DE1815332C3 - Verfahren zur Bindung von Proteinen, Polypeptiden, Peptiden oder Derivaten derselben an in Wasser unlösliche Polymere mit einer oder mehreren Hydroxyl- oder primären oder sekundären Aminogruppen - Google Patents
Verfahren zur Bindung von Proteinen, Polypeptiden, Peptiden oder Derivaten derselben an in Wasser unlösliche Polymere mit einer oder mehreren Hydroxyl- oder primären oder sekundären AminogruppenInfo
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Description
Vorliegende (.rfindung betriffl den in den Palcntan-Sprüchen
definierten Gegenstand
Proteine. Polypeptide. Peptide oder Derivate dcrscl bcn mit einer oder mehreren Gruppen der Formel
-YII. wobei YH eine primäre oder sekundäre
Aminogruppe isi. dc.cn Bindung an Polymere von i">
Speziellem Interesse ist. sind beispielsweise Fnzyme.
Antikörper. Protein- und/oder Peptid-Hormone. Anti
gen-Proteine. Allcrgenc sowie llaptene. Fm wichtiges
Beispiel sind die Antikörper, die zur analytischen
Bestimmung auf diese Weise .in Polymere gebunden v>
werden können.
Beispiele für Polymere mn einer oder mehreren Gruppen der lormel XII. wobei XII cmc
Hydroxyl oder cmc primäre oder sekundäre Aminu
gruppe darstellt, sind Polysaccharide wie Dcxlrnn. v,
Cellulose. Slarkc. Dextrin und Agar Agar. Copolymere von Dextran mil Fpichlorhydnn oder Derivate dieser
Verbindungen wie I lydroxyaihyli ellulosc und 2 I lydro
xy-J (4 amino phenoxy) propyl substituierte (opoly
mere vun Dextran mn Lpichlurhydnii. Audi l'olyaminu mi
styrol isl ein geeignetes Polymer.
Zur Herstellung eines reaktionsfähigen Derivats eines derartigen Polymeren bislang bekannte Verbindungen
willen Mittel zur Kinfiihrting von A/idgruppcn,
Isocyanatgruppen und Diazonitinigrtippen. Die I lersicl- Wi
lung derartiger reaktionsfähiger Derivate war häufig kompliziert und die f'rgcbnissc nur schwer reproduzierbar.
Fs war ferner bekannt, reaktionsfähige Gruppen in ein Polymeres einzuführen, das eine oder mehrere
Gruppen der Formel - XH aufweist, und zwar durch Behandeln des Polymers mit Bromcyan. Diese Verbindung
ist jedoch sehr toxisch und daher zum Arbeiten in technischem Maßstab ungeeignet. Während Bromcyan
ein reaktionsfähiges Derivat ergibt, das unter verschiedenen Gesichtspunkten außerordentlich gute Eigenschaften
zeigt, besteht ein gravierender Nachteil dieser Verbindung darin, daß die Reaktionsfähigkeit des so
erhaltenen Derivates kaum variiert bzw. dem jeweiligen Fall angepaßt werden kann. Demgegenüber wird
erfindungsgemäß zur Bildung des reaktionsfähigen Derivats des Polymeren eine Verbindung eingesetzt, die
eine oder mehrere Cyanatgruppen aufweist
Aus Annual Review of Biochemistry, Bd. 35, S. 873 ff.
(1966) ist bekannt, verschiedene aminogruppenhaltige Enzyme durch kovalenle Bindungen an polymere
Träger zu kuppeln, welche durch Einführung von Azid-. Bromacetyl- oder Diazoniumgruppen aktiviert wurden.
Die Verwendung von Cyanatverbindungen als »Bindungsvermittler« zwischen z. B. Enzymen oder Antikörpern
mit einer oder mehreren primären oder sekundären Aminogruppen einerseits und andererseits polymeren
Trägern, wie /_ B. einem Polysaccharid, wurde jedoch durch den Stand der Technik nicht nahegelegt,
und es isl als im hohen Maße überraschend anzusehen,
daß z. B. Enzyme und Antikörper nach dem erfindungsgemäßen Verfahren beispielsweise Antikörper — auch
sehr empfindliche — unter Verwendung dieser speziellen Bindungsvcrmiitler an polymere Träger unter sehr
schonenden Bedingungen gebunden werden können, ohne daß hierbei deren Fähigkeit, ihr Antigen zu binden,
verlorengeht.
