, описанного в примере 1, сопровождалось слегка более высоким количеством

- 8 017583 белых клеток крови и слегка более высоким абсолютным количеством лимфоцитов у самок, получающих 40 мг/кг/день. У самцов, получавших 40 мг/кг/день, подобные эффекты обнаружены не были, и эти побочные эффекты не рассматривались как неблагоприятные. Введение соединения, описанного в примере 1, не оказало влияния на результаты клинической химии. Увеличение массы органов (почек у самцов, получавших 8 мг/кг/день, и семенных пузырьков у самцов, получавших 24 или 40 мг/кг/день) рассматривали как случайное и не имеющее отношения к лечению. Не было зарегистрировано никаких макроскопических повреждений, связанных с исследуемым соединением. У трёх животных (1 самка из контрольной группы, 1 самец, получавший 8 мг/кг/день, и 1 самка, получавшая 24 мг/кг/день) фокальная область вокруг места инъекции (хвост) покраснела и покрылась коркой, что было вызвано уколом от иглы для подкожных инъекций. Не было зарегистрировано никаких микроскопических повреждений, связанных с исследуемым соединением.

4.3. Мобилизация стволовых клеток.

а) Мобилизация стволовых клеток у мышей, соединение примера 1.

Введение 5 мг/кг соединения примера 1, увеличило число клеток крови СРИ-СМ, показав максимальный эффект при 120 мин и возврат к базовому уровню по истечение 6 ч после введения (фиг. 1). В том же эксперименте, вещество ЛМЭ3100 (в настоящее время проходит III стадию клинических испытаний по мобилизации стволовых клеток) применяли для сравнения в качестве компаратора. В вышеописанном эксперименте была определена зависимость между дозой соединения примера 1 и эффектом на высвобождение СРИ-СМ (фиг. 1). Прослеживается чёткая зависимость эффекта соединения, описанного в примере 1, на высвобождение СРИ-СМ у мышей с пиковым увеличением уровня при 5 мг/кг.

Фиг. 1. Увеличение колониеобразующих единиц на мл крови (СРИ-СМ) с течением времени как для соединения, описанного в примере 1 (5 мг), так и для ссылочного соединения АМЭ3100.

б) Мобилизация стволовых клеток, соединение примера 2.

Введение 5мг/кг соединения, описанного в примере 2, увеличивало число клеток крови СРИ-СМ до 6 ч после введения с максимальным эффектом при 240 минутах, при этом введение ЛМЭ3100 связано с увеличением частоты и количества клеток-предшественников при 30 и 60 минутах по сравнению с контрольными мышами (фиг. 2).

Фиг. 2. Увеличение колониеобразующих единиц на 1 мл крови (СРИ-СМ) с течением времени как для соединения, описанного в примере 2, так и для ссылочного соединения ЛМЭ3100.

с) Мобилизация стволовых клеток у обезьян, соединение примера 1:

Введение соединения, описанного в примере 1, индуцировало мобилизацию гемопоэтических клеток СИ34(+) яванских макак. Как было обнаружено у мышей начало мобилизации было быстрым с пиковым уровнем через два часа. Мобилизация также имела кратковременный характер, и количество стволовых клеток в периферической крови вернулось к базовому уровню с уменьшением в плазме уровней соединения, описанного в примере 1, (фиг. 3).

Фиг. 3. Среднее число СИ34(+) клеток на 1 мкл крови с течением времени для соединения, описанного в примере 1.

Список цитируемой литературы

1. ОЬетйп Е, Атага А, Вае11с1спс Р, Вскба С, У|гс1|/1сг Ι-Ь, Лгспхапа-Зсббсбох Р, 8с11\уаг1х О, Нсатб Ι-М, С1агк-ЬсЩк I, Ьсд1сг ИР, Ьосксйсг М, Вадд1о11П1 М, Моксг В. Иа1игс. 1996, 382:833-835.

2. Ьосксйсг М, Сскст Т, О'ВсШу Т, 2\га1сп В, Ваддюйш М, Моксг В. 1.Вю1.Сйст. 1994.269:232-231.

3. И'Ариио М, Войпк А, Ьосксйсг М, Нох1с 1А, С1агк-ЬсЩк I, Мс1с1югк Р, Вадд1о11П1 М, Моксг В. Еиг. 1.1ттипо1. 1997. 27: 1788-1793.

4. уоп Ткскагпсг V, РтобЪот В, Вадд1о11п1 М, Вси!сг Н. Иа1игс. 1986. 324:369-72.

5. Нату Р, Рс16сг ЕВ, Нс1/тапп С, Ба/бОк I, АЬои1-с1а Р, Vа^ап^ С, Кагп I, КИткай Т. РтосАаб.АсабЯск 1997. 94:3548-3553.

6. Мокктап Т. 1.1ттипо1.Мс1й. 1983, 65:55-63.

7. Встбдс МV, Тап А8. Агсй.Вюсйст.Вюрйук. 1993, 303:474-482.

