CN116515788B - R型ω-转氨酶及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了R型ω‑转氨酶,包括ω‑转氨酶TA‑R1、ω‑转氨酶TA‑R2或ω‑转氨酶TA‑R3的至少一种,所述ω‑转氨酶TA‑R1的氨基酸序列如Seq ID NO:1所示,ω‑转氨酶TA‑R2的氨基酸序列如Seq ID NO:2所示,ω‑转氨酶TA‑R3的氨基酸序列如Seq ID NO:3所示。本发明提供的R型的ω‑转氨酶TA‑R1、TA‑R2、TA‑R3及其基因,解决了现有手性胺不对称生物合成技术中R型的ω‑转氨酶资源相对不足的问题,并基于新酶资源开发了新的R型手性胺化合物不对称生物合成方法。

Description

R型ω-转氨酶及其应用
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及R型ω-转氨酶及其基因和应用。
背景技术
手性胺类药物是手性药物中的一个重要类别,很多药物分子在合成过程中都有手性胺结构模块的参与。例如,降糖药物西他列汀、抗菌药物莫西沙星等,都含有手性胺结构单元。开发经济、绿色、特异、高效的手性胺合成技术,是手性药物合成开发领域的一个重要方面。目前,手性胺类化合物可通过三种方式合成,即化学合成、动力学拆分、不对称生物催化合成。传统的化学合成法一般具有反应体系明确、通用性好的优点,但同时也经常存在反应步骤多、立体选择性有限、重金属污染、催化剂成本高等问题。动力学拆分法具有反应简单的优点,利用合适的催化剂对外消旋胺进行手性拆分即可,但该方法的最高理论转化率为50%,大大限制了这种方法的工业应用潜力。相比之下,利用ω-转氨酶不对称催化合成手性胺,则具有反应简单、过程温和、立体特异性高等特点,已在手性胺合成生产中展现了巨大应用潜力。2010年,美国默克公司和Codexis公司研究人员运用蛋白质工程技术,改造获得了一个溶剂耐受能力强、催化活力高的ω-转氨酶突变体ATA117,并成功用于降糖药物西他列汀的催化合成过程,实现了西他列汀生产工艺的大幅简化以及生产效率的显著提升(2010 Science 329: 305-309)。
获得具有立体催化特异性的ω-转氨酶,是进行手性胺不对称生物合成的前提。由于自然界中R型ω-转氨酶的丰度远低于S型,当前可用的R型ω-转氨酶催化剂资源十分有限,这一情况限制了R型手性胺化合物的合成。为了弥补R型ω-转氨酶资源相对不足的现状以及开发新的R型手性胺化合物合成方法,本发明利用基于机器学习算法驱动的酶元件挖掘研究技术,从海洋宏基组数据库中挖掘获得一种R型ω-转氨酶,用于R型手性胺化合物的生物合成。
发明内容
为了解决现有技术中的不足,本发明提供了R型的ω-转氨酶及其基因,解决了现有手性胺不对称生物合成技术中R型的ω-转氨酶资源相对不足的问题,并基于新酶资源开发新的R型手性胺化合物不对称生物合成方法。
本发明提供了R型ω-转氨酶,包括ω-转氨酶TA-R1、ω-转氨酶TA-R2或ω-转氨酶TA-R3的至少一种,所述ω-转氨酶TA-R1的氨基酸序列如Seq ID NO:1所示,ω-转氨酶TA-R2的氨基酸序列如Seq ID NO:2所示,ω-转氨酶TA-R3的氨基酸序列如Seq ID NO:3所示。
本发明还提供了所述的R型ω-转氨酶的基因,所述基因序列包括下述①、②、③至少一种基因序列,
①所述R型ω-转氨酶为ω-转氨酶TA-R1,ω-转氨酶TA-R1基因序列为如下a)或b)所示的核苷酸序列:a)如Seq ID NO:4所示的核苷酸序列;b)如Seq ID NO:4所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使获得如Seq ID NO:1所示的氨基酸序列的核苷酸序列;
②所述R型ω-转氨酶为ω-转氨酶TA-R2,基因序列为如下c)或d)所示的核苷酸序列:c)如Seq ID NO:5所示的核苷酸序列;d)如Seq ID NO:5所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使获得如Seq ID NO:2所示的氨基酸序列的核苷酸序列;
③所述R型ω-转氨酶为ω-转氨酶TA-R3,ω-转氨酶TA-R3基因序列为如下e)或f)所示的核苷酸序列:e)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列;f)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使获得如Seq ID NO:3所示的氨基酸序列的核苷酸序列。
优选的,本发明提供的R型ω-转氨酶TA-R1,包括如Seq ID NO:1所示的氨基酸序列。
本发明利用已公开的海洋微生物宏基因组数据资源OM-RGC(2015 Science 348:1261359)作为数据源,进行R型ω-转氨酶资源的挖掘。首先,根据功能已知的R型ω-转氨酶蛋白序列构建BLOSUM矩阵,根据对矩阵的分析建立相应隐马尔科夫模型,进行利用该模型在OM-RGC数据库中进行搜索,获得本发明所述R型ω-转氨酶TA-R1,其氨基酸序列如Seq IDNO:1所示,蛋白大小为309个氨基酸残基。与节杆菌(Arthrobacter sp.)来源的典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号BAK39753.1)相比,TA-R1与其序列一致性为33%;与土曲霉(Aspergillus terreus)来源的另一典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号XP_001209325.1)相比,TA-R1与其序列一致性也仅为37%。
