以下申请是2000年4月28日提出的美国申请No.09/561,111的部分延续申请,该申请又是1999年12月30日提出的的美国申请No.09/474,866的部分延续申请,以上每一申请均以1999年4月28日提出的美国临时申请No.60/131,638为优先权申请。以上每一申请在此整体并入本文参考。本发明部分地在由美国政府援助的工作下进行,该工作为DARPA的No.MDA972-97-1-0007项目。政府拥有本发明某些权利。
定义
为了便于理解本发明,现将诸多术语与短语定义如下:
本文中所用的术语”微生物”是指显微可见的生物体和属于藻类、细菌、真菌(包括地衣)、原生动物门、病毒和亚病毒剂类的分类上相关的肉眼可见的生物体。术语”微生物”包括本身致病和导致另一生物体(例如动物,包括人;和植物)患病的生物体,和,能产生导致另一生物体患病的物质,但其本身并不直接致病或者直接感染其他生物体的生物体。本文中所用的术语”病原体”和其同义词,是指一种生物体,其包括能导致另一种生物体(例如,动物和植物)患病的微生物,或,产生能使另一种生物体患病的物质的微生物(例如,产生致病毒素的细菌等)。
本文中所用的术语”疾病”是指与属种成员正常或者平均水平的偏离,其在对属种中大多数个体无害的情况下但对受感染个体有害的情况(例如,腹泻、恶心、发烧、疼痛和炎症等)。与微生物和/或病原体相接触可引起或导致疾病。
此处所使用的术语“宿主”或“目标物”,指用本发明的组合物进行处置的生物体。此类生物体包括易被一种或多种病原体侵害,或者可能是容易被其侵害的生物体。此类生物体还包括用于避免不希望的病原体侵害而对其进行处置的生物体。生物体包括但不仅限于动物(例如,人、驯养动物、野生动物)和植物。
本文中所用的术语“灭活”及其同义词,意为具有消灭、去除或者降低病原体对宿主的感染和/或在宿主中引起病理学反应的能力。
本文中所用的术语“导致融合的”意指一种能与微生物物质(例如,细菌或细菌孢子)的膜相融合的乳状液。特定的导致融合的乳状液的例子包括但不仅限于,在美国专利号5,618,840;5,547,677和5,549,901中记载的W808P以及在美国专利号5,700,679记载的NP9,每一文献在此整体共同引入作为参考。NP9是一种支链聚(氧-1,2ethaneolyl),α-(4-nonyl phenal)-ω-羟基-表面活性剂。不限于如下所述,NP9和其他的可用于本发明的表面活性剂记载在美国专利5,662,957的表1中,在此其整体合并作为参考。
本文中所用的术语“生成溶素的”指一种具有***微生物物质(例如,细菌或细菌孢子)的膜的能力的乳状液。一种示例性的生成溶素的组合物是BCTP。在本发明的优选实施方案中,一种生成溶素试剂和一种导致融合的试剂同时存在于同一组合物中,将产生比两者单独使用更强的灭活效果。使用了此种改良抗菌组合物的方法和组合物将在此详细叙述。
在此使用的术语”乳液”,包括水包油分散体或者小滴,以及其它的脂性结构,该结构能够形成一种所需的疏水力量,当不可与水混合的油相与水相混合时,其能从水中除去极性残留物(例如,碳氢化合物长链)及除去朝向水的极性端基。上述其它的脂性结构包括但不仅限于,单室脂质体、极少室脂质体(paucilamellar)和多室脂质体、胶团和层状相。类似的,此处使用的术语“纳米乳液”是指含有微小脂质结构的水包油分散体。例如在优选的实施方案中,该纳米乳液含有其小滴的平均粒度约为0.5-5微米的油相。此处经常使用的术语“乳液”和“纳米乳液”,使用中可互相交换,是指本发明的纳米乳液。
本文中所用的术语“相接触”和“暴露”是指将一种或多种本发明的组合物与病原体或可抵抗病原体的样本相接触,以使本发明的组合物可以灭活微生物或者致病性物质,如有可能(if present)。本发明注重于将公开的组合物以足够体积和/或浓度的量与病原体或微生物相接触以灭活病原体或微生物。
术语“表面活性剂”是指任一下述分子,其具有一极性端基,可以极其适于用水溶解;还具有一疏水性尾部,不能很好的溶于水。术语“阳离子表面活性剂”是指具有阳离子端基的表面活性剂。术语“阴离子表面活性剂”是指具有阴离子端基的表面活性剂。
术语“洒亲水-亲脂平衡系数”及“HLB系数”指将表面活性剂分子化学结构与其表面活性相结合关联的一种指标。HLB系数可以使用一系列经验公式进行计算,该公式如Meyers所描述(Meyers,表面活性剂科学和技术,VCH出版公司,纽约,231-245页[1992]),在此引入作为参考。如此处所使用的,表面活性剂的HLB系数是记载在McCutcheon’s卷1:乳化剂和洗涤剂,北美出版社,1996(在此引入作为参考)中分配给表面活性剂的HIB系数。HLB系数从0至约70或着,商用表面活性剂中更高。具有高水溶性和增溶特性的亲水性表面活性剂可达到该范围的较高端值;而具有低水溶性,又是一种优良的油中水加溶剂的表面活性剂则在该范围值的较低端。
本文中所用的术语“萌发增强子”描述化合物作用于增强某种菌株(例如,L-氨基酸[L-丙氨酸],CaCl2,肌苷等)的萌发。
本文中所用的术语“相互作用增强剂”描述化合物作用于增强乳液与细菌(例如,革兰氏阴性菌)细胞壁的相互作用。我们所注重的相互作用增强剂,包括但不仅限于螯合剂(例如,乙二胺四乙酸[EDTA],亚乙基双(氧化乙烯次氮基)四乙酸[EGTA],等等)和某种生物学试剂(例如,牛血清蛋白[BSA]等等)。
术语“缓冲剂”指在向溶液加入时,能使溶液抵制pH值改变的物质。
术语“还原剂”和“电子供体”指能向第二物质贡献电子以降低一种或多种第二物质的原子的氧化状态的物质。
术语“一价盐”是指其金属(例如,Na,K,或Li)在溶液中具有净1+电荷(即质子比电子多一个)的任一盐。
术语“二价盐”是指其金属(例如,Mg,Ca,或Sr)在溶液中具有净2+电荷的任一盐。
术语“螯合剂”指物质中具有一个以上的原子各拥有一对可用于结合金属离子的孤电子对的任一的物质。
术语“溶液”是指一种水性的或非水的混合物。
本文中所用的术语“治疗剂”是指能降低被致病微生物所感染的宿主感染、发病、或死亡的发生率或者防止被致病微生物所感染的宿主感染、发病或者死亡的发生率的组合物。这些治疗剂可附加地含有药学可接受的化合物(例如,辅料、赋型剂、稳定剂、稀释剂等等)。在一些实施方案中,本发明所述之治疗剂可以局部乳液、可注射组合物、可食用溶液的形式给药等等。当采用局部途径给药时,其制剂形式可以是,例如乳液、软膏、油膏或者喷雾剂。
此处使用的术语“药物可接受的”或者“药理学可接受的”,指当向宿主(例如,动物或人)给药时,基本上不引起不良的过敏反应或免疫学反应的组合物。此外,在某些实施方案中,本发明的组合物可制成园艺和农用的形式,包括浸剂、喷雾剂、种子包裹物、茎杆注射剂、茎杆喷雾剂和雾剂。“药物可接受的载体”包括任意及所有的溶剂、分散介质、包衣剂、湿润剂(例如,十二烷基硫酸钠),等渗体和吸收延滞剂、崩解剂(例如,马铃薯淀粉或甘醇酸淀粉钠)等等。
本文中所用的术语”局部”是指将本发明的组合物应用于皮肤表面和粘膜细胞及组织(例如,牙槽、颊腔、舌部、咀嚼部位或鼻粘膜和其他的具有中空结构的器官和体腔的组织和细胞)。
本文中所用的术语”局部活性剂”是指可在宿主的应用(接触)部位产生药理学反应的本发明组合物。
本文中广泛使用的术语“***性活性药物”意指一种物质或组合物,其能在远离给药位点或者进入宿主产生药理学反应。
本文中所用的术语“医学装置”包括任一在治疗(例如,用于疾病或者损伤的)期间用在病人身体上、病人身体内或者经过病人体内的物料和设备。医学装置包括但不仅限于,医学植入物、创伤护理装置、药物给药装置和体腔及个人保护装置。医学植入物包括但不仅限于,导尿管、血管导管、透析分流器、创伤引流管、皮肤缝合线、血管移植物、可植入网孔、眼内装置、心瓣膜等等。创伤护理装置包括但不仅限于,常规创伤敷料、生物移植材料、带状止血剂(tape closures)和敷料,及外科切割用的布帘(surgical incise drapes)。药物给药装置包括但不仅限于、针头、给药用的皮肤贴片、给药用的粘膜贴片和医用海面。体腔和个体保护装置,包括但不仅限于,塞子、海面、外科和检测用手套及牙刷。生育控制装置包括但不仅限于,子宫内置装置(IUD)、隔膜和男用避孕套。
本文中所用的术语“提纯”是指将污染物或者不期望存在的化合物从样本或者组合物中除去。本文中所用的术语“基本提纯”是指从样本或者组合物中除去了大约70到90%,最多100%污染物或者不期望存在的化合物。
本文中所用术语“表面”应理解为其广义。一方面,该术语是指能与本发明组合物接触的生物体或无生命物质(例如,载体、营造物和食品处理装置等)的最外部的边界(例如,对于动物:皮肤、毛发和毛皮等,对于植物:叶子、茎杆、花朵部分和果实等)。另一方面,该术语同样也指动物或者植物体内通过一系列经皮给药途径(例如,注射、摄取、透皮给药、吸入等等)而与组合物相接触的内膜和内表面(例如,对于动物:消化道、脉管组织等等,对于植物:脉管组织等)。
本文中所用的术语“样本”取其广义。一方面,其指一种动物细胞或者组织。另一方面,其包括任一来源的样品或者培养物,例如生物学样本和环境样本。生物学样本可以得自于植物或动物(包括人),还包括流体、固体、组织和和气体。环境样本包括环境物料例如表面物质、土壤、水和工业样本。上述例子不能认为是用以限制本发明适用的样本类型。
发明详述
本发明包括用于降低与一系列微生物和致病生物体有关的感染、发病率和死亡率的组合物和方法。本发明同样涉及用于净化被致病生物体繁殖或者感染的区域的方法和组合物。此外,本发明涉及用于降低食物中致病物质感染能力的方法和组合物。在优选的实施方案中,降低致病生物体的感染能力、发病率和死亡率是通过用水包油组合物接触致病生物体实现的,该水包油组合物含有水相和油相,及至少一种其他化合物。本发明特定例证性的具体实施方案在下文有所描述。本发明不仅限于所述特定的实施方案。详细的描述分成如下章节:I)示例性组合物;II)示例性制备技术;III)特性及活性;IV)使用方法和V)特定实施例。
I.示例性组合物
在优选的实施方案中,本发明的乳液含有(i)水相;(ii)油相;和至少一种附加化合物。在本发明的一些实施方案中,我们将所述附加化合物可混合于组合物的水相或油相中。在其它实施方案中,将所述附加化合物混合入之前油相和水相已经乳化的组合物中。在某些实施方案中,将一种或多种附加化合物在使用之前迅速混合入现有的乳液组合物中。在其它实施方案中,将一种或多种附加化合物在组合物立即使用之前混合入现有的乳液组合物。
适用于本发明的组合物的附加化合物包括但不仅限于一种或多种有机的,更特别的,有机磷酸基的溶剂、表面活性剂和洗涤剂、阳离子含卤化合物、萌发增强子、相互作用增强剂、食品添加剂(例如调味剂、甜味剂、膨化剂等等)和药物可接受的化合物。特定的种种用于本发明组合物的化合物的示例性实施方案将在下文中叙述。
A.水相
在某些优选的实施方案中,乳液含有约5-60,优选10-40,更优选15-30%(体积)的水相,以乳液的总体积计。在优选的实施方案中,水相含有水pH约为4-10,优选约6-8.当本发明的乳液中含有一种萌发增强子时,pH优选6-8.水优选去离子水(下文指“DiH2O”)。在一些实施方案中,水相中含有磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。在用于为消耗和接触的所用的本发明的这些实施方案中,宿主、水相和在水相中的任一附加化合物可进一步地灭菌或者灭除热原物质。
B.油相和溶剂
在某些优选的实施方案中,本发明乳液中的油相(例如,载体油)含有30-90,优选60-80,和更优选60-70%(体积)的油类,以乳液的总体积计。适宜的油类包括但不仅限于大豆油、鳄梨油、亚麻油、椰油、棉籽油、角鲨烯油、橄榄油、低芥酸菜籽油、玉米油、菜籽油、红花油、葵花油、鱼油、调味油、水不溶性维生素维生素及其混合物。在特别优选的实施方案中,使用的是大豆油。附加的可用的油类包括机油机油、矿物油、和黄油。在本发明的优选实施方案中,油相优选分散于水相中,以平均粒度在约1-2微米之间,更优选0.2-0.8,和首选约0.8微米的液滴形式存在。在其它实施方案中,水相可以分散在油相。
在一些实施方案中,油相含有3-15,优选5-10%(体积)的有机溶剂,以乳液的总体积计。当本发明不限于任一特定的机理时,乳液中的有机磷酸基的溶剂应主要用于去除或者破坏病原体膜的脂质。因此,能去除微生物膜中的固醇或磷脂的任一溶剂在本发明的乳液中都是可用的。适宜的有机溶剂包括但不仅限于,有机磷酸酯基溶剂或醇类。在优选的实施方案中,有机磷酸酯基的溶剂包括但不仅限于,以任何形式结合的磷酸二烷基酯、磷酸三烷基酯(例如,正磷酸三丁酯[TBP])。在某些实施方案中特别优选的磷酸三酯包括正磷酸三丁酯,它是一种增塑剂。此外,在一优选的实施方案中,磷酸二酯或者三酯中的每一烷基具有1到10或者更多的碳原子,更优选2到8个碳原子。同样,本发明的磷酸二酯或者三酯中的每一烷基可以是或者可以不是相同的。在某些实施方案中,可以使用不同磷酸烷基酯和磷酸三酯的混合物。在那些以一种或多种醇作为溶剂的实施方案中,所述溶剂包括但不仅限于,甲醇、乙醇、丙醇和辛醇。在一个特别优选的实施方案中,使用的是乙醇。在本发明的这些用于消耗或者接触的实施方案中,宿主、油相和油相中任一附加化合物,可以进一步的灭菌或者除去热原。
C.表面活性剂和洗涤剂
在一些实施方案中,本发明的组合物还含有一种或多种表面活性剂或洗涤剂(例如,约3-15%,优选约10%)。当本发明不限于任一特殊的机理时,我们注意到组合物中使用表面活性剂将有助于组合物的稳定性。可用非离子(非-阴离子)和离子表面活性剂。另外,可从表面活性剂BRIJ族中寻找适用于本发明组合物的表面活性剂。表面活性剂可以水相或者或油相的形式存在。适宜于同乳液一起使用的表面活性剂包括一系列的阴离子和非离子表面活性剂,以及其他能促进水包油乳液成形的成乳化合物。一般来说,成乳化合物是相对亲水的,成乳化合物的混合物可以用于使所需产品达到所需的性质。在某些制剂中,非离子表面活性剂要优于离子型乳化剂,因为其能在较广的pH范围内基本相容且比离子型(例如,皂类)乳化剂能形成更为稳定的乳液。由此,在某些优选的实施方案中,本发明的组合物含有一种或多种非离子表面活性剂,例如聚山梨醇酯表面活性剂(例如,聚氧乙烯醚),聚山梨醇酯洗涤剂,苯氧基聚乙氧基乙醇等等。本发明使用的聚山梨醇酯洗涤剂的例子包括但不仅限于,TWEEN 20、TWEEN 40、TWEEN 60、TWEEN 80等。
TWEEN 60(聚氧乙烯脱水山梨醇单硬脂酸酯)、及TWEEN 20、TWEEN40和TWEEN 80,含有的聚山梨醇酯,其作为乳化剂用于许多药物组合物。在本发明的一些实施方案中,所述化合物可与辅料一同用作合并组分。表面活性剂TWEEN还显示出对脂质包膜的病毒具有杀伤病毒的效果(参见例如,Eriksson等,Blood Coagulation and Fibtinolysis5(增补版.3):S37-S44页[1994])。
本发明可用的苯氧基聚乙氧基乙醇和其聚合物的的例子包括但不仅限于,TRITON(例如,X-100、X-301、X-165、X-102、X-200),和TYLOXAPOL。TRITON X-100是一种很强的非离子洗涤剂和分散剂,其广泛用于从生物结构中提取脂质和蛋白质。其还具有杀病毒效果,适用于广谱包膜病毒(参见例如,Maha和Igarashi,Southeast AsianJ.Trop.Med.Pub.Heal th 28:718[1997];和Portoeala等,Virologie27:261[1976])。由于其抗病毒活性,其被用于灭活新鲜冷冻的人血浆中的病毒(参见例如,Horowi tz等,血液79:826[1992])。
在特别优选的实施方案中,可使用表面活性剂TRITON X-100(叔-辛基苯氧基聚乙氧基乙醇)和/或TYLOXAPOL。一些其他的实施方案,使用的是杀***剂(例如,壬苯醇醚-9(Nonoxynol-9))。本发明的组合物可使用的附加表面活性剂和洗涤剂可从参考书中确定(例如,McCutheon’s第1卷:乳液和洗涤剂-北美版,2000)。
在一些实施方案中,如图28所示,含有表面活性剂和有机溶剂的组合物可用于灭活包膜病毒和革兰氏阳性菌。
D.阳离子含卤化合物
在一些实施方案中,本发明的组合物还含有一种阳离子含卤化合物(例如,约0.5 to 1.0%重量,或更多,以乳液的总重量为计)。在优选的实施方案中,阳离子含卤化合物优选与油相预先混合;然而,应当理解,阳离子含卤化合物可以与乳液组合物相结合的形式存在于不同的制剂中。适宜的含卤化合物可选自,例如含氯、氟和碘离子的化合物。在优选的实施方案中,适宜的阳离子含卤化合物包括但不仅限于,卤化鲸蜡基吡啶鎓、鲸蜡基三甲基卤化铵、卤化鲸蜡基二甲基乙铵、卤化鲸蜡基二甲基苄铵、卤化鲸蜡基三丁基磷鎓、月桂基三甲基卤化铵,或肉豆蔻基三甲基卤化铵。再一些特定的实施方案中,适宜的阳离子含卤化合物含有但不仅限于,氯化鲸蜡基吡啶鎓(CPC)、鲸蜡基三甲基氯化铵、鲸蜡基苄基二甲基氯化铵、溴化鲸蜡基吡啶鎓(CPB)、溴化鲸蜡基三甲铵(CTAB)、溴化鲸蜡基二甲乙铵、溴化鲸蜡基三丁基磷磷鎓、月桂基三甲基溴化铵、和肉豆蔻基三甲基溴化铵。在特别优选的实施方案中,阳离子含卤化合物是CPC,虽然本发明的组合物并不限于用特定的含有阳离子的化合物来制得。
在一些实施方案中,向本发明的组合物乳液加入1.0%重量或者更多的含阳离子化合物可获得适用于灭活灭活包膜病毒、革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌和真菌的组合物。
E.萌发增强子
在本发明的实施方案中,组合物还含有一种或多种萌发增强化合物(例如,约1mM-15mM,及更优选约5mM-10mM)。在优选的实施方案中,在制备乳液之前,萌发增强化合物先存在于水相中。
本发明强调,当萌发增强子加入到所述组合物中时,将增强组合物杀死孢子的能力。本发明进一步强调,所述萌发增强子在近中性pH(pH 6-8之间,和优选7)下启动杀孢子能力。所述中性pH乳液可用磷酸盐缓冲盐水(PBS)稀释得到,或者通过中性乳液的预制得到。组合物的杀孢子活力最优先在孢子开始萌发时起效。
在特定的实施方案中,证实了本发明的乳液具有杀孢子能力。当本发明不限于任一特定机理时,我们相信乳液中导致融合的组分启动了萌发过程,及,在向营养型的逆转完成之前,乳液中导致溶解的组分溶化了新萌发的孢子。这些乳液中的组分一致的使得易于被乳液破坏瓦解。萌发增强子的加入进一步的促进本发明的乳液的抗-杀孢子活性,如,在杀孢子活性出现时,加速(萌发增强子)的加入。
