DE3628864A1 - Benzoylphenylharnstoffe, ihre herstellung, zwischenprodukte zu ihrer herstellung und schaedlingsbekaempfungsmittel, welche diese verbindungen enthalten - Google Patents
Benzoylphenylharnstoffe, ihre herstellung, zwischenprodukte zu ihrer herstellung und schaedlingsbekaempfungsmittel, welche diese verbindungen enthaltenInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft neue substituierte N-Benzoyl-N′-
(2-pyridyloxyphenyl)-harnstoffe, Verfahren und Zwischenprodukte zu
ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Schädlingsbekämpfung,
sowie Schädlingsbekämpfungsmittel, welche diese
Benzoylphenylharnstoffe als Wirkstoff enthalten.
Die erfindungsgemässen substituierten N-Benzoyl-N′-(2-pyridyloxyphenyl)-
harnstoffe haben die Formel I
worin
R1 Wasserstoff, Fluor, Chlor oder Methoxy,
R2 Fluor, Chlor, Methyl, Methoxy oder Methylthio und
X Sauerstoff oder Schwefel
bedeuten.
R1 Wasserstoff, Fluor, Chlor oder Methoxy,
R2 Fluor, Chlor, Methyl, Methoxy oder Methylthio und
X Sauerstoff oder Schwefel
bedeuten.
Wegen ihrer Wirkung als Schädlingsbekämpfungsmittel bevorzugt sind
Verbindungen der Formel I, worin
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor, Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff bedeuten.
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor, Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff bedeuten.
Insbesondere bevorzugt sind Verbindungen der Formel I, worin die
5-(1,1,2-Trifluor-2,2-dichloräthyl)-3-chlor-pyridyloxygruppe in
para-Stellung steht und
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor, Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff bedeuten.
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor, Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff bedeuten.
Die Verbindungen der Formel I können analog bekannten Verfahren
hergestellt werden (vgl. u. a. die deutschen Offenlegungsschriften
Nr. 21 23 236, 26 01 780, und 32 40 975).
So kann man z. B. eine Verbindung der Formel I erhalten durch
Umsetzung einer Verbindung der Formel II
mit einer Verbindung der Formel III
In den Formeln II und III haben die Reste R1 und R2 die unter
Formel I angegebenen Bedeutungen und einer der Reste R′ und R″ steht
für eine Aminogruppe und der andere für eine Isocyanat oder
Isothiocyanatgruppe.
Die Verfahren werden vorzugsweise unter normalem Druck und in
Gegenwart eines organischen Lösungs- oder Verdünnungsmittels und bei
einer Temperatur von -10 bis + 220°C, vorzugsweise 50 bis 150°C,
gegebenenfalls in Gegenwart einer organischen Base, z.B. Triäthylamin,
durchgeführt. Als Lösungs- oder Verdünnungsmittel eignen sich
z. B. Aether und ätherartige Verbindungen, wie Diäthyläther, Dipropyläther,
Dibutyläther, Dioxan, Dimethoxyäthan und Tetrahydrofuran;
N,N-dialkylierte Carbonsäureamide; aliphatische, aromatische sowie
halogenierte Kohlenwasserstoffe, insbesondere Benzol, Toluol, Xylol,
Chloroform, Methylenchlorid, Tetrachlorkohlenstoff und Chlorbenzol;
Nitrile, wie Acetonitril oder Propionitril; Dimethylsulfoxid sowie
Ketone, z. B. Aceton, Methyläthylketon, Methylisopropylketon und
Methylisobutylketon.
Die Ausgangsstoffe der Formel III sind bekannt und können analog
bekannten Verfahren hergestellt werden. Bei den Ausgangsstoffen der
Formel II handelt es sich um neuartige Verbindungen, die ebenfalls
einen Gegenstand der vorliegenden Erfindung bilden. Man kann diese
Pyridyloxyaniline der Formel II herstellen durch Umsetzung entsprechender
Phenole der Formel IV
mit 2-Hal mit 2-Halogen-5-(1,1,2-trifluor-2,2-dichloräthyl)-pyridinen der
Formel V
In der Formel IV bedeutet R′ Amino, Isocyanat oder Isothiocyanat und
in der Formel V steht Z für Fluor, Chlor oder Brom, insbesondere für
Chlor. Die Ausgangsstoffe der Formel IV sind bekannt und können nach
bekannten Methoden hergestellt werden.
Die 2-Halogen-3-chlor-5-(1,1,2-trifluor-2,2-dichloräthyl)-pyridine
der Formel V sind ebenfalls bekannt. Ihre Herstellung erfolgt in an
sich bekannter Weise (vgl. z. B. Europäische Patentanmeldung
Nr. 00 78 234) durch Perchlorierung der Aethylgruppe in einer
Verbindung der Formel VII
worin Z Fluor, Chlor oder Brom bedeutet (vgl. C.A. 57:790, 1962;
69:86786r, 1968). Diese Chlorierung kann in flüssiger Phase mit oder
ohne Lösungsmittel in Gegenwart von Licht und/oder anderen Radikalbildnern,
wie z. B. Azo-isobutyronitril oder Benzoylperoxid, bei
Raumtemperatur aber auch bei erhöhten Temperaturen z. B. von 40 bis
ca. 100°C, durchgeführt werden. Die Menge des Radikalbildners kann
von 0,001 Mol bis 1, Mol pro Mol zu chlorierende Substanz variieren.