优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1,对苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠中至少一种氨基受体具有转氨酶活性。上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化温度为25-45℃。进一步优选的催化温度为25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45℃。上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1,催化体系pH为6.5-9.0。进一步优选的催化体系pH为6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化体系中氨基供体/受体摩尔比:1:1~20:1。进一步优选为,1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1、11:1、12:1、13:1、14:1、15:1、16:1、17:1、18:1、19:1、20:1。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化体系中包含0.1-2.0mM的磷酸吡哆醛(PLP)。进一步优选为,0.1、0.3、0.7、1.0、1.4、1.8、2.0mM。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化体系中包含5%~20% DMSO(体积百分数)。进一步优选为,5%、8%、10%、12%、15%、17%、20%,10%-20%。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化体系中包含浓度范围为0.02-0.15M的磷酸盐缓冲液或三乙醇胺缓冲溶液。进一步优选为,0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10、0.11、0.12、0.13、0.14、0.15M。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R1催化体系包括:0.1M磷酸钾缓冲液、10 mM氨基受体、5%~20% DMSO、0.5 mM磷酸吡哆醛、25 mM 氨基供体、0.4~2.0 mg/mlR型ω-转氨酶TA-R1。
上述任一项优选的是,所述氨基供体包括4-硝基苯乙胺、R型甲基苄胺。
在本发明一项优选的实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM氨基受体、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶TA-R1催化剂,在30℃条件下500rpm振荡反应18小时,TA-R1对苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠中至少一种氨基受体具有转氨酶活性。
在本发明一项优选实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30°C条件下400 rpm振荡反应18小时,TA-R1对R-MBA为氨基供体具有催化活性,对S-MBA没有明显催化活性。
本发明还提供了一种R型ω-转氨酶TA-R1基因,其基因序列为如下a)或b)所示的核苷酸序列:a)如Seq ID NO:4所示的核苷酸序列;b)如Seq ID NO:4所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:1所示的氨基酸序列的核苷酸序列。
优选的,b)所示的核苷酸序列为Seq ID NO:4所示的核苷酸序列经过大肠杆菌表达的密码子优化获得。密码子优化的方法为现有技术中已知的软件或方法。
优选的,Seq ID NO:4所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:1所示的氨基酸序列的核苷酸序列优选为Seq ID NO:7所示的核苷酸序列。
本发明还提供了一种重组质粒,所述重组质粒由上述的基因序列与表达载体质粒连接构建而成。
优选的,所述表达载体包括pET系列、pET-GST、pGEX系列(含GST标签)、 pMAL系列等,进一步优选为pET-28b(+)载体、pET15b,pET28a、pGEX4T1,pGEX-6p-1等。优选的,将SeqID NO:4编码的TA-R1序列构建于pET-28b(+)载体,获得pET-28b(+)-TA-R1质粒。
上述任一项优选的是,所述重组质粒转化宿主菌获得TA-R1重组基因工程菌株。优选的,所述基因工程菌为转染有pET-28b(+)-TA-R1质粒的大肠杆菌BL21(DE3)。
