CN112997965A - 一种基于CRISPR/Cas9技术敲除miRNA-125a的小鼠模型及构建方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种基于CRISPR/Cas9技术敲除miRNA‑125a的小鼠模型及构建方法,本发明利用CRISPR/Cas9技术,在C57BL/6J小鼠中实现pre‑miRNA‑125a的基因组片段敲除。在小鼠基因组中设计一对用于片段敲除的sgRNA,在体外将两条sgRNA转录,与Cas9核酸酶共注射C57BL/6J小鼠受精卵,移入母体内发育成为原代(F0)小鼠;F0小鼠经鉴定与纯化后获得片段敲除的纯合个体。在纯合敲除小鼠中miRNA‑125a表达量显著降低。本发明提供了一种精确、高效、简便敲除miRNA‑125a的办法,可用于miRNA‑125a功能研究的小鼠模型,对实现其它miRNAs的片段敲除亦有参考价值。
Description
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,更具体地,涉及一种基于CRISPR/Cas9技术敲除miRNA-125a的小鼠模型及构建方法。
背景技术
基因的定点修饰技术是研究基因功能的重要手段之一,继早期的基因打靶后,目前研究者共发现了三代人工核酸内切酶。第三代人工核酸内切酶Clustered RegularlyInterspaced Short Palindromic Repeats(CRISPR)/CRISPR-associated(Cas)因其操作简便、成本低廉、作用高效而得到了广泛应用[1]。其中,又以CRISPR/Cas9为迄今应用最广泛的基因编辑工具,它由crRNA和tracrRNA嵌合在一起的一条RNA链——sgRNA(singleguide RNA)和Cas9蛋白两部分组成。Cas9蛋白是一种核酸内切酶,包括RuvC和HNH两个活性中心,在sgRNA的指导下可以分别切割DNA的一条链,最终造成DNA双链断裂(DSB)[2]。在细胞对损伤的DNA进行修复过程中,会造成碱基的突变、***或缺失,进而有造成该基因失活的可能。该技术诞生后不久,研究者很快就在哺乳动物细胞中成功实现了基因编辑[3,4],随后又在多种生物体内得到了应用,成功获得了多种基因修饰后的生物[5]。
miRNA是一类长约22nt,具有广泛生物活性的ncRNA。成熟的miRNA主要通过与靶基因3’UTR上的靶点进行碱基互补配对实现对靶基因的表达调控,当它与靶点完全互补时,RNA诱导沉默复合体(RNA induced silencing complex,RISC)会使mRNA发生降解;而当miRNA与靶点序列不完全互补时,RISC则能对mRNA的翻译起到抑制作用[6,7]。哺乳动物中,大多数编码蛋白质的mRNA都会受到miRNA的调控。已有研究显示miRNAs与早期妊娠密切相关。
miRNA-125a是一种在进化上高度保守的miRNA,在多种组织中都有表达,在细胞分化、个体发育等过程中发挥着重要调控作用[8]。研究已证实,miRNA-125a与生殖密切相关,有研究者发现,miRNA-125a在大鼠胚胎植入中存在差异表达[9];此外,在pri-miRNA-125a编码基因中有两个SNPs,此外,在两个SNPs下游有一突变位点,该突变与这两个SNP共存能够增加复发性流产(RSA)的发生风险[10]。
包括miRNA在内的ncRNA直接在RNA水平上行使功能,因此生物体在对DSB进行修复时,少数几个碱基的改变可能无法完全使ncRNA失活。之前已有报道证实可以利用CRISPR/Cas9***实现多基因的敲除[11]。采用该办法,有研究者在斑马鱼中注射Cas9蛋白mRNA和位于pre-miRNA-126a两侧的两条sgRNA,虽然效率还不甚理想,但是实现了对miRNA的片段敲除[12]。
为解决分别导入两条sgRNA效率不高的问题,我们对pX458载体进行了改造。pX458是一种sgRNA骨架和Cas9蛋白二合一的质粒,筛选标记为EGFP。我们体外合成一段双链DNA,包括U6启动子、酶切位点以及sgRNA骨架,将其***到原载体中,即可获得同时表达两条sgRNA的改造载体,进而使实现高效基因组片段敲除成为可能。
近交系是指一个动物群中,任何个体基因组中99%以上的等位位点为纯合;C57BL/6J小鼠是一种常见的近交系,以57号母鼠和52号公鼠交配为起源,因其遗传背景清晰,被广泛应用于遗传学研究中。
总的来讲,相较编码基因而言,目前基于CRISPR/Cas9技术实现miRNAs片段敲除的研究较少;特别地,并未有基于CRISPR/Cas9技术片段敲除miRNA-125a的C57BL/6J小鼠的构建方法的相关报道。
参考文献
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[2]Deltcheva E,Chylinski K,Sharma C M,et al.CRISPR RNA maturation bytrans-encoded small RNA and host factor RNase III[J].Nature,2011,471(7340):602-607.
