DE19545351C1 - Eukaryotische Zellen mit Hybridrezeptor und dadurch steuerbarem Genkonstrukt, Verfahren zu deren Herstellung und Verwendung dieser Zellen in der Gentherapie - Google Patents
Eukaryotische Zellen mit Hybridrezeptor und dadurch steuerbarem Genkonstrukt, Verfahren zu deren Herstellung und Verwendung dieser Zellen in der GentherapieInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft eukaryotische Zellen, die
durch gentechnologische Methoden dahingehend verändert wurden,
daß diese Zellen wenigstens einen Hybridrezeptor und
wenigstens ein durch diesen Hybridrezeptor steuerbares
Genkonstrukt enthalten.
Im Stand der Technik sind bereits bestimmte Hybridrezeptoren
beschrieben worden. Brocker et al. (Eur. J. Immunol. (1993) 23,
S. 1435-1439) beschreiben ein Hybridmolekül umfassend einen
Teil eines einzelkettigen Antikörpers, der über eine kurze
Abstandsgruppe mit der Transmembran- und Cytoplasmaregion von
CD3ζ verbunden ist. Bei der CD3ζ-Kette handelt es sich um den
Bereich des T-Zellenantigenrezeptors, der für die
Signalweiterleitung des T-Zellantigenrezeptors in der Zelle
verantwortlich ist.
Die ζ-Kette wird traditionell dem CD3-Komplex zugerechnet,
welcher mit den α und β-Ketten des klassischen TCR den
eigentlichen T-Zellrezeptor bildet. Es bürgert sich daher mehr
und mehr ein, die ζ-Kette als Teil des TCR zu bezeichnen. Eine
strenge Nomenklatur ist in der Literatur aber nicht
eingehalten.
Eshhar et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol. 90 (Januar
1993), S. 720-724) beschreiben Hybridrezeptoren, bei denen
die variablen Regionen (Fν) eines Antikörpers mit den
konstanten Regionen der T-Zellrezeptorenketten verbunden
wurden, wodurch T-Lymphozyten mit einer vom Antikörpertyp
abhängigen Spezifität geschaffen wurden und der
Hybridrezeptor ein Signal für die IL-2-Expression übertrug.
Dadurch wurde in Abhängigkeit von dem Antigen die Lyse der
Zielzellen gesteuert.
Moritz et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol. 91 (Mai 1994),
S. 4318-4322) beschreiben zytotoxische T-Lymphozyten, die ein
Hybridgen aufweisen. Das Hybridgen wurde konstruiert aus
einem einzelkettigen Fν-Antikörper, genauer aus den
verbundenen schweren und leichten Ketten der variablen
Bereiche eines monoklonalen Antikörpers gegen den
extrazellulären Bereich des ERBB2-Rezeptors, einer
Verbindungsregion als Abstandsgruppe und der ζ-Kette des
T-Zellantigenrezeptors (TCR). Dieses Gen wurde mit Hilfe von
retroviralem Gentransfer in die zytotoxischen T-Lymphozyten
eingeführt.
In eukaryotischen Zellen wird die Expression der Gene meist
über verhältnismäßig komplizierte Mechanismen reguliert. Die
einzelnen Gene können durch Signale von außerhalb der Zelle
entweder an- oder abgeschaltet werden. Den Weg des Signals
von der Zelloberfläche über einen für das Signal spezifischen
Rezeptor und gegebenenfalls mehrere Zwischenmoleküle wie
beispielsweise Kinasen oder Phosphatasen in den Zellkern und
die Regulation der Genexpression über DNA-bindende
Transkriptionsfaktoren bezeichnet man als Signaltransduktion.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es, solche Zellen zur
Verfügung zu stellen, bei denen durch ein außerhalb der Zelle
vorhandenes Signal die Expression eines geeigneten Gens im
Zellinneren bewirkt werden kann.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung sind daher eukaryotische
Zellen mit einem Hybridrezeptor, der einen an der Außenseite
der Zelle lokalisierten, für ein bestimmtes Signalmolekül
spezifischen Rezeptorteil und ein von einem anderen Rezeptor
stammendes, im Inneren der Zelle lokalisiertes Rezeptorteil,
das im Zellinneren ein Signal auslösen kann, umfaßt, wobei die
Zelle wenigstens ein weiteres Genkonstrukt enthält, das einen
Steuerbereich aufweist, der mit dem von dem Hybridrezeptor
ausgesandten Signal interagieren kann und dadurch die
Expression eines mit diesem Steuerbereich verbundenen
Transgens steuern kann.
