DE1492018C - Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-Emulsion - Google Patents
Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-EmulsionInfo
- Publication number
- DE1492018C DE1492018C DE1492018C DE 1492018 C DE1492018 C DE 1492018C DE 1492018 C DE1492018 C DE 1492018C
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- oil
- emulsion
- water
- vaccine
- volume
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
- 229960005486 vaccines Drugs 0.000 title claims description 29
- 239000007762 w/o emulsion Substances 0.000 title claims description 15
- 230000003053 immunization Effects 0.000 title claims description 6
- 238000002649 immunization Methods 0.000 title claims description 5
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 31
- 102000038129 antigens Human genes 0.000 claims description 31
- 108091007172 antigens Proteins 0.000 claims description 31
- UGMCXQCYOVCMTB-UHFFFAOYSA-K dihydroxy(stearato)aluminium Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)O[Al](O)O UGMCXQCYOVCMTB-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 24
- JDRAOGVAQOVDEB-KTKRTIGZSA-N (3-hydroxy-2,3,3a,5,6,6a-hexahydrofuro[3,2-b]furan-6-yl) (Z)-octadec-9-enoate Chemical compound OC1COC2C(OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC)COC21 JDRAOGVAQOVDEB-KTKRTIGZSA-N 0.000 claims description 19
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 16
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 claims description 10
- 230000002009 allergen Effects 0.000 claims description 8
- 235000015112 vegetable and seed oil Nutrition 0.000 claims description 7
- 239000008158 vegetable oil Substances 0.000 claims description 7
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 2
- 238000004945 emulsification Methods 0.000 claims description 2
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 50
- 230000000240 adjuvant Effects 0.000 description 26
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 description 26
- 235000019483 Peanut oil Nutrition 0.000 description 22
- 239000000312 peanut oil Substances 0.000 description 22
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 21
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 18
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 18
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 18
- 238000000034 method Methods 0.000 description 16
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 14
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 14
- 102000004965 antibodies Human genes 0.000 description 12
- 108090001123 antibodies Proteins 0.000 description 12
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 12
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 11
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 11
- 241000712461 unidentified influenza virus Species 0.000 description 10
- 210000002966 Serum Anatomy 0.000 description 9
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 9
- 208000006572 Human Influenza Diseases 0.000 description 6
- 206010022000 Influenza Diseases 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 229960004784 ALLERGENS Drugs 0.000 description 5
- 239000007764 o/w emulsion Substances 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 4
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 4
- 231100000614 Poison Toxicity 0.000 description 4
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 4
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 4
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 4
- 230000003389 potentiating Effects 0.000 description 4
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 210000004369 Blood Anatomy 0.000 description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 3
- NWGKJDSIEKMTRX-HSACVWGTSA-N [(2R)-2-[(2R,3R,4S)-3,4-dihydroxyoxolan-2-yl]-2-hydroxyethyl] (E)-octadec-9-enoate Chemical compound CCCCCCCC\C=C\CCCCCCCC(=O)OC[C@@H](O)[C@H]1OC[C@H](O)[C@H]1O NWGKJDSIEKMTRX-HSACVWGTSA-N 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 201000002491 encephalomyelitis Diseases 0.000 description 3
- 239000000677 immunologic agent Substances 0.000 description 3
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 239000002480 mineral oil Substances 0.000 description 3
- 235000010446 mineral oil Nutrition 0.000 description 3
- 239000002574 poison Substances 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 229940035049 sorbitan monooleate Drugs 0.000 description 3
- 235000011069 sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 3
- 239000001593 sorbitan monooleate Substances 0.000 description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 3
- 101710026914 AAG Proteins 0.000 description 2
- 244000144725 Amygdalus communis Species 0.000 description 2
- 235000011437 Amygdalus communis Nutrition 0.000 description 2
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 2
- 101700021338 LEC Proteins 0.000 description 2
- 101700048515 LEC1 Proteins 0.000 description 2
- 101700046135 LEC2 Proteins 0.000 description 2
- 101700077545 LECC Proteins 0.000 description 2
- 101700028499 LECG Proteins 0.000 description 2
- 101700028593 LECH Proteins 0.000 description 2
- 101700063913 LECT Proteins 0.000 description 2
- 206010024769 Local reaction Diseases 0.000 description 2
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 2
- 101710034340 Os04g0173800 Proteins 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K [O-]P([O-])([O-])=O Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 239000000910 agglutinin Substances 0.000 description 2
- 239000008168 almond oil Substances 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial Effects 0.000 description 2
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 235000005687 corn oil Nutrition 0.000 description 2
- 239000002285 corn oil Substances 0.000 description 2
- 235000012343 cottonseed oil Nutrition 0.000 description 2
- 239000002385 cottonseed oil Substances 0.000 description 2
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 2
- 239000002552 dosage form Substances 0.000 description 2
- 239000000428 dust Substances 0.000 description 2
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 description 2
- 239000008240 homogeneous mixture Substances 0.000 description 2
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 2