细菌内孢子和真菌孢子的萌发与代谢加快和对热及化学反应物的抵抗力降低有关。为了萌发,孢子必须感应环境是否能够足够的支持其增值和复制。氨基酸L-丙氨酸能刺激孢子的萌发(参见,如,Hills,J.Gen.Micro.4:38[1950];及Halvorson和Church,Bacteriol.Rev.21:112[1957])。L-丙氨酸和L-脯氨酸据报道能启动孢子的萌发(Yanagita,Arch Mikrobiol 26:329[1957])。简单的α-氨基酸,例如甘氨酸和L-丙氨酸,处于代谢的重要地位。α-氨基酸的氨基转换作用或脱氨基作用产生了糖原或者酮原碳水化合物及代谢和生长所需的氮。例如,L-丙氨酸的氨基转换作用或脱氨基作用产生了糖酵解代谢(Embden-Meyerhof-Pamas循环)最终的产物——丙酮酸酯。丙酮酸酯脱氢酶复合物导引起的丙酮酸酯氧化反应产生了乙酰辅酶A、NADH、H+、和CO2.乙酰辅酶A是三羧酸循环(Kreb’s循环)的启动物质,该循环依次供应着线粒体的电子输送链。乙酰辅酶A是合成脂肪酸和合成固醇所需碳的最根本来源。简单α-氨基酸能提供氮、CO2、萌发及随后的代谢活动所需的糖原和/或酮原等价物。
在某些实施方案中,本发明适宜的萌发增强剂包括但不仅限于,α-氨基酸,包括甘氨酸和丙氨酸左旋对映体、缬氨酸、白氨酸、异白氨酸、丝氨酸、苏氨酸、赖氨酸、苯丙氨酸、酪氨酸及其烷基酯。氨基酸对于萌发过程的其他的资料可参见美国专利号5,510,104,此处以其整体形式合并作为参考。在一些实施方案中,也可使用葡萄糖、果糖、天冬酰胺、氯化钠(NaCl)、氯化铵(NH4Cl)、氯化钙(CaCl2)和氯化钾(KCI)的混合物。在本发明特别优选的实施方案中,制剂中含有萌发增强子L-丙氨酸、CaCI2、肌苷和NH4Cl。在一些实施例中,组合物中还含有一种或多种以普通形式存在的生长介质,其自身附加含有或者不含有萌发增强子和缓冲剂(例如,胰胨豆胨培养液,等等)。
上述化合物仅是示例性的萌发增强子,应当理解,其他已知的萌发增强子也可用于本发明的组合物。本发明的组合物中可用的萌发增强子必须符合两项标准:其必须能与本发明的乳液相混合,及,当其与本发明的乳液混合时能加速靶孢子的萌发速度。本领域技术人员可以通过如下方式判断一种特定试剂是否具有可以作为萌发增强子的功能:将该试剂与本发明组合物相结合作用于靶物质,及将所得的灭活效果与不使用该试剂时,将本发明的组合物的混合体施用于靶物质时引起的灭活效果相比较。任一一种能加速萌发,且因此降低或者抑制生物体生长的试剂可以认为是适用于本发明的增强子。
在其它实施方案中,向中性乳液组合物中加入萌发增强子(或,生长介质)产生了一种除能对付包膜病毒,革兰氏阴性菌、和革兰氏阳性菌之外还能对付细菌孢子的组合物。
F.相互作用增强剂
在其它实施方案中,本发明的组合物含有一种或多种能增强组合物与靶病原体(例如,革兰氏阴性菌、如弧菌、沙门氏菌、志贺氏菌和假单胞菌的细胞壁)相互作用的化合物(即,“相互作用增强剂”)。在优选的实施方案中,相互作用增强剂优选与油相相混合;然而,在其他的实施方案中,相互作用增强剂在乳化作用之后以与组合物相结合的形式施用。在某些优选的实施方案中,相互作用增强剂是一种螯合剂(例如,存在于缓冲剂[例如,tris缓冲剂]中的乙二胺四乙酸[EDTA]或亚乙基双(氧化乙烯次氮基)四乙酸[EGTA])。应当理解螯合剂仅是示例性的相互作用增强化合物。事实上,其他能加强本发明的组合物与微生物和/或病原体相互作用的化合物也可以使用。在特别优选的实施方案中,相互作用增强剂的浓度约为50至约250M。本领域技术人员可以通过如下方法判断一种特定的试剂是否具有作为相互作用增强剂使用的功能:将该试剂和本发明的组合物结合施用于一靶物质,及将靶物质的灭活情况与在不含该试剂时,向靶物质施用本发明组合物时的情况相比较。与不含该物质时的情况参数相比较,任一一种能增强相互作用及因此降低或抑制细菌生长的试剂可以作为相互作用增强剂使用。
在一些实施方案中,向本发明的组合物中加入相互作用增强剂能产生出适用于处置包膜病毒、某些革兰氏阳性菌和某些革兰氏阴性菌的组合物。
II.示例性制剂
如下所述,在章节A中,本发明描述了制备所述组合物的常用制剂的的示例性工艺。另外,在章节B中,本发明记载了一组特殊的,也是示例性的制剂(如下所述)。
A.制剂工艺
本发明的灭活病原体的水包油乳液可使用标准乳液制备工艺进行制备。简单的说,在相对较高的剪切力下搅拌混合物油相和水相(例如,使用高速的水力和机械力)以获得一种含有油滴的水包油乳液,所含油滴的粒径为大约0.5 to 5微米,优选1-2微米。形成乳液的油相水相的混合体积基本上在约1∶9-5∶1范围,优选约5∶1-3∶1,首选4∶1,油相∶水相。油相和水相可用任一能产生足以形成乳液的剪切力的设备进行混合,例如French Presses或高速剪切混合器(如,经FDA认证的高速剪切混合器,可从Admix,Inc,Manchester,NH购得)。生产所述乳液的方法可见于美国专利号5,103,497和4,895,452,中,此处共同引入作为参考。
在优选的实施方案中,本发明的方法含中使用的组合物,其不连续的油相分散于连续的水相中(例如水)。在优选的实施方案中,本发明的组合物是稳定的,且即使在长时间(例如,一年或几年)的贮存后也不会分解。某些本发明的组合物即使被吞咽、吸入或者与宿主的皮肤相接触,也不会产生毒性。这一点和某些具有刺激性的化学微生物杀灭剂有所不同。另外,在一些实施方案中,组合物对于植物同样没有毒性。
本发明的组合物可大量的生产且在较大温度范围下可稳定数月。如果不稀释,则它们具有半固体膏状的性质,可以用手涂抹局部或者用与水混合使用。若进行稀释,则其具有粘性,且外观与脱脂乳液相似,可以喷在已除污的表面上或者在吸入前能潜在的与雾化的孢子发生相互作用。这些性质使得其具有广谱抗微生物的用途。另外,这些特性还使得本发明的组合物尤其适用于净化除污。
如上所述,至少部分乳液是液体结构的形式,该结构包括,但不限于,单室脂质体、多室脂质体和极少室脂质体、胶团和层状相。
在本发明的一些实施方案中,油相中含有乙醇。例如在一些实施方案中,本发明的乳液含有(i)水相;(ii)含有乙醇作为有机溶剂的油相且任意的,含有萌发增强子;(iii)作为表面活性剂的TYLOXAPOL(优选2-5%,更优选3%)。该制剂对微生物非常有效且对哺乳动物没有刺激性和毒性(因此可与粘膜相接触)。
在一些其它的实施方案中,本发明的乳液含有在第二乳液中被乳化的第一乳液,其中(a)第一乳液含有(i)水相;(ii)含油和有机溶剂的油相;(iii)表面活性剂;(b)第二乳液含有(i)水相;(ii)含有油类和含有阳离子的化合物的油相;(iii)表面活性剂。
B.示例性制剂
以下的描述给出了一组示例性的乳液,其中包括用于BCTP和X8W60PC组合物的制剂。BCTP含有油包水的纳米乳液,其中的油相源于大豆油、正磷酸三丁酯及在80%水中的TRITON X-100.含有相同体积的BCTP和W808P的混合物的X8W60PC。W808P是一种由甘油单硬脂酸酯、精炼大豆固醇(例如,GENEROL固醇)、TWEEN 60、大豆油、阳离子含卤CPC和薄荷油制得的类脂质体化合物。The GENEROL族物质是一组聚乙氧基化的大豆固醇(亨克尔公司Ambler,宾夕法尼亚)。一些本发明实施方案中的乳液制剂描述于表1中。这些特定的制剂也可以记载在美国专利号5,700,679(NN);5,618,840;5,549,901(W808P);和5,547,677中,此处合并作为整体参考。某些乳液制剂在图29中有记载。此外,图30依图记载了本发明常用制剂及某些本发明实施方案的使用情况。
X8W60PC乳液的通过以下方法制备:先单独制备W808P乳液和BCTP乳液,然后将两种乳液的混合物重新乳化制得一种新的乳液组合物,称为X8W60PC。制备所述乳液的方法记载在美国专利号5,103,497和4,895,452(此处合并作为整体参考)。这些化合物具有广谱的抗微生物活性,且能通过破坏细胞膜灭活无性繁殖的细菌。
表1
名称 |
油相处方 |
水对油相的比例(体积/体积) |
BCTP |
1体积的正磷酸三丁酯1体积的TRITON X-1008体积的大豆油 |
4∶1 |
NN |
86.5g甘油单油酸酯60.1ml壬苯醇醚24.2gGENEROL 1223.27g卤化鲸蜡基吡啶鎓554g大豆油 |
3∶1 |
W808P |
86.5g甘油单油酸酯21.2g聚山梨酯6024.2gGENEROL 1223.27g卤化鲸蜡基吡啶鎓4ml薄荷油554g大豆油 |
3.2∶1 |
SS |
86.5g甘油单油酸酯21.2g聚山梨酯6024.2gGENEROL 1223.27g卤化鲸蜡基吡啶鎓554g大豆油 |
3.2∶1(水中含1%铋) |
上述列出的组合物只是示例性的,本领域技术人员可以通过改变上述组分的量来获得适用于本发明目标的纳米乳液组合物。本领域技术人员能够理解油相对水的比例以及对单个油类载体、表面活性剂CPC和有机磷酸盐缓冲剂的比例,及对油类对每一组合物中组分的比例都可以是不同的。
尽管某些组合物,包括BCTP其水对油的比例为4∶1,我们应当理解制备BCTP时可以使用更多或者更受的水相。例如,在一些实施方案中,水相对油相的比例是3、4、5、6、7、8、9、10或更多。这对于W808P制剂也是一样的。
同样的,正磷酸三丁酯∶TRITON X-100∶大豆油的比例也是可以改变的。
尽管表1列出了特定量的,用于制备W808P的聚山梨醇酯60、GENEROL 122、氯化鲸蜡基吡啶鎓和载体油类,这些都仅仅是示例性的。可以使用浓度与之不同的组分或者能得到相同效果但却与之不同的组分制出具有W808P性质的乳液。例如乳液的最初油相中可含有大约80-100g之间的甘油单油酸酯。在其它实施方案中,乳液的最初油相中可含有大约15至30g的聚山梨醇酯60.在另一个实施方案中,组合物的最初油相中可含有约20-30g之间的GENEROL固醇。
本发明乳液的某种实施方案的纳米乳液在其杀生物活性中起一定的作用,而且也是乳液不含毒性的一个原因。例如BCTP中的活性组分,TRITON-X100在与11%BCTP等价的浓度时,显示出微弱的抗生物活性。向洗涤剂和溶剂中加入油相能显著的降低相同浓度的这些试剂对组织培养物的毒性。当不限于任何理论时,(对该机理的理解对于实践本发明并不是必须的,且本发明不局限于任一特定机理),该现象表明纳米乳液能增强组分与病原体的相互作用,因此能促进病原体的灭活及降低单一组分的毒性。我们必须注意到,当所用的BCTP中所有的组分结合成一个组合物但是却非纳米乳液结构时,该混合物的抗微生物活性不及纳米乳液结构的有效。
使用相似组合物的一组制剂的其他实施方案将在下文叙述。作为抗病材料使用的多种所述组合物的效果在图31中所示。下述组合物使用了不同组分比例和其不同的混合物。本领域技术人员能够领会以下描述的制剂示示例性的,且含有相同比例所述组分的其他的组合物也属于本发明的范围。
在本发明某些实施方案中,所公开的制剂中含有约3-8%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)的氯化鲸蜡基吡啶鎓(CPC),约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油),约15-25%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS),在一些制剂中含有少于约1%(体积)的1N的NaOH。一些实施方案中含有PBS。在某些实施方案中加入1N的NaOH和/或PBS使得操作者能够方便的控制制剂的pH值,如此使得pH范围为约7.0至约9.0,更优选为约7.1-8.5.例如,在本发明的一项实施方案中,含有约3%(体积)的TYLOXAPOL,约8%体积的乙醇,约1%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约24%(体积)的DiH2O(在此称为Y3EC)。另一实施方案中含有约3.5%体积的TYLOXAPOL,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约23.5%(体积)的DiH2O(此处称为Y3.5EC)。还有在另一实施方案中,含有约3%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)的CPC,约0.067%(体积)1N的NaOH,如此该制剂的pH可以达到约7.1,及约64%(体积)的大豆油,约23.93%(体积)DiH2O(此处称作Y3EC pH 7.1)。还又的实施方案中含有约3%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)CPC,约0.67%(体积)1N的NaOH,如此制剂的pH可达到约8.5,及约64%(体积)大豆油,约23.33%体积DiH2O(此处称作Y3ECpH 8.5)。另一相似的实施方案中含有约4%TYLOXAPOL,约8%(体积)乙醇,约1%CPC,及约64%(体积)大豆油,约23%(体积)DiH2O(此处称作Y4EC)。在另一实施方案中,制剂含有约8%TYLOXAPOL,约8%乙醇,约1%(体积)CPC,及约64%(体积)大豆油,约19%(体积)DiH2O(此处称作Y8EC)。一项进一步的实施方案中含有约8%(体积)TYLOXAPOL,约8%(体积)乙醇,约1%(体积)CPC,约64%(体积)大豆油,及约19%(体积)lx PBS(此处称作Y8EC PBS)。
在本发明的一些实施方案中,新制剂含有约8%(体积)乙醇,和约1%(体积)CPC,和约64%(体积)的油类(例如,大豆油),和约27%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)(此处称作EC)。
在本发明中,一些实施方案含有约8%(体积)十二磺(月桂基)基硫酸钠(SDS),约8%(体积)磷酸三丁酯(TBP),和约64%(体积)的油类(例如,大豆油),和约20%(体积)的水相(例如DiH2O或PBS)(此处称作S8P)。
在本发明的某些实施方案中,新制剂含有约1-2%(体积)TRITONX-100,约1-2%(体积)TYLOXAPOL,约7-8%(体积)乙醇,约1%(体积)氯化鲸蜡基吡啶鎓(CPC),约64-57.6%(体积)油类(例如,大豆油)和约23%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。另外,一些这样的制剂还含有约5mM的L丙氨酸/肌苷,和约10mM氯化铵。一些此类制剂含有PBS。我们注意到,在一些实施方案中加入PBS,使得操作者能便利的控制制剂的pH值。例如本发明的一个实施方案中含有约2%(体积)TRITON X-100,约2%(体积)TYLOXAPOL,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)CPC,约64%(体积)的大豆油,和约23%(体积)的DiH2O水相。另一实施方案的制剂含有约1.8%(体积)TRITON X-100,约1.8%(体积)TYLOXAPOL,约7.2%(体积)乙醇,约0.9%(体积)CPC,约5mM L-丙氨酸/肌苷,和约10mM氯化铵,约57.6%(体积)大豆油,还有lxPBS(此处称作90%X2Y2EC/GE)。
在本发明可替换的另一实施方案中,制剂含有约5%(体积)TWEEN80,约8%(体积)乙醇,约1%(体积)CPC,约64%(体积)的油类(例如,大豆油),和约22%(体积)DiH2O(此处称作W805EC)。
在本发明的另一实施方案中,制剂含有约5%(体积)TWEEN 20,约8%(体积)乙醇,约1%(体积)CPC,约64%(体积)的油类(例如,大豆油),和约22%(体积)DiH2O(此处称作W205EC)。
在本发明另一实施方案中,所述制剂含有约2-8%(体积)的TRITONX-100,约8%(体积)的乙醇,约1%(体积)CPC,约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-25%(体积)水相(例如,DiH2O或PBS)。例如,本发明优选制剂含有约2%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约26%(体积)DiH2O(此处称作X2E)。在另一相似的实施方案中,所述制剂含有约3%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约25%(体积)DiH2O(此处称作X3E)。在进一步的实施方案中,所述制剂含有约4%(体积)TRITONX-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约24%(体积)DiH2O(此处称作X4E)。在另一实施方案中,所述制剂含有约5%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约23%(体积)DiH2O(此处称作X5E)。本发明的另一实施方案中含有约6%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约22%(体积)DiH2O(此处称作X6E)。本发明进一步的实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)大豆油,和约20%(体积)DiH2O(此处称作X8E)。本发明进一步的实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)TRITON X-100,约8%体积的乙醇,约64%(体积)的橄榄油,和约20%(体积)DiH2O(此处称作X8E O)。在另一实施方案中,含有8%(体积)TRITON X-100,约8%(体积)乙醇,约1%(体积)CPC,约64%(体积)大豆油,和约19%(体积)DiH2O(此处称作X8EC)。