本发明还提供了上述任一项所述的R型ω-转氨酶TA-R1及所述的重组质粒在R型手性胺化合物不对称生物合成中的应用。
本发明还提供了含有上述任一项所述的R型ω-转氨酶或所述重组质粒的重组工程菌及其破碎液在R型手性胺化合物不对称生物合成中的应用。
优选的,本发明提供的一种R型ω-转氨酶TA-R2,包括如Seq ID NO:2所示的氨基酸序列。
本发明利用已公开的海洋微生物宏基因组数据资源OM-RGC(2015 Science 348:1261359)作为数据源,进行R型ω-转氨酶资源的挖掘。首先,根据功能已知的R型ω-转氨酶蛋白序列构建BLOSUM矩阵,根据对矩阵的分析建立相应隐马尔科夫模型,进行利用该模型在OM-RGC数据库中进行搜索,获得本发明所述R型ω-转氨酶TA-R2,其氨基酸序列如Seq IDNO:2所示,蛋白大小为300个氨基酸残基。与节杆菌(Arthrobacter sp.)来源的典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号BAK39753.1)相比,TA-R2与其序列一致性为37%;与土曲霉(Aspergillus terreus)来源的另一典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号XP_001209325.1)相比,TA-R2与其序列一致性也仅为40%。
优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2,对氨基受体丙酮酸钠具有转氨酶活性。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化温度为25-45℃。进一步优选的催化温度为25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45℃。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2,催化体系pH为6.5-9.0。进一步优选的催化体系pH为6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中氨基供体/受体摩尔比:1:1~20:1。进一步优选为,1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1、11:1、12:1、13:1、14:1、15:1、16:1、17:1、18:1、19:1、20:1。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含0.1-2.0mM的磷酸吡哆醛(PLP)。进一步优选为,0.1、0.3、0.7、1.0、1.4、1.8、2.0mM。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含5%~20% DMSO(体积百分数)。进一步优选为,5%、8%、10%、12%、15%、17%、20%,10%-20%。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含浓度范围为0.02-0.15M的磷酸盐缓冲液或三乙醇胺缓冲溶液。进一步优选为,0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10、0.11、0.12、0.13、0.14、0.15M。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2,催化体系包括:0.1M磷酸钾缓冲液、10 mM氨基受体丙酮酸钠、5%~20% DMSO、0.5 mM磷酸吡哆醛、25 mM 氨基供体、0.4~2.0 mg/ml R型ω-转氨酶TA-R2。
上述任一项优选的是,所述氨基供体包括4-硝基苯乙胺、R型甲基苄胺。
在本发明一项 优选的实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM氨基受体丙酮酸钠、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶TA-R2催化剂,在30℃条件下500rpm振荡反应18小时, TA-R2对丙酮酸钠具有转氨酶活性。
在本发明一项优选实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30°C条件下400 rpm振荡反应18小时,TA-R2对R-MBA为氨基供体具有催化活性,对S-MBA没有明显催化活性。
本发明还提供了一种R型ω-转氨酶TA-R2基因,其基因序列为如下c)或d)所示的核苷酸序列:c)如Seq ID NO:5所示的核苷酸序列;b)如Seq ID NO:5所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:2所示的氨基酸序列的核苷酸序列。
d)所示的核苷酸序列为c)所示的核苷酸序列经过大肠杆菌表达密码子优化所得。密码子优化的方法为现有技术中已知的方法。
优选的,Seq ID NO:5所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:2所示的氨基酸序列的核苷酸序列优选为Seq ID NO:8所示的核苷酸序列。