[■'in beträchtlicher \ urteil des erfindungsgemäßen
Verfahrens liegt darüber hinaus in der Möglichkeit, dieses an die jeweiligen speziellen zu bindenden
organischen Verbindungen, wie z. B. Proteine, hinsieht
lieh Reaktivität und Reaktionsgeschwindigkeit anzupas
sen. indem man eine unter dem jeweiligen dominieren den Gesichtspunkt optimale Cyanatvcrbindung aus
wählt, was mit keinem der bislang bekannten Bindungs
Vermittler möglich war.
Bevorzugte, cmc oder mehrere Cyanatgruppcn
aufweisende, als Biiulungsvermittler verwendbare Vcr
bindungen besitzen die allgemeine Formel
U(OCN),
in der R beispielsweise emc I lalogcnalkylgruppc. eine
substituierte aroma 1 ische (!nippe, cir !lelerocyclisclu-s
Ringsyslcm oder cmc cycloaliphatische Gruppe und t
du· Zahl I oder 2 bedeuten. Substilucnlen der aniiiiiitiM'hcn (»"tippe sind beispielsweise Nitrogruppen.
Halogen, wie z.B. Chlor. Aikylrcstc. wie ζ. Β der
Melhyl oder tcrl. Bulylrcsl. und Alkoxygruppcn. wie
z. B. die Mclhoxygruppc
Die beim crfindiingsgcmäBen Verfahren eingesetzten
Verbindungen mit mindestens einer ( ynnalgriippi·
können sehr verschiedener Natur scm Fs kann sich
beispielsweise iini substituierte oder unsubstiliiierle
urgiinisdic VcrbtnUungwn, wig /. H. subsliuiicnc üiler
iihsubslilüicrtc aliphatischc, alicycliseh-aromalischc
öder heterocyclische: Cyimillvefbindüngcin handeln,
oder um an anorganische Cyanate, wie z. B. Nalriumodcf
Kiilitimcyanal. Als Beispiele für derartige Verbindungen
seien genannt.
/J./i./if-TrichloriiihylcyaniJt,
I -AdüinaniylcyanaU Phcliylcyanat,
o-Nitrophcnylcyanal, p-Niirophcnylcyniiai.
m-Chlorphenylcyanai, p-Meihoxyphenylcyanai.
o-ieru-Butylphenylcyanat,
2^-Dimeihyiphenylcynnat,
Z^b-Tri-teru-butylphenylcyanat.
2-Naphthylcyanat und
1,4-Dicyanatobenzo!.
Das erfindungsgeniäße Verfahren besteht aus zwei Stufen. In der ersten Stufe wird das reaktionsfähige
Derivat des Polymeren hergestellt, indem man das eine oder mehrere Gruppen der Formel — XH enthaltende
Poiymere mit dem betreffenden Cyanat in Berührung bringt. Die Umsetzung erfolgt zweckmäßig in wäßriger
Lösung oder Suspension, ivunei sowohl saure wie auch
basische Bedingungen möglich sind. Die pH-Werte liegen jedoch im allgemeinen zwischen 7 und 13. Die
Reaktion kann ferner in von Wasser verschiedenen Lösungsmitteln, beispielsweise mit Wasser mischbaren
Lösungsmitteln, wie z. B. Aceton oder Dioxan. erfolgen.
Zur Einstellung des /weckmäßigen pH-Werts oder pH-Bereichs geeignete Verbindungen sind Natriumhydroxyd.
Calciumhydroxyd. Natriumbicarbonat, Natriumcarbonat, Kaliumcarbonat und Triäthylamin. Der
geeignete pH Wert oder pH-Bereich, der unter anderem von der Reaktionstemperatur und -/eil
abhängt, kann leicht ermittelt werden. Die Umsetzung
kann bei verschiedenen Temperaturen, beispielsweise 0
bis 50"C, durchgeführt werden, und die Reaktionszeit
kann in einem breiten Bereich schwanken und beispielsweise bis zu mehreren Stunden betragen. Das
reaktionsfähige Derivat des Polymeren wird vor der Bindung an die oibanische Verbindung, wie z.B. das
Protein, zwcckmäßigerweise gcrcir ^t, beispielsweise
durch Waschen mit geeigneten '.ösungsiriiteln. wie z. B.
