DE19958198A1 - Mit dem IGF-1 Rezeptor wechselwirkende Proteine (IIPs) - Google Patents
Mit dem IGF-1 Rezeptor wechselwirkende Proteine (IIPs)Info
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein Nukleinsäuremolekül mit der in SEQ ID NO:5 dargestellten Sequenz und die Komplementärsequenz, sowie ihre Verwendung für diagnostische und therapeutische Zwecke. Dieses Nukleinsäuremolekül ist ein Gen, welches für ein an den IGF-1 Rezeptor bindendes Polypeptid (IIP-10) codiert.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft mit dem IGF-1 Rezeptor wechselwirkende
Proteine (IGF-1 receptor interacting proteins, IIPs), Nukleinsäuren, die für
diese Proteine codieren, deren Verwendung für diagnostische und
therapeutische Zwecke, insbesondere bei Krebserkrankungen. Inbesondere
betrifft die Erfindung die Diagnose solcher Gene in Säugerzellen,
insbesondere in bösartigen Tumorzellen, desweiteren Therapiemethoden zur
Inhibierung der Wechselwirkung zwischen dem IGF-1 Rezeptor und IIPs,
Verfahren zum Screenen für potentielle Krebstherapiemittel, sowie Zellinien
und Tiermodelle, die für das Screening und für die Auswertung potentiell
nützlicher pharmazeutischer Mittel, welche die Wechselwirkung zwischen
IIPs und dem IGF-1 Rezeptor hemmen, geeignet sind.
Die vorliegende Erfindung betrifft insbesondere die Klonierung und
Charakterisierung des Gens IIP-10 und dessen Genprodukte. Die
Genprodukte (Polypeptide, mRNA) sind insbesondere dadurch
gekennzeichnet, daß sie die Fähigkeit besitzen, die Signalübertragung durch
den IGF-1 Rezeptor modulieren zu können. Die Funktion dieser
erfindungsgemäßen Genprodukte ist somit die Modulierung der
Signaltransduktion durch den IGF-1 Rezeptor. Eine erzwungene Aktivierung
von IIPs korreliert somit mit erhöhter Tumorzellproliferation, Überleben
dieser Zellen und dem Nichteintreten der Apoptose.
Das IGF-1 Rezeptorsignalsystem spielt bei der Tumorproliferation und dem
Überleben von Tumoren eine wichtige Rolle. Möglicherweise ist es auch an
der Inhibierung der Tumorapoptose beteiligt. Zusätzlich und unabhängig von
ihren mitogenen Eigenschaften kann die IGF-1R-Aktivierung in vitro und in
vivo vor einem programmierten Zelltod schützen oder diesen zumindest
verzögern (Harrington et al., EMBO J. 13 (1994) 3286-3295; Sell et al.,
Cancer Res. 55 (1995) 303-305; Singleton et al., Cancer Res. 56 (1996)
4522-4529). Es wurde ebenfalls gezeigt, daß eine Abnahme der IGF-1 R-
Konzentration unterhalb der Wildtypkonzentrationen in vivo eine massive
Apoptose von Tumorzellen hervorruft (Resnicoff et al., Cancer Res. 55
(1995) 2463-2469; Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995) 3739-3741).
Die Überexpression entweder des Liganden (IGF) und/oder des Rezeptors ist
eine Eigenschaft von verschiedenen Tumorzellinien und kann in Tiermodellen
zur Tumorbildung führen. Eine Überexpression von humanem IGF-1R führte
zu einem ligandenabhängigen, ankerunabhängigen Wachstum von NIH3T3
oder Rat-1 Fibroblasten. Wurden nackte (engl. "nude") Mäuse mit diesen
Zellen inokuliert, erfolgte eine rasche Tumorbildung (Kaleko et al., Mol. Cell.
Biol. 10 (1990) 464-473; Prager et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91
(1994) 2181-2185). Transgene Mäuse, die IGF-11 spezifisch in den
Milchdrüsen überexprimieren, entwickeln Milchdrüsenadenokarzinome
(Bates et al., Br. J. Cancer 72 (1995) 1189-1193), und transgene Mäuse,
die IGF-II unter der Kontrolle eines allgemeineren Promotors
überexprimieren, entwickeln eine erhöhte Anzahl und ein weites Spektrum
von Tumorarten (Rogler et al., J. Biol. Chem. 269 (1994) 13779-13784).
Kleinzellenlungenkarzinome (Small Cell Lung Carcinomas) sind ein Beispiel
unter vielen für IGF-I oder IGF-II mit sehr hoher Frequenz ( < 80%)
überexprimierende humane Tumore (Quinn et al., J. Biol. Chem. 21 (1996)
11477-11483). Die Signalübertragung durch das IGF-System scheint
ebenfalls für die Transformierungsaktivität bestimmter Onkogene
erforderlich zu sein. Fötale Fibroblasten mit einem fehlerhaften IGF-1R-Gen
können nicht mit dem SV40 T-Antigen, aktiviertem Ha-ras, einer
Kombination von den beiden transformiert werden (Seil et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 90 (1993) 11217-11221; Sell et al., Mol. Cell. Biol. 14
(1994) 3604-3612), und auch das E5-Protein des Rinderpapillomavirus ist
nicht mehr transformierend (Morrione et al., J. Virol. 69 (1995) 5300-
5303). Es wurde gezeigt, daß eine Störung des IGF/IGF-1R-Systems auch
den transformierten Phenotyp umkehrt und Tumorwachstum hemmt (Trojan
et al., Science 259 (1993) 94-97; Kalebic et al., Cancer Res. 54 (1994)
5531-5534; Prager et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994) 2181-
2185; Resnikoff et al., Cancer Res. 54 (1994), 2218-2222; Resnicoff et al.,
Cancer Res. 54 (1994) 4848-4850; Resnicoff et al., Cancer Res. 55 (1995)
2463-2469). Beispielsweise entwickeln mit Prostataadenokarzinomzellen
aus der Ratte (PA-III) injizierte Mäuse, die mit Antisense cDNA (729 bp)
gegen IGF-1R transfiziert worden waren, 90% kleinere Tumoren als
Kontrolltiere, oder sie blieben auch nach 60 Tagen Beobachtung tumorfrei
(Burfeind et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 93 (1996) 7263-7268). Ein IGF-1R
vermittelter Apoptoseschutz ist unabhängig von der de novo-Genexpression
und Proteinsynthese. Somit übt der IGF-1 seine antiapoptotische Funktion
wahrscheinlich über die Aktivierung von bereits gebildeten cytosolischen
Mediatoren aus.
Einige an IGF-1R bindende Signalsubstrate wurden bereits beschrieben (z. B.
IRS-1, SHC, p85 Pl3 Kinase etc., siehe unten). Keiner dieser
Signalüberträger ist jedoch spezifisch für den IGF-1R und kann somit nicht
ausschließlich für die einzigartigen biologischen Eigenschaften des IGF-1R
im Vergleich mit anderen Rezeptortyrosinkinasen, einschließlich des
Insulinrezeptors, verantwortlich sein. Dies zeigt, daß spezifische
Zielsubstanzen des IGF-1R (oder zumindest der IGF-Rezeptorunterfamilie)
existieren könnten, welche das Überleben auslösen und der Apoptose
entgegenwirken und somit ausgezeichnete pharmazeutische Zielsubstanzen
für eine Antikrebstherapie wären.
Mit Hilfe des Hefen-Zweihybridensystems (yeast two-hybrid system) wurde
gezeigt, daß p85, die regulatorische Domäne der Phosphatidylinositol-3-
Kinase (Pl3K) mit dem IGF-1R wechselwirkt (Lamothe, B., et al., FEBS Lett.
373 (1995) 51-55; Tartare-Decker, S., et al., Endocrinology 137 (1996)
1019-1024). Man beobachtet jedoch auch eine Bindung von p85 an viele
andere Rezeptortyrosinkinasen fast aller Familien. Ein weiterer
Bindungspartner des IGF-1R, der mit Hilfe des Zwei-Hybridenscreenings
identifiziert wurde, ist SHC. SHC bindet auch andere Tyrosinkinasen, wie
etwa trk, met, EGF-R und den Insulinrezeptor (Tartare-Deckert, S., et al., J.
Biol. Chem. 270 (1995 23456-23460). Das Insulinrezeptorsubstrat 1 (IRS-
1) und das Insulinrezeptorsubstrat 2 (IRS-2) binden sowohl an den IGF-1R
als auch an den Insulinrezeptor (Tartare-Deckert, S., et al., J. Biol. Chem.
270 (1995) 23456-23460; He, W., et al., J. Biol. Chem. 271 (1996)
11641-11645; Dey, R. B., et al., Mol. Endocrinol. 10 (1996) 631-641). Grb
10, welches mit dem IGF-1R wechselwirkt, besitzt auch viele
Tyrosinkinasen als Bindepartner, z. B. met, Insulinrezeptor, kit und abl (Dey,
R. B., et al., Mol. Endocrinol. 10 (1996) 631-641; Morrione, A., et al.,
Cancer Res. 56 (1996) 3165-3167). Auch die Phosphatase PTP1D (syp)
zeigt eine starke Promiskuität in ihrer Bindungsfähigkeit, d. h. sie bindet an
IGF-1R, den Insulinrezeptor, met und andere (Rocchi, S., et al.,
Endocrinology 137 (1996) 4944-4952). Kürzlich wurden mSH2-B und vav
als Bindepartner des IGF-1R beschrieben, man beobachtet jedoch auch eine
Wechselwirkung mit anderen Tyrosinkinasen, z. B. bindet mSH2-B auch an
ret und den Insulinrezeptor (Wang, J. und Riedel, H., J. Biol. Chem. 273
(1998) 3136-3139). Insgesamt stellen die bisher beschriebenen IGF-1R-
Bindungsproteine relativ unspezifische Ziele für therapeutische Ansätze dar,
oder sie sind, wie z. B. im Fall von Insulinrezeptorsubstraten (IRS-1, IRS-2)
für Insulin-gesteuerte Aktivitäten unerläßlich.
Eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es, neue Gene bereitzustellen,
welche für Bindungsproteine des IGF-1R codieren, sowie die
entsprechenden Polypeptide bereitzustellen, welche die Basis für eine neue
Krebstherapie auf der Grundlage der Modulierung (bevorzugt der Inhibition)
der Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIPs gemäß der Erfindung bilden.
Die Erfindung umfaßt bevorzugt eine Nukleinsäure, die für ein Protein (IIP-
10) codiert, welches an den IGF-1 Rezeptor bindet, ausgewählt aus der
Gruppe umfassend
- a) die in SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuren oder eine dazu komplementäre Nukleinsäuresequenz,
- b) Nukleinsäuren, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus a) hybridisieren, die für ein Polypeptid codieren, welches mindestens 75% Homologie mit dem Polypeptid der SEQ ID NO:6 aufweist, oder
- c) Sequenzen, welche aufgrund der Degeneration des genetischen Codes für IIP-10 Polypeptide mit der Aminosäuresequenz der von den Sequenzen von a) und b) codierten Polypeptide codieren.