本发明还提供了一种重组质粒,所述重组质粒由上述的基因序列与表达载体质粒连接构建而成。
优选的,所述表达载体包括pET系列、pET-GST、pGEX系列(含GST标签)、 pMAL系列等,进一步优选为pET-28b(+)载体、pET15b,pET28a、pGEX4T1,pGEX-6p-1等。优选的,将SeqID NO:5编码的TA-R2序列构建于pET-28b(+)载体,获得pET-28b(+)-TA-R2质粒。
上述任一项优选的是,所述重组质粒转化宿主菌获得TA-R2重组基因工程菌株。优选的,所述基因工程菌为转染有pET-28b(+)-TA-R2质粒的大肠杆菌BL21(DE3)。
本发明还提供了上述任一项所述的R型ω-转氨酶TA-R2及所述的重组质粒以及含有所述R型ω-转氨酶TA-R2及所述的重组质粒的工程菌及其破碎液在R型手性胺化合物不对称生物合成中的应用。
优选的是,所述R型ω-转氨酶TA-R2对氨基受体丙酮酸钠具有转氨酶活性。
优选的是,所述R型ω-转氨酶TA-R2催化温度为25-45℃。进一步优选的催化温度为25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45℃。
优选的是,所述R型ω-转氨酶TA-R2催化体系pH为6.5-9.0。进一步优选的催化体系pH为6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中氨基供体/受体摩尔比:1:1~20:1。进一步优选为,1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1、11:1、12:1、13:1、14:1、15:1、16:1、17:1、18:1、19:1、20:1。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含0.1-2.0mM的磷酸吡哆醛(PLP)。进一步优选为,0.1、0.3、0.7、1.0、1.4、1.8、2.0mM。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含5%~20% DMSO(体积百分数)。进一步优选为,5%、8%、10%、12%、15%、17%、20%,10%-20%。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R2催化体系中包含浓度范围为0.02-0.15M的磷酸盐缓冲液或三乙醇胺缓冲溶液。进一步优选为,0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10、0.11、0.12、0.13、0.14、0.15M。
优选的是,所述R型ω-转氨酶TA-R2催化体系包括:0.1M磷酸钾缓冲液、10 mM氨基受体、5%~20% DMSO、0.5 mM磷酸吡哆醛、25 mM 氨基供体、0.4~2.0 mg/ml R型ω-转氨酶TA-R2。
优选的是,所述R型ω-转氨酶TA-R2的氨基供体包括4-硝基苯乙胺、R型甲基苄胺。
优选的,本发明提供的R型ω-转氨酶TA-R3,包括如Seq ID NO:3所示的氨基酸序列。
本发明利用已公开的海洋微生物宏基因组数据资源OM-RGC(2015 Science 348:1261359)作为数据源,进行R型ω-转氨酶资源的挖掘。首先,根据功能已知的R型ω-转氨酶蛋白序列构建BLOSUM矩阵,根据对矩阵的分析建立相应隐马尔科夫模型,进行利用该模型在OM-RGC数据库中进行搜索,获得本发明所述R型ω-转氨酶TA-R3,其氨基酸序列如Seq IDNO:3所示,蛋白大小为334个氨基酸残基。与节杆菌(Arthrobacter sp.)来源的典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号BAK39753.1)相比,TA-R3与其序列一致性为35%;与土曲霉(Aspergillus terreus)来源的另一典型R型ω-转氨酶(Genebank登录号XP_001209325.1)相比,TA-R3与其序列一致性也仅为34%。
优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3,对氨基受体丙酮酸钠具有转氨酶活性。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3催化温度为25-45℃。进一步优选的催化温度为25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45℃。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3,催化体系pH为6.5-9.0。进一步优选的催化体系pH为6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3催化体系中氨基供体/受体摩尔比:1:1~20:1。进一步优选为,1:1、2:1、3:1、4:1、5:1、6:1、7:1、8:1、9:1、10:1、11:1、12:1、13:1、14:1、15:1、16:1、17:1、18:1、19:1、20:1。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3催化体系中包含0.1-2.0mM的磷酸吡哆醛(PLP)。