在本发明另一可替代的实施方案中,所述制剂含有约1-2%(体积)的TRITON X-100,约1-2%(体积)TYLOXAPOL,约6-8%(体积)TBP,约0.5-1.0%(体积)CPC,约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油),和约1-35%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。另外,某些制剂还可含有约1-5%(体积)的胰胨豆胨培养液,约0.5-1.5%(体积)酵母提取物,约5mM L丙氨酸/肌苷,约10mM氯化铵,和约20-40%(体积)液态婴儿制剂。在某些实施方案中含有液态婴儿用制剂,该制剂含有一种酪蛋白水解产物(例如,Neutramigen或Progestimil等等)。在一些实施方案,新制剂还含有约0.1-1.0%(体积)的硫代硫酸钠,和约0.1-1.0%(体积)的柠檬酸钠。其他相似的实施方案中含有使用磷酸酯缓冲的盐水(PBS)作为水相的碱性组分。例如一种实施方案中含有约2%(体积)的TRITON X-100,约2%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)TBP,约1%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,约23%(体积)的DiH2O(此处称作X2Y2EC)。在其它实施方案中,新制剂含有约2%(体积)TRITONX-100,约2%(体积)TYLOXAPOL,约8%(体积)TBP,约1%(体积)CPC,约0.9%(体积)的硫代硫酸钠,约0.1%(体积)的柠檬酸钠,约64%(体积)的大豆油,和约22%(体积)的DiH2O(此处称作X2Y2PC STS1)。在另一相似的实施方案中,所述制剂含有约1.7%(体积)TRITON X-100,约1.7%(体积)TYLOXAPOL,约6.8%(体积)TBP,约0.85%CPC,约29.2%NEUTRAMIGEN,约54.4%(体积)的大豆油,和约4.9%(体积)的DiH2O(此处称作85%X2Y2PC/婴儿用)。在本发明的另一实施方案中,所述制剂含有约1.8%(体积)TRITON X-100,约1.8%(体积)TYLOXAPOL,约7.2%(体积)TBP,约0.9%(体积)的CPC,约5mM L-丙氨酸/肌苷,约10mM氯化铵,约57.6%(体积)的大豆油,还有0.1x%(体积)PBS(此处称作90%X2Y2 PC/GE)。在另一实施方案中,所述制剂含有约1.8%(体积)的TRITON X-100,约1.8%(体积)的TYLOXAPOL,约7.2%(体积)TBP,约0.9%(体积)CPC,和约3%(体积)胰胨豆胨培养液,约57.6%(体积)大豆油,和约27.7%(体积)的DiH2O(此处称作90%X2Y2PC/TSB)。在本发明的另一实施方案中,所述制剂含有约1.8%(体积)TRITON X-100,约1.8%(体积)TYLOXAPOL,约7.2%(体积)TBP,约0.9%(体积)CPC,约1%(体积)酵母提取物,约57.6%(体积)大豆油,和约29.7%(体积)DiH2O(此处称作90%X2Y2PC/YE)。
在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约3%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)的TBP,和约1%(体积)的CPC,约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-30%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。在本发明特定的一项实施方案中,所述新制剂含有约3%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)的TBP,和约1%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约24%(体积)的DiH2O(此处称作Y3PC)。
在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约4-8%(体积)的TRITON X-100,约5-8%(体积)的TBP,约30-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约0-30%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。另外,某些实施方案还含有约1%(体积)的CPC,约1%(体积)苄烷氯铵,约1%(体积)溴化鲸蜡基吡啶鎓,约1%(体积)溴化鲸蜡基二甲基乙铵,500μM EDTA,约10mM氯化铵,约5mM肌苷,和约5mM L-丙氨酸。例如,在某些实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITONX-100,约8%(体积)的TBP,约64%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作X8P)。在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约1%的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约19%(体积)的DiH2O(此处称作X8PC)。在另一实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约1%(体积)的CPC,约50%(体积)的大豆油,和约33%(体积)的DiH2O(此处称作ATB-X1001)。在另一个实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约2%(体积)的CPC,约50%(体积)的大豆油,和约32%(体积)的DiH2O(此处称作ATB-X002)。在本发明的另一个实施方案中含有约4%(体积)TRITONX-100,约4%(体积)的TBP,约0.5%(体积)的CPC,约32%(体积)的大豆油,和约59.5%(体积)的DiH2O(此处称作50%X8PC)。在另一相关的实施方案中含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8体积%的TBP,约0.5%(体积)CPC,约64%(体积)的大豆油,和约19.5%(体积)的DiH2O(此处称作X8PCI1/2)。在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约8体积%的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约2%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约18%(体积)的DiH2O(此处称作X8PC2)。在其它实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%的TBP,约1%苄烷氯铵,约50%(体积)的大豆油,和约33%(体积)的DiH2O(此处称作X8P BC)。在本发明一项可选择的实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约1%(体积)溴化鲸蜡基吡啶鎓,约50%(体积)的大豆油,和约33%(体积)的DiH2O(此处称作X8P CPB)。在本发明另一项示例性的实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约1%(体积)的溴化鲸蜡基二甲基乙铵,约50%(体积)的大豆油,和约33%(体积)的DiH2O(此处称作X8P CTAB)。在进一步的实施方案中,本发明含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的TBP,约1%(体积)的CPC,约500μM的EDTA,约64%(体积)的大豆油,和约15.8%(体积)DiH2O(此处称作X8PC EDTA)。在其他相似的实施方案中含有8%(体积)的TRITONX-100,约8%(体积)的TBP,约1%(体积)的CPC,约10mM氯化铵,约5mM肌苷,约5mM L-丙氨酸,约64%(体积)的大豆油,和约19%(体积)的DiH2O或PBS(此处称作X8PC GE1x)。在本发明的另一实施方案中,所述新制剂还含有约5%(体积)的TRITON X-100,约5%的TBP,约1%(体积)的CPC,约40%(体积)的大豆油,和约49%(体积)的DiH2O(此处称作X5P5C)。
在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约2%(体积)TRITONX-100,约6%(体积)的TYLOXAPOL,约8%(体积)乙醇,约64%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作X2Y6E)。
本发明另一其他实施方案中,所述制剂含有约8%(体积)的TRITONX-100,和约8%(体积)的甘油,约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-25%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。某些相关的实施方案中还含有约1%(体积)L-抗坏血酸。例如某项特定的实施方案中含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的甘油,约64%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作X8G)。在另一实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约8%(体积)的甘油,约1%(体积)的L-抗坏血酸,约64%(体积)的大豆油,和约19%(体积)的DiH2O(此处称作X8GVc)。
在进一步的实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITONX-100,约0.5-0.8%(体积)的TWEEN 60,约0.5-2.0%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-25%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。例如在某项特定的实施方案中的所述制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约0.70%(体积)的TWEEN 60,约1%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约64%(体积)大豆油,约18.3%(体积)的DiH2O(此处称作X8W60PC1)。另一项相关的实施方案含有约8%(体积)的TRITON X-100,约0.71%(体积)的TWEEN 60,约1%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约64%(体积)的大豆油,和约18.29%(体积)的DiH2O(此处称作W600.7X8PC)。在另一实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的TRITON X-100,约0.7%(体积)TWEEN 60,约0.5%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约64-70%(体积)的大豆油,和约18.8%(体积)的DiH2O(此处称作X8W60PC2)。在另一实施方案中,本发明含有约8%(体积)的TRITON X-100,约0.71%(体积)的TWEEN 60,约2%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约64%(体积)的大豆油,和约17.3%(体积)的DiH2O。在本发明的另一实施方案中,所述制剂含有约0.71%(体积)的TWEEN 60,约1%(体积)的CPC,约8%(体积)的TBP,约64%(体积)的大豆油,和约25.29%(体积)的DiH2O(此处称作W600.7PC)。
在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约2%(体积)磺基琥珀酸二辛酯,约8%(体积)的甘油,或约8%(体积)TBP,此外含有约60-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约20-30%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。例如在本发明的一项实施方案中,含有约2%(体积)磺基琥珀酸二辛酯,约8%(体积)的甘油,约64%(体积)的大豆油,和约26%(体积)的DiH2O(此处称作D2G)。在另一相关的实施方案中,所述新制剂含有约2%(体积)的磺基琥珀酸二辛酯,和约8%(体积)的TBP,约64%(体积)的大豆油,和约26%(体积)的DiH2O(此处称作D2P)。
在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约8-10%(体积)的甘油,和约1-10%(体积)的CPC,约50-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-30%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。另外,在某些实施方案中,组合物中还含有约1%(体积)的L-抗坏血酸。例如某项特定的实施方案中含有约8%(体积)的甘油,约1%(体积)的CPC,约64%(体积)的大豆油,和约27%(体积)的DiH2O(此处称作GC)。其他相关的实施方案含有约10%(体积)的甘油,约10%(体积)的CPC,约60%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作GC10)。在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约10%(体积)的甘油,约1%(体积)的CPC,约1%(体积)的L-抗坏血酸,约64%(体积)的大豆油,和约24%(体积)的DiH2O(此处称作GCVc)。
在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约8-10%(体积)的甘油,约8-10%(体积)的SDS,约50-70%(体积)的油类(例如,大豆油或橄榄油),和约15-30%(体积)的水相(例如,DiH2O或PBS)。另外,在某些实施方案中,组合物还含有约1%(体积)卵磷脂,和约1%(体积)的对-羟基苯甲酸甲酯。所示制剂的示例性的实施方案制剂含有约8%(体积)SDS,8%(体积)的甘油,约64%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作S8G)。一种相关的制剂含有约8%(体积)的甘油,约8%(体积)SDS,约1体积%的卵磷脂,约1%(体积)的对-羟基苯甲酸甲酯,约64%(体积)的大豆油,和约18%(体积)的DiH2O(此处称作S8GL1B1)。
在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约4%(体积)的TWEEN 80,约4%(体积)的TYLOXAPOL,约1%(体积)的CPC,约8%(体积)的乙醇,约64%(体积)的大豆油,和约19%(体积)的DiH2O(此处称作W804Y4EC)。
在本发明的一些实施方案中,所述新制剂含有约0.01%(体积)的CPC,约0.08%(体积)的TYLOXAPOL,约10%(体积)的乙醇,约70%(体积)的大豆油,和约19.91%(体积)的DiH2O(此处称为Y.08EC.01)。
在本发明的另一实施方案中,所述新制剂含有约8%(体积)的十二烷基硫酸钠,和约8%(体积)的甘油,约64%(体积)的大豆油,和约20%(体积)的DiH2O(此处称作SLS8G)。
C.其它制剂
上述特定的制剂仅是简单的作为实施例来说明本发明适用组合物的其他形式。本发明意在表明本发明方法中所述制剂的形式以及其它纳米乳液的多种形式。判断一种乳液是否适宜本发明,必须分析三项标准。按照此处所述的方法和标准,经过简单的测试就能判断选用的乳液是否适用。首先,采用所述方法制备备选组分的乳液,判断这些组分是否能形成一种乳液。如果不能形成乳液,则不能使用这些备选组分。例如,由4.5%硫代硫酸钠,0.5%柠檬酸钠,10%正丁醇,64%大豆油,和21%DiH2O组成的一种备选组合物,就不能形成乳液。
其次,备选乳液必须是稳定的乳液。在足够长的时段中仍能保持其稳定性的乳液是允许使用的。例如,用于贮存或者运输的乳液必须能在数月至数年内保持乳液的形式。一般的乳液相对不稳定些,在一天内就解体了。例如一种由8%1-丁醇,5%Tween 10,1%CPC,64%大豆油,和22%DiH2O组成的备选组合物就不能形成稳定的乳液。以下备选乳液使用所述方法测定的结果都是稳定的:0.08%Triton X-100,0.08%甘油,0.01%氯化鲸蜡基吡啶鎓,99%黄油,和0.83%diH2O(此处称作1%X8GC黄油);0.8%Triton X-100,0.8%甘油,0.1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,6.4%大豆油,1.9%diH2O,和90%黄油(此处称作10%X8GC黄油);2%W205EC,1%Natrosol 250L NF,和97%diH2O(此处称作2%W205ECL凝胶);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%70粘性矿物油,和22%diH2O(此处称作W205EC 70矿物油);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%350粘性矿物油,和22%diH2O(此处称作W205EC 350矿物油)。