Die cDNA von IIP-10 codiert für ein neues Protein mit 226 Aminosäuren mit
einem berechneten Molekulargewicht von 25.697. IIP-10 ist ein lysinreiches
Protein (11%). IIP-10 enthält eine N-Glykosylierungsstelle, mehrere N-
Myristoylierungsstellen, Ck2- und PKC-Phosphorylierungsstellen, eine
Tyrosinkinasephosphorylierungsstelle und ein putatives
Kernlokalisierungssignal (Fig. 5). Die cDNA-Sequenz von IIP-10 zeigt 65%
Homologie mit der cDNA-Sequenz des Gallus Gallus Thymozytenproteins
cthy28kD (EMBL Datenbank, Zugriffsnummer GG34350). Die
Aminosäuresequenzen von 11P-10 und cthy28kD zeigen 70% Identität. Die
Nukleotidpositionen 383 bis 584 der IIP-10-cDNA sind zu 94% identisch mit
einer Teil-cDNA, die in WO 95/14772 beschrieben ist (human gene
signature HUMGS06271; Zugriffsnummer T24253). Mit einem
Immunofluoreszenz-Flag markiertes IIP-10 zeigt sowohl cytoplasmatische
Lokalisation als auch Kernlokalisation in NIH3T3-Zellen, welche den IGF-1
Rezeptor überexprimieren. Weitere Hefen-Zweihybriden-Analysen zeigten,
daß IIP-10 auf eine phosphorylierungsabhängige Weise mit dem IGF-1
Rezeptor wechselwirkt. IIP-10 bindet nicht an den Insulinrezeptor. Eine
Deletionsanalyse von IIP-10 zeigte, daß für eine Bindung an den (GF-1-
Rezeptor die Aminosäuren 19 bis 226 ausreichend sind.
"Wechselwirkung oder Bindung zwischen IIP-10 und (GF-1 Rezeptor"
bedeutet eine spezifische Bindung des IIP-10-Polypeptids an den IGF-1
Rezeptor, jedoch nicht an Kontrollproteine, wie etwa Lamin, im Hefen-
Zweihybriden-System. Eine spezifische Bindung an den IGF-1 Rezeptor kann
unter Verwendung von Glutathion-S-Transferase(GST)-IIP-Fusionsproteinen,
die in Bakterien exprimiert werden, und IGF-1 Rezeptoren, die in
Säugerzellen exprimiert werden, gezeigt werden. Des weiteren kann in
Säugerzellsytemen eine Bindung zwischen einem Flag-markierten IIP-10
Fusionsprotein (siehe Weidner, M; , et al., Nature 384 (1996) 173-176) und
dem IGF-1 Rezeptor überwacht werden. Zu diesem Zweck werden
eukaryontische Expressionsvektoren verwendet, um die jeweiligen cDNAs
zu transfizieren. Die Wechselwirkung zwischen den Proteinen wird durch
Coimmunopräzipitationsexperimente oder Studien zur subzellulären
Lokalisation unter Verwendung von Anti-Flag- oder Anti-IGF-1-Rezeptor-
Antikörpern sichtbar gemacht.
Weiterhin stellt die Erfindung Sonden und Primer für die erfindungsgemäßen
Gene, sowie Nukleinsäuren, welche für antigene Determinanten der
erfindungsgemäßen Genprodukte codieren, bereit. Daher umfassen
bevorzugte Ausführungsformen Nukleinsäuren mit bevorzugt 10 bis 50 oder
stärker bevorzugt 10 bis 20 aufeinanderfolgenden Nukleotiden einer der
offenbarten Sequenzen.
Der Ausdruck "Nukleinsäure"- bedeutet ein Polynukleotid, welches
beispielsweise eine DNA, RNA oder derivatisierte aktive DNA oder RNA sein
kann. DNA- und mRNA-Moleküle sind jedoch bevorzugt.
Der Ausdruck "unter stringenten Bedingungen hybridisieren" bedeutet, daß
zwei Nukleinsäurefragmente in der Lage sind, unter Standard-
Hybridisierungsbedingungen, die in Sambrook et al., Molecular Cloning: A
laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York,
USA beschrieben sind, miteinander zu hybridisieren.
Genauer ausgedrückt bedeutet "stringente Bedingungen", wie hierin
verwendet, eine Hybridisierung in 5,0 × SSC, 5 × Denhardt, 7% SDS, 0,5 M
Phosphatpuffer pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100µg/ml Lachsspermien-
DNA bei ungefähr 50°C bis 68°C, gefolgt von zwei Waschschritten mit 1 ×
SSC bei 68°C. Zusätzlich kann die Temperatur im Waschschritt von
Bedingungen geringer Stringenz bei Raumtemperatur, ungefähr 22°C, auf
Bedingungen hoher Stringenz bei ungefähr 68°C erhöht werden.
Die Erfindung umfaßt weiterhin rekombinante Expressionsvektoren, welche
für die Expression von IIP-10 geeignet sind und eine entsprechende codie
rende Sequenz enthalten, rekombinante Wirtszellen, die mit derartigen Ex
pressionsvektoren transfiziert sind, sowie ein Verfahren zur rekombinanten
Herstellung eines Proteins, welches von dem IIP-10-Gen codiert wird.
Die Erfindung umfaßt weiterhin synthetische und rekombinante Polypeptide,
welche von den erfindungsgemäßen Nukleinsäuren codiert werden, und
bevorzugt solche, die von der in SEQ ID NO:5 dargestellten DNA-Sequenz
codiert werden, sowie Peptidmimetika, die auf diesen Polypeptiden basieren.
Solche Peptidmimetika haben eine hohe Affinität für Zellmembranen und
werden von den Zellen rasch aufgenommen. Peptidmimetika sind bevorzugt
Verbindungen, die von Peptiden und Proteinen abgeleitet sind, und werden
durch strukturelle Modifizierung unter Verwendung von nicht natürlichen
Aminosäuren, Konformationsbeschränkungen, isosterische Stellung,
Zyklisierung usw. erhalten. Sie basieren bevorzugt auf 24 oder weniger,
bevorzugt 20 oder weniger Aminosäuren, wobei eine Basislänge von
ungefähr 12 Aminosäuren besonders bevorzugt ist.
Die Polypeptide und Peptidmimetika können durch ihre entsprechende DNA-
Sequenz und durch die davon abgeleitete Aminosäuresequenz definiert
werden. Das isolierte IIP-Polypeptid kann in natürlichen allelischen
Variationen auftreten, welche von Individuum zu Individuum verschieden
sind. Solche Variationen der Aminosäuren sind im allgemeinen
Aminosäuresubstitutionen. Sie können jedoch auch Deletionen, Insertionen
oder Additionen von Aminosäuren zu der Gesamtsequenz sein, die zu
biologisch aktiven Fragmenten führen. Das erfindungsgemäße IIP Protein
kann je nach Zelle und Zelltyp, in dem es exprimiert wird, sowohl bezüglich
des Ausmaßes und Typs in glykosylierter oder nicht-glykosylierter Form
vorliegen. Polypeptide mit tumorizider und/oder metastatischer Aktivität
können leicht durch einen Tumorprogressionsinhibitionsassay unter
Verwendung von Karzinomzellen, welche die Polypeptide exprimieren, und
durch Messen der Proliferationsfähigkeit und Apoptose in Bezug auf
Karzinomzellen, welche die Polypeptide nicht exprimieren, identifiziert
werden.
"Polypeptid mit IIP-10 Aktivität oder IIP-10" bezeichnet daher Proteine mit
kleineren Aminosäurevariationen, jedoch mit im wesentlichen derselben
Aktivität wie IIP-10. Im wesentlichen dieselbe bedeutet hier, daß die
Aktivitäten die gleichen biologischen Eigenschaften aufweisen, und daß die
Polypeptide in ihren Aminosäuresequenzen mindestens 75% Homologie
(Identität) mit IIP-10 zeigen. Besonders bevorzugt sind die
Aminosäuresequenzen mindestens 90% identisch. Homologie im Sinne der
Erfindung kann mit Hilfe von Computerprogrammen, wie etwa Gap oder
BestFit (University of Wisconsin; Needleman und Wunsch, J. Biol. Chem.
48 (1970) 443-453; Smith und Waterman, Adv. Appl. Math. 2 (1981)482-
489) bestimmt werden.
Weitere erfindungsgemäße IIPs, welche für die Erfindung geeignet sind, sind
insbesondere:
Es wurde eine cDNA isoliert, die für ein mit dem IGF-1 Rezeptor
wechselwirkendes Protein codierte, welches IIP-1 genannt wurde (SEQ ID
NO:1). Die cDNA von IIP-1 codiert für ein neues Protein von 333
Aminosäuren Länge mit einem berechneten Molekulargewicht von 35.727.
IIP-1 ist glycinreiches Protein (13%). IIP-1 enthält mehrere N-
Myristoylierungsstellen, PKC- und Ck2-Phosphorylierungsstellen und zwei
putative Kernlokalisationssignale. Eine zweite Isoform, IIP-1 (p26) mit 236
Aminosäuren Länge und mit einem berechneten Molekulargewicht von
26.071 wurde ebenfalls identifiziert. Dieses Produkt wurde wahrscheinlich
durch alternatives Spleißen (Fig. 3) erzeugt. Beide Isoformen binden an den
IGF-1 Rezeptor.
Es wurden bereits cDNA-Sequenzen von IIP-1 veröffentlicht (EMBL
Datenbank Zugriffsnummern AF089818 und AF061263; DeVries, L., et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95 (1998) 12340-12345). Es wurden zwei
überlappende cDNA-Klone (Fig. 4) identifiziert, welche mit einer partiellen
TIP-2-cDNA (Genbank Zugriffsnummer AF028824) (Rousset, R., et al.,
Oncogene 16 (1998) 643-654) starke Homologie zeigten und als IIP-1a und
IIP-1b bezeichnet wurden. Die IIP-1a-cDNA entspricht den
Nukleotidpositionen 117 bis 751 von TIP-2. Die IIP-1b-cDNA zeigt neben
TIP-2-Sequenzen (Nukleotidposition 1 bis 106) zusätzliche 5'-Sequenzen,
welche zu der Sequenz Y2H35 in WO 97/27296 (Nukleotide (nt) 25 bis
158) homolog sind.
IIP-1a und IIP-1b weisen beide die Sequenz auf, welche für die PDZ-Domäne
von TIP-2 codiert (Nukleotide 156 bis 410), welche bekanntlich eine
Domäne für eine Protein-Protein-Wechselwirkung ist (Ponting, C. D., et al.,
BioEssays 19 (1997) 469-479). Die PDZ-Domäne wurde mit Hilfe von
Deletionsanalysen als die essentielle und ausreichende IGF-1
Rezeptorbindungsdomäne von IIP-1 identifiziert (Fig. 4).
Weitere Hefen-Zweihybriden-Analysen offenbarten, daß die Bindung von IIP-
1-Protein an den IGF-1 Rezeptor spezifisch für diese Rezeptortyrosinkinase
ist. Man beobachtete keine Wechselwirkung mit dem Insulinrezeptor oder
Ros. Rezeptortyrosinkinasen anderer Familien binden nicht an IIP-1 (z. B.