进一步优选为,0.1、0.3、0.7、1.0、1.4、1.8、2.0mM。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3催化体系中包含5%~20% DMSO(体积百分数)。进一步优选为,5%、8%、10%、12%、15%、17%、20%,10%-20%。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3催化体系中包含浓度范围为0.02-0.15M的磷酸盐缓冲液或三乙醇胺缓冲溶液。进一步优选为,0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10、0.11、0.12、0.13、0.14、0.15M。
上述任一项优选的是,所述的R型ω-转氨酶TA-R3,催化体系包括:0.1M磷酸钾缓冲液、10 mM氨基受体、5%~20% DMSO、0.5 mM磷酸吡哆醛、25 mM 氨基供体、0.4~2.0 mg/ml R型ω-转氨酶TA-R3。
优选的,所述氨基受体为丙酮酸钠。
上述任一项优选的是,所述氨基供体包括4-硝基苯乙胺、R型甲基苄胺。
在本发明一项优选的实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM氨基受体、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶TA-R3催化剂,在30℃条件下500rpm振荡反应18小时,TA-R3对氨基受体丙酮酸钠具有转氨酶活性。
在本发明一项优选实施方式中,催化体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30℃条件下400 rpm振荡反应18小时,TA-R3对R-MBA为氨基供体具有催化活性,对S-MBA没有明显催化活性。
本发明还提供了一种R型ω-转氨酶TA-R3基因,其基因序列为如下e)或f)所示的核苷酸序列:e)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列;f)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:3所示的氨基酸序列的核苷酸序列。优选的,Seq ID NO:6所示的核苷酸序列经过大肠杆菌密码子优化,获得f)所示的核苷酸序列。密码子优化方法为现有技术中记载的方法。
优选的,Seq ID NO:6所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使其获得如Seq ID NO:3所示的氨基酸序列的核苷酸序列优选为Seq ID NO:9所示的核苷酸序列。
本发明还提供了一种重组质粒,所述重组质粒由上述的基因序列与表达载体质粒连接构建而成。
优选的,所述表达载体包括pET系列、pET-GST、pGEX系列(含GST标签)、 pMAL系列等,进一步优选为pET-28b(+)载体、pET15b,pET28a、pGEX4T1,pGEX-6p-1等。优选的,将SeqID NO:6编码的TA-R3序列构建于pET-28b(+)载体,获得pET-28b(+)-TA-R3质粒。
上述任一项优选的是,所述重组质粒转化宿主菌获得TA-R3重组基因工程菌株。优选的,所述基因工程菌为转染有pET-28b(+)-TA-R3质粒的大肠杆菌BL21(DE3)。
本发明还提供了上述任一项所述的R型ω-转氨酶TA-R3及所述的重组质粒、或含有所述的R型ω-转氨酶TA-R3或所述的重组质粒的基因工程菌及其破碎液在R型手性胺化合物不对称生物合成中的应用。
附图说明
图1为本发明优选实施例3中TA-R1蛋白表达SDS-PAGE图。
图2为本发明优选实施例9中TA-R2蛋白表达SDS-PAGE图。
图3为本发明优选实施例15中TA-R3蛋白表达SDS-PAGE图。
具体实施方式
以下通过附图和具体实施方式对本发明作进一步的详细说明。
上述实施例仅是为清楚地说明所作的举例,而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说,在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。
(一)实施例1至实施例6为R型ω-转氨酶TA-R1制备、筛选的优选实施方式,并对转氨酶TA-R1活性的和催化立体特性的进行了确认及分析。
实施例1
含有TA-R1转氨酶基因的重组质粒的构建
以Seq ID NO:1所示的转氨酶TA-R1蛋白序列为模板,针对大肠杆菌进行DNA序列的密码子优化,合成用于异源表达的转氨酶基因,其核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。利用NdeI和XhoI酶切位点,通过分子克隆技术将目标基因克隆至pET-28b(+)载体上,获得用于表达TA-R1转氨酶的重组质粒,并通过化学转化法将其转化入大肠杆菌DH5α菌株。在含有卡那霉素的LB平板上获得阳性克隆,挑取单菌落后继续经LB培养基培养后提取质粒,测序结果确认了目标转氨酶基因DNA序列的正确性。
实施例2
含有TA-R1转氨酶的重组基因工程菌株的构建
