DD270855A1 - METHOD FOR IN VIRO - IN THE VIVO PRODUCTION OF POTATO MINI NUTS - Google Patents

Abstract

Die Erfindung betrifft ein wirksames Verfahren fuer die In-vitro-in-vivo-Produktion von Kartoffelminiknollen auf eine Weise, dass die In-vitro-Einleitung der Knollenbildung an in vitro bewurzelten Pflanzen induziert wird und diese Pflanzen in Gewaechshaeuser gepflanzt werden, das Wachstum des Kartoffelkrautes durch die Behandlung mit Antigibberellin-Chemikalien begrenzt wird, Miniknollen geerntet werden und die Pflanzen erneut verpflanzt werden, entsprechend behandelt, und dass waehrend der Vegetationsperiode wiederholt Miniknollen produziert und geerntet werden.The invention relates to an effective method for in vitro in vivo production of potato minicolls in such a manner that the in vitro initiation of tuber formation is induced on in vitro rooted plants and these plants are planted in greenhouses, the growth of the Potato herb is limited by the treatment with anti-gibberellin chemicals, mints are harvested and the plants are transplanted again, treated accordingly, and that during the growing season repeatedly produced and harvested miniature niches.

Description

Anwendungsgebiet der ErfindungField of application of the invention

Die Erfindung betrifft ein wirksames Verfahren für die In- vitro-in vivo-Produktion von Kartoffelminiknollen.The invention relates to an effective method for in vitro in vivo production of potato minicolls.

Charakteristik des bekannten Standes der TechnikCharacteristic of the known state of the art

Die gegenwärtig verfügbaren Kulturvarietäten von Kartoffeln sind anfällig gegenüber verschiedenen Pilz-, Bakterien- und Viruserkrankungen.The currently available cultivars of potatoes are susceptible to various fungal, bacterial and viral diseases.

Die ökologischen Bedingungen verschiedener Länder gestatten es nicht, verschiedene Kulturvarietäten der Kartoffel über längere Zeit frei von Krankheiten zu halten.The ecological conditions of different countries do not allow different cultivars of the potato to be kept free of disease for a long time.

Die herköm r,liche Erhaltung der Kulturvarietät kann nur in den Ländern erfolgen, in denen aufgrund günstiger ökologischer Faktoren der Infektionsstand ausreichend gering ist.The preservation of the cultivar can only be achieved in those countries where the level of infection is sufficiently low due to favorable ecological factors.

Ein Hauptziel der Forschung jarbeiten auf diesem Gebiet war es daher, Kulturvarietäten ru züchten, die resistent gegen die Umweltbedingungen und verschiedene Pathogene sind.A major goal of research work in this field has therefore been to cultivate cultivars that are resistant to environmental conditions and various pathogens.

Aufgrund des spezifischen Charakters der Pflanze ist die Massenvermehrung von Fortpfinnzungsmaterial für Kartoffeln etwas schwierig. Trotz dieser Tatsache wurden bereits unterschiedliche Verfahren zur Vermehrung von Kartoffeln entwickelt (Roca, W.Due to the specific nature of the plant, mass propagation of propagating material for potatoes is somewhat difficult. Despite this fact, different methods of propagating potatoes have already been developed (Roca, W.