Wasser oder Aceton.
In der zweiten Verfahrensslufe. d. h bei der Bindung
des reaktionsfähigen Derivats des Polymeren an die organische Verbindung, wie z. B. das Protein, die eine
oder mehrere Gruppen der Funnel - Yl I aufweist, wird
in einer schwach alkalischen wäßrigen Lösung bei einer Temperatur von im allgemeinen 0 bis 50"C". beispielsweise
bei Raumtemperatur, gearbeitet.
Fin wesentlicher Vorteil bei der Verwendung von Cyanverbindungen als Mittel zur Finführung der
reaktionsfähigen Gruppen in das Polymere besteht darin, daß man auch sehr empfindliche organische
Verbindungen, wie z. B. Proteine, an Polymere binden
kann, ohne daß crsterc einer nicht erwünschten
Veränderung unterliegen. Durch Umsetzung des die Gruppen der Formel XH enthaltenden Polymeren
mn verschiedenen ('yanalverbindungen erhält man sehr
reaktionsfähige Zwischenprodukte, die schema lisch wie
folgt dargestellt werden können:
P X ( O U1
NII
worm X die weiter oben genannte üedeiiUing besil/l. Ri
den Resl des ( yanals und P das Polvmcre darstellen. Diese iiwischcnpmilukle reagieren leithl unler milden
Keäklioiisbcdingüngcn mit einer Aniihogrlippe der
betreffender) organischen Verbindung, Wie /. Ii. des
i'roicins. Beispielsweise kann man eitlen Antikörper auf
diese Weise an das Polymere binden, ohne daß die Fähigkeit des Antikörpers zur Bindung seines Antigens
vcrlorcngchl.
Ein Beispiel für ein in Wasser unlösliches Polymeres ist ein Copolymcrcs aus Dextran und Epichlorhydrin
(»Sephadex«). Dieses Polymer zeichnet sich durch verschiedene Wasseraufnahme und variierende Teilchengrößen
aus. Zur Bindung beispielsweise von Antikörpern an das Dextran-Copolymere kann man
eine aus kleinen Körnchen, vorzugsweise von 1 — 10 μηι
bestehende Form derselben verwenden.
Aus nachstehendem Beispiel ist ersichtlich, daß die Art des Substituenien in der organischen C'yanatve. bindung
variiert werden kann. Der Substituent kann fähig
to sein. Elektronen abzugeben oder aufzunehmen, ferner
kann er eine gewisse sterische Hinderung verursachen: die Stellung des Substiluenten zur Cyanatgruppe ist
nicht wesentlich. Die Aktivierung des Polymeren kann bei verschiedenen pH-Werten und Temperaturen
erfolgen, wobei für jede einzelne Cyanatverbindung die besten Bedingungen leicht feststellbar sind.
A) Die Herstellung des
reaktionsfähigen Derivats des Polymeren
Allgemeines Verfahren
1 g des Polymeren (/.. B. vcrnetztes Dextran. Agar-gel
r> von Agar-Agar. Cellulose) wird in 40 ml destilliertem Wasser 3 Minuten lang gerührt, dann werden 2 g der
mindestens eine Cyanatgruppe aufweisenden Verbindung zugesetzt. Der pH-Wert wird aul 10.7 eingestellt
und durch automatische Zugabe einer wäßrigen jo 2molaren Lösung von Natriumhydroxid auf diesem
Wert gehalten. Die Reaktion wird 6 Minuten lang fortgesel/t. dann wird das Reaklionsprodukt abfiltriert
und sorgfältig mit Wasser. Aceton und Wasser und schließlich Aceton gewaschen und getrocknet.
r> Die Herstellung des reaktionsfähigen Derivats kann auch bei anderen pH-Werten und unter Verwendung anderer Reaktionszeiten (Tabelle 5) erfolgen.
r> Die Herstellung des reaktionsfähigen Derivats kann auch bei anderen pH-Werten und unter Verwendung anderer Reaktionszeiten (Tabelle 5) erfolgen.
