EA009170B1 - Применение ферментированных зародышей пшеницы в ветеринарной практике - Google Patents

Abstract

Изобретение относится к новым применениям экстракта ферментированных зародышей пшеницы, в частности к применению этого экстракта для изготовления препарата для профилактики и/или лечения микоплазматических инфекций животных, к применению этого экстракта для изготовления препарата для лечения кокцидиоза птиц, а также к применению этого экстракта для изготовления препарата для увеличения титра антител у вакцинированной домашней птицы, специфичных к таким инфекциям домашней птицы, как микоплазматические инфекции или кокцидиоз.

Description

Изобретение относится к новым видам применения экстракта ферментированных зародышей пшеницы, в частности в ветеринарных целях.

Экстракт ферментированных зародышей пшеницы (далее называемый УЕТ-НВМ) и его получение описаны в \УО 99/08694, где раскрыто его иммуностимулирующее и ингибирующее образование метастазов действие. (Указанный выше документ включен в данное описание путем ссылки.) Этот экстракт получают ферментированием зародышей пшеницы Зассйаготусез сегеуШае. затем сушкой профильтрованной ферментированной жидкости. Полученный материал характеризуется содержанием 2,6-диметоксипарабензохинона, составляющим около 0,4 мг/г сухого материала.

В ходе исследований авторы изобретения неожиданно обнаружили. что УЕТ-НВМ может с высокой эффективностью применяться в сельскохозяйственном животноводстве для кормления животных. УЕТ-НВМ обеспечивает более быструю прибавку веса и увеличивает устойчивость животных к заболеваниям. прежде всего к инфекционным заболеваниям. Он. в частности. служит для увеличения производства мяса и для улучшения качества мяса сельскохозяйственных животных. разводимых в промышленных масштабах. прежде всего домашней птицы и свиней. и в то же время обеспечивает лучшее использование корма (лучшее соотношение усвоения корма).

Дополнительно авторы изобретения исследовали воздействие УЕТ-НВМ на инфекции. возникающие обычно на птицефермах. и неожиданно было обнаружено. что УЕТ-НВМ способен защитить животных от микоплазматических инфекций. вызываемых. в частности. Мусор1азта даШзерйсит и Мусор1азта 5упо\зае. а также от кокцидиоза. вызванного Е1тепа 1ене11а. и способен повысить устойчивость к другим инфекционным заболеваниям домашней птицы (например. болезни Гумборо).

Заражение домашней птицы М. даНйерйсит и М. зупоу1ае все еще приводит к большим экономическим потерям в птицеводстве. Из-за этой инфекции снижаются привесы и производство яиц. а смертность из-за потери невылупившихся цыплят. отбраковки при убое и т.д. увеличиваются. Повреждение эпителия дыхательных путей способствует вторичной. бактериальной инфекции. тем самым дополнительно увеличивая потери.

Для уменьшения экономических потерь предлагается использование различных антибиотиков (например. тилозина. тиамулина. норфлоксацина. энрофлоксацина и т.д.). Однако в последние годы различные государства решили сократить использование антибиотиков (например. использование некоторых антибиотиков. включая тилозин. запрещено в качестве средства. увеличивающего продуктивность). и запретили использование антибиотиков. применяемых для лечения людей. По данной причине авторы изобретения исследовали действие УЕТ-НВМ. показавшего очень хорошие результаты в кормовых исследованиях против широко распространенных микоплазматических инфекций.

Авторы изобретения неожиданно обнаружили. что можно предотвратить микоплазматическую инфекцию путем введения УЕТ-НВМ аналогично введению тиамутина. лучшего известного антибиотика против микоплазмы. Ввиду значительной частоты возникновения микоплазматических инфекций во всем мире. этот факт имеет большое экономическое значение. Экономические потери. вызываемые этими инфекциями. можно снизить посредством использования УЕТ-НВМ. Это может быть особенно предпочтительно в настоящее время. когда стремятся отменить использование антибиотиков в ветеринарной практике и для увеличения продуктивности.

