CN117529646A - 动物网织红细胞检测方法、样本分析仪 - Google Patents
动物网织红细胞检测方法、样本分析仪 Download PDFInfo
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Abstract
一种样本分析仪及动物网织红细胞的检测方法，样本分析仪在采集到动物的血液样本后，可以根据动物的动物类型确定与该动物对应的网织红细胞孵育时间，基于该网织红细胞孵育时间控制血液样本的孵育时间以制备得到待测样本液，由于使用此网织红细胞孵育时间得到的待测样本液中网织红细胞的破碎情况在预设合理范围内，保证了网织红细胞检测结果的准确性，提高了动物检测适用范围。
Description
本申请涉及医疗设备技术领域，更具体地，是动物网织红细胞检测方法、样本分析仪。
样本分析仪，可以用于动物血液(静脉血或动脉血)样本的测试，例如检测血液样本中红细胞、白细胞、血小板、血红蛋白、网织红细胞等的相关参数。发明人经研究发现，目前的样本分析仪对动物网织红细胞的检测结果准确性不稳定，即某些种类动物的网织红细胞检测结果较为准确，但某些种类动物的网织红细胞检测结果却不够准确。
发明内容
有鉴于此，本申请提供了一种动物网织红细胞检测方法及样本分析仪，用于保证各种不同类型动物的网织红细胞检测结果的准确性，提高动物网织红细胞检测方法的广泛适用性。
在一实施例中，本申请提供了一种样本分析仪，包括：
采样装置，用于采集目标动物的血液样本，并将所述血液样本输送至样本制备装置；
样本制备装置，具有反应池及输送部，所述反应池用于提供反应场所供所述血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应，以制备得到待测样本液，所述输送部用于将所述反应池的待测样本液输送至检测装置；
检测装置，用于对所述待测样本液进行检测以得到所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号；
控制装置，与所述样本制备装置及所述检测装置通信连接，其配置为确定所述目标动物的动物类型，并基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；基于所述第一目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，所述孵育时间包括所述 待测样本液在所述反应池的反应时长和/或所述输送部将所述待测样本液输送至所述检测装置的输送时长；根据所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到所述待测样本液中网织红细胞的检测结果。
在一实施例中，本申请提供了一种动物网织红细胞的检测方法，包括：
控制采样装置采集目标动物的血液样本；
确定所述目标动物的动物类型，并基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；
根据所述第一目标网织红细胞孵育时间确定待测样本液的孵育时间，所述孵育时间包括所述待测样本液的反应时长和/或将待测样本液输送至检测装置的输送时长；
基于所述孵育时间，控制所述血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应以制备得到待测样本液及控制所述待测样本液输送至检测装置；
控制所述检测装置对所述待测样本液进行检测以得到所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号，并根据所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到所述待测样本液中网织红细胞的检测结果。
由以上技术方案可知，本申请实施例提供的样本分析仪在采集到动物的血液样本后，可以根据动物的动物类型确定与该动物对应的网织红细胞孵育时间，基于该网织红细胞孵育时间控制血液样本的孵育时间以制备得到待测样本液，由于使用此网织红细胞孵育时间得到的待测样本液中网织红细胞的破碎情况在预设合理范围内，从而保证了网织红细胞检测结果的准确性。可见，此样本分析仪可以提高各种不同类型动物的网织红细胞检测结果准确性，提高了动物检测适用范围。
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1A为样本分析仪的一种结构框图；
图1B为样本分析仪的一种结构示意图；
图2A为待测样本液与鞘液通过流动室的一个示意图；
图2B为流式激光荧光染色网织红细胞的一个测试原理图；
图2C为网织红细胞的一散点分布示例图；
图3A为单独网织红细胞的一检测流程图；
图3B为全参数网织红细胞的一检测流程图；
图4为控制装置的一结构示意图；
图5A为网织红细胞检测结果界面的一示例图；
图5B为孵育时间调整界面的一示例图；
图6为动物网织红细胞的检测方法的一流程示意图；
图7为动物网织红细胞的检测方法的另一流程示意图。
下面将结合本申请实施例中的附图，对本申请实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本申请一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本申请中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本申请保护的范围。
样本分析仪可以用于分析血液、体液、骨髓、尿液、组织等样本中的细胞或其他成分。经研究发现，目前的样本分析仪在对动物血液中的网织红细胞进行检测时，会出现某些动物的网织红细胞检测结果正常，但某些动物的网织红细胞检测结果异常的情况。也就是说，目前样本分析仪对动物网织红细胞的检测结果准确性不够稳定。为解决此技术问题，发明人对样本分析仪检测动物网织红细胞的过程进行研究并提出了针对性的解决方案。
为便于理解本申请的技术方案，首先对网织红细胞检测相关的一些概念及术语进行解释。
网织红细胞是晚幼红细胞脱核后的红细胞，比成熟红细胞稍大，胞质内尚含有残存的核糖体致密颗粒、线粒体和铁蛋白等嗜碱性物质。此细胞介于晚幼红细胞与成熟红细胞之间，存活期约1.3天，是反映骨髓造血功能的重要指标。
一般地，网织红细胞的检测结果包括以下中的一项或多项：光学红细胞数目(RBC-O)、网织红细胞百分率(RET％)、网织红细胞数目(RET#)、网织红血红蛋白含量表达值(RHE)、未成熟网织红细胞比例(IRF)、低荧 光强度网织红细胞比率(LFR)、中荧光强度网织红细胞比率(MFR)、高荧光强度网织红细胞比率(HFR)、未成熟血小板比率(IPF)及光学血小板数目(PLT-O)。如果样本的网织红细胞的检测结果中网织红细胞计数增高，则表示该样本的动物体骨髓造血功能旺盛，此结果多见于失血性贫血和溶血性贫血的动物体；如果网织红细胞计数减少，则表示动物体骨髓造血功能低下，可能存在再生障碍性贫血、肾病、内分泌疾病等病症。
发明人发现目前样本分析仪对狗、猫等血液样本中网织红细胞的检测结果较为准确，但在检测小鼠等血液样本中的网织红细胞时，检测结果准确性却较低。例如表1及表2提供了一组狗和小鼠的网织红细胞检测结果对照实验数据，表1为狗的六组血液样本分别由样本分析仪及人工镜检得到的网织红细胞百分率(RET％)，表2为小鼠的六组血液样本分别由样本分析仪及人工镜检得到的网织红细胞百分率(RET％)。如表1所示，六组狗血液样本的网织红细胞百分率，样本分析仪的检测结果(仪检)与人工镜检的检测结果(人检)基本一致，说明样本分析仪对狗的网织红细胞检测结果较为准确，但如表2所示，同一样本分析仪对六组小鼠血液样本的网织红细胞百分率检测结果，与人工镜检的网织红细胞百分率检测结果相差较大，且样本分析仪的检测结果明显偏低。
表1
| 血液样本 | 仪检(RET％) | 人检(RET％) | 仪检/人检 | RBC-O/RBC-I |
| 1 | 2.01 | 2.09 | 0.96 | 0.99 |
