CN114177650B - 一种连续化层析分离方法及应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种连续化层析分离方法及应用,分离床液体沿混合液进料口‑萃余液出料口‑洗脱液进料口‑萃取液出料口‑混合液进料口循环流动,混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口、萃取液出料口每经过时间t后沿液体流动方向移动,该方法可用于维生素A及其异构体的分离、维生素A的纯化等。本方法工艺简单,分离度高、收率高、能耗低、生产成本低,适合工业化连续生产。

Description

一种连续化层析分离方法及应用
技术领域
本发明属于化工分离技术领域,具体涉及一种连续化层析分离方法及应用。
背景技术
层析分离法是利用样品中各组分的物理、化学性质的质的差别,使各组分以不同程度分布在两个相中,其中一个相为固定相,另一个相则流过此固定相,称为流动相,并使各组分以不同速度移动,从而达到分离的方法。
柱层析技术常用于复杂有机物体系分离,但具有间歇操作、处理量小、无法大规模工业化生产的特点。
维生素A是一类重要的营养化学品,工业上合成的维生素A粗品中包含维生素A和维生素A的异构体,目前分离维生素A和维生素A异构体的方法为溶液低温结晶法。将维生素A粗品溶解在甲醇或乙醇中,降温至-25℃以下结晶,经离心、干燥得到维生素A固体,母液中的维生素A异构体经过异构化工艺转化为维生素A。但是,低温结晶能耗高,且结晶工艺中产品纯度和结晶收率两个指标相矛盾,在满足市售产品纯度指标的前提下,维生素A的结晶收率只有80%左右。母液中残留的维生素A在进行异构化反应时会导致异构体的转化率降低,进一步降低了分离效率。
高效液相色谱技术(HPLC)常用于维生素A的分离分析,但HPLC固定相利用率低,处理量小,进样浓度通常为几百~几千ppm,且为间歇批次操作,每次仅能处理毫克级别的样品,显然无法应用于工业生产。
为克服现有分离工艺存在的缺陷,更高效的分离维生素A和维生素A异构体,本发明提供了一种新的连续化层析分离方法及应用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种新的连续化层析分离方法及应用,可利用层析分离法分离工业生产中较难分离的物质,方法简单、分离度高、收率高、能耗低,适合工业化生产。
为解决上述问题,本发明提供了一种连续化层析分离方法,包括分离装置,所述分离装置包括分离床、混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口和萃取液出料口,所述分离床设有多个,分离床分为四个区域,四个区域串联连接形成闭合***,混合液进料口与萃余液出料口之间为Ⅲ区,萃余液出料口和洗脱液进料口之间为Ⅳ区,洗脱液进料口和萃取液出料口之间为Ⅰ区,萃取液出料口和混合液进料口之间为Ⅱ区;分离床液体沿混合液进料口-萃余液出料口-洗脱液进料口-萃取液出料口-混合液进料口循环流动,混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口、萃取液出料口每经过时间t后沿液体流动方向移动。
优选的,每个区域可包含1个或多个分离床,优选包括1-4个分离床。
优选的,分离床填充有填料。
优选的,混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口、萃取液出料口每经过时间t后沿液体流动方向移动至下一个分离床。
优选的,时间t的选择要介于待分离的两个组分在分离床中的停留时间之间。比如组分A在分离床中的停留时间为T1,组分B在分离床中的停留时间为T2,设T1<T2,若需分离组分A和组分B,则T1<t<T2。
优选的,萃取液的流速QE=进料液的流速QF,萃余液的流速QR=洗脱液的流速QD
根据所要分离的物质的不同需求,可选用不同的填料和有机溶剂、洗脱液等。
本申请由多个分离床串联而成,首尾相接,形成闭合***。进料液入口、洗脱液入口、萃取液出口、萃余液出口四个进出口将所有分离床分成流速不同的四个区,分别承担不同的功能。通过定期切换四个进出口来模拟实现流动相与固定相逆流,实现了连续化,提高了分离效率和生产效率,降低了生产成本。
一种维生素A和维生素A异构体的分离方法,包括以下步骤:
(1)将含有维生素A和维生素A异构体的混合物溶解在有机溶剂中配置成进料液;
(2)采用本发明的层析分离方法,将进料液和洗脱液连续通入本发明的层析分离装置,分别收集萃取液和萃余液;
(3)分别分离提纯萃取液和萃余液。
本发明中,分离床中所装填的填料为聚苯乙烯树脂、苯基键合硅胶、辛基硅烷键合硅胶、十八烷基硅烷键合硅胶中的一种或多种;优选十八烷基硅烷键合硅胶;
本发明中,硅胶填料的直径为5~200μm,孔径为10~100nm;