Bevorzugt handelt es sich bei dem Teil des Hybridrezeptors,
der an der Außenseite der Zelle lokalisiert und für ein
bestimmtes Signalmolekül spezifisch ist, um einen
Antigenrezeptor, der ausgewählt sein kann aus der Gruppe
bestehend aus Fragmenten von Antikörpern, die für bestimmte
Antigene oder Haptene spezifisch sind, wobei der an der
Außenseite der Zelle lokalisierte Teil des Hybridrezeptors
auch einen Abstandsbereich (Spacer) umfassen kann.
Bei dem Teil des Hybridrezeptors, der an der Innenseite der
Zelle lokalisiert ist und im Zellinneren ein Signal auslösen
kann, handelt es sich bevorzugt um einen Rezeptorteil, der
ausgewählt sein kann aus der Gruppe bestehend aus den
intrazellulären und/oder Transmembranbereichen von T-Zell-Anti
genrezeptoren und B-Zellrezeptoren.
Die erfindungsgemäßen Zellen weisen auch ein Genkonstrukt auf,
das mit Hilfe gentechnologischer Methoden in die Zielzellen
eingebracht wurde. In bevorzugter Ausführungsform handelt es
sich bei dem Steuerbereich des weiteren Genkonstruktes,
der mit dem von dem Hybridrezeptor ausgelösten Signal
interagieren kann, um zelleigene oder zellfremde Promotoren
oder Repressoren.
Das zusätzlich in die Zelle eingeführte Genkonstrukt weist
auch wenigstens ein beliebiges Transgen auf. Bevorzugt ist
das Transgen ausgewählt aus Genen, die für Genprodukte
kodieren, wie Zytokine, insbesondere G-CSF, IL-2, IL-3, IL-4,
IL-6, Interferone, Erythropoietin oder Insulin. Bei dem
Transgen kann es sich auch um Transkriptionsfaktoren handeln,
die bei der Repression von Genen eine Rolle spielen können.
Die erfindungsgemäß eingesetzten Hybridrezeptoren können
grundsätzlich bei allen eukaryotischen Zellen, wie tierischen
Zellen, verwendet werden.
In bevorzugter Ausführungsform handelt es sich bei den
erfindungsgemäß eingesetzten Zellen um menschliche Zellen,
wobei besonders bevorzugt solche Zellen sind, die ausgewählt
sind aus der Gruppe bestehend aus Lymphozyten,
hematopoetischen Stammzellen, Fibroblasten oder Tumorzellen.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren zur Herstellung der
Zellen wird die Zielzelle transfiziert, wodurch die
genetische Information für wenigstens einen Hybridrezeptor
und wenigstens ein Genkonstrukt in die Zielzelle eingebracht
wird. Die Transfektion erfolgt dabei durch an sich bekannte
Verfahren, wobei die Elektroporation besonders bevorzugt ist.
Die genetische Information für Hybridrezeptor und
Genkonstrukt kann auf einem Vektor lokalisiert oder auf zwei
Vektoren verteilt sein.
Bevorzugt werden die erfindungsgemäßen Zellen in der
Gentherapie verwendet, wobei die jeweils erforderlichen
Genprodukte im Körper exprimiert werden können, und zwar
unter Kontrolle des für den Hybridrezeptor spezifischen
Signals. Ein spezieller Anwendungsbereich ist die
Tumortherapie oder -diagnose. Wenn eine Tumorzelle mit einem
spezifischen Tumorantigen von einer Zelle, die einen
varianten Antigenrezeptor gegen ebendieses Tumorantigen
trägt, erkannt wird, können drei Reaktionen erreicht werden,
eine abtötende, wenn nach Tumorkontakt ein zytotoxisches
Zytokin wie TNF sezerniert wird oder eine immunstimulierende
durch Sekretion von IL-2 oder eine rein diagnostische durch
Sekretion von G-CSF. Dieser letztgenannte, diagnostische
Aspekt ist deshalb interessant, weil man damit im Organismus
vereinzelte Tumorzellen biologisch nachweisen kann, weil eben
der Antigen-Rezeptorkontakt zur Bildung von G-CSF führt.