Die Reaktionstemperatur liegt im allgemeinen im Bereich
zwischen Raumtemperatur und ca. 150°C, vorzugsweise ist sie identisch
mit dem Siedepunkt des verwendeten Lösungsmittels. Als Lösungsmittel
werden solche bevorzugt, die gegen Chlor inert sind. Die
Ausgangsmaterialien, d. h. die 2-Halogen-3-chlor-5-äthylpyridine der
Formel VII, können als freie Pyridine oder als deren Hydrochloride
bzw. Hydrobromide eingesetzt werden. Der Verlauf der Chlorierungsreaktion
kann mit Hilfe der Gaschromatographie oder der Dünnschichtchromatographie
verfolgt werden. Die Aufarbeitung der Reaktionslösung
erfolgt nach Austreiben gelösten Halogenwasserstoffs bzw. überschüssigen
Chlors mittels eines Stickstoffstromes durch Eindampfen
der Lösung. Das erhaltene Rohprodukt kann durch Umkristallisation
gereinigt oder direkt weiterverarbeitet werden.
Der Austausch von Chlor gegen Fluor in der -CCl2-CCl3-Gruppe unter
Bildung der entsprechenden -CF2-CFCl2 Gruppe, kann mit einem
Fluorierungsmittel, wie z. B. KF, NaF, CaF2, SbF3, HF oder deren
Gemischen, durchgeführt werden. Die Reaktion wird oft durch geringe
Mengen von elementarem Chlor katalysiert und wird entweder in der
Schmelze oder in einem Lösungsmittel bei Temperaturen von 50 bis 250°C
durchgeführt. Im Falle der Umsetzung mit HF wird die Reaktion
vorteilhaft unter erhöhtem Druck in einem Autoklaven vollzogen. Als
Lösungsmittel eignen sich polare aprotische Verbindungen, wie z. B.
Dimethylformamid, Dimethylacetamid, Sulfolan, Dimethylsulfoxid oder
Dimethyl- oder Diäthylsulfon. Die Fluorierungsmittel werden bevorzugt
in wasserfreier, feinverteilter Form und im Ueberschuss zu
den auszutauschenden Chloratomen eingesetzt; dieser Ueberschuss
beträgt üblicherweise 10 bis 200%. Im Falle der Verwendung eines
Lösungsmittels ist es vorteilhaft, einen Phasentransferkatalysator,
wie z. B. Tetraalkyl-ammonium-chlorid oder -bromid, in Mengen von
0,1-10% des Lösungsmittels dem Reaktionsgemisch zuzusetzen.
Ueberraschenderweise wurde gefunden, dass die vorliegenden Verbindungen
der Formel I bei guter Pflanzenverträglichkeit und geringer
Warmblütertoxizität ausgezeichnete Wirksamkeit als Schädlingsbekämpfungsmittel
aufweisen. Sie eignen sich vor allem zur Bekämpfung
von Pflanzen und Tiere befallenden Insekten und Vertretern der
Ordnung Akarina.
Insbesondere eignen sich die Verbindungen der Formel I zur Bekämpfung
von Insekten der Ordnungen: Lepidoptera, Coleoptera, Homoptera,
Heteroptera, Diptera, Thysanoptera, Orthoptera, Anoplura, Siphonaptera,
Mallophaga, Thysanura, Isoptera, Psocoptera und Hymenoptera,
sowie von Vertretern der Ordnung Akarina der Familien: Ixodidae,
Argasidae, Tetranychidae und Dermanyssidae.
Neben ihrer Wirkung gegenüber Fliegen, wie z. B. Musca domestica, und
Mückenlarven können Verbindungen der Formel I auch zur Bekämpfung
von pflanzenschädigenden Frassinsekten in Zier- und Nutzpflanzungen,
insbesondere in Baumwollkulturen (z. B. Spodoptera littoralis und
Heliothis virescens), sowie in Obst- und Gemüsekulturen (z. B.
Laspeyresia pomonella, Leptinotarsa decemlineata und Epilachna
varivestis) eingesetzt werden. Die Verbindungen der Formel I zeichnen
sich durch eine ausgeprägte larvizide und ovo-larvizide Wirkung
gegen Insekten, insbesondere Larven von fressenden Schadinsekten,
aus. Werden Verbindungen der Formel I von adulten Insekten-Stadien
mit dem Futter aufgenommen, so ist in vielen Fällen, insbesondere
bei Coleopteren, wie z. B. Anthonomus grandis, eine verminderte
Ei-Ablage und/oder reduzierte Schlupfrate festzustellen.
Verbindungen der Formel I haben auch eine günstige Wirkung gegen
Bodeninsekten (z. B. Aulacophora femoralis, Chortophila brassicae,
Diabrotica balteata, Pachnoda savignyi und Scotia ypsilon).