再次,备选乳液必须能用于本发明的目的。例如一种抗菌乳液必须能杀灭或者灭活细菌、这种效应必须是能检测到的。如此处所示,本发明的某种乳液具有对抗特定微生物,而非其他微生物的能力。使用所述方法,人们可以判断一种特殊乳液用于对抗特定微生物的适用性。一般来说,此方法涉及在并列试验中,伴随适宜控制样本(例如,一种负面的控制,例如水)将微生物置于乳液长达一段或多时段中,再判断乳液是否杀灭或灭活微生物,及效果到达何种程度。例如,一种由1%氯化铵,5%Tween 20,8%乙醇,64%大豆油,和22%DiH2O组成的备选组合物,就不能成为有效的乳液。以下备选乳液采用所述方法测定是有效的:5%Tween 20,5%氯化鲸蜡基吡啶鎓,10%甘油,60%大豆油,和20%diH2O(此处称作W205GC5);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,10%甘油,64%大豆油,和20%diH2O(此处称作W205GC);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%橄榄油,和22%diH2O(此处称作W205EC橄榄油);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%亚麻油,和22%diH2O(此处称作W205EC亚麻油);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween20,8%乙醇,64%玉米油,和22%diH2O(此处称作W205EC玉米油);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%椰油,和22%diH2O(此处称作W205EC椰油);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%棉籽油,和22%diH2O(此处称作W205EC棉籽油);8%右旋糖,5%Tween10,1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,64%大豆油,和22%diH2O(此处称作W205C右旋糖);8%PEG 200,5%Tween 10,1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,64%大豆油,和22%diH2O(此处称作W205C PEG 200);8%甲醇,5%Tween 10,1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,64%大豆油,和22%diH2O(此处称作W205C甲醇);8%PEG 1000,5%Tween 10,1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,64%大豆油,和22%diH2O(此处称作W205C PEG 1000);2%W205EC,2%Natrosol 250H NF,和96%diH2O(此处称作2%W205EC Natrosol 2,也称为2%W205EC凝胶);2%W205EC,1%Natrosol 250H NF,和97%diH2O(此处称作2%W205ECNatrosol 1);2%W205EC,3%Natrosol 250H NF,和95%diH2O(此处称作2%W205EC Natrosol 3);2%W205EC,0.5%Natrosol 250H NF,和97.5%diH2O(此处称作2%W205EC Natrosol 0.5);2%W205EC,2%MethocelA,和96%diH2O(此处称作2%W205EC Methocel A);2%W205EC,2%Methocel K,和96%diH2O(此处称作2%W205EC Methocel K);2%Natrosol,0.1%X8PC,0.1x PBS,5mM L-丙氨酸,5mM肌苷,10mM氯化铵,和diH2O(此处称作0.1%X8PC/GE+2%Natrosol);2%Natrosol,0.8%Triton X-100,0.8%磷酸三丁酯,6.4%大豆油,0.1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,0.1x PBS,5mM L-丙氨酸,5mM肌苷,10mM氯化铵,和diH2O(此处称作10%X8PC/GE+2%Natrosol);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%Lard,和22%diH2O(此处称作W205ECLard);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%乙醇,64%矿物油,和22%diH2O(此处称作W205EC矿物油);0.1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,2%橙花叔醇,5%Tween 20,10%乙醇,64%大豆油,和18.9%diH2O(此处称作W205EC0.1N);0.1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,2%金合欢醇,5%Tween 20,10%乙醇,64%大豆油,及18.9%dix20(此处称作W205EC0.1F);0.1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,10%乙醇,64%大豆油,和20.9%diH2O(此处称作W205EC0.1);10%氯化鲸蜡基吡啶鎓,8%磷酸三丁酯,8%TritonX-100,54%大豆油,和20%diH2O(此处称作X8PC10);5%氯化鲸蜡基吡啶鎓,8%Triton X-100,8%磷酸三丁酯,59%大豆油,和20%diH2O(此处称作X8PC5);0.02%氯化鲸蜡基吡啶鎓,0.1%Tween 20,10%乙醇,70%大豆油,和19.88%diH2O(此处称作W200.1EC0.02);1%氯化鲸蜡基吡啶鎓,5%Tween 20,8%甘油,64%Mobil 1,和22%diH2O(此处称作W205GCMobil 1);7.2%Triton X-100,7.2%磷酸三丁酯,0.9%氯化鲸蜡基吡啶鎓,57.6%大豆油,0.1x PBS,5mM L-丙氨酸,5mM肌苷,10mM氯化铵,和25.87%diH2O(此处称作90%X8PC/GE);7.2%Triton X-100,7.2%磷酸三丁酯,0.9%氯化鲸蜡基吡啶鎓,57.6%大豆油,1%EDTA,5mML-丙氨酸,5mM肌苷,10mM氯化铵,0.1x PBS,和diH2O(此处称作90%X8PC/GE EDTA);和7.2%Triton X-100,7.2%磷酸三丁酯,0.9%氯化鲸蜡基吡啶鎓,57.6%大豆油,1%硫代硫酸钠,5mM L-丙氨酸,5mM肌苷,10mM氯化铵,0.1x PBS,和diH2O(此处称作90%X8PC/GESTS)。
III.性质及活性
本发明的特定组合物具有有益的活性和性质。示例性的有益活性和特性在下文中详述:A)杀灭微生物及抗微生物活性;B)杀孢子及抗孢子活性;C)杀病毒及抗病毒活性;D)杀真菌及抗真菌活性;和E)体内活性。另外,图31A-C显示了本发明某种示例性制剂的特性。
A.杀微生物及抗微生物活性
本发明的方法可用于快速灭活细菌。在某些实施方案中,所述组合物对灭活革兰氏阳性菌尤其有效。在优选的实施方案中,大约在五到十分钟之后细菌失活。这样,细菌在用本发明乳液培养后,将被以快速及高效的方式灭活。我们希望当细菌与乳液直接相接触的时候,接触与灭活之间的时段能尽量在5-10之内或者更短。然而,应当理解,当本发明乳液用于治疗背景或者全身性的使用时,灭活将在较长的一段时间后发生,该时段包括,但不限于给药后5、10、15、20、25、30、60分钟。进一步的,其他的实施方案中,灭活发生在2、3、4、5或者6小时之后。
在其它实施方案中,本发明的组合物和方法也能灭活某些革兰氏阴性菌。在一些实施方案中,细菌灭活乳液先与能增强乳液和细胞壁间相互作用的化合物预先混合。所述本发明的组合物的增强子的用途将在下文中讨论。我们必须注意到某些乳液,尤其是含有增强子的乳液,对于革兰氏阳性及阴性菌非常有效,且其可以口服给药,使其与肠内细菌接触。
在特定的实施方案中,表明本发明的乳液具有潜在的,选择性的杀生物活性,同时对于无性繁殖细菌具有很小的活性。BCTP对蜡状芽孢杆菌(B.cereus),环状芽孢杆菌(B.circulans)和巨大芽孢杆菌(B.megaterium),产气荚膜杆菌(C.perfringens),流感嗜血菌(H.influenzae),淋病奈瑟氏球菌(N.gonorrhoeae),无乳链球菌(S.agalactiae ),肺炎链球菌(S.pneumonia),化脓链球菌(S.pyogenes)和霍乱弧菌(V.cholerae)classical和Eltor具有很高的活性(图26)。此种针对易感微生物的灭活反应只要接触就发生得非常快,且在15-30分钟之内完成。
图31A显示了本发明的几种示例性的纳米乳液对大肠杆菌的效果
B.杀孢子及抗孢子活性
在某些特定的实施方案中,本发明表明本发明的乳液具有杀孢子活性。不拘泥于任一理论(理解本发明机理对于实施本发明并不必要,且本发明也不限于任一特定机理),我们认为这些乳液的杀孢子活性贯穿于萌发初期,而孢子无需完全转化成易于被乳液破坏的营养型。乳液或其组分的反应可介导萌发的启动。
电子显微镜研究的结果表明,在接受BCTP处置之后,伴随着孢子核内物质的瓦解,孢子膜和皮层破裂。杀孢子活性似乎是由TRITONX-100和正磷酸三丁酯组分介导的,因为不含这些组分的纳米乳液没有体内活性。乳液的这项独特的活性(与1%漂白剂的效果相似)很吸引人,因为细菌孢子通常能抵抗大多数的消毒剂,包括多种常用的洗涤剂(Russell,临床微生物3;99[1990])。
本发明证实将BCTP和蜡状芽孢杆菌孢子混合后再向小鼠注射,能预防蜡状芽孢杆菌的病理效应的产生。进一步的,本发明表明使用BCTP处置被蜡状芽孢杆菌孢子感染的模拟创伤,能显著的降低小鼠感染的危险及降低死亡率。用BCTP1∶10稀释后注射的动物没有反映出任何感染的结果,该效果证明BCTP对小鼠没有皮肤毒性。这些结果表明在孢子暴露前后快速的孢子处置能有效的降低试验性皮肤感染中的组织损害的严重度。
在本发明过程中的其他的试验比较了BCTP和其它BCTP衍生乳液对不同的杆菌孢子的灭活效果。BCTP稀释至最高1∶1000(v/v)能在四小时内灭活超过90%的炭疽杆菌孢子,还能杀死三种杆菌的孢子,同时清楚可见破碎的孢子膜。X8W60PC稀释至1∶1000对炭疽杆菌、蜡状芽孢杆菌和枯草芽孢杆菌具有更高的杀孢子的活性,且不到30分钟即能起效。将BCTP与蜡状芽孢杆菌混合后对小鼠进行皮下注射,或者,小鼠皮肤用孢子接种后用BCTP冲洗伤口1小时,结果是98%的皮肤损伤范围得到恢复(治愈)。在近期的试验中,死亡率减少了4倍。与其他使用的杀孢子试剂相比,所述组合物稳定、易于分散、无刺激且无毒。
本发明的方法中使用的细菌-灭活水包油乳液可通过与其接触以灭活一系列细菌和细菌孢子。例如,新乳液可用于灭活杆菌、包括:蜡状芽孢杆菌、环状芽孢杆菌和巨大芽孢杆菌、还包括梭状芽孢杆菌(例如,肉毒梭菌和破伤风梭菌)。本发明的方法可尤其用于灭活某种生化武器(例如,炭疽杆菌)。另外,还发现本发明所述制剂可用于对抗产气荚膜杆菌、流感嗜血菌、淋病奈瑟氏球菌、无乳链球菌、肺炎链球菌、化脓链球菌和霍乱弧菌classical和Eltor(图26)。
BCTP含有TRITON X-100,SS和W808P含有TWEEN 60,NN含有壬苯醇醚-9表面活性剂。每一项都是非离子表面活性剂,但是化学和生物学特性却各不相同。壬苯醇醚-9具有强的杀***活性,其广泛用作***用避孕产品的组分(Lee,1996)。有人宣称它对包膜病毒具有杀病毒效果(Hermonat等,1992;Zeitlin等,1997)。然而,壬苯醇醚-9未显示对非包膜病毒有效(Hermonat等,1992)。
图31B显示了本发明的一组示例性纳米乳液对枯草芽孢杆菌孢子的效果。
C.杀病毒和抗病毒活性
在其他实施方案中,已被证明,本发明的纳米乳液组合物具有抗病毒性质。乳液对病毒试剂的效果使用斑点数降低测定法(PRA)、细胞酶联免疫吸着测定法(ELISA)、β-半乳糖甙酶测定法和电子显微镜(EM)进行检测,细胞毒性脂质制剂的细胞毒性使用(4,5-二甲噻唑-2-基)-2,5二苯基四唑(MTT)染色法测定(Mosmann 1983)。
通过细胞ELISA试验测定以及由PRA试验作后续的确认,显示MDCK细胞的A型流感传染性显著的降低。BCTP和SS在1∶10的稀释下降低病毒感染为95%以上。其他两种乳液在1∶10的稀释下降低病毒感染约40%,显示其只有前者一半的效果。BCTP是最具潜力的制剂,即使稀释到1∶100,其杀病毒的能力丝毫没有减弱。动力学研究表明病毒与1∶10稀释的BCTP共存5分钟,便完全失去了感染力。TRITON X-100,是BCTP的活性化合物,当其稀释至1∶5000时,与BCTP相比,只能部分的抑制病毒的感染力,这表明纳米乳液其本身就具有抗病毒能力。为了进一步检测BCTP的抗病毒性质,研究其对非-包膜病毒的活性。β-半乳糖甙酶测定法检测结果显示,BCTP处置并不能影响293细胞中lacZ腺病毒构造的复制。当用EM检测时,A型流感病毒在用BCTP培养后被完全的破坏而腺病毒保存完好。
另外病毒用10%及1%的BCTP在PBS中预先浸润,疱疹病毒、仙台病毒、新培斯病毒和牛痘病毒被完全的消除,该结果通过斑点数降低测定法(图27)测定。时间过程的分析显示灭活作用快速且完全的发生在用10%BCTP培养的5分钟内、1%BCTP培养的30分钟内。用不同稀释度的BCTP处置腺病毒,病毒的感染力没有任何下降。
某些以BCTP为基础的组合物对抗各种病毒感染的效果及其对粘性膜的微弱毒性证明了其有可能用作有效预防包膜病毒感染所引起疾病的消毒剂及试剂。
图31C显示一组本发明示例性纳米乳液对抗A型流感病毒的效果。
D.杀真菌和抗真菌活性
本发明的纳米乳液的另一性质是其具有抗真菌活性。真菌感染的普通试剂包括多种念珠菌和曲霉属及其各种类型,还包括其他试剂。外部真菌感染相对轻微,体内真菌感染可引起严重的医疗结果。人体真菌感染的发生率在上升,这部分归结为缺损免疫***病人数量的的增加。真菌疾病,尤其是体内真菌疾病,对缺损免疫***的病人具有生命威胁。
本发明研究过程中实施的试验表明:1%BCTP应用于白色念珠菌时,其具有大于92%的抗真菌活性。念珠菌以每晚37oC的速度生长。然后将细胞清洗后用血球计数器计数。已知数量的细胞用不同浓度的BCTP混合后培养24小时。念珠菌在右旋糖琼脂上生长,培养一夜,然后计算菌落。BCTP的抗真菌效果用以下公式判断:
本领域技术人员能将本发明所述制剂制成适合真菌疾病的治疗的制剂。本发明的纳米乳液find use in对抗感染例如足癣、念珠菌病和其他急性或体内真菌感染。
E.体内效果
动物研究证实了本发明组合物和方法的保护效果和治疗效果。试验动物蜡状芽孢杆菌感染用于事先提供研究炭疽的一种模型***(参见例如,Burdon和Wende,感染疾病杂质170(2):272[1960];Lamanna和Jones,细菌杂质85:532[1963];和Burdon等感染疾病杂质117:307[1967])。动物实验性蜡状芽孢杆菌感染诱发的疾病综合症与炭疽相似(Drobniewski,临床微生物研究6:324[1993];和Fritz等,实验室研究73:691[1995])。本发明研究过程中实施的试验证实混合BCTP与蜡状芽孢杆菌孢子后想小鼠注射,能预防蜡状芽孢杆菌的致病效果。进一步的,我们证实了BCTP处置蜡状芽孢杆菌孢子感染的模拟伤口显著的降低小鼠感染的危险和其死亡率。用1∶10稀释的BCTP单独注射的试验动物没有显示任何的炎症迹象,这表明BCTP对小鼠没有皮肤毒性。这些结果表明:在(感染)暴露前后迅速的进行孢子处置能有效的在试验性皮肤感染中降低组织损伤的危险性。
在已特定的实施例中,几内亚猪作为试验动物以研究产气荚膜杆菌感染。制作1.5cm的皮肤伤口,弄碎皮下肌肉且用5×107cfu的产气荚膜杆菌造成感染,不施用其他的处置。另一组则先用相同数量的细菌造成感染,1小时后用盐水或者或BCTP冲洗以模拟post-exposure净化。使用盐水冲洗实验性的感染创伤没有产生任何明显的益处。然而,用BCTP冲洗产气荚膜杆菌感染引起的创伤显示出能显著的减少水肿、炎症反应炎症反应和坏死。如此证明了本发明的某些制剂能用于对抗细菌感染。
进一步的,一种10%BCTP的皮下注射剂不会引起试验动物的不适且不会产生组织学上的组织损伤。在口服毒性试验中的所有大鼠的体重在研究期间都有所增加。我们没有发现大鼠有不良的临床迹象,且所有的组织经检查都在正常范围内。从试验动物粪便中获得的细菌培养物与那些未经处理的(正常的)动物相比没有显著的不同。
IV.示例性的使用
以下详细叙述的时一组示例性的本发明组合物的使用方法:A)药物和疗法;B)净化和灭菌;C)制备食物;和D)器具,以及E)改进、制备和引用本发明组合物的方式方法的说明
A.药物和疗法
本发明的制剂可用于药物和治疗组合物,还适用于对抗和/或处置微生物引起的感染。所述组合物可用于降低感染、杀灭微生物、抑制微生物生长或者用于消除微生物感染导致的不良效果。
用于体内时,组合物能以任何有效的药学可接受的形式向恒温动物,包括人类和动物对象给药。一般来说,这些制备的组合物基本上不含其他对人或者动物有害的热原和杂质。
药学可接受形式的特定例子包括但不仅限于口服、鼻部、颊腔颊腔,直肠,***、局部或鼻喷或其他能有效的向微生物感染的部位施用本发明组合物的任一形式。在优选的实施方案中,给药路径设计成组合物与感染性微生物直接接触的形式。在其它实施方案中,可通过正位、真皮内的、皮下、肌内或腹腔内注射给药。组合物也可通过非肠道或腹腔内向对象给药。所述组合物可作为药学可接受的组合物给药。只有当任一常用的药学可接受的介质或试剂不能与本发明的乳液相容时,这些特定实施方案中公开的药学可接受介质及制剂的应用需要仔细的研究。在其它的实施方案中,也可以在组合物中同时使用具有其他活性的成分。
局部给药时,药学可接受的载体可以是液体、霜剂、泡沫剂、洗剂或凝胶,也可附加的含有有机溶剂、乳化剂、凝胶剂、增湿剂、稳定剂、表面活性剂、增湿剂、防腐剂、时控释放剂(time release agents)及少量的湿润剂、螯合剂、着色剂、香料及其他常用于局部药物组合物的组分。
乳液制成口服或局部给药的药片和制剂形式包括液体胶囊和栓剂。制备用于口服给药的固体制剂,组合物可以与一种或多种基本无活性的稀释剂(例如,蔗糖、乳糖或淀粉,等等)混合,还可以附加的含有润滑剂、缓冲剂、肠溶衣及其他本领域技术人员熟知的组分。
在本发明的另一实施方案中,本发明组合物可以特定的设计成体外使用的方式,例如医用消毒或灭菌仪器和装置、隐形眼镜等等,尤其当装置或者眼镜本身被病患或者佩带者使用。例如,在药物和外科装置及用品与对象接触之前,可用该组合物清除净化上述物件。另外,该组合物还可用于术后,或在任一侵害过程发生后,辅助降低术后感染的发生率。在特别优选的实施方案中,该组合物还可以采用保守或者有效的免疫学防御手段向对象施以药物(例如,老年和幼儿患者,烧伤和外伤患者,及感染HIV的患者等等)。当组合物用于这些类型的用途时,它可以方便的制成液体、泡沫剂、贴剂或凝胶的形式,也可以与乳化剂、表面活性剂、缓冲剂、湿润剂、防腐剂、金属离子、抗生素和其它该类型中常见的组分共同使用。
在其它实施方案中,组合物可填充入吸收性材料中,例如缝合线、绷带、和纱布,或者包在固体材料的表面,例如外科钉针,拉链和导管的表面,用以将组合物传输到防止微生物感染的部位。其他的此类型的传输***对于本领域技术人员来说都是显而易见的。
在另一个实施方案中,组合物可用于个人护理业中,如除臭剂,肥皂,粉刺/真菌治疗剂,口臭治疗剂、***酵母菌感染治疗剂等等。组合物还可用于其他的内部和外部微生物引起的感染(例如,流感,H.simplex等)。在这些用途中,乳液的制备可含有上文所述的治疗载体。
在某些实施方案中,本发明抗菌组合物和方法还包含一组联合疗法。例如单一的抗微生物制剂抑制微生物的效果弱于多种试剂互相联合应用的效果。这样能有利于避免多种药物耐药性带来的问题。这在具有药物传输器以介导药物从器官中射流的细菌中也非常通用。本发明进一步的阐述本发明及组合物在联合疗法中的应用。
