CZ300172B6 - Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující - Google Patents

Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující Download PDF

Info

Publication number
CZ300172B6
CZ300172B6 CZ0306499A CZ306499A CZ300172B6 CZ 300172 B6 CZ300172 B6 CZ 300172B6 CZ 0306499 A CZ0306499 A CZ 0306499A CZ 306499 A CZ306499 A CZ 306499A CZ 300172 B6 CZ300172 B6 CZ 300172B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
virus
prm
protein
flavivirus
chimeric
Prior art date
Application number
CZ0306499A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ306499A3 (cs
Inventor
J. Chambers@Thomas
P. Monath@Thomas
Guirakhoo@Farshad
Original Assignee
Acambis Inc.
St. Louis University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Acambis Inc., St. Louis University filed Critical Acambis Inc.
Publication of CZ306499A3 publication Critical patent/CZ306499A3/cs
Publication of CZ300172B6 publication Critical patent/CZ300172B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5258Virus-like particles
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24121Viruses as such, e.g. new isolates, mutants or their genomic sequences
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2770/24143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24111Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24161Methods of inactivation or attenuation
    • C12N2770/24162Methods of inactivation or attenuation by genetic engineering
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Virology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Chimerický, živý, infekcní, oslabený virus, kterýzahrnuje virus žluté horecky, ve kterém je nukleotidová sekvence pro prM-E protein bud deletována, okleštena, nebo zmutována, takže není exprimován funkcní prM-E protein, a do genomu tohoto viru žluté horecky je integrována nukleotidová sekvence kódující prM-E protein druhého, odlišného flaviviru, takže prM-E protein tohoto druhého flaviviru exprimován je, pricemž jsou signální sekvence v C/prM aE/NS1 spojeních udržovány v konstrukci zmíneného chimerickém flaviviru, jeho použití pro prípravu léciv pro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcíu pacientu a molekula nukleové kyseliny jej kódující.