M., Esponeza, H. 0., Roca .M. R., Bryan, J. E., A tissue culture method for the rapid propagation of potatoes (Eine Gewebekulturmethode für die spinelle Vermehrung von Kartoffeln); Am Potato J. 55,691-701 (1978); Goodwin, P. E., Kim, Y. C, Adisarwanto, T., Propagation of potato by shoot-tip culture (Vermehrung der Kartoffel durch Triebspiuenkultur), Potato Res. 23, 9-23 (1980); Roest, S., Sokelrr ann, G. S., In vitro adventiticus bud techniques for vegetative propagation and mutation bleeding of potato (Solanum tuLaresum L), I, Vegetative propagation in vitro trough adventiticus shoot formation (Fremdknospen-in vitro-Techniken für die vegetative Vermehrung in vitro durch Nebentriebbiidung), Potato Res. 23,167-181 (1980); Hussey, G., Stacey, M. J., In-vitro propagation of potato (solanum tuberosum L) (In-viiiO-Vermehrung der Kartoffel), Ann. Bot. 48,787-796 (1981); Henszky, L. E., Enyingi, K., Szabo, L, Tissue culture technology for longterm storage and propagation of potato (Solanum tuberosum L) (Gewebekulturtechnik für die Langzeitlagerung und Vermehrung der Kartoffel) Keimpflanzen (Plant Cell Culture in Crop. Improvement S.K.Ben, K.L.Giles ad., Plenum Press, New York, London [1983], S.9-18).M., Esponeza, H. 0., Roca .M. R., Bryan, J.E., A tissue culture method for the rapid propagation of potatoes (a tissue culture method for the spinel propagation of potatoes); Potato J. 55: 691-701 (1978); Goodwin, P.E., Kim, Y. C, Adisarwanto, T., Propagation of potato by shoot-tip culture, Potato Res. 23, 9-23 (1980); Roest, S., Sokelrr ann, GS, in vitro adventiticus bud techniques for vegetative propagation and mutation bleeding of potato (Solanum tuLaresum L), I, Vegetative propagation in vitro trough adventiticus shoot formation (foreign budding in vitro techniques for vegetative propagation in vitro by side-drive formation), Potato Res. 23, 167-181 (1980); Hussey, G., Stacey, M.J., In vitro propagation of potato (solanum tuberosum L) (In-viiiO propagation of potato), Ann. Bot. 48, 787-796 (1981); Henszky, LE, Enyingi, K., Szabo, L, Tissue culture technology for longterm storage and propagation of potato (Tissue culture technique for long-term storage and propagation of potato) seedlings (Plant Cell Culture in Crop. Improvement SKBen, KLGiles ad., Plenum Press, New York, London [1983], pp. 9-18).

Die weitere !«Cultivation der Kartcffolpflänzchen, die in vitro erzeugt wurden, erfolgt in Gewächshäusern. Häufig angewendet werden auch Einzelknospenschnitte mit der Vervielfachung der virusfreien Mutterpflanzen (Sunarjono, H., Krisnawati, Y., Potato seed multiplication by stem cutting. I, the influence of the mother plant age on the growth and field of the cutting (Vervielfachung des Kartoffelsamens durch Stielschnitt. I. Der Einfluß des Alters der Mutterpflanze auf das Wachstum und den Ertrag des Schnitts). Bull. Penel, Hort. 8 (2) 39-47 (1980); Goodwin, P. B., Brown, G., Field performance of potato shoottips proliferated in culture (Feldverhalten von Kartoffeltriebspitzen, die während der Kultur profiliert wurden). Potato Res. 23, 449-452 (1980); Goodwin, P. B., Rapid propagation of potato by single node cuttings (Schnelle Vermehrung von Kartoffeln durch Einzelknotenschnitte), Field Chops Res. 4,165-173 (1981).The next! "Cultivation of the Kartcffolpflänzchen that were produced in vitro, takes place in greenhouses. Single-bud intersections are also widely used to multiply virus-free mother plants (Sunarjono, H., Krisnawati, Y., Potato seed multiplication by stem cutting by stem cut I. The influence of the age of the parent plant on the growth and yield of the cut.) Bull Penel, Hort., 8 (2) 39-47 (1980); Goodwin, PB, Brown, G., Field performance of potato shoottips proliferated in culture (field behavior of potato shoots profiled during culture) Potato Res 23, 449-452 (1980); Goodwin, PB, Rapid propagation of potato by single node cuttings (rapid multiplication of potatoes by single knots) , Field Chops Res. 4,165-173 (1981).