G-CSF erhöht die Leukozytenzahl, daran erkennt man, daß noch
Tumorzellen vorhanden sind. Dies ist insbesondere für
Resttumoren eine elegante Art der Diagnose.
Die Regulation zellulärer Gene ist ein Prozeß, der über viele
Zwischenstufen hinweg von der Zelloberfläche (dem Liganden)
hin bis zum Zellkern (dem regulierten Gen) reicht. Kommt es
auf diesem Weg zu Fehlern, kann das zu nachhaltigen Problemen
für die Zelle und den ganzen Organismus führen. Ein
Aktivierungssignal, das nicht mehr abgeschaltet werden kann,
könnte deshalb zur Zellentartung und damit zu ungeregeltem
Wachstum führen, dies wird allgemein als Krebs bezeichnet.
Durch die vorliegende Erfindung werden Zellen bereitgestellt,
die ein bestimmtes Genprodukt exprimieren, und zwar auf
Anregung durch ein bestimmtes Signalmolekül, das sich in der
Umgebung der Zelle befindet.
Bei den im Rahmen der vorliegenden Erfindung verwendeten
Hybridrezeptoren handelt es sich um solche Konstrukte, die
die extrazelluläre Domäne eines bestimmten Rezeptors (A)
gekoppelt an die Transmembran- und intrazelluläre Domäne
eines anderen Rezeptors (B) aufweisen. Die Transmembrandomäne
könnte selbstverständlich auch von dem Rezeptor A herstammen.
In diesem Fall wird das zellinterne Signal durch die Zugabe
eines Liganden für (A) ausgelöst. Unter Ligand wird hier
dasjenige spezifische Molekül verstanden, das mit der
extrazellulären Domäne des Rezeptors (A) interagieren kann.
Die Folge dieser Interaktion ist aber nicht, daß die Signale
in der Zelle ausgelöst werden, die auf den Rezeptor (A)
zurückzuführen wären, sondern es werden in der Zelle
diejenigen Signale erzeugt, die unter Kontrolle des Rezeptors
(B) stehen. Grundsätzlich können im Rahmen der vorliegenden
Erfindung alle Rezeptoren und deren Bestandteile verwendet
werden. Als Liganden werden diejenigen Moleküle oder
Verbindungen eingesetzt, die mit der extrazellulären Domäne
des Hybridrezeptors in Wechselwirkung treten können. Diese
Liganden können entweder in freier Form oder gebunden an
einen Träger oder an Zellen vorliegen.
Rezeptoren, die im Rahmen der vorliegenden Erfindung
bevorzugt verwendet werden, sind die Antigenrezeptoren. Auch
diese Rezeptoren bestehen aus verschiedenen Domänen. Häufig
sind diese Rezeptoren kompliziert strukturiert und bestehen
aus mehreren assoziierten Proteinketten, die über
Disulfidbrücken kovalent verbunden sind. Diese Ketten werden
allgemein als "leichte" und "schwere" Ketten wegen ihrer
unterschiedlichen Längen bezeichnet. Auf diesen Ketten selbst
werden wieder einzelne Abschnitte definiert als konstante
oder variable Regionen. Das Zusammenspiel der richtigen
variablen und konstanten Regionen von schwerer und leichter
Kette ermöglicht die hochspezifische Erkennung und Bindung
eines Antigens oder Haptens. Diese von Antikörpern,
insbesondere monoklonalen Antikörpern herstammenden Regionen
können mit Hilfe gentechnologischer Methoden mit anderen
Bereichen eines Rezeptors verbunden werden und dadurch können
Antigenrezeptoren bereitgestellt werden, die im
extrazellulären Bereich mit einem speziellen Liganden (hier
Antigen oder Hapten) binden und ein Signal in das Innere der
Zelle abgeben.