可用于治疗细菌、真菌和病毒感染的抗微生物试剂的数量非常巨大。关于所述药物及其作用机理的理解性论文,本领域技术人员可参考Goodman&Gilman的《治疗学的药理学基础》。Hardman等,第9版,Pub.McGraw Hill,43-50章,1996,(此处以其整体形式合并作为参考)。通常,这些试剂中包括抑制细胞壁合成的试剂(例如,青霉素、头孢菌素、环丝氨酸,万古霉素、杆菌肽)及咪唑抗真菌试剂(例如,咪康唑、酮康唑和克霉唑);直接破坏微生物细胞膜的试剂(例如,洗涤剂例如多粘菌素和colistimethate和抗真菌制霉菌素和两性霉素B);影响核蛋白体亚单元以抑制蛋白质合成的的试剂(例如,氯霉素、四环素、erthromycin和克林霉素);改变蛋白质合成及导致细胞死亡的试剂(例如,氨基甙类物质);影响核酸代谢的试剂(例如,利福霉素和喹诺酮);抗代谢试剂(例如,三甲氧苄二氨嘧啶和磺胺类药物);和核酸类似物,例如叠氮胸苷、丙氧鸟苷、阿糖腺苷和阿昔洛伟,这些物质抑制病毒DNA合成所必须的酶。可以采用不同种类的抗菌剂的多种结合。
可以改变组合物和任一组合物中的促进剂的真实剂量用以以在治疗点获得有效量的杀灭营养型、芽孢型微生物及中和毒性产物的剂量的乳液和促进剂。事实上,可选择的剂量依赖于本身和治疗点、所期望的反应、所期望生物反应的持续时间及其他的因素。通常,本发明的乳液可在每毫升液体组合物中含有至少0.001%至100%,优选0.01至90%,的乳液。可以预见,病毒感染可以使用每毫升液体组合物含约0.01%到100%之间浓度的乳液进行治疗。细菌感染可使用每毫升液体组合物含约0.001%至约100%浓度的的乳液进行治疗。孢子可用每毫升液体组合物含约0.001%至约100%的乳液的乳液杀灭。这些仅仅是示例性的范围。可以预见,所述制剂的每毫升液体组合物可含有约0.001%,约0.0025%,约0.005%,约0.0075%,约0.01%,约0.025%,约0.05%,约0.075%,约0.1%,约0.25%,约0.5%,约1.0%,约2.5%,约5%,约7.5%,约10%,约12.5%,约15%,约20%,约25%,约30%,约35%,约40%,约50%,约55%,约60%,约65%,约70%,约75%,约80%,约85%,约90%,约95%或约100%的乳液。应当理解,上述两个数值之间的范围是包含在本发明特定的步长和范围中的。而根据处置对象的状况所作的某些剂量的改变是必须的。
负责给药的人,在任何情况下,必须判断个体对象给药的大致剂量。此外,在向人类给药时,制剂必须符合如FDA生物制剂标准所要求的无菌、无热原、常规安全性和纯度标准。
B.净化和除菌
一般来说,本发明的组合物和方法可用于环境净化装置和用于军事及恐怖袭击中的受伤的治疗。对多种病原体,包括营养型细菌和包膜病毒(参见例如,Chatlyyne等,《一种对HIV-1和其他常见病毒具有有效杀病毒活性的乳液》,逆转录病毒和人类健康的基础,关于逆转录和机会感染的第三次会议,华盛顿特区,美国[1996])及细菌孢子的灭活,结合在试验动物中表现的低毒性,使得该乳液适宜用作常用的净化剂(在对某病原体作出判断之前)。优选的本发明的组合物迅速大量的生产,且在较宽的温度下稳定数月。这些特性提供了一种使其能广泛用于净化应用的适应性。
例如本发明的某些制剂对于破坏多种细菌孢子生化武器种的试剂特别的有效。由此可见,本发明的组合物和方法可有效用于净化被生化武器污染的个人或者材料。本发明组合物的溶液可直接从地面向受污染的材料或者个人喷洒,也可以使用空中喷洒***。在某些方面的应用中,本发明有效量的组合物在净化时与污染材料或者个人相接触。另外可替换的,个人净化工具可装备于有可能被生化武器污染的军事或者民用装置。
广谱病原体,包括营养型细菌和包膜病毒(参见例如,Chatlyyne等,《一种对HIV-1和其他常见病毒具有有效杀病毒活性的乳液》,逆转录病毒和人类健康的基础,关于逆转录和机会感染的第三次会议,华盛顿特区,美国[1996])和细菌孢子(参见例如,Hamouda等,感染疾病杂志180:1939[1999])结合低毒性的(对动物)灭活,舍得本发明组合物特别适用于,在对一种特定的病原体作出判断之前,作为净化试剂使用。
因此,本发明的某些实施方案特别提出,可使用本发明组合物用作净化土壤、机械、车辆和其他设备,及可能被不期望的病原体感染的水道的消毒剂和洗涤剂。所述净化操作涉及简单的以液体喷雾剂形式的应用,或者涉及更为严格的操作制度。同样的,该乳液可用于治疗不同植物病毒的疹(代替常规抗生素或与之共同使用)。
在用于土壤或者设备的净化之外,所述制剂还可用于制备以常规消毒为目的的家用洗涤剂。此外,本发明的一些实施方案可用于防止食物被细菌和真菌污染(例如,无毒组合物)。该操作可在食品制备过程中进行,或将组合物作为食品添加剂、消毒剂或防腐剂另外的加入食品中。
新乳液优选用于固体的硬质表面。相应的,上述组分与一种或多种水性载体液混合。水性载体的选择并不严格。然而,它必须时安全的,与本发明乳液在化学上是相容的乳液。在一些实施方案中,水性载体液中含有常用于硬质表面清洁组合物的溶剂。所述溶剂必须与新乳液相容且在乳液pH下化学稳定。其必须还具有优良的成膜/剩余性质。用于硬质表面清洗的溶剂在,例如美国专利号5,108,660中有所记载,此处以其整体形式合并作为参考。
在优选的实施方案中,水性载体是水或醇、水可混容的混合物。醇可用于调节组合物的粘度。在一些实施方案中,醇优选C2-C4的醇类。在特别优选的实施方案中,使用的是乙醇。例如在一优选的实施方案中,水性载体液是水或一种含约0至约50%乙醇的水-乙醇混合物。本发明同时还包括非液体的组合物。这些非液体的组合物可以是颗粒、粉末或凝胶形式的,优选为颗粒形式。
任选的,一些组合物含有增进清洗能力及美观的辅料,条件是其不影响新乳液的活性。组合物可任选的含有一种无活性的辅料表面活性剂。可任选的使用多种的有机类、水-溶性的表面活性剂。辅料表面活性剂的选择依赖于组合物的使用目的的要求和表面活性剂商业的可利用性。其他任选的添加剂,例如香料,增亮剂、酶、着色剂等等可用于组合物中以增加美观和/或清洗性能。洗涤组分液可用于组合物中。洗涤组分能螯合可与辅料表面活性剂或辅助表面活性剂相结合且降低效果的钙和镁硬度离子。洗涤及组分在含有辅料表面活性剂或辅助表面活性剂时尤其的有用,而且当组合物在使用前用特别硬的水(例如,超过约12grains/加仑)稀释时,洗涤组分更为有用。
在其它实施方案中,所述组合物进一步的含有,泡沫消除剂。在这些实施方案,组合物优选含有足够量的泡沫消除剂以预防当组合物与硬质表面接触时产生的过量的泡沫。泡沫消除剂尤其在制剂中用于组合物免洗用途。泡沫消除剂可用熟知及传统的方法得到。泡沫消除剂根据其组合物制备的能力,及组合物残余及清洗情况进行选择。泡沫消除剂必须与组合物中的组分是化学可容的,其在所述pH范围那是有效的,且不能在清洗过的表面留下可见的残余物。低泡沫辅助表面活性剂可作为泡沫消除剂使用以介导组合物的泡沫性质。辅助表面活性剂的浓度在约1份到约3%之间是比较充足的。
在此可使用的适宜的辅助表面活性剂的离子包括块状共聚物(如PLURONIC和TETRONIC凝胶[聚(乙烯氧基)-b-聚(丙二醇氧基)-b-聚(乙烯氧基)聚合物凝胶,BASF公司,Parispany,NJ])及烷基化物(例如,羟乙基化物/丙氧基化物)伯醇和仲醇(例如,TERIGTOL[UnionCarbide,Danbury,CT];POLY-TERGENTO[Olin公司,Nowalk,CT])。任选的泡沫消除剂优选含有一种硅树脂基材料。这些材料很低的浓度即可有效的作为泡沫消除剂使用。在的浓度下,此硅树脂基泡沫消除剂不易影响组合物的清洗效果。适宜的硅树脂基的泡沫消除剂的使用实例是Dow Corning DSE。该任选的,但是优选的硅树脂基的泡沫消除剂可用熟知及传统方法结合到所述组合物中。
在其它实施方案中,组合物可由健康护理工作者使用,或由任何接触微生物感染的人或者区域的人使用,用于满足健康安全和净化的需要。另外,本发明乳液可制成喷雾剂用于医院和家庭使用,例如清洁及消毒医学装置和病房、家用器具、厨房和浴室表面等。在相同的实施方案中,当环卫及环境服务工人、食品处理和农业工人及实验室人员有可能与感染性生物试剂接触时使用该组合物。另外,组合物可在旅行者及有可能接触隐藏感染物质和致病试剂的人上使用。
C.食品的制备
本发明此处记载的某些组合物也可用于食品的加工和制备工业,以预防和处置由生长于食品中的细菌、真菌和毒素导致的食品污染。因此,所述组合物可用于降低或抑制微生物的生长或者消除微生物污染食品的有害结果。为了实施这些应用,该乳液组合物以食品工业可接受的形式使用,例如添加剂、防腐剂或调味剂。
术语“食品工业可接受的”是指当被人或动物口服时基本上不产生负反应或过敏反应的组合物。正如此处所指的,“食品工业介质中可接受的”包括任一及所有溶剂、分散物质、任一及所有香料和草药及其提取物。除了任一常用添加剂之外,防腐剂和调味剂与本发明的乳液是不相容的,它们用于预防或者处置食物中生长的微生物和它们的毒性产物。追加的活性成分也可合用加入组合物中。在用于这些应用时,可接受的载体可以形成液体、霜剂、泡沫剂且可以附加的含有溶剂、乳化剂、凝胶剂、增湿剂、稳定剂、湿润剂、防腐剂、螯合剂、着色剂、香料和其他常用于食品加工业中的组分。
在本发明的另一实施方案中,组合物可特别设计成用于例如消毒或灭菌食品工业装置、设备及食品操作、包装合储藏区域所用。为实施此类应用,组合物可便利的以液体或泡沫的形式使用,且可以与乳化剂、表面活性剂、缓冲剂、湿润剂、防腐剂和其他此类组合物中常见的组分一起使用。在一些实施方案中,组合物在运输产品或者农业产品期间或之前用于这些货物上。本发明的组合物可以充入到吸收性材料中,其通常用于包装材料中以防止食物在运输合储存中被污染(例如,卡纸板或纸包装)。其他此类型的传输***都是为本领域技术人员所显而易见的。
本发明组合物中乳液合增强剂的确切的量可以改变,从而得到适宜浓度的乳液及增强剂以有效的预防或抑制由食物中生长的微生物及其毒素感染造成的食物污染。相应的,浓度的选择根据食品的性质、包装、储存方式和其他因素而决定。通常的,本发明乳液组合物可在液体组合物中含有至少0.001%至约90%的乳液。可以想见,所述制剂每毫升液体组合物中可含有约0.001%,约0.0025%,约0.005%,约0.0075%,约0.01%,约0.025%,约0.05%,约0.075%,约0.1%,约0.25%,约0.5%,约1.0%,约2.5%,约5%,约7.5%,约10%,约12.5%,约15%,约20%,约25%,约30%,约35%,约40%,约50%,约55%,约60%,约65%,约70%,约75%,约80%,约85%,约90%,约95%或约100%的乳液。应当理解,上述在任意两数字之间的范围是特定的范围,其属于本发明步长及范围之内的。
在特定的实施方案中,乳液可用作消毒剂和洗涤剂以净化和预防食品、土壤、水、机械及其他设备和动物的微生物感染。
本发明乳液可用于食品工业以防止污染。例如在食品中含有该乳液可以有效的杀灭可偶然导致肉类或家禽污染的细菌。这样还允许食品业使用一种潜在的广谱(抗菌)食品以降低成本。
本发明的某些实施方案也可用于饮料工业。例如新乳液可加入到汁液产品中以预防某种真菌的生长,该生长引起污染及导致霉菌毒素产生的,对消费者是很危险的。通过加入少量的本发明乳液,可以预防果汁中最普通的真菌污染。只需乳液的万分之一(不会改变果汁的味道及其组分的量)即可达到该效果。
新乳液可用于基本去除机械及其他设备上传染性试剂的。例如乳液可用于除去肉加工植物(车间),尤其是有机物,例如单核细胞增生李斯特菌,该应用通过在连续的基低上用乳液清除屠宰场或食品包装设备进行。
负责给药的人员,在任何情况下,判断作为个体使用的适宜剂量。此外,所述应用必须符合FDA要求的通常的安全性和纯度标准。
D.试剂盒
在本发明的其他实施方案中,方法和组合物,或方法和组合物中的组分可以制在单一的制剂中,或者在独立制剂中分开,在使用时再混合,以适应特殊的应用需要。所述组分可有利的置于试剂盒中以对抗微生物引起的感染、净化仪器等等。在一些实施方案中,所述器具含有所有向反应点传输本发明所述制剂所必须的材料和试剂。
在一些实施方案中,用于体内使用时,本发明的方法和组合物可制备成单一的或分离的药学可接受的可注射的组合物。在这种情况下,容器本身可以是吸入器、注射器、移液管、眼滴管,或其他相似仪器,所述制剂通过这些器具供应到身体的感染部位(例如肺部),及注射到动物中,或者用这些器具容器中的其他组分混合。
本发明的试剂盒也可典型的包括容纳小瓶的装置,该小瓶为接近分娩中使用的,市场有售(例如,注射剂或气模塑料容器,在其中留有所需的小瓶)。与容器的数量和型号无关的,本发明器具还可含有协助注射/给药或在动物体内放置最终的复合组合物的仪器,或与该仪器在同包装内。所述仪器可以是吸入器、注射器和消毒凸轮、移液管、镊子、量匙、眼药水滴管或任一所述医学许可的传输载体工具。
E.修饰、制备和传输
本发明进一步的提供:多种用于修饰本发明纳米乳液的方法和体系,将纳米乳液与其他产品、包装的结合及传输本发明的组合物,以及与使用或处理可能被微生物污染的物料或样本相关的费用的降低方法。以下说明书意在简单的提供一些修饰、制备、及传输本发明组合物的例子。本领域技术人员能理解所述方法的变换形式。
在一些实施方案中,本发明提供用于改进和改变所述纳米乳液的方法。这些方法包括,例如取出所述的纳米乳液,然后改变纳米乳液的一种或多种组分。这样的改变包括但不仅限于,加入或除去一种或多种组分。改变的纳米乳液可进行测试以判断其是否具有所需的或可用的性质。在本发明的一些实施方案中,对本发明的纳米乳液,或从本发明衍生的纳米乳液进行稀释。稀释的样本可经测试判断其是否保留了所需的功效。在本发明的另一实施方案中,本发明的纳米乳液,或从本发明衍生的纳米乳液可通过质量控制(QC)和/或质量保证(QA)程序以确保售卖的纳米乳液,或者,向使用者或零售业主递交的纳米乳液的适应性。
在本发明的一些实施方案中,本发明的纳米乳液可加到另一种产品中以提高或者改进产品的抗菌能力,或者对怀疑的污染进行测定,或者,产品的抗微生物能力在感观上有所改进(即,本发明纳米乳液的附加成分加入到产品中是属于本发明范围之内的,无论其是否具有可检测的,或者,任一的抗微生物活性)。例如在一些实施方案中,将本发明的纳米乳液加入到清洗或者消毒物料中(例如,家用清洗剂)。在其它实施方案中,可将纳米乳液加入到医用或急救物料中。例如,可将纳米乳液加入到(或直接作为)灭菌剂和创伤护理产品而使用。在另一些实施方案中,纳米乳液可加入到工业产品中。例如在一些实施方案中,纳米乳液可加入到机油中以防止或减轻,如真菌污染。如上所述,可以使用机油作为油相组分合成有效的,稳定的乳液(例如,W205GCMobil 1)。在其它实施方案中,纳米乳液可加入到食品中。例如可将纳米乳液加到饮料中以防止不期望的生物在其中生长。
本发明的纳米乳液,无论是单独使用,或与其他物料结合使用,均可提供多种不同类型的容器和传输体系。例如在本发明的一些实施方案中,纳米乳液是霜剂或其他固体或半固体的形式。在本发明研究过程中,人们认为本发明的乳液可以在保持其抗微生物活性的同时(与其他组分)合制成水凝胶制剂。水凝胶中使用乳液可获得多种有用的性质。例如水凝胶可以制成具有所需尺寸和形状的半固体的结构。这样就使得,例如,水凝胶材料能***到试管或其他通路中制备抗微生物的过滤器(即,本发明的乳液可净化穿过水凝胶的材料)。
纳米乳液可在任一适宜的容器传输(例如,向使用者或消费者的传输)。适用的容器能提供所需的一种或多种单一用途的纳米乳液剂量或多用途剂量。在本发明的一些实施方案中,纳米乳液可以是混悬液或液体的形式。所述纳米乳液可用任一适宜的容器包括喷洒壶(例如,压力喷洒壶)传输。当用于工业或者其他大规模的使用,大体积(例如,几十到几千升)的纳米乳液可放置在单个的容器中,该容器经适当的装配适合纳米乳液的分发及使用。
在本发明某些优选的实施方案中,本发明纳米乳液可与现行的商业运作相结合以降低与商业运作中安全操作有关的费用及,用于改进安全操作的费用。例如使用本发明的纳米乳液可降低与使用或处置可能被微生物感染的物料或样本有关的费用。在一些实施方案中,本发明的纳米乳液可用于改善安全性或降低与医疗工业有关的费用。例如纳米乳液可用于医用物料(例如,与动物、人类或生物样本接触的表面)或用于病人的(例如,体内的或体外的)廉价有效的灭菌剂。纳米乳液还可用作食品加工和处理及食品工业应用的廉价有效的灭菌剂。在某些这样的实施方案中,本发明提供了一种无毒的纳米乳液。例如,最近,此处纳米乳液含有的组分在医学、农业和食品上的应用通过了相应控制机构(例如,FDA、USDA等)的认证。此外,此处还提供了含所需功能的附加纳米乳液的生产方法,该乳液可组成完全无毒及通过(检验)的物质。如此,本发明的纳米乳液的应用无需长时间的消耗及为了获得规定的认证所进行的高价的操作。事实上,乳液的毒性要小于单独组分毒性的总和。例如,X8PC被测试用于比较乳液对血琼脂平板上测定的绵羊血细胞的溶血效果,该效果与非乳化成分的混合物溶血效果相比较。比较数据见图34.图34中的两条粗线显示X8PC纳米乳液的溶血效果,其效果与所有组分的非乳化混合物的溶血效果相比较。
V.具体实施例
以下实施例用以阐述某些本发明的优选的实施方案及方面,其不能理解为用以限制本发明的范围。
在以下的实验发现中,使用如下的缩写符号:eq(等价物);μ(微米);M(每摩尔);μM(每微摩尔);mM(每毫摩尔);N(正常);mol(摩尔);mmol(毫摩尔);μmol(微摩尔);nmol(纳摩尔);g(克);mg(毫克);μg(微克);ng(纳克);L(升);ml(毫升);μl(微升);cm(厘米);mm(毫米);μm(微米);nM(每纳摩尔);℃(摄氏度);和PBS(磷酸盐缓冲盐水)。
实施例1
制备乳液的方法
所述乳液按如下步骤制备:将有机溶剂、油类和表面活性剂混合,然后加热所得混合物至37-90℃持续至多1小时,得到油相。再使用交互注射器或Silverson高速剪切混合器制备。向油相中加入水相且混合1-30分钟,优选5分钟。若乳液含有挥发性的组分,这些组分应与水相一起加入。
在一特定的实施方案中,按以下步骤制备该乳液:混合磷酸三丁酯、大豆油和表面活性剂(如,TRIT0N X-100),然后加热所得混合物至86℃下1小时,得到油相。以体积/体积比例为一份油相对四份水的比例向油相中注射水分以制备乳液。乳液可以人工的,使用往复注射器,或分批的,或使用连续流动器进行生产。制备这些乳液的方法对于本领域技术人员匙熟知的,且记载在,例如,美国专利号5,103,497;和4,895,452中,(此处合并作为整体参考)。表2显示的是每一组分的比例、pH值和乳液的粒度,乳液粒度是在安装有循环水浴的库尔特LS 130激光尺寸测量器(Coulter LS 130 laser sizinginstrument)上测定的。
表2
乳液的化学组分 |
每一组分的百分数 |
pH值 |
平均库尔特粒径(微米) |
平均库尔特范围(微米) |
BCTP |
|
|
|
|
TRITON X-100磷酸三丁酯油类(ex.大豆油)水分 |
2%2%16%80% |
5.16 |
1.074 |
0.758-1.428 |
BCTP 0.1* |
|
|
|
|
TRITON X-100磷酸三丁酯油类(ex.大豆油)水分 |
0.20%0.20%1.60%98% |
5.37 |
0.944 |
0.625-1.333 |
*该乳液通过将BCTP乳液用水以1∶9的比例稀释