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 2
- 101700036391 lecA Proteins 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 2
- 239000004006 olive oil Substances 0.000 description 2
- 235000008390 olive oil Nutrition 0.000 description 2
- IAYPIBMASNFSPL-UHFFFAOYSA-N oxane Chemical compound C1CO1 IAYPIBMASNFSPL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 2
- 230000004044 response Effects 0.000 description 2
- 239000008159 sesame oil Substances 0.000 description 2
- 235000011803 sesame oil Nutrition 0.000 description 2
- 230000002588 toxic Effects 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 240000006249 Ambrosia artemisiifolia Species 0.000 description 1
- MWPLVEDNUUSJAV-UHFFFAOYSA-N Anthracene Chemical compound C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3C=C21 MWPLVEDNUUSJAV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000239290 Araneae Species 0.000 description 1
- 241000711404 Avian avulavirus 1 Species 0.000 description 1
- 241000588832 Bordetella pertussis Species 0.000 description 1
- 206010008631 Cholera Diseases 0.000 description 1
- 241000193155 Clostridium botulinum Species 0.000 description 1
- 241000193468 Clostridium perfringens Species 0.000 description 1
- 241000193449 Clostridium tetani Species 0.000 description 1
- 241000186227 Corynebacterium diphtheriae Species 0.000 description 1
- 241000991587 Enterovirus C Species 0.000 description 1
- 241000283073 Equus caballus Species 0.000 description 1
- 241000272184 Falconiformes Species 0.000 description 1
- 241000282324 Felis Species 0.000 description 1
- 241000558306 Gynocardia odorata Species 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 241000270322 Lepidosauria Species 0.000 description 1
- 241000589902 Leptospira Species 0.000 description 1
- 240000003183 Manihot esculenta Species 0.000 description 1
- 235000016735 Manihot esculenta subsp esculenta Nutrition 0.000 description 1
- 208000005647 Mumps Diseases 0.000 description 1
- 208000000474 Poliomyelitis Diseases 0.000 description 1
- 206010037742 Rabies Diseases 0.000 description 1
- 241000531795 Salmonella enterica subsp. enterica serovar Paratyphi A Species 0.000 description 1
- 241000270295 Serpentes Species 0.000 description 1
- JNYAEWCLZODPBN-CTQIIAAMSA-N Sorbitan Chemical compound OCC(O)C1OCC(O)[C@@H]1O JNYAEWCLZODPBN-CTQIIAAMSA-N 0.000 description 1
- 241000282898 Sus scrofa Species 0.000 description 1
- VXMKYRQZQXVKGB-CWWHNZPOSA-N Tannin Chemical compound O([C@H]1[C@H]([C@@H]2OC(=O)C3=CC(O)=C(O)C(O)=C3C3=C(O)C(O)=C(O)C=C3C(=O)O[C@H]([C@H]2O)O1)O)C(=O)C1=CC(O)=C(O)C(O)=C1 VXMKYRQZQXVKGB-CWWHNZPOSA-N 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H Tricalcium phosphate Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 206010061393 Typhus Diseases 0.000 description 1
- 241000607626 Vibrio cholerae Species 0.000 description 1
- 206010047700 Vomiting Diseases 0.000 description 1
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 description 1
- 210000001325 Yolk Sac Anatomy 0.000 description 1
- 230000000145 adjuvanticity Effects 0.000 description 1
- 201000005794 allergic hypersensitivity disease Diseases 0.000 description 1
- 229940037003 alum Drugs 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 159000000007 calcium salts Chemical class 0.000 description 1
- 230000000711 cancerogenic Effects 0.000 description 1
- 231100000315 carcinogenic Toxicity 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 1
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 1
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 1
- 230000000534 elicitor Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 1
- 229940046528 grass pollen Drugs 0.000 description 1
- 230000016784 immunoglobulin production Effects 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 239000008384 inner phase Substances 0.000 description 1
- 230000002045 lasting Effects 0.000 description 1
- 159000000003 magnesium salts Chemical class 0.000 description 1
- 201000005505 measles Diseases 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic Effects 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 235000021110 pickles Nutrition 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 230000002335 preservative Effects 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 230000000069 prophylaxis Effects 0.000 description 1
- 230000000241 respiratory Effects 0.000 description 1
- 239000002893 slag Substances 0.000 description 1
- UKNAYQWNMMGCNX-UHFFFAOYSA-N sodium;[hydroxy(phenyl)methyl]-oxido-oxophosphanium Chemical compound [Na+].[O-][P+](=O)C(O)C1=CC=CC=C1 UKNAYQWNMMGCNX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 1
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 1
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 1
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 description 1
- 241000701161 unidentified adenovirus Species 0.000 description 1
- 230000003612 virological Effects 0.000 description 1
Description
Es ist seit langem bekannt, bei der Verabreichung von immunologischen Substanzen Adjuvantien zu verwenden.
Dabei ist man bestrebt, solche Substanzen zu finden, die bei Zugabe zu einem Antigen oder einer
anderen immunologischen Substanz die Wirksamkeit und das Vermögen zur Antikörperstimulierung zu
potenzieren in der Lage sind. Es sind zahlreiche Adjuvantien bekannt, beispielsweise die Verwendung von
Alaunausfällung von Antigenen, die Kombination gewisser spezieller Antigene, von denen einige die Aktivität
der anderen in dem Gemisch potenzieren, die Verwendung von Calciumphosphat, insbesondere zur
Potenzierung der Grippe-Antikörperbildung und zahlreiche andere. Es wurden auch schon solche Adjuvantien
wie Tapioca, Calcium- oder Magnesiumsalze oder Tannin in Betracht gezogen, die bei Zugabe zu gewissen
speziellen Antigenen den Antikörpertiter über denjenigen erhöhen würden, der erzielbar wäre, wenn
das Antigen allein verabreicht wird. Die meisten dieser Mittel ergeben zwar zufriedenstellende .Wirkungen,
wenn sie zusammen mit einem oder höchstens ein paar Antigenen verabreicht werden, doch konnte
keines dieser Mittel mit Erfolg als Adjuvans mit allen immunologischen Substanzen zur Potenzierung der
Antikörperempfindlichkeit, d. h. des Ansprechens der Antikörper, verwendet werden.
