CZ20023063A3 - Způsob detekce Helicobacter pylori a heilmanii ve vzorcích stolice, slin a bioptickém materiálu - Google Patents

Způsob detekce Helicobacter pylori a heilmanii ve vzorcích stolice, slin a bioptickém materiálu Download PDF

Info

Publication number
CZ20023063A3
CZ20023063A3 CZ20023063A CZ20023063A CZ20023063A3 CZ 20023063 A3 CZ20023063 A3 CZ 20023063A3 CZ 20023063 A CZ20023063 A CZ 20023063A CZ 20023063 A CZ20023063 A CZ 20023063A CZ 20023063 A3 CZ20023063 A3 CZ 20023063A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
antibody
pylori
pathogen
solid phase
human
Prior art date
Application number
CZ20023063A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ299992B6 (cs
Inventor
Franz Paul Armbruster
Katarina Crevar
Jana Ruppert
Original Assignee
Immundiagnostik Ag
Ganzimmun Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Immundiagnostik Ag, Ganzimmun Ag filed Critical Immundiagnostik Ag
Publication of CZ20023063A3 publication Critical patent/CZ20023063A3/cs
Publication of CZ299992B6 publication Critical patent/CZ299992B6/cs

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • G01N33/56922Campylobacter
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54306Solid-phase reaction mechanisms
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6854Immunoglobulins