取1 μl实施例1获得的重组表达质粒,将其在42℃条件下热激90秒,转化至100 μl大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中,经过37℃复苏1小时,取出100 μl细胞悬液涂布于含有50 μg/ml卡那霉素的LB固体培养基上。在37℃下,经过静置过夜培养。挑取单菌落验证为阳性克隆后,即获得重组基因工程菌。
实施例3
目标转氨酶TA-R1的诱导表达及转氨酶TA-R1催化剂的制备
挑取重组基因工程菌的单克隆菌落,接种于10ml 含有50 μg/ml 卡那霉素的LB液体培养基中,在37℃下摇床过夜培养。取过夜培养物按1%接种量接种至500 ml含有50 μg/ml 卡那霉素抗的 LB液体培养基中,在37℃下摇床培养至对数生长期,加入0.3 mM IPTG,于20℃下诱导目标转氨酶表达。诱导20小时后,取1ml培养物离心收集菌体,以SDS-PAGE(变性聚丙烯酰胺凝胶电泳)检查转氨酶是否在基因工程菌中成功表达,如图1所示,其中1为诱导前表达情况,2为诱导后表达情况,三角形指示了目标转氨酶在SDS-PAGE中的位置,其在胶图中的表观分子量在旁边标出。对成功表达转氨酶的菌体,将诱导培养物离心,收集细胞并重悬于20 mM的Tris-HCl缓冲液(pH8.0),利用超声法破碎细胞,离心后的上清液用作所述反应的催化剂。
实施例4
转氨酶TA-R1活性的初步筛选
对转氨酶活性的初筛在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH7.5),含有10 mM氨基受体(苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠)、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶催化剂,在30°C条件下500rpm振荡反应18小时,观察反应物颜色变化情况,有红色沉淀生成代表具有转氨酶活性。结果表明,TA-R1对苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠中至少一种氨基受体具有转氨酶活性。
实施例5
转氨酶TA-R1活性的确认及催化立体特性的分析
对转氨酶活性的确认及催化立体特性分析在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30℃条件下400 rpm振荡反应18小时,加入等体积甲醇终止反应后,利用HPLC检测苯乙酮产物,根据底物丙酮酸钠转化率来评价目标转氨酶催化活性。结果如下表所示, TA-R1具有转氨酶活性,底物转化率分别为51.3%;此外,TA-R1特异性利用R-MBA为氨基供体,对S-MBA没有明显催化活性,如下表所示。上述结果确认,TA-R1为R型ω-转氨酶。
实施例6
将SEQ ID No.7所示的核苷酸序列用于构建TA-R1转氨酶基因的重组质粒及TA-R1重组基因工程菌株。所获得的TA-R1转氨酶为R型ω-转氨酶,对苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠中至少一种氨基受体具有转氨酶活性。
(二)实施例7至实施例12为R型ω-转氨酶TA-R2制备、筛选的优选实施方式,并对转氨酶TA-R2活性的和催化立体特性的进行了确认及分析。
实施例7
重组质粒pET-28b(+)-TA-R2的构建
优化Seq ID NO:2所示的转氨酶TA-R2氨基酸序列在大肠杆菌中表达的密码子,获得SEQ ID No.5所示的核苷酸序列。通过合成获得SEQ ID No.5所示的用于异源表达的转氨酶基因,即目标基因。利用NdeI和XhoI酶切位点,通过分子克隆技术将所述目标基因克隆至pET-28b(+)载体上,获得用于表达TA-R2转氨酶的重组质粒pET-28b(+)-TA-R2,转化入大肠杆菌DH5α菌株。在含有卡那霉素的LB平板上获得阳性克隆菌株,挑取单菌落后继续经LB培养基培养后提取质粒,测序结果确认了pET-28b(+)-TA-R2的正确性。
实施例8
含有TA-R2转氨酶的重组基因工程菌株的构建
取1 μl实施例7获得的重组表达质粒pET-28b(+)-TA-R2,将其在42℃条件下热激90秒,转化至100 μl大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中,经过37℃复苏1小时,取出100 μl细胞悬液涂布于含有50 μg/ml卡那霉素的LB固体培养基上。在37℃下,经过静置过夜培养。挑取单菌落验证为阳性克隆后,即获得重组基因工程菌。
实施例9
目标转氨酶TA-R2的诱导表达及TA-R2转氨酶催化剂的制备
挑取重组基因工程菌的单克隆菌落,接种于10ml 含有50 μg/ml 卡那霉素的LB液体培养基中,在37℃下摇床过夜培养。取过夜培养物按1%接种量接种至500 ml含有50 μg/ml 卡那霉素抗的 LB液体培养基中,在37℃下摇床培养至对数生长期,加入0.3 mM IPTG,于20℃下诱导目标转氨酶表达。诱导20小时后,取1ml培养物离心收集菌体,以SDS-PAGE(变性聚丙烯酰胺凝胶电泳)检查转氨酶是否在基因工程菌中成功表达,如图2所示,其中1为诱导前表达情况,2为诱导后表达情况,三角形指示了目标转氨酶在SDS-PAGE中的位置,其在胶图中的表观分子量在旁边标出。对成功表达转氨酶的菌体,将诱导培养物离心,收集细胞并重悬于20 mM的Tris-HCl缓冲液(pH8.0),利用超声法破碎细胞,离心后的上清液用作所述反应的催化剂。