Кроме того. авторы изобретения провели исследования на свиньях в связи с Мусор1азша йуорпеитошае. которая присутствует в обычной популяции свиней и приводит к большим экономическим потерям; авторы изобретения неожиданно обнаружили. что УЕТ-НВМ был способен защитить свиней от пневмонии. вызванной М. йуорпеитошае.

Кроме того. авторы изобретения исследовали действие УЕТ-НВМ против другого паразитарного заболевания - кокцидиоза. вызванного Е1тепа !епе11а. который представляет собой очень широко распространенное паразитарное заболевание домашней птицы. Количество случаев кокцидиоза увеличилось всюду в мире за последние десятилетия. поскольку массовое разведение максимально повысило вероятность кокцидиальной инфекции. Очень вероятно. 7 штаммов Енпепа играют роль в развитии кокцидиоза; среди них есть патогенные и менее патогенные штаммы. Среди штаммов. вызывающих геморрагический энтерит. существенное значение имеет Е1тепа !епе11а. вызывающая кокцидиоз аппендикса. Поэтому исследования авторов изобретения были проведены на цыплятах. инфицированных чистым штаммом Е1тепа !епе11а.

Авторы изобретения неожиданно обнаружили. что выделение ооцист искусственно инфицированными цыплятами. получавшими добавку УЕТ-НВМ. значительно уменьшалось по сравнению с контролем; это значит. что разрушались промежуточные формы и паразиты Е. !епе11а. вызывающие большое повреждение в аппендиксе. были не способны развиваться. Следовательно. УЕТ-НВМ может быть способен защитить цыплят от серьезного заболевания. вызванного Е. !епе11а.

В дополнение к указанному выше. авторы изобретения исследовали действие УЕТ-НВМ на изменение уровня антител у цыплят. вакцинированных против болезни Гумборо (вакциной СЕУАС). Авторы изобретения обнаружили. что УЕТ-НВМ. введенный в корм. значительно увеличивал выработку антител у цыплят и вместе с увеличением содержания антител в крови он усиливал действие вакцины СЕУАС в период откорма цыплят. обеспечивая животным более высокую степень защиты.

Кроме того. авторы изобретения наблюдали. что введение УЕТ-НВМ значимо снижало экономические потери. вызываемые стрессовыми воздействиями (например. тепловой и транспортировочный стресс).

Добавку УЕТ-НВМ по изобретению применяют. смешивая соответственно с кормами начальной. средней и конечной стадии откорма. частично или в ходе всего выкармливания. УЕТ-НВМ можно также

- 1 009170 применять, вводя в питьевую воду животных.

Настоящее изобретение также относится к применению экстракта ферментированных зародышей пшеницы для предотвращения и/или уменьшения микоплазматических инфекций и кокцидиоза домашней птицы и для увеличения титра антител у вакцинированной домашней птицы. Экстракт ферментированных зародышей пшеницы можно преимущественно использовать для профилактики инфекций Мусор1а8ша даШкерйсит или Мусор1акта 8уиоу1ае, для профилактики и/или уменьшения кокцидиоза домашней птицы, а также для профилактики пневмонии свиней, вызванной М. йуориеитошае. Изобретение относится к применению экстракта ферментированных зародышей пшеницы при изготовлении препаратов для указанных выше целей.

Ветеринарные препараты по изобретению, содержащие экстракт ферментированных зародышей пшеницы, можно получить обычным образом, осуществляя смешивание активного ингредиента с одним или несколькими ветеринарно приемлемыми вспомогательными материалами для формирования препаратов, повышающих устойчивость животных к заболеваниям, препаратов, предотвращающих и/или лечащих микоплазматические инфекции и инфекционные воспаления, препаратов, предотвращающих и/или лечащих кокцидиоз домашних птиц, и препаратов, увеличивающих величину титра антител у вакцинированной домашней птицы.