Die Verbindungen der Formel I können ferner zur Bekämpfung von
Ektoparasiten, wie Lucilia sericata, an Haus- und Nutztieren
eingesetzt werden, z. B. durch Tier-, Stall- und Weidebehandlung.
Die Verbindungen der Formel I eignen sich ferner zur Bekämpfung der
folgenden Obst- und Gemüsekulturen befallenden Milbenspezies:
Tetranychus urticae, Tetranychus cinnabarinus, Panonychus ulmi,
Broybia rubrioculus, Panonychus citri, Eriophyes piri, Eriophyes
ribis, Eriophyes vitis, Tarsonemus pallidus, Phyllocoptes vitis und
Phyllocoptruta oleivora.
Die Verbindungen der Formel I können vorteilhaft als Beizmittel zur
Behandlung von Saatgut und Vorrat (Früchte, Knollen, Körner) und
Pflanzenstecklingen und zur Saatfurchenapplikation zum Schutz vor
Pilzinfektionen und Insekten sowie gegen die im Erdboden auftretenden
phytopathogenen Pilze und Insekten eingesetzt werden.
Die gute pestizide Wirkung der erfindungsgemässen Verbindungen der
Formel I entspricht einer Abtötungsrate (Mortalität) von mindestens
50-60% der erwähnten Schädlinge.
Die Wirkung der erfindungsgemässen Verbindungen bzw. der sie
enthaltenden Mittel lässt sich durch Zusatz von anderen Insektiziden
und/oder Akariziden wesentlich verbreitern und an gegebene Umstände
anpassen. Als Zusätze kommen z. B. Vertreter der folgenden Wirkstoffklassen
in Betracht: Organische Phosphorverbindungen, Nitrophenole
und Derivate, Formamidine, Harnstoff, Carbamate, Pyrethroide,
chlorierte Kohlenwasserstoffe und Bacillus thuringiensis-Präparate.
Die Verbindungen der Formel I werden in unveränderter Form oder
vorzugsweise zusammen mit den in der Formulierungstechnik üblichen
Hilfsmitteln eingesetzt und können daher z. B. zu Emulsionskonzentraten,
direkt versprühbaren oder verdünnbaren Lösungen, verdünnten
Emulsionen, Spritzpulvern, löslichen Pulvern, Stäubemitteln,
Granulaten, auch Verkapselungen in z. B. polymeren Stoffen in
bekannter Weise verarbeitet werden. Die Anwendungsverfahren, wie
Versprühen, Vernebeln, Verstäuben, Verstreuen oder Giessen, werden
ebenso wie die Mittel den angestrebten Zielen und den gegebenen
Verhältnissen entsprechend gewählt.
Die Formulierung, d. h. die den Wirkstoff der Formel I, bzw.
Kombinationen dieser Wirkstoffe mit anderen Insektiziden oder Akariziden,
und gegebenenfalls einen festen oder flüssigen Zusatzstoff enthaltenden
Mittel, Zubereitungen oder Zusammensetzungen, werden in
bekannter Weise hergestellt, z. B. durch inniges Vermischen und/oder
Vermahlen der Wirkstoffe mit Streckmitteln, wie z. B. mit Lösungsmitteln,
festen Trägerstoffen, und gegebenenfalls oberflächenaktiven
Verbindungen (Tensiden).
Als Lösungsmittel können in Frage kommen: Aromatische Kohlenwasserstoffe,
bevorzugt die Fraktionen C8 bis C12, wie z. B. Xylolgemische
oder substituierte Naphthaline, Phthalsäureester, wie Dibutyl- oder
Dioctylphthalat, aliphatische Kohlenwassenstoffe, wie Cyclohexan,
Paraffine, Alkohole und Glykole sowie deren Aether und Ester, wie
Aethanol, Aethylenglykol, Aethylenglykolmonomethyl- oder äthyläther,
Ketone, wie Cyclohexanon, stark polare Lösungsmittel, wie
N-Methyl-2-pyrrolidon, Dimethylsulfoxid oder Dimethylformamid, sowie
gegebenenfalls epoxidierte Pflanzenöle, wie epoxidiertes Kokosnussöl
oder Sojaöl, oder Wasser.
Als feste Trägerstoffe, z. B. für Stäubemittel und dispergierbare
Pulver, werden in der Regel natürliche Gesteinsmehle verwendet, wie
Calcit, Talkum, Kaolin, Montmorillonit oder Attapulgit. Zur Verbesserung
der physikalischen Eigenschaften können auch hochdisperse
Kieselsäuren oder hochdisperse saugfähige Polymerisate zugesetzt
werden. Als gekörnte, adsorptive Granulatträger kommen poröse Typen,
wie z. B. Bimsstein, Ziegelbruch, Sepiolit oder Bentonit, als nicht
sorptive Trägermaterialien z. B. Calcit oder Sand in Frage. Darüberhinaus
kann eine Vielzahl von granulierten Materialien anorganischer
oder organischer Natur, wie insbesondere Dolomit oder zerkleinerte
Pflanzenrückstände, verwendet werden.