B) Bindung von organischen Verbindungen,
in die eine oder mehrere (iruppen der Formel YH
in die eine oder mehrere (iruppen der Formel YH
enthalten, an das
reaktionsfähige Derivat des Polymeren
reaktionsfähige Derivat des Polymeren
I. Bindung von Insulin-Antikörpern an Teilchen
aus vernetzten) Di Uran. Agar-Agar und Cellulose
aus vernetzten) Di Uran. Agar-Agar und Cellulose
100 mg des reaktionsfähigen Derivats werden in
400 μΙ eines Natriuincarbonai-Natriumcarbonat-Pufiers
(pH-Wen 9.2) 10 Minuten lang gequollen. 100 μΙ der
1 östing des Antikörpers in der gleichen Pufferlösung
in werdendem reaktionsfähigen Derivat zugegeben, dann
wird bei f 4 C 2 bis 3 Tage lang geschüttelt. Danach gibt .nan wenige ml einer 0.1 molaren Nalriumbicarbo
nallösting zu. worauf zentrifugiert und die klare Losung
abgesaugt wird. Der feste Rückstand wird mn
r, 0,1 molarer Nairitimbicarbonallösiing. 0,5molarcni Is
sigsäurcpuffer (pH-Wert 4.5) und schließlich mit dem
Puffer, der später für die auszuführende Analyse der
125 g Insulin Adsoibtion verweuclil wird (vgl. Tabelle
I —4). gewaschen.
2. Bindung von Glycyllciicin und
GlycyltyiOsin an das reaktionsfähige Derivat
von vernetztcm Dextran
0,20 g des reaktionsfähigen Derivats von verhetztem
Dextran und 0,08 g Glyeyllcuein oder Glycyltyrosin Werden in I nil einer Nalriumcafbonät-Nälriiimbicafboiiat-Ptiffcriösung
(pH 9,2) 2 Tage lang bei 4°C gerührt. Das Produkt wird abfiltriert Und (Hit 0,5niolarcr
Natriumbicarbonatlösung und 0,01 molarer Salzsäure
und und 1 molarem NaCI und schließlich mil Wasser gewaschen. Das gewaschene Produkt wird mit Aceton
geschrumpft und getrocknet.
Analyse:
1) Die an das vernetzte Dextran gebundene Menge Gljcylleucin beträgt 13%.
2) Die an das vernetzte Dextran gebundene Menge Glycyltyrosin beträgt 12%.
3) In den folgenden Tabelle werden die Eigenschaften
verschiedener Arten von vernetzten! Dextran, die durch verschiedene organische Cyanate aktiviert
sind, miteinander verglichen.
Die Ergebnisse der jeweiligen Tabellen sind nicht untereinander vergleichbar. Unter cpm wird die Anzahl
von Ausschlägen pro Minute angegeben, die mit 125 J-Insuün, absorbiert durch 0,1 mg eines Komplexes
zwischen Antikörpern und aktiviertem vernetzten
Dextran, erhallen wird.
Cyanat
cpm
Phenylcyanat
p-Nitrophenylcyanat
o-Nitrophenylcyanat
in-Chlorphenylcyanat
p-Nitrophenylcyanat
o-Nitrophenylcyanat
in-Chlorphenylcyanat
9200 9300 4600 1400
Cyanat
cpm
Phenylcyanal
p-Methoxyphenylcyanat
2,4-Dichlorphenylcyanat
2-tert.-Butylphenylcyanat
1-Ad- mantylcyanat
2.6-Dimethylphenylcyanat
2600 2240
540 2040
580 1100
Cyanal
^,ff./i-Trichloräthylcyanat
2.4.b-Tri-tert.-bulyIphcnylcyanai
2.4.b-Tri-tert.-bulyIphcnylcyanai
Tabelle 4
Cyanal
Cyanal
cpm
34 18
cpm
I-Naphihylcyanat
1.4-Phenylendicyanal
l'henykyanal
1200
600
1250
Cyanal
pH
Aklivierungszcil
Min.
cpm
Phcnylcyanat | 10,7 | 1,5 | 112 000 |
Plienylcyarmt | 10,7 | 6 | 93 000 |
Fhenylcyanal | ?. | 6 | 44 000 |
Phenylcyanat | I | 6 | 4 000 |
Phetiyleyarial | 4 | 6 | 7 000 |
Cyanal
Polymer
cpm
Phenylcyanat
im Handel erhältliches.