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Description

Dodavadní stav techniky
Lidská žaludeční slizníce je často osídlována bakterií rodu Helicobacter pylori a heilmanii nebo Campylobacter. Infekce těmito bakteriemi jsou pravděpodobně přenosné z člověka na člověka, ale zdrojem infekce může být i pitná voda a potraviny. Druh Helicobacter heilmanii je přenosný z domácích zvířat, jako například koček, psů, králíků a též hospodářských zvířat, jako například krav. Z tohoto důvodu jsou infekcí ohroženi zejména lidé obhospodařující tato zvířata. V Německu je H. pylorí infikováno přibližně 10 % dětí školou povinných, 30 % lidí kolem 30 let a přibližně 75 % starších občanů. Ve světovém měřítku nese přibližně 50 % populace tuto infekci. 80 % výskytu gastritid, 95 % karcinomu dvanáctníku a 70 % ventrikulámího karcinomu je způsobeno H. pylorí. Chronická gastritida způsobená H.pylorí (gastritida typu B) je navíc považována za prekurzor gastro-adeno karcinomu a gastrického lymfomu. Podle WHO je H.pylorí karcinogen patřící do třídy s nejvyšším rizikem karcinomu. Pouze malý podíl H.pylori se po infekci projeví symptomy. Mnoho postižených, přestože trpí gastritidou, si výrazně nestěžují nebo přisuzují poněkud nespecifické symptomy jiným příčinám. Akutní gastritida vyvolaná H.pylorí se projevuje neurčitou bolestí v horní a střední části žaludku, pocitem tlaku a plnosti, kyselými návaly, pálením žáhy, nevolností a zvedáním žaludku. Prakticky u všech pacientů s gastritidou typu B je možné nalézt infekci H.pylorí. Navzdory obecné mohutné imunitní reakci infekce přechází u těchto pacientů v chronický stav. Zda se vyvine vřed, závisí na imunitním systému pacienta a na agresivitě bakterie nebo typu bakterie. Ke spontánnímu uzdravení dojde zřídka. Neléčená infekce H.pylorí zpravidla přetrvává po celý život.
Infekce H.pylorí může být diagnostikována kultivací patogenu z dutiny nebo biopsií tkáně nebo histologickým testováním tkáně. Další diagnostické metody zahrnují CLO test (test na organismy podobné Campylobacteru) nebo test hydrolýzy močoviny (urease urea test), dechová zkouška na izotop 13C, detekci protilátek proti H.pylorí v séru, detekci DNA Helicobacteru v žaludeční šťávě pomocí PCR nebo vzorku stolice a detekci antigenů H.pylori ve vzorku stolice.
US 5 716 791 (Larka a kol.) a EP 0 806 667 (Meridian Diagnostics lne.) popisují imunoanalýzu antigenů H.pylori ve stolici. Metoda je založená na dvou afinitních přečištěných polyklonálních protilátkách proti antigenů H.pylori. Firma Connex GmbH, Martinsried, Německo, nabízí rychlý test, založený na laterální průtokové chromatografii zlatém značených monoklonálních protilátek proti antigenům H.pylori ve stolici. Tyto tak zvané HpSA testy (Helicobacter pylori Stool Antigen) měly v různých klinických studiích dobrou shodu s případy diagnostikovanými jinými metodami, ale vysoké procento testů nevedlo k jednoznačný výsledkům. HpSA test je navíc nevhodný pro monitorování léčby, protože funguje pouze při velkých množstvích antigenů H.pylori ve stolici. Další diagnostické metody jsou částečné velmi komplikované, stresující pro pacienta nebo drahé pro rutinní testování. Serologické metody jsou nevýhodné v tom, že neumožňují monitorování léčby, protože titr protilátky zůstává po vymícení bakterie po dobu měsíců velice vysoký. Monitorování průběhu léčby je však nezbytné, protože může být přítomna rezistence proti použitým antibiotikům, jako například clarithromycinu, metronidazolu, amoxicilinu, omeprazolu nebo inhibitoru protonové pumpy. Léčba infekcí použitím antibiotik a alternativními přírodními prostředky proto vyžaduje jednoduchý, spolehlivý a citlivý způsob testování H.pylori.
Podstata vynálezu
Podstatou způsobu detekce patogenních antigenů Helicobacter ve vzorku je, že se vzorek odebere pacientovi a vytvoří se suspenze vzorku v pracovním pufru pro testování patogenu; načež se vzorek obsahující antigen patogenu smíchá v pufru s pevnou fází, na kterou jsou navázány alespoň dvě různé primární protilátky, z nichž jedna je schopna vázat patogen antigenů a druhá je schopná vazby lidského imunoglobulinu; dále se promyje pevná fáze s nespecificky vázanými antigeny; smíchá se sekundární protilátkou, která specificky rozeznává antigeny patogenu, přičemž se provede kvantitativní stanovení navázaných sekundárních protilátek.
Kvantitu navázaných sekundárních protilátek k pevné fázi lze ve vzorku stanovit například pomocí značení protilátky. Značka může být radioaktivní, luminiscenční nebo fluorescenční. Skupina biotinu se může vázat s další molekulou, jako například streptavidinem nebo enzymem jako například peroxidázou, která katalyzuje detekci reakce. Kvantitu navázané sekundární protilátky je možné dále stanovit pomocí další • 9 ·
• 9 999 999· • · «
999
9 *· 9·
9
9 • 9 ·* 999 protilátky, která specificky rozeznává typ sekundární protilátky a nese jednu nebo více uvedených značek.
Sekundární primární protilátkou proti lidskému imunoglobulinu, vážící se na pevnou fázi, je s výhodou protilátka, která váže lidský IgA a výhodněji váže sekundární lidský IgA, který je vylučován do slin a tlustého střeva. Navržení sekundární protilátky IgA zahrnuje IgA, případně též takzvané sekreční komponenty (MW: 70 kDa), které jsou tvořeny epiteliálními transportními buňkami a ochranu IgA před proteolytickými enzymy. Zvláště výhodné jsou protilátky proti lgA2, protože Helicobacter a jiné mikroorganismy tvoří proteasy, které mohou štěpit slgA1. Zvláště výhodná je směs dvou primárních protilátek které specificky vážou lgA1 a lgA2.
Ve výhodném provedení podle vynálezu je první primární protilátkou, vážící se k pevné fázi, polyklonální králičí protilátka anti-H.pylori. Druhou primární protilátkou, vážící se k pevné fázi, je polyklonální kozí protilátka anti-human-sIgA testovaná na křížovou reaktivitu. Sekundární protilátkou je s biotinem konjugovaná králičí protilátka arti-H.pylori, takže kvantitu navázané sekundární protilátky je možné stanovit podle vazby s peroxidasou konjugovaného streptavidinu a barevné reakce s tetramethylbenzidinem.
V druhém výhodném provedení podle vynálezu je první primární protilátkou, vážící se k pevné fázi, králičí protilátka arAi-H.pylori, druhou primární protilátkou je králičí protilátka anti-human -slgA a sekundární protilátkou je polyklonální kozí protilátka arAi-H.pylori konjugovaná s křenovou peroxidasou. Mohou být však použity i jiné imunoglobuliny, jako například koňské, kočičí, prasečí, ovčí, kozí, králičí, z morčete, krysy, myši nebo jiných zvířat. Je důležité zjistit, zda se druhá primární protilátka proti lidskému imunoglobulinu neváže na sekundární protilátku proti antigenu patogenu ve vzorcích slin a stolice. Protilátky mohou být v principu monoklonální. Zejména druhá primární protilátka může být monoklonální protilátkou proti lidskému lgA2. Doporučuje se použít více monoklonálních protilátek, které rozeznávají různé epitopy patogenu lidského imunoglobulinu. U monoklonálních primárních protilátek se doporučuje použít směs většího množství monoklonálních protilátek pro zvýšení specificity stanovení.