Die erfindungsgemäßen Zellen weisen nun neben dem
Hybridrezeptor noch wenigstens ein weiteres Genkonstrukt auf,
das mit Hilfe gentechnologischer Methoden in die Zelle
eingebracht wurde. Dieses Genkonstrukt besitzt einen
steuerbereich, also einen Promotor oder Repressor, der mit
dem von dem Hybridrezeptor ausgesandten Signal interagieren
kann. Das Signal schaltet dann das hinter dem Promotor
angeordnete Transgen an oder, falls es sich um einen
Repressor handelt, wird das Transgen durch das Signal
abgeschaltet.
Das durch den Hybridrezeptor in das Zellinnere abgegebene
Signal interagiert normalerweise auch mit einem in der Zelle
vorhandenen Steuerungsbereich. Wenn also beispielsweise durch
den Rezeptor das Signal zur Aktivierung eines Interleukin-2-Gens
in die Zelle eingebracht wird, schaltet der Rezeptor das
Interleukin-2-Gen an und Interleukin-2 wird exprimiert. Im
Rahmen der vorliegenden Erfindung liegt nun in der Zelle auch
ein Genkonstrukt vor, das - um beim vorigen Beispiel zu
bleiben - den Promotor für Interleukin-2 besitzt und an
diesen Promotor ist ein Transgen angeschlossen. Wenn durch
den Hybridrezeptor das Signal zur Aktivierung des
Interleukin-2-Promotors in die Zelle eingebracht wird, dann
wird nicht nur das Transgen, sondern auch Interleukin-2
exprimiert.
Auch andere Promotoren, z. B. der CMV-Promotor, können
eingesetzt werden, solange eine spezifische Aktivierung des
Promotors zur Transgen-Expression führt.
Es ist daher im Rahmen der vorliegenden Erfindung bevorzugt,
solche Zielzellinien zu verwenden, bei denen das unter der
Kontrolle des mit dem Signal interagierenden Promotors
stehende Gen nur schwach oder gar nicht exprimiert wird.
Dadurch kann eine wirksame Regulation des Transgens bewirkt
werden und die Expression von möglicherweise unerwünschten
Genprodukten wird verhindert.
Ein anderer Typus von Rezeptoren, die im Rahmen der
vorliegenden Erfindung eingesetzt werden, sind
Zytokinrezeptoren.
Die Zytokine fungieren als äußere Botenstoffe und treten in
Wechselwirkung mit den Zytokinrezeptoren. Im allgemeinen
bestehen Zytokinrezeptoren aus wenigstens drei Bereichen
(Domänen). Der extrazelluläre Bereich ist für die Bindung des
spezifischen Liganden verantwortlich. Bei den Liganden
handelt es sich um das jeweilige Zytokin. An den
extrazellulären Bereich schließt sich der Transmembranbereich
an, also der Bereich, der sich durch die Zytoplasmamembran
erstreckt und der oft für eine Oligomerisierung des
Rezeptormoleküls (Homo- und Heteropolymere) verantwortlich
ist. Im Inneren der Zelle befindet sich der intrazelluläre
Bereich, der für die Weitergabe des Signals ins Zellinnere
notwendig ist. Diese Signalweitergabe kann auf verschiedene
Art und Weise vor sich gehen. Beispiel hierfür wären eine
molekülinhärente Kinaseaktivität oder eine Weiterleitung des
Signals an assoziierte zytoplasmatische Moleküle.
Wenn das im Rahmen der vorliegenden Erfindung verwendete
Genkonstrukt als Steuerungsbereich einen Repressor aufweist,
kann durch den Hybridrezeptor der Repressor aktiviert werden,
welcher dann zellintern seine Zielsequenz inhibiert.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wäre es auch denkbar, in
die Zelle ein Genkonstrukt einzuführen, das aus einem
steuerungsbereich (Promotor) besteht, der mit dem vom
Hybridrezeptor in das Zellinnere abgegebene Signal
interagiert und, der als Transgen einen Repressor aufweist.