mit Epiehlorhydrin
vemetzies Dextran 9200
(Handelprodukt
Sephadex®)
Cellulose 9000
Agar-Agar 9100
(Handelsprodukt
Sepharos®)
Cyanat
Polymer
cpm
Natriumcyanat
Polyvinylalkohol
Polyvinylalkohol
vernei-; es Dextran 1000
(vgl. Tab. 6)
dito 700
i. Bindung von Insulin-Antikörpern an Teilchen aus vernelztem Dextran
Es wurde nach obigem Verfahren. B) Kap. 1. gearbeitet, jedoch mit folgenden Abweichungen:
Die Lösung des Antikörpers wurde dem reaktionsfähigen Derivat zugesetzt und bei +23"C 1. 2.4.6 bzw. 24
Stunden lang geschüttelt. Dk- Lrgebnissc sind in Tabelle
8 zusammengefaßt.
Cyanal
Reaktionszeit
cpm
Phenylcyanat
Phenylcyanat
Phenylcyanal
Phenylcyanal
Phenylcyanat
Phenylcyanat
Phenylcyanal
Phenylcyanal
Phenylcyanat
4500 4700 4800 4800 4800
Mit Ausnahme von I-Adamaniykyanal und o-Nitro-4Ί
phenylcyanal waren alle getesteten Cyanat-Verbindung aus der Literatur bekannt (vgl. Angew. Chem.. Bd. 79. S.
219 [1967]). Das l-Adamaniylcyanat wurde nach einem
an sich bekannten Verfahren wie folgt hergestellt (vgl. J.
Am. Chem. Soc. Bd. 86. S. 4732. [1964]). ebenso das
o-Nitrophenylcyanat (vgl. Chem. Ber. Bd. 97. S. 1018 [!964]).
1-Adamantylcyanat
Fine 50%ige Suspension von 5 g Nairiumhydrid in Öl
5·; winde zweimal mil trockenem Benzol gewaschen, das
dann abdekanliert wurde. Das Nairiumhydrid wurde sodann in 75 ml trockenem Benzol dispergicrt. danach
wurden Ib.' g 1-Adamamanol zugesetzt. Das Gemisch
wurde unter Rühren 4 Stunden unter Rückfluß erwärmt.
dann wurde auf Raumtemperatur abgekühlt.
Sodann wurden 10,5 g Bromcysn in 25 ml trockenem
Benzol gelöst, im Verlauf von etwa 15 Minuten zugetropft. Nach weiterem lOminüligcm Rühren wurde
der Niedersc'tlag abfiltriert und mit trockenem Benzol gewaschen. Filtrat und Waschlösungen wurden vereinigt
und zur Trockne eingedampft. 10 g des Rückstands wurden in 25 ml siedendem Benzol gelöst, und die
Lösung wurde über Nacht bei -20°C stehengelassen.
Der resultierende Niederschlag wurde abfiltriert, und
das Filtrat wurde als Aktivicrungsmittel verwendet.
o-Nilrophenylcyanat
13,9 g o-Nitrophenol und 11,1 g Bromcyan wurden in
ml Aceton gelöst. Dann wurden 10,1 g Triüihylumiii
unter Eiskühlung mit solcher Geschwindigkeit zugetropft, daß die Temperatur nicht über 100C anstieg.
Nach beendeter Zugabe wurde noch 5 Minuten lang geführt. Sodann wurde das Rcaklionsgemisch filtriert,
und das Fillrat wurde in Eiswasscr gegossen. Das Produkt wurde abfiltrierl und in einem Exsiccator über
Phosphorpentoxid getrocknet. Man erhielt 14,2 g Produkt (87% Ausbeute). Dieses Rohprodukt wurde als
Aktivicrungsmittcl verwendet.