Sekundární protilátky jsou s výhodou konjugovány s jednou nebo více značkami, jako například biotinem, fíuoresceinem, rutheniem, europiem, částicemi zlata, alkalickou fosfatasou, galaktosidasou nebo křenovou peroxidasou. Mohou být však použity jiné vhodné značky nebo detekční systémy.
·· »
Princip stanoveni uveden na příkladu ELISA
ELISA {enzyme-linked immunosorbent assay) se podle vynálezu používá pro kvalitativní a kvantitativní stanovení antigenú H.pylori ve vzorcích slin, stolice a bioptickém materiálu, Antigen H.pylori se v prvním kroku uvolní ze vzorku a s výhodou naváže pomocí polyklonální protilátky anti-H.py/on, která se běžně váže na mikrotitrační destičku nebo některou jinou pevnou fázi, K pevné fázi se dále naváže druhá primární protilátka, která rozeznává lidský imunoglobulin a s výhodou lidský sekreční IgA. Protože protilátky H.pylori ve vzorcích slin a stolice byly v kontaktu s pacientovým vlastním imunitním systémem, některé nebo všechny epitopy H.pylori jsou již navázány na imunoglobuliny a nejsou již schopné vazby na principu první primární protilátky s patogenem. Přesto jsou však patogenní antigeny ve vzorcích stolice, slin a bioptickém materiálu koncentrovány a vážou se na pevnou fázi druhou primární protilátkou proti lidskému imunogíobulínu, ačkoli imunitní reakce oproti nim již existuje, Na jedné straně se tak antigeny H.pylori přímo vážou a na druhé straně nepřímo pomocí své vazby k sekrečnímu lidskému imunogíobulínu ve slinách a zažívacím traktu. V druhém kroku je pak vazba antigenú H.pylori přímo detekována sekundární protilátkou anti-H pytori. Vhodným systémem se pak stanoví kvantitativně vazba sekundární protilátky.
Pro vysokou specificitu sekundární protilátky proti antigenú H.pylori jsou falešně pozitivní výsledky vyloučeny. Celková specificita stanovení dvojitou protilátkou je zejména u substancí určena specificitou sekundární protilátky. Skutečnost, že se v prvním kroku váže též lidská sekreční protilátka s antigeny patogenu, se v případě H.pylori zvyšuje nejen citlivost, ale též rozsah stanovení. Překvapující je zejména to, že ve významně velkém počtu případů jsou lidskou imunitní reakcí rozeznávány všechny imunogenní epitopy H.pylori. V případě organismu Helícobacter je množství imunogenních epítopů významně omezena, to znamená, že epitopy patogenu rozeznávané lidským imunitním systémem a zvířecí primární a sekundární protilátkou u stanovení na základě dvojité protilátky, jsou často shodná. To má za následek zejména u H.pylori tvorbu kolonií v ústech a v pozdější fázi léčbu, kdy imunitní reakce zkresluje snížené množství epítopů H.pylori, které jsou stále přítomny ve vzorcích stolice a slin. Způsobem testu podle vynálezu je možné detekovat malá a dokonce maskovaná množství antigenú H. pylori.
Přítomnost Helícobacter pylori ve slinách byla dosud podrobena pouze akademickému zájmu z hlediska tohoto domnělého způsobu přenosu (Namavar F. a kol., Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1995, 14(3), str. 234-7; Shimada T. a kol.,
Lancet, 1994, 343(8913), str. 1636-7). Ve způsobu podle vynálezu je hranice detekce H.pylori tak nízká, že lze infekci H.pylorí stanovit i ve slinách. Stanovení antigenů H. pylori ve slinách je důležité především pro sledování léčby pacientů. Prováděné pokusy ukázaly, že v ústech - pravděpodobné při kovových plombách, zubních protézách a podobně je možné nalézt ložiska infekce H.pylori, která přežívají běžnou medikamentózní léčbu a po ukončení léčby se obnoví infekce v žaludeční sliznici. Léčbu je proto možné považovat za ukončenou pouze v případě, že nejsou nalezeny antigeny H.pylori ani ve vzorku stolice ani slin.
Použití sendvičového principu stanovení podle vynálezu s druhou primární protilátkou proti lidskému imunoglobulinu, zejména proti lidskému sekrečnímu IgA, není omezeno pouze na mikrotitrační destičku. Může být uzpůsobeno na plně automatizovaný proces, který používá potažené kuličky nebo částice. Princip podle vynálezu, který používá druhou primární protilátku proti lidskému sekrečnímu IgA, je obecně vhodný pro diagnózu patogeneze vyskytující se v ústech nebo zažívacím traktu a způsobuje rozsáhlou imunitní reakcí.
Obecně je výhodné, pokud je první primární protilátka současně polyklonální protilátkou proti různým typům H. pylori. Totéž platí i pro sekundární protilátku, protože se tím zvyšuje spolehlivost testu.
Vynález a jeho výhody jsou popsány pomocí výhodných provedení podle vynálezu a příkladů a pomocí doprovodných obrázků.
Popis obrázků
Obr. 1; Schéma principu imunoanalýzy antigenů H.pylori podle vynálezu.
Obr. 2: Další typ příkladu imunoanalýzy podle vynálezu.
Obr. 3: Grafické zobrazení rozložení koncentrace antigenů H.pylori ve slinách stanovené podle vynálezu před a po léčbě.
• · ··· ···· ·* ·«·
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Detekce antigenu H.pylorí ve stolici a slinách
Příprava vzorku stolice: Navážilo se přibližně 100 mg stolice a za laboratorní teploty rozsuspendovalo v 5 ml promývacího pufru PBS obsahujícího 0,1% Triton X-100 (8 mM Na2HPO4, 15 mM K2H2PO4, 3 mM KCI, 12,5 mM NaCI, 0,1 % Triton X-100, 0,02% Thimerosal, pH 7,4). Dávkování a homogenizace vzorku stolice se prováděla výhodně pomocí systému na přípravu vzorků firmy Roche Diagnostik, Mannheim, Německo (objednávka číslo 745804). Homogenizát se centrifugoval na stolní centrifuze, 10 minut při otáčkách 3000 otáček za minutu, 1 ml produktu se přeneslo do Eppendorfovy zkumavky a centrifugovalo 5 minut při otáčkách 13000 za minutu v centrifuze Eppendorf. Produkt se pak přímo použil pro ELISA stanovení.
Příprava vzorku slin: Vzorek slin se naředil v pracovním pufru 1:4 nebo 1:5 v závislosti na viskozitě a přímo se použil pro stanovení vazby. V případě vzorků slin je výhodné, pokud pufr pro stanovení obsahuje inhibitor proteázy, jako například 5 mM PMSF. Je možné též použít komerční proteázové inhibitory, jako například Pefablock SC (Roche Diagnostics).
Potažení mikrotitrační destičky: Jamky mikrotitrační destičky se potáhly polyklonální protilátkou proti antigenu H.pylorí a lidskému imunoglobulinu-A. Za tímto účelem se do každé jamky nadávkovalo 100 μ9 komerčně dostupné protilátky králičí anti-H.py/ori (DAKO, Hamburg) rozpuštěné v 200 μ! 60 mM NaCCb, pH 9,6 a destička se inkubovala přes noc při 4 °C. Roztok králičí protilátky anti-H.py/ori se z jamek odstranil a každá jamka se promyla 200 μΙ promývacího pufru (PBS, pH 7,4 0,1% Triton X-100). Do každé jamky se nadávkovalo 100 mg protilátky králičí anti-human-slgA (DAKO, Hamburg) rozpuštěné v 200 μΙ 60 mM NaCO3, pH 9,6 a destička se ikubovala 1 hodinu při laboratorní teplotě. Roztok protilátky anti-human -IgA se z jamek odstranil a každá jamka se promyla pětkrát 125 μΙ promývacího pufru. Po posledním promývání se jamky destičky vyklepaly na savý papír.