Препараты с использованием вспомогательных материалов, обычно применяемые в ветеринарной практике, могут быть в форме таблеток, пилюль, капсул, гелей или паст. Эти вспомогательные материалы включают желатин, натуральные сахара из ряда таких сахаров, как лактоза, мальтоза и декстроза, лецитин, пектин, циклодекстрин, декстран, поливинилпирролидон, ацетат поливинила, смола акации, ксантановая смола, трагакант, агар-агар, альгиновая кислота, карбоксиметилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза натрия, гидроксипропилцеллюлоза, гидроксипропилметилцеллюлоза или аналогичные производные целлюлозы, эмульгаторы, масла, жиры, в частности сложные эфиры глицерина и сложные эфиры полиглицерина, полученные из насыщенных жирных кислот.

Количество компонентов в препарате может варьировать, и оно зависит от различных факторов, таких как индивидуальные особенности подлежащих лечению животных. Вводимые дозы могут зависеть, наряду с другими факторами, от размера подлежащего лечению животного и типа заболевания, которое предстоит предотвратить или лечить. Суточную дозу можно вводить в одной дозе или разделив на большее число частичных доз в сутки.

Изобретение далее иллюстрируется следующими примерами, которые, однако, не предназначены для ограничения изобретения.

Примеры

УЕТ-НВМ, использованный в следующих примерах, получали в соответствии со следующей технологией, которая, по существу, соответствует примеру 2 из УО 99/08694.

300 кг зародышей пшеницы, размолотых в муку (в соответствии с венгерским стандартом), и 100 кг дрожжей (Бассаготусек сегеу181ае) помещали в ферментер емкостью 5 м³ и добавляли питьевую воду, пока общий объем не достигал 4000 л. Период ферментирования составлял 18 ч, во время которого использовали постоянную аэрацию (0,5 л воздуха/л подвергаемой ферментированию жидкости/мин) и медленное перемешивание (30 об./мин). Для ингибирования пенообразования в смесь добавляли 1 л/м³ подсолнечного масла. После прекращения аэрации и перемешивания ферментируемой массы ферментированную жидкость отделяли сначала в шнековом декантаторе, затем в сепараторе и, наконец, в стерилизующем сепараторе.

Получение фракции 1.

Ферментированную жидкость быстро фильтровали и ее стерильность проверяли под микроскопом. Отфильтрованная, ферментированная жидкость практически не содержала клеток, что означало, что, максимум, 1 дрожжевая клетка была обнаружена на 10 полей (микроскопа). Полученную ферментированную жидкость, которая содержала около 1,5 вес.% сухого материала, выпаривали в вакуумном конденсаторе при температуре 40-50°С и после прекращения вакуумирования содержимое кипятили при атмосферном давлении в течение примерно 15 мин. После этого определяли содержание сухого материала в растворе и добавляли столько мальтодекстрина (сначала растворенного в горячей, а затем холодной воде), чтобы содержание сухого вещества в растворе стало около 30 вес.%. После этого раствор подвергали сушке распылением во вращающейся распылительной сушилке с перемешивающей форсункой, причем температура выходящего воздуха составляла около 90°С. Полученный конечный продукт в виде порошка содержал 60 вес.% ферментированного растительного материала по изобретению и 40 вес.% мальтодекстрина. Содержание диметоксипарабензохинона, которое определяли ВЭЖХ, составило 0,15 мг/г ± 20% сухого материала.

Получение фракции 2.

Биомассу с 25-27 вес.% сухого материала, отделенного на шнековом декантаторе, сушили при соотношении 1:1 на тонкоизмельченном носителе из кукурузных хлопьев в оборудовании для сушкифлюидизации и размер его частиц доводили до диапазона от 0,2 до 0,8 мм гранулированием.

Получение конечного продукта.

Фракцию 1 и фракцию 2 объединяли в гомогенизаторе устройства Ббйще и тщательно гомогенизировали. Содержание 2,6-диметоксипарабензохинона в препарате, полученном таким образом, составило 0,11 мг/г ± 20% сухого материала.

Пример 1. Исследование действия против Мусор1акта даШкерйсит.