本发明的乳液非常稳定。事实上,按上述方法制备的乳液贮存在密封的50-1000mL的聚丙烯试管中,在室温下放置存在一整夜。然后检查乳液的分离迹象。没有显示分离迹象的乳液被认为是“稳定的”。稳定的乳液再经一年的监测,发现其仍然保持其稳定状态。
再次用上述方法制备乳液,然后在密封的50mL聚丙烯试管中,在-20℃下放置一整夜。然后监测乳液的分离迹象。没有分离迹象的乳液被认为是“稳定的”。BCTP和BCTP 0.1乳液在室温下储存,至少24个月内基本无变化。
实施例2
本发明一种以液滴中乳化的脂质体的形式存在的示例性细菌-灭活乳液的特性
本发明的一种细菌灭活乳液,定义为X8W60PC,经一种含脂质的水包油乳液与BCTP混合而成。确切的说,一种,一种含脂质的水包油乳液(此处指GMO/CPC脂质乳液或“W808P”),含有作为初级脂质的甘油单油酸酯(GMO),和作为正电荷制备剂的氯化鲸蜡基吡啶鎓(CPC)和BCTP以1∶1(体积比体积)的比例混合。美国专利号5,547,677(此处以其整体形式合并作为参考),记载了能与BCTP相结合以制备本发明细菌-灭活水包油乳液的GMO/CPC脂质乳液和其他相关的脂质乳液。
实施例3
体外杀菌效果的研究I-革兰氏阳性菌
为了研究本发明的乳液杀菌效果,将乳液与多种细菌混合10分钟,然后用标准微生物介质覆盖以进行不同稀释。与未经处理的培养物比较菌落的数量以判断经过处置后杀灭的细菌百分数。表3概括了该试验的结果。
表3
生物体 |
培养液(CFU) |
杀灭% |
测试乳液 |
霍乱弧菌classical种 |
1.3×108 |
100 |
BCTP |
霍乱弧菌Eltor种 |
5.1×108 |
100 |
BCTP |
副溶血弧菌 |
4.0×107 |
98-100 |
BCTP |
为了研究本发明的乳液对不同杆菌种营养型的杀菌效果,一种乳液稀释成三份稀释液,与四种杆菌种型混合10分钟,然后用微生物介质覆盖。与未经处理的培养物比较菌落的数量以判断经过处置被杀灭的细菌百分数。表4包含了概括从几项试验得到杀菌结果,括号中是平均杀菌百分数。
表4
BCTP/稀释液 |
蜡状芽孢杆菌 |
环状芽孢杆菌 |
巨大芽孢杆菌 |
枯草芽孢杆菌 |
1∶10 |
99%(99%) |
95-99%(97%) |
99%(99%) |
99%(99%) |
1∶100 |
97-99%(98%) |
74-93%(84%) |
96-97%(96%) |
99%(99%) |
1∶1000 |
0%(0%) |
45-60%(52%) |
0-32%(16%) |
0-39%(20%) |
实施例4
体外杀菌效果的研究II-革兰氏阴性菌
为了增加革兰氏阴性菌细胞壁对细菌灭活乳液的摄取,因此加强了乳液对耐受革兰氏阴性菌杀微生物的效果,EDTA(乙二胺四乙酸)先与乳液预混合。试验中使用低浓度的EDTA(50-25μM),混合物用不同的革兰氏阴性菌培养15分钟。混合物的杀菌效果在胰胨豆胨培养液上测定。结果在下文表5中详述。使用BCTP 1/100的稀释液能导致99%细菌数量的减少。细菌数的降低不能归结为EDTA单独的杀灭效果,因为在控制组中单独使用250μM EDTA的结果显示其不能在15分钟内降低细菌的数量。
表5
细菌属种 |
单独的细菌 |
细菌+BCTP(CFU) |
细菌+BCTP+EDTA(CFU) |
细菌+EDTA(CFU) |
鼠伤寒杆菌 |
1,830,000 |
1,370,000 |
40 |
790,000 |
痢疾螺旋体 |
910,000 |
690,000 |
0 |
320,000 |
实施例5
体外杀菌效果的研究III-营养型和孢子型
蜡状芽孢杆菌(B.cereus,ATCC#14579)用作炭疽杆菌的模型体系。开展使用BCTP稀释制剂用以研究本发明化合物对营养型(活跃生长的)蜡状芽孢杆菌的杀菌效果的试验。评估在37℃下在介质中的处置10分钟情况。如表6所示,BCTP乳液能有效对抗营养型蜡状芽孢杆菌。在所有测试浓度(包括高至1∶100的稀释浓度)的所述制剂中暴露10分钟足以完全杀灭营养型蜡状芽孢杆菌。
表6
乳液 |
未稀释的 |
1∶10稀释 |
1∶100稀释 |
BCTP |
>99%平均=>99% |
>99%平均=>99% |
59->99%平均=82% |
试验次数=4
孢子型炭疽杆菌是作为生物武器使用的常用生物体之一。人们熟知,孢子对大多数消毒剂具有高的耐受力。如上文所述,有效的杀灭孢子通常要求使用毒性和刺激性的化学物质,例如甲醛或次氯酸钠(如,漂白剂)。因此对孢子型蜡状芽孢杆菌进行同样的试验。如表7所示,在37℃下的所有的介质中处置10分钟不能有效的杀灭孢子型蜡状芽孢杆菌。
表7
乳液 |
未稀释的 |
1∶10稀释 |
1∶100稀释 |
BCTP |
0%-12%平均=6% |
0%平均=0% |
0%平均=0% |
试验次数=2
为了评估本发明化合物对孢子型蜡状芽孢杆菌长时间的效果,BCTP以1∶100的稀释度加入到固体凝胶介质中,孢子则不均匀的涂在介质表面上,在37℃下培养96小时。在加入BCTP的固体凝胶介质中没有发生(细菌)生长,96小时以外(即,>99%的杀灭率,平均值>99%,试验三次)。
为了更接近的确定BCTP存在时杀灭孢子的时间,实施了以下试验。简单的说,一种孢子制剂用1∶100稀释的BCTP处置,且与未处置的组比较。分别测定0.5、1、2、4、6和8小时后每毫升菌落形成单位(CFU/ml)的数量。如图1所示,在最初的4小时的培养后,未处置组的CFU/ml有增加,然后到达一个坪浓度。在0时间和1、2、4和6小时制作用孢子结构接种的细菌涂片,涂片显示2个小时内孢子结构已经不存在了(图2A-2C)。因此,在未处置组中在2小时的点,孢子发生100%的萌发。在用BCTP处置的孢子制剂中,CFU/ml在最初2小时内没有显示增加的迹象,然后在2-4小时后快速的下降。2-4小时后从CFU/ml基线水平的下降大约1000倍。在相同时间点制作的用孢子结构接种的细菌涂片显示孢子结构在8小时内一直保持到试验末。因此,在用BCTP熟知的组中没有发生孢子萌发,这可归结为萌发过程被抑制,或,由于孢子被破坏不能进行萌发。为了判断乳液是否能有效的杀灭除蜡状芽孢杆菌以外其他杆菌属种,我们按以上方法实施了相同的试验,其中孢子制剂用乳液和处置,并在培养4小时后与未处置组进行比较。试验结果如下述表8所示,其中的数字表示从几项试验中得出的平均杀孢子活性。
表8
BCTP/稀释度 |
蜡状芽孢杆菌 |
环状芽孢杆菌 |
巨大芽孢杆菌 |
枯草芽孢杆菌 |
1∶10 |
82% |
61% |
93% |
31% |
1∶100 |
91% |
80% |
82% |
39% |
1∶1000 |
47% |
73% |
94% |
22% |
实施例6
体内杀菌效果的研究
我们通过进行动物研究以阐述本发明乳液体内的保护和治疗效果。事先以试验动物的蜡状芽孢杆菌感染作为研究炭疽的模型体系(Burdon和Wende,1960;Burdon等,1967;Lamanna和Jones,1963)。试验动物蜡状芽孢杆菌感染诱发的疾病综合症在某些方面与炭疽杆菌相似(Drobniewski,1993;Fritz等,1995)。在向小鼠注射前,先将新乳液与蜡状芽孢杆菌的孢子进行混合。
冲洗皮肤创伤
用2.5×107蜡状芽孢杆菌孢子感染1cm的皮肤伤口,感染接种后不再进行进一步的处置。其他的试验组用相同数量的孢子感染。一小时后,伤口用新乳液或者盐水冲洗以模拟后-暴露(post-exposure)净化。48小时后,在伤口周围出现了大面积的坏死,其平均面积为4.86cm2。此外,该组中60%的the动物由于感染而死亡。这些损害情况的组织学研究显示真皮及皮下全部的坏死,且存在大量的营养型杆菌生物体。用盐水冲洗试验性感染的伤口没有任何明显的效果。
用新乳液冲洗蜡状芽孢杆菌孢子感染的伤口产生了显著的效果,其结果是损伤面积持续从4.86cm2降低到0.06cm2。伴随着损伤面积的降低,与没有处置或者用盐水冲洗的试验动物相比,动物的死亡率也下降了三倍(从60%到20%)。这些损害情况的组织学研究显示营养型杆菌生物体已不存在,且真皮的损坏降低到了最小(Hamouda等,1999)。
皮下注射
用盐水1∶10稀释的新乳液注射的CD-1小鼠作为对照组,且无论在整体或组织学上均未显示出痛苦或炎症反应的迹象。为了测试蜡状芽孢杆菌孢子的体内致病效果及新乳液的杀孢子能力,将含4×107蜡状芽孢杆菌孢子的混悬液与盐水或者新乳液混合并最终稀释成1∶10浓度,随之立即在CD-1小鼠背上进行皮下注射。
皮下感染蜡状芽孢杆菌孢子且未经新乳液处置的小鼠在6-8小时内出现了水肿。之后18-24小时在针孔周围出现了灰色的坏死面积,在48小时后伴有严重的皮肤腐肉,并留下一个干燥、红色的病灶。
同时注射孢子和新乳液的小鼠(即当孢子预先与新乳液混合时),其坏死病灶面积的降低超过了98%,从1.68cm2降低到0.02cm2。该情况与水肿和炎症的减轻有关(Hamouda等,1999)。
兔眼角膜
用不同浓度的新乳液冲洗兔眼角膜,并监测24及48小时。当使用治疗剂量的组合物时,未观察到刺激及反常现象。
粘膜
在小鼠的每只鼻孔内输入25 uL4%的纳米乳液以测定乳液的鼻内毒性。结果小鼠身上未发现临床或病理组织学上的变化。
向大鼠给予最多8mL每kg的25%纳米乳液以测定乳液口服毒性。结果大鼠未显示体重减轻迹象或临床上或病理组织学上的毒性迹象。我们也未观察到乳液口服给药引起的肠道菌群变化。
在一特定的实施方案中,蜡状芽孢杆菌在血液琼脂(含5%绵羊血液TSA,REMEL)上传递三次。从第三次传递的平板上卸下蜡状芽孢杆菌,并与胰胨豆胨培养液(TSB)(可从BBL中得到)重新混悬。该蜡状芽孢杆菌混悬液分成分装入两根试管中。向一根试管加入相同体积的消毒盐水,并将0.1cc的蜡状芽孢杆菌混悬液/盐水混合物对5只小鼠进行皮下注射。向另一试管加入相同体积的BCTP(用消毒盐水1∶5稀释)并混合,最终得到BCTP1∶10的稀释液。蜡状芽孢杆菌混悬液/BCTP在37℃培养10分钟,即用0.1cc蜡状芽孢杆菌混悬液/BCTP的混合物对5只小鼠进行皮下注射。混合相同体积的BCTP(用消毒盐水1∶5稀释)和TSB,最终得到以1∶10稀释的BCTP。将0.1cc该BCTP/TSB对5只小鼠皮下注射。
用如下方法计算蜡状芽孢杆菌在接种物上的菌落形成单位(cfu)数量:用蒸馏水制成蜡状芽孢杆菌和蜡状芽孢杆菌/BCTP混悬液的10倍数系列稀释液。每一稀释液各接种在TSA复制平板上(10μl每平板)。TSA平板在37℃下培养一整夜。再计量菌落数,计算cfu/cc的数量。小鼠坏死病灶的尺寸比用预先作BCTP处置的蜡状芽孢杆菌接种的小鼠要小一些。以下表9给出了试验结果。
表9
接种物 |
ID# |
观察结果(24小时) |
蜡状芽孢杆菌3.1×107cfu/小鼠 |
15281529153015311532 |
注射部位有腐肉(坏死)注射部位有腐肉死亡死亡注射部位有腐肉 |
蜡状芽孢杆菌8.0×105cfu/小鼠(经BCTP处置) |
13481349136015261527 |
注射部位有腐肉无反应无反应注射部位有腐肉注射部位有腐肉 |
BCTP/TSB |
13261400137513461347 |
无反应无反应无反应无反应无反应 |
蜡状芽孢杆菌在营养琼脂(Difco)上生长,该琼脂含有用以诱导孢子成形的0.1%酵母提取物(Difco)和50μg/ml MnSO4。将平板卸下,在灭菌的50%乙醇中混悬,并在室温下培养2小时,伴随着激烈的搅拌以溶解剩余的营养型细菌。混悬液用2,500xg离心20分钟,弃去上清液。余下颗粒物用diH2O重新混悬,再用2,500×g离心20分钟,弃去上清液。孢子混悬液终于分开了。剩余颗粒物用TSB再混悬。0.1cc蜡状芽孢杆菌孢子混悬液用盐水1∶2稀释,然后对3只CD-1小鼠皮下注射。混合相等体积的BCTP(用1∶5消毒盐水稀释)和蜡状芽孢杆菌孢子混悬液,最终得到BCTP1∶10的稀释液(预温育时间)。向3只CD-1小鼠皮下注射0.1ccBCTP/蜡状芽孢杆菌孢子混悬液。在培养液中蜡状芽孢杆菌的菌落形成单位(cfu)的数量用以下方法计算:用蒸馏水将蜡状芽孢杆菌和蜡状芽孢杆菌BCTP混悬液稀释成10倍数的稀释液。用每一稀释液(10ul每平板)接种TSA的复制平板。TSA平板在37℃培养一整夜。计量菌落数以计算cfu/cc的数量。小鼠坏死病灶的尺寸比用预先作BCTP处置的蜡状芽孢杆菌孢子接种的小鼠要小一些。表10给出了所作研究的观察结果。
表10
接种物 |
观察结果(24小时) |
蜡状芽孢杆菌孢子6.4×106/小鼠 |
2/3(66%)老鼠在注射点有坏死 |
蜡状芽孢杆菌孢子4.8×106/小鼠(经BCTP处置) |
1/3(33%)老鼠在注射点有坏死 |
蜡状芽孢杆菌营养型4.8×106/小鼠 |
3/3(100%)老鼠在注射点有坏死 |
溶解的蜡状芽孢杆菌营养型4.8×106cfu/小鼠 |
3/3(100%)老鼠没有症状 |
BCTB/TSB |
1/3(33%)有一些皮肤坏死 |
蜡状芽孢杆菌在营养琼脂(Difco)上生长,该琼脂含有用以诱导孢子成形的0.1%酵母提取物(Difco)和50g/ml MnSO4。将平板卸下,在灭菌的50%乙醇中混悬,并在室温下培养2小时,伴随着激烈的搅拌以溶解剩余的营养型细菌。混悬液用2,500xg离心20分钟,弃去上清液。余下颗粒物用diH2O重新混悬,再用2,500×g离心20分钟,弃去上清液。颗粒物用TSB再次混悬。蜡状芽孢杆菌孢子混悬液分装入3只试管。将相同体积的消毒盐水加到一根试管中,进行混合。对10只CD-1小鼠皮下注射0.1cc蜡状芽孢杆菌混悬液/盐水。将同体积的BCTP(用1∶5消毒盐水稀释)加到第二根试管中,并混合,得到BCTP以1∶10稀释的最终稀释液。将混合后的蜡状芽孢杆菌孢子混悬液/BCTP(1∶10)在37℃下培养4小时。向10只CD-1小鼠皮下注射0.1cc蜡状芽孢杆菌孢子混悬液/BCTP(1∶10)。将相同体积的BCTP(用消毒盐水1∶50稀释)加入到第三根试管中,并混合,得到以1∶100稀释的BCTP稀释液。将混合后的蜡状芽孢杆菌孢子混悬液/BCTP(1∶100)在37℃下培养4小时。向10只CD-1小鼠皮下注射0.1cc蜡状芽孢杆菌孢子混悬液/BCTP(1∶100)。将相同体积的(以消毒盐水1∶5稀释)和TSB混合,得到以1∶10稀释的BCTP稀释液。向10只CD-1小鼠皮下注射0.1cc的BCTPFTSB。将相同体积BCTP(用消毒盐水1∶50稀释)和TSB混合,得到以1∶100稀释的BCTP稀释液。向10只CD-1小鼠皮下注射0.1cc的BCTP/TSB。从这些研究中得出的观察结果见于表11和表12。
表11
接种物 |
ID# |
24小时观察结果 |
蜡状芽孢杆菌孢子5.5×107/小鼠未处置组 |
12345678910 |
2.4cm2皮肤病灶,伴随0.08cm2面积的坏死未观察到异常现象垂死,伴有皮肤及背部病灶肢杆瘫痪3.52cm2皮肤病灶1.44cm2皮肤病灶3.4cm2皮肤病灶5.5cm2皮肤病灶5.5cm2皮肤病灶3.3cm2皮肤病灶,伴随0.72cm2面积的坏死2.64cm2皮肤病灶,伴随两处皮肤坏死(0.33cm2和0.1cm2)在单独孢子组中平均病灶尺寸为3.97cm2(1/10(10%),且无异常现象) |
注意:皮肤损伤为灰色,伴随有水肿,坏死部位红色/干燥。
表12
接种物 |
编号 |
24小时观察结果 |
蜡状芽孢杆菌孢子2.8×107/小鼠BCTP1∶10处置组 |
41424244454647484950 |
无异常现象无异常现象1.2cm2白色皮肤病灶,中心为灰色,有轻微水肿0.78cm2白色皮肤病灶0.13cm2白色皮肤病灶2.2cm2白色皮肤病灶1.8cm2白色皮肤病灶,中心面积为棕色1cm2白色皮肤病灶,中心为灰色0.78cm2白色皮肤病灶无异常现象用BCTP1∶10处置组的病灶平均尺寸=1.13cm2(3/10(30%)没有异常现象 |
蜡状芽孢杆菌孢子1.8×107/小鼠BCTP1∶100处置组 |
51525354555657585960 |
2.1cm2皮肤灰色病灶0.72cm2皮肤灰色病灶1.5cm2皮肤灰色病灶1.2cm2皮肤灰色病灶3.15cm2皮肤灰色病灶0.6cm2皮肤灰色病灶0.5cm2皮肤灰色病灶2.25cm2皮肤灰色病灶4.8cm2皮肤灰色病灶,伴随直径1cm的坏死2.7cm2皮肤灰色病灶用BCTP1∶100处置组的病灶平均尺寸=1.9cm2(0/10(0%)没有异常现象 |
单独用BCTP1∶10处置 |
11121314151617181920 |
2.6cm2白色面积0.15cm2白色面积无异常现象0.15cm2白色面积0.35cm2白色面积无异常现象0.12cm2白色面积无异常现象0.56cm2白色面积0.3cm2白色面积单独BCTP1∶10组的病灶平均尺寸=0.60cm2(3/10(30%)没有异常现象 |
单独用BCTP1∶100处置 |
21-30 |
无异常现象单独BCTP1∶100组的病灶平均尺寸=0cm2(10/10(100%)没有异常现象 |
单独用TSB |
31-40 |
无异常现象单独TSB组的病灶平均尺寸=0cm2(10/10(100%)没有异常现象 |
从小鼠的皮肤病灶、血液、肝脏和脾脏中尝试重新分离蜡状芽孢杆菌(表13)。皮肤病灶用70%消毒异丙醇冲洗后用betadine清洗干净。在病灶和擦洗处边缘作一切口。小鼠胸部用70%消毒异丙醇冲洗后用betadine清洗干净。用心脏穿刺术抽出血液。其腹部用70%消毒异丙醇冲洗后用betadine清洗干净。皮肤和腹部肌肉用分别的消毒仪器断开。使用分别的消毒仪器取出肝脏和脾脏样本。先将肝脏和脾脏样本快速通过火焰,再用消毒仪器剪切。新鲜暴露的表面用于接种。接种BHI琼脂(Difco)且在37℃下有氧培养一整夜。
表13
接种物 |
编号 |
尸体解剖 |
蜡状芽孢杆菌从皮肤病灶点的再分离 |
蜡状芽孢杆菌孢子5.5×107/小鼠未处置组 |
3678910145 |
24小时48小时48小时72小时72小时72小时96小时96小时96小时 |
皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶100cfu皮肤病灶25cfu皮肤病灶100皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>300cfu未处置孢子组中平均CFU=214* *(6/9(67%)>300CFU) |
蜡状芽孢杆菌孢子2.8×107/小鼠BCTP 1∶10处置组 |
48504647494142*43444546 |
48小时48小时72小时72小时72小时96小时96小时96小时 |
皮肤病灶17cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>200cfu皮肤病灶100cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶20cfu未接种皮肤病灶>300cfu未接种未接种BCTP 1∶10处置组中平均CFU=192**(3/8(38%)>300CFU) |