Als oberflächenaktive Verbindungen kommen je nach Art des zu
formulierenden Wirkstoffes der Formel I oder der Kombinationen
dieser Wirkstoffe mit andern Insektiziden oder Akariziden nichtionogene,
kation- und/oder anionaktive Tenside mit guten Emulgier-,
Dispergier- und Netzeigenschaften in Betracht. Unter Tensiden sind
auch Tensidgemische zu verstehen.
Geeignete anionische Tenside können sowohl sog. wasserlösliche
Seifen als auch wasserlösliche synthetische oberflächenaktive
Verbindungen sein.
Als Seifen eignen sich die Alkali-, Erdalkali- oder gegebenenfalls
substituierten Ammoniumsalze von höheren Fettsäuren (C10-C22), wie
z. B. die Na- oder K-Salze der Oel- oder Stearinsäure, oder von
natürlichen Fettsäuregemischen, die z. B. aus Kokosnuss- oder Tallöl
gewonnen werden können. Ferner sind als Tenside auch die
Fettsäure-methyl-taurin-salze sowie modifizierte und nicht modifizierte
Phospholipide zu erwähnen.
Häufiger werden jedoch sogenannte synthetische Tenside verwendet,
insbesondere Fettsulfonate, Fettsulfate, sulfonierte
Benzimidazolderivate oder Alkylarysulfonate.
Die Fettsulfonate oder -sulfate liegen in der Regel als Alkali-,
Erdalkali- oder gegebenenfalls substituierte Ammoniumsalze vor und
weisen im allgemeinen einen Alkylrest mit 8 bis 22 C-Atomen auf,
wobei Alkyl auch den Alkylteil von Acylresten einschliesst, z. B. das
Na- oder Ca-Salz der Ligninsulfonsäure, des Dodecylschwefelsäureesters
oder eines aus natürlichen Fettsäuren hergestellten
Fettalkoholsulfatgemisches. Hierher gehören auch die Salze der
Schwefelsäureester und Sulfonsäuren von Fettalkohol-Aethylenoxid-Addukten.
Die sulfonierten Benzimidazolderivate enthalten vorzugsweise
2 Sulfonsäuregruppen und einen Fettsäurerest mit etwa 8-22 C-Atomen.
Alkylarylsulfonate sind z. B. die Na-, Ca- oder Triäthanolaminsalze
der Dodecylbenzolsulfonsäure, der Dibutylnaphthalinsulfonsäure oder
eines Naphthalinsulfonsäure-Formaldehydkondensationsproduktes.
Ferner kommen auch entsprechende Phosphate, wie z. B. Salze des
Phosphorsäureesters eines p-Nonylphenol-(4-14)-Aethylenoxid-Adduktes,
in Frage.
Als nichtionische Tenside kommen in erster Linie Polyglykolätherderivate
von aliphatischen oder cycloaliphatischen Alkoholen,
gesättigten oder ungesättigten Fettsäuren und Alkylphenolen in
Frage, die 3 bis 30 Glykoläthergruppen und 8 bis 20 Kohlenstoffatome
im (aliphatischen) Kohlenwasserstoffrest und 6 bis 18 Kohlenstoffatome
im Alkylrest der Alkylphenole enthalten können. Weiterhin
geeignete nichtionische Tenside sind die wasserlöslichen 20 bis 250
Aethylenglykoläthergruppen und 10 bis 100 Propylenglykoläthergruppen
enthaltenden Polyäthylenoxid-Addukte an Polypropylenglykol,
Aethylendiaminopolypropylenglykol und Alkylpolypropylenglykol mit 1 bis
10 Kohlenstoffatomen in der Alkylkette. Die genannten Verbindungen
enthalten üblicherweise pro Propylenglykol-Einheit 1 bis 5
Aethylenglykoleinheiten.
Als Beispiele nichtionischer Tenside seien Nonylphenolpolyäthoxyäthanole,
Ricinusölpolyglykoläther, Ricinusölthioxilat,
Polypropylen-Polyäthylenoxid-Addukte, Tributylphenoxypolyäthoxyäthanol,
Polyäthylenglykol und Octylphenoxypolyäthoxyäthanol erwähnt. Ferner
kommen auch Fettsäureester von Polyoxyäthylensorbitan, wie das
Polyoxyäthylensorbitan-trioleat in Betracht.
Bei den kationischen Tensiden handelt es sich vor allem um quaternäre
Ammoniumsalze, welche als N-Substituenten mindestens einen
Alkylrest mit 8 bis 22 C-Atomen enthalten und als weitere Substituenten
niedrige, gegebenenfalls halogenierte Alkyl-, Benzyl- oder
niedrige Hydroxyalkylreste aufweisen. Die Salzen liegen vorzugsweise
als Halogenide, Methylsulfate oder Aethylsulfate vor, z. B. das
Stearyltrimethylammoniumchlorid oder das Benzyl-di-(2-chloräthyl)-
äthylammoniumbromid.