Met, Ret, Kit, Fms, Neu, EGF-Rezeptor). Somit ist IIP-1
höchstwahrscheinlich das erste Bindungsprotein, für welches gezeigt
wurde, daß es für die IGF-1-Rezeptortyrosinkinase spezifisch ist. IIP-1 bindet
ebenfalls an die kinaseinaktive Mutante des IGF-1 Rezeptors.
IIP-2 wurde als neues Bindungsprotein für den cytoplasmatischen Teil des
IGF-1 Rezeptors identifiziert, welches dem humanen APS entspricht (EMBL
Zugriffsnummer: HSAB520). APS war zuvor in einem Hefen-Zweihybriden-
Screen-Experiment isoliert worden, wobei die onkogene c-kit-Kinasedomäne
als Köder verwendet wurde (Yokouchi, M., et al., Oncogene 15 (1998) 7-
15). IIP-2 bindet an den IGF-1 Rezeptor auf kinaseabhängige Art und Weise.
Es wurde ebenfalls eine Bindung von IIP-2 an andere Mitglieder der
Insulinrezeptorfamilie beobachtet (Insulinrezeptor, Ros), aber nicht an eine
nicht verwandte Rezeptortyrosinkinase (Met). Die Region von IIP-2, von der
sich herausstellte, daß sie mit dem IGF-1 Rezeptor wechselwirkt, entspricht
dem humanen APS (Nukleotide 1126 bis 1674, EMBL Zugriffsnummer
AB000520) und enthält die SH2-Domäne von APS (Nukleotide 1249 bis
1545).
IIP-3 wurde als neues an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein isoliert und
ist mit PSM identisch (GenBank Zugriffsnummer AF020526). PSM ist als
Signaltransduktionsprotein bekannt, welches PH-und SH2-Domänen enthält
und welches an den aktivierten Insulinrezeptor bindet (Riedel, Hl., et al.,
Biochem. 122 (1997) 1105-1113). Es wurde ebenfalls eine Variante von
PSM beschrieben (Riedel, H., et al., J. Biochem. 122 (1997) 1105-1113).
Die Bindung von IIP-3 an den IGF-1 Rezeptor ist abhängig von einer
Tyrosylphosphorylierung des Rezeptors.
Es wurde ein den Nukleotiden 1862 bis 2184 der Variante von PSM
entsprechender cDNA-Klon identifiziert. Es stellte sich heraus, daß der
isolierte cDNA-Klon für die IGF-1-Rezeptorbindungsregion codiert. Die
Sequenz des isolierten cDNA-Teilklons von IIP-3 codiert für die SH2-Domäne
von PSM (Nukleotide 1864 bis 2148, EMBL Zugriffsnummer AF020526).
IIP-4 wurde als neues mit der cytoplasmatischen Domäne des IGF-1
Rezeptors wechselwirkendes Protein isoliert. IIP-4 entspricht p59fyn, einer
src-artigen Tyrosinkinase (EMBL Zugriffsnummer MMU70324 und humanes
fyn EM_HUM1:HS66H14) (Cooke, M. P., und Permutter, R. M., New Biol. 1
(1989) 66-74). IIP-4 bindet auf kinaseabhängige Weise an den IGF-1
Rezeptor und an mehrere weitere Rezeptortyrosinkinasen, wie auch an den
Insulinrezeptor und Met. Die an den IGF-1 Rezeptor (Nukleotide 665-1044)
bindende Region von IIP-4 enthält die SH2-Domäne von p59fyn (EMBL
Zugriffsnummer U70324).
IIP-5 wurde als neues an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein isoliert. IIP-5
zeigt eine starke Homologie mit dem Zinkfingerprotein Zfp38 (EMBL
Zugriffsnummer MMZFPTA) und ist mindestens 80% homolog zu dem
entsprechenden humanen Gen. Zfp-38 ist als Transkriptionsfaktor bekannt
(Chowdhury, K., et al., Mech. Dev. 39 (1992) 129-142). IIP-5 bindet
ausschließlich an den aktivierten und phosphorylierten IGF-1-Rezeptor,
jedoch nicht an eine kinaseinaktive Mutante. Zusätzlich zur Bindung von IIP-
5 an den IGF-1 Rezeptor beobachtete man eine Wechselwirkung von IIP-5
mit Rezeptortyrosinkinasen der Insulinrezeptorfamilie (Insulinrezeptor, Ros).
IIP-5 bindet nicht an die entfernter verwandte Rezeptortyrosinkinase Met.
Es wurde ein cDNA-Klon isoliert, welcher an den IGF-1 Rezeptor bindet und
der für Nukleotide 756 bis 1194 von Zfp38 codiert (EMBL Zugriffsnummer
MMZFPTA) und welcher den ersten Zinkfinger (Nukleotide 1075 bis 1158)
enthält. Diese Domäne ist ausreichend für eine Bindung an den aktivierten
IGF-1 Rezeptor.
IIP-6 wurde als neues an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein identifiziert.
IIP-6 zeigt eine schwache Ähnlichkeit mit der Zinkfinger-Domäne von Zfp29
(EMBL Zugriffsnummer MMZFP29). Zfp29 besteht aus einer N-terminalen
Transkriptionsaktivierungs-Domäne und 14 C-terminalen Cys2His2-
Zinkfingern (Denny, P., und Ashworth, A., Gene 106 (1991) 221-227). Die
Bindung von IIP-6 an den IGF-1 Rezeptor hängt von der Phosphorylierung
der IGF-1 Rezeptorkinase ab. IIP-6 bindet ebenfalls an den Insulinrezeptor,
jedoch nicht an Met. Die Region von IIP-6, welche an den IGF-1 Rezeptor
bindet (SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:4), enthält zwei Zinkfingerdomänen des
Typs Cys2His2.
IIP-7 wurde als neues an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein isoliert,
welches Pax-3 entspricht (EMBL Zugriffsnummer MMPAX3R und humanes
Pax3 EM-HUM2:S69369). Pax-3 ist als DNA-bindendes Protein bekannt und
wird während der frühen Embryogenese exprimiert (Goulding, M. D., et al.,
EMBO J. 10 (1991) 1135-1147). IIP-7 bindet auf
phosphorylierungsabhängige Weise an den IGF-1 Rezeptor. IIP-7 bindet
ebenfalls an den Insulinrezeptor und an Met. Ein Teilklon der IIP-7-cDNA
codiert für die IGF-1 Rezeptorbindungsdomäne von Pax3 (Nukleotide 815
bis 1199, EMBL Zugriffsnummer MMPAX3R). Diese Region enthält das
Octapeptid für die gepaarte Domäne von Pax3 (Pax3 paired domain)
(Nukleotide 853 bis 876) und die Homöodomäne des gepaarten Typs
(paired-type homeo domain) (Nukleotide 952 bis 1134).
IIP-8 codiert für die vollständige cDNA von Grb7 (EMBL Zugriffsnummer
MMGRB7P, humanes Grb7 EM_HUM1:AB008789). Grb7, ein eine PH-
Domäne und eine SH3-Domäne enthaltendes Signaltransduktionsprotein
wurde zuerst als EGF-Rezeptor bindendes Protein veröffentlicht (Margolis,
B. L., et al., Proc. Natl. Acad. Aci. USA 89 (1992) 8894-8898). IIP-8 bindet
nicht an die kinaseinaktive Mutante des IGF-1 Rezeptors. Es wurde auch
eine Bindung von IIP-8 an mehrere weitere Rezeptortyrosinkinasen (z. B. den
Insulinrezeptor, Ros und Met) beobachtet.
IIP-9 wurde als neues an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein identifiziert.
IIP-9 ist identisch mit nck-beta (EMBL Zugriffsnummer AF043260). Nck ist
ein cytoplasmatisches Signaltransduktionsprotein, welches aus SH2- und
SH3-Domänen besteht (Lehmann, J. M., et al., Nucleic Acids Res. 18 (1990)
1048). Die Bindung von IIP-9 an den IGF-1 Rezeptor ist
phosphorylierungsabhängig. Nck bindet an die membranangrenzende Region
des IGF-1 Rezeptors. Außer der Bindung von IIP-9 an den IGF-1 Rezeptor
beobachtete man eine Bindung an den Insulinrezeptor, aber nicht an Ros
oder Met.
Eine bevorzugte Ausführungsform der Erfindung sind Polypeptide, welche
mit den Polypeptiden der SEQ ID N0:6 (IIP-10) homolog, und stärker
bevorzugt im wesentlichen identisch sind. Die Homologie kann unter
Verwendung des von Pearson, W. R., Methods in Enzymology 183 (1990)
63-68, Academic Press, San Diego, US beschriebenen FastA-Algorithmus
untersucht werden. "Im wesentlichen identisch" bedeutet, daß die
Aminosäuresequenz sich nur durch konservative Aminosäuresubstitutionen
unterscheidet, beispielsweise durch Substitutionen einer Aminosäure für
eine andere derselben Klasse (z. B. Valin für Glycin, Arginin für Lysin etc.),
oder daß sie sich durch eine oder mehrere nicht-konservative
Aminosäuresubstitutionen, Deletionen oder Insertionen unterscheidet, die
sich an Positionen der Aminosäuresequenz befinden, welche die biologische
Funktion des Polypeptids nicht zerstören. Dies umfaßt eine Substitution von
alternativen kovalenten Peptidbindungen im Polypeptid. "Polypeptid"
bedeutet eine Kette von Aminosäuren, wobei die Länge oder die
posttranslationale Modifikation (z. B. Glykosylierung oder Phosphorylierung)
nicht ausschlaggebend sind, und kann auch durch den Begriff "Protein"
ausgetauscht werden.
Erfindungsgemäß bedeutet ein "biologisches aktives Fragment" ein
Fragment, welches die physiologische Wirkung des vollständigen natürlich
vorkommenden Proteins ausüben kann (beispielsweise die Bindung an sein
biologisches Substrat, Verursachen einer Antigenantwort usw.).
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Fragmente des
erfin ngsgemäßen Polypeptids, welche antigen sind. Der Ausdruck
"antigen", wie er hierin verwendet wird, bezeichnet Fragmente des Proteins,
welche eine spezifische immunogene Antwort auslösen können, z. B. eine
Immunantwort, welche Antikörper hervorruft, die spezifisch an das
erfindungsgemäße Protein binden. Die Fragmente sind bevorzugt mindestens
8 Aminosäuren lang, bevorzugt bis zu 25 Aminosäuren. In einer
bevorzugten Ausführungsform umfassen die Fragmente die Domäne, welche
für die Bindung der IIPs an den IGF-1 Rezeptor verantwortlich ist (d. h. die
PDZ-Domäne von IIP-1). "Domäne" bedeutet die Region von Aminosäuren
in einem Protein, welche direkt an der Bindung mit seinem Bindepartner
beteiligt ist. PDZ-Domänen sind Repeats mit ungefähr 90 Resten und finden
sich in einer Anzahl von Proteinen, die möglicherweise in Ionen-, Tunnel-
und Rezeptor-Clustering und bei der Bindung von Rezeptoren an
Effektorenzyme eine Rolle spielen. Solche PDZ sind allgemein in Cabral,
J. H., et al., Nature 382(1996) 649-652 beschrieben.
Die Erfindung umfaßt weiterhin ein Verfahren zur Herstellung eines
erfindungsgemäßen Proteins, dessen Expression oder Aktivierung mit der
Tumorproliferation korreliert, wobei eine exogene DNA in prokaryontischen
oder eukaryontischen Wirtszellen exprimiert wird und das gewünschte
Protein isoliert wird, oder indem die exogene DNA in vivo für
pharmazeutische Mittel exprimiert wird, wobei das Protein bevorzugt von
einer DNA-Sequenz, die für IIP-10 codiert, codiert wird. Bevorzugt handelt
es sich dabei um die in SEQ ID NO:5 dargestellte DNA-Sequenz.