蜡状芽孢杆菌孢子1.8×107/小鼠BCTP 1∶100处置组 |
4850*525456585960 |
48小时48小时72小时72小时72小时96小时96小时96小时 |
皮肤病灶18cfu皮肤病灶>300cfu皮肤病灶1cfu再分离阴性皮肤病灶>300cfu皮肤病灶173cfu皮肤病灶4cfu皮肤病灶6cfuBCTP 1∶100处置组中平均CFU=100*(2/8(25%)>300CFU) |
*尽管小鼠无病灶,但是生物体从注射点转移。
在向试验动物中引入蜡状芽孢杆菌和蜡状芽孢杆菌孢之前,先将两者进行预处理以降低其引起疾病综合症的能力。其结果反映在皮肤病灶尺寸的减小及从病灶处回收的蜡状芽孢杆菌的数量普遍降低上。另外,蜡状芽孢杆菌从血液、肝脏和脾脏重分离频率的降低显示其能防止败血症。
实施例7
体内毒性研究I
CD-1小鼠皮下注射0.1cc本发明化合物,并对其炎症和/或坏死的情况观察4天。用消毒盐水制作该化合物的稀释液。从小鼠得到的组织样本保存于10%中性***缓冲液中以供组织病理学检查。送与组织学观察的皮肤和肌肉样本(从用未稀释化合物注射的小鼠中得到)的观察结果显示其有组织坏死的迹象。从注射稀释化合物小鼠中得到的组织样本没有进行组织学检查。表14和15显示了两项独立试验的结果。
表14
化合物 |
小鼠编号 |
稀释度 |
观察结果 |
BCTP |
132613271328132913241331 |
未稀释未稀释1∶101∶101∶1001∶100 |
坏死无反应无反应无反应无反应无反应 |
盐水 |
13441345 |
|
无反应无反应 |
表15
化合物 |
小鼠编号 |
稀释度 |
观察结果 |
BCTP |
137613771378137913801381 |
未稀释未稀释1∶101∶101∶1001∶100 |
坏死轻微坏死无反应无反应无反应无反应 |
盐水 |
13941395 |
|
无反应无反应 |
几内亚猪用1.0cc/位点本发明化合物进行肌内注射(在两条后腿上),并对炎症和/或坏死迹象观察4天。用消毒盐水制作该化合物的稀释液。
从几内亚猪得到组织样本的保存于10%中性***缓冲液中以供组织病理学检查。组织样本未经组织学检查。
表16
化合物 |
几内亚猪 |
稀释度 |
观察结果 |
BCTP |
1023-11023-21023-3 |
未稀释1∶101∶100 |
无反应无反应无反应 |
盐水 |
1023-10 |
|
无反应 |
体内毒性研究I的结果显示皮下和肌内注射测试性化合物不会引起可观测到的组织损坏,且未在试验动物中引起痛苦反应。
实施例8
体内毒性研究II
将一组Sprague-Dawley大鼠,每组含有五只雄性五只雌性大鼠,将该组大鼠置于单独的笼子中,且在给药前先让其适应五天。之后大鼠持续14天每天给药。在第0-13天内,组1中的每只大鼠在14天内连续的用管饲法连续给予三毫升1∶100浓度的BCTP。三毫升剂量是确定的对于大鼠来说的最高口服剂量。在给药的第0天和第7天之前,对每只大鼠进行称重。之后在研究期间,大鼠每星期称重一次。每天观察动物的痛苦症状与死亡率。给动物休息(不给药)14天。在第28天,大鼠称重后实施安乐死。口服毒性研究中小鼠的平均重量示于表17中17。第0、7、14、21和28天中的雄性和雌性大鼠的平均重量,及从第0-28天内的平均重量也示于表17中。在第14天的给药中,有一只大鼠死于操作管饲管时的机械创伤。所有存活的大鼠在研究进行的28天内体重有所增加且未报告有疾病产生。因此,虽然大家知道单独使用磷酸三丁酯具有毒性且刺激粘膜,但是当与本发明的乳液相结合时,这些特征都消释了。相应的根据16CFR§1500.3,1∶100浓度的BCTP乳液同样用于在兔子上测试其皮肤毒性。在动物试验中,乳液不刺激皮肤。
表17
大鼠编号 |
性别 |
给药量mL |
体重(g)第0天 |
体重(g)第7天 |
体重(g)第14天 |
体重(g)第21天 |
体重(g)第28天 |
增加体重(g)第0-28天 |
9028 |
雄 |
3 |
332.01 |
356.52 |
388.66 |
429.9 |
394.07 |
62.06 |
9029 |
雄 |
3 |
278.62 |
294.65 |
296.23 |
310.7 |
392.6 |
113.98 |
9030 |
雄 |
3 |
329.02 |
360.67 |
325.26 |
403.43 |
443.16 |
114.14 |
9031 |
雄 |
3 |
334.64 |
297.04 |
338.82 |
357.5 |
416.89 |
82.25 |
9032 |
雄 |
3 |
339.03 |
394.39 |
347.9 |
331.38 |
357.53 |
18.5 |
均重 |
|
|
266.26 |
340.65 |
339.37 |
400.85 |
78.18 |
|
9063 |
雌 |
3 |
302 |
298.08 |
388.66 |
338.41 |
347.98 |
45.98 |
9064 |
雌 |
3 |
254.54 |
247.97 |
256.78 |
278.17 |
279.2 |
24.66 |
9065 |
雌 |
3 |
225.99 |
253.81 |
273.38 |
290.54 |
308.68 |
82.69 |
9066 |
雌 |
3 |
246.56 |
260.38 |
266.21 |
235.12 |
272.6 |
26.04 |
9067 |
雌 |
3 |
279.39 |
250.97 |
死亡 |
|
|
|
均重 |
|
|
261.69 |
262.24 |
296.25 |
285.56 |
302.11 |
53 |
毒性试验的常用方法包括皮肤刺激测试、眼睛刺激测试、皮下测试、肌内测试、冲洗开放式伤口、比内测试和口服测试。皮肤测试可在兔子上测试,其中0.5ml的10%乳液施于皮肤或兔子上保持4小时。皮肤反应的记录最长为72小时。Draize标度用于标记刺激度。进行眼睛刺激测试时,0.1ml 10%乳液施于兔子的眼部,所记录的眼部反应最长为72小时。用Draize标度标记刺激度。皮下和肌内测试中向小鼠注射0.1ml 10%乳液。冲洗开放式伤口测试中向小鼠施用2ml10%乳液。进行鼻内测试时,0.25m/两鼻孔剂量的2-4%乳液施用于小鼠。进行口服测试时,用4ml/kg/天10%乳液剂量口服给药一周或单独给予8ml/kg量100%乳液。
实施例9
使用炭疽杆菌的体外研究
使用X8W60PC制剂以研究本发明化合物对炭疽杆菌孢子的杀菌效果。不同X8W60PC(水中)稀释液对6种不同炭疽杆菌菌株的杀孢子活性示于图3.如图4和5所示,X8W60PC能在4小时内杀灭超过98%的7种不同炭疽菌株(图3和Ames中的菌株,USAMRID),效果与1-10%的漂白剂相似。X8W60PC在介质中不同的稀释液也具有相似的杀孢子活性inmedia(图6)。图7显示了X8W60PC在室温下与零时间相比,其对炭疽杆菌Del Rio、TX菌株杀孢子活性的时间过程。如图所示,X8W60PC能在30分钟内杀灭炭疽孢子。
实施例10
作用机理
以下实施例探询本发明乳液预期的作用机理以表明其杀孢子活性。该机理并不意在此限定本发明范围,理解其机理对于实践本发明并不是必须的,且本发明不限于任一特定机理。检测GMO/CPC脂质乳液(“W808P”)和BCTP对大肠杆菌的影响。W808P能杀灭大肠杆菌(在去离子水中),然而BCTP对此生物体无效。图8显示检测结果,图9显示用BCTP处置的大肠杆菌。如图9所示,用BCTP处置的大肠杆菌看起来很正常,其确定结构及脂质细胞膜未被破坏。图10显示用P10处置的大肠杆菌细菌体内有空泡且其内容物发生了溶胀,因此生物体失去了其确定的结构。与某一特定的理论无关(理解其机理对于实践本发明并不是必须的,且本发明不限于任一特定机理),此观察结果表明W808P杀灭细菌并不靠溶解细菌,相反通过改变其内部结构,确切的是形成空泡及溶胀,来杀灭细菌的。第二项研究使用霍乱弧菌。尽管霍乱弧菌与大肠杆菌相类似,但是BCTP、W808P和X8W60PC都能杀灭生物体。与对照的电子显微图(图11)相比,W808P处置的霍乱弧菌(图12)再次显示了溶胀及生物体内部的变化,然而其细胞壁却完好。相反,BCTP处置的霍乱弧菌(图13)完全溶解了细菌,只剩下细胞碎片。X8W60PC(图14)显示了上述的联合效果,其中一些生物体溶胀但未被破坏,一些则被溶解。这清楚的表明BCTP、W808P和X8W60PC的工作机理不同。
进行第三项对比性研究以评估不同浓度乳液的效果。如表18所示,X8W60PC在低浓度下(较高稀释度)作为杀虫剂对W808P或BCTP敏感的细菌更为有效。另外,6种耐W808P和BCTP的其它细菌都能被X8W60PC影响。所述活力上的不同之处也可在比较W808P、BCTP和X8W60PC的流感传染性试验的结果中看出来。如图15所示,BCTP和X8W60PC在1∶10和1∶100稀释时有效,另外,X8W60PC能在最低浓度1∶1,000稀释时依然有效。相反,W808P在1∶10稀释时已几乎没有活力了,表明其在对付这种包膜生物体时,不是一种有效的治疗剂。另外,X8W60PC能杀灭W808P或BCTP不能杀灭的酵母菌株。
表18
杀灭90%所选微生物所需的最低纳米乳液浓度
细菌 |
W808P |
BCTP |
X8W60PC |
化脓链球菌 |
未杀死 |
10% |
0.1% |
无乳链球菌 |
1%* |
1% |
ND |
肺炎链球菌 |
10%* |
1% |
0.1% |
金黄色酿脓葡萄球菌 |
未杀死 |
未杀死 |
0.1% |
淋病奈瑟氏菌 |
ND |
1% |
0.1% |
流感嗜血杆菌 |
10% |
1% |
0.1% |
霍乱弧菌 |
1% |
0.1% |
0.1% |
大肠杆菌 |
未杀死# |
未杀死 |
0.1% |
鼠伤寒沙门氏菌 |
未杀死# |
未杀死 |
10% |
痢疾志贺氏菌 |
未杀死# |
未杀死 |
0.1% |
奇异变形杆菌 |
未杀死# |
未杀死 |
1% |
绿脓杆菌 |
未杀死 |
未杀死 |
10% |
炭疽杆菌孢子 |
未杀死@4H |
0.1%@4H |
0.1%-0.02%@4H |
蜡状芽孢杆菌孢子 |
10%@4H |
1%@4H |
0.1%@4H |
枯草杆菌孢子 |
未杀死@24H |
未杀死@24H |
0.1%@4H |
小肠结肠炎耶尔森氏菌 |
ND |
ND |
0.1% |
假结核耶尔森氏菌 |
ND |
ND |
0.1% |
真菌 |
|
|
|
白色念珠菌ATCC 90028) |
未杀死 |
未杀死 |
1% |
tropicalis念珠菌 |
未杀死 |
未杀死 |
1% |
病毒 |
|
|
|
A型流感病毒H2N2 |
未杀死 |
1% |
0.1% |
B型流感病毒/Hong Kong/5/72 |
ND |
1% |
ND |
牛痘 |
ND |
1% |
% |
I型单纯型疱疹 |
ND |
1% |
0.1% |
Sendai |
ND |
1% |
ND |
Sindbis |
ND |
1% |
ND |
腺病毒 |
ND |
未杀死 |
ND |
*无法得到更低浓度的数据
#除了在去离子水中外未杀死细菌
10ND=未测定
实施例11
纳米乳液对杆菌菌种的杀孢子活性的进一步研究
本实施例给出了本发明特定实施方案的乳液对不同杆菌孢子的灭活能力的附加研究的结果。这些研究所用方法和结果在下文中概述。
表面活性剂液体制剂:BCTP,一种油包水型纳米乳液,其中油相源于大豆油、正磷酸三丁酯、和在80%水中的TRITON X-100。混合同体积的BCTP和W808P(一种由甘油单酯、精炼大豆固醇、TWEEN 60、大豆油、一种阳离子含卤CPC和薄荷油制成的类似脂质体的化合物)以制成X8W60PC。
孢子制剂:为了诱导孢子成形,在37℃下,将蜡状芽孢杆菌(ATTC14579)、环状芽孢杆菌(ATC 4513)、巨大芽孢杆菌(ATCC 14581)和枯草芽孢杆菌(ATCC 11774)置于NAYEMn琼脂上(含0.1%酵母提取物和5mg/l MnSO4的营养琼脂)培养生长一周。剔除平板,细菌/孢子混悬于50%无菌乙醇中,且在室温下(27℃)培养2小时,培养时伴有搅拌以溶解残余的营养型细菌。混悬液在2,500Xg下离心20分钟,沉淀颗粒用冷diH2O冲洗两遍。沉淀的孢子颗粒重新混悬于胰胨豆胨培养液(TSB)中,且迅疾用于试验中。将Bruce Ivins博士(USAMRIID,FortDetrick,Frederick,MD)提供的炭疽杆菌孢子Ames和Vollum 1B菌株用前述方法预制备(Ivins等,1995)。其他四种炭疽菌株由MartinHugh-Jones博士(LSU,Baton Rouge,LA)提供。这些独立提供的菌株与南非、莫桑比克、加拿大Bison;和德克萨斯Del Rio(菌株)在等位(基因)上有很大的不同。
体外杀孢子测试:For assessment of评估固体介质的杀孢子活性时,先将胰胨豆胨琼脂(TSA)高压灭菌,再冷却至55℃。将最终稀释度为1∶100的BCTP加入到TSA中,并在倾斜平板时不断的搅拌。不断的稀释孢子制剂(10倍),并将等量的10μl制作两份平板(最高接种为105孢子每平板)。平板在有氧37℃条件下48小时,并评估其生长情况。
在评估液体介质中的杀孢子活性时,孢子用TSB重新混悬。1ml孢子混悬液含有含有2×106孢子(最终浓度为106孢子/ml),该混悬液与1ml BCTP或X8W60PC在试管中混合(在diH2O中的最终浓度为2X)。试管在37℃旋转管中培养4小时。经处置,混悬液在diH2O中稀释了10倍。从每一稀释液中量取二等份(25μl)在TSA上划线,再再37℃下培养一整夜,然后清点菌落数量。以百分率表示的杀孢子活性计算如下:
试验重复3次,计算其平均杀灭值。
电子显微镜:用TSB稀释的最终稀释度为1∶100的BCTP处置蜡状芽孢杆菌孢子,在37℃摇摆式恒温器中使用Erlenmeyer烧瓶进行处置。间隔时取出50ml样本,并在2,500Xg下离心20分钟,弃去上清液。沉淀颗粒在0.1M二甲胂酸盐(pH 7.3)中与4%戊二醛结合固定。经加工的孢子沉淀颗粒用透射电子显微镜检测,同时经乙酸双氧铀和柠檬酸铅染色后用薄切片检测。
萌发抑制剂/激动剂∶蜡状芽孢杆菌孢子(最终浓度为106孢子/ml)与萌发抑制剂D-丙氨酸(最终浓度为1μM)或与萌发激动剂L-丙氨酸+肌苷(每种最终浓度为50μM)在TSB中混合(Titball和Manchee,1987;Foster和Johnston,1990;Shibata等,1976),然后立刻与BCTP(最终浓度为1∶100)混合且在不等时间段内培养。然后将混合物连续的稀释、铺板、培养一整夜。第二天清点平板并计算杀孢子活性的百分数。
体内杀孢子活性:建立两类动物模型;在第一组中,蜡状芽孢杆菌孢子(混悬于消毒盐水中)与等体积最终稀释都为1∶10的BCTP混合。作为对照,相同的蜡状芽孢杆菌孢子混悬液与同体积的消毒盐水混合。每100ul含有4×107孢子的混悬液随后立即皮下注射入CD-1小鼠中。
在第二组中,在小鼠背部开一切口制作模拟伤口。用麻醉解剖法分离皮肤与其下的肌肉。分离后形成的“袋囊”用200μl含2.5×107孢子(在盐水中)接种后用创伤钳封合伤口。一小时后,拆掉创伤钳,并用2ml消毒盐水或2ml BCTP(在1∶10消毒盐水中)冲洗伤口。再用创伤钳封合伤口。观察动物的临床迹象。整体和组织病理学研究后5天对试验动物实施安乐死。伤口尺寸的计算用如下公式:1/2a×1/2b×π,其中a和b是伤口上相互垂直的直径。
体外杀孢子活性:为了评估BCTP的杀孢子活性,我们测试了从四种杆菌菌种(蜡状芽孢杆菌、环状芽孢杆菌、巨大芽孢杆菌、和枯草芽孢杆菌)中得到的孢子。BCTP 1∶100稀释度显示其在4小时内对蜡状芽孢杆菌和巨大芽孢杆菌具有91%杀孢子活性(图16)。对BCTP不甚敏感的环状芽孢杆菌减少了80%孢子数量,而枯草芽孢杆菌在4小时显示对BCTP具有耐受性。使用1∶100稀释度的漂白剂(即,0.0525%次氯酸钠)来比较BCTP(1∶10和1∶100稀释度)对蜡状芽孢杆菌孢子杀孢子效果,结果在杀孢子力的速度和程度上都没有明显的差别。另一种纳米乳液,X8W60PC,能有效的杀死杆菌孢子。在以1∶1000稀释时,其在4小时内能杀灭98%蜡状芽孢杆菌孢子(与47%BCTP以1∶1000稀释时相比)。与枯草芽孢杆菌孢子对BCTP具有耐受性相反,X8W60PC1∶1000稀释液在4小时内能杀灭97.6%枯草芽孢杆菌孢子。
蜡状芽孢杆菌孢子杀灭的时程:我们对时间过程进行研究以分析稀释成1∶100的BCTP和稀释成1∶1000的X8W60PC在超过8小时的时段内对蜡状芽孢杆菌的杀孢子活性。BCTP 1∶100稀释液与蜡状芽孢杆菌孢子培养,其结果是在1小时内,活力孢子的数量减少了77%,4小时后减少了95%。结果仍然是X8W60PC 1∶1000稀释液比BCTP 1∶100稀释液更有效,其在30分钟后使孢子数降低了95%(图17)。
BCTP对炭疽杆菌的杀孢子活性:在初期体外试验之后,我们测试了BCTP对两种炭疽杆菌恶性菌株(Ames和Vollum 1B)的杀孢子活性。我们发现BCTP1∶100稀释液加入到细菌生长介质中能完全抑制1×105炭疽杆菌孢子的生长。同时,用最高稀释到1∶1000的BCTP稀释液在室温下培养混合物4小时,其无论对Ames菌株还是Vollum 1B菌株的孢子都有91%的杀孢子活性,在37℃下培养混合物时,其具有超过96%的杀孢子活性(表19)。
表19:BCTP对2种不同炭疽杆菌的菌株的杀孢子活性用菌落减少测试(杀灭%)判断。最高稀释到1∶1000的BCTP稀释液在27℃或37℃下,在4小时内能有效的杀灭>91%的两种孢子菌株;其在孢子萌发程度上有明显的不同。杀孢子活性连续起效的孢子浓度最多为1×106/ml。
X8W60PC炭疽杆菌杀孢子活性:由于X8W60PC在高稀释度时较BCTP能更有效的对抗多种杆菌孢子,我们测试了其最高1∶10,000稀释液在室温下抑制4种不同炭疽杆菌菌株萌发的效果。结果显示X8W60PC1∶1000稀释液的最高杀灭率在86%和99.9%之间(表20)。
表20:X8W60PC对4种不同炭疽杆菌菌株的杀孢子活性表明了其不同的临床分离(clinical isolates)。用X8W60PC不同稀释度在室温下处置孢子以减少萌发。在较低的稀释度下,没有显著的杀死孢子。1∶1000的稀释度的杀孢子效果最高。
炭疽菌株 |
南非 |
Bison,加拿大 |
莫桑比克 |
Del Rio,德克萨斯 |
X8W60PC1∶10 |
81.8 |
85.9 |
41.9 |
38 |
X8W60PC 1∶100 |
84 |
88.9 |
96.5 |
91.3 |
X8W60PC 1∶1000 |
98.4 |
91.1 |
99.9 |
86 |
X8W60PC 1∶5000 |
79.7 |