Wenn also der Hybridrezeptor durch ein Signalmolekül
außerhalb der Zelle aktiviert wird, dann wird ein Signal ins
Zellinnere übertragen und dadurch der Repressor exprimiert.
Dieser Repressor kann dann mit einem natürlich vorkommenden
Gen in der Zelle interagieren und dessen Expression
reprimieren.
Ein konkretes Beispiel der vorliegenden Erfindung ist eine
Zelle, die gezielt zur Insulinproduktion angeregt werden
kann. Diese Zelle weist daher einen Hybridrezeptor auf, der
im extrazellulären Bereich, also als antigenspezifische
Bindungsstelle, spezifisch mit Glukose als aktivierendem
Liganden interagieren kann. Wenn im Blut eine hinreichend
hohe Glukosekonzentration erreicht ist, daß eine Bindung der
Glukose an den Hybridrezeptor stattfindet, wird dieser
Hybridrezeptor sein Aktivierungssignal in das Innere der
Zelle weitergeben, und zwar mit Hilfe des von einem anderen
Rezeptor, beispielsweise T-Zell-Antigenrezeptor stammenden
Bereichs. Im Zellinneren wird nun ein Signal ausgelöst, das
beispielsweise mit dem Promotor für Interleukin-2
interagieren und diesen Promotor anschalten kann.
Da die Zelle ein Genkonstrukt enthält, das als Transgen das
Gen für Insulin enthält und unter der Kontrolle des IL-2-Pro
motors steht, wird auf diese Art und Weise die Produktion
von Insulin angeschaltet, und zwar in Abhängigkeit von der im
extrazellulären Bereich vorhandenen Glucose.
Im Rahmen der vorliegenden Experimente wurde ein
Hybridrezeptor verwendet, der in Fig. 1 schematisch
dargestellt ist. Im extrazellulären Bereich des
Hybridrezeptors befindet sich eine Region, die spezifisch ist
für ein bestimmtes Hapten, nämlich 4-Hydroxy-5-Iodo-3-Ni
trophenylacetat (im folgenden NIP). Dieses Hapten wird von
einem spezifischen B-Zell-Rezeptor erkannt und der
Antigenrezeptor selbst besteht aus zwei Ketten, nämlich einer
schweren (langen) und einer leichten (kurzen), welche von
zwei verschiedenen cDNA′s im Zellkern kodiert wird. Die
beiden Ketten selbst bestehen wiederum aus verschiedenen
Domänen, nämlich den variablen und konstanten Bereichen. Der
Rezeptor ist so gebaut, daß die schwere Kette mit der
leichten Kette über Disulfidbrücken chemisch verbunden wird
und dann an der Zelloberfläche exponiert wird, wobei die
Verankerung in der Zellmembran über die schwere Kette
erfolgt. Der extrazelluläre Teil des Rezeptors, der dann
spezifisch das Antigen erkennen kann, besteht somit aus der
leichten Kette, gebunden an den variablen Teil und einem
kurzen Abschnitt des konstanten Teils der schweren Kette. Im
varianten Antigenrezeptor wurden diese Bereiche auf einer
cDNA zusammengefaßt.
Der Antigenrezeptor ist mit dem CD8α-Bereich, dem
Transmembranteil ζ und dem CD3ζ-Molekül verbunden. Im
vorliegenden Fall wurde also statt des natürlich vorkommenden
Transmembran-/Intrazelluläranteils ein neuer Teil als cDNA an
die cDNA fusioniert, die den Antigen-bindenden Anteil
kodiert. Dieser neue Anteil entstammt dem CD3-Bereich des
T-Zellrezeptorkomplexes und hat normalerweise die Funktion, die
Signalübertragung vom T-Zellrezeptor ins Zellinnere zu
gewährleisten.