| 2 | 2.52 | 2.43 | 1.04 | 0.98 |
| 3 | 2.42 | 2.5 | 0.97 | 1.03 |
| 4 | 5.12 | 5.24 | 0.98 | 1.02 |
| 5 | 0.44 | 0.36 | 1.22 | 1.01 |
| 6 | 1.53 | 1.58 | 0.97 | 0.97 |
表2
| 血液样本 | 仪检(RET％) | 人检(RET％) | 仪检/人检 | RBC-O/RBC-I |
| 1 | 1.62 | 2.56 | 0.63 | 0.82 |
| 2 | 1.35 | 3.56 | 0.38 | 0.85 |
| 3 | 1.23 | 4.32 | 0.29 | 0.86 |
| 4 | 5.12 | 9.72 | 0.53 | 0.81 |
| 5 | 1.34 | 3.54 | 0.38 | 0.86 |
| 6 | 2.15 | 4.64 | 0.46 | 0.83 |
面对上述检测结果不准确的问题，发明人从样本分析仪对网织红细胞的检测流程出发，研究影响检测结果准确性的条件或因素。
目前样本分析仪在稀释液中加入血液样本和染液后混匀得到待测样本液，待测样本液与鞘液一起通过流动室进行检测，检测得到的光学脉冲信号经分析后得到网织红细胞的检测结果。发明人认为表2中小鼠血液样本的网织红细胞检测结果偏低，可能是由于进入流动室的待测样本液中网织红细胞数量变少，进一步研究后发现网织红细胞数量变少可能与待测样本液的孵化过程相关，因为在待测样本液的孵化过程中，网织红细胞稀释液的渗透压低于网织红细胞，血液样本中的网织红细胞与稀释液接触后在稀释液的作用下进行球形化，球形化的网织红细胞在染液作用下进行染色，染色后的网织红细胞才能在流动室检测到光学脉冲信号。如果孵化时间过长可能使网织红细胞因吸收过多的稀释液而破碎，从而导致检测结果中的网织红细胞百分比偏低。
为了验证网织红细胞检测结果准确性与孵化时间之间的关系，发明人调整小鼠待测样本液的孵化时间(由表2的25秒调整为8秒)后，重新对小鼠的六组血液样本进行检测，得到表3所示的网织红细胞检测结果。对比表2与表3后，小鼠的待测样本液的孵化时间由25秒调整为8秒后，由仪检与人检的比例可以看出，网织红细胞的检测结果准确性明显提高。
表3
| 血液样本 | 仪检(RET％) | 人检(RET％) | 仪检/人检 | RBC-O/RBC-I |
| 1 | 2.43 | 2.56 | 0.95 | 1.01 |
| 2 | 3.62 | 3.56 | 1.02 | 1.02 |
| 3 | 4.23 | 4.32 | 0.98 | 0.98 |
| 4 | 9.92 | 9.72 | 1.02 | 0.97 |
| 5 | 3.31 | 3.54 | 0.94 | 1.01 |
| 6 | 4.63 | 4.64 | 0.99 | 1.02 |
为了进一步验证网织红细胞检测结果准确性与孵化时间之间的关系，发明人调整狗待测样本液的孵化时间(由表1的25秒调整为8秒)后，重新对狗的六组血液样本进行检测，得到表4所示的网织红细胞检测结果。对比表1与表4后，狗的待测样本液的孵化时间由25秒调整为8秒后，由仪检与人检的比例可以看出，网织红细胞的检测结果准确性明显降低。
表4
| 血液样本 | 仪检(RET％) | 人检(RET％) | 仪检/人检 | RBC-O/RBC-I |
| 1 | 2.01 | 2.09 | 0.96 | 0.98 |
| 2 | 1.95 | 2.43 | 0.80 | 0.99 |
| 3 | 2.12 | 2.5 | 0.85 | 1.02 |
| 4 | 3.12 | 5.24 | 0.60 | 1.01 |
| 5 | 0.24 | 0.36 | 0.67 | 1.02 |
| 6 | 1.23 | 1.58 | 0.78 | 0.99 |
通过以上研究过程发明人确定，样本分析仪对网织红细胞检测结果的准确性与待测样本的孵化时间有关，具体是不同类型的动物需要的孵化时间不同，基于研究结论对样本分析仪进行改进，以提高样本分析仪对不同类型动物的网织红细胞检测结果的准确性，进而提升样本分析仪的广泛适用性。
以下结合图1A-5A，对本申请实施例提供的样本分析仪进行说明。
如图1A及图1B所示，本申请实施例提供的一种样本分析仪可以包括采样装置10、样本制备装置20、检测装置30及控制装置40。
采样装置10，用于采集目标动物的血液样本并将血液样本输送至样本制备装置20。其中目标动物可以是任一类型的动物，如狗、小鼠、大鼠、猫等等。需要说明的是，样本分析仪除了可以分析血液样本外，还可以分析尿液、体液等其他类型的样本。
样本制备装置20，具有反应池及输送部，反应池用于提供反应场所供血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应，以制备得到待测样本液，输送部用于将反应池的待测样本液输送至检测装置30。检测装置30，用于对待测样本液进行检测以得到待测样本液中细胞的光学脉冲信号。
样本制备装置20的反应池可以包括一个或多个，不同的反应池可以实现不同血细胞的检测。本申请实施例主要用于对网织红细胞进行检测，因此可以 在网织红细胞反应池中制备得到待测样本液。可以理解的是，本申请实施例中制备待测样本液所需的处理试剂是与网织红细胞检测相关的处理试剂，例如包括稀释液和网织红细胞染液。样本制备装置20可以包括试剂供应部以供应网织红细胞检测相关的处理试剂。另外，染色方法可以包括但不局限于青亚甲蓝染、RNA染色或荧光染色。
待测样本液被输送部输送至检测装置30。在一种具体实施方式中，输送部包括注射器等吸样部件，可以将待测样本液从反应池中抽取出来并通过管路将其输送至检测装置30。
检测装置30具体为光学检测装置，用于检测待测样本液中各细胞的光学脉冲信号。光学检测装置包括激光发射器及光检测部件，如图2A及2B所示的一种具体实施方式，当待测样本液与鞘液一起到达流动室，激光发射器发射的激光束对流动室中逐一经过的细胞进行照射，如图2B所示由光检测部件检测细胞在多个方向维度的光学脉冲信号，具体地，经过细胞的激光束形成两个波长的光：一个是与入射激光束波长相同的光，通过前向和侧散方向的光电二极管接收散射光信号；一个由分光镜分出荧光方向比入射激光束波长更长的光，通过光电二极管接收荧光散射光信号。从而，得到细胞的前向散射光信号(FS)、侧向散射光信号(SS)及侧向荧光散射光信号(FL)。
光学检测通道检测到两个或两个以上方向维度的光学脉冲信号后，控制装置40可以将多个方向维度中的任意两个方向维度的光学脉冲信号组合成二维的血细胞散点分布图，例如侧向荧光散射光信号(FL)和侧向散射光(SS)组合成FL-SS图、前向散射光信号(FS)和侧向散射光信号(SS)组合成FS-SS图、侧向荧光散射光信号(FL)和前向散射光信号(FS)组合成FL-FS图。在本申请实施例中，控制装置40根据待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到待测样本液中网织红细胞的检测结果。例如图2C提供的一种血细胞散点分布图示例，其是由侧向荧光散射光信号(FL)和前向散射光信号(FS)形成的血细胞散点分布图，该分布图包含红细胞区域、网织红细胞区域和血小板区域。统计红细胞区域、网织红细胞区域和血小板区域的粒子数量，可以得到光学红细胞数目、网织红细胞百分率、网织红细胞数目、网织红血红蛋白含量表达值、未成熟网织红细胞比例、低荧光强度网织红细胞比率、中荧光强度网织红细胞比率、高荧光强度网织红细胞比率、未成熟血小板比率和光学血小板数目等与 网织红细胞相关的检测结果。
样本分析仪可以提供网织红细胞检测的一种或两种检测流程，例如样本分析仪可以仅提供图3A或图3B所示的任意一种检测流程，或者集成图3A和图3B的两个检测流程，在实际应用中用户可以根据检测需求选择使用其中的一种。