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[12]Xiao A,Wang Z,Hu Y,et al.Chromosomal deletions and inversionsmediated by TALENs and CRISPR/Cas in zebrafish[J].Nucleic Acids Research,2013,41(14):e141.
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种基于CRISPR/Cas9技术片段敲除miRNA-125a的C57BL/6J小鼠的构建方法。考虑到一个或数个碱基的改变可能不会对非编码RNA的表达产生显著影响,该方法同时向受精卵中注射两条sgRNA,能够实现pre-miRNA-125a的片段敲除。因此,本发明提供了一种精确、高效、简便敲除miRNA-125a的办法,可用于miRNA-125a功能研究的小鼠模型,对实现其它miRNAs的片段敲除亦有参考价值。本发明主要包括以下内容:
本发明的第一个方面,提供了一种基于CRISPR/Cas9技术构建的C57BL/6J模型小鼠,该模型小鼠为miRNA-125a敲除小鼠。
进一步,敲除区域为pre-miRNA-125a中的一部分,包括miRNA-125a-5p及3p的一部分和茎环结构的全部,全长42bp。
本发明的第二个方面,提供了一种建立miRNA-125a敲除小鼠模型的方法,包括以下步骤:
(1)针对C57BL/6J小鼠pre-miRNA-125a,设计敲除策略,敲除区域包括:miRNA-125a-5p及3p的一部分和茎环结构的全部,全长42bp;
(2)采用CRISPR/Cas9基因编辑方法,获得F0代小鼠;
(3)将阳性F0代小鼠和野生型C57BL/6J交配、繁育,最终得到具有miRNA-125a敲除阳性纯合小鼠。
进一步,实现42bp的片段敲除需要一对sgRNA,所述sgRNA的核苷酸序列如SEQ IDNO:1~2所示。
进一步,所述CRISPR/Cas9基因编辑方法包括分别设计和构建sgRNA1和sgRNA2,并进行体外活性测试,制备Cas9混样体系;并将两条体外转录的sgRNA与Cas9蛋白共同进行原核注射,注射后的受精卵植入母鼠子宫获得F0(嵌合体)。
进一步,纯化小鼠时,F0(嵌合体)先与野生型交配,得到F1,F1再与野生型交配得到碱基序列相同的F2(杂合子),同窝F2互相交配得到纯合敲除的F3。
所述阳性F1代小鼠用于保种建系,不同的保种建系之间原则上不允许交配。
本发明的第三个方面,提出了一种鉴定miRNA-125a敲除小鼠的方法,包括以下步骤:
(1)剪取少量小鼠组织,提取基因组DNA;
(2)针对拟敲除位点设计一对PCR扩增引物;
(3)以待检测小鼠基因组DNA为模板进行PCR扩增,扩增产物测序验证。
进一步,所述组织选自脚趾、尾巴或耳朵。
进一步,所述扩增引物包含sgRNA1和sgRNA2拟敲除位点。
进一步,所述扩增引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7~8所示。
根据本发明实施例的效果,在F3代中得到的miRNA-125a敲除阳性纯合小鼠基因组中pre-miRNA-125a区域内实现了42bp的纯合缺失,缺失位置和碱基序列均与预测一致。
本发明的第四个方面,提出了一种对miRNA-125a敲除小鼠进行脱靶验证的方法,包括以下步骤:
(1)针对sgRNA1和sgRNA2,每条sgRNA选择三个预测概率较大的潜在脱靶位点,每个潜在脱靶位点设计一对PCR扩增引物;
(2)选择纯化完成的纯合敲除及野生对照F3小鼠,剪取组织提取基因组DNA;
(3)以待检测小鼠基因组DNA为模板进行PCR扩增,扩增产物测序验证。
在本发明的具体实施方式中,所述扩增引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9~20所示。
根据本发明实施例的效果,随机选择纯合敲除及野生对照小鼠各3只,每只小鼠验证两条sgRNA共6个潜在脱靶位点,所有检测结果均未发现脱靶。
本发明的第五个方面,提出了一种基于CRISPR/Cas9基因敲除技术构建miRNA-125a敲除小鼠模型的sgRNA,包括sgRNA1和sgRNA2,所述sgRNA1的序列如SEQ ID NO:1所示,所述sgRNA2的序列如SEQ ID NO:2所示。
附图说明
图1是T7E1验证sgRNA活性结果图;
图2是阳性纯合片段敲除小鼠鉴定结果图;其中,图A是sgRNA1和sgRNA2在pre-miRNA-125a序列中的切割位点;图B是F3中WT纯合小鼠切割位点处测序结果图;图C是F3中KO纯合小鼠切割位点处测序结果图;
