HU206012B - In vitro - in vivo method of high activity for producing potato small sized tubers - Google Patents

Abstract

Effective process for the in vitro-in vivo production of potato minitubers in such a way, that in vitro tuber initiation is induced on in vitro rooted plants, and these plants are planted into glasshouses, the growth of haulm is limited by treatment with antigibberellic chemicals, minitubers are collected and plants are transplanted, properly treated and minitubers produced during the vegetation period are collected periodically.

Description

A találmány tárgya nagy hatékonyságú in vitro-in vivő eljárás burgonya minigumók előállítására.BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a highly effective in vitro in vitro method for the preparation of potato mini-tubers.

Jelen találmányunk bejelentési napja előtt számos sikeres kísérletet végeztünk burgonya minigumók előállítására. Eljárásunk vírus- és viroidmentes burgonya szaporítóanyag tömeges előállítására, vonatkozik szövettenyésztéssel oly módon, hogy vírus- és viroidmentes burgonya hajtáscsúcs-szövetsejteket tápközegben in vitro neveljük, majd szaporítjuk, a hajtásokat gyökereztetjük vagy a gumóképződést indukáljuk, az in vitro gyökereztetett növényeket növényházba kiültetve in vivő anyanövénnyé neveljük, vagy in vitro gumóképződést indukálunk, a képződött minigumókból adott esetben anyanövényt nevelünk, és erről palánta vagy kisgumó szaporítóanyagot nyerünk, vagy magukat a minigumókat hasznosítjuk szaporítóanyagként. A palánta-, illetve gumóképződést célszerűen az anyanövény patatin-szintézisének befolyásolásával lehet irányítani.Prior to the filing date of the present invention, several successful attempts have been made to produce potato mini-tubers. Our method of mass production of virus and viroid-free potato propagation material involves tissue culture by cultivating virus and viroid-free potato sprout tissue cells in culture medium, then propagating, rooting the shoots, or inducing tuber growth in vitro, in vitro. or by inducing tuber formation in vitro, the resulting mini-tubers may optionally be grown on a parent plant to produce seedling or tuber propagation material or utilize the mini-tubers themselves as propagation material. Advantageously, seedling or tuber formation can be controlled by influencing the patatin synthesis of the parent plant.

A szakirodalomban napjainkig nem volt ismeretes olyan új hasznosítható információ, amellyel a burgonya szaporítóanyag tömeges és rugalmas előállítása megoldhatóvá vált volna.To date, no useful new information has been known in the literature to make mass and flexible production of potato propagating material possible.

A burgonya szaporítóanyag tömeges termesztését több, nagyon fontos - a növény természetéből adódó körülmény teszi nehézzé:The mass production of potato propagation material is very important - due to the nature of the plant, it is difficult:

- hagyományos módon szaporítva szaporodási sebessége nagyon alacsony (legfeljebb évi 10-12-szeres), ennek megfelelően a hagyományos fajtafenntartás 8-12 éves folyamat;- when propagated by conventional means, the rate of reproduction is very low (up to 10-12 times per year), accordingly, the maintenance of the traditional breed is 8-12 years;

- a burgonya jelenleg használt fajtái igen érzékenyek a különböző gomba-, baktérium- és vírusbetegségekre, A hagyományos fajtafenntartás ezért csak olyan országokban volt megvalósítható, amelyekben az ökológiai környezet miatt a betegségokozó fertőzési veszély viszonylag kicsi;- the varieties of potatoes currently used are very susceptible to various fungal, bacterial and viral diseases. Traditional varieties could therefore only be maintained in countries where the risk of infection due to the ecological environment is relatively low;

- a burgonya szaporítóanyag víztartalma körülbelül 90%, ezért tárolása és szállítása különleges körülményeket igényel. Adott esetben a szaporítóanyag szállítási költsége magasabb, mint értéke a termelés helyén.- the potato propagating material has a water content of about 90% and therefore requires special storage and transport conditions. Where appropriate, the cost of transport of the propagating material shall be higher than its value at the place of production.