Die bekannten Mittel schienen zwar zu einer zufriedenstellenden Lösung des Problems zu führen, da
nur verhältnismäßig wenige Antigene zur Verwendung zur Immunisierung von Menschen und Tieren zur
Verfügung standen, doch wird heute eine stets steigende Zahl von Antigenen zur Immunisierung und
Prophylaxe verfügbar, und es besteht ein ständig wichtiger werdendes Bedürfnis, daß die Antigene zur
Verabreichung in einer Einzeldosierungsform kombiniert werden. Um dies zu erreichen, ist es erforderlich,
kleinere Mengen des Antigens zu verwenden, damit dieses in einem zur Verabreichung in einer Einzeldosierungsform
ausreichend kleinen Volumen enthalten ist. Es besteht daher ein Bedürfnis nach einem
Adjuvans, das für den Wirt verhältnismäßig nichttoxisch ist und die Antikörperempfindlichkeit gegenüber
allen Antigenen potenziert und zusätzlich den Titer während längerer Zeitspanne aufrechterhält und
somit den Wirt mit einer langer dauernden Immunität ausstattet.
Man hat auch schon Mineralölemulsionen verwendet, in die das Antigen in die wäßrige Phase eingebracht
wurde. Dabei hat man aber festgestellt, daß das Mineralöl von dem Wirt nicht verarbeitet wird
und daher carcinogen sein kann. Ersetzt man das toxisch wirkende Mineralöl durch Erdnußöl, so
werden hierdurch die antigenen Eigenschaften der immunologischen Mittel nicht potenziert (Annual
Review Microbiology, 1947, S. 297).
In der britischen Patentschrift 888 180 wird darauf hingewiesen, daß Wasser-in-Öl-Dispersionen, die zum
Impfen verwendet werden, deshalb ungeeignet sind, weil sie sehr häufig lokale Reaktionen an der Impfstelle
verursachen. Die britische Patentschrift schlägt darum vor, nicht mehr die Wasser-in-Öl-Emulsionen,
sondern Öl-in-Wasser-Emulsionen zu verwenden. Diese Öl-in-Wasser-Emulsionen verursachen nämlich nicht
mehr die lokalen Reaktionen, wie sie bei den Wasserin-Öl-Emulsionen festgestellt worden sind. Aus einem
Aufsatz von Freund und Mitarbeitern auf den
Seiten 383 bis 398 des Journ. Irnrn., 60, 1948, geht
hervor, daß bei Kaninchen, denen eine Öl-in-Wasser-Emulsion eingeimpft wurde, eine Verminderung der
Antikörperbildung festgestellt wurde, im Gegensatz zu solchen Kaninchen, die mit einer Wasser-in-öl-Emulsion
behandelt wurden.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es, einen Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer
Wasser-in-Öl-Emulsion zur Verfugung zu stellen,
welcher die vorgenannten Nachteile nicht aufweist, sondern eine Potenzierung des immunologischen Mittels
bewirkt, und der außerdem eine gute Verträglichkeit mit dem Wirt hat.
Gegenstand der Erfindung ist ein Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-Emulsion,
gekennzeichnet durch 20 bis 75 Volumprozent eines pflanzlichen Öls, 2,5 bis 25 Volumprozent Mannidmonooieat,
0,5 bis 5 Volumprozent Aluminiummonostearat und eine ausreichende Menge Wasser
oder wäßrige Lösung, um das Volumen auf 100% zu bringen, wobei in die wäßrige Phase vor der Emulgierung
ein oder mehrere Antigene oder Allergene eingebracht wurden.
Der erfindungsgemäße Impfstoff kann durch Einbringen eines oder mehrerer Antigene oder Allergene
in die wäßrige Phase einer Emulsion, deren ölige Phase ein pflanzliches öl, Mannidmonooleat und Aluminiummonostearat
enthält, hergestellt werden.
Zum Nachweis der fortschrittlichen Eigenschaften des erfindungsgemäßen Impfstoffes wurde der in der
nachfolgenden Tabelle zusammengefaßte Versuch durchgeführt:
Meerschweinchen-Immunreaktion auf Adjuvansträger, der 600 CCA/Dose Influenza-Virus-Vaccine enthält
Impfmaterial
Geometrisches Mittel des Serum-HI-Titers für
die angegebenen Monate
die angegebenen Monate
A2/Jap./17O
0 I 1
0 I 1
A2/Taiwan
0 1
0 1
B/Mass.
0 I 1
0 I 1
Adjuvant 65 (1) (Wasser-in-Öl-Emulsion)
Öl-in-Wasser-Emulsion (2) mit Aluminiummonostearat
Öl-in-Wasser-Emulsion (3) ohne Aluminiummonostearat
0 zu Beginn.
1 nach 1 Monat.
Die Impfung wurde wie folgt vorgenommen: Jeweils sechs Meerschweinchen mit einem Gewicht von
jeweils 450 bis 500 g wurden intramuskulär mit 0,5 ecm
1:64
1:7
1:7
1:7
1:7
1:1
1:1
1:1
1:15
1:2
1:2
1:1 1:2
1:1
1:1
1:1
1:1
1:1
1:49
1:8
1:30
1:8
1:30
oder 1,0 ecm jeweils einmal geimpft. Allen Meerschweinchen
wurde vor der Impfung und dann nach einem Monat Blut entnommen. Die einzelnen Seren
3 4
wurden auf den Antikörpertiter durch Bestimmung kann auch Konservierungsmittel und/oder Substanzen,
der Hemagglutinations-Inhibierung (HI) untersucht. wie sie üblicherweise in Vaccinepräparate eingebracht
werden, enthalten.