图3是RT-qPCR检验敲除效率图;其中,图A是雄性小鼠睾丸组织miRNA-125a-5p的相对表达水平;图B是雄性小鼠睾丸组织miRNA-125a-3p的相对表达水平;
图4是潜在脱靶位点检验图;其中图A是sgRNA1的潜在脱靶位点检验图;图B是sgRNA2的潜在脱靶位点检验图;OT1~OT3:三个不同的潜在脱靶位点1~3:三只WT小鼠;4~6:三只KO小鼠;7:正常序列。
具体实施方式
下面结合具体实施例进一步阐述此发明。应理解的是,在此描述的特定实施方式通过举例的方式来表示,并不作为对本发明的限制。在不偏离本发明范围的情况下,本发明的主要特征可以用于各种实施方式。
实施例1设计sgRNA
分析序列以获取合适的sgRNA,利用网站(http://crispr.mit.edu)分析小鼠pre-miRNA-125a中的可用序列。选择了2条sgRNA(SEQ ID NO:1、2)作为片段敲除,具体如下:
SEQ ID NO:1序列为(sgRNA1):CTCACAGGTTAAAGGGTCTC(5’→3’)
SEQ ID NO:2序列为(sgRNA2):GGGTCACAGGTGAGGTTCTT(5’→3’)
根据上述两条sgRNA,设计带接头的靶标序列及其互补序列,具体如下:SEQ IDNO:3序列为(sgRNA1-F):gtttgCTCACAGGTTAAAGGGTCTC(5’→3’)
SEQ ID NO:4序列为(sgRNA1-R):aaacGAGACCCTTTAACCTGTGAGc(5’→3’)
SEQ ID NO:5序列为(sgRNA2-F):gtttGGGTCACAGGTGAGGTTCTT(5’→3’)
SEQ ID NO:6序列为(sgRNA2-R):aaacAAGAACCTCACCTGTGACCC(5’→3’)
实施例2构建表达载体
一)质粒线性化
将lentiCRISPR V2载体按表1所示体系酶切:
表1酶切体系
37℃酶切过夜,加入loading buffer至终浓度不低于1×后,利用0.8%琼脂糖凝胶电泳纯化酶切产物,将线性DNA条带切胶回收,胶回收步骤如下(Omega公司商品化试剂盒):
1、切取琼脂糖凝胶中的目的DNA条带,加入等体积的胶溶液GSB,于65℃金属浴中5-10min,使之完全溶化。
2、将胶溶液分次全部加入离心柱中静置1min,12000rpm离心1min,弃流出液。
3、加入300μL GSB洗涤离心柱,12000rpm离心1min,弃流出液。
4、加入650μL溶液WB,12000rpm离心1min,弃流出液;重复一遍。
5、12000rpm离心2min,彻底去除残留的WB。
6、将离心柱置于一干净离心管中,在柱中央加入10-30μL去离子水,室温静置1min,12000rpm离心1min,洗脱DNA,定量后于-20℃保存。
二)sgRNA退火
将合成的sgRNA的F片段和R片段分别用ddH2O溶解,配制成10μM的溶液;sgRNA片段进行磷酸化并退火,反应体系配制如表2所示:
表2反应体系
在PCR仪上设置如下程序:
37℃ 30min
95℃ 5min
95℃→25℃ 5℃/min
4℃ hold
退火后的产物-20℃保存。
三)连接
将线性化后的载体和退火后的双链sgRNA oligo使用T4 DNA连接酶连接,体系如表3所示。
表3连接体系
室温连接2h,全部连接产物转化50μL Stbl-3感受态细胞。
四)转化
1、冰浴。将-80℃保存的stbl-3感受态大肠杆菌在冰上解冻,融化后取1μL溶于高压水的质粒,加入50μL感受态细胞中(0.1ng质粒即能使100μL感受态细胞饱和),冰浴30min。
2、热激。将感受态细胞于42℃金属浴中热激60-90s后迅速放冰上2-3min。
3、复苏。向感受态细胞中加入不含抗生素的LB液体培养基500μL,以180rpm的转速在37℃恒温摇床中复苏1h。
4、涂板。离心弃去多余培养基,吹吸剩余的培养基使大肠杆菌重悬,将转化后的大肠杆菌均匀涂布于含氨苄青霉素的LB平板上,37℃恒温摇床中倒置培养过夜。
五)抽提质粒
挑取阳性单克隆菌,用人U6启动子通用引物(序列:5’-CCGTAACTTGAAAGTATTTCG-3’)测序,对测序正确的阳性菌株扩大培养并抽提质粒提取质粒步骤如下(北京全式金生物技术有限公司,以下操作均为室温):
1、取5-10mL菌液在2mL离心管中以12000rpm转速分次离心,收集沉淀。
2、每管加入500μL RB(含RNase A),吹打悬浮细菌沉淀,形成均一的细菌悬液。
3、加入500μL LB,上下轻柔翻转4-6次,使菌体充***解。
4、加入700μL NB,轻轻翻转混合5-6次,静置2min,12000rpm离心5min。