Korábbi kísérleti eljárásunk szerint a burgonya szaporítóanyagot laboratóriumban és üvegházban kellett előállítani. Mindkét berendezés kivitelezési és üzemeltetési költsége igen magas volt. Bármilyen burgonya szaporítási eljárás gazdaságosságát alapvetően az egységnyi felületen előállítható szaporítóanyag mennyisége határozza meg. A laboratórium és a növényház létesítését mérlegelve megállapítható, hogy a növényházi szaporítás a költségesebb.In our previous experiment, the potato propagation material had to be produced in a laboratory and in a greenhouse. The construction and operating costs of both units were very high. The cost-effectiveness of any potato propagation process is essentially determined by the amount of propagation material per unit surface area. Considering the establishment of a laboratory and a greenhouse, it can be concluded that propagating a greenhouse is more expensive.

A laboratóriumból kikerült anyagok fogadására jellegüknél fogva- nagyon pontos és felkészült növényházi műszaki technikára van szükség (pontos talajfűtési lehetőségek, páratartalom szabályozása, pótvilágítás stb.). Figyelembe véve a laboratóriumból növényházba kiültetett növényanyag előállításának gazdaságosságát, a korábbi eljárásunkkal a növényházi minigumók előállítása csak a legtökéletesebb kihasználás mellett tehető gazdaságossá. Korábbi eljárásunk szerint az előállítható minigumók száma négyzetméterenként 400-800 db. Ez a körülmény jelentős mértékben gátolja a növényházak hasznosításának terjedését minigumó termesztésére.Due to their nature, materials that have been removed from the laboratory require very precise and well-prepared greenhouse technical techniques (precise soil heating, humidity control, back-lighting, etc.). Considering the economics of producing plant material transplanted from the laboratory into the greenhouse, our previous process can only make the production of greenhouse mini-tubers economical with the best utilization. According to our previous process, the number of minigubs that can be produced is 400-800 pieces per square meter. This circumstance significantly inhibits the spread of greenhouse utilization for the production of mini-tubers.

Az egységnyi területen megvalósítható minigumó előállítás hatékonyságának lényeges fokozására új eljárást dolgozunk ki. A jelen találmányunk szerinti eljárással - az ismert szakirodalmi adatok alapján nem nyilvánvaló módon - legalább 300-500%-kal növelhető a korábbi módszer hatékonysága.We are developing a new method to significantly increase the efficiency of minigum production in a unit area. The process of the present invention can increase the efficiency of the prior art by at least 300-500%, not obvious from the prior art.

Találmányunk lényege az, hogy szövettenyésztés révén ismert módon fertőzésmentesített és szaporított növényeket laboratóriumi körülmények között folyékony tápközegben in vitro gyökereztetünk, megfelelő gyökérzet kifejlődése után a tápközeget antigibberellin tartalmú gumóindukciós tápközegre kicseréljük, a növényeket ebben inkubáljuk, a gumóindukció megtörténte után a növényeket - gyökeresedést elősegítő szerrel való kezelést követően - növényházban szilárd tápközegbe kiültetjük, a növények vegetatív növekedését a gibberellin szintnek a citokinin szinthez való csökkentésével rendszeresen és periodikusan visszaszorítjuk. a képződött minigumókat a gyökérzetről eltávolítjuk, majd a növényeket a szilárd közegbe visszaültetjük gyökereztető hormon alkalmazása mellett, majd antigibberellin hatású vegyülettel ismét rendszeres és periodikus kezelést végzünk, és a képződött minigumókat ismét begyűjtjük.It is an object of the present invention to inoculate plants disinfected and propagated by tissue culture in a known medium in a liquid medium in a known manner, after the appropriate root system has been developed, the medium is replaced by a After treatment, the plants are planted in a solid medium in a greenhouse, and the vegetative growth of the plants is regularly and periodically suppressed by reducing the gibberellin level to the cytokinin level. the resulting mini-tubers are removed from the root system, then the plants are transplanted back into the solid medium using a rooting hormone, then regular and periodic treatment with the antigibberellin-acting compound is performed and the resulting mini-tubers are harvested again.