Dio Vervielfältigungsrate von Kartoffeln, die nach dem herkömmlichen Verfahren vermehrt werden, ist n'edrig (sie beträgt jährlich maximal das 10- bis 12fache), die herkömmliche Erhaltung einer Kulturvarietät dauert 8 bis 12 Jahre. Der Wassergehalt des Kartoffelfortpflanzungsmaterials beträgt etwa 90%, so daß für den Transport und die Lagerung besondere Bedingungen erforderlich sind. Unter Umständen können die Transportkosten höher als der Wert der Kartoffel am Produktionsort sein.Dio reproduction rate of potatoes, which are propagated by the conventional method, is n'edrig (it is a maximum of 10 to 12 times a year), the conventional preservation of a cultivar takes 8 to 12 years. The water content of the potato propagating material is about 90%, so special conditions are required for transportation and storage. In some circumstances, the cost of transport may be higher than the value of the potato at the place of production.

Nach diesem bekannten Verfahren wurde das Fortpflanzungsmaterial für Kartoffeln praktisch im Labor un'l im Gewächshaus produziert. Da die Investitions- und Unterhaltungskosten in beiden Fällen hoch sind, ist die Menge des je Flächeneinheit produzierten Fortpflanzungsmaterials entscheidend für die Rentabilität des Verfahrens. Das Anliegen der Gewächshäuser ist aufwendiger als die Schaffung des Labors.According to this known method, the propagation material for potatoes was practically produced in the laboratory and in the greenhouse. Since the investment and maintenance costs are high in both cases, the amount of reproductive material produced per unit area is crucial to the profitability of the process. The concern of the greenhouses is more complex than the creation of the laboratory.

Das Verpflanzen der im Labor produzierten Pflanzen verlangt ein gutes technische.* Niveau in den Gewächshäusern (Möglichkeiten zur exakten Bodenbeheizung, Regulierung der Feuchtigkeit, zusätzliche Beleuchtung). Dabei ist zu berücksichtigen, daß die aus dem Labor in die Gewächshäuser verpflanzten Pflanzen ökonomisch gezogen werden müssen, und das kann im Falle der Produktion von Miniknollen nur durch die beste Nutzung der Gewächshäuser garantiert werden. Mit dem bisherigen Verfahren konnten je Quadratmeter max. 400 bis 800 Miniknolien gezogen werden. Diese Tatsache beschränkt die Verteilung der Nutzung der Gewächshäuser für die Produktion von Miniknollen.Grafting of the plants produced in the laboratory requires a good technical level. * Greenhouse level (possibilities for exact soil heating, regulation of humidity, additional lighting). It should be remembered that the plants transplanted from the laboratory to the greenhouses must be economically harvested, and this can only be guaranteed in the case of the production of miniature tunnels by the best use of the greenhouses. With the previous method, per square meter max. 400 to 800 mini-sheets are pulled. This fact limits the distribution of use of greenhouses for the production of miniature naps.

Ziel der ErfindungObject of the invention Ziel der Erfindung ist es, die Effektivität der Produktion an Miniknollen je Flächeneinheit erheblich zu steigern.The aim of the invention is to increase the effectiveness of the production of mini-rollers per unit area considerably. Nach der vorliegenden Erfindung wird die Effektivität gegenüber den bekannten früheren Prozessen um wenigstens 300 bisAccording to the present invention, the effectiveness over the known prior processes by at least 300 bis

500% gesteigert.500% increased.

Darlegung des Wesens der ErfindungExplanation of the essence of the invention

Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren, mit dem die Ertragsleistung der krankheitsfreien, durch Gewebekulturen vermehrten Pflanzen, erhöht werden kann.The invention is based on the object, a method by which the yield of disease-free, increased by tissue cultures plants can be increased.