5、取上清液加入吸附柱中,12000rpm离心1min,弃流出液。
6、加入650μL WB,12000rpm离心1min,弃流出液。
7、12000rpm离心2min。
8、将吸附柱置于一个干净的离心管中,在柱的中央加入30-50μL 60-70℃预热的EB或去离子水(pH>7.0),室温静置1min。
9、12000rpm离心1min,洗脱DNA,定量。
六)采用上述方法分别连接两条sgRNA,对测序正确的阳性菌株扩大培养并抽提质粒。
实施例3sgRNA活性验证
一)常规培养小鼠肝脏AML12细胞,铺12孔板,待汇合度约为80%时转染构建好的LentiCRISPR V2载体,每孔质粒转染1.5μg。
二)配制含有2μg/mL嘌呤霉素(puro)的完全培养基。转染24h后,换成含有puro的筛选培养基,继续正常培养48h;此时可以观察到未转染质粒的对照孔细胞逐渐死亡,换作正常完全培养基继续培养,培养至基本长满后即可提取细胞基因组DNA,利用PCR扩增含有sgRNA靶区间的目标片段,PCR引物设计为F:5’-GAGCTGGGGTGTCTTCTCTG-3’(SEQ ID NO:7),R:5’-CAGCAGGAACAACAGGACAA-3’(SEQ ID NO:8)。PCR扩增体系如表4所示。
表4 PCR扩增体系
PCR循环:
取3μL PCR产物,加入6×loading buffer使其终浓度不低于1×,1%琼脂糖凝胶电泳检测,以观察到单一明亮的DNA条带为宜。对电泳检测合格的PCR产物进行DNA浓度定量。
三)全部PCR产物跑琼脂糖凝胶电泳,胶回收目标条带,溶于适量无菌水;取目标PCR产物酶切验证,配制体系如表5所示。
表5反应体系
在PCR仪上设置如下程序:
95℃ 5min
95℃→85℃ 2℃/s
85℃→25℃ 0.2℃/s
4℃ hold
向体系中加入T7核酸酶Ⅰ(T7EⅠ)0.5μL,T7EⅠ可切割不完全配对的DNA,37℃反应15-30min;立即向体系中加入6×loading buffer使其终浓度不低于1×,1%琼脂糖凝胶电泳检测,观察是否有短带产生并拍照保存,观察所产生短带的亮度差异。sgRNA活性验证结果如图1所示,1~4为4条sgRNA活性检验结果,3&4为sgRNA1和sgRNA2经T7E1酶切验证结果。
实施例4体外转录及原核注射
一)载体线性化及纯化
构建完成的pUC57-sgRNA表达载体需要再次线性化才能作为体外转录的模板,在载体的MCS区选择Dra I限制性内切酶进行酶切,使质粒线性化,酶切体系参照实施例2。
酶切完成后的线性化DNA模板进行后续纯化操作。
线性化DNA模板需要用等体积的苯酚氯仿混合物进行纯化,具体操作如下:首先利用等体积的苯酚氯仿混合物抽提酶切产物中的DNA,取水相再用等体积的氯仿抽提两次以去除其中残留的苯酚;再向其中加入0.1倍体积的3mol/L醋酸钠溶液(pH=5.2)和2倍体积的无水乙醇,-20℃静置30min以沉淀其中的DNA;12000rpm离心15min,弃去上清,再加入500μL 75%的乙醇洗涤沉淀,12000rpm离心15min;空气干燥离心管中的沉淀,用无菌水溶解,调整浓度至0.5-1μg/μL。
二)体外转录
利用T7 RNA合成试剂盒(NEB公司)进行体外转录,体系如表6所示。
表6转录体系
37℃孵育4h或16℃孵育过夜,向其中加入20μL无核酸酶的水以及2μL DNaseI,37℃孵育15min,将反应产物用ZYMO R1017 RNA回收纯化试剂盒纯化,测浓度后-80℃备用。
三)原核注射
将Cas9 NLS蛋白(NEB)调整浓度至100ng/μL,体外转录并纯化的sgRNA调整浓度至30ng/μL,等体积混合后作为注射液胞浆注射制备转基因小鼠。
实施例5KO小鼠的鉴定及纯化
一)KO小鼠鉴定
剪取少量小鼠组织(脚趾、尾巴或耳朵),利用鼠尾直接PCR试剂盒(美国bimake公司)快速提取基因组DNA,具体步骤如下:
将小鼠组织(小鼠1个脚趾或1~2mm鼠尾)置于无核酸酶的PCR管中,每管加入Protease plus 2μL及Buffer L 100μL,混匀后置PCR仪中,55℃消化15~30min,95℃反应5min使酶失活,消化液离心,取上清,-20℃保存;即为小鼠基因组DNA,可作为后续PCR反应模板。小鼠鉴定所需PCR引物序列如下:
F:5’-GAGCTGGGGTGTCTTCTCTG-3’(SEQ ID NO:7)
R:5’-CAGCAGGAACAACAGGACAA-3’(SEQ ID NO:8)
PCR体系设置如表7所示。
表7 PCR体系
PCR循环:
取3μL PCR产物,加入6×loading buffer使其终浓度不低于1×,1%琼脂糖凝胶电泳检测,以观察到单一明亮的DNA条带为宜。对电泳检测合格的PCR产物进行T7E1酶切或直接测序验证。
二)KO小鼠的纯化
原核注射后的受精卵发育而来的小鼠记为原代(F0)小鼠,仔鼠出生7~10d后,取小鼠脚趾,提取基因组DNA予以验证,因F0代小鼠一般为嵌合体,其基因组DNA的PCR产物进行T7E1酶切验证。
酶切阳性的F0代小鼠同WT进行交配,后代仔鼠取脚趾,PCR后测序鉴定F1代基因型。F1代小鼠大多数为杂合子,选择其中符合预期基因型的小鼠,与野生型再交配一代,F2代小鼠性成熟后进行同窝自由交配;根据孟德尔分离定律,F3代中出现野生型、杂合子和纯合子的比例大约为1:2:1。部分F3代小鼠鉴定结果如图2所示。
实施例6敲除效率检验
取纯合KO小鼠睾丸提取总RNA,以WT小鼠相应器官总RNA为对照,实时定量检测miRNA-125a表达量,并将结果进行统计学分析。
一)组织总RNA提取
采用“TRIzol-氯仿抽提,异丙醇沉淀”的办法提取组织中的总RNA,以备下一步检测使用,提取流程如下:
1、取绿豆大小的组织于1.5mL离心管中,每管加入500μL TRIzol,用匀浆机将组织匀浆,室温静置30min。
2、4℃,12000rpm离心5min,将上清转移进一个新的RNase-free的1.5mL离心管。
3、每管加入三氯甲烷100μL(体积为TRIzol的1/5),盖盖后剧烈震荡15s;可见溶液充分乳化、无分层,室温静置5min。
4、4℃,12000rpm离心15min。
5、取出离心管,可观察到溶液上层为无色的水层(含RNA),中间为白色的蛋白层,下层为红色的有机层;吸取上清转移至另一新的RNase-free离心管中。
6、加入异丙醇,体积与上清液相同(也可加入1μL糖原助沉),颠倒离心管,使液体充分混匀,室温静置10min。
7、4℃,12000rpm离心10min,此时离心管底部一般会出现沉淀。
8、弃去上清,沿管壁加入RNase-free水配制的75%乙醇1mL,颠倒洗涤。
9、4℃,12000rpm离心5min。
10、吸去上清,在超净台室温吹干沉淀;用适量RNase-free水充分溶解沉淀,于NP80上定量后置-80℃保存。
二)RT-qPCR检测细胞系中miRNAs的表达量
1、miRNAs逆转录。以上述细胞系总RNA为模板,分别进行逆转录和实时荧光定量PCR检测其中的miRNA-125a-5p、3p及U6(内参)的表达量。首先采用茎环引物对特定miRNA进行逆转录,逆转录体系设置如表8所示。
表8逆转录体系
70℃反应10min,立即冰浴2min,之后每孔加入表9所示的试剂。
表9逆转录体系
42℃ 30min,70℃ 10min,85℃ 5min。逆转录产物稀释10倍用于实时荧光定量检测。
2、实时荧光定量扩增。实时荧光定量采用SYBR Green法,实验时每个因子重复3孔,同组设置3个生物学重复,体系设置如表10所示。
表10 RT-qPCR反应体系
在7500Fast Real-Time PCR System上设置如下程序:
Melting curve analysis
3、数据分析。查看每个样品孔的扩增情况,导出相应的阈值循环数,即Ct值。采用2-ΔΔCt法计算miRNA相对量。
采用上述方法分别检测各标本中miRNA-125a-5p、miRNA-125a-3p及U6(内参)的Ct值,计算miRNA-125a-5p/3p的表达量;实验时每个因子重复3孔,同组设置3个生物学重复。结果如图3所示,结果显示,阳性敲除单克隆细胞系中miRNA-125a-5p、miRNA-125a-3p的表达量均显著下降。
实施例7潜在脱靶位点检验
根据sgRNA1及sgRNA2的序列,利用网站(http://www.rgenome.net/cas-offinder/)查找其潜在脱靶位点,在搜索结果中,每条sgRNA选择3个潜在脱靶位点;针对每个潜在脱靶位点设计PCR扩增引物。所有选择的PCR扩增引物序列如下:
sgRNA1-OT1-F:5’-GGACATGAAGGCCTAAGGAATAG-3’(SEQ ID NO:9)
sgRNA1-OT1-R:5’-ACAGAGACAGAGAGACAGAGAG-3’(SEQ ID NO:10)
sgRNA1-OT2-F:5’-TGAAGACTCTGCCATCATCAC-3’(SEQ ID NO:11)
sgRNA1-OT2-R:5’-AGGACTCTGAAGGACCAAGA -3’(SEQ ID NO:12)
sgRNA1-OT3-F:5’-CCTAAGAGCTGCCTAGCTTATTT-3’(SEQ ID NO13)
sgRNA1-OT3-R:5’-GGTGTCTTTCTGGAGGGTTATC-3’(SEQ ID NO:14)