如图3A所示的一网织红细胞检测流程，在网织红细胞反应池中加入稀释液、目标动物的血液样本以及网织红细胞染液，混匀后得到待测样本液，待测样本液与鞘液一起被输送至流动室，基于检测装置的检测信号得到网织红细胞检测结果(包括但不限于光学红细胞数目、网织红细胞百分率、网织红细胞数目、网织红血红蛋白含量表达值、未成熟网织红细胞比例、低荧光强度网织红细胞比率、中荧光强度网织红细胞比率、高荧光强度网织红细胞比率、未成熟血小板比率及光学血小板数目)。
图3A所示的检测流程可以称为网织红细胞单独检测流程或网织红细胞单独测试时序，除了该种检测流程外，若样本制备装置20包括多个反应池，样本分析仪还可以执行全参数网织红细胞检测流程(或称为全参数网织红细胞测试时序)。全参数网织红细胞测试流程指的是，除了检测网织红细胞相关参数外，还可以检测其他类型细胞的相关参数。如图3B所示的一种全参数网织红细胞测试流程，可以将网织红细胞的检测与白细胞、有核红细胞的检测同时完成。白细胞的检测流程为，在白细胞分类反应池中加入白细胞分类溶血剂、目标动物的血液样本及染液，混匀后得到待测样本液，待测样本液与鞘液一起被输送至流动室，基于检测装置的检测信号得到白细胞分类结果(包括但不限于中性粒细胞计数值、中性粒细胞百分比、淋巴细胞计数值、淋巴细胞百分比、单核细胞计数值、单核细胞百分比、嗜酸性粒细胞计数值、嗜酸性粒细胞百分比)。有核红细胞的检测流程为，在有核红细胞反应池中加入溶血剂、目标动物的血液样本及染液，混匀后得到待测样本液，待测样本液与鞘液一起被输送至流动室，基于检测装置的检测信号得到有核红细胞检测结果(包括但不限于白细胞计数值、嗜碱性粒细胞计数值、嗜碱性粒细胞百分比、有核红细胞计数值、有核红细胞百分比)。需要说明的是，图3B仅仅是一种示例说明，在实际应用中，网织红细胞的检测可以与其他类型的红细胞一起进行全参数检测流程。
由上述检测流程可以看出，目标动物的血液样本需要在样本制备装置20进行孵育得到待测样本液。待测样本液在样本制备装置中的孵育时间可以包括血液样本与处理试剂的反应时长和被输送部输送至检测装置所需的输送时长。反应时长包括血液样本与稀释液和染液的接触到混匀得到待测样本液的时长，输送时长包括待测样本液输送至流动室的时长。本申请实施例提供的样本分析仪主要通过控制该两个时长中的任意一个或两个实现对不同类型动物的待测样本液孵育时间的控制。需要说明的是，在全参数网织红细胞检测流程中，检测装置30对各个类型细胞的检测是依次实现的，即各个反应池分别得到各自的待测样本液后，依次经过检测装置30进行检测。因此，虽然是全参数网织红细胞检测，但依然可以单独对网织红细胞的孵育时间进行控制。全参数网织红细胞检测流程与单独网织红细胞检测流程中的孵育时间可以不同，也可以相同。
孵育时间的具体控制方式为，控制装置40与样本制备装置20通信连接，由控制装置40执行孵育时间的控制流程。即控制装置40被配置为确定目标动物的动物类型，并基于目标动物的动物类型确定目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；基于第一目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，孵育时间包括待测样本液在反应池的反应时长和/或输送部将待测样本液输送至检测装置的输送时长。
具体地，控制装置40首先确定待测样本液中血液样本采自的动物体(即目标动物)的动物类型，如动物类型包括狗、猫、小鼠及大鼠等等，然后确定该动物类型对应的网织红细胞孵育时间，将该网织红细胞孵育时间作为该目标动物的待测样本液的孵育时间。为了便于与其他动物的孵育时间区分，该目标动物对应的网织红细胞孵育时间可以称为目标网织红细胞孵育时间，为了与该目标动物的其他网织红细胞孵育时间区分，可以进一步将该孵育时间称为第一目标网织红细胞孵育时间(简称为第一孵育时间)。
控制装置40在确定目标动物的动物类型时，可以有多种实现方式。例如，见图1A所示的样本分析仪，其还可以进一步包括人机交互装置50，人机交互装置50可以包括显示屏或触控屏等显示装置，显示装置可以显示至少一种动物类型对应的虚拟按键，或者人机交互装置50可以包括声响装置以接收用户输入的动物类型的指示语音，或者人机交互装置50可以包括至少一种动物类 型对应的实体按键等。提示的这些动物类型可以是样本分析仪在出厂时预先设置的动物类型，也可以用户预先自定义的动物类型。用户通过人机交互装置50向样本分析仪输入动物类型的指示信息，如触控某动物类型对应的按键。人机交互装置50与控制装置40通信连接，在接收到携带动物类型的动物类型指示信息后，将其发送至控制装置40。控制装置40将动物类型指示信息携带的动物类型确定为目标动物的动物类型。在另一种实现方式中，控制装置40接收其他设备如手机等终端发送的该目标动物的动物类型。在另一种实现方式中，根据血液样本的特征检测识别血液样本的动物类型。在另一种实现方式中，血液样本的试管等容器粘贴有二维码等标识码，识别标识码中记载的动物类型作为目标动物的动物类型。当然，控制装置40还可以通过其他可以实现的方式确定目标动物的动物类型。
控制装置40基于目标动物的动物类型确定目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间，具体实现方式可以包括以下几种。可以理解的是，控制装置40所确定的第一孵育时间是与目标动物的网织红细胞破碎特性相关的，可以保证目标动物在第一孵育时间下制备得到的待测样本液中网织红细胞破碎情况在预设范围内，从而保证网织红细胞检测结果的准确性。
在一种实现方式中，控制装置40在确定目标动物的动物类型后，从网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系中，确定与目标动物的动物类型对应的网织红细胞孵育时间，该时间即第一目标网织红细胞孵育时间。例如预先设置三组对应关系，分别为狗对应的网织红细胞孵育时间(狗-25秒)、猫对应的网织红细胞孵育时间(猫-15秒)、小鼠对应的网织红细胞孵育时间(小鼠-5秒)，如果确定目标动物的动物类型为狗，则可以确定第一目标网织红细胞孵育时间为25秒。可以理解的是，对于网织红细胞相对容易破碎的动物，其对应的网织红细胞孵育时间较短；对于网织红细胞相对不容易破碎的动物，其对应的网织红细胞孵育时间较长。
在此种实现方式中，网织红细胞孵育时间与动物类型的预设对应关系可以存储在样本分析仪中，也可以是样本分析仪从其他设备获取的。其中，样本分析仪存储网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系，实现方式可以为基于用户的自定义信息进行存储。具体地，人机交互装置50接收用户输入的自定义信息，自定义信息携带网织红细胞孵育时间与动物类型。控制装置 40将自定义信息携带的网织红细胞孵育时间与动物类型确定为网织红细胞孵育时间与动物类型的预设对应关系，且进一步可以将该预设对应关系存储至样本分析仪本地。
在另一种实现方式中，用户如果发现样本分析仪提供的可选动物类型中并不包含目标动物的动物类型，则可以通过新增动物类型的方式输入目标动物的动物类型及其对应的第一孵育时间。具体地，人机交互装置50接收用户输入的新增动物信息，新增动物信息携带动物类型及动物类型对应的网织红细胞孵育时间，控制装置40将新增动物信息携带的动物类型确定为目标动物的动物类型，以及将新增动物信息携带的网织红细胞孵育时间确定为目标动物对应的第一孵育时间。
控制装置40在确定目标动物对应的第一孵育时间后，基于第一孵育时间控制待测样本液在样本制备装置20的孵育时间，孵育时间包括待测样本液的反应时长和/或输送时长。由于待测样本液的温度可以影响网织红细胞检测结果的准确性，反应池通常为恒温环境，管路的温度并不容易进行恒温控制，待测样本液通常会较为快速地被输送至检测装置完成检测，因此在一种具体实现方式中可以主要控制待测样本液的反应时长，而忽略待测样本液的输送时长。具体控制方式可以为，为反应池设置计时器，若检测待测样本液在反应池的反应时长达到第一孵育时间，则控制输送部将待测样本液输送至检测装置30。