Description

Chiméricky živý, infekční, oslabený virus, léčivo pro prevenci nebo léčbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující
Oblast techniky
Předkládaný vynález se vztahuje k infekčním, oslabeným virům, které jsou použitelné jako vakcíny proti onemocněním způsobovaným flaviviry.
io
Dosavadní stav těchniky
Několik členů patřících do čeledě Havivirů v současnosti jsou hrozbou nebo potenciálně mohou být ohrožením globálního obecného zdraví. Například Japonská encefalitida je závažným obec15 ným zdravotním problémem, který představuje nebezpečí pro miliony jednotlivců na Dalekém Východě. Virus horečky Dengue, který je každoročně celosvětově odhadován jako příčina 100 milionů případů primární horečky Dengue a více než 450 000 případů hemoragické horečky Dengue, byl vyhodnocen jako jedna z nej významnějších a rthropod přenosných lidských chorob. Další ílaviviry pokračují ve způsobování endemických chorob u různých živočichu a mají poten2o ciál vniknout i do nových oblastí, jakými jsou příčiny změn klimatu, vektor populací a výsledky narušení životního prostředí způsobované lidskou činností. Tyto ílaviviry zahrnují například St. Louis encefalitický virus, který' způsobuje sporadickou, ale vážnou akutní chorobu na středozápadě, jihovýchodě a západě Spojených států amerických; Západonilský virus, který způsobuje horečnatá onemocnění, příležitostně komplikovaná akutní encefalitidou a je významně rozšířen v Africe, na Středním Východě, v dřívějším Sovětském svazu a některých částech Evropy; Murray Val lev encefal ilický virus, který způsobuje endemieke onemocnění nervového systému v Austrálii a Klíšťový encefalitieký virus, který je rozšířen v bývalém Sovětském svazu a východní Evropě, kde jeho klíšťový nosič je běžný a je odpovědný za vážnou formu encefalitidy v těchto regionech.
Virus iiepatitidy C (HCV)je dalším členem čeledě flaviviru, jehož organizace genomu a replikační strategie jsou podobné, ale nikoliv identické těm virům, které jsou zmíněny výše. i ICV virus, který je přenášen hlavně mimo střevní expozicí, je spojen s chronickou hepatitidou. která sc může vyvinout do cirhóze jater a hepatoeelulárního karcinomu a je vedoucí příčinou jaterních onemoc55 nční, která vyžadují orthotopickou transplantaci ve Spojených státech amerických.
Čeleď Elaviviridae je odlišná od alfavirů (např.: WEE, VEE, EEE, SEV atd.) a v současnosti zahrnuje Iři rody: ílaviviry, pěst i viry a viry hepalitidy C. Zcela zralé viriony flavi v iru obsahují tři strukturní proteiny, obálky (E). kapsidy (C) a membrány (M) a sedm ncstrukturních proteinů
4«) (NS1, NS2A, NS2B, NS3, NS4A, NS4B a NS5). Nezralé viriony nalézají v buněčném obsahu infikovaných buněk pre-niembránový (prM) protein, který je prekurzorem membránového proteinu M.
Po navázání virionů na receptory hostitelské buňky, E protein prochází ne vratnou konformační změnou pod vlivem kyselého pH endozomů, což způsobuje fůzi mezi dvojvrstevnou obálkou virionů a endocytickými váčky, a tudíž dochází k vypuštění virálního genomu do cytosolu hostitelské buňky. Viry klíšťové encefalitidy (TBE), které obsahují prM protein, jsou neschopné fůze, což znamená, že proleolytická úprava prM proteinu je nezbytná pro vytvoření virionů. které jsou schopné fůze a jsou to zcela infekční viriony (Guirakhoo ei aí. J. Gen. Virol. 72 (pt. 2):333 až
338, 1991). Pozdějším použitím chloridu amonného vc virovém replikačním cyklu byly produkovány Murray Valley cncefalitícké viry (MVE), které obsahovaly prM protein, a které byly neschopné fúze. Za použití peptidů specifické sekvence a monoklonálních protilátek bylo demonstrováno, že prM protein interagujc s aminokyselinami 200 až 327 E proteinu. Tato interakce je nezbytná proto, aby ochránila E protein před nevratnými konfirmačními změnami způsobovaný- I CZ 300172 B6 mi maturací virionů v kyselých měchýřcích exocvtické cesty (Guirakhoo eí aL, Virology 191:921 až 931. 1992).
Štěpení prM proteinu na M protein se objevuje krátce před vypuštěním virionů. provádí ho celulární proteáza podobná furinu (Stadler eí al., i. Virol. 71:8475 až 8481, 1997) a je nezbytné pro aktivaci hcmoaglutinační aktivity, fusogení aktivity a infekčnosti virionů. M protein je vy štěpen ze svého prekurzoru v souhlasné sekvenci R-X-R/K-R (X je variabilní) a je začleněn do virové lipidové obálky společně s E proteinem.
io Štěpící sekvence byly konzervativní ne pouze u flavivirů, ale také u proteinů ostatních nepříbuzných v iru takový, jako jsou PE2 myších koronavirů, PE2 alíavirů. HA chřipkových virů a p 160 retrovirů. Štěpení prekurzového proteinu je hlavní pro virovou infektívitu, ale ne pro vy tvoření vírové částice. Bylo prokázáno, že v případě TBE-dengue 4 chiméry, změna v štěpícím místě prM proteinu vede ke snížení neurovirulence této chiméry (Pletncv eí al., J. Virol. 67:4956 až i? 4963, 1993). cožjc v- souladu s předchozím pozorováním, že dostatečná úprava prM proteinu je nezbytná pro plnou inťekčnost (Guirakhoo etaí, 1991. výše, 1992. výše; Heinz eí al., Virology 198:109 až 1 17, 1994). Protilátky proti prM proteinu mohou zprostředkovat ochranou imunitu. zjevně z důvodu neutralizace vypuštěných virionů, které obsahují nějaký nenašlěpený prM protein. Proteolytieké štěpící místo v PE2 u VEE (4 aminokyseliny) bylo deletováno cílenou
2(i inulagenezí infekčního klonu (Smith eíal., ASTMH meeting, Deceniber 7-1 t, 1997). Deleční mutanty se replikovaly s velkou účinností a PE2 proteiny byly začleňovány do částic. Tento mutant by l odzkoušen na neb umán nich primátech a vykazoval 100% scrokonzervaci a ochraňoval všechny imunizované opice před smrtelnými změnami.
Podstata vynálezu
Předkládaný vynález charakterizuje chimérické, živé, infekční, oslabené viry tak. že je každý tvořen takto:
a) první virus žluté horečky (např.: kmen 17D). který představuje živou, oslabenou virovou vakcínu. v které je nuklcolidová sekvence pro prM E protein buď delctována. oklestěna, nebo zmutována tak, že funkční prM-E protein prvního flavivirů není exprimován, a
b) nukleotidová sekvence kódující virálni obálku (prM-E proteinů) druhého, odlišného flaviviru. je integrována do genomu prvního flavivirů, takže prM-E protein druhého flavivirů jc exprimován z pozměněného genomu prvního flavivirů, přičemž jsou signální sekvence v C/prM a E/NS1 spojeních udržovány v konstrukci zmíněného chimérickém flavivirů.
Chimérický virus je tudíž tvořen geny a genovými produkty odpovědnými za intraeelulární replikaci patřící prvnímu flavivirů a geny a genovými produkty obálky druhého flavivirů. Protože virálni obálka obsahuje všechny antigenní determinanty odpovědné za indukci neutralizujících protilátek, výsledkem infekce chimérickým virem je, že tyto protilátky jsou produkovány pouze proti druhému flavívíru.
Upřednostňovaným živým virem pro použití jako první flavivirus v chimérických virech podle předkládaného vynálezu je virus žluté horečky. Nejméně jedna vakcína již použila tento živý, oslabeny virus; tato vakcína je známa jako YFI7D a byla použita pro imunizaci lidí před více než 50 lety. Vakcína YE17D je popsána v řadě publikací, včetně publikací Smithburna eíal.
(„Ycllow Eever Vaeeination“, World Health Org., p. 238, 1956) a Freestona (in Plotkin eíal.. (Eds.). Vacci nes, 2d edition, W.B. Saunders, Philadelphia, 1995). Kromě toho byl virus žluté horečky studován na genetické úrovni (Rice eí al., Science 229:726 až 733. 1985) a informace vztahující se kc genotypu a fenotypu byly získány (Marchevsky eí a/.. Ant. J. Trop. Med. Hyg. 52:75 až 80, Ϊ995).
Upřednostňované viry pro použití jako druhý flavivirus v chimérických virech podle předkládaného vynálezu a tudíž zdroje imunizačního antigenu zahrnují virus japonské encefalitidy (JE), virus horečky Denguc (DEN. např: jakýkoliv z Dengue typů 1 až 4), Murray Valley ence fa litický virus (MVE). St. Louis encefalitický virus (SLE), Západonilský virus (WN), virus klíšťové _s encefalitidy (TBE) a viry hepatitidyC (HCV). Další flaviviry použitelné jako druhý flavivirus zahrnují Kunjin virus, středoevropský encefalitický virus, ruský jaro-letní encefalitický virus. Powassan virus, Kyasanur Eorest Disease virus a virus ornské hemoragické horečky. V upřednostňovaném chimérickém viru podle předkládaného vynálezu jc sekvence kódující prM-E protein druhého flaviviru zaměněna za sekvenci kódující prM-E protein živého viru žluté horeční ky. V upřednostňovaném chimérickém viru je sekvence kódující prM-E protein odvozena od oslabeného virového kmene lakového, jako jc vakcínový kmen. Také jak jc popsáno dále níže, prM část proteinu může obsahovat mutaci, která, zabraňuje štěpení, které umožňuje vytvoření zralého membránového proteinu.
V předkládaném vynálezu jsou také zahrnuty metody zabraňující nebo léčící flavivirovou infekci u savců takových, jako je člověk, podáváním chimérického flaviviru infekce savcům; použití chimérických flavi virů podle předkládaného vynálezu při přípravě medikamentů pro zabraňování nebo léčbu flavi virové infekce; a způsoby přípravy chimérických flavi virů podle předkládaného vynálezu.
Předkládaný vynález zajišťuje několik výhod. Například, protože jsou chimérické viry živé a replikují se, mohou být chimérické viry podle předkládaného vynálezu použity k vytvoření dlouhotrvající ochranné imunity. Protože mají tyto viry replikacní geny oslabeného viru (např.: virus Žluté horečky 17D). je výsledný virus oslabený na takový stupeň, žc skýtá bezpečí pro použití u lidí.
Další vlastnosti a výhody předkládaného vynálezu budou jasné z následného detailního popisu, obrázků a nároků.
Předkládaný vynález zajišťuje chimérické flaviviry. které mohou být použity při vakcinacních metodách proti flavivirové infekci. Zkonstruování a analýza chimérických flaviviru podle předkládaného vynálezu takových, jako jsou chiméry viru žluté horečky a viru japonské encefalitidy (JE), viru horečky Dengue (DEN 1 až 4), Murray Valley encefalitického viru (MVE), St. Louis enccfaliliekého viru (SLE). Západonilského viru (WN), viru klíšťové encefalitidy (TBE) a virů hepatitidy C' (HCV), jsou popsány v následující textu.
Proteiny flaviviru jsou vytvářeny translací z jednoho, dlouhého otevřeného čtecího rámce (kódovány jsou strukturní proteiny, kapsida <C), pre membránový (prM) protein a obálka (E), zrovna tak. jako nestrukturní proteiny) a komplexem několika posttranslačníeh proteolytiekých štěpení. Chimérické flaviviry podle předkládaného vynálezu, jak již bylo diskutováno výše. zahrnují tv.
4i) ii kterých byly pr-M a E proteiny jednoho flaviviru zaměněny za pr-M a E proteiny jiného flaviviru. Tudíž takto vytvořené chimérické flaviviry zahrnují generaci nových spojení mezi kapsidou a pre-mem hranovým i proteiny; a obálkový M proteinem a nestrukturní oblastí (NS1) dvou odlišných flaviviru. Štěpení mezi každou z těchto sad proteinů (C a pr-M; a E a NSI) se vyskytuje během přirozené proteolytické úpravy flavi virových proteinů a vyžaduje přítomnost signální sekvence, která vytváří boční sekvence spojení štěpících míst.