Stanovení vazby: Všechna stanovení se prováděla dvojmo. 100 μΙ standardu a vzorku se napipetovalo dvojmo do protilátkou pokrytých jamek mikrotitrační destičky a inkubovalo za třepání 1 hodinu při laboratorní teplotě. Roztok se odstranil a jamky destičky se promyly pětkrát, pokaždé 250 μ! promývacího pufru. Po posledním promývání se jamky destičky vyklepaly na savý papír.
Detekce vazby: Do každé jamky se nadávkovalo 100 μΙ s biotinem konjugované polyklonální králičí protilátky anti-H.pyton {1.10000; DAKO, Hamburg) nebo s křenovou peroxidasou (HRP)-konjugované polyklonální kozí protilátky anti-H.py/ori (KPL, Kirkehard and Perry Laboratories, Gaithersburg, MD; směs polyklonální protilátky proti H.pylorí typu ATCC 43504, 43526, 43579) zředěná promývacím pufrem 1:1000 a destička se za třepání inkubovala 1 hodinu za laboratorní teploty. Roztok se odstranil z jamek a každá jamka se promyla pětkrát 200 μΙ promývacího pufru.
Kvantitativní stanovení: Za účelem barevné reakce se do každé jamky nadávkovala s peroxidem konjugovaná kozí protilátka ant\-H. pylorí, 100 μΙ substrátového roztoku tetramethylbenzidinu (TMB) (ready-for-use, NOVUM Diagnostika GmbH, Dietzenbach, Německo) a po přibližné 20 minutách se barevná reakce zastavila přídavkem 50 μΙ 0,4 M H2SO4. V případě s biotinem konjugované králičí protilátky antiH.pylori se použilo potažení 100 μΙ s křenovou peroxidasou konjugovaným streptavidinem (DAKO), zředěným promývacím pufrem 1:10000 a následovala inkubace destičky za třepání po dobu 1 hodiny za laboratorní teploty, promývání pětkrát promývacím pufrem a teprve pak se přidala chromogenní látka. Zbarvení se vždy stanovilo měřením absorbance (optické hustoty) při 450 nm. Následující tabulky 1 a 2 uvádí reprezentativní výsledky kontrolní skupiny a pacientů infikovaných H.pylorí, kdy se podle vynálezu stanovení opakovala v různé dny. Stanovení byla prováděna podle doporučení pomocí různých detekčních systémů a/nebo sekundárních protilátek.
Srovnávací příklad 2
Imunoanalýza bez sekundární protilátky proti lidskému imunoglobulinu A
Příprava vzorků stolice a slin a stanovení vazby se provádělo přesně podle příkladu 1, s tím rozdílem, že jamky mikrotitrační destičky se výjimečně pokryly afinitně přečištěným polyklonálním králičím imunoglobulinem proti Helicobacter pylorí nebo protilátkou anti-human-slgA. Všechna promývání, potahování, vazebné kroky a barevná reakce se prováděla paralelně na téže mikrotitrační destičce.
* ·
Ad1: Všechny hodnoty absorbance jsou průměrnou hodnotou dvou měření.
Nespecifická vazba (Standard, pufr) Pat.Hof Pat.Hal Pat .Tas Pat.K Pat.Woz Pat:Car C. 15294 Pat T. £ & £ o> c 3 Sekundární protilátka Mikrotítrační destička potažená primární protilátkou
0,150 1 0,258 0,925 2,050 O o o 12.01.00 Biotln-konjugovaná králičí anii-H.pylori-A3 Polyklonální králičí anli-H.pylori-AB Srovnání Srovnání + bez anti- pouze anti- Polyklonální králičí anti- human-slgA-ΑΒ human- human- slgA slgA
0,219 1 0,270 0,654 1,635 o tn 00 b o o
0,228 1,023 0,222 1,798 0,377 0,162 0,505 n.g. 0,461 25.01.00
0,211 0,831 0,263 1,768 0,141 0,101 0,300 3 (O 0,436 25.01.00
0,154 0,315 0,199 0,107 0,284 0,117 0,313 n,g, 0,144 25.01.00
0,200 0,463 0,189 0990 0,538 0,233 0,720 3 <p 0,258 25.01.00 p * o c (Q § Q> □ Oj, £ ΰ, OJ 3 £ ?· > 03 Anti-H.pyforí Srovnání bez Srovnání + anti-human-sIgA pouze anti- anti-human-sIgA human-sIgA
0,157 0,163 0,121 0,447 0,112 0,085 0,210 ‘6‘u 0,170 25.01.00
0,187 0,398 0,183 0,182 0,449 0,216 0,690 N.g, 0,181 j 25.01.00
Tabulka 1
Absorbance (optická hustota -OD) při 450 nm * · • · · · • · · M<
• t · ·· ♦· ·· ····
Pat.Hof Pat.Hal Pat .Tas Pat.K Pat.Woz D Dl 1—9 Ó Dl “Ί o S 2 PatT. Měření/datum protilátka Sekundární protilátkou potažená primární destička mikrotitrační
1 0,108 0,775 (O o o 0,250 12.01.00 Biotin-kor slgA-AB + Polyklonál AB Polyklonál
1 0,270 I 0,654 1,635 0,239 14.01.00 ijugovaná I 3' 2: 03 3; £2! 0)
o 3 01 -0,006 1,570 φ?·< 1 -0,066 tíͧ| n.g. 0,233 25.01.00 < 3. č: m □ Τ' ,1 nti- human- 3 r* T Ϊ š
1 ?! s '\*ι V 0,052 1,557 ys -3 -0,110 ςΗΗ 3 <b 0,225 25.01.00 ξ. Ο human-sIgA bez a nti- Srovnání
b 2ř w '··$# 0,045 1 O O u -xl /fóiD Í'.Šr,‘-; -0,037 mH *6‘u -0,010 25.01.00 human-sIgA pouze a nti- Srovnání
o 2 -0,011 0,380 © 6» 6* © 0,033 |2j fP 0,058 25.01.00 HRP-konjugovan anti-human- slgA + > □ JE §.
-0,006 -0,036 0,290 s ' f-;r ' -0,072 '-$SB ‘6‘u 0,013 25.01.00 01' ?r o n 01 I Ϊ > CD Anti-human Srovnání b
θ' 2 A -0,004 -0,005 b M 8 0,029 !£AU w 'w í®· ÍXg o ‘6‘u 1 O b o o 25.01.00 anti-human-sIgA Srovnání pouze
wSí
Tabulka 2
Naměřené hodnoty (odečtena nespecifická vazba)
Z tabulky č. 1 a 2 je zřejmé, že někteří pacienti měli ve vzorku stolice antigeny H.pylori zcela maskovány vlastním imunitním systémem, a proto nemohly být navázány analytickou primární protilátkou proti patogenům, V případě tohoto maskování antigenů běžná imunoanalýza dvěma protilátkami vedla k falešně negativním výsledkům infekce H.pylori nebo odstraněné infekce. Naopak způsobem podle vynálezu se antigeny H.pylori již vázané nebo maskované lidským imunitním systémem vázaly na pevnou fázi (viz Tabulka 2, pole s šedým pozadím) druhou primární protilátkou antihuman-sIgA. Maskující účinek nebyl závislý ani na použité sekundární protilátce, ani na tom, zda se jednalo o vzorek slin nebo stolice. Z výsledků je zřejmé, že v mnoha případech je primární vazba H.pylori k pevné fázi pomocí protilátek anti-human-algA a protilátek arúi-H.pylori vzájemně výjimečná, takže vzhledem k vazbě je výsledek jednoznačný. Možná primární vazba antigenů H.pylori k pevné fázi pomocí vazby k lidskému imunoglobulinu A podle vynálezu je proto nezbytným nástrojem pro diagnostiku.
Příklad 3
Screening slin
Od 150 pacientů podezřelých na infekci H.pylori nebo po dokončení léčby se odebraly vzorky slin a testovaly se na přítomnost antigenů H.pylori. Analýza se prováděla podle příkladu 1 s tím rozdílem, že pracovní pufr navíc obsahoval proteasový inhibitor. Detekční limit antigenů Helicobacter leží u slin v oblasti výše uvedeného testu (s HRP-konjugovanou kozí protilátkou anti-H.pylori a tetramethylbenzidinem) přibližně pří 2 pg antigenů H.pylori na mililitr pracovního pufru. Po optimalizaci druhé protilátky proti antigenů patogenu a selekcí luminiscenčního detekčního systému by mělo být možné dosáhnout detekčního limitu 0,2 pg na mililitr a níže.
Výsledek screeningu vzorku je zobrazen na obr. 3 pomocí sloupcového diagramu. Ze sloupcového diagramu je zřejmé, že pacienti s infekcí H.pylori ve slinách mají zpravidla antigeny v množství vyšším než 60 ng/ml H.pylori. Testování slin je proto vhodné pro detekci infekce H.pylori. Koncentrace H.pylori nižší než 25 ng na ml slin naopak ukazuje nespecifickou křížovou reakci s jinými patogeny.
Poprvé tak bylo dokázáno, že infekci H.pylori je možné detekovat imunologickým testováním slin, které je prakticky relativně jednoduché. Úspěch léčby je tak možné relativně jednoduše sledovat. Předchozí analýzy slin na H.pylori naopak nedovolují diagnózu infekce zažívacího traktu H.pylori, ale byly založeny na vědeckém výzkumu možné cesty přenosu.