Die in der Formulierungstechnik gebräuchlichen Tenside sind u. a. in
folgenden Publikationen beschrieben:
"Mc Cutcheon's Detergents and Emulsifiers Annual" MC Publishing Corp., Ridgewood, New Jersey, 1979;
Dr. Helmut Stache "Tensid Taschenbuch", Carl Hanser Verlag München/Wien 1981.
"Mc Cutcheon's Detergents and Emulsifiers Annual" MC Publishing Corp., Ridgewood, New Jersey, 1979;
Dr. Helmut Stache "Tensid Taschenbuch", Carl Hanser Verlag München/Wien 1981.
Die pestiziden Zubereitungen enthalten in der Regel 0,1 bis 99%,
insbesondere 0,1 bis 95%, Wirkstoff der Formel I oder Kombinationen
dieser Wirkstoffe mit andern Insektiziden oder Akariziden, 1 bis
99,9% eines festen oder flüssigen Zusatzstoffes und 0 bis 25%,
insbesondere 0,1 bis 20%, eines Tensides. Während als Handelsware
eher konzentrierte Mittel bevorzugt werden, verwendet der Endverbraucher
in der Regel verdünnte Zubereitungen, die wesentlich
geringere Wirkstoffkonzentrationen aufweisen.
Die Mittel können auch weitere Zusätze wie Stabilisatoren, Entschäumer,
Viskositätsregulatoren, Bindemittel, Haftmittel sowie Dünger
oder andere Wirkstoffe zur Erzielung spezieller Effekte enthalten.
a) Herstellung von 2,3-Dichlor-5-pentachloräthyl-pyridin:
17,6 g 2,3-Dichlor-5-äthylpyridin werden in 200 ml Tetrachlorkohlenstoff
gelöst. Unter Kühlung werden bei Raumtemperatur 6 g HCl-Gas
eingeleitet, wobei teilweise das Hydrochlorid der Pyridinverbindung
ausfällt. Das Reaktionsgemisch wird auf 50°C erwärmt und unter
Belichtung mittels einer Hg-Hochdrucklampe (125 Watt) mit Cl2-Gas
behandelt. Das Fortschreiten der Chlorierungsreaktion wird dünnschichtchromatographisch
(Kieselgel als Träger; Toluol als Laufmittel)
verfolgt. Wenn die Reaktion beendet ist, wird die hellgelbe Lösung
im Vakuum eingedampft. Man erhält als Rückstand die Titelverbindung
der Formel
als gelbliches Produkt, das nach Umkristallisieren aus 90%igem
Aethanol bei 97,5-98°C schmilzt.
b) Herstellung von 2,3-Dichlor-5-(1,1,2-trifluor-2,2-dichloräthyl)-
pyridin:
34,9 g 2,3-Dichlor-5-pentachloräthyl-pyridin werden zusammen mit
90 g Antimontrifluorid und 4 g Antimonpentachlorid vermischt und auf
180°C erhitzt. Es entsteht eine dunkelbraune Schmelze, die während
drei Stunden bei dieser Temperatur gehalten wird. Nach dem Abkühlen
des Ansatzes auf 90°C fügt man dem Reaktionsgemisch 200 ml heisses
Wasser zu und destilliert dann das Produkt mit Wasserdampf ab. Das
wässrig-ölige Wasserdampf-Destillat wird mit Aether extrahiert, der
Aetherextrakt mit Na2SO4 getrocknet und der Aether abdestilliert.
Das zurückbleibende gelbliche Oel wird am Wasserstrahlvakuum
rektifiziert. Das bei 120-122°C/15,5 mbar destillierende Produkt
wird aufgefangen; es erstarrt beim Stehen zu weissen Kristallen. Die
so erhaltene Titelverbindung der Formel
hat einen Schmelzpunkt von 45°C.
c) Herstellung des Zwischenproduktes 4-[5-(1,1,2-Trifluor-2,2-
dichloräthyl)-3-chlor-pyridyloxy)]-2,5-dichloranilin.
Zu einer Lösung von 28 g 2,5-Dichlor-4-hydroxyanilin in 120 ml
Dimethylsulfoxid werden 34,5 g Kaliumcarbonat gegeben. Das Gemisch
wird eine Stunde bei 20°C gerührt und dann auf 90°C aufgeheizt. Bei
90°C tropft man 44,8 g 2,3-Dichlor-5-(1,1,2-trifluor-2,2-dichloräthyl)-
pyridin zu. Anschliessend wird das Gemisch vier Stunden bei
90-100°C gerührt, dann abgekühlt und mit Methylenchlorid extrahiert.