Bindung von Antikörpern
gegen Immunglobulin-lgF. an ein mit aromatischen
gegen Immunglobulin-lgF. an ein mit aromatischen
Aminogruppen substituiertes
Polyacrylnmidpolymcr und an Keratin
Polyacrylnmidpolymcr und an Keratin
(A) Aktivierung des Polymeren
durch Umsetzung mit Phenylcyanat
durch Umsetzung mit Phenylcyanat
I) Als Polymeres wurde ein mit p-Aniinophcnylgruppcn
substituiertes, vernctztcs Polyacrylamid verwendet, dessen Struktur-Hauptmerkmale aus der
nachfolgenden Formel ersichtlich sind (Handelsprodukl Enzacryl® der Firma United Kingdom
Company, Koch-Light Laboratories, Ltd., CaImbrook, Buckinghamshire)
— CU — CUj--CH — CH2-CH — ClU—CH -CHt -CH CH*
CONH, CONH,
CONH,
NH CO j
CII, j CONII < O> Nil,
NH — CO i
-CH CH2-CH -CH2-CH-CH2-CH CH2- CH CtI,
CONH,
CONH CONH, CONH,
NII,
Zur Aktivierung des Polyarylamidpolymeren wurden 50 g desselben in 10 ml destilliertem Wasser 3
Minuten bewegt, wonach 100 mg Phcnylcyanal
/.UgCgtUCl:
45
einem pH-Wert von 10,7 durch automatische Zugabe einer wäßrigen 2-m Natronlauge während
6 Minuten bei Raumtemperatur bewirkt. Das aktivierte Gel wurde auf einem Glasfilter unter
Absaugen zuerst mit Wasser, dann mit Aceton und abermals mit Wasser gewaschen. Das Produkt
wurde in Aceton geschrumpft und im Vakuum bei 20° C getrocknet.
2) In 40 ml destilliertem Wasser wurde 1 g entfettete Schafwolle (Keratin) während 3 Minuten bewegt,
wonach 1 g Phenylcyanat zugegeben wunde. Der pH-Wert wurde auf 10,7 eingestellt und durch
automatische Zugabe einer wäßrigen 2-m Natronlauge bei diesem Wert gehalten. Die Umsetzung
wurde 6 Minuten fortschreiten gelassen, wonach das Reaktionsprodukt abfiltriert und sorgfältig mit
Wasser und Aceton gewaschen, sodann mit Aceton geschrumpft und im Vakuum bei 20°C getrocknet
wurde.
(B) Bindung von Antikörpern
gegen ImmungIobulin-IgE(Anti-IgE)anden
polymeren Träger
1) 25 mg des aktivierten Polyacrylamidpoiymeren in
4 ml einer 0.1 -m Natriumbicarbonatlösung wurde mit 50 ul einer Lösung von A--E. weiche 10 mg
pro ml enthielt, versetzt. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht bewegt, und die Teilchen wurden
zunächst zweimal während 30 Minuten mit einer G,5-tn iNlii
gcWaaCiieu ünvi
sodann 3 Stunden mit 0,5-m Ethanolamin in 0,1 molarer Natriumbicarbonatlösung umgesetzt.
Die Teilchen wurden zweimal mit 0.5-m NaHCOj-Lösung,
sodann 2 Minuten mit einer 0,1-m Natriumacetatlösung und sodann 30 Minuten mit
einer 0.1-m Natriumacetatlösung gewaschen. Die Teilchen wurden in einem Puffer suspendiert,
welcher 0,05-m Phosphalpuffer vom pH-Wert 4, 0.9% NaCI, 0,3% Humanserumalbumin, 0,05% des
Handelsproduktes Tween 20 und 0,01% NaN3 (als
Inkubationspuffer) enthielt.
0.5 ml der zuvor beschriebenen Suspension mit einem Gehalt an 0,5 mg Teilchen pro ml wurden
mit 50 ml einer IgE-Lösung mit einem Gehalt an 400 Einheiten (British Research Standard 68/341)
IgE pro ml vermischt und 3 Stunden bewegt. Die Probe wurde mit dem Inkubationspuffer gewaschen,
und eine Lösung von 100 μ] von 125 J
Anti-lgE mit einem Gehalt an 3 ng pro lOOul
wurde zugegeben. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht bewegt, und die Probe wurde mit 05%
NaCl und 0,05% Tween 20 gewaschen; die gebundene Radioaktivität wurde unter Verwendung
eines y-Zählers bestimmt.