控制装置40至少包括具有数据运算能力的处理组件如处理器以及计算机可读存储介质。计算机可读存储介质中存储有计算机程序以及可以存储有与计算机程序相关的数据。当计算机程序被处理器调用时，确定目标动物的动物类型，并基于目标动物的动物类型确定目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；基于第一目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以及待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到待测样本液中网织红细胞的检测结果。
控制装置40的一种具体结构请参见图4所示，控制装置40至少包括处理组件401、随机存取存储器(Random Access Memory，RAM)402、只读存储器(Read-Only Memory，ROM)403、通信接口404、I/O接口405和存储器406。处理组件401、RAM402、ROM403、通信接口404、I/O接口405和存储器406通过总线407进行通信。处理组件可以为中央处理器(Central Processing Unit，CPU)、图形处理器(Graphics Processing Unit，GPU)或其它具有运算能力的芯片。存储器406装有供处理器组件401执行的各种计算机程序及执行该计算机程序所需的数据。另外，在血液样本分析过程中，如有需要本地存储的数据如网织红细胞孵育时间，均可以存储到存储器406中。I/O接口405由比如USB、IEEE1394或RS-232C等串行接口、SCSI、IDE或IEEE1284等并行接口以及由D/A转换器和A/D转换器等组成的模拟信号接口构成。I/O接口405可以连接具有显示功能的显示装置，如液晶屏、触摸屏、LED显示屏等。控制装置40可以将得到的数据如动物类型、第一目标网织红细胞孵育时间、检测结果、网织红细胞破碎情况等，输出到显示装置上进行显示。通信接口404是可以是目前已知的任意通信协议的接口，通信接口404通过网络与外界进行通信。控制装置40可以通过通信接口404以一定的通信协议与通过该网络连接的任意装置之间传输数据，例如，控制装置40通过通信接口404与计算机设备通信，计算机设备将网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系发送至控制装置40存储；或者控制装置40通过通信接口404与显示器连接，将处理得到的数据如动物类型、第一目标网织红细胞孵育时间、检测结果、网织红细胞破碎情况等发送至显示器输出显示；又如控制装置40通过通信接口404与打印机通信，将处理得到的数据如动物类型、第一目标网织红细胞孵育时间、检测结果、网织红细胞破碎情况等发送至打印机进行打印输出。
基于上述说明可知，相比现有的样本分析仪，本申请实施例提供的样本分析仪在采集到动物的血液样本后，可以根据动物的动物类型确定与该动物对应的网织红细胞孵育时间，基于该网织红细胞孵育时间控制血液样本的孵育时间以制备得到待测样本液，由于使用此网织红细胞孵育时间得到的待测样本液中网织红细胞的破碎情况在预设合理范围内，从而保证了网织红细胞检测结果的准确性。可见，此样本分析仪可以提高各种不同类型动物的网织红细胞检测结果准确性，提高了动物检测适用范围。
在实际应用中，某些情况下同一类型的动物其血液样本中网织红细胞的破碎特性可能存在差异，例如大鼠经过放射性实验或发生某种病变后，血液样本中的网织红细胞相比未经过放射性实验的大鼠更为容易破碎。因此，即使使用与动物类型对应的网织红细胞孵育时间对待测样本液进行孵育控制，网织红细 胞的检测结果也可能不够准确。考虑到以上情况，本申请实施例提供的样本分析仪还可以对孵育时间进行更精细化的控制，即为不同动物类型设置各自对应的网织红细胞孵育时间的基础上，还进一步将同一动物类型对应的网织红细胞孵育时间设置为多个，不同的网织红细胞孵育时间对应该同一类型动物不同情况下的网织红细胞破碎特性。
为实现上述需求，样本分析仪的控制装置40在得到网织红细胞检测结果后，还可以进一步基于检测结果确定待测样本液中网织红细胞的破碎情况，若破碎情况满足预设条件，则控制人机交互装置50输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息。具体地，控制装置40基于网织红细胞检测结果可以确定出网织红细胞的破碎情况，破碎情况可以具体为破碎量或破碎比例。一旦发现网织红细胞的破碎情况满足预设条件，则说明待测样本液中网织红细胞破碎量异常，进而控制人机交互装置50输出提示信息。破碎量异常可以具体为破碎比例偏高。
在一种具体实施方式中，样本分析仪的检测装置在包括光学检测装置的基础上，还可以包括阻抗检测装置。控制装置40可以从光学检测装置得到的网织红细胞检测结果中获得网织红细胞通道红细胞数目(RBC-O)，并获得由阻抗检测装置检测得到的阻抗通道红细胞数目(RBC-I)，将网织红细胞通道红细胞数目与阻抗通道红细胞数目的比值(RBC-O/RBC-I)确定为破碎比例。如果破碎比例低于预设阈值例如0.93时，则表示网织红细胞破碎情况满足预设条件，从而控制人机交互装置50输出提示信息，以提示用户网织红细胞破碎比例偏高。在一种提示方式中，人机交互装置50可以显示检测结果界面，并将提示信息包含在检测结果界面中进行提示。如图5A所示的一检测结果界面示例，在红细胞信息(WBC Message)区域显示有“红细胞破碎比例偏高”的提示信息。在其他提示方式中，提示信息可以独立于网织红细胞检测结果单独显示，或者通过声音、灯光、图像等其他方式进行提示。需要说明的是，上述预设阈值仅仅是示例说明，其可以取0.90至0.95之间的任一数值或者在实际应用中可以根据检测需求而设置为其他数值，本申请并不做具体限定。
网织红细胞破碎情况异常则表示目标动物的血液样本需要进行复检，本申请实施例提供三种复检方案。
第一种复检方案中，样本分析仪可以提示进行复检的另一网织红细胞孵育 时间。样本分析仪默认情况下根据动物类型为目标动物确定的第一孵育时间，是该目标动物的网织红细胞在正常情况所需的孵育时间。如果目标动物经过放射性实验或发生病变，由于网织红细胞破碎特性被改变(具体是变得更容易破碎)则可能导致上述异常情况。因此，在确定待测样本液中网织红细胞的破碎情况满足预设条件的情况下，控制装置40确定短于第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间(简称为第二孵育时间)，具体地，控制装置40确定第二孵育时间的方式可以有多种，例如由用户输入第二孵育时间，或者预先存储同一类型动物的多个孵育时间，在该多个孵育时间中选择短于第一孵育时间的另一孵育时间作为第二孵育时间，等等。
进一步地，控制装置40在控制人机交互装置50输出网织红细胞破碎量异常的提示信息的同时或之后，控制人机交互装置50显示第二目标网织红细胞孵育时间，以提示用户可以基于重新设置的孵育时间对目标动物的血液样本进行复检。
用户在控制样本分析仪重新采集血液样本后，可以向样本分析仪输入确认指令，以使样本分析仪基于所确定的第二孵育时间对目标动物的血液样本进行复检。具体地，控制装置40响应用户对第二目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于第二目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。需要说明的是，控制装置40基于第二孵育时间对待测样本液的控制过程与上述第一孵育时间的控制过程相同，具体实施方式可以参见以上相关说明，此处并不赘述。