Der Extrakt wird mit Wasser gewaschen und getrocknet. Nach dem
Abdestillieren des Methylenchlorides und dem Chromatographieren des
Rohproduktes an Kieselgel (Eluiermittel: Hexan/Aether 4:1) erhält
man die Titelverbindung mit einem Schmelzpunkt von 98-101°C.
d) Herstellung des Endproduktes der Formel
Zu einer Lösung von 4,5 g 4-[5-(1,1,2-Trifluor-2,2-dichloräthyl)-3-
chlorpyridyloxy]-2,5-dichloranilin in 50 ml Toluol werden 2 g
2-Methyl-6-chlorbenzoylisocyanat zugetropft. Das Reaktionsgemisch
wird zehn Stunden bei 20°C gerührt. Nach dem Einengen des Gemisches
wird der feste Rückstand in Hexan suspendiert, abgenutscht und
getrocknet. Man erhält die Titelverbindung mit einem Schmelzpunkt
von 223-224°C.
Entsprechend der vorstehend beschriebenen Arbeitsweise werden die
folgenden Verbindungen der Formel I hergestellt:
(% = Gewichtsprozent)
2.1 Emulsions-Konzentrate
Aus solchen Konzentraten können durch Verdünnen mit Wasser Emulsionen
jeder gewünschten Konzentration hergestellt werden.
2.2 Lösungen
Die Lösungen sind zur Anwendung in Form kleinster Tropfen geeignet.
2.3 Granulate
Der Wirkstoff wird in Methylenchlorid gelöst, auf den Träger
aufgesprüht und das Lösungsmittel anschliessend im Vakuum
abgedampft.
2.4 Stäubemittel
Durch inniges Vermischen der Trägerstoffe mit dem Wirkstoff erhält
man gebrauchsfertige Stäubemittel.
2.5 Spritzpulver
Der Wirkstoff wird mit den Zusatzstoffen gut vermischt und in einer
geeigneten Mühle gut vermahlen. Man erhält Spritzpulver, die sich
mit Wasser zu Suspensionen jeder gewünschten Konzentration verdünnen
lassen.
2.6 Extruder Granulat
Der Wirkstoff wird mit den Zusatzstoffen vermischt, vermahlen und
mit Wasser angefeuchtet. Dieses Gemisch wird extrudiert und
anschliessend im Luftstrom getrocknet.
2.7 Umhüllungs-Granulat
Der feingemahlene Wirkstoff wird in einem Mischer auf das mit
Polyäthylenglykol angefeuchtete Kaolin gleichmässig aufgetragen. Auf
diese Weise erhält man staubfreie Umhüllungs-Granulate.
2.8 Suspensions-Konzentrat
Der fein gemahlene Wirkstoff wird mit den Zusatzstoffen innig
vermischt. Man erhält so ein Suspensions-Konzentrat, aus welchem
durch Verdünnen mit Wasser Suspensionen jeder gewünschten Konzentration
hergestellt werden können.
Beispiel 4.1: Wirkung gegen Musca domestica:
Je 50 g frisch zubereitetes Nährsubstrat für Maden wird in Becher
eingewogen. Von einer 1 gew.-%igen acetonischen Lösung des betreffenden
Wirkstoffes wird eine bestimmte Menge auf das in den Bechern
befindliche Nährsubstrat pipettiert, so dass sich eine Wirkstoffkonzentration
von 800 ppm ergibt. Nach dem Durchmischen des Substrates
lässt man das Aceton mindestens 20 Stunden lang verdampfen.
Dann werden pro Wirkstoff und Konzentration je 25 eintägige Maden
von Musca domestica in die das so behandelte Nährsubstrat enthaltenden
Becher gegeben. Nachdem sich die Maden verpuppt haben, werden
die gebildeten Puppen durch Ausschwemmen mit Waser von dem Substrat
abgetrennt und in mit Siebdeckeln verschlossenen Gefässen deponiert.
Die pro Ansatz ausgeschwemmten Puppen werden gezählt (toxischer
Einfluss des Wirkstoffes auf die Madenentwicklung). Dann wird nach
10 Tagen die Anzahl der aus den Puppen geschlüpften Fliegen
bestimmt.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel I zeigen gute Wirkung im
obigen Test.
Beispiel 4.2: Wirkung gegen Lucilia sericata:
Zu 9 ml eines Zuchtmediums wird bei 50°C 1 ml einer 0,5 Gew.-%
Aktivsubstanz enthaltenden wässrigen Zubereitung hinzugefügt. Nun
werden ca. 30 frisch geschlüpfte Lucilia sericata-Larven zum Zuchtmedium
gegeben, und nach 48 und 96 Stunden wird die insektizide
Wirkung durch Ermittlung der Abtötungsrate festgestellt.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen in diesem Test
gute Wirkung gegen Lucilia sericata.
Beispiel 4.3: Wirkung gegen Aëdes aegypti:
Auf die Oberfläche von 150 ml Wasser, das sich in einem Behälter
befindet, wird so viel einer 0,1 gew.-%igen acetonischen Lösung des
Wirkstoffes pipettiert, dass eine Konzentration von 800 ppm erhalten
wird. Nach Verdunsten des Acetons wird der Behälter mit 30 bis 40
2-tägigen Aëdes-Larven beschickt. Nach 1, 2 und 5 Tagen wird die
Mortalität geprüft.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen in diesem Test
gute Wirkung gegen Aëdes aegypti.