Erfindungsgemäß wird die Aufgabe dadurch gelöst, daß die nach den bekannten Gewebekulturmethoden produzierten Pflanzen in vitro unter sterilen Laborbedir>gungen in flüssigen Medien bewurzelt werden, daß das Nährmedium, nachdem die Pflanzen Wurzeln entwickelt haben, auf ein Medium umgestellt wird, das eine antigibberellische Chemikalie enthält, um die Induzierung von Knollen auszulösen, wobei die Pflanzen in diesem Medium gezogen werden. Nachdem Knollenbildung induziert wurde, werden die Pflanzen mit einer Chemikalie behandelt, welche die Wurzelbildung fördert, und in ein festes Medium in Gewächshäuser gepflanzt. Das vegetative Wachstum der Pflanzen wird durch Herabsetzen des Gibberellinpegels auf den Pegel des Zytokiningehalts in periodischer und regelmäßiger Form begrenzt, und die produzierten Miniknollen werden von den Wurzeln abgenommen, anschließend werden die mit einem Bewurzelungshormon behandelten Pflanzen wieder in das feste Medium zurückverpflanzt und regelmäßig und periodisch mit der antigibberellischen Chemikalie behandelt, worauf erneut die produzierten Miniknollen gesammelt werden.According to the invention, this object is achieved in that the plants produced by the known tissue culture methods are rooted in vitro under sterile laboratory conditions in liquid media, that the nutrient medium, after the plants have developed roots, is switched to a medium containing an antigibberellic chemical to induce the induction of tubers, whereby the plants are grown in this medium. After tuber formation is induced, the plants are treated with a chemical that promotes rooting and planted in a solid medium in greenhouses. The vegetative growth of the plants is limited by decreasing the gibberellin level to the level of cytokine content in periodic and regular form, and the produced minicolles are taken off the roots, then the rooting-treated plants are transplanted back into the solid medium and regularly and periodically treated with the antigibbereal chemical, whereupon again the minicolles produced are collected.

Durch das Verfahren nach der Erfindung können krankheitsfreie Pflanzen aus Gewebekultur nach bekannten Methoden gezogen werden. Die virus- und krankheitsfreien Pflanzen können nach allen bekannten Methoden der Gewebekultur vermehrt werden. Durch Gewebekultur vermehrte Pflanzen werden in einem flüssigen Medium bewurzelt. Nach der Bewurzelungsphase — die Pflanzen haben Nachbarwurzeln — wird das Bewurzelungsmedium auf ein Medium für die Induzierung der Knollen umgestellt, woDei es sich vor allem um das MS-Medium handelt (Murashige und Skoog, Physiol. Plant. 15,473 bis 497 (1962]), und es besteht ein Unterschied in der Menge der anorganischen Stickstoffquelle (in diesem Fall sind es 10^c der ursprünglichen), während der Stickstoffbedarf der Pflanzen durch den Zusatz einer organischen Stickstoffquelle (Glutamin, Asparagin) während der Induzierungsphase garantiert wird. Die Saccharosekonzentration im Induzierungsmedium ist höher als im MS-Medium, vorzugsweise können 40g/! Saccharose eingesetzt werden.By the method according to the invention, disease-free plants can be grown from tissue culture by known methods. The virus- and disease-free plants can be propagated by all known methods of tissue culture. Tissue culture propagated plants are rooted in a liquid medium. After the rooting phase - the plants have neighboring roots - the rooting medium is switched to a medium for the induction of tubers, where it is mainly the MS medium (Murashige and Skoog, Physiol. Plant 15,473 to 497 (1962)), and there is a difference in the amount of inorganic nitrogen source (in this case, 10 ^{c of} the original), while the nitrogen requirement of the plants is guaranteed by the addition of an organic nitrogen source (glutamine, asparagine) during the induction phase higher than in MS medium, preferably 40 g /! sucrose can be used.