V chimérický cli tlav i virech podle předkládaného vynálezu je upřednostňováno, aby signální sekvence virů tvořících chiméry byly skutečně udržovány, takže vlastní štěpení mezi C a pr M proteiny a E a NSI proteiny by mohlo účinně proběhnout. Tyto signální sekvence byly so v udržovány v chimérách, které jsou popsány níže. Alternativně jakákoliv z řady známých signálních sekvencí může být zařazena, aby se připojila k C a prM proteinům nebo E a NSI proteinům chimér (např.: von Heijne, Eur. J. Biochem. 133: 17 až 21. 1983; von Heijnc, J. Mol. Biol. 184:99 až 105, 1985) nebo například použitím známých vedoucích sekvencí může ten, kdo je znalý stavu techniky, vytvořit doplňkové signální sekvence, které mohou být použity v chimérách podle předkládaného vynálezu. Obvykle například bude signální sekvence obsahovat jako svůj
- i CZ 300172 B6 poslední aminokyselinový zbytek aminokyselinu s malým, nenabitým postraním řetězcem, takovou, jako je alanin, glvcin, serin, cystein, threonin nebo glutamin, Další požadavky kladené na signální sekvence jsou známé těm. kdo znají stav techniky (např.: von Heijne, 1983, výše: von Heijne. 1985, výše). Také signální sekvence dalších virů, ktcrc tvoří chiméry', mohou být udržo5 vány nebo skutečně udržovány, takže vlastní štěpení probíhá. Konstrukce eDNA lemplátů pro vytvoření YE/JE chimérických virů - odvození celodélkovýeh eDNA templátů pro chiméry podle předkládaného vynálezu popsané níže zahrnuje strategii podobnou té. kterou dřívější pracovníci použili k vytvoření YE17D zcDNA pro molekularněgenetické analýzy replikace YF. Strategie jc popsána např.: v Nestorowicz et al. (Virology 199:1 14 123.1994).
io
V krátkosti, odvození YE/JE chiméry podle předkládaného vynálezu zahrnuje následující. Genomové sekvence YFjsou rozšířeny do dvou plazmidů (YF5'3'IV a YFM5.2). které kódují YF sekvence od nukleotidu 1 až do 2276 a od 8279 do 10 861 (YE5'3'IV) a od 1373 do 8704 (YFM5.2) (Rice et al·, The New Biologist 1:285-296. 1989). Celodclkové eDNA temp laty jsou vytvářeny ligací vhodných restrikčních fragmentů odvozených od těchto plazmidů. Tato metoda byla nejspolehlivější pro zajištění stabilní exprese YF sekvencí a vytvoření RNA transkriptů. které mají vysoce specifickou infekticivilu.
Naše strategie pro konstrukci chimér zahrnuje náhradu YF sekvencí mezi YF5'3'IV a YFM5.2
2o plazmidy odpovídajícími JE sekvencemi z oblasti startu prM proteinu (nukleotid 478. aminokyselina 128) přes E/NS1 štěpící místo (nukleotid 2 452, aminokyselina 81 7). Kromě toho, aby mohla být klonována eDNA JE, bylo nezbytné provést několik kroků pro zavedení nebo eliminování restrikčních míst v obou YF a JE sekvencích, aby bylo umožněna in viiro ligace. Struktura lemplátů pro regenerování chimérických YE (C)/JE (prM-E) virů je ukázána na obrázku 4. Druhá chiméra kódující celou JE strukturní oblast (C prM-E) byl vytvořen za použití podobné strategie.
Molekulární klonování JE virové strukturní oblasti klony genů skutečného JE strukturního proteinu byly vytvořeny z JE SA|4— 14 2 kmene (JE živý, oslabený v akci načni kmen), protože biolo3o gické vlastnosti a molekulární charakterizace tohoto kmene jsou dobře zdokumentovány (Eekels et al., Vaccine6:513 až 518, 1988; JE SAn—14-2 virus je dostupný v Centers for Diseasc Controk Fort Collins. Colorado a v Yale Arbovirus Research Unit, Yale University, New Ha ven, Connectícut. které jsou Světovou zdravotnickou organizací označeny za referenční centra pro arbovirv ve Spojených státech amerických). JE SAU-14-2 virus v transportní formě PDK-5 byl získán a transportován v LLC-MK, buňkách, aby bylo získáno dostatečné množství pro klonování eDNA, Strategie, která byla použita, zahrnovala klonování strukturní oblasti ve dvou částech, které se překrývají vNhe 1 restrikčním místě (JE nukleotid 1 125). a ktcrc mohou být pak použity pro in viiro ligaci.
4o RNA bvl extrahována z jednovrstevných infikovaných ELC MK2 buněk a syntéza prvního řetězce z negativního vlákna eDNA byla provedena za použití reverzní transkriptázy s primerein pro negativní vlákno (JE nukleotidová sekvence 2 456 až 71), které obsahovalo naskládaná Xba 1 a Nar 1 restrikění místa pro klonování zpočátku do pBluescript Π KS(+) a následně do YFM5.2 (Nar I), respektive. Syntéza prvního řetězce eDNA byla následována PCR amplifikací JE sek15 venee od nukleotidů I 108 do 2 471 za použití stejného primeru pro negativní vlákno a primeru pro pozitivní vlákno (JE nukleotidová sekvence 1108 až 1130), který' obsahoval naskládaná Xba l a Nsi I restrikění místa pro klonování do pBluescriptu a do YFM5.2 (Až/rl), respektive JE sekvence byly určeny restrikčním štěpením za pomoci restrikeního enzymu a nukleotidovým sekvenováním. JE nukleotidová sekvence od nukleotidu 1 do nukleotidu 1 130 byla odvozena pomocí
PCR amptifikace negativního vlákna JE eDNA za použití primeru pro negativní vlákno, který odpovídal JE nukleotidům 1 116 až I 130 a primeru pro pozitivní vlákno, který odpovídal JE nukleotidům 1 až 18, oba primery obsahují EcoR I restrikění místo. PCR fragmenty byly klonovány do pBluescriptu a JE sekvence byly určeny nukleotidovým sekvenováním. Toto dohromady představuje klonování JE sekvence od nukleotidu 1 do nukleotidu 2 471 (aminokvsclinv 1 až.
7 92).
-4 C7. 300172 B6
Konstrukce derivátů YF5'34V/JE a YFM5.2/JE aby byl vložen C konec JE obálkového proteinu do YE E/NS1 štěpícího místa, bylo zavedeno unikátní restrikční místo Nar I do ΥΓΜ5.2 plazmidu řízenou oligonukleotidovou mutagenezí signální sekvence v E/NS 1 štěpícího místa (YF nukleotidy 2 447 až 2 452. aminokyseliny 816 až 817), aby se vytvořil YFM5.2 (A'orl). U tran skriptů odvozených od tem plátů začleněných touto změnou byla kontrolována intuici vita a výsledná specifická infekticivita zda je podobná parentálním templátům (přibližně 100 plaky tvořících jednotek/250 nanogramů transkriptu). JE sekvence z nukleotidů 1108 až 2471 byla subklonována z několika nezávislých pBluescript/JE klonů, které byly vytvořeny PCR, do io YEM5.2 (Nar I) za použití unikátních Nsi I a Nar 1 restrikčních míst. YF53IV/JE klony obsahující YF5' netraslalovatelnou oblast (nukleotidy! až 118) sousedící sJE prM-E oblastí byly připraveny PCR amplifíkaeí.
Aby byly odvozeny sekvence obsahující spojení YF kapsidu a JE prM. byl použit chimérický pri15 mer negativního vlákna zabírající tuto oblast spolu s primerem pozitivního vlákna, který odpovídá YE5'3'IV nukleotidům 6 625 až 6 639. aby vznikly PCR fragmenty, které byly pak použity jako PCR primery negativního vlákna v konjugaci s primerem pozitivního vlákna doplňujícím v pBlueseriptu vektoru upstrcam sekvenci EeoR I restrikčního místa, aby se pak amplifikovala JE sekvence (kódovaná v opačné orientaci v pBluescript vektoru) od nukleotidu 477 (N konec au prM proteinu) přes Nhe I restrikční místo do nukleotidu 1 125. Výsledné PCR fragmenty byly vneseny do YF5'3'1V plazmidu za použití Not I a EcoR I restrikčních míst. Tento konstrukt obsahuje SP6 promotor, který předchází YF5' netranslatovatelné oblasti, a je následován sekvencí: YF (C) JE (prM E) a obsahuje Nhe 1 restrikční místo (JE nukleotid 1 125). klére je nezbytné pro in vitro ligaci.
Vytvoření ΥΓΜ5.2 a YF5'3'1V plazmidu, které obsahují restrikční místa pro in vitro ligaeí - aby mohlo být použito Nhe 1 restrikční místo uvnitř sekvence JE obálky jako 5' koncové in vitro ligační místo, bylo nadbytečné Nhe I restrikční místo v YFM5.2 plazmidu (nukleotid 54S9) eliminováno. Toto bylo provedeno tichou mutací YF sekvence v nukleotidu 5 461 (T->C; alanin, .κι aminokyselina 1 820). Foto místo bylo začleněno do YFM5.2 ligaci vhodných restrikčních fragmentu a zavedeno do YFM5.2(Aí/r l)/JE výměnou za Nsi ]/Nar 1 fragment kódující chimérickou YF/JE sekvenci.
Aby se vytvořilo unikátní 3' koncové restrikční místo pro in vitro ligaci, bylo vytvořeno BspE 1 restrikční místo downstream od Aai \l restrikčního místa, které je normálně používané pro vytvářené eelodélkových templátů zYF5'3'lV a YEM5.2. (četná Aot U restrikční místa jsou přítomna v JE strukturní sekvenci, což zabraňuje použití tohoto místa pro in vitro ligaci). BspE 1 restrikční místo bylo vytvořeno tichou mutací YF nukleotidu 8 581 (A-»C; serin, aminokyselina 2860) a bylo zavedeno do YFM5.2 výměnou vhodné restrikční fragmenty. Unikátní místo bylo to začleněno do YFM5.2/JE výměnou za Xha VSph l fragment a do YF5'3'lV/JE(prM E) plazmidu tnčásfovou ligaeí vhodných restrikčních fragmentů z těchto parentálních plazmidů a z derivátu
YFM5.2 (BspE 1) delecí YF sekvence mezi EcoR I restrikčními místy nukleotidů 1 a 6912.
Výměna JE Nakayma cDNA s YE/JE chimérickými plazmidy - z důvodu nejistoty ohledně kapa45 city JE SAii-14-2 strukturní oblasti, která byla vytvořena PCR amplifíkaeí, aby fungovala správně v kontextu chimérického viru, byla použita cDNA z klonu JENakayama kmene, který byl široce charakterizován během expresních experimentů a pro jeho kapacitu navodit ochrannou imunitu (Mclda et aL Virology 158:348 až 360. 1987; JE Nakayama kmen je dostupný v Centers for Disease Control, Fort Collins. Colorado a v Vale Arbovirus Research Unit, Vale University,
5(i New Ilaven, Connecticut). Nakayama cDNA byla vnesena do YF/JE chimérických plazmidů za použití vhodných restrikčních míst (Hind Hl až Pvu II a Bpm 1 až Mun I), aby byla zaměněna celá prM-E oblast v dvou plazmidových systémech kromě jedné aminokyseliny, šeřinu, v pozici 49, která byla ponechána intaktní, aby mohla být použita pro Nhe I restrikční místo k in vitro ligaci. Celá JE oblast v Nakayama klonu byla sekvenována, aby bylo ověřeno, že záměna eDNA opravíš du proběhla (tabulka 2).
Vytvoření eelodélkových cDNA templátů, RNA transfekce a vytvoření infekčního viru - postupy pro vytvoření eelodélkových cDNA templátů jsou hlavně popsány v Rice et al. (The New Biologist 1:285-296. 1989) (obrázek 1). V případe chimérických templátů jsou plazmidy
YF5'3'!V/JE(prM-E) a YFM5.2/JE štěpeny restrikčními endonukleázami Nhe MBsp I a m vitro ligace byla provedena za použití 50 nanogramů puriUkovaných fragmentů a za přítomnosti T4 DNA ligázy. Produkty ligace byly linearizovánv enzymem Xha 1, aby byla umožněna ubíhající transkripce, SP6 Irán skripty byly syntetizovány za použití 50 nanogramů purifikovaného lemplátu, kvantifikován začleněním TI UTP a celistvost RNA byla určena nedenaturující elektrofoio rézou v agarózovém gelu. Výtěžky byly v rozmezí od 5 do 10 mikrogramů RNA na reakci při použití této procedury, jichž většina byla představována eelodéíkovými transkripty. Transfekce RNA transkripty v přítomnosti kationtovýeh liposomů bylo prováděno tak, jak je popsáno v Rice et ah (výše) pro YFI7D, V počátečních experimentech byly pro transfekci a kvantifikaci viru použity LLC-MK2 buňky, protože u nich byla určena tolerantnost pro replikaci a vytváření plaků i? parentálních kmenů YF a JE. Tabulka 1 ilustruje obvyklé výsledky transfekčních experimentů za použití Lipofectinu (GIBCO/BRL) jako transfekčního nosiče. Věro buněčné linie byly také běžně použity pro přípravu infekčních virových zásobních roztoků, charakterizaci značených proteinů a neutralizační testy.