(1) Zusammensetzung der Wasser-in-Öl-Emulsion Das Antigen selbst kann in Form von gereinigtem
(Adjuvant 65) 5 oder teilweise gereinigtem Antigen, das von Bakterien,
42,97 °/o Erdnußöl Viren, Rickettsien oder deren Produkten stammt, oder
5.01 % Mannidmonooleat von Extrakten von Bakterien, Viren oder Rickettsien
2.02 % Aluminiummonostearat vorliegen, oder das Antigen kann ein Allergen, wie
50,00 % wäßrige Vaccine beispielsweise Pollen, Staubarten, Schlacken oder
ίο Extrakte derselben sein, oder das Antigen kann in
(2) Zusammensetzung der Öl-in-Wasser-Emulsion Form eines Gifts oder Giftstoffs, der aus giftigen
mit Aluminiummonostearat Insekten oder Reptilien stammt, vorliegen. In allen
43,0 % Erdnußöl Fällen liegen die Antigene in der Form vor, in der ihre
2,0 °/o Aluminiummonostearat toxischen oder virulenten Eigenschaften vermindert
2,0 % Sorbitanmonooleat 15 oder zerstört sind, und die bei Einführung in einen
3,0% Sorbitanmonooleat (Äthylenoxid)20 geeigneten Wirt entweder aktive Immunität durch
50,0 °/o wäßrige Vaccine Erzeugung von Antikörpern gegen die speziellen
Mikroorganismen, den Extrakt oder die Produkte von
(3) Zusammensetzung der Öl-in-Wasser-Emulsion Mikroorganismen, die bei der Herstellung des Anti-
45,0 % Erdnußöl 20 gens verwendet wurden, ergeben, oder im Falle von
2,0 % Sorbitanmonooleat Allergenen die Symptome der Allergie durch das
^ 3,0 0/0 Sorbitanmonooleat (Äthylenoxid)20 spezielle Allergen lindern. Die Antigene können ent-
j 50,0 °/o wäßrige Vaccine. weder einzeln oder in Kombination verwendet werden,
beispielsweise können multiple Bakterienantigene ver-
Die erfindungsgemäßen Emulsionen leiten den elek- 25 wendet werden, multiple Virenantigene, multiple
irischen Strom nicht. Rickettsienantigene, multiple Bakterien- oder Viren-Der Brechpunkt bei Einbringen in allmählich erhitz- toxoide, multiple Allergene, oder Kombinationen betes
Wasser liegt über 8O0C, und die Emulsion kann liebiger der vorstehenden Produkte können in der
560CfUr zumindest 1 Woche und 37°C für zumindest wäßrigen Phase der erfindungsgemäßen Adjuvans-2
Wochen ohne Abtrennung der wäßrigen Phase aus- 30 Zusammensetzung kombiniert werden. Antigene von
halten. Die Zusammensetzung ist außerdem zumindest besonderer Bedeutung stammen von Bakterien, wie
4 Monate bei 37°G und bei 4° C ohne Anzeichen eines beispielsweise H. pertussis, Leptospira pomona und
Brechens stabil. Die Emulsion bricht auch nicht in icterohaemorrhagiae, S. typhosa, S. paratyphi A & B,
Öl- und Wasserphasen nach Zentrifugieren bei Ge- C. diphtheriae, C. tetani, C. botulinum, C. perfringens,
schwindigkeiten bis zu 2000 UpM während 1 Stunde 35 C. feseri und andere Gasgangraenbakterien, B. anthra-
und ergibt nicht mehr als 20 °/0 überschüssige Ölphase eis, P. pestis, P. multoeida, V. cholerae u. dgl.; aus
nach einem solchen Zentrifugieren. Die Teilchengröße Viren, wie beispielsweise Poliovirus (multiple Typen),
der inneren Phase, d. h. der Wasserphase, beträgt Adenovirus (multiple Typen), Para-Influenza-Virus
weniger als 100 Mikron, und die Viskosität der ge- (multiple Typen), Masern, Mumps, respiratorischer
samten Emulsion liegt zwischen 2Ö00 und 8500 cP 40 Syncytial-Virus, Influenza (verschiedene Typen), Shipbei
Prüfung in einem Brookfield-Viskosimeter unter ping fever-Virus (SF 4), westliche und östliche Equine
Verwendung einer Spindel Nr. 2 bei 5 UpM. Diese Encephalomyelitis, Japanische B. Encephalomyelitis,
Spezifikationen finden sich jedoch nicht in allen Russische Frühjahr - Sommer - Encephalomyelitis,
) erfindungsgemäßen Emulsionen, da Abänderungen Schweinecholeravirus, Newcastle-disease-Virus, Hühderselben
vorgenommen werden können, ohne die 45 nerpest, Rabies, Katzen- und Hundefieber u. dgl.
wertvollen Eigenschaften des Adjuvansträgers zu Viren, aus Rickettsien, wie epidemischer und endezerstören,
mischer Typhus oder anderen Gliedern der Fleck-Bei Verwendung der erfindungsgemäßen Adjuvans- fiebergruppe, aus verschiedenen Spinnen- und Schlan-Zusammensetzung
als Träger für eine immunologische gengiften oder irgendeinem der bekannten Allergene,
Substanz bringt man das Antigen (oder die Antigene) 50 beispielsweise aus Ambrosiapflanzen, Hausstaub, Polin
die wäßrige Phase vor der Zugabe der wäßrigen lenextrakten, Graspollen u. dgl.