A találmány szerinti eljárást úgy valósítjuk meg, hogy ismert módon, szövettenyésztéssel betegségmentesítjük a növényeket. A vírus és egyéb betegségektől mentes növényeket bármilyen ismert szövettenyésztéses módszer révén szaporítjuk. A szövettenyésztéssel szaporított növényeket folyékony tápközegben gyökereztetjük.The process of the present invention is accomplished by disinfecting plants by tissue culture in a known manner. The virus and other disease free plants are propagated by any known tissue culture method. Tissue-grown plants are rooted in liquid medium.

A gyökereztetés befejezésével, miután a növények összefüggő gyökérszövedéket fejlesztettek, a gyökereztető tápközeget a növényekről leöntjük, és gumóindukciós tápközeggel cseréljük ki.Upon completion of the rooting, after the plants have developed a continuous root tissue, the rooting medium is decanted from the plants and replaced with tuber-induction medium.

A gumóindukciós tápközeg alapvetően MS táptalajt [Murashige és Skoog: Physiol. Plánt 75. 473-497 (1962)] tartalmaz azzal a különbséggel, hogy a szervetlen nitrogén forrás az eredeti 1/10-e, a növények nitrogénszükségletét az indukció alatt szerves nitrogénforrással (például glutamin, aszpargin) biztosítjuk. Az MS táptalajhoz képest az indukciós táptalaj cukorkoncentrációja nagyobb. Előnyös a 40% g/liter cukorkoncentrációTuber induction medium is basically MS medium [Murashige and Skoog, Physiol. Plant 75, 473-497 (1962)], with the difference that the inorganic nitrogen source is one tenth of the original, and the nitrogen requirement of the plants during the induction is provided by an organic nitrogen source (e.g. glutamine, aspartin). Sugar concentration in the induction medium is higher than in MS medium. A sugar concentration of 40% g / l is preferred

Az indukciós táptalaj nagy koncentrációban tartalmaz citokinineket, általában megfelelő az 5-10 mg/liter koncentráció.The induction medium contains high concentrations of cytokinins, usually in the range of 5-10 mg / L.

Az indukciós tápközeg lényeges alkotóelemei a különböző antigibberellinek. Ilyen vegyületek a kumarin és származékai, klór-kolin-klorid, legelőnyösebb a diklór-acetil-hexametilén-imin. Utóbbi vegyületnek növekedésgátló és antidotáló hatása van. A növényekben a citokininekhez viszonyítva a gibberellin szintet csökkentő hatása révén gumóindukciós hatást fejt ki, és a növények sejtmembrán-szerkezetét is előnyösen befolyásolja. A találmány szerinti eljárásban a diklór-acetilhexametilén-imint célszerűen 6-20 mg/1 koncentrációban alkalmazhatjuk.The essential components of the induction medium are the various antigibberellins. Such compounds include coumarin and its derivatives, chlorocholine chloride, most preferably dichloroacetylhexamethyleneimine. The latter compound has growth inhibitory and antidoting properties. It has a tuber-inducing effect in gibberellin compared to cytokinins in plants and also has a beneficial effect on the cell membrane structure of plants. The dichloroacetylhexamethylenimine is suitably used in the process according to the invention in a concentration of 6 to 20 mg / l.

HU 206 012 ΒHU 206 012 Β

A növényeket az indukciós tápközegben 18-20 °Con napi 8 órás megvilágítás mellett 10-14 napig inkubáljuk.Plants were incubated in induction medium at 18-20 ° C for 8 to 14 hours daily for 10-14 days.