Die erfindungsgemäßen Polypeptide können auch auf rekombinante Art und
Weise oder synthetisch hergestellt werden. Ein nicht-glykosyliertes IIP-10-
Polypeptid wird erhalten, wenn es rekombinant in Prokaryonten erzeugt
wird. Mit Hilfe der durch die Erfindung bereitgestellten
Nukleinsäuresequenzen ist es möglich, in Genomen jedweder gewünschten
Zelle nach dem IIP-10-Gen oder seinen Varianten zu suchen (z. B. außer in
humanen Zellen auch in Zellen anderer Säugetiere), um diese zu
identifizieren und das erwünschte für das IIP-10-Protein codierende Gen zu
isolieren. Solche Verfahren und geeignete Hybridisierungsbedingungen
(siehe oben, "stringente Bedingungen") sind dem Fachmann auf dem Gebiet
bekannt und beispielsweise bei Sambrook et al., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual (1989) cold Spring Harbor Laboratory Press, new York,
USA und bei Hames, B. D., Higgins, S. G., Nucleic acid hybridisation - a
practical approach (1985) IRL Press, Oxford, England beschrieben. In
diesem Fall werden im allgemeinen für die Experimente die in diesen
Publikationen beschriebenen Standardprotokolle verwendet.
Die Verwendung gentechnologischer Methoden ermöglicht die Herstellung
von vielen aktiven IIP-10-Derivaten. Solche Derivate können beispielsweise
an einzelnen oder mehreren Aminosäuren modifiziert sein, beispielsweise
durch Substitution, Deletion oder Addition. Die Derivatisierung kann
beispielsweise mit Hilfe von ortsspezifischer Mutagenese durchgeführt
werden. Solche Variationen können vom Fachmann auf dem Gebiet leicht
durchgeführt werden (J. Sambrook, B. D. Hames, supra). Es muß lediglich
mit Hilfe des unten erwähnten Inhibitionsassays für Tumorzellwachstum
sichergestellt werden, daß die charakteristischen Eigenschaften von IIP-10
erhalten bleiben.
Mit Hilfe solcher für ein IIP-10 Protein codierende Nukleinsäuren kann das
erfindungsgemäße Protein auf reproduzierbare Art und Weise und in großen
Mengen erhalten werden. Für die Expression in prokaryontischen oder
eukaryontischen Organismen, wie etwa prokaryontischen Wirtszellen oder
eukaryontischen Wirtszellen, wird die Nukleinsäure in geeignete
Expressionsvektoren integriert, wobei der Fachmann auf dem Gebiet mit
solchen Methoden vertraut ist. Ein solches Expressionsvektor enthält
bevorzugt einen regulierbaren/induzierbaren Promotor. Diese rekombinanten
Vektoren werden dann für die Expression in geeignete Wirtszellen
eingebracht, beispielsweise E.coli als prokaryontische Wirtszelle oder
Saccharomyces cerevisiae, die Teratokarzinomzellinie PA-1 sc 9117 (Büttner
et al., Mol. Cell. Biol. 11 (1991) 3573-3583), Insektenzellen, CHO- oder
COS-Zellen als eukaryontische Wirtszellen. Die transformierten oder
transduzierten Wirtszellen werden unter Bedingungen kultiviert, welche die
Expression des heterologen Gens erlauben. Die Isolierung des Proteins aus
der Wirtszelle oder aus dem Kulturüberstand der Wirtszelle kann nach
bekannten Verfahren durchgeführt werden. Solche Verfahren sind
beispielsweise bei Ausubel I., Frederick M., Current Protocols in Molecular
Biology (1992), John Wiley and Sons, New York beschrieben. Es kann auch
eine in vitro-Reaktivierung des Proteins notwendig sein, wenn es sich in der
Zellkultur nicht in löslicher Form befindet.
Die Erfindung betrifft daher auch ein IIP-Polypeptid, welches das Produkt
einer prokaryontischen oder eukaryontischen Expression einer exogenen
DNA ist.
Das Protein kann aus den Zellen oder dem Kulturüberstand isoliert werden
und mit Hilfe von chromatographischen Verfahren, bevorzugt durch
Ionenaustauschchromatographie, Affinitätschromatographie und/oder
Reverse-Phase-HPLC aufgereinigt werden.
IIP-10 kann nach der rekombinanten Produktion mit Hilfe von
Affinitätschromatographie unter Verwendung von bekannten Protein-
Aufreinigungs-Techniken, einschließlich Immunopräzipitation, Gelfiltration,
Ionenaustauschchromatographie, Chromatofokussierung, isoelektrischer
Fokussierung, selektiver Präzipitation, Elektrophorese oder dgl. erhalten
werden.
Die Erfindung umfaßt weiterhin ein Verfahren für die Detektion eines für ein
IIP-Gen codierenden Nukleinsäuremoleküls, umfassend Inkubieren einer
Probe (beispielsweise Körperflüssigkeiten, wie etwa Blut, Zellysate) mit
einem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül und Bestimmen der
Hybridisierung des Nukleinsäuremoleküls mit einem Zielnukleinsäuremolekül
unter stringenten Bedingungen zur Bestimmung des Vorhandenseins eines
Nukleinsäuremoleküls, welches das IIP-Gen ist. Somit betrifft die Erfindung
ein Verfahren zur Identifizierung der IGF-1R-Aktivierung oder -Inhibition in
Säugerzellen oder Körperflüssigkeiten.
Daher umfaßt die Erfindung ebenfalls ein Verfahren für die Detektion des
Proliferationspotentials einer Tumorzelle, umfassend
- a) Inkubieren einer Probe einer Körperflüssigkeit eines Patienten, der
unter Krebs leidet, einer Probe von Krebszellen oder einer Probe eines
Zellextrakts oder eines Zellkulturüberstands der Krebszellen, worin die
Probe Nukleinsäuren enthält, mit einer Nukleinsäuresonde, die
ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus
- a) die in SEQ ID NO: 1, 3 oder 5 dargestellten Nukleinsäuren oder dazu komplementären Nukleinsäuren und
- b) Nukleinsäuren, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus (i) hybridisieren und
- b) Detektieren der Hybridisierung mit Hilfe eines weiteren Bindungspartners der Nukleinsäure der Probe und/oder der Nukleinsäuresonde oder mit Hilfe von Röntgen-Radiographie.
Die Hybridisierung zwischen der Sonde und Nukleinsäuren aus der Probe
zeigt das Vorhandensein der RNA solcher Proteine an. Solche Verfahren
sind dem Fachmann bekannt und sind beispielsweise in WO 89/06698, EP-
A 0 200 362, USP 2915082, EP-A 0 063 879, EP-A 0 173 251, EP-A 0
128 018 beschrieben.
In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird die codierende
Nukleinsäure der Probe vor dem Test amplifiziert, beispielsweise mit Hilfe
der bekannten PCR-Technik. Im allgemeinen wird im Rahmen der
Nukleinsäurediagnostik eine derivatisierte (markierte) Nukleinsäuresonde
verwendet. Diese Sonde wird mit einer denaturierten DNA oder RNA aus der
Probe, welche an einen Träger gebunden ist, in Kontakt gebracht, und es
werden die Temperatur, die Ionenstärke, der pH-Wert und andere Puffer-
Bedingungen in diesem Verfahren so ausgewählt - je nach der Länge und
Zusammensetzung der Nukleinsäuresonde und der resultierenden
Schmelztemperatur des erwarteten Hybrids - daß die markierte DNA oder
RNA an die homologe DNA oder RNA binden kann (zur Hybridisierung siehe
auch Wahl, G. M., et al., Proc. Natl. Acad. Aci. USA 76 (19791 3683-3687).
Geeignete Träger sind Membranen oder Trägermaterialien auf
Nitrocellulosebasis (z. B. Schleicher und Schüll, BA 85, Amersham Hybond,
C.), verstärkte oder gebundene Nitrocellulose in Pulverform oder
Nylonmembranen, die mit verschiedenen funktionellen Gruppen derivatisiert
sind (z. B. Nitrogruppen) (z.B Schleicher und Schüll, Nytran; NEN, Gene
Screen; Amersham Hybond M.; Pall Biodyne).
Die Hybridisierung von DNA oder RNA wird dann durch Inkubieren des
Trägers mit einem Antikörper oder einem Antikörperfragment detektiert,
nachdem zuvor ausgiebig gewaschen und gesättigt wurde, um
unspezifische Bindungen zu vermeiden.
Der Antikörper oder das Antikörperfragment ist gegen die Substanz
gerichtet, die während der Derivatisierung in die Nukleinsäuresonde
eingebracht wurde. Der Antikörper ist ebenfalls wiederum markiert. Es ist
jedoch auch möglich, eine direkt markierte DNA zu verwenden. Nach der
Inkubation mit den Antikörpern werden wieder Waschschritte
vorgenommen, um lediglich spezifisch gebundene Antikörperkonjugate zu
detektieren. Die Bestimmung wird dann nach bekannten Verfahren mit Hilfe
der Markierung auf dem Antikörper oder dem Antikörperfragment
durchgeführt.
Die Detektion der Expression kann beispielsweise wie folgt durchgeführt
werden:
- - in situ-Hybridisierung mit fixierten ganzen Zellen, mit fixierten Gewebeabstrichen und isolierten Metaphasechromosomen,
- - Koloniehybridisierung (Zellen) und Plaquehybridisierung (Phagen und Viren),
- - Southern-Hybridisierung (DNA-Detektion),
- - Northern-Hybridisierung (RNA-Detektion),
- - Serumanalyse (z. B. Zelltypanalyse von Zellen im Serum durch Slot- Blot-Analyse),
- - nach der Amplifikation (z. B. PCR-Technik).
Die Nukleinsäuresonde wird bevorzugt mit der Nukleinsäure der Probe
inkubiert, und die Hybridisierung wird gegebenenfalls mit Hilfe eines
weiteren Bindungspartners für die Nukleinsäure in der Probe und/oder die
Nukleinsäuresonde detektiert.
Die Nukleinsäuren gemäß der vorliegenden Erfindung sind somit wertvolle
prognostische Marker bei der Diagnose des metastatischen und
Progressionspotentials von Tumorzellen eines Patienten.
Gemäß der Erfindung können Antagonisten von IIP-10 oder Inhibitoren der
Expression von IIP (z. B. Antisense-Nukleinsäuren) verwendet werden, um
die Tumorprogression zu hemmen und um massive Apoptose von
Tumorzellen in vivo zu verursachen, bevorzugt mit Hilfe von somatischer
Gentherapie.