Исследования проводили на цыплятах АгЬог Асгекк мясного типа, не зараженных М. купоу1ае. От

- 2 009170 сутствие у животных Мусор1акта купоу1ае проверяли систематическим серологическим скринингом в тесте агглютинации с помощью антигенов М. даШкерйсит и М. купоу1ае (1иуей 1п1етпа!юпа1 В.У.т.; Вотеег, ТНе №1йет1аибк). Кроме того, животных тестировали в иммуноферментном тесте (ЕЫ8А) на основании моноклональных антител и с использованием тестового набора МУСА (О|адпокх1|кит Кй, Вибарек!, Нипдагу) и набора МУ8А (8уаиоуа, Иррка1а, 8\тебеп) |С/|Гга. Су. е! а1.: Ау1ап Όίκ. 37, 680-688 (1993)].

Серологические исследования дали отрицательные результаты. Кроме того, у того же выводка, из которого происходили экспериментальные животные, пробовали выделить микоплазмы из носовой полости, трахеи и воздушного кармана 20 однодневных цыплят с использованием среды В [Ето, Н., апб 8йркоуйк, Ь.: Ас!а Уе!. 8сапб. 14, 436-449 (1973)] и сред Ртеу [Ргеу, М.С. е! а1.: Ат. 1. Уе1. Век. 29, 21642171 (1068)]. Данное исследование также дало отрицательный результат.

120 животных, включенных в эксперимент, были разделены на 4 равные группы с одинаковым количеством (30-30 животных) таким образом, чтобы средний вес 4 групп не отклонялся друг от друга при использовании ! критерия Стьюдента.

Для заражения экспериментальных животных использовали М. даШкерйсит № 1226, предварительно ослабленную в среде В в течение 24 ч. Содержание микроорганизмов составляло 9,5х10⁸ рГи/мл (рГи = колониеобразующих единиц).

Экспериментальные группы лечили и инфицировали следующим образом.

Группу 1 помещали в 200-литровый ящик, который можно было герметично закрыть; в ящике распыляли 10 мл стерильной среды В, а затем животных держали в указанном ящике в течение 20 мин. Затем данную группу помещали в отдельное помещение, и животные не получали никакой обработки; эту группу рассматривали как отрицательный контроль.

Группу 2 помещали в идентичный ящик, в который распыляли 10 мл бульонной культуры М. даШкерйсит, затем животных держали в данном ящике в течение 20 мин. Затем данную группу помещали во второе отдельное помещение, и животные не получали никакой обработки; данную группу рассматривали в качестве контроля для мониторинга инфекции.

Группу 3 инфицировали таким же образом, как группу 2, затем после помещения в третье помещение животным задавали корм для разведения цыплят, содержащим УЕТ-НВМ в концентрации 3 г/кг в ходе эксперимента.

Группу 4 инфицировали таким же образом, как группу 2, затем после помещения в четвертое помещение животным задавали корм, содержащий 200 мг/кг тиамутина (Вюсйеине СтЬН, КиЬб1, АикДга) в ходе эксперимента.

Для определения эффективности лечения исследовали следующие показатели: клинические симптомы, изменение веса, удельные затраты корма; в дополнение к ним выполняли патоморфологические, гистологические и серологические исследования, а также повторное выделение микоплазмы. В ходе их оценки получили следующие результаты.

Результаты.

1. Клиническое исследование.

Клинические симптомы и возможные случаи гибели исследовали каждый день. У обработанных животных не было никаких клинических симптомов (группы 3 и 4), тогда как у инфицированной, не получившей обработки группы с 6-го дня появились респираторные симптомы, более того, по одному случаю гибели произошло на 7-й и 9-й день.

2. Привесы.

Привесы были статистически значимо ниже у инфицированной, не получавшей лечение группы, чем у контрольной, не получавшей обработку группы, а также в двух обработанных УЕТ-НВМ группах. В то же самое время в двух обработанных группах прибавка была той же степени, что и в группе отрицательного контроля.

3. Удельные затраты корма.