分离床中填充键合硅胶等填料,根据“相似相溶”原理,键合硅胶等表面富含非极性基团的填料可与维生素A中的长碳链和脂肪烃主环发生疏水相互作用,从而识别维生素A和异构体在双键顺反的差异。以这类填料作为固定相,调节洗脱液的种类和比例,设计合适的各区流速和切换时间,可以实现维生素A和维生素A异构体的连续分离。
本发明中,每个区域含有1~3个分离床;
本发明中,进料液入口、洗脱液入口、萃取液出口、萃余液出口位置每经过时间t1沿流动相方向同时分别移动至下一个床;
本发明中,时间t1为10~60分钟;优选15-30分钟;
本发明中,步骤(1)的有机溶剂与步骤(2)中的洗脱液为C1~C4的醇、乙腈、丙酮、四氢呋喃、乙酸乙酯、二氯甲烷中的一种或任意两种的混合物;
本发明中,步骤(1)的有机溶剂与步骤(2)中的洗脱液组成相同;
本发明中,进料液的浓度为20~200g/L;优选50~100g/L;
本发明中,进料液的流速QF为0.1~0.5BV/h,洗脱液的流速QD为1~10BV/h,萃取液的流速QE=QF,萃余液的流速QR=QD;优选的,QF为0.2~0.3BV/h,QD为2~5BV/h;
本发明中,分离床的温度为10~50℃;优选20~30℃;
本发明中,分离床的直径为10~500mm,长度为100~1000mm;
本发明中,萃取液和萃余液分别经过真空蒸馏脱除有机溶剂,分别获得维生素A和维生素A异构体,蒸馏温度20~40℃,真空度5~30KPaA。
维生素A中的长碳链和脂肪烃主环与填料上的非极性基团发生疏水相互作用,填料与维生素A的作用相对较强,与维生素A异构体的作用相对较弱,与极性洗脱液几乎无作用。
维生素A及其异构体溶液从进料口进料后,对于维生素A异构体,其更容易被快速流动的洗脱液带走,在III区随着液体流动方向,维生素A异构体的相对含量越来越高,液体到达萃余液出料口时,异构体的相对浓度达到最高,出料得到异构体溶液。
对于维生素A,其更容易停留在填料上,随着“逆向流动”的填料(通过切换出料口实现)被带入II区。在II区,逆着液体流动方向,维生素A的相对含量越来约高,在萃取液出料口,维生素A的相对浓度达到最高,出料得到维生素A溶液。
I区和IV的作用为再生区,实现洗脱液和填料的再生(再生指无维生素A及其异构体)。
本发明还提供一种维生素A母液的纯化方法,包含如下步骤:
(a)将含有维生素A及其异构体的维生素A母液溶解在有机溶剂中配置成进料液;
(b)采用本发明的层析分离方法,将进料液和洗脱液连续通入本发明的层析分离装置,从萃取液出料口收集含维生素A及其异构体的萃取液;
在本发明的一些优选实施方式中,可通过选择填料将维生素A及其异构体与其他杂质组分分离出来,维生素A母液中维生素A及其异构体的总质量含量10%~50%,在维生素A及其异构体含量低时,本方法相比其它方法,具有更好的分离效果,可提高维生素A的有效利用率。
本发明中,分离床中所装填的填料为硅胶、氧化铝;
本发明中,分离床中所装填的填料直径10~200μm,填料孔径10~100nm;
本发明中,进料液入口、洗脱液入口、萃取液出口、萃余液出口每经过时间t2沿流动相方向同时分别移动至下一个床;
本发明中,时间t2为5~50分钟;优选10~20分钟;
本发明中,步骤(a)的有机溶剂与步骤(b)中的洗脱液相同;
本发明中,步骤(a)的有机溶剂与步骤(b)中的洗脱液为C5~C8的烷烃、环烷烃及其混合物;
本发明中,进料液的浓度为200~500g/L;优选300~400g/L。
本发明中,进料液的流速QF为0.2~1BV/h,洗脱液的流速QD为2~8BV/h,萃取液的流速QE=QF,萃余液的流速QR=QD;优选的,QF为0.4~0.6BV/h,QD为4~6BV/h;
本发明中,多级串联床的温度为0~30℃;优选20~30℃;
本发明中,多级串联床的直径为10~500mm,长度为500~2000mm。
维生素A及其异构体和类维生素A杂质由于极性的差异,在极性填料表面产生强弱不同的吸附作用,填料与维生素A及其异构体的作用相对较强,与类维生素A杂质的作用相对较弱,与非极性洗脱液几乎无作用。
维生素A母液溶液从进料口进料后,对于类维生素A杂质,其更容易被快速流动的洗脱液带走,在III区随着液体流动方向,类维生素A杂质的相对含量越来越高,液体到达萃余液出料口时,类维生素A杂质的相对浓度达到最高,出料得到几乎不含维生素A及其异构体的杂质溶液。
对于维生素A及其异构体,其更容易停留在填料上,随着“逆向流动”的填料(通过切换出料口实现)被带入II区。在II区,逆着液体流动方向,维生素A及其异构体的相对含量越来约高,在萃取液出料口,维生素A及其异构体的相对浓度达到最高,出料得到纯化的富含维生素A及其异构体的溶液。
I区和IV的作用为再生区,实现洗脱液和填料的再生(再生指无维生素A及其异构体和类维生素A杂质)。
本发明的方法与现有维生素A的分离方法相比,具有以下积极效果:
a.本发明提供了一种新的可连续化层析分离的方法和装置,与现有技术相比,装置更加简单,通过间隔t时间切换各个出口,实现了固定相的相对移动,分离出了不同的物质。连续操作,条件温和,易于实现工业化生产;