Phase zu dem pflanzlichen öl bei der oben beschriebe- Jedes pflanzliche Öl, von dem bekannt ist, daß es nen Arbeitsweise ein. Das immunologische Mittel sich zur Verwendung in injizierbaren Präparaten wird vorteilhafterweise in gereinigter oder konzentrier- eignet und das die Spezifikationen der US Pharmater Form verwendet, doch kann es auch in jedem 55 copeia oder National Formulary erfüllt, kann in den anderen gewünschten wäßrigen Medium, wie beispiels- erfindungsgemäßen Adjuvans-Zusammensetzungen weh:e in Form einer Vaccine, in der es normalerweise verwendet werden, öle, die bei der Herstellung dieser verabreicht wird, oder gelöst in einer eingestellten Zusammensetzungen mit Erfolg verwendet wurden, Salzlösung, physiologischen Salzlösung, phosphat- sind Erdnußöl, Maisöl, Olivenöl, Sesamöl, Chaulgepufferten Salzlösung, in Gewebekulturflüssigkeiten, 60 moograöl, Baumwollsamenöl, öl süßer Mandeln und wie beispielsweise Eagle Basal Media [Science (1959), Persisches öl. Andere pflanzliche öle, von denen be-Bd. 130, S. 432, H. Eagle]; Medium 199 [Proc. kannt ist, daß sie in injizierbaren Präparaten ver-Soc. Exptl. Biol. and Med., Bd. 73, S. 1 (1950), J. F. wendbar sind, können selbstverständlich an Stelle Morgan und Mitarbeiter] u. dgl., oder in anderen jedes beliebigen dieser pflanzlichen öle verwendet Medien, in denen der Organismus gezüchtet worden 65 werden.
Phase zu dem pflanzlichen öl bei der oben beschriebe- Jedes pflanzliche Öl, von dem bekannt ist, daß es nen Arbeitsweise ein. Das immunologische Mittel sich zur Verwendung in injizierbaren Präparaten wird vorteilhafterweise in gereinigter oder konzentrier- eignet und das die Spezifikationen der US Pharmater Form verwendet, doch kann es auch in jedem 55 copeia oder National Formulary erfüllt, kann in den anderen gewünschten wäßrigen Medium, wie beispiels- erfindungsgemäßen Adjuvans-Zusammensetzungen weh:e in Form einer Vaccine, in der es normalerweise verwendet werden, öle, die bei der Herstellung dieser verabreicht wird, oder gelöst in einer eingestellten Zusammensetzungen mit Erfolg verwendet wurden, Salzlösung, physiologischen Salzlösung, phosphat- sind Erdnußöl, Maisöl, Olivenöl, Sesamöl, Chaulgepufferten Salzlösung, in Gewebekulturflüssigkeiten, 60 moograöl, Baumwollsamenöl, öl süßer Mandeln und wie beispielsweise Eagle Basal Media [Science (1959), Persisches öl. Andere pflanzliche öle, von denen be-Bd. 130, S. 432, H. Eagle]; Medium 199 [Proc. kannt ist, daß sie in injizierbaren Präparaten ver-Soc. Exptl. Biol. and Med., Bd. 73, S. 1 (1950), J. F. wendbar sind, können selbstverständlich an Stelle Morgan und Mitarbeiter] u. dgl., oder in anderen jedes beliebigen dieser pflanzlichen öle verwendet Medien, in denen der Organismus gezüchtet worden 65 werden.
sein kann, wie beispielsweise angebrütetem Ei-, Sind Antigene in die neue erfindungsgemäße, wie
amniotischem, allantoischem oder Dottersack-Mate- oben hergestellte Adjuvans-Zusammensetzung ein-
rial u. dgl., zugegeben werden. Die wäßrige Phase gebracht, so wird in dem Wirt nach Verabreichung
eine Antikörperempfindlichkeit hervorgerufen, die in ihrer Art adjuvansähnlich ist.
Die folgenden Beispiele, die erfindungsgemäße Adjuvans-Zusammensetzungen
zeigen, die sich zur Verwendung bei der Herstellung von Vaccinen eignen, in die irgendeines der obenerwähnten Antigene einzeln
oder in Kombination eingebracht ist, erläutern die Erfindung, ohne sie zu beschränken.
Volumprozent
Erdnußöl 30,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 1,4
Phosphatgepufferte Salzlösung 63,6
Das Mannidmonooleat wird zu dem Erdnußöl zugesetzt und mittels eines Hängerührers gründlich vermischt.
Aluminiummonostearat wird langsam unter Rühren zu dem bivalenten Erdnußöl-Mannidmonooleat-Träger
zugegeben, und das homogene Gemisch wird dann langsam unter Rühren auf etwa 1200C
erhitzt, um eine gründliche Dispersion des Aluminiummonostearats in dem bivalenten Ölträger zu gewährleisten.
Man läßt das homogene Gemisch auf Zimmertemperatur (20 bis 300C) abkühlen, wonach die wäßrige
Phase langsam in das Gemisch unter Rühren unter Verwendung eines mechanischen Rührers mit
Geschwindigkeitsregelung eingebracht wird, um die Emulsion zu bilden. Die so gebildete Emulsion hat
die folgenden Eigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion >95°C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
2000 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
Viskosität* ausgezeichnet
* Der Viskositätswert stellt die Fließgeschwindigkeit durch
eine 27-gauge-Nadel dar.
Die obigen Bestandteile wurden nach der Arbeitsweise von Beispiel 1 vermischt und in eine Emulsion
übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion 92° C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten ..