Удельные затраты корма повысились у инфицированной, не получившей обработку группы, составив 0,45 кг/кг, хотя они остались на том же уровне в обеих обработанных группах, как и в группе отрицательного контроля.

4. Патоморфологическое исследование.

В конце эксперимента у всех птиц провели патоморфологическое исследование воздушного кармана и брюшины для выявления воспаления, характерного для инфекции М. даШкерйсит.

В группе 1 у всех животных были отрицательные результаты, тогда как в группе 2 у всех животных проявлялось воспаление воздушного кармана и брюшины различной тяжести. В получавших УЕТ-НВМ группе 3 и группе 4 развивались едва заметные патологические изменения, и их тяжесть была значительно меньше, чем у животных группы 2. Результаты, полученные у групп, обработанных соответственно УЕТ-НВМ и тиамутином, не отличались друг от друга.

5. Гистологические исследования.

В группе 2 вследствие инфекции количество случаев лимфогистиоцитарного бронхита и долевой интерстициальной пневмонии значительно увеличилось по сравнению с неинфицированной группой 1. В то же время показатели в группе 3 и группе 4, обработанных соответственно УЕТ-НВМ и тиамутином, оставались на том же уровне, что и в группе 1, за исключением долевой интерстициальной пневмонии, количество случаев которой было значительно выше в группе 3, чем в контрольной группе. Группа 3 и

- 3 009170 группа 4 не отличались друг от друга статистически в отношении исследованных изменений.

6. Серологическое исследование.

Плазму крови всех цыплят исследовали на предметном стекле в тесте агглютинации на наличие М. даШкерйсит. Степень реакции определяли балльной оценкой и количество отреагировавших животных и сумму балльных оценок сравнивали по системе ЧИ. Группа 1 оставалась отрицательной до конца эксперимента. В получавших лечение группе 3 и группе 4 у значимо меньшего количества животных проявилась серологическая реакция (соответственно, 6 и 8 против 25), и балльные оценки были значительно ниже (соответственно, 6 и 11), чем в необработанной группе 2 (75 баллов).

7. Повторное выделение Мусор1а§та.

Повторное выделение инфекционного штамма Мусор1а§та выполняли следующим образом. После инфекции через 1 ч забивали по 5 животных. Кусочки трахеи длиной по 1 см помещали в 2 мл жидкой среды В и через 3 мин встряхивания выполняли подсчет микроорганизмов в среде. В конце эксперимента делали попытку повторного выделения штамма, использованного для заражения птиц, из дыхательных органов (трахея, легкие, воздушный карман) и других органов (мозг, печень, селезенка, почки, сердце) всех цыплят таким образом, что образцы каждого из указанных органов переносили на твердую среду В с помощью тампона. Скошенные агаровые среды культивировали в течение 10 дней, а затем проводили их оценку. Часть изолятов идентифицировали эпифлюоресцентным способом с использованием специфической иммунной сыворотки.

Сразу после заражения Мусор1а§та не была выделена из трахеи животных группы 1. В то же время можно было выделить 1х10²-2,7х10³ рГи/мл М. даШкерйсит из трахеи инфицированных животных группы 2.

В конце эксперимента было невозможно рекультивировать использованные для инфекции штаммы у группы 1, тогда как у группы 2 их можно было рекультивировать в 64 случаях, прежде всего из трахеи, легких и воздушных карманов. С другой стороны, повторное выделение было значительно менее успешным у групп 3 и 4 (соответственно, в 10 и 3 случаях) и только из некоторых легких и трахей, но не из других внутренних органов. Между группами, обработанными соответственно УЕТ-НВМ и тиамутином, не наблюдалось существенного различия.

Пример 2. Исследование эффекта против Е. 1епе11а.

однодневных цыплят, разделенных на 4 группы (по 12 животных), были включены в эксперимент. Цыплят держали по группам в клетках; в ходе эксперимента температура в помещении была 28°С. В ходе откорма животные потребляли обычный начальный корм и питьевую воду без ограничений до возраста 14 дней (группа 1 и групп 2). К корму группы 3 и группы 4 добавляли 0,3 г УЕТ-НВМ на 1 кг корма.