第二种复检方案中，人机交互装置50可以显示检测结果界面，该界面包括网织红细胞破碎量异常的提示信息及跳转控件，跳转控件链接至孵育时间调整界面。例如，检测结果界面可以包括“复检”控件(该控件为跳转控件)。如果用户基于提示信息确定需要对血液样本进行复检，则可以触发跳转控件。控制装置40响应用户对跳转控件的触控指令，控制人机交互装置显示孵育时间调整界面，孵育时间调整界面包括目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，其中多个网织红细胞孵育时间中的至少一个短于第一目标网织红细胞孵育时间。如图5B所示的一孵育时间调整界面的示例，假设目标动物为小鼠，用户触发检测结果界面的“复检”控件后跳转至图5B所示的孵育时间调整界面，该界面包含动物类型控件及RET孵育时间控件。动物类型控件可以自 动显示目标动物的类型即“小鼠”，用户触发RET孵育时间控件后可以显示“小鼠”这一动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间(4s、8s、25s和40s)，用户可以选择其中一网织红细胞孵育时间作为第二目标网织红细胞孵育时间。需要说明的是，为了帮助用户进行选择合适的网织红细胞孵育时间(即短于第一目标网织红细胞孵育时间的网织红细胞孵育时间)，可以在此界面提示复检之前的第一目标网织红细胞孵育时间，如展示孵育时间调整界面时将RET孵育时间控件显示的时间设置为第一目标网织红细胞孵育时40s，基于此提示用户可以选择4s、8s及25s中的任一网织红细胞孵育时间进行复检。
用户根据孵育时间调整界面的提示，可以在多个网织红细胞孵育时间中选择短于第一孵育时间的另一网织红细胞孵育时间作为第二孵育时间。为了帮助用户选择合适的第二孵育时间，孵育时间调整界面可以将第一孵育时间与其他网织红细胞孵育时间区分提示。控制装置40响应用户选择第二目标网织红细胞孵育时间的指令，基于第二目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果；其中第二目标网织红细胞孵育时间短于第一目标网织红细胞孵育时间。需要说明的是，控制装置40基于第二孵育时间对待测样本液的控制过程与上述第一孵育时间的控制过程相同，具体实施方式可以参见以上相关说明，此处并不赘述。
相比第一种复检方案，应用此复检方案用户可以快速从检测结果界面跳转至孵育时间调整界面调整孵育时间，复检更加方便快捷。当然，检测结果界面也可以并不包含跳转控件，用户可以手动切换至首页或其他复检界面，人工手动触发复检流程。
第三种复检方案，样本分析仪可以自动进行复检。具体地，若网织红细胞破碎情况满足预设条件，则控制装置40确定短于第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间，并基于第二目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。需要说明的是，控制装置40基于第二孵育时间对待测样本液的控制过程与上述第一孵育时间的控制过程相同，具体实施方式可以参见以上相关说明，此处并不赘述。
相比前两种复检方案，应用此复检方案用户只需要根据提示信息重新准备目标动物的血液样本即可，样本分析仪可以自动调整孵育时间，并基于调整后 的孵育时间重新对血液样本进行检测，复检更加自动快捷。
在实际应用中，网织红细胞的检测结果异常一方面可能由于网织红细胞破碎量出现异常，另一方面还可能由于待测样本液中网织红细胞的染色情况异常导致。基于图3A及3B所示的网织红细胞检测流程可知，血液样本中需要加入染液，染液用于对网织红细胞进行染色，染色后的网织红细胞才可以被检测装置检测。如果网织红细胞染色情况出现异常，则也可能影响网织红细胞检测结果准确性。
例如参照表1与表4的实验数据，表4中六组狗血液样本的孵育时间为8秒，表1中六组狗血液样本的孵育时间为25秒，表4网织红细胞检测结果的准确性低于表1，推断原因可能是：表4的孵育时间短，从而狗血液样本中网织红细胞的染色时间短，进而由于网织红细胞染色不够影响了网织红细胞检测结果的准确性。
因此，本申请实施例提供的样本分析仪还可以根据动物的网织红细胞染色特性，为不同类型的动物设置对应的孵育时间，以保证不同类型动物的网织红细胞检测结果准确性。
与网织红细胞破碎异常的复检方案类似，本申请实施例提供三种染色情况异常下的复检方案。
第一种复检方案，控制装置40基于检测结果确定待测样本液中网织红细胞的染色情况；若染色情况满足预设条件，则控制人机交互装置输出用于提示网织红细胞染色量异常的提示信息。样本分析仪可以自动检测网织红细胞的染色情况如染色比例，当发现染色比例异常具体是染色比例偏低，则通过人机交互装置50输出提示信息。提示信息可以参照上述破碎情况的相关说明，此处并不赘述。
在另一种具体实现方式中，用户发现网织红细胞染色异常则可以通过人机交互装置50向样本分析仪输入染色异常指令，如人机交互装置50的检测结果界面可以包含“染色异常”控件或样本分析仪设置有染色异常对应的实体按键，用户通过触发该控件或实体按键输入染色异常指令。控制装置40响应于用户输入的染色异常指令，确定长于第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，控制人机交互装置显示第三目标网织红细胞孵育时间(简称第三孵育时间)。第三目标网织红细胞孵育时间的确定方式可以参照第二目标 网织红细胞孵育时间的确定方式，此处并不赘述。
用户如果确认人机交互装置50提示的第三孵育时间合理，则可以基于人机交互装置50输入确认指令，控制装置40响应用户对第三目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。需要说明的是，第三孵育时间相较于第一孵育时间更长，可以保证待测样本液中的网织红细胞得到充分的染色，进而提高网织红细胞检测结果的准确性。
第二种复检方案，控制装置40响应于用户基于人机交互装置输入的染色异常指令，显示孵育时间调整界面；其中孵育时间调整界面包括目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，多个网织红细胞孵育时间中的至少一个长于第一目标网织红细胞孵育时间。控制装置40响应用户从多个网织红细胞孵育时间中选择第三目标网织红细胞孵育时间的指令，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
该复检方案可以提示用户多个网织红细胞孵育时间，由用户在其中选择长于第一孵育时间的第三孵育时间。
第三种复检方案，样本分析仪基于用户的染色异常指令自动进行复检。具体地，控制装置40响应于用户基于人机交互装置输入的染色异常指令，确定长于第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液在样本制备装置的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
控制装置40基于第二孵育时间对待测样本液的控制过程与上述第一孵育时间的控制过程相同，具体实施方式可以参见以上相关说明，此处并不赘述。
与样本分析仪相对应地，本申请实施例还提供了一种动物网织红细胞的检测方法，该方法可以具体由控制装置实施。见图6，动物网织红细胞检测方法可以具体包括步骤601-605。
601：控制采样装置采集目标动物的血液样本。
602：确定目标动物的动物类型，并基于目标动物的动物类型确定目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间。
603：根据第一目标网织红细胞孵育时间确定待测样本液的孵育时间，孵 育时间包括待测样本液的反应时长和/或将待测样本液输送至检测装置的输送时长。
604：基于孵育时间，控制血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应以制备得到待测样本液及控制待测样本液输送至检测装置。
605：控制检测装置对待测样本液进行检测以得到待测样本液中细胞的光学脉冲信号，并根据待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到待测样本液中网织红细胞的检测结果。