Az indukció megtörténte után a burgonyagumókat növényházi körülmények között szilárd tápközegben neveljük fel. A növényházba való kiültetés előtt azonban a gyökérzetből kimossuk az indukciós közeget, és a talajban való gyökeresedés elősegítésére, valamint a palánták Rhizoctoniás fertőzésének elkerülésére a növényeket 0,05 mg/1 indol-ecetsavat és 0,2% Previcur N-t tartalmazó folyadékba mártjuk [Previcur N = propil-N-(3-dimetil-amino-propil)-karbamát-hidroklorid].After induction, the potato tubers are grown in a solid medium under glasshouse conditions. However, prior to transplanting into the greenhouse, the induction medium is washed out of the root system and immersed in a liquid containing 0.05 mg / L indole acetic acid and 0.2% Previcur N to prevent rooting in the soil and to avoid Rhizoctonian infestation of the seedlings [Previcur N = propyl N- (3-dimethylaminopropyl) carbamate hydrochloride].

A növényeket az üvegházban történő eredés után - a kiültetéstől számított 3. héttől - hetente egyszer 510 mg/liter diklór-acetil-hexametilén-imint és/vagy 10 mg/liter kumarint tartalmazó oldattal permetezzük. Ezzel elérhető, hogy a növények kicsik maradnak, fiziológiai állapotuk azonban alkalmas a gumófejlesztéshez. Ha szükséges, a burgonyanövényeket a továbbnövekedés megakadályozására visszacsípjük.After emergence in the greenhouse, the plants are sprayed once a week with a solution containing 510 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine and / or 10 mg / l coumarin once a week from the time of transplantation. This allows the plants to remain small, but their physiological state is suitable for tuber development. If necessary, potato plants are pinched to prevent further growth.

A nő vény házi kiültetés után 1,5-2 hónap elteltével a növényeket a szilárd tápközegből csomókban kiemeljük, és a gyökérzet körül kiszedjük a már kifejlődött, 0,5 cm-nél nagyobb átmérőjű gumókat. Az ily módon nevelt növényekről első alkalommal négyzetméterenként kb. 1000 gumó gyűjthető be.After 1.5 to 2 months after the female grafting, the plants are removed from the solid medium in clumps and the tubers more than 0.5 cm in diameter are removed around the root system. The plants grown in this way for the first time are approx. 1000 tubers can be harvested.

A növények kiemelése és a gumók eltávolítása következtében a gyökérzet megsérülhet. A növénycsomókat ismételten 0,05 mg/liter indol-ecetsavat és 0,2%-os Previcur N-t tartalmazó oldatba mártjuk, majd az eredeti közegbe vagy másik közegbe visszaültetjük. Gyökeresedés után a korábbi kezeléseket rendszeresen tovább folytatjuk (10 mg/liter kumarin és/vagy 6 mg/liter diklór-acetil-hexametilén-imin),Extracting plants and removing tubers can damage the root system. Plants were repeatedly immersed in a solution containing 0.05 mg / L indole acetic acid and 0.2% Previcur N, and replanted in the original medium or another medium. After rooting, previous treatments are continued on a regular basis (10 mg / l coumarin and / or 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine),

A növénycsomók kiemelése, a gumók eltávolítása, a fenti oldattal való kezelés és a növények visszaültetése 3-4 hét múlva megismételhető. A második gumótermés négyzetméterenként 2-3000 db is lehet. A növényeket elöregedésükkor, azaz az ültetés után kb. 4 hónap múlva felszedjük és megsemmisítjük. Az eljárással a kezelt növények fajtájuktól függően négyzetméterenként 2500-4000 db gumót szolgáltatnak, ez a mennyiség 3-4-szerese a korábbi eljárással elérhető négyzetméterenkénti gumószámnak.The removal of plant clumps, removal of tubers, treatment with the above solution and replanting of plants can be repeated after 3-4 weeks. The second tuber can have 2-3000 pieces per square meter. The plants grow for approx. After 4 months we pick it up and dispose of it. The treatment produces 2500-4000 pieces of tubers per square meter, depending on the variety, 3-4 times the number of tubers per square meter obtained by the previous method.