Животных группы 2 и группы 4 перорально инфицировали суспензией, содержащей 2х10³ спорулированных ооцист Еппепа 1епе11а.

Начиная с 7-го дня от заражения, исследовали фекалии на наличие ооцист. Ежедневное количество фекалий животных, относящихся к одной и той же группе, взвешивали и гомогенизировали отдельно. Такое же количество отвешивали от фекалий каждого животного и гомогенизировали 2,5% раствором К₂Сг₂О₇. Ежедневное выделение ооцист в данной группе определяли в камере МсМа^ет с трехразовым повторением. Результаты представлены в нижеследующей таблице.

Определение ежедневного выделения ооцист в камере МсМайет

Контрольная группа	Обработанная группа
Группа 1. Неинфицированная	Группа 2. Инфицированная, средняя величина + стандартное отклонение	Группа 3. Неинфицированная	Группа 4. Инфицированная, средняя величина ± стандартное отклонение
1. день 0	21500±0,02	1, день 0	23800±0,03
2. день 0	120500±0,31	2. день 0	27250±0,07 р<0,0001
3. день 0	84500+0,11	3. день 0	20300±0,08 р<0,0001
4. день 0	75800+0,22	4. день 0	15900±0,14 р<0,0001
5. день 0	5700±0,13	5. день 0	1800±0,02 р<0,0001
6. день 0	950+0,03	6. день 0	200±0,01 р<0,001
7. день 0	350±0,02	7. день 0	15±0,01 р<0,001

- 4 009170

Из представленной выше таблицы видно, что развитие ооцист у инфицированной группы 4, получавшей νΕΤ-ΗΒΜ, было значительно меньше (р<0,0001 и р<0,001), чем у животных инфицированной группы 2, получавших традиционный корм. В данной группе увеличение выделения ооцист значительно превышало таковое у обработанной группы во все дни, и данный более высокий уровень оставался до конца эксперимента.

Измерения веса на 0-й, 7-й и 14-й дни подтвердили, что вес инфицированных животных, получавших традиционный корм, постепенно снижался до последнего дня эксперимента, тогда как в группах инфицированных и неинфицированных цыплят, потреблявших νΕΤ-ΗΒΜ, были зарегистрированы значимые (р<0,001) привесы.

Пример 3. Измерение уровня антител у вакцинированных цыплят.

По 7 однодневных цыплят типа К.О55-308 (источник поставки: ВаЬо1иа, Ниидату) были включены в эксперимент, причем цыплята получали однократное лечение в период нахождения в яйце вакциной против болезни Гумборо (вакцина ΤΈνΑί.’ от компании Рйу1ах1а, Вибарей, Ниидату). В основной корм половины поголовья цыплят давали νΕΤ-ΗΒΜ в количестве 0,3 г/кг корма. Животные без ограничений потребляли корм и питьевую воду. У контрольных и обработанных цыплят брали кровь в первый день и через каждую неделю. Их кровь собирали отдельно, отделяли сыворотку крови центрифугированием, затем хранили при температуре -18°С до обработки.

Количество антител определяли тестом ЕЬ18А. В ходе теста антиген обычно адсорбирован стенкой полистироловой 96-луночной планшеты. Подлежащие исследованию специфические антитела сыворотки крови связаны с антигеном, однако, не связанные антитела удаляются промыванием, затем систему комплектуют такой видоспецифической антиглобулиновой сывороткой, которая была конъюгирована с ферментом пероксидазой хрена или с другим ферментом. Молекулы антиглобулина-конъюгата, которые не вступали в реакцию, удаляли промыванием. «Сэндвич» конъюгата антигена-антитела-антиглобулина становится видимым в форме цветовой реакции после добавления субстрата фермента. В данном эксперименте для измерения использовали набор, тестирующий антитела инфекционного бурсита (набор РгоГРЬОК® 1ВИЕЬ1§А, изготовленный Кпкедаатб & Репу ЬаЬотаФпек, СибГогб. ИК; каталожный номер 54-81-01).