Dieses cDNA-Konstrukt wurde in ein Plasmid kloniert
(Expressionsvektor) und dieses rekombinante Plasmid wurde zur
Transfektion verschiedener Lymphozyten verwendet. Damit
exprimieren diese Lymphozyten einen varianten
Antigenrezeptor, der spezifisch NIP erkennt, insbesondere
wenn dieses NIP an Rinderserum Albumin gekoppelt ist, und,
der über die CD3ζ-Domäne Signale ins Zellinnere, also
beispielsweise an den IL-2-Promotor überträgt. Anstelle eines
Plasmid-Vektors können auch andere geeignete Vektoren, wie
beispielsweise auf retroviralen Elementen basierende
Vektoren, verwendet werden.
Durch die erfindungsgemäß bereitgestellten Zellen können auf
vorteilhafte Weise durch beliebig gewählte Signale andere,
auch beliebig ausgewählte Gene an- oder abgeschaltet werden.
Bei den Signalen, auf die die Hybridrezeptoren reagieren,
kann es sich entweder um körpereigene Signale handeln,
beispielsweise Tumorantigen oder ähnliches, oder um andere
Signale, die beispielsweise gezielt im Rahmen der Gentherapie
in den Körper eingebracht werden.
Als Transgen kann praktisch jedes gewünschte Gen an das
Genkonstrukt angefügt werden.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wurde ein Beispiel zur
Bestätigung des Prinzips der vorliegenden Erfindung
durchgeführt.
Zur Testung, ob ein endogenes Antigen einen zelleigenen
Promotor mit einem dahintergeschalteten Transgen über einen
varianten Antigenrezeptor regulieren kann, wurde auf ein
System T-Zelle + IL-2-Promotor zurückgegriffen.
Als T-Zellinie wurde die bereits seit langem bekannte Jurkat
Linie verwendet (entstanden aus einer humanen akuten T-Zell-Leu
kämie), welche verschiedentlich käuflich erwerbbar ist,
siehe z. B. American Tissue Culture Collection ATCC. Diese
Linie hat zwar noch die Möglichkeit, den IL-2-Promotor zu
regulieren, bildet allgemein aber nur sehr geringe
IL-2-Mengen, die kaum nachweisbar sind.
Diese Linie wurde mit dem varianten Antigenrezeptor-Plasmid
durch Elektroporation transfiziert, anschließend wurden Klone
mit stabil integrierter DNA durch Selektion mit 2000 µg/ml
Neomycin angezüchtet. Dies ergibt die Zellinie CR16s + NP8Z.
Der variante Antigenrezeptor selbst hat die in Fig. 1
dargestellte Struktur.
Bei dem Versuch sollte gezeigt werden, daß Zellen, die den
varianten Antigenrezeptor tragen, durch Stimulierung mit NIP
ein Signal ins Zellinnere übertragen können und daß dieses
Signal im Zellinneren einen Promotor aktivieren kann. Dieser
Promotor treibt ein zellfremdes Gen, hier als Markergen
Luziferase, und das Entstehen dieses Produkts kann
nachgewiesen werden. Zusätzlich soll gezeigt werden, daß die
steigenden NIP-Konzentrationen bei der Stimulierung eine
gesteigerte Transgen-Expression mit sich führen.
Dazu wurden Jurkat-Zellen (CR16s: ohne varianten
Antigenrezeptor; CR16s + NP8Z: mit varianten ζ-Ketten-Re
zeptor) elektroporiert, wobei folgende Schritte durchlaufen
wurden:
- - 5×10⁶ Zellen in 500 µl Puffer in 0,4 cm Elektroporations küvette (Biorad) geben,
- - 10 µg pIL-2/1 + Luc (Luziferase-Konstrukt mit murinem IL-2-Promotor zugeben,
- - 10 min auf Eis stellen,
- - Elektroporation mit GenePulser (Biorad) bei 280 V, 950 µF (20-30 ms Puls),
- - 10 min auf Eis stellen,
- - einmal mit Puffer waschen, Zellen auf 5×10⁵/ml Medium einstellen,
- - in 24 well Loch über Nacht mit und ohne Induktion bebrüten, Induktion mit 0, 2, 10, 40 µg/ml NIP-BSA.
Am nächsten Tag wurden die Zellen entsprechend dem Protokoll
der Fa. Promega lysiert und die synthetisierte Luziferase
mittels Luziferin (Promega) quantitativ nachgewiesen. Alle
Experimente wurden in Quadrupliketten durchgeführt und waren
reproduzierbar.