Daher betrifft die vorliegende Erfindung auch Verfahren zum Screenen für
potentielle Therapeutika für Krebs, Diabetes, neurodegenerative
Krankheiten, Knochenkrankheiten. Sie betrifft auch Verfahren für die
Behandlung von Krankheiten, sowie Zellinien und Tiermodelle, die für das
Screenen und die Beurteilung von potentiell nützlichen Therapien solcher
Krankheiten geeignet sind. Es war daher eine weitere Aufgabe der
Erfindung, Verfahren zur Identifizierung von Verbindungen bereitzustellen,
welche bei der Behandlung der erwähnten Krankheiten und verwandten
Krankheiten von Nutzen sind. Diese Verfahren umfassen Verfahren zur
Modulierung der Expression der erfindungsgemäßen Polypeptide, Verfahren
zur Identifizierung von Verbindungen, welche selektiv an die
erfindungsgemäßen Proteine binden können, und Verfahren zur
Identifizierung von Verbindungen, welche die Aktivität der Polypeptide
modulieren können. Diese Verfahren können in vitro und in vivo
durchgeführt werden und können die erfindungsgemäßen transformierten
Zellinien und transgenen Tiermodelle zum Einsatz kommen lassen.
Ein Antagonist von IIPs oder ein Inhibitor von IIP wird als Substanz oder
Verbindung definiert, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIP,
bevorzugt IIP-10, hemmt. Daher nimmt die biologische Aktivität des IGF-1R
in Gegenwart einer solchen Verbindung ab. Im allgemeinen beinhalten
Screeningverfahren für IIP-Antagonisten das Inkontaktbringen von
möglichen Substanzen mit IIP-enthaltenden Wirtszellen unter eine Bindung
begünstigenden Bedingungen, und Messen des Ausmaßes der abnehmenden
Rezeptor-vermittelten Signalübertragung (im Fall eines Antagonisten). Ein
solcher Antagonist ist als pharmazeutisches Mittel für den Einsatz in der
Tumortherapie geeignet. Für die Behandlung von Diabetes, neuronalen
Krankheiten oder Knochenkrankheiten ist eine Stimulierung des
Signalübertragungsweges erforderlich, d. h. das Screening für Agonisten ist
hier nützlich.
Die IIP-Aktivierung kann auf verschiedene Art und Weise gemessen werden.
Im allgemeinen zeigt sich die Aktivierung durch eine Veränderung in der
Zellphysiologie, beispielsweise durch eine Zunahme oder Abnahme der
Wachstumsrate oder durch eine Veränderung im Differenzierungsstadium
oder durch eine Veränderung des Zellmetabolismus, welcher mit Standard-
Zell-Assays, z. B. MTT- oder XTT-Assays (Roche Diagnostics GmbH, DE)
detektiert werden kann.
Die erfindungsgemäßen Nukleinsäuren und Proteine könnten daher zur
Identifizierung und Entwicklung von Arzneimitteln verwendet werden,
welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und IIPs stören.
Beispielsweise könnte ein Mittel, welches an eines der Proteine bindet,
bevorzugt dieses Protein binden, anstatt eine Bindung mit seinem
natürlichen Bindepartner zu erlauben. Jedes Mittel, welches an den IGF-1
Rezeptor binden kann und daher die Bindung eines IIPs verhindern kann,
oder umgekehrt an ein IIP bindet und dadurch die Bindung an den IGF-1
Rezeptor verhindern kann, wäre denkbar. In beiden Fällen würde eine
Signaltransduktion des IGF-1 Rezeptorsystems moduliert (bevorzugt
inhibiert). Das Screening für Substanzen mit dieser Fähigkeit geschieht
durch Aufstellen eines Kompetitionsassays (Assay ist Standard im Stand der
Technik) zwischen der Testverbindung und der Wechselwirkung mit IIP und
dem IGF-1 Rezeptor unter Verwendung von aufgereinigtem Protein oder
Fragmenten mit denselben Eigenschaften wie die Bindungspartner.
Das erfindungsgemäße Protein ist geeignet für die Verwendung in einem
Assayverfahren zur Identifizierung von Verbindungen, welche die Aktivität
der erfindungsgemäßen Proteine modulieren. Die hier beschriebene
Modulierung der Aktivität umfaßt die Inhibition oder Aktivierung des
Proteins und umfaßt die direkte oder indirekte Beeinflussung der normalen
Regulierung der Proteinaktivität. Verbindungen, welche die Proteinaktivität
modulieren, umfassen Agonisten, Antagonisten und Verbindungen, welche
einen direkten oder indirekten Einfluß auf die Regulierung der Aktivität des
erfindungsgemäßen Proteins ausüben. Das erfindungsgemäße Protein kann
sowohl aus nativen und rekombinanten Quellen zur Verwendung in einem
Assay-Verfahren zur Identifizierung von Modulatoren erhalten werden. Im
allgemeinen enthält ein Assay-Verfahren zur Identifizierung von Modulatoren
den IGF-Rezeptor, ein Protein der vorliegenden Erfindung und eine
Testverbindung oder eine Probe, welche einen putativen Modulator der
besagten Proteinaktivität enthält. Die Testverbindungen oder Proben können
direkt auf beispielsweise aufgereinigtem erfindungsgemäßen Protein
getestet werden, wobei es gleich ist, ob dieses nativ oder rekombinant ist.
Weiterhin können sie auf subzellulären Fraktionen von Zellen, welches das
Protein, welches wiederum nativ oder rekombinant sein kann, produzieren,
und/oder auf ganzen Zellen, die das Protein in nativer oder rekombinanter
Form exprimieren, getestet werden. Die Testverbindung oder die Probe kann
dem erfindungsgemäßen Protein in Gegenwart oder Abwesenheit von
bekannten Modulatoren des Proteins zugefügt werden. Die
Modulierungsaktivität der Testverbindung oder der Probe kann
beispielsweise durch Analyse der Fähigkeit der Testverbindung oder der
Probe, an das Protein zu binden, das Protein zu aktivieren, seine Aktivität
zu inhibieren, die Bindung von anderen Verbindungen an das Protein zu
inhibieren oder zu verstärken, die Rezeptorregulierung zu modifizieren oder
die intrazelluläre Aktivität zu modifizieren, bestimmt werden.
Die Identifizierung von Modulatoren der Proteinaktivität ist nützlich für die
Behandlung von Krankheitszuständen, bei denen die Proteinaktivität eine
Rolle spielt. Weitere Verbindungen können zur Stimulierung oder Inhibition
der Aktivität des erfindungsgemäßen Proteins nützlich sein. Solche
Verbindungen könnten für die Behandlung von Krankheiten eingesetzt
werden, bei denen die Aktivierung oder Inaktivierung des
erfindungsgemäßen Proteins zu einer Zellproliferation, Zelltod,
Nichtproliferation, Induktion von zellulären neoplastischen Transformationen
oder metastatischem Tumorwachstum führt, und könnten somit für die
Prävention und/oder Behandlung von Krebskrankheiten, wie etwa z. B.
Prostata- und Brustkrebs, verwendet werden. Die Isolierung und
Aufreinigung eines für das erfindungsgemäße Protein codierenden DNA-
Moleküls wäre geeignet zur Bestimmung der Gewebeverteilung der Proteine,
sowie für die Entwicklung eines Verfahrens zur Identifizierung von
Verbindungen, welche die Aktivität des Proteins und/oder seine Expression
modulieren.
Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist daher ein Verfahren zum
Screenen einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R
und einem der Polypeptide IIP-1 bis IIP-10 inhibiert, umfassend
- a) Inkontaktbringen von IGF-1R und einem der IIP-Polypeptide mit einer Lösung, die eine in Frage kommende Verbindung enthält, so daß der IGF-1R und das IIP-Polypeptid in der Lage sind, einen Komplex zu bilden, und
- b) Bestimmen der Menge an Komplexen in Bezug auf das vorbestimmte Ausmaß an Bindung in Abwesenheit der in Frage kommenden Verbindung und daraus Bewerten der Fähigkeit der in Frage kommenden Verbindung, die Bindung zwischen dem IGF-1R und dem IIP-Polypeptid zu hemmen.
Ein solcher Screening-Assay wird bevorzugt als ELISA-Assay durchgeführt,
wobei der IGF-1R oder das IIP-Polypeptid an eine feste Phase gebunden
sind.
Eine weitere Ausführung der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren
zur Herstellung eines therapeutischen Mittels zur Behandlung von
Karzinomen in einem Patienten, umfassend Kombinieren einer therapeutisch
wirksamen Menge einer Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen
IGF-1R und IIP in biochemischen und/oder zellulären Assays mindestens bis
zu 50% inhibiert. Biochemische Assays basieren bevorzugt auf ELISA-
Assays oder homogenen Assays. Im Falle des ELISA-Systems werden zur
Detektion der Komplexe Antikörper verwendet, die spezifisch für die beiden
Bindungspartner sind. Im Falle des homogenen Assays wird mindestens ein
Bindungspartner mit Fluorophoren markiert, wodurch die Analyse der
Komplexe ermöglicht wird. Zelluläre Assays sind bevorzugt Tests, in denen
Tumorzellen oder mit den Expressionskonstrukten des IGF-1R und der
jeweiligen Bindungsproteine transfiziert wurden, mit oder ohne Substanzen
behandelt werden und die Komplexbildung zwischen den beiden
Komponenten unter Verwendung von Standard-Zellassays analysiert wird.
Eine bevorzugte Ausführungsform der Erfindung ist ein Verfahren zur
Herstellung eines therapeutischen Mittels zur Behandlung von Karzinomen
in einem Patienten, umfassend Inkontaktbringen eines pharmazeutisch
annehmbaren Trägers mit einer therapeutisch wirksamen Menge einer
Verbindung, welche die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und einem der
IIPs 1 bis 10 in einem zellulären Assay inhibiert, wobei in dem zellulären
Assay Tumorzellen oder mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und der
jeweiligen IIPs transfizierte Zellen mit der Verbindung behandelt werden und
die Komplexbildung zwischen IGF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert wird,
und das Ausmaß der Komplexbildung im Fall einer Inhibition 50% nicht
übersteigt, wobei man für die Komplexbildung ohne die Verbindung im
selben zellulären Assay 100% annimmt.
Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist ein Verfahren zur
Behandlung eines Patienten, der unter einem Karzinom leidet, mit einer
therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die
Wechselwirkung zwischen IGF-1R und einem der IIPs 1 bis 10 in einem
zellulären Assay inhibiert, wobei in dem zellulären Assay Tumorzellen oder
mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und des jeweiligen IIPs transfizierte
Zellen mit der Verbindung behandelt werden und eine Komplexbildung
zwischen IGF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert wird und das Ausmaß
der Komplexbildung im Fall einer Inhibition 50% nicht übersteigt, bezogen
auf 100% für die Komplexbildung ohne die Verbindung im selben zellulären
Assay.
Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist ein Antikörper gegen
erfindungsgemäßes IIP-1 oder IIP-10 oder auch eines der llPs-2 bis 9.