A felszedett gumókat rekeszekben, szórt fényen, 70%-os relatív páratartalom mellett 2 hétig parásítjuk, majd méretek szerint osztályozzuk, és felhasználásig rekeszekben 2-5 °C-on tároljuk.The harvested tubers are pared in crates under diffused light at 70% relative humidity for 2 weeks, then sized and stored in crates at 2-5 ° C until use.

A találmány szerinti eljárás évente átlagosan 2,5ször ismételhető meg, ez azt jelenti, hogy a korábbiakhoz képest a minigumó előállítás hatékonysága 4-5szörösére növekszik.The process according to the invention can be repeated on average 2.5 times a year, which means that the efficiency of minigum production is increased 4 to 5 times more than before.

A találmány szerinti eljárást a következő példán mutatjuk be.The process of the invention is illustrated by the following example.

1. példaExample 1

A „Somogy gyöngye” burgonyafajtát ismert módon szövettenyésztés segítségével szaporítjuk. A megfelelő növényszám elérése után a burgonyahajtásokat folyékony táptalajon gyökereztetjük. Két hetes gyökereztetés után a növények alatt a táptalajt gumóindukciós médiummal cseréljük fel. A gumóindukciós médium összetétele: Murashige és Skoog (MS) alapmédium, 1/10 koncentrációjú ammónium-nitrát és kálium-nitrát,The "Somogy pearl" potato variety is known to grow by tissue culture. Once the correct number of plants has been reached, the potato shoots are rooted in liquid medium. After two weeks of rooting, the medium is replaced with tuber-induction medium under the plants. Composition of tuber induction medium: Murashige and Skoog (MS) basic medium, 1/10 ammonium nitrate and potassium nitrate,

20 mg/1 glutaminsav, 40 g/1 szacharóz, 5 mg/1 benziladenin, 25 mg/1 kumarin és 6 mg/1 diklór-acetil-hexametilén-imin. A gumóindukciós médiumban 10 napig inkubáljuk a növényeket, 8 órás 200 lux/m² megvilágításban, 18 °C hőmérsékleten.Glutamic acid 20 mg / l, sucrose 40 g / l, benzyladenine 5 mg / l, coumarin 25 mg / l and dichloroacetylhexamethylenimine 6 mg / l. Plants were incubated in tuber-induction medium for 10 days at 200 lux / m ^{2 for} 8 hours at 18 ° C.

Az indukálás után a növénycsomókat a tenyészedényekből kiszedjük, folyó csapvízben a kultúrát lemossuk, majd az egész csomót a felesleges víz eltávolítására lerázzuk, leitatjuk, 0,08 mg/1 indol-ecetsav és 02%os Previcur N tartalmú oldatba mártjuk, majd tőzeg alapú közegbe ültetjük, 50 tenyészedény tartalmát nettó msenként.After induction, the plant knots are removed from the culture vessels, the culture is washed with running tap water, and the whole knot is shaken to remove excess water, plated, immersed in 0.08 mg / l indole acetic acid and 02% Previcur N, and then in peat. planted, the contents of 50 breeding pots net per ms.

A növényeket eredés után kissé (2 cm) feltöltjük, majd az ültetéstől számított két hét után hetente egyszer 10 mg/1 kumarin és 6 mg/1 diklór-acetil-hexameti20 lén-imin tartalmú oldattal permetezzük.Plants were lightly seeded (2 cm) after emergence and sprayed with a solution containing 10 mg / l of coumarin and 6 mg / l of dichloroacetylhexamethylenimine imine once a week for two weeks after planting.