sgRNA2-OT1-F:5’-CTGCATTACCTCACACCCTTAG-3’(SEQ ID NO:15)
sgRNA2-OT1-R:5’-CAGCTTACCCTGAGCACATTAG-3’(SEQ ID NO:16)
sgRNA2-OT2-F:5’-CAGAGGTATCTGTGGCCTTTC-3’(SEQ ID NO:17)
sgRNA2-OT2-R:5’-GAGCTATGTCTCCCAGGATTTC-3’(SEQ ID NO:18)
sgRNA2-OT3-F:5’-TACAGGTACTGGGTCCTTAGTT-3’(SEQ ID NO19)
sgRNA2-OT3-R:5’-AATGAGGCTGGGTTGGTATG-3’(SEQ ID NO:20)
分别以3只KO小鼠及3只野生对照小鼠基因组DNA为模板进行PCR扩增;扩增产物予以测序验证,结果如图4所示,所有检测的潜在脱靶位点均未发生脱靶现象。
上述实施例的说明只是用于理解本发明的方法及其核心思想。应当指出,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以对本发明进行若干改进和修饰,这些改进和修饰也将落入本发明权利要求的保护范围内。
序列表
<110> 国家卫生健康委科学技术研究所
<120> 一种基于CRISPR/Cas9技术敲除miRNA-125a的小鼠模型及构建方法
<141> 2021-03-08
<160> 20
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
ctcacaggtt aaagggtctc 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gggtcacagg tgaggttctt 20
<210> 3
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gtttgctcac aggttaaagg gtctc 25
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
aaacgagacc ctttaacctg tgagc 25
<210> 5
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gtttgggtca caggtgaggt tctt 24
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
aaacaagaac ctcacctgtg accc 24
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
gagctggggt gtcttctctg 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
cagcaggaac aacaggacaa 20
<210> 9
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
ggacatgaag gcctaaggaa tag 23
<210> 10
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
acagagacag agagacagag ag 22
<210> 11
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
tgaagactct gccatcatca c 21
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
aggactctga aggaccaaga 20
<210> 13
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
cctaagagct gcctagctta ttt 23
<210> 14
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
ggtgtctttc tggagggtta tc 22
<210> 15
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
ctgcattacc tcacaccctt ag 22
<210> 16
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
cagcttaccc tgagcacatt ag 22
<210> 17