Das für die Induzierungsphase verwendete Medium enthält Zytokinme in einer hohen Konzentration, im Durchschnitt sind 5-10mg/l geeignet. Der wesentliche Teil des für die Knolleninduzierung verwendeten Mediums sind die verschiedenen Antigibberilline. Diese Chemikalien sind Koumarin und dessen Derivate, Chlor-Cholin-Chlorid (CCC), vorzugsweise Dichloroazetylhexamethylenimin. Die letztgenannte Chemikalie hat wachstumsbegrenzende und fäulnisverhindernde Wirkungen. In den Pflanzen wirkt sie dahingehend auf die Induzierung der Knollen, daß der Gibberellinpegel im Vergleich zu den Zytokininen gesenkt wird, und sie hat einen vorteilhaften Einfluß auf die Struktur der Zellmembranen der Pflanzen. Nach dem Verfahren der vorliegenden Erfindung kann Dichloroazetylhexamethylenimin in einer Konzentration von 6-20 mg/1 eingesetzt werden.The medium used for the induction phase contains cytokines in a high concentration, on average 5-10 mg / l are suitable. The essential part of the medium used for tuber induction is the various antigibberillins. These chemicals are coumarin and its derivatives, chloro-choline chloride (CCC), preferably dichloroacetylhexamethyleneimine. The latter chemical has growth-limiting and antifouling effects. In the plants, it acts to induce the tubers to lower the gibberellin level as compared with the cytokinins, and has a favorable influence on the structure of the cell membranes of the plants. According to the process of the present invention, dichloroacetylhexamethyleneimine can be used in a concentration of 6-20 mg / l.

Pflanzen werden im Induzierungsmedium bei 18°C-20°C und 8 Stunden Beleuchtung für die Dauer von 10 bis 14 Tagen gezogen.Plants are grown in the inducing medium at 18 ° C-20 ° C and 8 hours of illumination for a period of 10 to 14 days.

Nach der Induzierungsphase werden die Kartoffelknollen in einem festen Medium in Gewächshäusern entwickelt. Vor dem Verpflanzen in die Gewächshäuser wird das Induzierungsmedium aus den Wurzeln gewaschen, und um die Wurzelbildung zu fördern und eine Infektion der Pflanzen durch Rhizoktonia zu verhindern, werden die Pflanzen in eine Flüssigkeit getaucht, die 0,05mg/ Indolessigsäure und 0,2% Previcur-N (Propyl-N-ß-dimethylaminopropyDkarbamalhydrochlorid) enthält.After the induction phase, the potato tubers are developed in a solid medium in greenhouses. Before being transplanted to the greenhouses, the inducing medium is washed from the roots, and to promote rooting and to prevent infection of the plants by rhizoctonia, the plants are immersed in a liquid containing 0.05 mg / indoleacetic acid and 0.2% Previcur -N (propyl-N-.beta.-dimethylaminopropydecarbamale hydrochloride).

Nachdem die Pflanzen im Gewächshaus bewurzelt sind — 3 Wochen nach dem Verpflanzen—werden die Pflanzen mit einer Lösung besprüht, die 10mg/l Koumarin und/oder 5-10mg/l Dichlorazetylhexamethylenimin enthält, das geschieht einmal wöchentlich. Auf diese Weise bleiben die Pflanzen klein, sie erreichen aber die physiologische Phase, die für die Knollenbildung geeignet ist. Wenn es notwendig ist, können die Pflanzen zurückgeschnitten werden, um ein weiteres Wachstum zu verhindern. Nach dem Verpflanzen ins Gewächshaus (etwa 1,5 bis 2 Monate danach) werden die Pflanzenbündel aus dem Boden gezogen und Knollen, die größer als 0,5cm sind, werden von den Wurzeln abgenommen. Beim ersten Mal können etwa 1000 Knollen je Quadratmeter von dan so gezogenen Pflanzen geerntet werden.After the plants are rooted in the greenhouse - 3 weeks after transplanting - the plants are sprayed with a solution containing 10mg / l coumarin and / or 5-10mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine, once a week. In this way, the plants remain small, but they reach the physiological phase, which is suitable for tuber formation. If necessary, the plants can be cut back to prevent further growth. After transplanting to the greenhouse (about 1.5 to 2 months thereafter), the plant bundles are pulled out of the ground and tubers larger than 0.5 cm are removed from the roots. The first time around 1000 tubers per square meter can be harvested from the plants so pulled.