Beispiel 4.4: Insektizide Frassgift-Wirkung:
Ca. 25 cm hohe eingetopfte Baumwollpflanzen werden mit wässrigen
Wirkstoffemulsionen besprüht, die den Wirkstoff jeweils in
ansteigenden Konzentrationen bis zu 100 ppm enthalten.
Nach dem Antrocknen des Sprühbelages werden die Baumwollpflanzen mit
Spodoptera littoralis-bzw. Heliothis virescens-Larven im dritten
larvalen Stadium besiedelt. Der Versuch wird bei 24°C und 60%
relativer Luftfeuchtigkeit durchgeführt. Nach 120 Stunden wird die
Mortalität der Test-Insekten in Prozenten bestimmt.
Eine Wirkung von 80-100% (Mortalität) zeigen die Verbindungen Nr. 1,
2 und 4 bei 12,5 ppm und die Verbindungen Nr. 3, 5-7 bei 100 ppm
gegen Spodoptera-Larven; gegen Heliothis-Larven zeigen die Verbindungen
Nr. 2, 3 und 6 bei 12,5 ppm und die Verbindungen Nr. 1, 4, 5 und
7 bei 100 ppm eine 80-100%ige Wirkung (Mortalität).
Beispiel 4.5: Wirkung gegen Epilachna varivestis:
Etwa 15-20 cm hohe Phaseolus vulgaris-Pflanzen (Buschbohnen) werden
mit wässrigen, den zu prüfenden Wirkstoff in einer Konzentration von
800 ppm enthaltenden Emulsions-Zubereitungen besprüht. Nach dem
Antrocknen des Sprühbelages werden pro Pflanze 5 Larven von Epilachna
varivestis (Mexikanischer Bohnenkäfer) im 4. larvalen Stadium
angesetzt. Ueber die infestierten Pflanzen wird ein Plastikzylinder
gestülpt, der mit einem Kupfer-Gazedeckel abgedeckt ist. Der Versuch
wird bei 28°C und 60% relativer Luftfeuchtigkeit durchgeführt.
Nach 2 und 3 Tagen wird die Mortalität in Prozenten bestimmt. Zur
Auswertung hinsichtlich allfälligem Frass-Schaden (Antifeeding-Effekt),
Entwicklungs- und Häutungsstörungen werden die Versuchstiere während
weiterer 3 Tage beobachtet.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen gute Wirkung im
obigen Test.
Beispiel 4.6: Ovizide Wirkung auf Heliothis virescens:
Entsprechende Mengenanteile einer benetzbaren pulverförmigen
Formulierung, enthaltend 25 Gew.% des zu prüfenden Wirkstoffes,
werden mit jeweils so viel Wasser vermischt, dass sich eine wässrige
Emulsion mit einer Wirkstoffkonzentration von 800 ppm ergibt.
In diese wirkstoffhaltigen Emulsionen werden eintägige Eigelege von
Heliothis auf Cellophan während drei Minuten eingetaucht und dann
auf Rundfilter abgenutscht. Die so behandelten Gelege werden in
Petrischalen ausgelegt und in der Dunkelheit aufbewahrt. Nach 6 bis
8 Tagen wird die Schlupfrate im Vergleich zu unbehandelten Kontrollen
festgestellt.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen gute Wirkung in
obigem Test.
Beispiel 4.7: Wirkung auf Laspeyresia pomonella (Eier):
Abgelegte Eier von Laspeyresia pomonella, die nicht älter als
24 Stunden sind, werden auf Filterpapier für 1 Minute in eine
acetonisch-wässrige Lösung, enthaltend 800 ppm des zu prüfenden
Wirkstoffes, eingetaucht. Nach dem Antrocknen der Lösung werden die
Eier in Petrischalen ausgelegt und bei einer Temperatur von 28°C
belassen. Nach 6 Tagen wird der prozentuale Schlupf aus den
behandelten Eiern bewertet und die Mortalität in Prozenten bestimmt.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen gute Wirkung in
obigem Test.
Beispiel 4.8: Reproduktions-Beeinflussung von Anthonomus grandis:
Adulte Anthonomus grandis, die nach dem Schlupf nicht älter als
24 Stunden waren, werden in Gruppen zu jeweils 25 Käfern in Käfige
mit Gitterwänden überführt. Die mit den Käfern besetzten Käfige
werden sodann während 5 bis 10 Sekunden in eine acetonische Lösung,
enthaltend 0,1 Gew.% des zu prüfenden Wirkstoffes, eingetaucht.
Nachdem die Käfer wieder trocken sind, werden sie zur Kopulation und
Eiablage in abgedeckte und Futter enthaltende Schalen eingesetzt.
Abgelegte Eier werden zwei- bis dreimal wöchentlich mit fliessendem
Wasser ausgeschwemmt, gezählt, durch zwei- bis dreistündiges
Einlegen in ein wässriges Desinfektionsmittel desinfiziert und dann
in Schalen, die eine geeignete Larvaldiät enthalten, deponiert. Nach
7 Tagen wird untersucht, ob sich aus den deponierten Eiern Larven
entwickelt haben.
