CN110951766B - 利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成l-鸟氨酸的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L‑鸟氨酸的方法,属于属于生物化工领域。该方法包括以下步骤:(1)重组谷氨酸棒杆菌:在谷氨酸棒杆菌中敲除MtlR的编码基因,然后在谷氨酸棒杆菌中通过***强启动子P NCgl0824 的策略过表达甘露醇脱氢酶的编码基因mtlD,获得重组谷氨酸棒杆菌;(2)好氧发酵合成L‑鸟氨酸:将步骤(1)获得的重组谷氨酸棒杆菌接种于含有甘露醇、玉米浆等成分的发酵培养基中进行好氧发酵生产L‑鸟氨酸。本发明所提供的方法采用了谷氨酸棒杆菌为生产菌株,以海藻水解液的主要成分甘露醇为底物合成L‑鸟氨酸,有潜力代替葡萄糖成为发酵L‑鸟氨酸的主要碳源,缓解L‑鸟氨酸工业规模化生产与人类竞争粮食的问题。
Description
技术领域
本发明属于生物化工领域,具体涉及利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法。
背景技术
L-鸟氨酸是尿素循环的中间代谢产物,对体内氨的***具有重要的作用。L-鸟氨酸虽然不编码蛋白质,但存在于短杆菌酪肽、短杆菌肽S等抗菌肽中,具有保护肝脏、增强免疫力等功能。
L-鸟氨酸还被广泛应用于食品、医疗、化工等领域:食品方面,L-鸟氨酸是食品添加剂的主要成分之一,可用于制备乳制食品、肉制食品、烘焙食品、面制食品等;医疗方面,L-鸟氨酸可用于制备保肝护肝药物门冬氨酸鸟氨酸、天冬氨酸鸟氨酸等;化工方面,L-鸟氨酸可代替甘油用于烟丝的加香、防冻保湿剂,用作洗面奶、洗发水、美容霜等的添加剂;饲料方面,L-鸟氨酸可用于制备宠物罐头、动物饲料、水产饲料、兽药产品等。
目前国际市场对L-鸟氨酸总需求量超过5000吨,而主要生产厂家有味之素、田道制药和协和发酵三家企业,产量供不应求。市场上,医药级L-鸟氨酸的单价为35-40万元/吨,价格昂贵。
工业上生产L-鸟氨酸主要有化学法、酶法及工业发酵法,其中,化学法合成L-鸟氨酸存在操作工艺复杂、反应条件要求苛刻及破坏环境等缺点,酶法需要以价格昂贵的精氨酸和精氨酸酶为原料,生产成本受制于精氨酸的价格。而发酵法则是以葡萄糖为底物,通过工程菌种自身体内的生物代谢途径将葡萄糖转化为L-鸟氨酸。与化学法、酶法相比,利用微生物发酵法合成L-鸟氨酸因具备生产成本低、环境污染小等优势而日益成为研究者们关注的焦点。
虽然利用微生物发酵法合成L-鸟氨酸具有广阔的应用前景,但是这种方法需要消耗大量的底物葡萄糖,而工业用葡萄糖主要的来源是淀粉的水解。在地球耕地面积不断减少,人口数量又不断增加的大环境下,以葡萄糖为原料合成L-鸟氨酸显然面临着与人类竞争粮食的问题,并且这个问题所带来的负面影响将与日俱增。
因此有必要提供一种新的L-鸟氨酸发酵生产方法,利用其他碳源替代葡萄糖进行发酵合成L-鸟氨酸,缓解L-鸟氨酸规模化生产与人类竞争粮食的问题。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术中存在的上述缺陷,提供一种新的利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法。
为达到以上目的,本发明采用以下技术方案:
利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法,包括以下步骤:
(1)重组谷氨酸棒杆菌:构建含有敲除负调控蛋白MtlR同源上下臂的重组质粒,导入谷氨酸棒杆菌,敲除负调控蛋白MtlR的编码基因mtlR;然后将强启动子为P NCgl0824 启动子***在mtlD基因上游非编码区,强化表达甘露醇脱氢酶的编码基因mtlD,获得重组谷氨酸棒杆菌;