<alsl%
Trennung Viskosität ausgezeichnet
Volumprozent
Erdnußöl 45,5
Mannidmonooleat 2,5
Aluminiummonostearat 2,0
Phosphatgepufferte Salzlösung 50,0
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion
hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion >95°C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
2000 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
Viskosität ausgezeichnet
35
Volumprozent
Erdnußöl 23,0
Mannidmonooleat 25,0
Aluminiummonostearat 2,0
Phosphatgepufferte Salzlösung 50,0
40
Volumprozent
Erdnußöl 35,0 4S
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 1,6
Phosphatgepufferte Salzlösung 58,4
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion >95°C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent ölphase, erzeugt bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
2000 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
Viskosität ausgezeichnet
Volumprozent
Erdnußöl 65,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 2,8
Phosphatgepufferte Salzlösung 27,2
55
60 Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in (
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion >95°C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. <als 1%
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. <als 1%
Trennung Viskosität ausgezeichnet
Volumprozent
Erdnußöl 44,5
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 0,5
Phosphatgepufferte Salzlösung 50,0
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion 92° C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. <als 1 %
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. <als 1 %
Trennung Viskosität ausgezeichnet
Volumprozent
Erdnußöl 60,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 5,0
Phosphatgepufferte Salzlösung 30,0
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion 93° C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung
Viskosität ausgezeichnet
B e i sp i e 1 8
Volumprozent
Erdnußöl 70,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 3,0
Phosphatgepufferte Salzlösung 22,0
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise vermischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion
hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion 920C
Elektrische Leitfähigkeit schwach
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. 10% Trennung
Viskosität gut
Volumprozent
Erdnußöl 43,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 2,0
Phosphatgepufferte Salzlösung, enthaltend Influenza-Virus, polyvalent, Typen A und B
einem Gehalt von insgesamt 500 CCA-Einheiten je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten
Typ A-2, Asiatischer Stamm, und 100 CCA-Einheiten von je A/Ann Arbor, A/PR 8 und B/Great Lakes je ecm) 50,0
Die obigen Bestandteile wurden nach der im Beispiel 1 beschriebenen Arbeitsweise gemischt und in
eine Emulsion übergeführt. Die so gebildete Emulsion hatte die folgenden Stabilitätseigenschaften:
Stabile Tröpfchen in Wasser bei
Zimmertemperatur ja
Brechpunkt der Emulsion 96°C
Elektrische Leitfähigkeit negativ
Prozent Ölphase, gebildet bei
200 UpM während 45 Minuten .. keine Trennung 2000 UpM während 45 Minuten .. 9,7% Trennung
Stabilität bei 4° C
während 36 Tagen ausgezeichnet
Stabilität bei 25° C
während 36 Tagen Spur von
Aufrahmen
Stabilität bei 37° C
Stabilität bei 37° C
während 36 Tagen Spur von
Aufrahmen
Stabilität bei 56° C
während 36 Tagen 40% Aufrahmen mit
einer Spur von wäßriger
einer Spur von wäßriger
Abscheidung
Beispiel 10
Beispiel 10
Es wurden Emulsionen, wie im Beispiel 9 beschrieben, hergestellt, wobei jedoch das Erdnußöl durch Sesamöl,
Maisöl, Olivenöl, Baumwollsamenöl, süßes Mandelöl, Persisches Öl und Chaulmoograöl, jeweils bei einer
Konzentration von 43 Volumprozent, ersetzt wurde und wobei in jedem Falle eine stabile Wasser-in-Öl-Emulsion
erhalten wurde, die die oben angegebenen Normen
für eine stabile Wasser-in-Öl-Emulsion erfüllen.
Die in den obigen Beispielen beschriebenen Adjuvans-Zusammensetzungen
oder Modifikationen von diesen können als Träger zur Herstellung injizierbarer Antigenpräparate verwendet werden. Da jedes beliebige
der oben beschriebenen Antigene entweder allein oder in Kombination in die wäßrige Phase eingebracht
werden kann, werden nur einige wenige typische Beispiele im folgenden für so hergestellte Vaccinen angegeben,
um ihre Herstellung und das bei Verabreichung an Tiere erzielte Ansprechen auf das Adjuvans
zu erläutern. Erschöpfende Beispiele zur Beschreibung jeder möglichen Vaccine werden nicht angeführt, da
sonst die Ausführungen untragbar lang würden, ohne daß hierdurch ein erheblicher zusätzlicher Gewinn
bezüglich des Verständnisses des Gebrauchs der Adjuvanspräparate erzielt würde.
In den folgenden Beispielen und Erörterungen bedeuten die Abkürzung »CCA« Hühnchenzellenagglutinin
(Chick Cell Agglutinin), das nach der in J. Immunology, 45, S. 273 (1942), Hirst und Pickles,
beschriebenen Methode bestimmt wird.
Volumprozent
Erdnußöl 53,75
Mannidmonooleat 1,25
Aluminiummonostearat 5,0
Influenza-Virus-Vaccine, polyvalent, Typen A
und B, enthaltend insgesamt 500 CCA-Einheiten je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten Typ A-2, Asiatischer Stamm, 100 CCA-Einheiten von je A/Ann Arbor, A/PR8 und
B/Great Lakes je ecm) 40,0
und B, enthaltend insgesamt 500 CCA-Einheiten je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten Typ A-2, Asiatischer Stamm, 100 CCA-Einheiten von je A/Ann Arbor, A/PR8 und
B/Great Lakes je ecm) 40,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 vermischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde festgestellt, daß sie die oben für eine stabile Wasser-in-Öl-Emulsion
angeführten Normen erfüllt.