Antikörper wurden aus humanen, Mäuse- oder Rattenpolypeptiden erzeugt.
Durch die Erfindung mit umfaßt sind insbesondere Antikörper, welche IIP-1
oder IIP-10 spezifisch erkennen. Solche Antikörper werden unter Verwen
dung von standardmäßigen immunologischen Techniken hergestellt. Die
Antikörper können polyklonal oder monoklonal sein und können auch
rekombinant hergestellt werden, wie z. B. für einen humanisierten
Antikörper. Ein Antikörperfragment, welches die Fähigkeit zur Wechsel
wirkung mit IIP-1 oder IIP-10 beibehält, wird ebenfalls durch die vorliegende
Erfindung bereitgestellt. Ein solches Fragment kann durch die proteolytische
Spaltung eines vollständigen Antikörpers oder auf gentechnologische Weise
hergestellt werden. Erfindungsgemäße Antikörper sind geeignet für
diagnostische und therapeutische Anwendungen. Sie werden zur Detektion
und Quantifizierung von IIP-1 oder IIP-10 in biologischen Proben,
insbesondere in Gewebeproben und Körperflüssigkeiten verwendet. Sie
werden ebenfalls zur Modulierung der Aktivität von IIP-1 oder IIP-10
eingesetzt, indem sie entweder als Agonist oder Antagonist fungieren.
Die folgenden Beispiele, Verweise, Sequenzprotokolle und Zeichnungen
sollen dem Verständnis der vorliegenden Erfindung dienen, deren
Schutzumfang durch die zugehörigen Ansprüche dargestellt ist. Es versteht
sich von selbst, daß in den hier beschriebenen Verfahren Modifizierungen
vorgenommen werden können, ohne vom Schutzumfang der Erfindung
abzuweichen.
Fig. 1 Domänenstruktur von Hefen-Zweihybriden-Ködern, die für das
Screening von cDNA-Bibliotheken verwendet wurden, um
cytoplasmatische Bindungsproteine des IGF-1-Rezeptors zu
finden. Die LexA-DNA-Bindungsdomäne wurde mit der
cytoplasmatischen (cp) Domäne (Nukleotide 2923 bis 4154)
des Wildtyp-IGF-1-Rezeptors (a) oder der kinaseinaktiven
Mutante (K/A-Mutation an Aminosäureposition 1003) (b)
(Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512; Weidner,
M., et al., Nature 384 (1996) 173-176) fusioniert. Die
Nukleotid- und Aminosäuresequenz von zwei verschiedenen
zwischen die LexA-DNA-Bindungsdomäne und die
Rezeptordomäne inserierten Linkem ist unten gezeigt. Die I1-
(Wildtyp-IGF-1 Rezeptor) und K1- (kinaseinaktive Mutante des
lGF-1 Rezeptors) Konstrukte enthalten ein zusätzliches Prolin
und Glycin im Vergleich zu den 12- und K2-Konstrukten.
Fig. 2 Modifizierung des Hefen-Zweihybriden-LexA/IGF-1 Rezeptor-
Köderkonstrukts.
a) Schematische Darstellung der cytoplasmatischen Bindungsstelen des IGF-1 Rezeptors. Die α-Untereinheiten des IGF-1 Rezeptors sind über Disulfidbindungen mit den β-Ketten verbunden. Der cytoplasmatische Teil der β-Kette enthält Bindungsstellen für Substrate in der membranangrenzenden Region und der C-terminalen Domäne.
b) Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, die lediglich die membranangrenzenden IGF-1-Rezeptorbindungsstellen enthält. Die membranangrenzende Domäne des IGF-1 Rezeptors (Nukleotide 2923 bis 3051) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (Gen Bank Zugriffsnummer HSU19348) fusioniert.
c) Die Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, der lediglich die C-terminale IGF-1 Rezeptorbindungsstellen enthält. Die C-terminale Domäne des IGF-1 Rezeptors (Nukleotide 3823 bis 4149) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank Zugriffsnummer HSU 19348) fusioniert.
a) Schematische Darstellung der cytoplasmatischen Bindungsstelen des IGF-1 Rezeptors. Die α-Untereinheiten des IGF-1 Rezeptors sind über Disulfidbindungen mit den β-Ketten verbunden. Der cytoplasmatische Teil der β-Kette enthält Bindungsstellen für Substrate in der membranangrenzenden Region und der C-terminalen Domäne.
b) Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, die lediglich die membranangrenzenden IGF-1-Rezeptorbindungsstellen enthält. Die membranangrenzende Domäne des IGF-1 Rezeptors (Nukleotide 2923 bis 3051) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (Gen Bank Zugriffsnummer HSU19348) fusioniert.
c) Die Domänenstruktur des Zweihybriden-Köders, der lediglich die C-terminale IGF-1 Rezeptorbindungsstellen enthält. Die C-terminale Domäne des IGF-1 Rezeptors (Nukleotide 3823 bis 4149) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) wurde mit der Kinasedomäne von tprmet (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank Zugriffsnummer HSU 19348) fusioniert.
Fig. 3 Isoformen von IIP-1.
a) Darstellung der cDNA-Sequenzen von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Nukleotide sind oben numeriert. Die potentielle Translationsstartstelle innerhalb der IIP-1 cDNA befindet sich an Position 63. Das erste ATG als potentielle Translationsstartstelle in der alternativen Spleißvariante IIP-1 (p26) befindet sich an Position 353. Beide cDNAs enthalten ein Stopcodon an Position 1062.
b) Domänenstruktur von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Aminosäurepositionen sind oben angezeigt. Im Vergleich zu IIP-1 (p26) enthält IIP-1 zusätzliche 97 Aminosäuren am N- Terminus. Beide Isoformen von IIP-1 enthalten eine PDZ- Domäne, welche sich in der Region zwischen Aminosäuren 129 und 213 befindet.
a) Darstellung der cDNA-Sequenzen von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Nukleotide sind oben numeriert. Die potentielle Translationsstartstelle innerhalb der IIP-1 cDNA befindet sich an Position 63. Das erste ATG als potentielle Translationsstartstelle in der alternativen Spleißvariante IIP-1 (p26) befindet sich an Position 353. Beide cDNAs enthalten ein Stopcodon an Position 1062.
b) Domänenstruktur von IIP-1 und IIP-1 (p26). Die Aminosäurepositionen sind oben angezeigt. Im Vergleich zu IIP-1 (p26) enthält IIP-1 zusätzliche 97 Aminosäuren am N- Terminus. Beide Isoformen von IIP-1 enthalten eine PDZ- Domäne, welche sich in der Region zwischen Aminosäuren 129 und 213 befindet.
Fig. 4 Darstellung der IGF-1 Rezeptorbindungsdomäne von IIP-1.
Es wurden vollständiges IIP-1, seine cDNA-Teilklone (IIP-1a
und IIP-1b) sowie Deletionsmutanten (IIP-1a/mu1, IIP-1a/mu2,
(IP-1a/mu3, IIP-1b/mu1) auf eine Wechselwirkung mit dem
IGF-1 Rezeptor im Hefen-Zweihybridensystem untersucht.
Hefezellen wurden mit einem LexA-IGF-1-Rezeptor-
Fusionskonstrukt und einem Aktivierungsplasmid, welches für
mit der VP16-Aktivierungs-Domäne fusioniertes IIP-1 oder
verschiedene IIP-1 Mutanten codiert, kotransfiziert. Die
Bindung zwischen IIP-1 oder seinen Mutanten und dem IGF-1
Rezeptor wurde durch Überwachung des Wachstums von
Hefetransfektanten analysiert, die auf Histidin-defizientes
Medium plattiert worden und für 6 Tage bei 30°C inkubiert
worden waren (Durchmesser der Hefekolonien: + + +, < 1
mm in 2 Tagen, + +, < 1 mm in 4 Tagen; +, < 1 mm in 6
Tagen; -, kein Wachstum detektiert). Die PDZ-Domäne kann
als essentiell und ausreichend für das Zustandekommen einer
Bindung an den IGF-1 Rezeptor definiert werden. Die
Nukleotidpositionen bezüglich des vollständigen IIP-1 sind
oben angezeigt.
Fig. 5 Proteinsequenzmotife von IIP-10.
Die Aminosäuresequenz von IIP-10 wurde unter Verwendung des Computerprogramms "Motifs" analysiert, welches nach Proteinmotiven sucht, indem es nach im PROSITE Dictionary beschriebenen Proteinsequenzen für reguläre Expressionsmuster sucht.
SEQ ID NO:1 Nukleotidsequenz von IIP-1 (cDNA).
SEQ ID NO:2 Erwartete Aminosäuresequenz von IIP-1.
SEQ ID NO:3 Nukleotidsequenz des partiellen cDNA-Klons von IIP-6.
SEQ ID NO:4 Abgeleitete Aminosäuresequenz des partiellen cDNA- Klons von IIP-6. Cystein- und Histidinreste der zwei Cys2His2-Zinkfingerdomänen sind die Aminosäuren 72, 75, 88, 92, 100, 103, 116 und 120.
SEQ ID NO:5 Nukleotidsequenz von IIP-10 (cDNA).
SEQ ID NO:6 Abgeleitete Aminosäuresequenz von IIP-10.
SEQ ID NO:7 Primer TIP2c-s.
SEQ ID NO:8 Primer TIP2b-r.
SEQ ID NO:9 Primer Hcthy-s.
SEQ ID NO:10 Primer Hcthy-r.
Die Aminosäuresequenz von IIP-10 wurde unter Verwendung des Computerprogramms "Motifs" analysiert, welches nach Proteinmotiven sucht, indem es nach im PROSITE Dictionary beschriebenen Proteinsequenzen für reguläre Expressionsmuster sucht.
SEQ ID NO:1 Nukleotidsequenz von IIP-1 (cDNA).
SEQ ID NO:2 Erwartete Aminosäuresequenz von IIP-1.
SEQ ID NO:3 Nukleotidsequenz des partiellen cDNA-Klons von IIP-6.
SEQ ID NO:4 Abgeleitete Aminosäuresequenz des partiellen cDNA- Klons von IIP-6. Cystein- und Histidinreste der zwei Cys2His2-Zinkfingerdomänen sind die Aminosäuren 72, 75, 88, 92, 100, 103, 116 und 120.
SEQ ID NO:5 Nukleotidsequenz von IIP-10 (cDNA).
SEQ ID NO:6 Abgeleitete Aminosäuresequenz von IIP-10.
SEQ ID NO:7 Primer TIP2c-s.
SEQ ID NO:8 Primer TIP2b-r.
SEQ ID NO:9 Primer Hcthy-s.
SEQ ID NO:10 Primer Hcthy-r.
Es wurde das Hefen-Zweihybridensystem (Fields, S., und Song, O., Nature
340 (1989) 245-246) verwendet, um unbekannte cytosolische IGF-1-
Rezeptorbindeproteine zu isolieren. Für das Screening wurde eine
modifizierte Version des Hefen-Zweihybridensystems verwendet, welche in
der Hefe eine Tyrosylphosphorylierung der Rezeptoren zwischen den Ketten
(interchain tyrosyl phosphorylation) erlaubt.