2o Nukleotidové sckvenování chimérických cDNA templátů - plazmidy obsahující chimérickou YF/JE cDNA byty podrobeny sekvenční analýze části JE klonů, aby byla identifikována správné sekvence SAbt 14-2 a Nakayama obálkového proteinu. Odlišnosti nukleotidovýeh sekvencí mezi těmito konstrukty v porovnání s publikovanými sekvencemi (McAda et al.. výše) jsou ukázány v tabulce 2.
?5
Strukturní a biologická charakterizace chimérických YF/JE virů -genomová struktura chimérických YF/JE virů získaných z transfekčních experimentů byla ověřena analýzou založenou na RT/PCR virální RNA izolované z monovrstcvnýeh infikovaných buněk. Tyto experimenty byly provedeny tak, aby byla eliminována možnost, že virové zásobní roztoky budou kontaminovány ío během transfekčních procedur. Při těchto experimentech byl použit prvoprůchozí virus, který zahájil infekční cyklus, aby byla eliminována tvorba jakýchkoliv artefaktů přítomností reziduální transfektovanou virální RNA. Celkové RNA extrakty z buněk infikovaných buď YF/JE (prM E)-SA|.(-14 2 nebo YF/JE (prM -E)-Nakayama chimérami byly podrobeny RT/PCR za použití YF a JE-specifických primerů. které umožnily vytvoření celé strukturní oblasti, jako dva PCR produkty o přibližné velikosti 1 kilo báze. Tyto produkty byly poté analyzovány štěpením restrikčními enzymy za použití předpověděných restrikčních míst uvnitř sekvencí JESAm-14 2 a Nakayama, které umožňují diferenciaci těchto virů. Použitím tohoto přístupu byla virální RNA určena, že je chimérickou a u vytvořených virů byla ověřena přítomnost vhodných restrikčních míst. Aktuální vazba C-prM byla pak ověřena, že je intaktní na úrovni sekvence cyklickou
4o sekvenční analýzou před chimérické spojení YF/JE C-prM.
Přítomnost JE obálkového proteinu ve dvou chimérách byla ověřena imunoprecipitaci obou za použití JE-speeifiekého an ti séra a p lakovým redukčním neutralizačním testem za použití YF' a JE—specifického antiséra. lmunopreeipitaee extraktů z infikovaných LEC-MK> buněk, které byly označeny S. s chimérami za použití monoklonální protilátky k JE E proteinu ukázala, že JE obálkový protein by mohl být vytvořen 55 kD proteinem, kde stejné antisérum selhává při imunoprecipitaci proteinu z YF-in fí kovaných buněk. Obě JE a YF hypcrimunní séra vykázala křížovou reaktivitu ke dvěma obálkovým proteinům, ale rozdílnost ve velikosti mezí proteiny (YE = 53 kD, neglykosylovaný; JE - 55 kD. glykosylovaný) mohla být reprodukovalelnč pozoro50 vána. Použití YF monoklonálních protilátek nebylo za uspokojivých imunoprecipitačníeh podmínek, tudíž specifita této analýzy byla závislá na JE monoklonálních protilátkách. Plakový redukční neutralizační lest (PRNT) byl proveden na chimérických virech a na YF a JESAH-I4-2 vírech za použití YF a JE-specifickýeh hyperimunních aseitickýeh kapalin (ATCC) a YF-speciflckých purifl kovaných IgG (monoklonální protilátka 2E10). Významné odlišnosti v 50% plako55 vém redukčním titru těchto antisčr byly pozorovány pro chiméry; když byly porovnány s kont-6 Q1 300172 B6 rolními viry použitými v těchto experimentech (tabulka 3). l edy epitopv nezbytné pro neutralizaci jsou exprimovány v infekčních chimérických YF/JE virech.
Růstové vlastnosti v buněčné kultuře - růstová kapacita chimér byla zkoušena kvantitativně v buněčných liniích, obě v liniích původem pocházejících od primátů a komárů. Obrázek 2 ilustruje kumulativní růstové křivky chimér v EEC-MIG buňkách po nízké mnohonásobné infekci (0.5 plak tvořících jednotek/buňku). V tomto experimentu byly použity viry YF5.2ÍV (klonovaný derivát) a JE SAí4-14-2 (neklonovaný) pro srovnání. Oba chimérické viry dosáhly maximálního virového výtěžku přibližně o řád vyššího než parentální virus. V případě YF/JE SA,4-14-2 ni chiméry se pík virové produkce objevilo 12 hodin později než v případě YF/JE Nakayama chiméry (50 hodin proti 38 hodinám). YF/JE Nakayama chiméra vykázala významně vyšší cytopatieké vlivy než YF/JE SA(4-14-2 chiméra na této buněčné linii. Podobný experiment byl proveden v C6/36 buňkách po nízké mnohonásobné infekci (0.5 plak tvořících jednotek/buňku). Obrázek 2 také ilustruje růstovou kinetiku virů v této intervertebrální buněčné linii. Podobné virové výtěžky byly získány ve všech bodech použitých pro izolování viru v tomto experimentu, dále prokazující představu, žc chimérických virů není poškozena replikační účinnost.
Porovnání růstové kinetiky RMS (YF/JE SA)4-14-2) sYF17D vakcinou v MRC-5 buňkách experiment byl proveden, aby byla určena schopnost vakcinového kandidáta rozmnožit se
2o v buněčné linii akceptovatelně pro lidskou vakcínu. Komerční vakeína žluté horečky 17D(YFVax®) byla získána z Connaught Laboratories, Swiflwater, PA. MRC 5 (diploidní lidské embryonální plicní buňky) byly zakoupeny od ATCC (171 -CCL, vsádka#: F 14308, pasáž 18) a rostly v EMEM. 2 mM E-GIn. Earle's BSS. které bylo upraveno tak, aby obsahovalo 1,5 g/1 uhličitanu sodného. 0,1 mM neesenciálních aminokyselin a 10% FBS.
Aby mohla být porovnána růstová kinetika RMS (Research Master Seed, YF/JE $Au-l4-2) s YF-Vax00). rostly buňky do 90% splývání a infikovány byly s RMS nebo YF-Vaxíy při MOI okolo 0.1 pfu. Protože MRC 5 buňky obvykle rostou pomalu, byly tyto buňky inkubovány po dobu 10 dnů po inokulaci. Vzorky byly zmrazovány každodenně po dobu 7 až 10 dnů a infekti5o vita byla určena testem plaků ve Věro buňkách.
YF-Vax® a YF/JE chiméry rostly do slušných titrů v MRC-5 buňkách (obrázek 3). Pík litru byl '4.7 logm pfu pro YF-Vax® dosažený druhý den a byl nepatrně nižší než 4,5 logm pfu pro RMS po 6 dnech.
Testování ncurovirulence v normálních dospělých myších - virulenční vlastnosti YF/JE SAU14—2 chiméra byly analyzovány v mladých dospělých myších intracclebrální inokulaci. Skupiny po 10 myších (4 týdny staří samci a samice ICR myší. každých 5 na jednu skupinu) byly inokulovány 10 000 plak tvořícími jednotkami YF/JE SA]4-14-2 chiméry. YF5.2iv nebo JE SA](-14-2 •io a pozorovány každý den po dobu 3 týdnů. Výsledky těchto experimentů jsou zobrazeny na obrázku 4. Myši přijímaly parentální YF5.2ÍV odevzdaně přibližně jeden týden po inokulaci. Žádná mortalita nebo onemocnění nebyly pozorovány mezi myšmi přijímajícími buď JE SA14-14 2 parentální virus, nebo chiméru. Inokula, která byla použita pro experimenty, byla titrována v době injikace a podskupina myší, které přežily, byla testována na přítomnost neutralizačních protilátek, aby se potvrdilo, žc došlo k infekci. Mezi těmito testovanými myšmi byly titry proti viru JE SAu—14—2 podobné pro zvířata, která přijala bud' tento kmen, nebo chiméru.
Výsledky dalších experimentů zjišťujících ncurovirulenci YF/JE $ΛΗ-14-2 chiméry v myších jsou zobrazeny v tabulce 4. V těchto experimentech všechny myši inokulované YF5.2iv zemřely
5(i v rozmezí 7 až 8 dnů. Naopak žádná myš inokulovaná YF/JE SA14-14-2 nezemřela během dvou týdnů poslinokulačního pozorování.
Výsledky experimentů, které určovaly neuroínvazivítu a patogenezí YF/JE chimér jsou zobrazeny v tabulce 5. V těchto experimentech byly chimérické viry' inokulovány do 3 týdny stalých myší v dávkách pohybujících se v rozmezí mezi 10 000 a l milionem plak tvořících jednotek přes
-7CZ 300172 B6 intraperitoneální cestu. Žádná z myší inokulovaných buď YF/JE Nakayama. nebo YF/JE SAU14-2 nezemřela během tří týdnů postinokulačního pozorování, což naznačuje, že virus byl neschopný způsobit onemocnění po periferní inokulací, Myši inokulovanc YF/JE SA].i 14 2 virem vyvinuly neutralizující protilátky proti JE viru (obrázek 7).
Konstrukce cDNA templátú pro vytvoření žlutá horečka/dengue (YF/DEN) chimérických virů odvození chimérických žlutá horečka/dengue (YF/DEN) virů je popsáno v následujícím textu, a které je v principu prováděno stejně, jako konstrukce YF/JE chiméry, jak je popsáno výše. Další flav i virové chiméry mohou být vytvořeny podobnou strategií za použití přirozených nebo io vytvořených restrikčních míst a například oligonukleotidových primerů. jak je ukázáno v tabulce 6.
Konstrukce YF/DEN chimérického viru-ačkoliv bylo vyvinuto několik molekulárních klonů dengue virů. byly zjištěny problémy se stabilitou virálních cDNA plazmidových systémů as účinností replikace vytvořených virů. Pro použití byl vybrán klon DEN-2 vy vinutý Dr. Peterem
Wrightem. Dept. of Microbiology, Monash University. Clayton, Austrálie, protože tento systém je relativně účinný pro regeneraci viru a tvoří dvou-plazmidový systém, který je podobný naší vlastní metodologii. Kompletní sekvence tohoto DEN-2 klonu je přístupná a usnadňuje konstrukci chimérických YF/DEN templátú, protože pouze několik modifikací YE klonu bylo nezbyt20 ných. Významné kroky jsou naznačeny v následujícím textu.
Podobně jako dvou-plazmidový systém pro YF5.2iv a YF/JE viry používá YF/DEN systém unikátní restrikční místo uvnitř DEN 2 obálkového proteinu (E). jako zlomové místo pro rozšíření strukturní oblasti (prM-E) uvnitř dvou plazmidů, tímto způsobem odvolávající se jako
YF5'3'IV/DEN (prM-E ) a YFM5.2/DEN (E/-E) (obrázek 5). Dvě restrikční místa pro in vitro ligaei chimérického templátú jsou Aat II a Sph E Recipienlní plazmid pro 3'koncovou část DEN E proteinové sekvence je YFM5.2(.Y<vr I[+].S/>/?![—]). Tento plazmid obsahuje Nar I restrikční místo v E/NS1 spojení, které bylo použito pro začlenění karboxylového konce JE E proteinu. Dále bylo modifikováno eliminací Sph I restrikční ho místa, které bylo navíc, v oblasti NS5 pro30 teinu tichou v tomto místě řízenou mutagenezí. To dovolilo začlenění DEN 2 sekvence z unikátní Sph I místa do Nar 1 místa jednoduchým přímým klonováním. Vhodný fragment DEN-2 cDNA byl získán pomocí PCR z DEN-2 klonu MON3K). který by l poskytnut Dr. Wrightem. PCR primery zahrnovaly 5'koncový primer ohraničující Sph I restrikční místo a 3'koncový primer homologní k DEN-2 nukleotidům okamžitě upstrearn od signalázového místa v E/NS1 spojení a nahrazující signa lázové místo substitucí, takže vytváří nové místo, ale zároveň zavádí Nar 1 restrikční místo. Výsledný 1 170 párů bází dlouhý PCR fragment byl poté zaveden do YFM5.2CW l[+]V/?// IH).
5' koncová část DEN-2 klonu zahrnující prM a aminokoncová část E proteinu byla vytvořena
4ti a zavedena do YF5'3'1V plazmidů za použití chimérického PCR primeru. Chimérický primer zahrnující 3'konec negativního vlákna YF C proteinu a 5'konec DEN-2 prM proteinu byl použit sprimerem pozitivního vlákna, který ohraničuje SP6 promotor YF5'3TV plazmidů, tak, aby došlo k vytvoření 771 párů bází velký PCR produkt s 20 bázovým prodloužením představujícím DEN 2 prM sekvenci. Tento PCR produkt byl pak použit pro přípravu DEN-2 plazmidů pro konjugaci s 3' koncovým primerem. který představuje DEN-2 sekvenci 1501 až 1522 a ohraničuje Sph 1, aby došlo k vytvoření 1 800 párů bází velkého konečného PCR produktu, který zahrnuje YF sekvenci od Yo/1 restrikčního místa přes SP6 promotor, YF5' netranslatovatelnou oblast a YF C protein sousedící s DEN-2 prM El522 sekvencí. PCR produkt byl ligován do YF53TV za použití Not i a Sph 1 restrikčních míst, aby výsledkem ligace byl
YF5'3'IV/DEN(prM-E) plazmid.