Folgende Tabelle gibt die Luziferase-Mengen wieder, die in
den einzelnen Versuchen gemessen wurden (Mittelwert aus
4 Messungen).
Wie aus obiger Tabelle 1 und der Graphik der Fig. 2
ersichtlich ist, hat NIP-BSA nur einen marginalen Effekt auf
die Luziferase Expression (Steigerung maximal 30%), während
der Einfluß der stimulierten ζ-Kette nach NIP-Kontakt stark
ausgeprägt ist (Steigerung maximal 300%). Außerdem ist eine
gute Abhängigkeit der Expression von der Menge an zugesetztem
NIP-BSA ersichtlich.
Versuchsaufbau wie in Beispiel 1, allerdings wurde ein
Plasmid verwendet, das Luziferase unter Kontrolle des humanen
CMV-Promotors exprimiert.
Verwendete Zellen: CR16s + NP8Z
Die Induktion ist etwa 2,3fach. Da der CMV Promotor von sich
aus schon ein sehr starker Promotor ist, war keine besonders
starke Induktion erwartet worden. Dieses Experiment dient nur
der Bestätigung des ersten, um die allgemeine Anwendbarkeit
des Systems zu belegen.
Die Konstruktion eines chimären einzelkettigen Antigen-Hy
bridrezeptors wird nachfolgend beschrieben. Dieser
Hybridrezeptor hat die laborinterne Bezeichnung "pANP8Zn"
erhalten.
Der Vektor wurde zusammengestellt aus einem
Vorläuferkonstrukt mit der laborinternen Bezeichnung
"pFvCD8-5-OM". Dieses Vorläuferkonstrukt enthält die Resistenzgene
für Ampicillin und Neomycin, den humanen β-Actin Promoter
sowie den kodierenden Bereich folgender Bestandteile des
single-chain Rezeptors: CD8αhinge region, TM und die
cytoplasmatische Sequenz der TCR-ζ-Kette (T-Zell-Anti
genrezeptor). Die für die Amplifikation dieser Sequenzen
notwendigen Primer sowie die Herkunft der Templates sind in
Brocker et al. (Eur. J. Immunol. (1993) 23, S. 1435-1439)
publiziert.
Das oben genannte Vorläuferkonstrukt wurde nun um ein sc-Fv
Fragment des B1-8 Antikörpers, welches das Hapten 3-Hydroxy-
4-Phenylacetyl (NP) bindet, erweitert. Die Amplifikation der
VH und VL Sequenzen eines monoklonalen Antikörpers, die
notwendigen Primer sowie der Gly/Ser-Linker sind in
Hoogenboom et al., Nucleic Acids Research (1991) 19, S. 4133-4137);
Clackson et al., Nature (1991) 352, S. 624-628 und
Huston et al., Proc. Acad. Sci. (1988) 85, S. 5879-5883
beschrieben.
Das scFv Fragment wurde hinter die Leader-Sequenz des B1-8
Antikörpers (Bothwell et al., Cell (1981) 24, S. 625-637)
kloniert und dieses Fragment im Leseraster mit der CD8αhinge
Region fusioniert. Die für die Klonierung dieser Fragmente
relevanten Restriktionsschnittstellen wurden mittels
geeigneter synthetischer Linker-Fragmente eingeführt. Das im
vorliegenden Experiment verwendete Sc-Fv Fragment des B1-8
Antikörpers bindet auch das Hapten 4-Hydroxy-5-Jodo-3-Nitro
phenylacetat (NIP), wobei durch die vorhandene Jodgruppe
die Affinität etwa um den Faktor 10 erhöht werden kann.
Die Fig. 3 stellt eine schematische Darstellung der
einzelnen Fragmente des Konstruktes dar.
Fig. 4-A-4-C betreffen die Nucleotidsequenz und die
zugehörige Aminosäuresequenz des Konstruktes.
Fig. 1 ist eine schematische Darstellung des Hybridrezeptors
mit der CD3-ζ-Kette.