Zur Ermittlung der Dauer des die Reproduktion beeinflussenden
Effektes der zu prüfenden Wirkstoffe wird die Eiablage der Käfer
während eines Zeitraums von etwa 4 Wochen überprüft. Die Bonitierung
erfolgt anhand der Verminderung der Anzahl abgelegter Eier und der
daraus geschlüpften Larven im Vergleich zu unbehandelten Kontrollen.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen eine gute
reproduktionsreduzierende Wirkung im obigen Test.
Beispiel 4.9: Wirkung gegen Anthonomus grandis (Adulte)
Zwei eingetopfte Baumwollpflanzen im 6-Blattstadium werden jeweils
mit einer wässrigen benetzungsfähigen Emulsions-Zubereitung enthaltend
400 ppm des zu prüfenden Wirkstoffes besprüht. Nach dem
Antrocknen des Spritzbelages (nach etwa 1,5 Stunden) wird jede
Pflanze mit 10 adulten Käfern (Anthonomus grandis) besiedelt.
Plastikzylinder, deren obere Oeffnungen mit Gaze abgedeckt sind,
werden dann über die behandelten, mit den Testtieren besiedelten
Pflanzen gestülpt, um ein Abwandern der Käfer zu verhindern. Die so
behandelten Pflanzen werden bei 25°C und etwa 60% relativer
Luftfeuchtigkeit gehalten. Die Auswertung erfolgt nach 2, 3, 4 und
5 Tagen unter Zugrundelegung der prozentualen Mortalität der
eingesetzten Testtiere (% Rückenlage) sowie der Antifeedant-Wirkung
gegenüber unbehandelten Kontrollansätzen.
Verbindungen der Formel I gemäss Beispiel 1 zeigen gute Wirkung in
obigem Test.
Claims (16)
1. Verbindung der Formel I
worin
R1 Wasserstoff, Fluor, Chlor oder Methoxy,
R2 Fluor, Chlor, Methyl, Methoxy oder Methylthio und
X Sauerstoff oder Schwefel
bedeuten.
R1 Wasserstoff, Fluor, Chlor oder Methoxy,
R2 Fluor, Chlor, Methyl, Methoxy oder Methylthio und
X Sauerstoff oder Schwefel
bedeuten.
2. Verbindung der Formel I gemäss Anspruch 1, worin
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff
bedeuten.
R1 Wasserstoff, Fluor oder Chlor,
R2 Fluor, Chlor Methyl oder Methoxy und
X Sauerstoff
bedeuten.
3. Verbindungen der Formel I gemäss Anspruch 2, worin
die 5-(1,1,2-Trifluor-2,2-dichloräthyl)-3-chlor-pyridyloxygruppe in para-Stellung steht.
die 5-(1,1,2-Trifluor-2,2-dichloräthyl)-3-chlor-pyridyloxygruppe in para-Stellung steht.
4. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
5. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
6. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
7. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
8. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
9. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
10. Die Verbindung gemäss Anspruch 3 der Formel
11. Verfahren zur Herstellung einer Verbindung gemäss einem der
Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Verbindung
der Formel II
mit einer Verbindung der Formel III
worin einer der Reste R′ und R″ für eine Aminogruppe und der andere
für eine Isocyanat- oder Isothiocyanatgruppe steht.
12. Eine Verbindung der Formel II
worin R′ Amino, Isocyanat oder Isothiocyanat bedeutet.
13. Verfahren zur Herstellung der Verbindung der Formel II gemäss
Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Verbindung der
Formel IV
worin R′ Amino, Isocyanat oder Isothiocyanat bedeutet, mit einer
Verbindung der Formel V
umsetzt, worin Z Fluor, Chlor oder Brom bedeutet.
14. Schädlingsbekämpfungsmittel, welches als aktive Komponente eine
Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1 bis 9 zusammen mit geeigneten
Trägern und/oder anderen Zuschlagstoffen enthält.
15. Verwendung einer Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1 bis 10
zur Bekämpfung von Insekten und Vertretern der Ordnung Akarina.
16. Verwendung gemäss Anspruch 15 zur Bekämpfung larvaler Stadien
pflanzenschädigender Insekten.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH370585 | 1985-08-29 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3628864A1 true DE3628864A1 (de) | 1987-03-05 |
Family
ID=4261747
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19863628864 Withdrawn DE3628864A1 (de) | 1985-08-29 | 1986-08-26 | Benzoylphenylharnstoffe, ihre herstellung, zwischenprodukte zu ihrer herstellung und schaedlingsbekaempfungsmittel, welche diese verbindungen enthalten |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE3628864A1 (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0397601A1 (de) * | 1989-05-11 | 1990-11-14 | Ciba-Geigy Ag | Benzoylphenylharnstoffe |
-
1986
- 1986-08-26 DE DE19863628864 patent/DE3628864A1/de not_active Withdrawn
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0397601A1 (de) * | 1989-05-11 | 1990-11-14 | Ciba-Geigy Ag | Benzoylphenylharnstoffe |
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