Konstrukce chimérických templátú dalších fiavivirň - procedury pro vytváření eelodélkovýeh cDNA templátú kódujících chimérické YF/MVE. YF/SLE. YF/WN. YF/TBE viry jsou podobné těm. které byly popsané výše pro YF/DEN-2 systém. Tabulka 6 zobrazuje rysy strategie pro vytváření chimérických virů na základě YF17D. Unikátní restrikční místa použitá pro in vitro ligaci a chimérické primery pro vytváření C/prM a E/NS1 spojení jsou také dobře známy. Zdroje eDNA pro tyto hetelogní flaviviry jsou lehce přístupné (MVE: Dalgamo et aL, J, Mol. Biol. 187:309 až 323, 1986; SLE: Trent et aL Virology 156:293 až 304, 1987; TBE: Mandl et aL Virology 166:197 až 205. 1988; Dengue 1: Mason et aL Virology 161:262 až 267. 1987;
Dengue 2: Deubel el aL Virology 155:365 až 377, 1986; Dengue 3: Hahn et aL Virology 162:167 až 180. 1988; Dengue 4: Zhao et aL. Virology 155:77 až 88, 1986).
Alternativní přístup k vytváření dalších chimérických virů je vytvořit C/prM spojení ligaci tupých konců restrikčních fragmentů, které bylo připraveny PCR, a které mají konce, které se setkávají io v tomto spojení a 5' a 3'konce, které ohraničují vhodná restrikéní místa pro zavedení do
YE53TV nebo do intermediálového plazmidu takového, jako je pBS-KSp). Volba použití chimérické oligonukleotidy nebo ligaci tupých konců může být různá, závisí na vhodnosti unikátních restrikčních míst uvnitř obálkového proteinu kódujícího oblast uvažovaného viru. Konstrukce virů kódujících IICV antigeny protože strukturní proteiny El a E2 HCV nejsou homologní k strukturním proteinům flavivirů, které by ly popsány výše. strategie pro expresi těchto proteinů obsahuje inzerci uvnitř vedlejší oblasti genomu, takže všechny tyto proteiny jsou pak spoluexprimovány s proteiny žluté horečky během replikaci viru v infikovaných buňkách. Oblast vybraná pro inzerci proteinů je N koncové částí NSl proteinu, protože celý NS1 protein není nezbytný pro virální replikaci. Z důvodu potenciálních problémů se stabilitou YE genomu v přítomnosti hele?u rologni sekvence převyšující normální velikost genomu (přibližně 10 000 nukleotidů), může být použita detekční strategie popsaná níže. Kromě toho delece v NSl může být výhodná v chimérickém YF/ťlavivirus systému popsaném výše, protože částečná delece tohoto proteinu může odstranit imunitu k YE asociovanému s protilátkami proti NSl a tedy vyhnout se problémům s vektorovou imunitou, jestliže více než jedna chimérická vakcína byla nezbytné podána rcei25 pientovi nebo jestliže YE vakcína byla dříve podána nebo by byla potřeba v budoucností.
Strategie zahrnuje vytvoření série delecí v rámci uvnitř NSl kódující oblasti YEM5.2 plazmidu v konjugaci s vytvořením translačního terminačního kodonu na konci E a sérii dvou IRES (vnitřní ribozomální vstupní místo). Jedno IRES je ihned downstrcam od terminačního kodonu ,H) a dovoluje expresi z otevřeného čtecího rámce uvnitř oblasti mezi E a NSl. Druhé IRES iniciuje translaci z okleštěných NSl proteinů, zajišťující expresi zbytku YE nestrukturníeh polyproteinů. Tyto deriváty byly testována na schopnost vytvořit infekční virus a konstrukt s největší delecí by l použit pro inzerci cizorodých sekvencí (např,: HCV proteiny ) v oblasti prvního IRES. Tento jednotlivý konstrukt může také sloužit jako základ pro určování zda bude delece v NSl působit vektoroxou specifickou imunitu v kontextu YE/Elavivirus chimérických virů exprimujíeíeh prME; jak bylo popsána výše.
Inzerce nukleotidů kódujících El. E2 a/nebo El plus E2 HCV proteiny je limitována velikostí tolerované delece v NSl proteinu. Z toho důvodu okleštěné HCV proteiny mohou být použity k zesílení stability uvnitř modifikovaného YE klonu. 1ICV proteiny jsou vytvářeny sN koncovou signální sekvencí ihned následovanou IRES a s terminačním kodonem na C konci. Tálo konstrukce bude řídit HCV proteiny směrem do endoplasmatiekého réti kula /.důvodu sekrece ven z buněk. Strategie této konstrukce je schématicky ukázána na obrázku 6. Plazmid kódující HCV proteiny genotypu 1 může být použít pro tyto konstrukce, například HCV plazmidy získané od Dr. Charlese Riccho z Washington University (Grakoui t-7 o/., J. Virology 67:1385 až 1395. 1993), který exprimoval tuto virovou oblast v upravených systémech a uvnitř replikačně-komplementárních celodclkových HCV klonů.
prM štěpené deleění mutanty jako kandidáti oslabené vakcíny pro flaviviry - další chimérické
5ú viry zahrnuté v předkládaném vynálezu obsahují mutace, které zabraňují štěpení prM takové, jako mutace v prM štěpícím místě. Například prM štěpící místa ve flavivirových infekčních klonech, které jsou předmětem zájmu takové, jako jsou dengue, TBE, SLE a další mohou být mutována místní přímou mutagenezí. Jakákoliv nebo všechny aminokyseliny v štěpícím místě, tak jako výše popsané, mohou být deletovány nebo substituovány. Fragment nukleové kyseliny obsa’’ bující mutované prM-E geny může být pak vnesen do vektoru viru žluté horečky metodami,
-o CZ 300172 B6 které byly popsány výše. prM deleee může být použita s nebo bez ostatních zeslabujících mutací, například mutací v E proteinu, aby byla pak vnesena do viru žluté horečky. Tyto mutanty mají výhody oproti jednou substituovaným mutantům coby kandidátům na vakcínu. protože jc téměř nemožné vrátit zpět deletovanou sekvenci a obnovit tak virulenci.
Následující chimérické flaviviry podle předkládaného vynálezu byly umístěny do American Type
Culture Colleetion (ATCC) v Rockville, Maryland, U.S.A v souladu s Budapešlskou smlouvou a bylo jim uděleno datum umístění 6. ledna 1998: chimérický žlutá horečka 17D/denguc typ 2 virus (YF/DEN -2: ATCC přístupové číslo ATCC VR-2593) a chiméríeký žlutá horečka iu 17D/japonská encefalitida SA|4—14—2 virus (YE/JE AI.3: ATCC přístupové číslo ATCC VR2594).
Tabulka 1 charakterizace YE/JE chimér
klon výtěžek (pg) infektíci vita plaky/100 ng ELC-MK2 PBS log titr VĚRO RNAsa log titr VĚRO DNAsa log titr VĚRO
YE5.21 v 5,5 15 7,2 0 7
YF/JE-S 7,6 50 6,2 0 6,2
YF/JE-A 7 60 5 0 5,4
Tabulka 2 - porovnání sekvencí JE kmenů a YE/JE chimér
virus E 107 E 138 E 176 E 177 E 227 E 243 E 244 E 279
JE SAu- 14-2 F K V T S K G M
YF/JE SAta-14-2 F K V Λ s E G M
YF/JE NAK L E I T P E E K
JENAK L E Ϊ T P E E K
JE SA14 L E I T s E G K
CZ 300172 Bó
Tabulka 3 - plakovč redukční neutralizační titry na YF/JE chimérách
virus neimunní ascitická kapalina YF ascitická kapalina JE ascitická kapalina neimunní IgG YF IgG
YF5.2iv <1,3 3,7 <1,3 <2,2 >4,3
JE SA]4- <1,3 <1,3 3,4 <2,2 <2,2
14-2
YF/JE S A μ- <1,3 <1.3 3,1 <2,2 <1,9
14-2
YF/JE <1,3 <1,3 3,4 <2,2 <2,2
Nakayama
Tabulka 4 neurovirulcncc YF/JE SAu-l4-2 chiméry. 3 týdny staré samčí ICR myši
log dávky I.C. % úmrtnosti
YF5.2iv 4 100 (7/7)
YF/JE SAt4-14-2 4 0 (0/7)
YF/JE S A14-14-2 5 0 (0/7)
YF/JE SA,4-14-2 6 0 (0/8)
abulka 5 - ne liro i vaz i v nost YF/JE chimér, 3 týdny staré samčí ICR mvši
log dávky (intraperitoneální) % úmrtnosti
YF/JE Nakayama 4 0 (0/5)
YF/JE Nakayama 5 0 (0/4)
YF/JE Nakayama 6 0 (0/4)
YF/JE SA,4-14-2 4 0 (0/5)
YF/JE SAí4-14-2 5 0 (0/4)
YF/JE SA,4-14-2 ó 0 (0/4)
-IICZ 300172 B6
Tabulka 6 - vytvoření Y/FIavivirus chimér
virus chimérické C/prM spojení1 chimérické E/NS1 '2 Spojeni 5' ligace 3' ligace 1 místa5 eliminováno nebo [změněno)
YF/WN X-cactgggagagcttgaaggtc (SEQ ID NO: 1) aaagccagttgcagccRcgglitaa (SEQ ID NO. 2) Aat 11 ΛΥ/ I
YF/DEN-I X-aaggiagaelggtgggciccc (SEQ ID NO: 3) gatccicagtaccaaccKcggtuaa (SEQ ID NO: 4) Aat 11 Sph I Sph 1 v DEN
YF/DEN-2 X-aaggtagattggtgigcattg (SEQ ID NO: 5) aaccctcagtaccacccccEíítttaa (SEQ ID NO: 6) Aat II Sph I
YF/DEN-3 X-aaggigaattgaagtgctcta (SEQ ID NO. 7) accccca gcaccacccgcggtttaa (SEQ ID NO: 8) Aat 11 Sph 1 Xho I v DEN (Sph I v DEN)
YF/DEN-4 X-aaaaggaacagngilcicla (SEQ ID NO 9) acccgaaglglcaaccgcggtttaa (SEQ ID NO: 10) Aat II Nsi I
YF/SLE X -a acgtgaai aguggatagtc (SEQ ID NO: 11) accEiiKEtcEcacccKcggtttaa (SEQ ID NO 12) Aat 1 Sph 1 Aat 1 v SLE
YF/MVE X-aatncgaaaggiggaagglc (SEQ ID NO. 13) gaccEgtgluacagccgcggtttaa (SEQ ID NO: 14) Aat II Xge I (Age 1 v YF)
YE/TBE X- lact gcgaacgacgllgccac (SEQ ID NO: 15) act gg EaacctcacccRcggt t íaa (SEQ ro NO: 16) Aat 11 ďge I (Age I v YF)
2: sloupec znázornuje o 1 igonuk 1 eotidy použité pro vytvoření chimérických Y F/flavivirtis
primerú. které odpovídají C/prM nebo E/NS1 spojení, (v textu). X = karboxylový konec kódující sekvence YE kapsidy. Podtrhnutá oblast odpovídá cílené hetcrologní sekvenci ihned upstream od η Nar I restrikčního místa (opačná sekvence - ecgegg). l oto místo dovoluje začlenění PCR produkt ů do YFM5.2 (/Vívr I) p I azm idu, k t e rý j e nezbytný pro vytvoření ce 1 odé 1 kových eDNA templátu. Další nukleotidy jsou specifické pro hetcrologní virus. Oligonukleotidové prímery jsou zapsány v orientaci od 5' konce k 3' konci.
: Unikátní restrikční místa použitá pro vytvoření restrikěníeh fragmentů, které mohou být izolovány a ligovány in vitro, aby mohlo dojít k produkci celodélkových chimérických cDNA templátů jsou zde zapsána. Protože některé sekvence neobsahují vhodná místa, je v některých případech nezbytné vhodná místa vytvořit (poznámka 5).
o : V závorkách jsou místa pro restrikční enzymy, která musí být vytvořena buď v YE páteři nebo v heterologním virus, aby umožnila účinnou in vitro ligaci. Restrikční místa, která nejsou v závorkách musí být eliminována. Všechny tyto modifikace jsou prováděny tichou mutagenezí cDNA pro určitý klon. Prázdná místa označují, že nebyly potřeba žádné modifikace.
Ostatní části jsou uvedeny v následujících patentových nárocích. Například geny prM-E proteinu dalších fiavivirů, které jsou důležité z medicínského hlediska, mohou být vneseny do vakcíny s páteří viru žluté horečky, aby mohlo dojít k produkci vakeín proti dalším medicínsky zajíma- I? C7. 300172 B6 vým flavivirům (Monath et aL „Flaviviruses”. ve Virology, Fields (ed.). Raven Lippíncott, New York. 1995, Volume I, 961-1 034).
Přehled obrázků na výkresech
Obrázek 1 je schématickým představením kroků genetické manipulace, které byly provedeny, aby byl zkonstruován chimérický virus podle předkládaného vynálezu virus žluté horečky/virus japonské encefalitidy (YF/JE).
io
Obrázek 2 zobrazuje sadu růstových křivek pro chimérické viry YE/JE podle předkládaného vynálezu v buněčné kultuře akceptovatelné pro přípravu lidské vakcíny.
Na obrázku 3 je graf ukazující porovnání růstu mezi RMS (Research Master Seed. YE/JE SANI? 14-2) a YE-Vax v MRC-5 buňkách.
Na obrázku 4 jc ukázána struktura templátu pro regenerování chimérických YE (C)/JE (prM-R) virů.
Na obrázku 5 jsou schématicky uvedeny dva plazmidové systémy, které jsou nutné pro vytvořeni chimérického YE/DEN-2 viru. Strategie je hlavně popsána pro YE/JE chimérický virus.
Na obrázku 6 je schématicky zobrazena struktura modifikovaných YF klonů vytvořených, aby byty deletovány částí NS1 proteinu a/nebo exprimovány cizí proteiny pod kontrolou vnitřního ríbozomálního vstupního místa (IRES). Obrázek ukazuje pouze E/NS1 oblast virálního genomu. Translační stop kodon je zaveden na karboxylový konec obálkového (E) proteinu. Downstream translace je zahajována uvnitř intergenového otevřeného čtecího rámce (ORF) pomocí IRES-I, což je cizí protein, který řídí expresi (např.: HCV proteiny El a/nebo E2). Druhý protein IRES (IRES-2) kontroluje iniciaci translace YE nestruktumí oblasti, v které jsou nahromaděné a ohrasu ničené NS1 proteiny (např.: NSldcl-1. Nsdel-2 nebo NSldel-3) exprimovány. Rozměr NS1 deleee je inverzně úměrný tomu. jak se IRES I připojuje na ORE.