Während des Herausnehmens der Pflanzen und dem Entfernen der Knollen können die Wurzeln beschädigt werden. Die Pflanzenbündel werden deshalb erneut in eine Lösung getaucht, die 0,05 mg/l Indolessig und 0,2% Previcur-N enthält, dann werden sie wieder zurück in den ursprünglichen oder in neuen Boden gepflanzt. Nach der Bewurzelungsphase werden die früheren Behandlungen wiederholt (10 mg/l Koumarin und/oder 6mg/l Dichlorazetylhexamethylenimin). Das Herausziehen der Pflanzenbiindel und Knollen, die Behandlung mit der oben beschriebenen Lösung und das erneute Einpflanzen der Pflanzen können nach 3 bis 4 Wochen wiederholt werden. Die zweite Ernte der Knollen kann 2000-3000 Stück/m² betragen. Wenn die Pflanzen altern—4 Monate nach dem Pflanzen — werden diese herausgenommen und vernichtet. Pflanzen, die auf die oben beschriebene Weise behandelt wurden, können in Abhängigkeit von der Kulturvarietät 2 500 bis 4000 Knollen/m² produzieren, und das ist eine um das Drei- bis Vielfache größere Menge als nach der bekannten Methode.During the removal of the plants and the removal of the tubers, the roots can be damaged. The plant bundles are therefore submerged again in a solution containing 0.05 mg / l indole vinegar and 0.2% Previcur-N, then they are planted back into the original or new soil. After the rooting phase, the previous treatments are repeated (10 mg / l koumarin and / or 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine). Extraction of the vegetable tuber and tubers, treatment with the solution described above and replanting of the plants can be repeated after 3 to 4 weeks. The second crop of tubers can be 2000-3000 pieces / m ² . When the plants age - 4 months after planting - they are taken out and destroyed. Plants treated in the manner described above can produce 2,500 to 4,000 tubers / m ² , depending on the cultivar 2, and this is three to several times greater than that of the known method.

Die geernteten Knollen werden zwei Wochen lang unter diffusem Licht und 70% Feuchtigkeit unter Suberin behandelt, dann werden sie sortiert und bei 2°C-5°C gelagert.The harvested tubers are treated under suberin under diffused light and 70% humidity for two weeks, then sorted and stored at 2 ° C-5 ° C.

Dieses Verfahren nach der Erfindung kann jährlich zweieinhalbmal wiederholt werden, das bedeutet, daß die Effektivität der Produktion an Miniknollen gegenüber den vorherigen Verfahren auf das Vier- bis Fünffache erhöht wird.This process according to the invention can be repeated two and a half times a year, which means that the efficiency of the production of mini-rollers is increased four to five times over the previous methods.

AusführungsbeisplelAusführungsbeisplel Das nachstehende Beispiel veranschaulicht die Erfindung.The following example illustrates the invention.