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 17
cagaggtatc tgtggccttt c 21
<210> 18
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 18
gagctatgtc tcccaggatt tc 22
<210> 19
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 19
tacaggtact gggtccttag tt 22
<210> 20
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 20
aatgaggctg ggttggtatg 20
Claims (10)
1.一种基于CRISPR/Cas9技术构建的C57BL/6J模型小鼠,其特征在于,该模型小鼠为miRNA-125a敲除小鼠;优选的,敲除区域为pre-miRNA-125a中的一部分,包括miRNA-125a-5p及3p的一部分和茎环结构的全部,全长42bp。
2.建立miRNA-125a敲除小鼠模型的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)针对C57BL/6J小鼠pre-miRNA-125a,设计敲除策略,敲除区域包括:miRNA-125a-5p及3p的一部分和茎环结构的全部,全长42bp;
(2)采用CRISPR/Cas9基因编辑方法,获得F0代小鼠;
(3)将阳性F0代小鼠和野生型C57BL/6J交配、繁育,最终得到具有miRNA-125a敲除阳性纯合小鼠。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,实现42bp的片段敲除需要一对sgRNA,所述sgRNA的核苷酸序列如SEQ ID NO:1~2所示。
4.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述CRISPR/Cas9基因编辑方法包括分别设计和构建sgRNA1和sgRNA2,并进行体外活性测试,制备Cas9混样体系;并将两条体外转录的sgRNA与Cas9蛋白共同进行原核注射,注射后的受精卵植入母鼠子宫获得F0。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于,纯化小鼠时,F0先与野生型交配,得到F1,F1再与野生型交配得到碱基序列相同的F2,同窝F2互相交配得到纯合敲除的F3。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,阳性F1代小鼠用于保种建系,不同的保种建系之间原则上不允许交配。
7.一种鉴定miRNA-125a敲除小鼠的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)剪取少量小鼠组织,提取基因组DNA;
(2)针对权利要求3中所述的敲除位点设计一对PCR扩增引物;
(3)以待检测小鼠基因组DNA为模板进行PCR扩增,扩增产物测序验证;
优选的,(1)中所述的组织选自脚趾、尾巴或耳朵;
优选的,(2)中所述扩增引物包含sgRNA1和sgRNA2拟敲除位点;
更为优选的,所述扩增引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7~8所示。
8.一种对miRNA-125a敲除小鼠进行脱靶验证的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)针对权利要求3中所述的一对sgRNA,每条sgRNA选择三个预测概率较大的潜在脱靶位点,每个潜在脱靶位点设计一对PCR扩增引物;
(2)选择权利要求5中所述的纯合敲除及野生对照F3小鼠,剪取组织提取基因组DNA;
(3)以待检测小鼠基因组DNA为模板进行PCR扩增,扩增产物测序验证;
优选的,(1)中所述扩增引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9~20所示。
9.权利要求1或2所述的模型小鼠在生殖及妊娠相关疾病研究中的应用。
10.一种基于CRISPR/Cas9基因敲除技术构建miRNA-125a敲除小鼠模型的sgRNA,其特征在于,所述sgRNA包括sgRNA1和sgRNA2,所述sgRNA1如SEQ ID NO:1所示,所述sgRNA2如SEQ ID NO:2所示。
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