109 512/346
ίο
Beispiel 12 Volumprozent
Erdnußöl 54,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 1,0
Influenza-Virus-Vaccine, polyvalent, Typen A und B, enthaltend insgesamt 500 CCA-Einheiten
je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten Typ A-2, Asiatischer Stamm, 100 CCA-Einheiten
von je A/Ann Arbor, A/PR 8 und
B/Great Lakes je ecm) 40,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 vermischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde gefunden, daß die Emulsion den oben für eine stabile Wasser-in-Öl-Emulsion
angegebenen Normen entspricht.
Beispiel 13 Volumprozent
Erdnußöl 53,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 2,0
Influenza-Virus-Vaccine, polyvalent, Typen A und B, enthaltend insgesamt 500 CCA-Einheiten
je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten Typ A-2, Asiatischer Stamm, 100 CCA-Einheiten
von je A/Ann Arbor, A/PR 8 und B/Great Lakes je ecm) 40,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 gemischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde gefunden, daß
die Emulsion den oben für eine stabile Wasser-in-Öl-Emulsion angegebenen Normen entspricht.
Beispiel 14 Volumprozent
Erdnußöl 52,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 3,0
Influenza-Virus-Vaccine, polyvalent, Typen A und B, enthaltend insgesamt 500 CCA-Einheiten
je ecm (einschließlich 200 CCA-Einheiten Typ A-2, Asiatischer Stamm, 100 CCA-Einheiten
von je A/Ann Arbor, A/PR 8 und B/Great Lakes je ecm) 40,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 gemischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde gefunden, daß die Emulsion den oben für eine stabile Wasser-in-öl-Emulsion
angegebenen Normen entspricht.
Beispiel 15 Volumprozent
Erdnußöl 43,0
Mannidmonooleat 5,0
35
40
45
Aluminiummonostearat 2,0
Phosphatgepufferte Salzlösung, enthaltend
660 CCA-Einheiten je ml an polyvalenter
Influenza-Virus-Vaccine (enthaltend 264 CCA-Einheiten A/asiatisch, 132 CCA-Einheiten
A/Ann Arbor, 132 CCA-Einheiten A/PR8,
132 CCA-Einheiten B/Great Lakes je ml) .. 50,0
660 CCA-Einheiten je ml an polyvalenter
Influenza-Virus-Vaccine (enthaltend 264 CCA-Einheiten A/asiatisch, 132 CCA-Einheiten
A/Ann Arbor, 132 CCA-Einheiten A/PR8,
132 CCA-Einheiten B/Great Lakes je ml) .. 50,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 vermischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde festgestellt, daß die Emulsion den oben für eine stabile Wasserin-Öl-Emulsion
angegebenen Normen entspricht.
Beispiel 16 Volumprozent
Erdnußöl 43,0
Mannidmonooleat 5,0
Aluminiummonostearat 2,0
Gereinigte Poliomyelitis-Virus-Vaccine, trivalent,
Typen I, II und III mit einem Gehalt
von insgesamt 5 bis 6 γ [einschließlich 4,0 γ
Typ I (Parker) und 0,8 γ von je Typ II
(MEFI) und III (Saukett)] je ecm 50,0
von insgesamt 5 bis 6 γ [einschließlich 4,0 γ
Typ I (Parker) und 0,8 γ von je Typ II
(MEFI) und III (Saukett)] je ecm 50,0
Die obigen Bestandteile wurden nach praktisch der gleichen Arbeitsweise wie im Beispiel 1 vermischt und
in eine Emulsion übergeführt. Es wurde festgestellt, daß die Emulsion den oben für eine stabile Wasserin-Öl-Emulsion
angegebenen Normen entspricht.
Die Adjuvanswirkung der in den vorstehenden Beispielen beschriebenen Vaccinen wurde bei Tieren nach
der folgenden Methode geprüft.
Doppelte Injektionen zur O-Zeit von 0,25 bis 1 ml wurden intramuskulär jedem von 10 bis 20 Albinomeerschweinchen,
Stamm Hartley, mit einem Gewicht von jeweils 450 bis 550 g verabreicht. In allen Versuchen
wurden verschiedene Blutproben in Abständen von 4, 8 und 12 Wochen entnommen, und ein abgemessener
Anteil der einzelnen Seren für jede Blutprobe wurde auf den Antikörpertiter nach der folgenden
Technik geprüft:
Für Influenza-Antikörper
Für Influenza-Antikörper
Standard-Hämagglutinationsinhibierung (HI)-PrU-fung nach dem in J.A.M.A., 172, S. 1230 bis 1238
(1960), Jensen, Woodhour und Bailey, beschriebenen Verfahren.
Die Ergebnisse wurden mit der Antikörperempfindlichkeit von Kontrollmeerschweinchen verglichen, die
gleichzeitig mit 0,25 bis 1 ml phosphatgepufferter Salzlösung, die die Antigentestdosis enthielt, geimpft waren.
Die beobachteten Ergebnisse sind in den Tabellen I bis III zusammengestellt.