Claims (11)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob detekce patogenních organismů ve vzorcích stolice, slin a sekrečních vzorků stanovením sendvičové vazby dvojí protilátky, vyznačující se tím, že se odebere a/ňebo disperguje vzorek obsahující antigen patogenu v roztoku pufru, načež se roztok pufru spojí s pevnou fází, ke které se vážou alespoň dvě primární protilátky, z nichž jedna se specficky váže k antigenu patogenu a druhá se specificky váže k lidskému imunoglobulinu A; dále se pevná fáze s nespecificky vázanými proteiny promyje a pevná fáze se spojí se sekundární protilátkou, která se specificky váže k antigenu patogenu, přičemž se stanoví množství specificky vázané sekundární protilátky.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že druhá primární protilátka váže sekreční lidský IgA.
  3. 3. Způsob podle nároku 2, vyznačující se tím, že druhá primární protilátka váže sekreční lidský lgA2.
  4. 4. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 3, vyznačující se tím, že je sekundární protilátka konjugována s některou ze skupin zahrnující biotin, fluorescein, ruthenium, europium, částice zlata, alkalickou fosfatasu, glukosidasu a křenovou peroxidasu.
  5. 5. Způsob podle kteréhokoli nároku 1 až 4, vyznačující se tím, že první primární protilátka a druhá protilátka váže antigeny Helicobacter pylori.
  6. 6. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 5, vyznačující se tím, že první primární protilátka je směsí polyklonální a/nebo monoklonální protilátky proti různým typům Helicobacter pylori,
  7. 7. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 6, vyznačující se tím, že je sekundární protilátka směsí polyklonální a/nebo monoklonální protilátky proti různým typům Helicobacter pylori.
    • * • » ··· • · · i · · • · 9 ·· ·*··
  8. 8. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že patogenem je Campylobacter.
  9. 9. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že patogenem je Helicobacter heilmanii.
  10. 10. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že patogen vyvolává mohutnou imunitní reakci v těle pacienta.
  11. 11. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 10 pro diagnózu patogenů přetrvávajících v ústech po medikamentózní léčbě.
CZ20023063A 2000-02-14 2001-02-14 Zpusob detekce patogenních organismu ve vzorcích stolice, slin, sekrekcního a bioptického materiálu CZ299992B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10006432A DE10006432A1 (de) 2000-02-14 2000-02-14 Verfahren zum Nachweis von Helicobacter pylori in Stuhl- und Speichelproben