Na obrázku 7 je graf, který ukazuje neutralizační odpověď protilátky u myší. které byly imunizovány YE/JE SA,., 14-2 chimérickou vakeínou.
Příklady pro vedení vynálezu
Příklady dalších ílavivirů, z jejíchž vynášených genů mohou být získány chimérické vektory to podle předkládaného vynálezu, zahrnují např.: Kunjin virus, středoevropský encefalitieký virus, ruský j a ro-1 ctní encefalitieký virus, Powassan virus, Kyasanur Forest Disease virus a virus omské hemoragícké horečky. Kromě toho mohou být vnášeny do vakcíny viru žluté horečky dokonce geny z mnohem vzdáleněji příbuzných virů za účelem vytvoření nových vakeín.
Výroba vakcíny a její použití - vakcíny podle předkládaného vynálezu jsou podávány v množstvích a za použití způsobů, které mohou být ihned určeny osobou, která má zkušenosti se stavem techniky. Vakcíny mohou být podávány vytvářeny například stejným způsobem, jako vakcína žluté horečky 17D např.: jako vyčištěná suspenze tkáně infikovaného kuřecího embrya nebo kapalina získaná z buněčných kultur infikovaných chimérickým virem žluté horečky. Tudíž živý, oslabený chimérický virus je vytvořen jako sterilní vodný roztok, který obsahuje mezi 100 a 1 000 000 infekčních jednotek (např.: plak tvořících jednotek nebo infekčních dávek tkáňové kultury) v dávce o objemu od 0.1 do 1,0 ml. aby byl podáván například intrainuskulární. podkožní nebo íntradermálni cestou. Navíc, protože flaviviry mohou být schopné infikovat lidského hostitele přes sliznice taková, jako je orální cesta (Gresikova et al., „lick-borne Eneephalitis.
v The Arboviruses. Ecologv and Epidcmilogy, Monath (ed.), CRC Press. Boea Raton, Florida.
j CZ 300172 Bó
1988. Volume IV, 177 až 203). může být virová vakeína podávána přes slizniee. aby bylo dosaženo ochranné imunitní odpovědi. Vakeína může být podávána jako primární profylaktieké činidlo dospělým nebo dětem v případě nebezpeční flavívirové infekce. Vakcíny mohou také být použity jako sekundární činidla pro léčbu pacientů, kteří byly infikováni flaviviry. aby stimulova5 Iv imunitní odpověď proti flavivirům.
Může být žádoucí použít vakcíny vektorového systému žluté horečky pro imunizaci hostitele proti jednomu viru (například proti viru japonské encefalitidy) a později přeočkovat stejného jedince proti druhému nebo třetímu viru za použití odlišného chimérického konstruktu. Hlavní výhodou io chimérického systému žluté horečky je, že vektor nebude sám vyvolávat silnou imunitní odpověď. Ani nebude dřívější imunita proti víru žluté horečky znemožňovat použití chimérické vakcíny. jako vektoru pro hctcrologní genovou expresi. Tyto výhody jsou z důvodu odstranění části
E genu vakcíny žluté horečky, která kóduje neutralizující (ochranné) antigeny Žluté horečky, a zaměnění za jiné hctcrologní geny, které neumožňují křížové ochranu proti žluté horečce.
Ačkoliv nestrukturní proteiny viru YFI7D mohou hrát roly v ochraně například vyvoláváním tvorby protilátek proti NS1, které jsou obsažen) v komplementárně dependentní protilátce zprostředkovávající lyži infikovaných buněk (Sehlesinger <?/£//., J. Immunology 135:2 805-2 809), nebo zahrnutím cytotieké odpovědi T buněk na NS3 nebo jiné virátní proteiny, je nepravděpodobné. že tyto odpovědi budou rušit schopnost živé virové vakcíny stimulovat neutralizační proti2o látky. Toto je podpořeno fakty, že (1) jedinci, kteří byly dříve infikováni Jf virem, odpovídali na vakcinaei YFI7D podobně, jako osoby, které nebyly dříve JE virem infikováni, a (2) jedinci, kteří dříve obdržely YE17D vakeínu odpovídali na přeočkování vzrůstajícími titry neutralizačních protilátek (Sweet et aí, AM. J. Trop. Med. Hyg. 11:562-569, 1962). Tudíž chimérický vektor může být použit v populacích, které jsou imunní vůči žluté horečce bez ohledu na před25 chozí přirozenou infekci nebo vakcinaei, a může být použit opakovaně nebo pro simultánní imunizaci nebo následnou imunizaci řadou odlišných konstruktů, které zahrnují chiméry žluté horečky s inzerty z například japonské encefalitidy, St. Louis encefalitickcho viru nebo Západonílského viru.
5o Pro vakcinační aplikace mohou být použity pomocné látky, které jsou známé tčm, kteří se zajímají o stav techniky. Pomocné látky, které mohou být použity, aby zesílily imunogenicitu chimérických vakeín. zahrnují například lipozomální formulace, syntetické pomocné látky takové, jako jsou saponiny (např.: QS2I), muramyl dipeptid, mono fosfory I lipid A nebo polyťosfazin. Ačkoliv tyto pomocné látky jsou obvykle používány pro zesílení imunitních odpovědí u inaktivo35 váných vakeín, mohou být také použity v případe živých vakeín. V případě chimérické vakcíny dopravované přes slizniee. například orálně, jsou použitelné pomocné látky takové, jako je tepelně—labilní toxin zf. coli (ET) nebo mutantní deriváty ET. Kromě toho geny kódující eylokiny, které mají aktivitu pomocných látek, mohou být vneseny do vektorů žluté horečky. Tudíž geny kódující cytokiny takové, jako jsou GM-CSE. IL-2, IL-12, IL—13 nebo IL-5, mohou být vnese•10 ny společně s heterologními flavivirovými geny, aby docházelo k produkci vakcíny, která ve výsledku zesiluje imunitní odpovědi nebo zmírňuje imunitu zaměřenou více specificky směrem k buněčným, humorálním nebo sliznicovým odpovědím. Kromě toho jako aplikace vakcíny tak. jak jim bude ten, kdo zná stav techniky ihned rozumět, mohou být vektory podle předkládaného vynálezu použity v metodách genové terapie, aby byly zavedeny do buněk pacienta produkty terapeutických genů. V těchto metodách jsou geny kódující terapeutické genové produkty zavedeny do vektorů, například v místě genu kódujícího prM-E protein.
Další výhodou vektorového systému žluté horečky je, že se flaviviry replikují v eytoplazmě buněk, takže virová replikační strategie nezahrnuje integraci virového genomu do genomu hosti?o telských buněk (Chambers et al. (1990) ..Elavivirus Genome Organization, Expression, and ReplicationA v Annual Review of Microbiology 44:649-688). což zajišťuje důležitou míru bezpečnosti.
Všechny odkazy zde citované jsou začleněny jako reference v jejich úplnosti.
- 14 CZ 300172 B6
Seznam sekvencí (1) obecné informace 5 (i) přihlašovatel: OraVax, lne., et al.
(ii) název vynálezu: CH1MERIC FLAVIV1RUS VACCINES (iii) počel sekvencí: 16 (iv) korespondenční adresa: κι (a) adresa: Clark & Elbing LEP (b) ulice: 176 Federal Street (c) město: Boston (d) stát: MA i? (c) země: USA (f) směrovací číslo: 02110 (v) forma čitelná počítačem:
(a) typ média: disketa (b) počítač: kompatibilní s IBM (c) operační systém: DOS (d) software: FastSFQ pro Windows verze 2.0 2? (vi) v současnosti přihlašovaná data:
(a) aplikační číslo:
(b) datum vyplnění: 2. březen 1998 (c) klasifikace:
(vii) dříve přihlášená data:
(a) aplikační číslo: 08/807.445 (b) datum vyplnění: 28. únor 1997 (viii) dříve přihlášená data:
(a) aplikační číslo: neznáme (b) datum vyplnění: 15. leden 1998 (íx) právní zástupee/agent informace:
(a) jméno: Clark, Paul T (b) registrační číslo: 30, 162 i? (e) odkaz/soudní číslo: 06132/033 W02
- 15 CZ 300172 B6 (x) telekomunikační informace:
(a) telefon: 617—428-0200 5 (b) telefax: 617—428—7045 (c) telex:
(2) informace o SEQ ID NO: 1:
ιο (i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 páru bází (b) typ: nuklcová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: I:
CACTGGGAGA GCTTGAAGGT C (2) informace o SEQ ID NO: 2:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 25 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 2:
AAAGCCAGTT GCAGCCGCGG TTTAA (2) informace o SEQ ID NO: 3:
4o (i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 párů b4ází (b) typ: nuklcová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 3:
AAGGT AGACT GG1GGGCTCC C
- 16 CZ 300172 Bó (2) informace o SEQ ID NO: 4:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 26 páru bází (b) typ: nuklcová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární io (íi) typ molekuly: eDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 4:
GATCCTCAGT ACCAACCGCG GTTTAA 15 (2) informace o SEQ ID NO: 5:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (e) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: eDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 5:
AAGGI AGA 1T GGTGTGCA 1Ί G (2) informace o SEQ ID NO: 6:
(í) charakter ist i ka sekvence:
(a) délka: 26 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární 4o (ii) typ molekuly: eDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 6:
AACCCTCAGT ACCACCCGCG GTTTAA 45 (2) informace o SEQ ID NO: 7:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 párů bází (b) typ: nukleová kyselina
- 17 CZ 300172 B6 (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 7:
AAGG TGAATT GAAGTGCTCT A io (2) informace o SEQ ID NO: 8:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 25 párů bází 15 (b) typ: nukleová kyselina (e) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 8:
ACCCCCAGCA CCACCCGCGG TTTAA
2? (2) informace o SEQ ID NO: 9:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 párů bází 50 (b) typ: nukleová kyselina (e) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 9:
AAAAGGAACA G1 IGTTCTCT A (2) informace o SEQ ID NO: 10:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 25 párů bází 45 (b) typ: nukleová kyselina (e) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA
- 18 Cl 300172 B6 (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 10:
ACCCGAAGTGTCAACCGCGGTTTAA (2) informace o SEQ ID NO: 11:
(i) charakteristika sekvence:
ιο (a) délka: 21 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární l? (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 11:
AACGTGAATA GTTGGATAGT C (2) informace o SEQ ID NO: 12:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 25 párů bází (b) typ: nuklcová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární 30 (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO; 12:
ACCG11GGTC GCACCCGCGG TTTAA (2) informace o SEQ ID NO: 13:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 21 párů bází (b) tvp: nukleová kyselina (e) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 13:
AATTTCGAAA GGTGGAAGGT C
- IQ CZ 300172 B6 (2) informace o SEQ ID NO: 14;
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 26 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární io (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SF2Q ID NO: 14:
GACCGGTGI T TACAGCCGCG GTTTAA (2) informace o SEQ ID NO: 15:
(i) charakteristika sekvence:
2o (a) délka: 21 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie; lineární (ii) typ molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 15:
5o TACTGCGAAC GACG Π GCCA C (2) informace o SEQ ID NO: 16:
(i) charakteristika sekvence:
(a) délka: 25 párů bází (b) typ: nukleová kyselina (c) řetězec: jednoduchý (d) topologie: lineární (ii) ty p molekuly: cDNA (xi) popis sekvence: SEQ ID NO: 16:
ACTGGGAACC TCACCCGCGG TTTAA