Meerschweinchen-Immunreaktion auf Adjuvansträger, der Influenza-Virus-Vaccine enthielt
Dosis: 1,0 ml i. m. mit einem Gehalt von 200 CCA-Einheiten zum Tage »0«
A | A | 4 | Geometrisches | Nr. der Seren |
Vlittel des Serum-HI-Titers für die angegebene Woche | A | 8 | A | Nr. der Seren |
A | A | 12 | A | Nr. der Seren |
|
Jap 305 |
Ann Arbor |
B | Ann Arbor |
B | PR 8 | Jap 305 |
Ann Arbor |
B | PR 8 | ||||||
Impfmaterial | Great Lakes 1739 |
A | A | Great Lakes 1739 |
Great Lakes 1739 |
||||||||||
PR8 | Jap 305 |
||||||||||||||
Kontroll- | |||||||||||||||
Influenza- | 10 | 9 | 8 | ||||||||||||
Vaccine (phos | 5 | 8 | 3 | 37 | 5 | 26 | 60 | ||||||||
phatgepufferte | 18 | 8 | 24 | ||||||||||||
Salzlösung) .. | 60 | 10 | 5 | 7 | 6 | ||||||||||
Adjuvans- | 147 | 181 | 147 | 631 | 79 | 181 | 388 | ||||||||
Präparat von | 169 | 128 | 128 | ||||||||||||
Beispiel 11 ... | 446 | 128 | |||||||||||||
11 12
Meerschweinchen-Immunreaktion auf Adjuvansträger, der Influenza-Virus-Vaccine enthielt
Dosis: 0,5 ml i. m. mit einem Gehalt von 100 CCA-Einheiten zum Tage »0«
Impfmaterial
Kontroll-Influenza-Vaccine (phosphatgepufferte
Salzlösung
Adjuvans-Präparat von Beispiel 12
Adjuvans-Präparat von Beispiel 13
Adjuvans-Präparat von Beispiel 14
Meerschweinchen-Immunreaktion auf Adjuvansträger, der polyvalente Influenza-Virus-Vaccine enthielt
Dosis: 0,25 ml i. m. mit einem Gehalt von 62,5 CCA-Virus-Einheiten zum Tage »0«
Geometrisches Mittel des Serum-HI-Titers für die angegebene Woche
Vaccine Geometrisches Mittel des Serum-HI-Titers für 4 Wochen
A
Jap 305
Jap 305
Ann
Arbor
Arbor
Great Lakes 1739
A PR8
Nr. der Seren
Kontroll-Influenza-Vaccine (phosphatgepufferte Salzlösung)
Adjuvans-Präparat von Beispiel 9
3
97
97
158
9
97
97
56 548
18 23
Claims (1)
- Patentanspruch:Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-Emulsion, gekennzeichnet d u r c h 20 bis 75 Volumprozent eines pflanzliehen Öls, 2,5 bis 25 Volumprozent Mannidmonooleat, 0,5 bis 5 Volumprozent Aluminiummonostearat und eine ausreichende Menge Wasser oder wäßrige Lösung, um das Volumen auf 100% zu bringen, wobei in die wäßrige Phase vor der Emulgierung ein oder mehrere Antigene oder Allergene eingebracht wurden.
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3787663T2 (de) | Impfstofformulierung. | |
AT408615B (de) | Neue influenzavirus-impfstoffzusammensetzung | |
DE69015222T2 (de) | Tocole als Impfstoffadjuvans. | |
DE3712767C2 (de) | ||
DE3685519T2 (de) | Influenzaimpfstoff. | |
DE69623072T2 (de) | Impfstoffzusammensetzung für Säugetiere enthaltend Squalen oder Squalan, Phospholipid und ein Tensid als Adjuvans | |
DE3712768A1 (de) | Immunologisches adjuvans fuer polysaccharid-impfstoffe | |
DE69910253T2 (de) | Verfahren zur herstellung von inaktivierten, w/ö emulsion adjuvierten, impfstoffen | |
DE69730393T2 (de) | Impfstoff-Zusammensetzungen die inaktivierte Immunogene und lebende Hühner-Anä emie-Viren enthalten | |
DE69232969T2 (de) | Methode zur herstellung von gram-negativen bakteriellen vakzinen | |
DE19511276C2 (de) | Adjuvans auf der Basis kolloidaler Eisenverbindungen | |
DE1617779A1 (de) | Neue Vaccinen gegen Grippe und ihre Herstellung | |
DE1924304C3 (de) | Diäthylaminoäthyldextran (DEAE-D) als Adjuvans für Impfstoffe zur aktiven Immunisierung von Säugetieren | |
DE1492018C (de) | Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-Emulsion | |
DE2445819A1 (de) | Verfahren zur herstellung stabiler, gegen seruminhibitoren resistenter h tief 3 n tief 2 -influenzavirusstaemme und diese virusstaemme enthaltende vakzinen | |
DE2829089A1 (de) | Subunit-vakzine | |
DE3122669A1 (de) | "verfahren zur herstellung von neuen mutanten von herpes simplex-viren typ 1 und typ 2" | |
DE1492243C3 (de) | Injizierbare Impfstoffe | |
DE1492018B (de) | Impfstoff zur aktiven Immunisierung in Form einer Wasser-in-Öl-Emulsion | |
DE1492255A1 (de) | Immunisierungszubereitung | |
DE2449530A1 (de) | Virus-untereinheiten-vaccine | |
DE1960713C3 (de) | Mehrfach-Vaccine zur gleichzeitigen Immunisierung gegen Maul- und Klauenseuche und Brucellose und gegebenenfalls gegen Tollwut | |
EP0187286A1 (de) | Öladjuvierte Vaccine und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
EP0343548B1 (de) | Antigenlösung ethaltend ein Polyalphaolefin (PAO), Verfahren ihrer Herstellung und die Verwendung von PAO als Adjuvans | |
DE1492018A1 (de) | Impfstoff zur aktiven Immmunisierung in Form einer Wasser-in-OEl-Emulsion und Verfahren zu dessen Herstellung |