实施例10
转氨酶TA-R2活性的初步筛选
对转氨酶活性的初筛在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH7.5),含有10 mM氨基受体(苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠)、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶催化剂,在30°C条件下500rpm振荡反应18小时,观察反应物颜色变化情况,有红色沉淀生成代表具有转氨酶活性。结果表明,TA-R2对丙酮酸钠具有转氨酶活性。
实施例11
转氨酶TA-R2活性的确认及催化立体特性的分析
对转氨酶活性的确认及催化立体特性分析在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30℃条件下400 rpm振荡反应18小时,加入等体积甲醇终止反应后,利用HPLC检测苯乙酮产物,根据底物丙酮酸钠转化率来评价目标转氨酶催化活性。TA-R2具有转氨酶活性,底物转化率为46.6%;此外,TA-R2特异性利用R-MBA为氨基供体,对S-MBA没有明显催化活性。上述结果确认,TA-R2为R型ω-转氨酶。
实施例12
将SEQ ID No.8所示的核苷酸序列用于构建TA-R2转氨酶基因的重组质粒及TA-R2重组基因工程菌株。所获得的TA-R2转氨酶为R型ω-转氨酶,对丙酮酸钠具有转氨酶活性。
(三)实施例13至实施例18为R型ω-转氨酶TA-R3制备、筛选的优选实施方式,并对转氨酶TA-R3活性的和催化立体特性的进行了确认及分析。
实施例13
含有TA-R3转氨酶基因的重组质粒的构建
以Seq ID NO:3所示的转氨酶TA-R3蛋白序列为模板,针对大肠杆菌进行DNA序列的密码子优化,合成用于异源表达的转氨酶基因,其核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。利用NdeI和XhoI酶切位点,通过分子克隆技术将目标基因克隆至pET-28b(+)载体上,获得用于表达TA-R3转氨酶的重组质粒,并通过化学转化法将其转化入大肠杆菌DH5α菌株。在含有卡那霉素的LB平板上获得阳性克隆,挑取单菌落后继续经LB培养基培养后提取质粒,测序结果确认了目标转氨酶基因DNA序列的正确性。
实施例14
含有TA-R3转氨酶的重组基因工程菌株的构建
取1 μl实施例13获得的重组表达质粒,将其在42℃条件下热激90秒,转化至100 μl大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中,经过37℃复苏1小时,取出100 μl细胞悬液涂布于含有50 μg/ml卡那霉素的LB固体培养基上。在37℃下,经过静置过夜培养。挑取单菌落验证为阳性克隆后,即获得重组基因工程菌。
实施例15
目标转氨酶TA-R3的诱导表达及TA-R3转氨酶催化剂的制备
挑取重组基因工程菌的单克隆菌落,接种于10ml 含有50 μg/ml 卡那霉素的LB液体培养基中,在37℃下摇床过夜培养。取过夜培养物按1%接种量接种至500 ml含有50 μg/ml 卡那霉素抗的 LB液体培养基中,在37℃下摇床培养至对数生长期,加入0.3 mM IPTG,于20℃下诱导目标转氨酶表达。诱导20小时后,取1ml培养物离心收集菌体,以SDS-PAGE(变性聚丙烯酰胺凝胶电泳)检查转氨酶是否在基因工程菌中成功表达,如图3所示,其中1为诱导前表达情况,2为诱导后表达情况,三角形指示了目标转氨酶在SDS-PAGE中的位置,其在胶图中的表观分子量在旁边标出。对成功表达转氨酶的菌体,将诱导培养物离心,收集细胞并重悬于20 mM的Tris-HCl缓冲液(pH8.0),利用超声法破碎细胞,离心后的上清液用作所述反应的催化剂。
实施例16
转氨酶TA-R3活性的初步筛选
对转氨酶活性的初筛在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH7.5),含有10 mM氨基受体(苯甲醛、苯乙酮、呋喃-2-甲醛、环己烷酮、己醛、2-己酮、丙酮酸钠)、20%二甲亚砜(DMSO)、0.5 mM 磷酸吡哆醛(PLP)、25 mM 氨基供体4-硝基苯乙胺(NEA)、0.4~2.0 mg/ml转氨酶催化剂,在30°C条件下500rpm振荡反应18小时,观察反应物颜色变化情况,有红色沉淀生成代表具有转氨酶活性。结果表明,TA-R3对丙酮酸钠具有转氨酶活性。
实施例17
转氨酶TA-R3活性的确认及催化立体特性的分析
对转氨酶活性的确认及催化立体特性分析在0.2 ml反应体系中进行,该体系为0.1M磷酸钾缓冲液(pH 7.5),含有10 mM丙酮酸钠、10% DMSO、0.5 mM PLP、25 mM R型或S型甲基苄胺(R-MBA或S-MBA)、0.4 mg/ml转氨酶催化剂,在30℃条件下400 rpm振荡反应18小时,加入等体积甲醇终止反应后,利用HPLC检测苯乙酮产物,根据底物丙酮酸钠转化率来评价目标转氨酶催化活性。TA-R3具有转氨酶活性,底物转化率为79.6%;此外,TA-R3特异性利用R-MBA为氨基供体,对S-MBA没有明显催化活性。上述结果确认,TA-R3为R型ω-转氨酶。