b.利用维生素A及其异构体在填料中的吸附能力差异,提高了维生素A及其异构体的分离度,显著提高了维生素A和维生素A异构体的分离效率;获得的维生素A纯度高,收率高;
附图说明
图1为本发明提供的多级串联分离床的结构示意图(以每个功能区3个床为例)。
图1中每个方块代表一个分离床,混合液进料口与萃余液出料口之间为Ⅲ区,萃余液出料口和洗脱液进料口之间为Ⅳ区,洗脱液进料口和萃取液出料口之间为Ⅰ区,萃取液出料口和混合液进料口之间为Ⅱ区。
具体实施方式
以下通过具体实施例对本发明方法做进一步说明,但本发明不限于所列出的实施例,还应包括在本发明的权利要求范围内其他任何公知的改变。
本发明中所使用的溶剂均为工业级,维生素A及维生素A异构体为自产。
维生素A和维生素A异构体的分析采用高效液相色谱(HPLC),条件如下:
岛津LC-20A,配SIL-20A自动进样器,CTO-10ASvp柱温箱,SPD-M20A检测器,或者具有相同性能的仪器。液相色谱条件:进样量为1μL,UV检测波长为328nm,柱温箱:40℃,流速:0.4ml/min,选用外标法定量。
实施例1
1、将含有维生素A和11-顺式维生素A异构体的混合物(维生素A占60%,11-顺式异构体占35%,其它占5%)溶于甲醇,配置成50g/L的进料液;
2、多级串联床的四个功能区分别含有3/3/3/3个床,每个床的尺寸为10mm×100mm;其中填充直径5~20μm、孔径10~20nm的辛基硅烷键合硅胶填料;洗脱液为甲醇。
3、串联分离床操作条件:
1)温度:20℃;
2)进料液流速:0.2BV/h,萃取液的流速=进料液流速;甲醇洗脱液流速5BV/h,萃余液的流速=甲醇洗脱液流速;
3)进出料口位置切换时间:15min,即每间隔15min,将各个进料口、出料口位置沿液体流动方向移动到下一个分离床。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A的萃取液,萃取液在40℃、10~22KPaA条件下脱除甲醇,得到维生素A,经HPLC分析,纯度98.2%,收率96%;萃余液在相同条件下脱除甲醇,得到11-顺式异构体,经HPLC分析,其中维生素A含量2.5%。
实施例2
1、将含有维生素A和9-顺式维生素A异构体的混合物(维生素A占75%,9-顺式异构体占18%,其它占7%)溶于乙醇,配置成200g/L的进料液;
2、采用与实施例1相同的多级串联分离床,主要区别点在于,多级串联分离床的四个功能区分别含有2/3/3/2个床,每个床的尺寸为500mm×1000mm;其中填充直径150~200μm、孔径80~100nm的十八烷基硅烷键合硅胶填料;洗脱液为乙醇。
3、串联床操作条件:
1)温度:30℃;
2)进料液流速:0.5BV/h;萃取液的流速=进料液流速;乙醇洗脱液流速10BV/h;萃余液的流速=洗脱液流速;
3)进出料口位置切换时间:30min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A的萃取液,萃取液在40℃、5~18KPaA条件下脱除乙醇,得到维生素A,经HPLC分析,纯度98.6%,收率98%;萃余液在相同条件下脱除乙醇,得到9-顺式异构体,经HPLC分析,其中维生素A含量1.1%。
实施例3
1、将含有维生素A和13-顺式维生素A异构体的混合物(维生素A占80%,13-顺式异构体占10%,其它占10%)溶于丙酮,配置成100g/L的进料液;
2、多级串联床的四个功能区分别含有2/2/2/2个床,每个床的尺寸为100mm×500mm,其中填充直径60~80μm、孔径30~50nm的十八烷基硅烷键合硅胶填料;洗脱液为丙酮。
3、串联床操作条件:
1)温度:40℃;
2)进料液流速:0.3BV/h,萃取液的流速=进料液流速;丙酮洗脱液流速2BV/h,萃余液的流速=洗脱液流速;
3)进出料口位置切换时间:60min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A的萃取液,萃取液在20℃、15~25KPaA条件下脱除丙酮,得到维生素A,经HPLC分析,纯度98.0%,收率95%;萃余液在相同条件下脱除丙酮,得到13-顺式异构体,经HPLC分析,其中维生素A含量4.5%。
实施例4-7为采用本发明的方法将维生素A及其异构体从其母液中分离出来,最终得到维生素A及其异构体的混合物。
实施例4
1、将含有维生素A的母液(维生素A及9-顺式异构体总质量含量10%,其余为类维生素A杂质及维生素A变质产品)溶于己烷,配置成200g/L的进料液;
2、多级分离床的四个功能区分别含有2/4/4/2个床,每个床尺寸10mm×500mm;其中填充直径10~20μm、孔径10~20nm的硅胶填料;洗脱液为己烷。
3、串联分离床操作条件:
1)温度:0℃;
2)进料液流速:0.2BV/h;己烷洗脱液流速8BV/h;萃取液的流速=进料液流速,萃余液的流速=洗脱液流速。
3)进出料口位置切换时间:50min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A及其异构体的萃取液,经HPLC分析,维生素A及其异构体纯度88%,收率93%。
实施例5
1、将维生素A母液(维生素A及13-顺式异构体总质量含量50%,)溶于庚烷,配置成500g/L的进料液;
2、多级串联分离床的四个功能区分别含有2/4/3/3个床,每个床尺寸100mm×2000mm;其中填充直径80~120μm、孔径80~100nm的氧化铝填料;
3、串联床操作条件:
1)温度:30℃;
2)进料液流速:1BV/h;庚烷洗脱液流速4BV/h;萃取液的流速=进料液流速,萃余液的流速=洗脱液流速。
3)进出料口位置切换时间:20min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A及其异构体的萃取液,经HPLC分析,维生素A及其异构体纯度92%,收率96%。
实施例6
1、将维生素A母液(维生素A及9-顺式异构体含量30%,)溶于沸程60~90℃的石油醚,配置成300g/L的进料液;
2、多级串联床的四个功能区分别含有2/4/2/2个床,每个床尺寸500mm×500mm;其中填充直径50~80μm、孔径40~60nm的氧化铝填料;
3、串联床操作条件:
1)温度:20℃;
2)进料液流速:0.4BV/h;石油醚洗脱液流速2BV/h;萃取液的流速=进料液流速,萃余液的流速=洗脱液流速。
3)进出料口位置切换时间:5min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A及其异构体的萃取液,经HPLC分析,维生素A及其异构体纯度90%,收率96%。
实施例7
1、将维生素A母液(维生素A及11-顺式异构体含量20%,)溶于异辛烷,配置成400g/L的进料液;
2、多级串联床的四个功能区分别含有4/4/4/4个床,每个床尺寸200mm×1000mm;其中填充直径150~200μm、孔径80~100nm的硅胶填料;
3、串联床操作条件:
1)温度:10℃;
2)进料液流速:0.6BV/h;异辛烷洗脱液流速6BV/h;萃取液的流速=进料液流速,萃余液的流速=洗脱液流速;
3)进出料口位置切换时间:10min。
4、运行稳定后,从萃取液出料口连续收集含维生素A及其异构体的萃取液,经HPLC分析,维生素A及其异构体纯度93%,收率97%。
凡是对本发明技术方案进行修改或者等同替换,而不脱离本发明技术方案的范围,均应涵盖在本发明的保护范围中。

Claims (32)

1.一种维生素A和维生素A异构体的分离方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将含有维生素A和维生素A异构体的混合物溶解在有机溶剂中配置成进料液;
(2)采用下述的分离方法分离维生素A和维生素A异构体,分别收集萃取液和萃余液;
所述分离方法中,分离装置包括分离床、混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口和萃取液出料口,所述分离床设有多个,分离床分为四个区域,四个区域串联连接形成闭合***,混合液进料口与萃余液出料口之间为Ⅲ区,萃余液出料口和洗脱液进料口之间为Ⅳ区,洗脱液进料口和萃取液出料口之间为Ⅰ区,萃取液出料口和混合液进料口之间为Ⅱ区;分离床液体沿混合液进料口-萃余液出料口-洗脱液进料口-萃取液出料口-混合液进料口循环流动,混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口、萃取液出料口每经过时间t后沿液体流动方向移动;
(3)分别分离提纯萃取液和萃余液;
分离床填充有填料;分离床中所装填的填料为聚苯乙烯树脂、苯基键合硅胶、辛基硅烷键合硅胶、十八烷基硅烷键合硅胶中的一种或多种;
混合液进料口、萃余液出料口、洗脱液进料口、萃取液出料口每经过时间t后沿液体流动方向移动至下一个分离床;
时间t的选择要介于待分离的两个组分在分离床中的停留时间之间。
2.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,每个区域包含1个或多个分离床。
3.根据权利要求2所述的分离方法,其特征在于,每个区域包含1-4个分离床。
4.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,萃取液的流速QE=进料液的流速QF,萃余液的流速QR=洗脱液的流速QD
5.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,分离床中所装填的填料为十八烷基硅烷键合硅胶。