41.3 |
95.7 |
97.1 |
X8W60PC 1∶10000 |
52.4 |
80 |
ND |
ND |
孢子的电子显微镜检测:使用蜡状芽孢杆菌进行研究,因为它是最接近炭疽杆菌的微生物。在TSB中用1∶100稀释的BCTP处置蜡状芽孢杆菌孢子4小时,透射电子显微镜的检测结果显示蜡状芽孢杆菌孢子发生物理损伤,包括孢膜和皮层进一步的破坏,伴有孢核畸变及密度降低(图18)。
萌发激动和抑制:为了研究BCTP杀杆菌孢子作用中对萌发启动的效果,萌发抑制剂D-丙氨酸(Titball和Manchee,1987;Foster和Johnston,1990)和萌发促进剂L-丙氨酸和肌苷(Shibata等,1976)与孢子及BCTP一起培养1小时。当10mM D-丙氨酸时存在时,BCTP的杀孢子效果被延迟,而当50μM L-丙氨酸和50μM肌苷存在时,其效果被加速(图19)。
体内杀孢子活性:试验动物蜡状芽孢杆菌感染之前已用作用以研究炭疽的模型***,其引起的疾病与试验性炭疽感染相似(Welkos等,1986;Drobniewski,1993;Burdon和Wende,1960;Burdon等,1967;Fritz等1995等,1995;Welkos和Friedlander,1988)。建立两组皮肤蜡状芽孢杆菌疾病的动物模型以研究BCTP的体内效果。由于这些模型涉及皮下给予纳米乳液,在此之前先进行BCTP体内毒性的测试。用BCTP 1∶10盐水稀释液注射CD-1小鼠作为对照,其未显示整体或组织病理学分析上的痛苦或炎症反应的迹象(图20A,图20B)。为了测试蜡状芽孢杆菌孢子体内的致病效果及BCTP的杀孢子效果,将含4×107蜡状芽孢杆菌孢子的混悬液与盐水或与BCTP混合,其最终稀释度为1∶10,然后立刻向CD-1小鼠背部进行皮下注射。皮下感染蜡状芽孢杆菌孢子而未注射BCTP的小鼠在6-8小时产生了严重的浮肿。之后18-24小时在注射点周围产生了灰色的坏死区域,并在48小时产生了严重的皮肤腐肉,留下一干燥、红色的病灶(图20C,图20D)。当孢子与BCTP预先混合时,同时注射孢子和BCTP能降低98%的坏死病灶,病灶大小从1.68cm2下降到0.02cm2。此结果与浮肿或炎症的减轻有关(图20E,图20F)。
在其他研究中,用2.5×107蜡状芽孢杆菌孢子感染1cm的皮肤伤口,然后未经任何处置即封合伤口(图21A,图21B)。其他组用相同数量的孢子感染,1小时后用BCTP或盐水冲洗伤口以模拟后暴露(post-exposure)净化。用盐水冲洗实验性感染伤口没有产生任何显著的效果(图21C,图21D)。用BCTP冲洗被蜡状芽孢杆菌孢子感染的伤口产生了相当好的效果,病灶面积连续从4.86cm2降低到0.06cm2(图21E,图21F)。与未经处理的小鼠或用盐水冲洗的小鼠比较,改组小鼠在病灶面积的降低的同时,死亡率也降低了4倍(80%到20%)。
实施例12
表面活性剂脂质制剂(SLPS)对A型流感病毒的体外影响
包膜病毒是重要的病原体。他们传播迅速且能在宿主体外存活较长的时间。选用A型流感病毒的原因是其是抗病毒试剂试验中广泛使用的模型(Karaivanova和Spiro,1998;Mammen等,1995;Huang等,1991)。流感病毒是临床上重要的呼吸***病原体,其传播广泛且能引起严重的大面积流行疾病(Mulder and Hers,1972)。
包膜糖蛋白、血细胞凝集素(HA)和神经氨酸苷酶(NA)不仅能判断流感病毒亚型的抗原特性(Schulze,1997),还能随之迅速的发生改变,结果使得病毒巧妙的躲避了宿主防御***。这将导致对相关菌株具免疫性的个体患上疾病。下文将详细叙述用于判断SLPs对A型流感病毒传染性的预防效果的方法及组合物。
表面活性剂脂质制剂(SLPs):SLPs制备需两个步骤:将大豆油及表1所列试剂混合并加热至86℃1小时,得到油相(Florence,1993)。使用循环注射泵将注射水或含1%铋的水(SS)以体积/体积比例加入到油相中,形成SLPs。
病毒:A/AA/6/60型流感病毒(Hedocher等,1996)由HuneinF.Maassab博士(密歇根大学公共卫生学院)提供。进行标准操作(Barrett和Inglis,1985)使A型流感病毒在已受精的不含病原体的***的尿囊腔内繁殖(SPAFAS,Norwich,CT)。病毒贮库以整数量保持(108pfu/ml)在80℃下易传染的尿囊液。腺病毒载体(AD.RSV ntlacZ)由Vector Core Facility(密歇根大学医学中心,Ann Arbor,密歇根)提供,以整数量保持(80℃下1012pfu/ml)。该载体基于人类去除了核苷酸序列E1A和E1B段及部分E3段的腺病毒(血清型5)基因主链。这样削弱了病毒复制或转变成非许可性细胞的能力。在肉瘤病毒长末端重复序列(RSV-LTR)的启动子控制下,它携带了大肠杆菌LacZ基因、编码、β-半乳糖甙酶。其含有与LacZ基因5’末端相连接的核导向(或作为核导向)的表位以促进蛋白质表达的检测(Baragi等,1995)。
细胞:从美国样本培养收集中心(ATCC;Rockville,MD)购买到Madin Darby Canine Kidney(MDCK)细胞;从Vector Core Facility(密歇根大学医学中心,Ann Arbor,密歇根州)处获得293细胞(CRL 1573;转化初生胚人类肾脏)。293细胞表达腺病毒5的转换基因,因此能恢复Ad.RSV ntlacZ载体在宿主细胞中复制的能力(Graham等,1977)。
细胞保持介质:MDCK细胞与Earle’s盐类、2mM L-谷氨酰胺、1.5g/l含有10%胚胎牛血清(FBS;Hyclone实验室,Logan,UT)的碳酸氢纳(Mediatech公司,Hemdon,VA)一起保存在Eagle’s最低必须介质中。介质中需不断添加0.1mM非必须氨基酸、1.0mM丙酮酸钠、100U青霉素/ml和链霉素100μg/ml(生命技术,Gaithersburg,MD)作为补充。293细胞保存在Dulbecco’s修饰的Eagle介质中(Mediatech,Inc.,Herndon,VA),该介质含有2mM L-谷氨酰胺、0.1mM非必须氨基酸和1.0mM丙酮酸钠。其还含有100U青霉素/ml和链霉素100μg/ml(生命技术,Gaithersburg,MD)并添加10%FBS(Hyclone实验室,Logan,UT)作为补充。
病毒传染介质:A型流感病毒传染介质为MDCK细胞的保存介质(without FBS),该介质添加3.0μg/ml经甲苯磺酰苯丙酰胺氯甲基酮(TPCK)-处置的胰蛋白酶(Worthington生化公司Lakewood,NJ)作为补充。腺病毒传染介质是293细胞的保存介质,介质所含的血清浓度较低(2%FBS)。
A型流感病毒覆盖介质(overlay medium):覆盖介质由等量的2x传染介质和1.6%SEAKEM ME琼脂糖组成(FMC生物产品,Rockland,MD)。染色琼脂糖覆盖介质由琼脂糖覆盖介质加上0.01%中性红溶液(Life Technologies,Gaithersburg,MD)组成,其中不含TPCK-处置的胰蛋白酶。
斑点数(plaque)降低测定法(PRA):将别处记载的斑点数降低测定法(Hayden等,1980)作修改后,即是我们所用的斑点数降低测定法。MDCK以1×105细胞/孔的量接种于12-孔FALCON平板上,在37℃/5%CO2下培养3天。大约1×108pfu的A型流感病毒按以下方法用表面活性剂脂质制剂培养。A型流感病毒-SLP处置组和对照组用传染介质稀释使之含有30-100pfu/250μl。融合细胞单分子层以三倍量接种在3块平板上,在37℃/5%CO2下培养1小时。抽出接种物/介质,加入1ml/孔的琼脂糖覆盖介质,平板在在37℃/5%CO2下培养至出现斑点。单分子层沾染上琼脂糖覆盖介质时,继续在37℃/5%CO2下培养。染色后6-12小时计算斑点数目。比较具有液体浓度的9孔中计算出的平均斑点数与未处置的含病毒孔的平均斑点数。
原位细胞酶联免疫吸附测定法(ELISA):优选原位细胞ELISA以检测及定量在MDCK细胞内感染A型流感病毒的病毒蛋白。简单的说,将100μl完全介质中的2×104MDCK细胞加入到96-孔平底微量平板和培养一整夜。第二天,除去培养介质,用不含保存介质的血清洗涤细胞。将100μl病毒接种体加入到小孔中培养1小时。之后初期病毒接种体,代替加入100μl MDCK细胞保存介质与2%FBS。受感染的MDCK细胞再培养24小时。然后再将细胞用PBS冲洗一次,用冰冷的乙醇∶丙酮(1∶1)混合物将其结合固定,于-20℃保存。在测定的当天,含固定化细胞的小孔用PBS冲洗,且用存在于PBS中的1%干乳在37℃下阻滞30分钟。100μl以1∶1000稀释的ferret抗-A型流感病毒多系抗体(由Hunein F.Maassab博士提供,密歇根大学公共卫生学院)在37℃下加入到小孔中持续1小时。细胞用洗涤缓冲液(PBS和0.05%TWEEN-20)洗涤四次,在37℃下与100μl以1∶1000稀释的山羊抗-ferret过氧化物酶结合抗体(Kirkegaard&Perry实验室,Gaithersburg,MA)培养30分钟。细胞洗涤四次后与100μl 1-STEPTURBO TMB-ELISA底物(Pierce,Rockford,IL)一起培养至颜色发生变化。加入1N硫酸中断反应,平板用ELISA微量读取器在450nm波长下读取。
β-半乳糖甙酶测定法:和其他文献描述的一样,在细胞提取物中使用β-半乳糖甙酶测定法(Lim,1989)。简单的说,293细胞以大约4×104细胞/孔的浓度接种在96-孔“U”型-底部的组织接种平板上,在保持介质中于37℃/5%CO2下培养一整夜。的二天,除去介质,细胞用100μl Dulbecco’s磷酸酯缓冲的盐水(DPBS)洗涤。腺病毒贮库用传染介质稀释至浓度未5×107pfu/mi,并与下文中不同浓度的BCTP混合。用BCTP处置后,病毒用传染介质稀释至浓度为1×104pfu/mi,并用293细胞覆盖。细胞在37℃/5%CO2下培养5天,之后离心平板,除去介质并用不含Ca++和Mg++的PBS洗涤细胞三次。在第三次洗涤后,抽出PBS,将100μl 1×Reporter Lysis缓冲剂(Promega,Madison,WI)加入到每一孔中。为了增加细胞溶解,平板冷冻再解冻三次,遵循β半乳糖甙酶供应商(Promega,Madison,WI)提供的试验方法,并作某些改变后实施此项β-半乳糖甙酶测定法。5微升细胞提取物转移至96-孔平底平板中,与45μl 1x Reporter Lysis缓冲剂(1∶10)相混合。随后加入50μl 2x测试缓冲剂(120mM Na2HPO4、80mM NaH2PO4、2mM MgCl2、100mM(3-巯基乙醇、1.33mg/ml ONPG(Sigma,St.Louis,MO))并与细胞混合。平板在室温下培养至产生淡黄色。此时加入100μl1M碳酸氢纳以终止反应。平板用ELISA微量读取器在420nm波长下读取结果。一种标准的,含(u/μl β-半乳糖甙酶(Sigma,St.Louis,MO)、以50mM N-二甘氨酸缓冲剂(Sigma,St.Louis,MO)为补充的、pH为7.5且以100(g/ml BSA)稀释于1x Reporter Lysis缓冲剂中的β-半乳糖甙酶存在于测试的全过程中。每一细胞提取物中的β-半乳糖甙酶单位使用以标准水平为参考的回归分析计算,并用细胞提取物样本中蛋白的毫克数来表达。
细胞毒性及脂质制剂病毒处置法:在病毒敏感性测试之前,SLPs对MDCK和293细胞的细胞毒性用显微镜检测和MTT测定法来测定。制备的病毒与用于敏感性测试的SLPs混合物的稀释液浓度应远高于SLP被测试的安全浓度。如摇摆器结果所示,大约1×108pfu A型流感病毒或腺病毒与最终浓度为1∶10、1∶100和1∶1000的脂质制剂一起培养不同的时间。培养之后,在适当的传染介质中制备SLP/病毒混合物的血清稀释液,并覆盖MDCK(A型流感病毒)或293(腺病毒)细胞以进行上述PRA,细胞内ELISA或β-半乳糖甙酶测定。
电子显微镜:A型流感病毒从尿囊液中通过一个30%的蔗糖垫进行半纯化,该蔗糖垫用GTNE(甘氨酸200mM、Tris-HCl 10mM(pH 8.8)、NaCl 100mM和EDTA 1mM)在高速离心(Beckman rotor SW 28Ti,以20,000rpm旋转16小时)下制成。颗粒沉淀的病毒在GTNE重新组成。10微升独立样本(腺病毒,流感病毒,腺病毒+BCTP,流感病毒+BCTP)培养15和60分钟后,置于用火棉胶片包裹的200目铜栅栏上2分钟。然后加入5μl 2%盐二甲胂酸化-缓冲戊二醛。用滤纸过滤3分钟滤去液体。向栅栏加入10微升7%乙酸双氧铀,30秒后用滤纸滤去。栅栏干燥10分钟后在Philips EM400T透射电子显微镜检测。显微图片以200,000x放大率纪律在Fuji FG胶片上。
A型流感病毒对SLPS的敏感性测试:我们研究了四种表面活性剂脂质制剂(BCTP,NN,W808P,和SS)对抗A型流感病毒MDCK细胞感染的效果。所有被测试的制剂都能不同程度的抑制A型流感病毒的传染,如图22所示。BCTP和SS在1∶10稀释液中对A型流感病毒传染有超过95%抑制。NN和W808P对A型流感病毒只有一半的效果,它们降低了大约40%的传染。即使将BCTP稀释到1∶100,其杀病毒效果也未降低。SS在1∶100稀释度时,其抑制A型流感病毒传染的效果降低到55%。这两种脂性制剂在1∶1000稀释时对病毒传染仅有微弱的抑制能力,范围是22-29%(图22B)。
由于BCTP和SS都对病毒传染有强的抑制效果,因此用PRA检验从细胞ELISA测定获得的数据。PRA测试证实了BCTP和SS的效果。BCTP在1∶10稀释时使斑点数从平均50.88降低到0(表21)。在1∶100稀释时,BCTP仍然有杀病毒效果。SS在以1∶100稀释时,与未处置病毒相比,其仅减少了大约7%斑点数。
表21
处置 |
斑点形成单位 |
斑点形成单位 |
试剂稀释度: |
BCTP |
SS |
1∶10a |
0.00b(+/-0.00)c |
0.00(+/-0.00) |
1∶100 |
0.00(+/-0.00) |
1.55(+1-0.12) |
未处置病毒 |
50.88(+/-1-0.25) |
23.52(+/-0.18) |
a病毒与SLPs培养30分钟。
b斑点数。
BCTP作用于A型流感病毒的动力学:为了研究BCTP作用于A型流感病毒传染所需的时间,病毒与两种稀释度的BCTP(1∶10,1∶100)一起培养4段不同的时间间隔(5、10、15、30分钟)。随后,进行斑点数降低测定法。如表22所示,在与每一种BCTP培养5分钟后,MDCK细胞种A型流感病毒感染完全停止。尽管浓度或时间不同,BCTP与A型流感病毒的相互作用没有显著的差别。
表22
BCTP抗-A型流感病毒效果:由于TRITON X-100洗涤剂具有抗病毒活性(Maha和Igarashi,1997;Portocala等,1976),我们研究了单独使用TRITON X-100或其与独立的BCTP组分结合使用是否具有与BCTP有相同程度的抑制A型流感病毒感染的效果。A型流感病毒用以下试剂处置:1)BCTP,2)磷酸正三丁酯、TRITON X-100及大豆油的结合剂(TTO),3)TRITON X-100和大豆油(T0),或4)单独使用TRITONX-100(T)。与单独使用或与其他被测试组分结合使用TRITON X-100相比,BCTP在1∶10和1∶100稀释时(TRITON X-100以1∶500,及1∶5000稀释)对A型流感病毒显然更为有效(图23)。在以1∶1000稀释时,BCTP(TRITON X-1001∶50,000稀释)能降低50%MDCK细胞的A型流感病毒而同浓度TRITON X-100在单独使用时基本上没有效果。
BCTP不影响非包膜病毒的传染性:为研究是否BCTP能影响非包膜病毒的传染性,我们使用了含有LacZ基因的基因工程腺病毒,编码β-半乳糖甙酶。这种腺病毒结构在基因转换上有缺陷,因此只能复制和转化含有the腺病毒5转换基因的允许细胞。293细胞,其能特定的表达转换基因,用于促进腺病毒复制及产生β-半乳糖甙酶酶。如图24所示,BCTP处置不能影响腺病毒在293细胞种复制及表达β-半乳糖甙酶的能力。BCTP处置的和未处置的腺病毒都产生了大约0.11单位的β-半乳糖甙酶酶。
BCTP对包膜病毒的作用:由于BCTP仅能改变包膜病毒的传染性,我们使用电子显微镜进一步的研究此种纳米乳液对包膜病毒整体性的作用。如图25D所示,在与1∶100稀释的BCTP培养60分钟后,腺病毒结构没有变化。一些可辨认的A型流感病毒在与BCTP培养15分钟后能被辨认定位(图25B),然而,1小时后发现了不可辨认的A型流感病毒。BCTP对A型流感病毒的效果和其对粘膜的低毒性表明其能作为有效的杀菌试剂,也可预防铀包膜病毒感染引起的疾病。
实施例13
鼠伤寒杆菌的W205EC处置中温度和EDTA的影响
图31和32显示用添加了0.1%EDTA的不同本发明乳液对沙门氏菌的处置情况。在温度为40℃(图32)和50℃(图33)时,EDTA提高了乳液的杀菌活性。乳液测试浓度为10.0%、1.0%和0.1%稀释度。
实施例14
X8PC和W205EC的抗菌性质
如上所述,乳液X8PC由约8%(体积)的TRITON X-100、约8%(体积)的TBP、约1%的CPC、约64%(体积)的大豆油和约19%(体积)的DiH2O组成;乳液W205EC由约5%(体积)TWEEN 20、约8%(体积)的乙醇、约1%(体积)的CPC、约64%(体积)的油类(例如,大豆油)和约22%(体积)的DiH2O组成。测试X8PC和W205EC在不同情况下减少一组微生物生长的能力。图35显示在室温和37℃下用10%、1%和0.1%稀释的X8PC能引起偶发分枝杆菌对数降低。
干细菌或者湿细菌与2%W205EC的乳液(含有或不含有1%、2%和3%Natrosol)在室温下培养15分钟后,每组中的大肠杆菌都显示有大约2对数减少。干细菌或者湿细菌与2%W205EC的乳液(含有或不含有1%、2%和3%Natrosol)在室温下培养15分钟后,每组中金黄色酿脓葡萄球菌显示了大约4对数减少。湿细菌与2%W205EC的乳液(含有或不含有1%、2%和3%Natrosol)在室温下培养15分钟后,每组淋病奈瑟氏球菌都显示了大约3对数减少。
一种橡胶表面用于测试在不同温度下及用不同类型的水稀释的1%W205EC的杀菌活性。一英寸的表面用20g皮带碎屑涂抹。鼠伤寒杆菌人工喷洒到表面上并干燥20分钟。该处置过程中有3次间隔,间隔为一分钟,在每一间隔操作暂停1分钟。随后在室温下培养10分钟。结果显示在图36中。该数据表明在每一测试温度下,在使用diH2O、蒸馏水和自来水时,W205EC都是有效的。
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