实施例18
将SEQ ID No.9所示的核苷酸序列用于构建TA-R3转氨酶基因的重组质粒及TA-R3重组基因工程菌株。所获得的TA-R3转氨酶为R型ω-转氨酶,对丙酮酸钠具有转氨酶活性。
实验表明,按照本发明记载的技术方案,由Seq ID NO:7所示的核苷酸序列获得的R型ω-转氨酶TA-R1,由Seq ID NO:8所示的核苷酸序列获得的R型ω-转氨酶TA-R2,或SeqID NO:9所示的核苷酸序列获得的R型ω-转氨酶TA-R3,与实施例1-实施例18获得的 R型ω-转氨酶TA-R1、R型ω-转氨酶TA-R2、R型ω-转氨酶TA-R3具有相同的技术效果,在此不进行赘述。

Claims (3)

1.一种R型ω-转氨酶,名称为ω-转氨酶TA-R3,所述ω-转氨酶TA-R3的氨基酸序列如Seq ID NO:3所示。
2. 权利要求1所述的R型ω-转氨酶的基因,其特征在于,所述R型ω-转氨酶为ω-转氨酶TA-R3,ω-转氨酶TA-R3基因序列为如下e)或f)所示的核苷酸序列:e)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列;f)如Seq ID NO:6所示的核苷酸序列经过一个或多个碱基的变化,使获得如Seq ID NO:3所示的氨基酸序列的核苷酸序列。
3.一种重组质粒,其特征在于,所述重组质粒由权利要求2所述的基因序列与表达载体质粒连接构建而成。
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Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN116200361A (zh) * 2023-03-02 2023-06-02 斯芬克司药物研发(天津)股份有限公司 一种新型R型ω-转氨酶TA-R1

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104328093A (zh) * 2013-11-26 2015-02-04 凯莱英医药集团(天津)股份有限公司 R型ω-转氨酶及其应用
CN106754806A (zh) * 2016-12-20 2017-05-31 尚科生物医药(上海)有限公司 一种改进的转氨酶及其在(r)‑3‑氨基丁醇制备上的应用
CN109609478A (zh) * 2019-01-14 2019-04-12 浙江工业大学 α-转氨酶及突变体以及在不对称合成L-草铵膦中的应用
CN109609476A (zh) * 2019-01-14 2019-04-12 浙江工业大学 α-转氨酶和突变体及其在不对称合成L-草铵膦中的应用
CN110982801A (zh) * 2019-12-27 2020-04-10 中国科学院苏州生物医学工程技术研究所 转氨酶突变体及其构建方法和应用
CN112522228A (zh) * 2020-09-21 2021-03-19 江苏海洋大学 一种来源于氨氧化假诺卡氏单胞菌的r-转氨酶及其合成方法
CN114277008A (zh) * 2020-09-28 2022-04-05 弈柯莱生物科技(上海)股份有限公司 一种(r)-选择性转氨酶及其应用
CN116200361A (zh) * 2023-03-02 2023-06-02 斯芬克司药物研发(天津)股份有限公司 一种新型R型ω-转氨酶TA-R1

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104328093A (zh) * 2013-11-26 2015-02-04 凯莱英医药集团(天津)股份有限公司 R型ω-转氨酶及其应用
JP2016537991A (ja) * 2013-11-26 2016-12-08 ▲凱▼菜英医▲薬▼集▲団▼(天津)股▲フン▼有限公司 R型ω−トランスアミナーゼ及びその応用
CN106754806A (zh) * 2016-12-20 2017-05-31 尚科生物医药(上海)有限公司 一种改进的转氨酶及其在(r)‑3‑氨基丁醇制备上的应用
CN109609478A (zh) * 2019-01-14 2019-04-12 浙江工业大学 α-转氨酶及突变体以及在不对称合成L-草铵膦中的应用
CN109609476A (zh) * 2019-01-14 2019-04-12 浙江工业大学 α-转氨酶和突变体及其在不对称合成L-草铵膦中的应用
CN110982801A (zh) * 2019-12-27 2020-04-10 中国科学院苏州生物医学工程技术研究所 转氨酶突变体及其构建方法和应用
CN112522228A (zh) * 2020-09-21 2021-03-19 江苏海洋大学 一种来源于氨氧化假诺卡氏单胞菌的r-转氨酶及其合成方法
CN114277008A (zh) * 2020-09-28 2022-04-05 弈柯莱生物科技(上海)股份有限公司 一种(r)-选择性转氨酶及其应用
CN116200361A (zh) * 2023-03-02 2023-06-02 斯芬克司药物研发(天津)股份有限公司 一种新型R型ω-转氨酶TA-R1

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