6.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,硅胶填料的直径为5~200μm,孔径为10~100nm。
7.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,每个区域含有1~3个分离床。
8.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,步骤(1)的有机溶剂与洗脱液为C1~C4的醇、乙腈、丙酮、四氢呋喃、乙酸乙酯、二氯甲烷中的一种或任意两种的混合物。
9.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,步骤(1)的有机溶剂与洗脱液组成相同。
10.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,进料液入口、洗脱液入口、萃取液出口、萃余液出口位置每经过时间t1沿流动相方向同时分别移动至下一个床,时间t1为10~60分钟。
11.根据权利要求10所述的分离方法,其特征在于,时间t1为15-30分钟。
12.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,进料液的浓度为20~200g/L。
13.根据权利要求12所述的分离方法,其特征在于,进料液的浓度为50~100g/L。
14.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,进料液的流速QF为0.1~0.5BV/h,洗脱液的流速QD为1~10BV/h,萃取液的流速QE=QF,萃余液的流速QR=QD
15.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,QF为0.2~0.3BV/h,QD为2~5BV/h。
16.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,分离床的温度为10~50℃。
17.根据权利要求16所述的分离方法,其特征在于,分离床的温度为20~30℃。
18.根据权利要求1所述的分离方法,其特征在于,分离床的直径为10~500mm,长度为100~1000mm。
19.一种维生素A母液的纯化方法,包含如下步骤:
(a)将含有维生素A及其异构体的维生素A母液溶解在有机溶剂中配置成进料液;
(b)采用权利要求1所述的分离方法,通入进料液和洗脱液,从萃取液出料口收集含维生素A及其异构体的萃取液;进料液入口、洗脱液入口、萃取液出口、萃余液出口每经过时间t2沿流动相方向同时分别移动至下一个床;
分离床中所装填的填料为硅胶、氧化铝;填料孔径10~100nm。
20.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,维生素A母液中维生素A及其异构体的总质量含量10%~50%。
21.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,分离床中所装填的填料直径10~200μm。
22.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,时间t2为5~50分钟。
23.根据权利要求22所述的方法,其特征在于,时间t2为10~20分钟。
24.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,步骤(a)的有机溶剂与步骤(b)中的洗脱液相同。
25.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,步骤(a)的有机溶剂与步骤(b)中的洗脱液为C5~C8的烷烃、环烷烃及其混合物。
26.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,进料液的浓度为200~500g/L。
27.根据权利要求26所述的方法,其特征在于,进料液的浓度为300~400g/L。
28.根据权利要求19所述的方法,其特征在于,进料液的流速QF为0.2~1BV/h,洗脱液的流速QD为2~8BV/h,萃取液的流速QE=QF,萃余液的流速QR=QD
29.根据权利要求28所述的方法,其特征在于,QF为0.4~0.6BV/h,QD为4~6BV/h。
30.根据权利要求28所述的方法,其特征在于,多级串联床的温度为0~30℃。
31.根据权利要求30所述的方法,其特征在于,多级串联床的温度为20~30℃。
32.根据权利要求31所述的方法,其特征在于,多级串联床的直径为10~500mm,长度为500~2000mm。
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