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ20023063A3 true CZ20023063A3 (cs) 2003-01-15
CZ299992B6 CZ299992B6 (cs) 2009-01-14

Family

ID=7630808

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20023063A CZ299992B6 (cs) 2000-02-14 2001-02-14 Zpusob detekce patogenních organismu ve vzorcích stolice, slin, sekrekcního a bioptického materiálu

Country Status (10)

Country Link
US (2) US20030148411A1 (cs)
EP (1) EP1257823B1 (cs)
JP (1) JP4122419B2 (cs)
AT (1) ATE259065T1 (cs)
AU (2) AU4643301A (cs)
CZ (1) CZ299992B6 (cs)
DE (3) DE10006432A1 (cs)
DK (1) DK1257823T3 (cs)
ES (1) ES2215126T3 (cs)
WO (1) WO2001063285A2 (cs)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0833756A (ja) * 1994-07-25 1996-02-06 Asama Seisakusho:Kk パチンコ機の弾球装置
DE60138981D1 (de) * 2000-05-18 2009-07-30 Meridian Bioscience Inc Immunoassay für H. pylori in Fäkalienproben mit Hilfe von gattungsspezifischen Antikörpern
DE10219741A1 (de) * 2002-05-02 2003-11-13 Georg S Wengler Verfahren zur Vorbehandlung von Stuhlproben
CA2646497A1 (en) * 2006-04-18 2007-10-25 Wellstat Biologics Corporation Detection of circulating endothelial cells
CN102980884A (zh) * 2012-11-29 2013-03-20 江苏创生生物技术有限公司 胃黏膜样品中幽门螺旋杆菌的化学发光免疫测定法
WO2015124707A1 (en) 2014-02-20 2015-08-27 Immundiagnostik Ag In vitro diagnostic and prognosis of contrast induced nephropathy (cin) in patients undergoing coronary angiography
EP3499235A1 (en) 2017-12-13 2019-06-19 Immundiagnostik AG Method of measuring auto-antibodies in bodily fluids