在一种具体实施方式中，确定目标动物的动物类型，包括：接收动物类型指示信息，动物类型指示信息携带动物类型；将动物类型指示信息携带的动物类型确定为目标动物的动物类型。
在一种具体实施方式中，基于目标动物的动物类型确定目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间，包括：
从网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系中，确定与目标动物的动物类型对应的网织红细胞孵育时间，将确定的网织红细胞孵育时间作为目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间。
见图7，本申请实施例提供的动物网织红细胞的检测方法在图6所示的流程基础上还包括步骤606：基于检测结果确定待测样本液中网织红细胞的破碎情况；若破碎情况满足预设条件，则输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：确定短于第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间；并在输出网织红细胞破碎量异常的提示信息的同时或之后，显示第二目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应用户对第二目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于第二目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
在一种具体实施方式中，输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息，包括：显示检测结果界面，检测结果界面包括网织红细胞破碎量异常的提示信息及跳转控件；
方法还包括：响应用户对跳转控件的触控指令，显示孵育时间调整界面，孵育时间调整界面包括目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，其中多个网织红细胞孵育时间中的至少一个短于第一目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应用户从多个网织红细胞孵育时间中选择第二目标网织红细胞孵育时间的指令，基于第二目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果；其中第二目标网织红细胞孵育时间短于第一目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：若染色情况满足预设条件，则确定长于第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，并基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应于用户输入的染色异常指令，确定长于第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，并显示第三目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应用户对第三目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应于用户输入的染色异常指令，显示孵育时间调整界面；其中孵育时间调整界面包括目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，多个网织红细胞孵育时间中的至少一个长于第一目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应用户从多个网织红细胞孵育时间中选择第三目标网织红细胞孵育时间的指令，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果，其中第三目标网织红细胞孵育时间长于第一目标网织红细胞孵育时间。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：响应于用户 输入的染色异常指令，确定长于第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，基于第三目标网织红细胞孵育时间控制待测样本液的孵育时间，以得到待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
在一种具体实施方式中，动物网织红细胞的检测方法还包括：基于检测结果确定待测样本液中网织红细胞的染色情况；若染色情况满足预设条件，则输出用于提示网织红细胞染色量异常的提示信息。
对所公开的实施例的上述说明，本说明书中各实施例中记载的特征可以相互替换或者组合，使本领域专业技术人员能够实现或使用本申请。本文参照了各种示范实施例进行说明。然而，本领域的技术人员将认识到，在不脱离本文范围的情况下，可以对示范性实施例做出改变和修正。例如，各种操作步骤以及用于执行操作步骤的组件，可以根据特定的应用或考虑与***的操作相关联的任何数量的成本函数以不同的方式实现(例如一个或多个步骤可以被删除、修改或结合到其他步骤中)。
本文的说明书和权利要求书及上述附图中的术语“第一”、“第二”等是用于区别不同的对象，而不是用于描述特定顺序。此外，术语“包括”和“具有”以及它们任何变形，意图在于覆盖不排他的包含。例如包含了一系列步骤或单元的过程、方法、***、产品或设备没有限定于已列出的步骤或单元，而是可选地还包括没有列出的步骤或单元，或可选地还包括对于这些过程、方法或设备固有的其他步骤或单元。
另外，如本领域技术人员所理解的，本文的原理可以反映在计算机可读存储介质上的计算机程序产品中，该可读存储介质预装有计算机可读程序代码。任何有形的、非暂时性的计算机可读存储介质皆可被使用，包括磁存储设备(硬盘、软盘等)、光学存储设备(CD-ROM、DVD、Blu Ray盘等)、闪存和/或诸如此类。这些计算机程序指令可被加载到通用计算机、专用计算机或其他可编程数据处理设备上以形成机器，使得这些在计算机上或其他可编程数据处理装置上执行的指令可以生成实现指定的功能的装置。这些计算机程序指令也可以存储在计算机可读存储器中，该计算机可读存储器可以指示计算机或其他可编程数据处理设备以特定的方式运行，这样存储在计算机可读存储器中的指令就可以形成一件制造品，包括实现指定功能的实现装置。计算机程序指令也可以加载到计算机或其他可编程数据处理设备上，从而在计算机或其他可编程 设备上执行一系列操作步骤以产生一个计算机实现的进程，使得在计算机或其他可编程设备上执行的指令可以提供用于实现指定功能的步骤。
前述具体说明已参照各种实施例进行了描述。然而，本领域技术人员将认识到，可以在不脱离本披露的范围的情况下进行各种修正和改变。因此，对于本披露的考虑将是说明性的而非限制性的意义上的，并且所有这些修改都将被包含在其范围内。同样，有关于各种实施例的优点、其他优点和问题的解决方案已如上所述。然而，益处、优点、问题的解决方案以及任何能产生这些的要素，或使其变得更明确的解决方案都不应被解释为关键的、必需的或必要的。本文中所用的术语“包括”和其任何其他变体，皆属于非排他性包含，这样包括要素列表的过程、方法、文章或设备不仅包括这些要素，还包括未明确列出的或不属于该过程、方法、***、文章或设备的其他要素。此外，本文中所使用的术语“耦合”和其任何其他变体都是指物理连接、电连接、磁连接、光连接、通信连接、功能连接和/或任何其他连接。
以上实施例仅表达了几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (33)