2) 0,5 g der aktivierten Schafwolle (Keratin) wurden mit 0.1 ml einer Lösung von Anti-lgE mit einem
10
Gehalt von IO mg/ml in 40 ml einer 0,1 in
Natriumbicarbonatlösung vermischt. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht bewegt, und die
Teilchen wurden zunächst zweimal mil einer 0,5-m Natriumbicarbonatlösung während 30 Minuten
gewaschen und sodann mit 0,5-m Ethanolamin in ever 0,1-m Natriumbicarbonatlösung während 3
Stuifden umgesetzt. Die Teilchen wurden zweimal mit einer 0,5-m Natriumbicarbonatlösung und
sodann mit einer 0.1-m Natriuir.icctatlösung
während 2 Minuten und schließlich mit einer 0,1-m
Natriumacelallösürig während 30 Minuten gewaschen. Die Teilchen würden in einem Puffer
suspendiert, welcher Ö,05-m Phosphalpuffer vom pH-Wert 4, 0,9% NaCI% Humanserumalbumin, η
0,05% Tween 20 und 0,01 NaN3(!nkubationspuffer)
enthielt. '
0.5 nil der zuvor beschriebenen Suspension mit Polymeres
einem Gehalt art I mg Teilchen pro 100 μΙ wurden
mit 50 μΙ einer IgE-Lösung mit einem Gehalt an 400 20 Polyacrylamid
Einheiten (British. Research Standard 68/341) IgE (Handclspfödükl
pro ml vermischt, wonach 3 Stunden bewegt wurde. Enzacryl®) Die Probe wurde mit dem Inkubationspuffer Keratin
gewaschen, wonach eine Lösung von 100 μΙ 125 J
Anli-lgE zugegeben wurde, welche 3 ng pro 100 μΙ
enthielt. Das Reaktionsgemisch wurde über Nacht bewegt, und die Probe wurde mit 0,9% NaCI und
0,05% Tween 20 gewaschen; die gebundene Radioaktivität wurde unter Verwendung eines
y-Zählers bestimmt.
Die Versuchsergebnisse sind in der nachfolgenden Tabelle zusammengestellt. Unter »cpm« wird die
Anzahl von Ausschlägen pro Minule angegeben, die mit J AnIi-IgE erhalten wurde, das immunochemisch an
mg des Poiyacryianiidkonjiigats oder an I mg des
Keratinkonjtlgats gebunden war.
cpm
31 000
13 000
Claims (2)
1. Verfahren zur Bindung von Proteinen. Polypeptiden,
Peptiden oder Derivaten derselben mit einer oder mehreren Gruppen -YH, wobei -YH eine
primäre oder sekundäre Aminogruppe darstellt, an in Wasser unlösliche Polymere mit einer oder
mehreren Gruppen der Formel -XH, die eine Hydroxylgruppe oder eine primäre oder sekundäre
Aminogruppe darstellt, durch kovalente Bindungen, wobei das die Gruppe(n) der Formel -XH
enthaltende Polymer mit einer Verbindung umgesetzt wird, die ein reaktionsfähiges Derivat des
Polymers zu bilden vermag, worauf das Derivat mit is
dem Protein, Poypeptid. Peptid bzw. Derivat derselben umgesetzt wird, dadurch gekennzeichnet,
daß man als zur Bildung des reaktionsfähigen Derivates des Polymers befähigte Verbindung
eine Verbindung mit einer oder mehreren Cyanatgruppen verwendet, wobei die Umsetzung in
Lösung mit Wasser oder in einem mit Wasser mischbaren Losungsmittel oder wäßriger Suspension
durchgeführt wird, und daß das Umsetzungsprodukt, gegebenenfalls nach Reinigung, mit dem 2ϊ
Protein. Polypeptid. Peptid bzw. Derivat derselben in einer schwach alkalischen wäßrigen Lösung bei
einer Temperatur von im allgemeinen 0 bis 50' C umgesetzt wird.
2. Verfahren gemäß Anspruch 1. dadurch gekenn· jo
zeichnet, da'i man bei der Umsetzung des Polymers mit der Verbindung nut einer oder mehreren
i'yanatgruppen in wäßriger Lösung odrr in wäßriger
Suspension bei einem pH·Wert zwischen 7 und
1 J arbeitel. r.
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