Das Hefen-Zweihybriden-Köderplasmid (BTM116-cplGF-1 Rezeptor) wurde
durch Fusion der cytoplasmatischen Domäne der β-Untereinheit des IGF-1
Rezeptors (Nukleotide 2923 bis 4154) (Ullrich, A., et al., EMBO J. 5 (1986)
2503-2512) mit der LexA-DNA-Bindedomäne fusioniert, welche Dimere
bildet und die Situation des aktivierten Wildtyprezeptors nachahmt (siehe
Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176). Durch Einführung eines
Prolin-Glycin-Spacers zwischen die LexA-DNA-Bindedomäne und die
Rezeptordomäne wurde die Fähigkeit des Köders, bekannte Substrate des
IGF-1 Rezeptors zu binden, bemerkenswert erhöht im Vergleich mit anderen
Spaceraminosäuren (Fig. 1).
Alternativ hierzu wurde ein Köder konstruiert, der nur die
membranangrenzende oder C-terminale Region des IGF-1 Rezeptors enthält
(Nukleotide 2923 bis 3051 oder Nukleotide 3823 bis 4146) (Ullrich, A., et
al., EMBO J. 5 (1986) 2503-2512) fusioniert mit der Kinasedomäne einer
nichtverwandten, sehr potentiellen Rezeptortyrosinkinase. Es wurde hier die
Kinasedomäne von tpr met (Nukleotide 3456 bis 4229) (GenBank
Zugriffsnummer HSU 19348) (Fig. 2) verwendet. Somit war es möglich, die
Region des IGF-1 Rezeptors, welche die Bindung an Dowmstream-Effektoren
steuert, darzustellen.
Das IGF-1 Rezeptorköderplasmid wurde verwendet, um cDNA-Bibliotheken
auf Aktivierungsdomänen zu screenen (z. B. Aktivierungsdomänen auf VP 16-
oder Gal4-Basis) (siehe Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176).
Die Köder- und Beuteplasmide wurden in den Saccaromyces cerevisiae-
Stamm L40 cotransfiziert, welcher ein His3- und IacZ-Reportergen enthält.
Bibliothekenplasmide wurden aus in Histidin-defizientem Medium
wachsenden Hefekolonien isoliert, sequenziert und wieder in den
Hefestamm 1140 eingebracht. Mit Hilfe von Cotransfektionsexperimenten
mit verschiedenen Testködern, d. h. BTM116-Plasmiden, die für eine
kinaseinaktive Mutante des IGF-1 Rezeptors (L1033A) oder für die
cytoplasmatische Domäne von Rezeptortyrosinkinasen der
Insulinrezeptorfamilie (Insulinrezeptor, Ros) und für nicht verwandte
Rezeptortyrosinkinasenfamilien (Met, EGF-Rezeptor, Kit, Fms, Neu)
codieren, wurde die Spezifität der putativen Wechselwirkungen zwischen
Köder und Beute ausgewertet. Es wurden mehrere cDNAs identifiziert,
welche für zuvor unbekannte an den IGF-1 Rezeptor bindende Proteine (IIPs)
codieren. Zusätzlich wurden Bindungsdomänen von bekannten Substraten
des IGF-1 Rezeptors gefunden, wie etwa die C-terminale SH2-Domäne von
p85Pl3K und die SH2-Domäne von Grb10. Die Ergebnisse sind in Tabelle 1
gezeigt.
Darstellung der Bindungsspezifizität der IIPs bezüglich verschiedener
Rezeptortyrosinkinasen, die im Hefen-Zweihybridensystem getestet wurden.
Hefezellen wurden mit einem LexA-Fusionskonstrukt, welches für
verschiedene Rezeptortyrosinkinasen codiert, und einem
Aktivierungsplasmid, welches für verschiedene IIPs codiert, die mit der
VP16-Aktivierungsdomäne fusioniert sind, cotransfiziert. Die
Wechselwirkung zwischen den IIPs und den verschiedenen
Rezeptortyrosinkinasen wurde durch Überwachung des Wachstums von
Hefetransfektanten analysiert, die auf Histidin-defizientem Medium plattiert
wurden und für 3 Tage bei 30°C inkubiert wurden (wt IGF-1 R: kinaseaktiver
IGF-1 Rezeptor, mu IGF-1R: kinaseinaktive Mutante des IGF-1 Rezeptors,
IR: Insulinrezeptor, Ros: Ros-Rezeptortyrosinkinase, Met: Met-
Rezeptortyrosinkinase; +, Wachstum von Hefetransfektanten innerhalb von
3 Tagen auf < 1 mm Durchmesser; -, kein Wachstum nachgewiesen, nd,
nicht bestimmt).
IGF-1R und die Bindungsproteine (IIPs) werden mit oder ohne Tag-Enzyme
in E.coli oder eukaryontischen Zellen exprimiert und bis zur Homogenität
aufgereinigt. Die Wechselwirkung zwischen IGF-1R und den jeweiligen
Bindungsproteinen wird in Gegenwart oder Abwesenheit von Substanzen
analysiert. Verbindungen, welche die Bindung zwischen IGF-1R und den
jeweiligen Bindungsproteinen entweder inhibieren oder fördern, werden
ausgewählt. Im Fall des ELISA-Systems werden Antikörper, die spezifisch
für die zwei Bindepartner sind, zur Detektion der Komplexe ausgewählt. Im
Fall des homogenen Assays wird mindestens ein Bindepartner mit
Fluorophoren markiert, was die Analyse der Komplexe erlaubt. Alternativ
hierzu werden Anti-Tag-Antikörper zur Überwachung der Wechselwirkung
verwendet.
Tumorzellen oder Zellen, die mit Expressionskonstrukten des IGF-1R und
den jeweiligen Bindungsproteinen transfiziert wurden, werden mit oder ohne
Substanzen behandelt, und anschließend wird die Komplexbildung zwischen
den beiden Komponenten unter Verwendung von Standardassays analysiert.
Unter Verwendung von Datenbankeninformation (ESTs) wurde die
Nukleotidsequenz des vollständigen IIP-1 mit Sequenzen der partiellen
cDNA-Klone von IIP-1 (IIP-1a, IIP-1b) einem Alignment unterzogen. cDNA-
Klonierung von vollständigem IIP-1 wurde mit Hilfe von RT-PCR auf der
Grundlage von Gesamt-RNA durchgeführt, die aus einer MCF7ADR--
Brustzellinie isoliert worden war. RT-PCR mit zwei Oligonukleotidprimern:
TIP2c-s (SEQ ID NO:7) und TIP2b-r (SEQ ID NO:8) führte zur Amplifikation
von zwei DNA-Fragmenten von 1 kb Länge (IIP-1) und 0,7 kb Länge (IIP-1
(p26)).
Die Nukleotidsequenz des vollständigen IIP-10 wurde unter Verwendung von
Datenbankeninformationen (ESTs) mit der Sequenz cDNA-Teilklon von IIP-
10 einem Alignment unterzogen. cDNA-Klonierung von IIP-10 wurde auf der
Basis von Gesamt-RNA durchgeführt, die aus der Darmkrebszellinie SW480
isoliert wurde. RT PCR mit zwei Oligonukleotidprimern Hcthy-s (SEQ ID
NO:9) und Hcthy-r (SEQ ID NO:10) führte zur Amplifikation eines cDNA-
Fragments von 676 Basenpaaren Länge (IIP-10).
DNA-Sequenzierung wurde unter Verwendung der Dideoxynukleotid-
Kettenterminationsmethode auf einem ABI 373A-Sequenzierer durchgeführt
unter Verwendung des Ampli Taq® FS Dideoxyterminatorkits (Perkin Eimer,
Foster City, CA). Ein Vergleich zwischen der cDNA und den abgeleiteten
Proteinsequenzen wurde unter Verwendung von Advanced Blast Search
(Altschul, S. F., et al., J. Mol. Biol. 215 (1990) 403-410; Altschul, S. F., et
al., Nucleic Acids Res. 25 (1997) 3389-3402) durchgeführt.
Gesamtzellysate wurden in einem Puffer, enthaltend 50 mM Tris pH 8,0,
150 mM NaCl, 1% NP40, 0,5% Deoxycholsäure, 0,1% SDS und 1 mM
EDTA hergestellt und durch Zentrifugieren bei 4°C für 15 Minuten geklärt.
Die Proteinkonzentration der Überstände wurde mit dem Mikro BCA-
Proteinassaykit (Pierce Chemcial Co., Rockford, IL) nach dem
Herstellerhandbuch gemessen. IGF-1 Rezeptoren wurden unter Verwendung
von Anti-IGF-1 Rezeptorantikörpern immunopräzipitiert (Santa Cruz). Die
Proteine wurden durch SDS-PAGE fraktioniert und elektrophoretisch auf
Nitrocellulosefilter übertragen. Die Nitrocellulosefilter wurden mit 10%
(Gewicht/Volumen) fettfreiem Milchpulver in 20 mM Tris pH 7,5, 150 mM
NaCl, 0,2% Tween-20 vorinkubiert. Die Bindung eines monoklonalen
Antikörpers aus der Maus, welcher gegen das Flag-Epitop gerichtet ist,
wurde mit einem Ziegen-Antimaus-IgG-Antiserum, welches Meerrettich-
Peroxidase-markiert war, detektiert (Biorad, München, DE) und mit einem
verstärkten Chemolumineszenzdetektionssystem ECLTM (Amersham,
Braunschweig, DE) visualisiert.
Die cDNAs für IIP-1 bis IIP-10 wurden in die NotI-Stelle von pBATflag oder
pcDNA3flag kloniert (Weidner, M., et al., Nature 384 (1996) 173-176;
Behrens, J., et al., Nature 382 (1996) 638-642; Behrens, J., et al., Science
280 (1998) 596-599). NIH3T3-Zellen oder andere Empfängerzellen wurden
mit pcDNAflagIIP-1 bis pcDNAflagIIP-10 oder alternativ mit pBATflagIIP-1
bis pBATIfagIIP-10 unter Verwendung von FuGENE6 (Roche Biochemicals)
als Transfektionsmittel transfiziert. Die Zellen wurden in 0,4 mg/ml G418
selektiert. Einzelne Klone wurden gepickt und auf die Expression von IIP-1
bis IIP-10 analysiert und bezüglich ihrer Proliferation funktionell
charakterisiert.
Northern Blots für Multigewebe-mRNA des Menschen und der Maus wurden
von Klontech erhalten (Palo Alto, CA, US). Eine cDNA-Sonde, welche die
Nukleotide 343 bis 676 der codierenden Region für IIP-10 umfaßt, wurde
unter Verwendung des PCR-DIG-Labeling Mix (Roche Diagnostics GmbH,
DE) mit DIG-dUTP markiert. Eine Digoxygenin-markierte Aktin-RNA-Sonde
wurde von Roche Diagnostics GmbH, DE erhalten. Die Hybridisierung wurde
unter Verwendung der DIG EasyHyb Hybridisierungslösung (Roche
Diagnostics GmbH, DE) durchgeführt. IIG-10 mRNA wurde mit Hilfe von mit
alkalischer Phosphatase konjugierten DIG-spezifischen Antikörpern und dem
CSPD-Substrat (Roche Diagnostics GmbH, DE) detektiert.