- 一种样本分析仪，其特征在于，包括：采样装置，用于采集目标动物的血液样本，并将所述血液样本输送至样本制备装置；样本制备装置，具有反应池及输送部，所述反应池用于提供反应场所供所述血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应，以制备得到待测样本液，所述输送部用于将所述反应池的待测样本液输送至检测装置；检测装置，用于对所述待测样本液进行检测以得到所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号；控制装置，与所述样本制备装置及所述检测装置通信连接，其配置为确定所述目标动物的动物类型，并基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；基于所述第一目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，所述孵育时间包括所述待测样本液在所述反应池的反应时长和/或所述输送部将所述待测样本液输送至所述检测装置的输送时长；根据所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到所述待测样本液中网织红细胞的检测结果。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括人机交互装置；人机交互装置，与所述控制装置通信连接，其配置为接收动物类型指示信息，所述动物类型指示信息携带动物类型；将所述动物类型指示信息发送至所述控制装置；在执行确定所述目标动物的动物类型的步骤时，所述控制装置具体配置为：将所述动物类型指示信息携带的动物类型确定为所述目标动物的动物类型。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，在执行基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间的步骤时，所述控制装置具体配置为：从网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系中，确定与所述目标动物的动物类型对应的网织红细胞孵育时间，将确定的网织红细胞孵育时间作为所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求3所述的样本分析仪，其特征在于，还包括人机交互装置；人机交互装置，与所述控制装置通信连接，其配置为接收自定义信息，所述自定义信息携带网织红细胞孵育时间与动物类型；将所述自定义信息发送至 所述控制装置；控制装置还配置为，将所述自定义信息携带的网织红细胞孵育时间与动物类型确定为网织红细胞孵育时间与动物类型的预设对应关系。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，在执行基于所述第一目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间的步骤时，所述控制装置具体配置为：若检测所述待测样本液在所述反应池的反应时长达到所述第一目标网织红细胞孵育时间，则控制所述输送部将所述待测样本液输送至所述检测装置。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括与所述控制装置通信连接的人机交互装置；所述控制装置还配置为：基于所述检测结果确定所述待测样本液中网织红细胞的破碎情况；若所述破碎情况满足预设条件，则控制所述人机交互装置输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息。
- 根据权利要求6所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配置为：确定短于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间，并控制所述人机交互装置输出网织红细胞破碎量异常的提示信息的同时或之后，控制所述人机交互装置显示所述第二目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求7所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配置为：响应用户对所述第二目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于所述第二目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求6所述的样本分析仪，其特征在于，人机交互装置具体配置为，显示检测结果界面，所述检测结果界面包括所述网织红细胞破碎量异常的提示信息及跳转控件；所述控制装置还配置为：响应用户对所述跳转控件的触控指令，控制所述人机交互装置显示孵育时间调整界面，所述孵育时间调整界面包括所述目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，其中所述多个网织红细胞孵育时间中的至少一个短于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求9所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配 置为：响应用户从所述多个网织红细胞孵育时间中选择第二目标网织红细胞孵育时间的指令，基于所述第二目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果；其中所述第二目标网织红细胞孵育时间短于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求6所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配置为：若所述破碎情况满足预设条件，则确定短于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间，并基于所述第二目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求6-11任一项所述的样本分析仪，其特征在于，所述破碎情况包括破碎比例；在执行基于所述检测结果确定所述待测样本液中网织红细胞的破碎情况的步骤时，所述控制装置具体配置为：从所述检测结果中获得网织红细胞通道红细胞数目，获得由阻抗通道检测得到的阻抗通道红细胞数目；将所述网织红细胞通道红细胞数目与所述阻抗通道红细胞数目的比值确定为所述破碎比例。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括与所述控制装置通信连接的人机交互装置；所述控制装置还配置为：响应于用户基于所述人机交互装置输入的染色异常指令，确定长于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，控制所述人机交互装置显示所述第三目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求13所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配置为：响应用户对所述第三目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括与所述控制装置通信连接的人机交互装置；所述控制装置还配置为：响应于用户基于所述人机交互装置输入的染色异常指令，显示孵育时间调整界面；其中所述孵育时间调整界面包括所述目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，所述多个网织红细胞孵育时间中的至少一个长于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求15所述的样本分析仪，其特征在于，所述控制装置还配置为：响应用户从所述多个网织红细胞孵育时间中选择第三目标网织红细胞孵育时间的指令，其中所述第三目标网织红细胞孵育时间长于所述第一目标网织红细胞孵育时间，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括与所述控制装置通信连接的人机交互装置；所述控制装置还配置为：响应于用户基于所述人机交互装置输入的染色异常指令，确定长于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液在所述样本制备装置的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求1所述的样本分析仪，其特征在于，还包括与所述控制装置通信连接的人机交互装置；所述控制装置还配置为：基于所述检测结果确定所述待测样本液中网织红细胞的染色情况；若所述染色情况满足预设条件，则控制所述人机交互装置输出用于提示网织红细胞染色量异常的提示信息。