Измерение проводили в соответствии с методологии, описанной выше. Для данного измерения по 50 мкл сыворотки, сенсибилизированной антигеном, добавляли в лунки планшеты. Положительные и отрицательные контрольные сыворотки помещали в лунки на переднюю часть (-1, +2, -3) и концевую часть (-94, +95, -96) планшеты ЕЫ8А. Планшеты с сывороткой инкубировали в течение 30 мин при комнатной температуре, затем их промывали промывным раствором (300 мкл), раствор оставался в лунках в течение 3 мин, затем ее сливали. Данный этап промывания повторяли через 2 мин. После этого 100 мкл конъюгата из набора добавляли в каждую лунку к образцам, затем их инкубировали в течение 30 мин при комнатной температуре и, наконец, их промывали дважды в соответствии с описанной выше процедурой. Затем 100 мкл субстрата вводили в систему. И ее инкубировали при комнатной температуре в течение 15 мин. Реакции прекращали 100 мкл останавливающего раствора. Развившийся зелено-синий цвет считывали в устройстве для считывания ЕЫ8А при длине волн 405-410 нм. Титры антител подсчитывали по полученным данным спектральной поглощательной способности, которые оценивали при еженедельном разложении.

По данным измерениям можно установить, что величины титров сывороток животных, подвергнутых кровопусканию на 1-й день, были такими же, как нормальные величины контрольной группы (в среднем, 13,5). Величины титров образцов сыворотки, взятых в 1-ю неделю, увеличились по сравнению с величинами контрольной группы (в среднем, 17,4). На 2-й неделе данный рост еще увеличился по сравнению с контролем (в среднем, 21,2). На 3-ю неделю наблюдался мощный рост величин титра под влиянием лечения νΕΤ0ΗΒΜ по сравнению с контролем (в среднем, 30,3). На 4-ю неделю величины титра обработанных групп утроились по сравнению с контролем (в среднем, 42,1). На 5-ю неделю величины титра были в 4 раза выше, чем величины у контроля (в среднем, 55,6). На 6-ю неделю величины титра были почти в 5 раз выше, чем в контрольной группе, измеренные на 6-й неделе (в среднем, 69,4).

На основании статистической оценки, было доказано, что полученные величины были значимыми (р<0,001) и они проявили более быстрый рост по сравнению с контролем.

Claims (8)

1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ

   1. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для профилактики и/или лечения микоплазматических инфекций животных.
2. 2. Применение по п.1, в котором инфекция вызвана по меньшей мере одной микоплазмой из группы, состоящей из Мусор1а§та даШкербсит, Мусор1а§та 8уиоу1ае и Мусор1а§та йуориеитошае.
3. 3. Применение по п.1 или 2, в котором животное является сельскохозяйственным животным, выбранным из группы, состоящей из крупного рогатого скота, лошадей, кроликов, поросят, свиней, бройлерных цыплят, кур, индюшек, гусей и уток.
4. 4. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для

   - 5 009170 лечения кокцидиоза птиц, вызываемого Е1тепа 1спс11а.
5. 5. Применение экстракта ферментированных зародышей пшеницы для изготовления препарата для увеличения титра антител у вакцинированной домашней птицы, специфичных к инфекциям домашней птицы, таким как микоплазматические инфекции или кокцидиоз.
6. 6. Применение по любому из пп.1-5, в котором экстракт ферментированных зародышей пшеницы получен из ферментированной жидкости и биомассы, причем указанные ферментированная жидкость и биомасса получены путем ферментирования зародышей пшеницы Заеейаготуеек еегеуыае.
7. 7. Применение по любому из пп.1-6, в котором указанный препарат представляет собой корм, в котором экстракт ферментированных зародышей пшеницы находится в количестве от 0,1 до 6 г на кг корма.
8. 8. Применение по любому из пп.1-6, в котором указанный экстракт ферментированных зародышей пшеницы используют путем его смешивания с кормом в количестве от 0,1 до 6 г на кг корма.