Um zu detektieren, ob Proteine, die von Nukleinsäuren codiert werden,
welche mit SEQ ID NO:1 oder mit SEQ ID NO:5 oder den
Komplementärsequenzen davon hybridisieren, in Krebszellen exprimiert
werden, und somit um nachzuweisen, ob mRNA vorhanden ist, ist es auf
der einen Seite möglich, etablierte Verfahren der Nukleinsäurehybridisierung
anzuwenden, wie etwa Northern-Hybridisierung, in situ-Hybridisierung, Dot-
oder Slot-Hybridisierung und davon abgeleitete diagnostische Techniken
(Sambrook et al., Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold
Spring Harbor Laboratory Press, New York, USA; Hames, B. D., Higgins,
S. G., Nucleic acid hybridisation - a practical approach (1985) IRL Press,
Oxford, England; WO 89/06698; EP-A 0 200 362; EP-A 0 063 879; EP-A
0 173 251; EP-A 0 128 018). Auf der anderen Seite ist es auch möglich,
Verfahren aus dem großen Repertoire von Amplifikationstechniken
anzuwenden, die spezifische Primer verwenden (PCR Protocols - A Guide
to Methods and Applications (1990), publ. M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J.
Sninsky, T. J. White, Academic Press Inc.; PCR - A Practical Approach
(1991), publ. M. J. McPherson, P. Quirke, G. R. Taylor, IRL Press).
Die RNA für diese Verfahren wird nach der Methode von Chomcszynski und
Sacchi, Anal. Biochem. 162 (1987) 156-159 aus Krebsgewebe isoliert. 20
µg Gesamt-RNA wurde auf einem 1,2%igen Agarose-Formaldehydgel
aufgetrennt und auf Nylonmembranen übertragen (Amersham,
Braunschweig, DE). Dies geschah nach Standardverfahren (Sambrook et al.,
Molecular Cloning: A laboratory manual (1989) Cold Spring Harbor
Laboratory Press, New York, USA). Die DNA-Sequenzen SEQ ID NO:1 oder
SEQ ID NO:5 wurden als Sonden radioaktiv markiert (Feinberg, A. P., und
vogelstein, B., Anal. Biochem. 137 (1984) 266-267). Die Hybridisierung
wurde bei 68°C in 5 × SSC, 5 × Denhardt, 7% SDS/0,5 M Phosphatpuffer
pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100 µg/ml Lachsspermien-DNA
durchgeführt. Anschließend wurden die Membranen zweimal jeweils für eine
Stunde in 1 × SSC bei 68°C gewaschen und dann auf Röntgenfilm gelegt.
Der Expressionsvektor von Beispiel 5 (entweder für IIP-1 oder IIP-10,
1 Oµg/106 Zellen) wird unter Verwendung von bekannten Standardverfahren
in NIH 3T3-Zellen eingebracht (Sambrook et al.). Zellen, welche den Vektor
aufgenommen haben, werden durch ihre Fähigkeit, in Gegenwart der
Selektion oder unter selektiven Bedingungen (0,4 mg/ml G418) zu wachsen,
identifiziert. Zellen, welche die für IIP codierende DNA exprimieren, stellen
RNA her, welche wie in Beispiel 5 beschrieben durch Northern Blot-Analyse
detektiert wird. Alternativ hierzu werden das Protein exprimierende Zellen
durch die Identifizierung des Proteins durch Western Blot-Analyse unter
Verwendung der in Beispiel 4 bschriebenen Antikörper identifiziert. Zellen,
die das Protein von dem Expressionsvektor exprimieren, zeigen eine
veränderte Morphologie und/oder verstärkte Wachstumseigenschaften.
Zellen, welche das Protein exprimieren und eine oder mehrere der oben
beschriebenen veränderten Eigenschaften aufweisen, werden mit und ohne
eine putative Modulatorverbindung kultiviert. Durch Screening von
chemischen und natürlichen Bibliotheken können solche Verbindungen
identifiziert werden, indem High-Throughput Zell-Assays, die Zellwachstum
überwachen, verwendet werden (z. B. Zellproliferationsassays, die als
chromogene Substrate die Tetrazoliumsalze WST-1, MTT oder XTT
verwenden, oder ein ELISA-Detektionssystem zur Detektion von Zelltod
unter Verwendung von Bromdesoxyuridin (BrdU), siehe Boehringer
Mannheim GmbH, Apoptosis and Cell Proliferation, 2. Auflage, 1998, S. 70-
84).
Die Modulatorverbindung verursacht eine Zunahme oder eine Abnahme der
Zellantwort auf die IIP-Proteinaktivität und wird entweder ein Aktivator oder
ein Inhibitor der IGF-Funktion sein.
Alternativ hierzu werden putative Modulatoren zu Tumorzellkulturen
hinzugegeben, und die Zellen zeigen eine veränderte Morphologie und/oder
reduzierte oder verstärkte Wachstumseigenschaften. Es wird eine putative
Modulatorverbindung mit und ohne IIP-Protein zu den Zellen hinzugegeben,
und eine Zellantwort wird durch direkte Beobachtung der morphologischen
Charakteristika der Zellen gemessen, und/oder die Zellen werden auf ihre
Wachstumseigenschaften hin überwacht. Die Modulatorverbindung wird
eine Zunahme oder eine Abnahme in der Zellantwort auf das IIP-Protein
verursachen und wird entweder ein Aktivator oder Inhibitor der IGF-1-
Rezeptoraktivität sein.
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Claims (13)
1. Nukleinsäure,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie für ein an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein codiert, ausgewählt aus der Gruppe umfassend:
dadurch gekennzeichnet,
daß sie für ein an den IGF-1 Rezeptor bindendes Protein codiert, ausgewählt aus der Gruppe umfassend:
- a) die in SEQ ID NO:5 dargestellte Nukleinsäuresequenz oder Komplementärsequenz dazu,
- b) Nukleinsäuresequenzen, welche unter stringenten Bedingungen mit einer der Nukleinsäuren aus (a), die für ein Polypeptid mit Homologie zu der in SEQ ID NO:6 dargestellten Polypeptidsequenz codieren, hybridisieren,
- c) Nukleinsäuresequenzen, welche aufgrund der Degeneration des genetischen Codes für Polypeptide codieren, welche die Aminosäuresequenz der von einer der Nukleinsäuren aus (a) und/oder (b) codierten Polypeptide aufweisen.
2. Nukleinsäure nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie eine Sequenz gemäß SEQ ID NO:5 aufweist.
3. Nukleinsäure nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Hybridisierung in 5,0 × SSC, 5 × Denhardt, 7% SDS, 0,5 M
Phosphatpuffer pH 7,0, 10% Dextransulfat und 100 µg/ml
Lachsspermien-DNA bei ungefähr 50°C bis 68°C, gefolgt von zwei
Waschschritten mit 1 × SSC bei 68°C durchgeführt wird.
4. Rekombinanter Expressionsvektor,
dadurch gekennzeichnet,
daß er eine Nukleinsäure nach einem der Ansprüche 1 bis 3 enthält
und zu deren Expression geeignet ist.
5. Wirtszelle,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie mit einer Nukleinsäure nach einem der Ansprüche 1 bis 3
oder einem rekombinanten Expressionsvektor nach Anspruch 4
transformiert ist.
6. Rekombinantes Polypeptid,
dadurch gekennzeichnet,
daß es von einer der Nukleinsäuren nach einem der Ansprüche 1-3
codiert ist und an den IGF-1 Rezeptor bindet.
7. Verfahren zur Herstellung eines Proteins, welches an den IGF-1
Rezeptor bindet, umfassend:
Exprimieren einer exogenen DNA in prokaryontischen oder
eukaryontischen Wirtszellen und Isolieren des gewünschten Proteins,
dadurch gekennzeichnet,
daß das Protein codiert ist von der in SEQ ID NO:5 dargestellten
DNA-Sequenz oder einer Nukleinsäure, welche unter stringenten
Bedingungen mit einer zu der in SEQ ID NO:5 dargestellten
Nukleinsäure komplementären Nukleinsäure hybridisiert.
8. Verfahren zur Detektion des Proliferationspotentials einer Krebszelle,
umfassend:
- a) Inkubieren einer Probe, ausgewählt aus einer Körperflüssigkeit
eines an Krebs leidenden Patienten, Tumorzellen, Zellextrakten
und/oder Zellkulturüberständen von Tumorzellen, wobei die
Probe Nukleinsäuren enthält, mit einer Nukleinsäuresonde, die
ausgewählt wird aus der Gruppe, bestehend aus:
- a) den in SEQ ID NO: 1, 3 oder 5 dargestellten Nukleinsäuren oder dazu komplementären Nukleinsäuren,
- b) Nukleinsäuren, welche mit einer der Nukleinsäuren aus (i)hybridisieren, und
- b) Detektieren der Hybridisierung mit Hilfe eines weiteren Bindepartners der Nukleinsäure der Probe und/oder der Nukleinsäuresonde.
9. Verfahren nach Anspruch 8, worin eine Hybridisierung mit
mindestens einem Nukleinsäurefragment einer der in SEQ ID NO:1
oder SEQ ID NO:5 dargestellten Nukleinsäuren oder einem
Komplementärfragment davon bewirkt wird.
10. Verfahren nach Anspruch 8 oder 9 worin die zu detektierende
Nukleinsäure vor der Detektion amplifiziert wird.
11. Verfahren zum Screenen einer Verbindung, welche die
Wechselwirkung zwischen IGF-1R und einem der Polypeptide IIP-1
bis IIP-10 hemmt, umfassend:
- a) Inkontaktbringen von IGF-1R und dem IIP-Polypeptid mit einer eine in Frage kommende Verbindung enthaltenden Lösung, so daß der IGF-1R und das IIP-Polypeptid in der Lage sind, einen Komplex zu bilden, und
- b) Bestimmen der Menge an Komplex im Vergleich zu dem vorbestimmten Ausmaß an Bindung in Abwesenheit der Verbindung und daraus Bewerten der Fähigkeit der Verbindung, die Bindung des IGF-1R an das IIP-Polypeptid zu hemmen.
12. Verfahren zur Herstellung eines Arzneimittels für die Behandlung von
Karzinomen in einem Patienten, umfassend:
Mischen eines pharmazeutisch annehmbaren Trägers mit einer
therapeutisch wirksamen Menge einer Verbindung, welche die
Wechselwirkung zwischen IGF-1R und einem der Polypeptide IIP-1 bis
IIP-10 in einem Zell-Assay moduliert, wobei in dem Zell-Assay
Tumorzellen oder mit Expressionskonstrukten von IGF-1R und IIP
tranformierte Zellen mit der Verbindung behandelt werden und eine
Komplexbildung zwischen IGF-1R und dem jeweiligen IIP analysiert
wird und das Ausmaß an Komplexbildung im Fall einer Inhibition
50%, bezogen auf 100% Komplexbildung ohne die Verbindung im
selben Zell-Assay, nicht übersteigt.
13. Verfahren nach Anspruch 12, worin die Verbindung die
Wechselwirkung inhibiert.
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