Family Cites Families (43)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3269567D1 (en) * 1981-04-29 1986-04-10 Ciba Geigy Ag New devices and kits for immunological analysis
US5061237A (en) * 1985-07-02 1991-10-29 Cytomed Medizintechnik Gmbh Method of purifying whole blood
US5459041A (en) * 1988-02-18 1995-10-17 Enteric Research Laboratories, Inc. Campylobacter pylori antigens and uses thereof for detection of Campylobacter pylori infection
US5200051A (en) * 1988-11-14 1993-04-06 I-Stat Corporation Wholly microfabricated biosensors and process for the manufacture and use thereof
US4968604A (en) * 1989-07-20 1990-11-06 Neorx Corporation Method and test kit for detection of antibodies
US5075078A (en) * 1989-10-05 1991-12-24 Abbott Laboratories Self-performing immunochromatographic device
US5646001A (en) * 1991-03-25 1997-07-08 Immunivest Corporation Affinity-binding separation and release of one or more selected subset of biological entities from a mixed population thereof
US5248595A (en) * 1991-10-08 1993-09-28 Eastman Kodak Company Wash composition, test kit and method for determination of microorganisms associated with periodontal diseases
DE69319240T2 (de) * 1992-04-29 1999-04-08 Auspharm Int Ltd In vitro-test für helicobacter pylori
US5807752A (en) * 1992-09-11 1998-09-15 Boehringer Mannheim Corporation Assay using an unblocked solid phase with immobilized analyte binding partner
FI92882C (fi) * 1992-12-29 1995-01-10 Medix Biochemica Ab Oy Kertakäyttöinen testiliuska ja menetelmä sen valmistamiseksi
US6258359B1 (en) * 1993-05-19 2001-07-10 Institut Pasteur Immunogenic compositions against helicobacter infection, polypeptides for use in the compositions, and nucleic acid sequences encoding said polypeptides
US5561045A (en) * 1994-01-04 1996-10-01 Intracel Corporation Detection reagent, article, and immunoassay method
US7569341B2 (en) * 1994-01-31 2009-08-04 Trustees Of Boston University Nucleic acid directed immobilization arrays and methods of assembly
WO1995029395A1 (en) * 1994-04-26 1995-11-02 The Regents Of University Of Michigan Unitary sandwich enzyme immunoassay cassette, device and method of use
US5498528A (en) * 1994-06-10 1996-03-12 King; Wing Detection of helicobacter pylori
DE4439452A1 (de) * 1994-11-04 1996-05-09 Boehringer Mannheim Gmbh Antikörperklassenspezifisches Entstörungsreagenz
US5837240A (en) * 1995-04-28 1998-11-17 Oravax-Merieux Co. Multimeric, recombinant urease vaccine
SE9503937D0 (sv) * 1995-11-07 1995-11-07 Anders Pettersson Förebyggande av plötslig spädbarnsdöd
US5932430A (en) * 1996-05-09 1999-08-03 Meridian Diagnostics, Inc. Immunoassay for H. pylori in fecal specimens
US5716791A (en) * 1996-05-09 1998-02-10 Meridian Diagnostics, Inc. Immunoassay for H. pylori in fecal specimens
US6514731B1 (en) * 1996-05-24 2003-02-04 Chiron Corporation Methods for the preparation of hepatitis C virus multiple copy epitope fusion antigens
US5876944A (en) * 1996-06-10 1999-03-02 Bayer Corporation Method for amplification of the response signal in a sandwich immunoassay
US5922845A (en) * 1996-07-11 1999-07-13 Medarex, Inc. Therapeutic multispecific compounds comprised of anti-Fcα receptor antibodies
JP4104665B2 (ja) * 1996-12-19 2008-06-18 カイロン コーポレイション H. pylori診断薬
US6506384B1 (en) * 1997-12-31 2003-01-14 New York University Early detection of mycobacterial disease
WO1999015898A1 (en) * 1997-09-22 1999-04-01 Chiron Corporation Method for detecting antibodies in a sample
AU1203199A (en) * 1997-11-18 1999-06-07 Bio-Rad Laboratories, Inc. Multiplex flow immunoassays with magnetic particles as solid phase
AUPP103497A0 (en) * 1997-12-19 1998-01-15 Panbio Pty Ltd Assay apparatus
DE19758017C2 (de) * 1997-12-29 2000-03-02 Hanns Ludwig Verfahren zum Nachweis von Borna-Disease-Virus (BDV)-Infektionen über den Nachweis zirkulierender Immunkomplexe und hierfür verwendbarer diagnostischer Kit
IT1299312B1 (it) * 1998-02-13 2000-03-16 Consortia Lab Srl Dosaggio nei liquidi biologici di anticorpi diretti contro uno o piu' antigeni del helicobacter pylori mediante metodo immunologico
US7297312B2 (en) * 1998-03-16 2007-11-20 University Of Cincinnati Simultaneous multianalyte electrochemical assay based on spatial resolution
US6303081B1 (en) * 1998-03-30 2001-10-16 Orasure Technologies, Inc. Device for collection and assay of oral fluids
US6221579B1 (en) * 1998-12-11 2001-04-24 Kimberly-Clark Worldwide, Inc. Patterned binding of functionalized microspheres for optical diffraction-based biosensors
ATE439452T1 (de) * 1999-05-07 2009-08-15 Life Technologies Corp Verfahren zum nachweis von analyten mit hilfe von halbleiternanokrystallen
US6383740B2 (en) * 1999-07-30 2002-05-07 Bioergonomics, Inc. Methods for simultaneously detecting both members of a binding pair
US6727073B1 (en) * 1999-11-19 2004-04-27 Binax, Inc. Method for detecting enteric disease
TWI237695B (en) * 1999-12-14 2005-08-11 Joy Biomedical Corp Helicobacter pylori antigens in blood
US6316205B1 (en) * 2000-01-28 2001-11-13 Genelabs Diagnostics Pte Ltd. Assay devices and methods of analyte detection
US20020004246A1 (en) * 2000-02-07 2002-01-10 Daniels Robert H. Immunochromatographic methods for detecting an analyte in a sample which employ semiconductor nanocrystals as detectable labels
US20010051351A1 (en) * 2000-03-27 2001-12-13 Racis Stanley Paul Antigen-specific immune complex-based enzyme-linked immunosorbent assay
US6699722B2 (en) * 2000-04-14 2004-03-02 A-Fem Medical Corporation Positive detection lateral-flow apparatus and method for small and large analytes
US6528325B1 (en) * 2000-10-13 2003-03-04 Dexall Biomedical Labs, Inc. Method for the visual detection of specific antibodies in human serum by the use of lateral flow assays