(2)好氧发酵合成L-鸟氨酸:将步骤(1)中获得的重组谷氨酸棒杆菌接种于发酵培养基中进行好氧发酵合成L-鸟氨酸,谷氨酸棒杆菌的接种量为1-20体积%,发酵温度为30℃;控制摇床转速为250 rpm,发酵时间:72 h;发酵结束后收集发酵液,对所述发酵液的OD600测定与L-鸟氨酸浓度测定。
所述发酵培养基包含甘露醇、玉米浆、硫酸铵、MgSO4、KH2PO4、Na2HPO4、K2HPO4、MnSO4、FeSO4、CaCO3;
为了获得更好的技术效果,进一步提高L-鸟氨酸的产量,需要优化发酵培养基中甘露醇的浓度;
优选的,所述发酵培养基中各组分的含量为:甘露醇 20-100 g/L、玉米浆 5-25g/L、硫酸铵 10-60g/L、MgSO4 0.2-5 g/L、KH2PO4 0.5-5 g/L、Na2HPO4 0.5-5 g/L、K2HPO4 0.5-5 g/L、MnSO4 0.001-1 g/L、FeSO4 0.001-1 g/L、CaCO3 10-30 g/L;
优选的,所述发酵培养基中各组分的含量为:甘露醇80 g/L、玉米浆20 g/L、硫酸铵50g/L、MgSO42.5 g/L、KH2PO41 g/L、Na2HPO4 0.5 g/L、K2HPO40.5 g/L、MnSO40.02 g/L、FeSO4 0.02 g/L、CaCO3 10 g/L。
本发明所提供的方法的有益效果在于:
(1) 改变了谷氨酸棒杆菌的发酵底物,由甘露醇代替葡萄糖,甘露醇可从海藻水解液中经过简单的处理得到。
(2) 通过***强启动子的遗传操作手段强化表达甘露醇脱氢酶的编码基因,可加速甘露醇的利用,提高L-鸟氨酸的产量。
附图说明
图1:mtlR基因敲除同源臂mtlR-up和mtlR-down的分别PCR扩增;
图2:mtlR基因敲除同源臂mtlR-up-down的融合PCR扩增;
图3pk18-ΔmtlR重组质粒的菌落PCR验证;
图4:C.glutamicumSO26 ΔmtlR的PCR筛选;
图5:C.glutamicumSO26 和C.glutamicumSO26ΔmtlR的摇瓶发酵产L-鸟氨酸浓度折线图;
图6:mtlD基因过表达同源臂mtlD-up和mtlD-down以及强启动子P NCgl0824 的PCR扩增;
图7:mtlD基因过表达同源臂mtlD-up-P NCgl0824 -down的融合;
图8:C.glutamicumSO26 ΔmtlRP NCgl0824 -mtlD的鉴定;
图9:重组菌C.glutamicumSO26 ΔmtlR和C.glutamicumSO26 ΔmtlRP NCgl0824 -mtlD发酵产L-鸟氨酸折线图。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。若未特别指明,实施例中所用技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段,所用原料均为市售商品。
实施例1
谷氨酸棒杆菌mtlR基因敲除质粒的构建。
以谷氨酸棒杆菌S9114的基因组为模板,以引物mtlR-up-F(aacgacggccagtgccaagctAAATGGTGGCAACCAGCGCAC)和mtlR-up-R(CGCATATGGAATTCGATATCGAGCGGGAATCACTTGGGACATGTG)为引物进行PCR,获得mtlR上游约800bp的同源片段mtlR-up并利用PCR产物回收试剂盒进行纯化(图1)。以谷氨酸棒杆菌S9114的基因组为模板,以引物mtlR-down-F(GCTCGATATCGAATTCCATATGCGTTTTGAGGTCAGCGCAATGAC)和mtlR-down-R(cggtacccggggatcctctagACAAGCAAAGCCTTGCAGGAT)为引物进行PCR扩增,获得mtlR下游约800bp的同源片段mtlR-down使用PCR产物回收试剂进行纯化(图1)。以mtlR-up和mtlR-down片段为模板,以mtlR-up-F和mtlR-down-R为引物进行重叠PCR扩增,获得mtlR-up-down片段(图2)。将谷氨酸棒杆菌***性质粒pK18mobsacB用HindI和XbaI进行双酶切,利用一步法克隆试剂盒(诺唯赞)将mtlR-up-down片段一步连接到pK18mobsacB上,利用M13引物进行PCR验证阳性克隆(图3),获得的重组质粒命名为pK18-ΔmtlR。