8. Ртсусй С\У. \Уопд VА, Сообтап Βν, Сооб\\й1 В, Матбп ТВ, 1.1ттипо1.Мс1й. 1998. 213: 41-52.

9. 8шдй В., Сйапд, 8.Υ., Та1ог, Б.С., Вар1б Соттип. Макк 8рсс!гот., 1996, 10: 1019-1026.

10. То БВ, Нау1оск ΌΝ, 81ттопк Р1, 1ийпсг СА. В1ооб 1997, 89(7):2233-2258.

11. Вгохтсусг НЕ, ОгксНсН СМ, С1арр Ό^, Напдос С, Соорсг 8, Р1сй РА с! а1. I Ехр Мсб 2005. 201(8):1307-1318.

Claims

1. Цикло(-Туг-Н1к-Х-Сук-8сг-А1а-^сРго-ОаЬ-Агд-Туг-Сук-Туг-С1п-Бук-^сРго-Рго), который содержит дисульфидную связь между Сук4 и Сук11, и его фармацевтически приемлемые соли, где X представляет собой А1а или Туг.

2. Соединение по п.1, отличающееся тем, что имеет антагонистическую активность в отношении СХСВ4 и способно либо предотвратить ВИЧ-инфекции у здоровых людей, либо замедлить или прекратить развитие ВИЧ-инфекций у инфицированных пациентов; предотвратить или лечить рак, опосредо

- 9 017583 ванный активностью рецептора СХСК4; предотвратить или лечить иммунологическое заболевание, опосредованное активностью рецептора СХСК4; лечить иммуносупрессию или воспаление; или мобилизовать стволовые клетки периферической крови, мезенхимальные стволовые клетки (МСК) или другие стволовые клетки, удержание которых зависит от активности рецептора СХСК4.

3. Применение соединения по п.1 для предотвращения ВИЧ-инфекций у здоровых людей или для замедления или прекращения развития ВИЧ-инфекций у инфицированных пациентов; предотвращения или лечения рака, опосредованного активностью рецептора СХСК4; предотвращения или лечения иммунологического заболевания, опосредованного активностью рецептора СХСК4; лечения иммуносупрессии или воспаления; или мобилизации стволовых клеток периферической крови, мезенхимальных стволовых клеток (МСК) и/или других стволовых клеток, удержание которых зависит от активности рецептора СХСК4.

4. Фармацевтическая композиция, содержащая соединение по п.1 и фармацевтически инертный носитель.

5. Композиция по п.4 в форме, подходящей для перорального, местного, трансдермального, инъекционного, буккального, назального, лёгочного или ингаляционного введения.

6. Композиция по п.4 или 5 в форме таблеток, драже, капсул, растворов, жидкостей, гелей, пластырей, кремов, мазей, сиропов, гидросмесей, суспензий, спреев, распылителей или суппозиториев.

7. Применение соединения по п.1 для производства лекарственного средства, обладающего антагонистическим действием в отношении СХСК4.

8. Применение по п.7, где указанное лекарственное средство предназначено для использования в предотвращении ВИЧ-инфекций у здоровых людей или в замедлении или прекращении развития ВИЧинфекций у инфицированных пациентов; предотвращении или лечении рака, опосредованного активностью рецептора СХСК4; предотвращении или лечении иммунологического заболевания, опосредованного активностью рецептора СХСК4; лечении иммуносупрессии или воспаления; или мобилизации стволовых клеток периферической крови, мезенхимальных стволовых клеток или других стволовых клеток, удержание которых зависит от активности рецептора СХСК4.

9. Способ производства соединений по п.1, который включает стадии:

(a) связывание активированной специальным образом твёрдой подложки с соответствующим образом Ν-защищённой производной Рго;

(c) связывание полученного продукта с соответствующим образом Ν-защищённой производной ''Рго;

(б) удаление Ν-защитной группы из продукта, полученного на стадии (с);

(е) связывание полученного таким образом продукта с соответствующим образом Ν-защищённой производной аминокислоты, которая в полученном конечном продукте находится в положении 14, то есть Ьук, причем аминогруппа, находящаяся в ее боковой цепи, также защищена соответствующим образом;

(д) осуществление стадий, по существу, соответствующих стадиям (е) и (Г), но с применением соответствующим образом Ν-защищённых производных аминокислот, которые в желаемом конечном продукте находятся в положениях 13-1, то есть С1и, Туг, Сук, Туг, Агд, ИаЬ, ^сРго, А1а, 8ег, Сук, А1а или Туг, Ηίκ и Туг, причем любая функциональная группа, которая может присутствовать в указанных Νзащищённых производных аминокислот, также защищена соответствующим образом;

(k) удаление всех защитных групп, связанных с функциональными группами всех членов цепи из аминокислотных остатков; и (l) при необходимости, превращение полученного таким образом продукта в фармацевтически приемлемые соли или превращение солей, полученных таким образом, в соответствующее свободное соединение или в другую фармацевтически приемлемую соль.