Also Published As

Publication number Publication date
JP2003526779A (ja) 2003-09-09
DE50101435D1 (de) 2004-03-11
ATE259065T1 (de) 2004-02-15
EP1257823A2 (de) 2002-11-20
WO2001063285A2 (de) 2001-08-30
WO2001063285A3 (de) 2002-04-11
US20070087395A1 (en) 2007-04-19
AU2001246433B2 (en) 2005-03-24
AU4643301A (en) 2001-09-03
ES2215126T3 (es) 2004-10-01
CZ299992B6 (cs) 2009-01-14
EP1257823B1 (de) 2004-02-04
DE10006432A1 (de) 2001-08-16
DE10190630D2 (de) 2002-12-05
DK1257823T3 (da) 2004-05-24
US20030148411A1 (en) 2003-08-07
JP4122419B2 (ja) 2008-07-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20090030054A1 (en) Cytoplasmic antigens for detection of candida
US20100273177A1 (en) Methods and Devices for Testing Saliva
US20070087395A1 (en) Method for detecting pathogenic organisms in fecal and salivary specimens and in biopsy material
KR20080082337A (ko) 렙토스피라증 진단 키트
KR101678428B1 (ko) 폐렴구군 검출방법
US20210364515A1 (en) Optimizing diagnostics for galactofuranose containing antigens
JP4323318B2 (ja) ヘリコバクターピロリを検出するための非侵襲的方法
US20080038760A1 (en) Method for Detecting Anti-Transglutaminase Antibodies
WO2020184409A1 (ja) 生体試料中のβ-D-グルカンの免疫学的分析方法、及びβ-D-グルカン分析用キット
JP2002541457A (ja) リポ多糖の免疫測定法と試験装置
US10288610B2 (en) Vitro assays for detecting Salmonella enterica serotype typhi
EP1580557A1 (en) Method of examining staphylococcus aureus
JPH0754321B2 (ja) 免疫反応性リガンドを測定するための試験キットおよび測定方法
JP6867529B1 (ja) ヘリコバクター・ピロリ検出用抗体
US6235487B1 (en) Method of diagnosing Crohn&#39;s disease
Cao et al. Detection of spiral and coccoid forms of Helicobacter pylori using a murine monoclonal antibody
JP2004524522A (ja) 膵臓及び胃腸疾患の検出方法
Wienecka et al. Detection of Giardia antigen in stool samples by a semi-quantitative enzyme immunoassay (EIA) test
Gurung et al. Development of 316v antibody enzyme-linked immunosorbent assay for detection of paratuberculosis in sheep
WO2023145787A1 (ja) 菌体可溶化画分を用いた、ヘリコバクター・スイス抗体の検出法
WO2004048976A1 (ja) 黄色ブドウ球菌の検査方法
EP4220166A1 (en) In vitro method for detecting antibodies in a sample
US20030124633A1 (en) Diagnostic methods
WO2020158811A1 (ja) ヘリコバクター・ピロリ菌株の同定方法、および同定用キット
US20220244251A1 (en) Targets and Methods of Diagnosing and Monitoring Lyme Disease

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20140214