CN111321095B - 具有α-葡萄糖苷酶抑制作用的丁烯酸内酯二聚体及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种具有α‑葡萄糖苷酶抑制作用的芳香丁烯酸内酯二聚体及其制备方法和应用。本发明从一株曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011 CGMCC No:19270的发酵物中分离得到一种芳香丁烯酸内酯二聚体,如图1所示,具有α‑糖苷酶抑制活性,因此可制成具有降血糖作用的α‑葡萄糖苷酶抑制剂,用于制备预防和/或治疗糖尿病、肥胖症及其并发症的组合物、药物、保健品。
Description
技术领域
本发明属于海洋天然药物领域,具体涉及一种丁烯酸内酯二聚体及其在制备α-葡萄糖苷酶抑制剂和制备预防或治疗糖尿病、肥胖症及其并发症的组合物、药物、保健品中的应用。
背景技术
随着人们的生活水平大幅提升、人口老龄化、环境改变等影响,糖尿病已经成为仅次于肿瘤疾病、心血管疾病的慢性疾病,并且发病人数和比例也在逐年升高,严重危害公众健康。糖尿病在临床上的分型有 I 型糖尿病(胰岛素依赖型糖尿病)和 II 型糖尿病(非胰岛素依赖型糖尿病)两种,其中II 型糖尿病约占糖尿病的 90 %以上。α-葡萄糖苷酶抑制剂可以延缓肠道碳水化合物吸收,被认为是控制 II 型糖尿病的理想途径。目前,已经上市的α-葡萄糖苷酶抑制剂类药物主要有阿卡波糖、米格列醇和伏格列波糖等,并且阿卡波糖、米格列醇和伏格列波糖均是来自于微生物的代谢产物。因此,从微生物代谢物中发现α-葡萄糖苷酶抑制剂对于II 型糖尿病的预防或治疗具有重要意义。
发明内容
本发明提供一种曲霉属真菌及其发酵物中分离的具有α-葡萄糖苷酶抑制作用的丁烯酸内酯二聚体化合物及其制备方法。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案。
一种曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011,保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC),地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,保藏编号:CGMCC No. 19270,保藏日期:2019年12月27日。
一种曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011及其发酵产物在生产α-葡萄糖苷酶抑制剂的应用。所述曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011培养后可产生发酵产物,所述发酵产物中含有α-葡萄糖苷酶抑制活性物质,其发酵液可用于生产具有α-葡萄糖苷酶抑制作用的药物或添加剂。
一种曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011产生的丁烯酸内酯二聚体化合物,其结构式如图1所示。
一种上述丁烯酸内酯二聚体化合物的制备方法,包括以下步骤:
(1)曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011的发酵;
(2)从步骤(1)所得发酵物中经提取得到发酵提取物;
(3)步骤(2)中的提取物通过正相硅胶柱、快速中压层析柱、反相C18柱高效液相等方法进行分离。
本发明提供一种含有步骤(2)中提取物,或图 1所示化合物或其盐在制备α-葡萄糖苷酶抑制剂药物、药物中间体的用途。
本发明提供一种含有步骤(2)中提取物,或图 1所示化合物或其盐的α-葡萄糖苷酶抑制药物。所述具有α-葡萄糖苷酶抑制作用药物还包括医学上可接受的辅料。所述具有α-葡萄糖苷酶抑制作用药物还可以包括其他有效成分,以增强抑制α-葡萄糖苷酶或降低血糖的效果。
本发明具有以下优点:
本发明的丁烯酸内酯二聚体可以通过Aspergillus terreus SCAU011的发酵提取分离获得,具有α-葡萄糖苷酶抑制活性,在制备α-葡萄糖苷酶抑制剂发面具有应用潜力。
附图说明
图1为丁烯酸内酯二聚体化合物的结构式。
图2为菌种SCAU011平板培养图片。
图3为图 1所示化合物的氢谱(600 MHz)和碳谱(150 MHz)数据(CDCl3)。
图4为图 1所示化合物主要的1H-1H COSY 、HMBC信息。
图5为图 1所示化合物的ECD谱图。
图6为图 1所示化合物的Mosher试剂衍生物结构及其δH (Δδ = δS−δR)差值。
具体实施方式
下面结合实施例和附图对本发明做进一步说明,但本发明不受下述实施例的限制。实施例中的实验方法,如无特别说明,均采用本领域常规技术,实验试剂均为商业购买。
本发明的菌种Aspergillus terreus SCAU011保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心(CGMCC),地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,保藏编号:CGMCC No. 19270,保藏日期:2019年12月27日。
实施例1 菌种的分离纯化与鉴定。