Fig. 2 zeigt in graphischer Darstellung die gemäß Beispiel 2
erhaltenen Ergebnisse, wobei die Abkürzung CR16s bedeutet,
daß es sich um Zellen handelt, die keinen Hybridrezeptor
aufweisen, aber ein Genkonstrukt mit Luziferase als Transgen.
Die Abkürzung "CR16s + NP8Z" bedeutet, daß es sich um Zellen
handelt, die ein Genkonstrukt mit Luziferase als Transgen
aufweisen und zusätzlich einen Hybridrezeptor, der in Fig. 1
schematisch dargestellt ist.
Fig. 3 ist eine schematische Darstellung eines Konstruktes,
das die cytoplasmatische Sequenz der TCR-ζ Kette aufweist und
ein sc-Fv Fragment eines Antikörpers, das das Hapten NP bzw.
NIP bindet.
Fig. 4 ist die Darstellung der Nucleotidsequenz sowie der
Aminosäuresequenz des in Beispiel 3 näher erläuterten
Konstrukts.
Claims (11)
1. Eukaryotische Zelle mit einem Hybridrezeptor, der einen an
der Außenseite der Zelle lokalisierten, für ein bestimmtes
Signalmolekül spezifischen Rezeptorteil und ein von einem
anderen Rezeptor stammendes, im Inneren der Zelle
lokalisiertes Rezeptorteil, das im Zellinneren ein Signal
auslösen kann, umfaßt, wobei die Zelle wenigstens ein weiteres
Genkonstrukt enthält, das einen Steuerbereich aufweist, der
mit dem von dem Hybridrezeptor ausgesandten Signal
interagieren kann und dadurch die Expression eines mit diesem
Steuerbereich verbundenen Transgens steuern kann.
2. Zelle nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der
Teil des Hybridrezeptors, der an der Außenseite der Zelle
lokalisiert und für ein bestimmtes Signalmolekül spezifisch
ist, ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus
Antigenrezeptoren, die für bestimmte Antigene oder Haptene
spezifisch sind, wobei der an der Außenseite der Zelle
lokalisierte Teil des Hybridrezeptors auch einen
Abstandsbereich umfassen kann.
3. Zelle nach einem der Ansprüche 1 oder 2, dadurch
gekennzeichnet, daß der Teil des Hybridrezeptors, der an der
Innenseite der Zelle lokalisiert ist und im Zellinneren ein
Signal auslösen kann, ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend
aus den intrazellulären und/oder Transmembranbereichen von
T-Zellen-Antigenrezeptoren und B-Zellrezeptoren.
4. Zelle nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß der Steuerbereich des weiteren
Genkonstruktes, der mit dem von dem Hybridrezeptor ausgelösten
Signal interagieren kann, ausgewählt ist aus der Gruppe
bestehend aus Promotoren und Repressoren.
5. Zelle nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß das Transgen des weiteren Genkonstruktes
ausgewählt ist aus Genen, die für Genprodukte, ausgewählt aus
der Gruppe bestehend aus Zytokinen, insbesondere G-CSF, TL-2, IL-3,
IL-4, IL-6, Interferone, Erythropoietin und Insulin oder für
Transkriptionsfaktoren kodieren.
6. Zellen nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch
gekennzeichnet, daß die Zellen menschliche Zellen,
insbesondere Lymphozyten, hematopoetischen Stammzellen,
Fibroblasten oder Tumorzellen sind.
7. Verfahren zur Herstellung von Zellen nach den Ansprüchen 1
bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Zielzelle transfiziert
wird, wodurch die genetische Information für wenigstens einen
Hybridrezeptor und wenigstens ein Genkonstrukt in die
Zielzelle eingebracht wird.
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß die
genetische Information für Hybridrezeptor und Genkonstrukt auf
einem Vektor lokalisiert ist.
9. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß die
genetische Information für Hybridrezeptor und Genkonstrukt auf
zwei Vektoren verteilt ist.
10. Verwendung von Zellen nach den Ansprüchen 1 bis 6 in der
Gentherapie.
11. Verwendung von Zellen nach einem der Ansprüche 1 bis 6
bei der Therapie von Tumoren.
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