Die Kartoffelkulturvarietät „Somogy Gyöngye" wird auf bekannte Weise durch Gewebekultur vermehrt. Nachdem man die entsprechende Pflanzenzahl hat, werden die Triebe in einem flüssigen Medium bewurzelt. Nach zwei Wochen Bewurzelung wird das flüssige Medium durch ein anderes für die Induzierung der Knollen ersetzt. Das Medium für die Induzierung der Knollen hat folgende Zusammensetzung: Murashige- and Skoog-Grundmedium (MS-Medium), Konzentration 1/10, NH₄NO₃ und KNO₃, 20mg/l Glutaminsäure, 40g/l Saccharose, 5mg/l Benzyladenin, 25mg/l Koumarin und 6mg/l Dichloroazetylhexamethylenimin. Die Pflanzen werden zur Induzierung der Knollenbildung in diesem Medium 10 Tage lang bei einer achtstündigen Beleuchtung zu 200Lux/m² und einer Temperatur von 18°C gezogen. Nach der Induzierungsphase werden die Pflanzenbündel aus den Kulturflaschen genommen, die Pflanzen werden in Leitungswasser gewaschen und abgeschüttelt, um das überschüssige Wasser zu entfernen, und in eine Lösung getaucht, die 0,08mg/l Indolessigsäure und 0,2% Previcur-N enthält, anschließend werden sie zu 50 Pflanzenbündel/m² in ein Torfgemisch gepflanzt. Nach dem Bewurzeln der Pflanzen erfolgt eine geringe Furchenbildung (2 cm), von der zweiten Woche nach dem Pflanzen an werden die Pflanzen mit einer Lösung besprüht, die 10mg/l Koumarin und 6 mg/l Dichloroazetylhexamethylenimin enthält, das geschieht einmal wöchentlich. Etwa anderthalb bis zwei Monate nach dem Pflanzen werden buschige Pflanzenbündel aus dem Boden auf den Saatbetten entfernt. Knollen, die größer als 0,5cm sind, werden mit einem eigens dafür hergestellten Kamm oder von Hand geerntet. Torf und Erde werden aus den herausgenommenen Pflanzenbüscheln geschüttelt, die in eine Lösung getaucht werden, welche 0,08 mg/l Indolessigsäure und 0,2% Previcur-N enthält, dann werden sie in den ursprünglichen Boden zurückgepflanzt und bewässert. Die Behandlung der Pflanzen wird durch Besprühen mit einer Lösung fortgesetzt, die 10 mg/l Koumarin und 6mg/l Dichloroazetylhexamethylenimin enthält. Nach 3 bis 4 Wochen können das Herausnehmen und Pflanzen wiederholt werden. Die Pflanzen können zurückgeschnitten werden, um eine angemessene, geringe Größe der Pflanzen zu erhalten. Diese Schnitte ohne Wurzeln können für die weitere Vermehrung verwendet werden.The potato cultivar "Somogy Gyöngye" is propagated in a known manner by tissue culture After having the appropriate number of plants, the shoots are rooted in a liquid medium After two weeks of rooting, the liquid medium is replaced by another for the induction of the tubers for the induction of tubers has the following composition: Murashige and Skoog base medium (MS medium), concentration 1/10, NH ₄ NO ₃ and KNO ₃ , 20mg / l glutamic acid, 40g / l sucrose, 5mg / l benzyladenine, 25mg The plants are grown for 10 days at 200 lux / m ² and a temperature of 18 ° C. for 10 days to induce tuber formation in this medium for 10 days After the induction phase, the plant bundles are removed from the culture flasks , the plants are washed in tap water and shaken off to remove the excess water and get into a solution also containing 0.08 mg / l indole acetic acid and 0.2% Previcur-N, then they are planted at 50 plant bundles / m ² in a peat mix. After rooting of the plants there is little formation of furrows (2 cm), from the second week after planting the plants are sprayed with a solution containing 10 mg / l coumarin and 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine, which is done once a week. About one and a half to two months after planting, bushy plant bundles are removed from the soil on the seedbeds. Tubers larger than 0.5cm are harvested with a specially made comb or by hand. Peat and soil are shaken out of the picked plant tufts, which are dipped in a solution containing 0.08 mg / l indoleacetic acid and 0.2% Previcur-N, then they are planted back into the original soil and watered. Treatment of the plants is continued by spraying with a solution containing 10 mg / l coumarin and 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine. After 3 to 4 weeks, the removal and planting can be repeated. The plants can be cut back to obtain a reasonable, small size of the plants. These cuts without roots can be used for further propagation.

Mit den Pflanzen der Vai.. tet ,Somogy Gyöngye". Jie auf diese Weise induziert und gezogen wurden, können in 4 Monaten 3500 Miniknollen/m² produziert werden.With the plants of the Vai .. tet, Somogy Gyöngye ". Jie were induced and pulled in this way, 3500 minicolls / m ² can be produced in 4 months.