从湛江特呈岛红树林保护区沉积物中,经分离纯化获得菌种Aspergillus terreus SCAU011,其典型培养物图片如图2所示:菌落呈圆形,菌丝白色,孢子土黄色。经ITS rDNA检测,与Gene Bank数据进行比较,鉴定为Aspergillus terreus真菌。
实施例2 发酵物的制备。
种子培养基的配制方法:土豆浸出液200 mL,葡萄糖20 g,海盐 30 g,用水定容到1 L。将PDB培养基装入20个500 mL的三角烧瓶中,每瓶约150 mL,在121℃高压蒸汽灭菌25分钟,备用。
大米培养基配置方法:将市售大米80 g,酵母浸膏0.4 g,葡萄糖0.4 g,无菌水120mL,海盐3.6 g置于1 L三角瓶中,共60瓶。121℃高压蒸汽灭菌25分钟,备用。
用无菌竹签挑取适量的真菌Aspergillus terreus SCAU011菌种接种入种子培养基中,28℃摇床(180 rpm)培养3天得到种子液,然后用移液枪接种10 mL种子液到1 L的装有大米培养基的三角烧瓶中,于28℃静置培养30天后,收取发酵的培养基。
将发酵的大米培养基用95%乙醇浸泡,浸取液回收乙醇后剩余水相,再用乙酸乙酯进行萃取,减压浓缩得到乙酸乙酯提取物作为粗提物。
实施例3 丁烯酸内酯二聚体的制备。
按照实施例2的方法获得4.0 kg发酵大米培养基,将大米培养基用95%乙醇浸泡、浸取液回收乙醇后剩余水相再用乙酸乙酯进行萃取,减压浓缩得到乙酸乙酯提取物60g。乙酸乙酯提取物用正相硅胶(100-200目)进行柱层析,以二氯甲烷-甲醇作为洗脱剂,从体积比100:0 到0:100进行梯度洗脱,根据薄层层析情况合并各个流份,回收洗脱溶剂,获得7个馏分(Fr.1-Fr.7)。
Fr.5进一步以二氯甲烷-丙酮作为洗脱剂进行正相硅胶(200-300目)柱层析,根据薄层层析情况合并各个流份,回收洗脱溶剂,获得6个馏分(Fr.5-1-Fr.5-6)。组分Fr.5-4以甲醇-水作为洗脱剂进行快速中压(反向C-18)层析分离,根据薄层层析情况合并各个流份,回收洗脱溶剂,获得9个馏分(Fr.5-4-1-Fr.5-4-9)。组分Fr.5-4-9采用高效液相半制备(色谱柱为YMC-Pack ODS-A 10 mm×250 mm,流速为3.0 mL/min,检测波长254 nm,流动相为体积比为76:24:0.05的甲醇-水-乙酸)在出峰时间为11.2 min时分离纯化得到图 1所示化合物(6.3 mg)。
图 1所示化合物是淡黄色胶状,易溶于氯仿、甲醇、DMSO,难溶于水,比旋光度值[α]29 D 77.1(c 0.36,MeOH)。
对分离获得的化合物进行高分辨质谱(HR-ESIMS)、1H NMR、13C NMR、2D 1H-1HCOSY、HSQC、HMBC分析,确定了平面结构,并通过ECD和改良Mosher的方法确定了化合物的立体结构。1H和13C NMR数据见图3,主要的1H-1H COSY和HMBC相关信息见图4, ECD谱图见图5。分离得到的化合物的结构如图1所示。
实施例4 图 1所示化合物衍生物的制备。
称取1.0 mg图 1所示化合物溶于0.5 mL无水吡啶中,往溶液中加入Mosher试剂10μL (R)-2-甲氧基-2-三氟甲基苯乙酰氯和1.0 mg DMAP(作为催化剂),于室温反应9小时。将溶剂减压蒸干后,将粗品采用高效液相半制备得到化合物a(图6);将Mosher试剂换为(S)-2-甲氧基-2-三氟甲基苯乙酰氯,相同的方法得到化合物b(图6)。
实施例5 图 1所示化合物的α-葡萄糖苷酶抑制活性。
用磷酸缓冲液(0.1 mol/L,pH=6.9)配置PNPG(对-硝基苯基-β-D-葡萄糖苷)溶液(0.4 mmol/L)备用;用磷酸缓冲液(0.1 mol/L pH=6.9)配置冻干酶粉(酶活力为16 U/mL)溶液(0.2 U/mL)备用;实验分为实验组、空白组和对照组,将2.0 μL含有不同浓度样品的DMSO溶液与25 μL 0.2 U/mL的酶溶液、98 μL PBS缓冲液加入到96孔板中混匀,37 °C孵育20 min;然后加入25.0 μL 0.4 mM PNPG,37 °C孵育15 min;最后加入50.0 μL 0.2 MNa2CO3终止反应。酶标仪405 nm处测试其吸光度,计算抑制率和IC50。
实验结果显示,图 1所示化合物具有很好的α-葡萄糖苷酶抑制活性,IC50值为10.5μM,远远优于阳性对照阿卡波糖(IC50 = 274.5 μM)。
Claims (3)
1.一种曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011,保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心,保藏号为CGMCC No: 19270。
3.一种如权利要求1所述的曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011在制备权利要求2所述的化合物中的应用,其特征在于,包括以下步骤:
(1)曲霉属真菌Aspergillus terreus SCAU011的发酵;
(2)从步骤(1)所得发酵物中经提取得到发酵提取物;
(3)步骤(2)中的提取物通过正相硅胶柱、快速中压层析柱、反相C18柱高效液相等方法进行分离。
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