Claims (18)

  1. s 1. Chimérický živý. infekční, oslabený virus, který zahrnuje virus žluté horečky, ve kterém je nukleotidová sekvence kódující prM-E protein bud1 dc letován a, okleštěná, nebo zrn utována. takže není exprimován funkční prM E protein viru žluté horečky, a do genomu tohoto viru žluté horečky jc integrována nukleotidová sekvence kódující prM-E protein druhého, odlišného tlaviviru. takže prM-E protein tohoto druhého flavivirů exprimován je, přičemž jsou signální sekveuio ce v C/prM a E/NS1 spojeních udržovány v konstrukci zmíněného chimérického flavivirů.
  2. 2. Chimérický virus podle nároku 1, kde druhým flavivirem je virus japonské encefalitidy (JE).
  3. 3. Chimérický virus podle nároku 1. kde druhým flavivirem je virus dengue vybraný ze skupii ? ny zah rn uj í c í ty py virůdengue I až 4.
  4. 4. Chimérický virus podle nároku 1, kde druhý virus je vybrán ze skupiny zahrnující Murray Val lev eneefa litický virus, St. Louis eneefalitický virus, Západonilský virus, virus klíšťové encefalitidy. vity hepatitidv C, Kunjin virus, středoevropský eneefalitický virus, ruský jaroletní ence20 falítícký virus, Powassan virus, Kyasanur Eorest Disease virus a virus omské hemoragické horečky.
  5. 5. Chimérický virus podle nároku 1. kde nukleotidová sekvence kódující prM E protein druhého, odlišného flavivirů, nahrazuje nukleotidovou sekvenci kódující prM-E protein viru žluté
    25 horečky.
  6. 6. Chimérický virus podle nároku 1, kde nukleotidová sekvence kódující prM-E protein druhého. odlišného flavivirů, obsahuje mutaci, která zabraňuje štěpení prM, aby mohlo dojít k produkci M proteinu.
  7. 7. Použití chimérického živého, infekčního oslabeného viru pro přípravu léčiva pro prevenci nebo léčbu flavivirových infekcí u pacientů, přičemž chiméricky, živý. infekční oslabený virus zahrnuje virus žluté horečky, ve kterém je nukleotidová sekvence kódující prM -E protein bud1 de letován a, oklestěna, nebo /mutována, takže není exprimován funkční prM-E protein viru žluté .b horečky, a do genomu tohoto viru žluté horečky je integrována nukleotidová sekvence kódující prM-E protein druhého, odlišného flavivirů, takže prM-E protein tohoto druhého flavivirů exprimován jc. přičemž jsou signální sekvence v C/prM a E/NSl spojeních udržovány v konstrukci zmíněného chimérického flavivirů.
    40
  8. 8. Použití podle nároku 7. kde druhým flavivirem je virus japonské encefalitidy (JE).
  9. 9. Použití podle nároku 7, kde druhým flavivirem je virus dengue vybraný ze skupiny zahrnující typy virů dengue l až 4.
    45
  10. 10. Použití podle nároku 7, kde druhý flavivirus je vybrán ze skupiny zahrnující Murray Valley eneefalitický virus. St. Louis eneefalitický virus, Západonilský virus, virus klíšťové encefalitidy, viry hepatitidv C. Kunjin virus, středoevropský eneefalitický virus, ruský jaro letní eneefalitický virus. Powassan virus, Kyasanur Eorest Disease virus a virus omské hemoragické horečky.
    50
  11. 11. Použití podle nároku 7, kde nukleotidová sekvence kódující prM E protein druhého, odlišného flavivirů, nahrazuje nukleotidovou sekvenci kódující prM-E protein virus žluté horečky.
  12. 12. Použití podle nároku 7. kde nukleotidová sekvence kódující prM -E protein druhého, odlišného flavivirů, obsahuje mutaci, která zabraňuje štěpení prM, aby mohlo dojít k produkci M pro55 teinu.
    -21 CZ 300172 B6
  13. 13. Molekula nukleové kyseliny kódující chimérický živý, infekční oslabený virus, přičemž virus zahrnuje virus žluté horečky, ve kterém je nukleotidová sekvence kódující prM-E protein bud1 deletována, okleštěná, nebo zmutována. takže není exprimován funkční prM-E protein viru
    5 žluté horečky, a do genomu tohoto viru žluté horečky je integrována nukleotidová sekvence kódující prM-E protein druhého, odlišného flaviviru. takže prM-E protein tohoto druhého flaviviru exprimován je. přičemž jsou signální sekvence v C/prM a E/NS1 spojeních udržovány v konstrukci zmíněného chimérického flaviviru.
    io
  14. 14. Molekula nukleové kyseliny podle nároku 13, kde druhým flavivirem jc virus japonské encefalitidy (JE).
  15. 15. Molekula nukleové kyseliny podle nároku 13, kde druhým flavivirem je virus dengue vybraný ze skupiny zahrnující typy virů dengue 1 až 4.
  16. 16. Molekula nukleové kyseliny podle nároku 13. kde druhý flavivirus je vybrán ze skupiny zahrnující Murray Valley encefalitický virus. St. Louis encefalitický virus, Západonilský virus, virus klíšťové encefalitidy, viry hepatitidy C, Kunjin virus, středoevropský encefalitický virus, ruský jaro letní encefalitický virus. Powassan virus. Kvasanur Eorest Disease virus a virus omské io hemoragické horečky.
  17. 17. Molekula nukleové kyseliny podle nároku 13, kde nukleotidová sekvence kódující prME protein druhého, odlišného flaviviru. nahrazuje nukleotidovou sekvenci kódující prM-E protein virus žluté horečky.
  18. 18. Molekula nukleové kyseliny podle nároku 13, kde nukleotidová sekvence kódující prME protein druhého, odlišného flaviviru, obsahuje mutaci, která zabraňuje štěpení prM. aby mohlo dojít k produkci M proteinu.
CZ0306499A 1997-02-28 1998-03-02 Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující CZ300172B6 (cs)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US80744597A 1997-02-28 1997-02-28
US766498A 1998-01-15 1998-01-15