- 一种动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，包括：控制采样装置采集目标动物的血液样本；确定所述目标动物的动物类型，并基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间；根据所述第一目标网织红细胞孵育时间确定待测样本液的孵育时间，所述孵育时间包括所述待测样本液的反应时长和/或将待测样本液输送至检测装置的输送时长；基于所述孵育时间，控制所述血液样本和与网织红细胞检测相关的处理试剂进行反应以制备得到待测样本液及控制所述待测样本液输送至检测装置；控制所述检测装置对所述待测样本液进行检测以得到所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号，并根据所述待测样本液中细胞的光学脉冲信号得到所述待测样本液中网织红细胞的检测结果。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，确定所述目标动物的动物类型，包括：接收动物类型指示信息，所述动物类型指示信息携带动物类型；将所述动物类型指示信息携带的动物类型确定为所述目标动物的动物类型。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，基于所述目标动物的动物类型确定所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间，包括：从网织红细胞孵育时间与动物类型的多组预设对应关系中，确定与所述目标动物的动物类型对应的网织红细胞孵育时间，将确定的网织红细胞孵育时间作为所述目标动物对应的第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：基于所述检测结果确定所述待测样本液中网织红细胞的破碎情况；若所述破碎情况满足预设条件，则输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息。
- 根据权利要求22所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：确定短于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第二目标网织红细胞孵育时间；并在输出网织红细胞破碎量异常的提示信息的同时或之后，显示所述第二目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求23所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应用户对所述第二目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于所述第二目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求22所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，输出用于提示网织红细胞破碎量异常的提示信息，包括：显示检测结果界面，所述检测结果界面包括所述网织红细胞破碎量异常的提示信息及跳转控件；所述方法还包括：响应用户对所述跳转控件的触控指令，显示孵育时间调整界面，所述孵育时间调整界面包括所述目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，其中所述多个网织红细胞孵育时间中的至少一个短于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求25所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应用户从所述多个网织红细胞孵育时间中选择第二目标网织红细胞孵育时间的指令，基于所述第二目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果；其中所述第二目标网织红细胞孵育时间短于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求22所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：若所述染色情况满足预设条件，则确定长于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，并基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应于用户输入的染色异常指令，确定长于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，并显示所述第三目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求28所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应用户对所述第三目标网织红细胞孵育时间的确认指令，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还 包括：响应于用户输入的染色异常指令，显示孵育时间调整界面；其中所述孵育时间调整界面包括所述目标动物的动物类型对应的多个网织红细胞孵育时间，所述多个网织红细胞孵育时间中的至少一个长于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求30所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应用户从所述多个网织红细胞孵育时间中选择第三目标网织红细胞孵育时间的指令，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果；其中所述第三目标网织红细胞孵育时间长于所述第一目标网织红细胞孵育时间。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：响应于用户输入的染色异常指令，确定长于所述第一目标网织红细胞孵育时间的第三目标网织红细胞孵育时间，基于所述第三目标网织红细胞孵育时间控制所述待测样本液的孵育时间，以得到所述待测样本液中网织红细胞的另一检测结果。
- 根据权利要求19所述的动物网织红细胞的检测方法，其特征在于，还包括：基于所述检测结果确定所述待测样本液中网织红细胞的染色情况；若所述染色情况满足预设条件，则输出用于提示网织红细胞染色量异常的提示信息。
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