Claims (8)

1. Verfahren für die Produktion von Kartoffelminiknollen aus In-vitro-Pflanzen, die durch Zellkultur vermehrt und in einem flüssigen Medium bewurzelt wurden, dadurch gekennzeichnet, daß die Knollenbildung in vitro an bewurzelten Pflanzen induziert wird, die induzierten Pflanzen in ein festes Medium im Gewächshaus gepflanzt werden und sich im Gewächshaus Knollen entwickeln, während das Wachstum des Pflanzenkrautes durch regelmäßiges und periodisches Besprühen der Pflanzen mit Antigibberellin-Chemikalien begrenzt wird, die entwickelten Miniknollen geerntet werden, anschließend die Pflanzen wieder in den Boden gepflanzt werden, das Wachstum des Krautes weiter begrenzt wird und die Herausnahme und das Zurückpflanzen während der Vegetationsphase der Pflanzen regelmäßig wiederholt werden.A process for the production of potato minicolls from in vitro plants propagated by cell culture and rooted in a liquid medium, characterized in that tuber formation is induced in vitro on rooted plants, the induced plants in a solid medium in the greenhouse planting and growing tubers in the greenhouse while limiting the growth of the plant habit by regularly and periodically spraying the plants with anti-gibberellin chemicals, harvesting the developed mini-tubers, then planting the plants back into the soil, further limiting the growth of the herb and the removal and back-planting are regularly repeated during the vegetation phase of the plants. 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Knollenbildung induziert wird durch die Verwendung des MS-Grundmediums, das NH4NO3 und KNO₃ in einer Konzentration von 1/10 enthält, sowie 20mg/l Glutaminsäure, 40g/l Saccharose, 5mg/l Benzyladenin, 25mg/l Koumarin und 6mg/d Dichloroazethylhexamethylenimin.2. The method according to claim 1, characterized in that the tuber formation is induced by the use of MS base medium containing NH4NO3 and KNO ₃ in a concentration of 1/10, and 20mg / l glutamic acid, 40g / l sucrose, 5mg / l benzyladenine, 25mg / l coumarin and 6mg / d dichloroazethylhexamethyleneimine. 3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Pflanzen vor dem Verpflanzen im Gewächshaus mit einer Chemikalie behandelt werden, welche das Bewurzeln fördert, und mit einem Mittel, welches die Infektion durch Rhizoktonia verhindert, wenn das erforderlich ist.3. The method according to claim 1, characterized in that the plants are treated before transplanting in the greenhouse with a chemical that promotes rooting, and with an agent that prevents infection by Rhizoktonia, if necessary. 4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß diese Behandlung durch die Verwendung von Indolessigsäure und — wenn erforderlich — Propyl-N-(3· dimethylaminopropyl)karbamathydrochlorid in einer Lösung erfolgt.4. The method according to claim 3, characterized in that this treatment is carried out by the use of indole acetic acid and - if necessary - propyl-N- (3 · dimethylaminopropyl) carbamate hydrochloride in a solution. 5. Verfahren für die Produktion von Kartoffelminiknollen nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die verpflanzten Pflanzen mit Koumarin und/oder Dichloroazetylhexamethylenimin behandelt werden.5. A method for the production of potato minicoll according to one of claims 1 to 3, characterized in that the transplanted plants are treated with coumarin and / or Dichloroazetylhexamethylenimin. 6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß nach dem Ernten der Miniknollen die Pflanzen—vor dem Verpflanzen — erneut mit einer Lösung behandelt werden, die eine Chemikalie enthält, welche die Bewurzelung fördert, und eine zweite, welche die Infektion durch Rhizoktonia verhindert, wenn das erforderlich ist.6. The method according to claim 1, characterized in that after harvesting the mini-tubers, the plants-before transplanting-are treated again with a solution containing a chemical that promotes the rooting, and a second, which prevents infection by Rhizoktonia if that's necessary. 7. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die verpflanzten Pflanzen mit Koumarin und/oder Dichloroazethylhexamethylenimin behandelt werden.7. The method according to claim 1, characterized in that the transplanted plants are treated with coumarin and / or Dichloroazethylhexamethylenimin. 8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß das Herausnehmen der Pflanzen, das Ernten der Miniknollen und das Zurückpflanzen der Pflanzen während der Vegetationsperiode der Pflanzen mehrmals wiederholt werden kann.8. The method according to any one of claims 1 to 7, characterized in that the removal of the plants, the harvesting of the mini-tubers and the planting back of the plants during the growing season of the plants can be repeated several times.