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ306499A3 CZ306499A3 (cs) 2000-01-12
CZ300172B6 true CZ300172B6 (cs) 2009-03-04

Family

ID=26677253

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ0306499A CZ300172B6 (cs) 1997-02-28 1998-03-02 Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující

Country Status (21)

Country Link
EP (3) EP1625852B1 (cs)
JP (2) JP4504464B2 (cs)
KR (1) KR100517323B1 (cs)
CN (1) CN1187088C (cs)
AT (2) ATE297757T1 (cs)
AU (1) AU740961B2 (cs)
BR (1) BR9807873A (cs)
CA (1) CA2282790C (cs)
CZ (1) CZ300172B6 (cs)
DE (2) DE69841690D1 (cs)
DK (2) DK1625852T3 (cs)
ES (2) ES2345614T3 (cs)
HK (1) HK1025743A1 (cs)
HU (1) HU228705B1 (cs)
IL (4) IL131600A0 (cs)
NO (1) NO329693B1 (cs)
NZ (1) NZ337522A (cs)
PL (1) PL192957B1 (cs)
PT (2) PT1625852E (cs)
RU (1) RU2209082C2 (cs)
WO (1) WO1998037911A1 (cs)

Families Citing this family (74)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6962708B1 (en) 1997-02-28 2005-11-08 Acambis, Inc. Chimeric flavivirus vaccines
CA2331368C (en) 1998-06-04 2009-02-10 The Government Of The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
US7227011B2 (en) * 1998-06-04 2007-06-05 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
US7009044B1 (en) * 1999-06-04 2006-03-07 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services HCV/BVDV chimeric genomes and uses thereof
US7425437B2 (en) 1999-11-26 2008-09-16 Crucell Holland B.V. Vaccines against West Nile Virus
WO2001039802A1 (en) * 1999-12-01 2001-06-07 Oravax, Inc. Chimeric flavivirus vaccines
US6589531B1 (en) 2000-01-21 2003-07-08 The Regents Of The University Of California Recombinant yellow fever virus and method of use thereof
WO2001059093A2 (en) * 2000-02-10 2001-08-16 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services FULL-LENGTH INFECTIOUS cDNA CLONES OF TICK BORNE FLAVIVIRUS
AU3844101A (en) * 2000-02-16 2001-08-27 Us Health Avirulent, immunogenic flavivirus chimeras
AU2007202304B2 (en) * 2001-04-04 2010-03-18 THE GOVERNMENT OF THE UNITED STATES OF AMERICA as represented by THE SECRETARY, DEPARTMENT OF HEALTH AND HUMAN SERVICES, CENTERS FOR DISEASE CONTROL AND PREVENTION Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
US7740863B2 (en) 2001-04-06 2010-06-22 Merial Recombinant vaccine against West Nile Virus
FR2823222B1 (fr) * 2001-04-06 2004-02-06 Merial Sas Vaccin contre le virus de la fievre du nil
EP1399183B1 (en) * 2001-05-31 2010-06-30 Novartis Vaccines and Diagnostics, Inc. Chimeric alphavirus replicon particles
US20030232324A1 (en) 2001-05-31 2003-12-18 Chiron Corporation Chimeric alphavirus replicon particles
WO2002102828A2 (en) 2001-06-01 2002-12-27 Acambis, Inc. Chimeric flavivirus vectors
US6682883B1 (en) * 2001-07-19 2004-01-27 Acambis, Inc. Diagnosis of flavivirus infection
DK1441761T3 (da) * 2001-10-19 2007-08-27 Acambis Inc Fremgangsmåder til forebyggelse og behandling af flavivirus-infektion hos dyr
JP2005510244A (ja) * 2001-11-26 2005-04-21 ザ・ユニヴァーシティ・オヴ・クイーンズランド フラビウイルスワクチン送達系
JP2005519639A (ja) 2002-01-15 2005-07-07 アカンビス インコーポレーティッド フラビウイルスワクチン
ES2427139T3 (es) * 2002-06-20 2013-10-29 Institut Pasteur Virus recombinantes del sarampión que expresan epítopos de antígenos de virus de ARN y uso de los virus recombinantes para la preparación de composiciones de vacuna
EP2110382A1 (en) 2002-06-20 2009-10-21 Institut Pasteur Infectious cDNA of an improved vaccine strain of measles virus, use for immunogenic compositions
EP1546176A4 (en) * 2002-07-19 2006-01-11 Univ Texas METHODS AND COMPOSITIONS ASSOCIATED WITH ALTERED YELLOW FEVER VIRUS STEM
MXPA05005140A (es) 2002-11-15 2005-08-19 Acambis Inc Vacuna contra el virus del nilo occidental.
CA2432738A1 (en) 2003-02-26 2004-08-26 Philippe Despres New dengue and west nile viruses proteins and genes coding the foregoing, and their use in vaccinal, therapeutic and diagnostic applications
CN1304579C (zh) * 2003-07-21 2007-03-14 上海天甲生物医药有限公司 重组的以黄热病病毒为载体的疫苗
WO2005040390A1 (fr) * 2003-07-21 2005-05-06 Shanghai Tengen Biomedical Co., Ltd. Vaccin recombine utilisant le virus de la fievre jaune comme vecteur
CN101018860B (zh) * 2004-07-12 2013-02-27 美国天甲生物医药有限公司 黄病毒疫苗
CA2584228C (en) * 2004-10-20 2015-05-05 Acambis Inc. Vaccines against japanese encephalitis virus and west nile virus
AU2005318171B2 (en) 2004-12-20 2011-09-29 Crucell Holland B.V. Binding molecules capable of neutralizing West Nile virus and uses thereof
JP4871738B2 (ja) 2004-12-24 2012-02-08 一般財団法人阪大微生物病研究会 弱毒日本脳炎ウイルスの遺伝子をバックボーンとして有する弱毒キメラフラビウイルス
ES2478303T3 (es) 2005-04-24 2014-07-21 Sanofi Pasteur Biologics, Llc Vacunas de flavivirus recombinantes
AU2006245734C1 (en) 2005-05-12 2012-05-24 Crucell Holland B.V. Host cell specific binding molecules capable of neutralizing viruses and uses thereof
BRPI0504945B8 (pt) 2005-10-31 2022-08-02 Fundacao Oswaldo Cruz Método para a produção de flavivirus recombinante contendo sequências de nucleotídeos codificantes de uma proteína heteróloga, constructo de dna, flavivirus, e, composição vacinal para imunizar contra flavivirus e/ou outros patógenos.
CU23586A1 (es) 2005-11-22 2010-10-30 Ct Ingenieria Genetica Biotech Métodos y proteínas para el tratamiento profiláctico y/o terapéutico de los cuatro serotipos del virus de dengue y otros flavivirus
EA031202B1 (ru) 2006-06-06 2018-11-30 Янссен Вэксинс Энд Превеншн Б.В. Антитело человека, обладающее фагоцитарной активностью против стафилококков, и его применение
CA2659592C (en) 2006-07-14 2016-10-04 Konstantin V. Pugachev Construction of recombinant virus vaccines by direct transposon-mediated insertion of foreign immunologic determinants into vector virus proteins
FR2906724B1 (fr) 2006-10-04 2009-03-20 Sanofi Pasteur Sa Methode d'immunisation contre les 4 serotypes de la dengue.
EP2086581B1 (en) * 2006-11-07 2014-08-13 Sanofi Pasteur Biologics, LLC Stabilization of vaccines by lyophilization
EP2121010A4 (en) 2007-01-31 2011-02-16 Sanofi Pasteur Biologics Co RECOMBINANT BICISTRONIC FLAVIRUS VECTORS
WO2008100464A1 (en) * 2007-02-09 2008-08-21 Sanofi Pasteur Biologics Co. Viral vectors and methods of use
WO2009109550A1 (en) 2008-03-05 2009-09-11 Sanofi Pasteur Process for stabilizing an adjuvant containing vaccine composition
WO2009114207A2 (en) * 2008-03-14 2009-09-17 Sanofi Pasteur Biologics Co. Replication-defective flavivirus vaccines and vaccine vectors
EP2143440A1 (fr) 2008-07-09 2010-01-13 Sanofi Pasteur Agent stabilisant et composition vaccinale comprenant un ou plusieurs flavivirus vivants atténués
EP2353609A1 (en) 2010-02-04 2011-08-10 Sanofi Pasteur Immunization compositions and methods
EP2877208B1 (en) 2012-07-24 2021-05-12 Sanofi Pasteur Vaccine compositions for the prevention of dengue virus infection
JP2015524422A (ja) 2012-07-24 2015-08-24 サノフィ・パスツールSanofipasteur ワクチン組成物
CN104812410A (zh) 2012-10-03 2015-07-29 赛诺菲巴斯德有限公司 针对日本脑炎、麻疹、腮肿以及风疹的疫苗接种
WO2014083194A1 (en) 2012-11-30 2014-06-05 Sanofi Pasteur Methods for inducing antibodies
CN105451763B (zh) 2013-03-15 2021-06-18 武田疫苗股份有限公司 用于疫苗中的登革热病毒嵌合式构建物的组合物及方法
WO2014204892A1 (en) 2013-06-21 2014-12-24 Merck Sharp & Dohme Corp. Dengue virus vaccine compositions and methods of use thereof
CN103352029A (zh) * 2013-07-29 2013-10-16 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 一种乙脑/森林脑炎嵌合病毒及其应用
TW201620546A (zh) 2014-09-02 2016-06-16 賽諾菲巴斯德公司 疫苗組合物
EP3031923A1 (en) * 2014-12-11 2016-06-15 Institut Pasteur Lentiviral vector-based japanese encephalitis immunogenic composition
CN106999568A (zh) 2014-12-22 2017-08-01 默沙东公司 登革病毒疫苗组合物及其使用方法
BR112017028212A2 (pt) 2015-07-03 2018-09-11 Sanofi Pasteur vacinação concomitante contra dengue e febre amarela
BE1024160B9 (fr) 2015-12-22 2017-12-06 Glaxosmithkline Biologicals Sa Formulation immunogène
CN105400799B (zh) * 2015-12-22 2018-12-28 成都生物制品研究所有限责任公司 一种乙脑/黄热嵌合病毒及其制备方法和应用
SG11202002933TA (en) 2017-10-05 2020-04-29 Sanofi Pasteur Compositions for booster vaccination against dengu
GB201716307D0 (en) * 2017-10-05 2017-11-22 Univ Leuven Kath Chimeric yellow fever zika virus strain
KR20190127605A (ko) * 2018-05-04 2019-11-13 에스케이바이오사이언스(주) 키메라 지카바이러스 백신
WO2020051328A1 (en) 2018-09-05 2020-03-12 Takeda Vaccines, Inc. Assay for determining antibody response to dengue virus
US11426461B2 (en) 2018-09-05 2022-08-30 Takeda Vaccines, Inc. Methods for preventing dengue and hepatitis A
CA3111332A1 (en) 2018-09-05 2020-03-12 Takeda Vaccines, Inc. Dengue vaccine unit dose and administration thereof
US11464815B2 (en) 2018-09-05 2022-10-11 Takeda Vaccines, Inc. Dengue vaccine unit dose and administration thereof
GB201814563D0 (en) * 2018-09-07 2018-10-24 Univ Leuven Kath Chimeric flavivirus lyssavirus vaccines
BR112022001476A2 (pt) 2019-08-16 2023-10-03 Takeda Vaccines Inc Uso de uma vacina contra hepatite a e uma composição de vacina contra dengue ou uma dose unitária de uma composição de vacina contra dengue, combinação de vacina e kit
WO2021174059A1 (en) 2020-02-27 2021-09-02 Takeda Vaccines, Inc. Method for removing host cell dna from virus preparation
CN113215116B (zh) * 2021-05-11 2022-07-19 中国科学院动物研究所 基于朝阳病毒载体的嵌合病毒、疫苗及其应用
JPWO2022249757A1 (cs) * 2021-05-27 2022-12-01
WO2023147337A2 (en) 2022-01-25 2023-08-03 Takeda Vaccines, Inc. Large-scale flaviviral vaccine production and manufacture
WO2023158989A1 (en) 2022-02-15 2023-08-24 Takeda Vaccines, Inc. Dengue vaccine batch mixing process
WO2023215383A1 (en) 2022-05-04 2023-11-09 Takeda Vaccines, Inc. Computer-based determination of flavivirus infectivity
WO2024108087A1 (en) 2022-11-18 2024-05-23 Takeda Vaccines, Inc. A method for determining the proportion of a live, attenuated flavivirus having a nucleotide sequence comprising at least one attenuation locus in a formulation
WO2024118740A1 (en) 2022-11-29 2024-06-06 Takeda Vaccines, Inc. Large-scale flaviviral vaccine production and manufacture

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1990001946A1 (en) * 1988-08-20 1990-03-08 The United States Of America, Represented By The Secretary, United States Department Of Commerce Recombinant vaccinia virus for prevention of disease caused by flavivirus
WO1993006214A1 (en) * 1991-09-19 1993-04-01 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1990001946A1 (en) * 1988-08-20 1990-03-08 The United States Of America, Represented By The Secretary, United States Department Of Commerce Recombinant vaccinia virus for prevention of disease caused by flavivirus
WO1993006214A1 (en) * 1991-09-19 1993-04-01 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BRAY Michael a kol., Construction of intertypic chimeric dengue viruses by substitution of structural protein genes, listopad 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, cislo 88, stranky 10342 a× 10346 *

Also Published As

Publication number Publication date
CZ306499A3 (cs) 2000-01-12
EP2251036A1 (en) 2010-11-17
EP0977587A1 (en) 2000-02-09
JP4504464B2 (ja) 2010-07-14
ATE468858T1 (de) 2010-06-15
IL193170A0 (en) 2009-02-11
IL131600A0 (en) 2001-01-28
JP2001514622A (ja) 2001-09-11
HUP0002139A2 (hu) 2000-10-28
CA2282790C (en) 2011-04-19
DE69830579T2 (de) 2006-05-04
DE69830579D1 (de) 2005-07-21
EP0977587A4 (en) 2000-08-02
PL335481A1 (en) 2000-04-25
RU2209082C2 (ru) 2003-07-27
IL207517A0 (en) 2010-12-30
NZ337522A (en) 2001-02-23
AU740961B2 (en) 2001-11-15
PL192957B1 (pl) 2006-12-29
HK1025743A1 (en) 2000-11-24
EP0977587B1 (en) 2005-06-15
EP1625852B1 (en) 2010-05-26
KR100517323B1 (ko) 2005-09-27
DK0977587T3 (da) 2005-10-17
KR20000075830A (ko) 2000-12-26
JP2010057496A (ja) 2010-03-18
EP1625852A1 (en) 2006-02-15
HUP0002139A3 (en) 2001-10-29
AU6443198A (en) 1998-09-18
ES2345614T3 (es) 2010-09-28
IL193170A (en) 2015-08-31
DK1625852T3 (da) 2010-09-20
WO1998037911A1 (en) 1998-09-03
ES2244050T3 (es) 2005-12-01
NO994185L (no) 1999-10-27
BR9807873A (pt) 2000-03-21
NO994185D0 (no) 1999-08-27
NO329693B1 (no) 2010-12-06
IL207516A0 (en) 2010-12-30
ATE297757T1 (de) 2005-07-15
DE69841690D1 (de) 2010-07-08
CA2282790A1 (en) 1998-09-03
CN1187088C (zh) 2005-02-02
HU228705B1 (en) 2013-05-28
PT977587E (pt) 2005-10-31
CN1253506A (zh) 2000-05-17
PT1625852E (pt) 2010-08-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ300172B6 (cs) Chimerický živý, infekcní, oslabený virus, lécivopro prevenci nebo lécbu flavivirových infekcí s jeho obsahem a molekula nukleové kyseliny jej kódující
US6962708B1 (en) Chimeric flavivirus vaccines
WO1998037911A9 (en) Chimeric flavivirus vaccines
JP3531934B2 (ja) キメラおよび/または増殖制限されたフラビウイルス
JP5469336B2 (ja) 組換えフラビウイルスワクチン
Costa et al. Protection against dengue type 2 virus induced in mice immunized with a DNA plasmid encoding the non-structural 1 (NS1) gene fused to the tissue plasminogen activator signal sequence
US20060159704A1 (en) Use of flavivirus for the expression of protein epitopes and development of new live attenuated vaccine virus to immunize against flavivirus and other infectious agents
US7507415B2 (en) West nile virus vaccine
US20040052818A1 (en) Attenuated live vaccine
WO2001039802A9 (en) Chimeric flavivirus vaccines
US6676936B1 (en) Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses
EP2339011B1 (en) West Nile virus and Dengue 4 virus chimeras for use in a live virus vaccine to prevent disease caused by west nile virus
MXPA99007949A (es) Vacunas de flavivirus quimerico

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MK4A Patent expired

Effective date: 20180302