Az ültetéstől számított másfél-két hónap után a növényházi asztalon lévő sűrűn benőtt burgonyacsomókat a talajból kiemeljük. A fél centiméter átmérőjűnél nagyobb gumókat egy erre a célra elkészített fésűvel vagy kézzel leszedjük.One and a half to two months after planting, the densely overgrown potato lumps on the greenhouse table are removed from the soil. Tubers larger than half a centimeter in diameter are removed with a specially prepared comb or by hand.

A felszedett növényekről a tőzeget és a földet lerázzuk. A növénycsomót 0,08 mg/1 indol-ecetsav és 0,2% Previcur N-t tartalmazó oldatba mártjuk, és a növényeket eredeti helyükre visszaültetjük és öntözzük.Peat and soil are shaken off the harvested plants. The plant knot was dipped in a solution containing 0.08 mg / L indole acetic acid and 0.2% Previcur N, and the plants were replanted and watered.

A növények kezelését tovább folytatjuk 10 mg/1 kumarin és 6 mg/1 diklór-acetil-hexametilén-imin tartalmú oldattal. Három-négy hét után a felszedést és visszaültetést újra megismételjük. A növények kisméretű állapotban tartása érdekében a növényeket alkal35 mánként vissza kell tömi. A sima, gyökér nélküli dugványok további szaporítás és gumófogás céljára felhasználhatók.The plants were further treated with a solution containing 10 mg / l coumarin and 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine. After three to four weeks, the pick-up and replanting are repeated. In order to keep the plants small, the plants should be watered occasionally. Smooth, unrooted cuttings can be used for further propagation and trimming.

Az ily módon indukált és nevelt „Somogy gyöngye” növények négyzetméterenként 3500 minigumót terem40 nek kb. négy hónap alatt.The "Somogy pearl" plants induced and cultivated in this way produce 3500 minigrams per square meter40. in four months.

2. példaExample 2

Az 1. példában leírtak szerint dolgozunk, azzal az eltéréssel, hogy somogyi sárga kifliburgonya fajtát al45 kalmazunk, és az indukciós közegbe kumarint nem adunk, és a diklór-acetil-hexametilén-imin koncentrációját 10 mg/l-re emeljük.The same procedure was used as in Example 1, except that the yellow cabbage variety Somogyi was used and no coumarin was added to the induction medium and the concentration of dichloroacetylhexamethyleneimine was raised to 10 mg / l.

3. példaExample 3

Az 1. példában leírtak szerint dolgozunk, azzal az eltéréssel, hogy Kennebec burgonyafajtát alkalmazunk, és az in vitro tenyészetek indukálása után msenként 80 tenyészedény tartalmát ültetjük ki.The procedure described in Example 1 was followed, except that the Kennebec potato variety was used and, after induction of the in vitro cultures, the contents of each 80 wells were inoculated.

Claims (8)

SZABADALMI IGÉNYPONTOKPATENT CLAIMS 1. Eljárás burgonya minigumók előállítására szövettenyésztéssel szaporított és folyékony tápközegben in1. A process for the production of potato mini-tubers in tissue culture-grown and liquid media in 60 vitro gyökereztetett növényekről, azzal jellemezve,60 in vitro rooted plants, HU 206 012 B hogy a gyökereztetett növényeken in vitro gumóképződést indukálunk, a gumók indukálása után a növényeket gyökeresedést elősegítő szerrel kezeljük, az indukált gumókkal rendelkező növényeket - kívánt esetben fertőzést gátló szerrel végzett kezelés után - növényház- 5 bán szilárd közegbe ültetjük ki, a gumókat növényházban kifejlesztjük, miközben a növények zöldtömeg növekedését antigibberellin hatású szerrel való rendszeres és periodikus kezeléssel visszaszorítjuk, a képződött minigumókat begyűjtjük majd a növényeket - kívánt 10 esetben fertőzésgátló szerrel és gyökeresedést elősegítő szemel végzett kezelés után - a közegbe visszahelyezzük, a zöldtömeg növekedést antigibberellin hatású szemel végzett kezeléssel továbbra is gátoljuk, és a felszedést és visszaültetést a növények tenyészideje 15 alatt célszerűen peridokusan ismételjük.In order to induce the formation of tubers on inoculated plants in vitro, after the tubers are induced, the plants are treated with a root-promoting agent, and the plants with induced tubers, if desired after treatment with an anti-infective agent, are transplanted into a solid medium. developed in a greenhouse while suppressing the growth of plants by regular and periodic treatment with an antigenicellin agent, the resulting mini-tubules are harvested and, after treatment with an antifungal agent and rooting grains, if necessary, treatment is continued and harvesting and replanting are preferably repeated peridocally during the growth period of the plants. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a gumóképződést Murashige és Skoog-féle olyan alapközeggel indukáljuk, amely ammónium-nitrátot és kálium-nitrátot 1/10 koncentrációban, továbbá 20 mg/liter 20 glutaminsavat, 40 g/liter szacharózt, 5 mg/liter benzil-adenint, 25 mg/liter kumarint és 6 mg/liter diklór-acetil-hexametilén-imint tartalmaz.2. The method of claim 1, wherein the tuber formation is induced by a Murashige and Skoog base medium in a concentration of 1/10 ammonium nitrate and potassium nitrate, and 20 mg / l 20 glutamic acid, 40 g / l sucrose , Containing 5 mg / l benzyl adenine, 25 mg / l coumarin and 6 mg / l dichloroacetylhexamethyleneimine. 3. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a növényeket növényházba való kiültetés előtt szükséges esetben Rhizoctoniás fertőzést gátló szerrel kezeljük.3. The method of claim 1, wherein the plants are treated, if necessary, with a Rhizoctonic antifungal agent prior to transplanting to the greenhouse. 4. Λ 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kezelést indol-ecetsavat és szükséges esetben 0,05-0,4% propil-N-(3-dimetil-amino-propil)-karbamát-hidrokloridot tartalmazó oldattal végezzük.The process according to claim 3, wherein the treatment is carried out with a solution containing indole acetic acid and, if necessary, 0.05-0.4% propyl N- (3-dimethylaminopropyl) carbamate hydrochloride. 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kiültetett növényeket antigibberellin hatású szerrel pl. 0,5-10 mg/1 diklór-acetil-hexametilén-iminnel és/vagy 1-30 mg/1 kumarinnal kezeljük.5. The method of claim 1, wherein the seeded plants are treated with an antibibberellin-acting agent, e.g. 0.5-10 mg / L dichloroacetylhexamethyleneimine and / or 1-30 mg / L Coumarin. 6. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a minigumók begyűjtését követően ismét gyökeresedést elősegítő szemel és szükséges esetben Rhizoctoniás fertőzést gátló szemel végzünk kezelést, mielőtt a növényeket visszaü 1 tetjük.6. The method of claim 1, wherein, after harvesting the mini-tubers, treatment is carried out again with the aid of rooting eyes and, if necessary, seeds for inhibiting Rhizoctonial infection, before the plants are replanted. 7. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a visszaültetett növényeket antigibberellin hatású szerrel pl. diklór-acetil-hexametilén-iminnel és/vagy kumarinnal kezeljük.7. The method of claim 1, wherein the replanted plants are treated with an antigenic antigen, e.g. dichloroacetylhexamethyleneimine and / or coumarin. 8. Az 1-7. igénypontok bármelyike szerinti eljárás azzal jellemezze, hogy a növények felszedését, a minigumók begyűjtését és a visszaültetést a növények tenyészideje alatt többször ismételjük.8. A method according to any one of claims 1 to 4, wherein the picking of plants, harvesting of mini-tubers and replanting are repeated several times during the growing season of the plants.