实施例2
MtlR基因敲除菌的构建。
利用电穿孔仪(伯乐)将pK18-ΔmtlR通过电转化转入到产L-鸟氨酸的谷氨酸棒杆菌SO26中,电击条件为电压3000 V,4ms(电击杯宽度为2mm)。一次重组菌在含25mg/L的卡那霉素LB平板上筛选。该重组菌进一步在液体LB培养基里培养2h,之后涂布于含有10 g/L蔗糖的LB平板上进行二次筛选。利用mtlR-up-F和mtlR-down-R为引物进行菌落PCR,敲除mtlR基因的重组子克隆出来的片段为1.6 Kb,其中筛选到的阳性克隆子,再次利用引物mtlR-check-F(ACCCGTCATGGATTCGCTCGT)和mtlR-down-R进行PCR再次验证,以原始菌作对照,如未能扩增到800左右条带(图4),则认为mtlR基因敲除成功,该重组菌命名为C.glutamicumΔmtlR。
实施例3
原始菌谷氨酸棒杆菌C. glutamicum SO26和重组谷氨酸棒杆菌C. glutamicumSO26 ΔmtlR的发酵培养。
原始菌谷氨酸棒杆菌C. glutamicum SO26和重组谷氨酸棒杆菌C. glutamicumSO26 ΔmtlR在LB平板上过夜培养。从该新鲜平板上单菌落接种到含有10 mL种子培养基的100 mL三角摇瓶中,32℃,220rpm培养12h。
种子培养基的配方包括(g/L):葡萄糖30、玉米浆10、酵母粉10、(NH4)2SO4 15、MgSO42.5、KH2PO4 1、K2HPO4 0.5、Na2HPO4 0.5、CaCO310。
以10%的接种量将种子培养液接种到20 mL发酵培养基当中,发酵采用250 mL三角瓶,温度为32℃,转速控制为250 rpm。
发酵培养基配方包括(g/L):甘露醇80 g/L、玉米浆20 g/L、硫酸铵50g/L、MgSO42.5 g/L、KH2PO41 g/L、Na2HPO4 0.5 g/L、K2HPO4 0.5 g/L、MnSO4 0.02 g/L、FeSO4 0.02g/L、CaCO3 10 g/L。
发酵72h结束。重组谷氨酸棒杆菌菌株C.glutamicumSO26 ΔmtlR的OD600达到11,L-鸟氨酸产量达到22 g/L(图5)。而原始菌谷氨酸棒杆菌菌株C. glutamicumSO26的OD600为7,L-鸟氨酸产量也只有2.3 g/L。
说明原始菌谷氨酸棒杆菌SO26消耗甘露醇合成L-鸟氨酸的效率较低。敲除mtlR基因可以显著提升谷氨酸棒杆菌利用甘露醇发酵合成L-鸟氨酸的产量。
实施例4
重组谷氨酸棒杆菌C. glutamicumSO26 ΔmtlR发酵培养基甘露醇浓度的优化。
谷氨酸棒杆菌C. glutamicumSO26 ΔmtlR在LB平板上过夜培养。从该新鲜平板上单菌落接种到含有10 mL种子培养基的100 mL三角摇瓶中,32℃,220rpm 培养12h。
种子培养基的配方包括(g/L):葡萄糖30、玉米浆10、酵母粉10、(NH4)2SO4 15、MgSO42.5、KH2PO4 1、K2HPO4 0.5、Na2HPO4 0.5、CaCO310。
以10%的接种量将种子培养液接种到20 mL发酵培养基当中,发酵采用250 mL三角瓶,温度为32℃,转速控制为250 rpm。
发酵培养基配方包括(g/L):甘露醇20-100 g/L、玉米浆20 g/L、硫酸铵50g/L、MgSO42.5 g/L、KH2PO41 g/L、Na2HPO4 0.5 g/L、K2HPO4 0.5 g/L、MnSO4 0.02 g/L、FeSO4 0.02g/L、CaCO3 10 g/L。
发酵72 h结束。如图所示,重组谷氨酸棒杆菌菌株C. glutamicumSO26 ΔmtlR于80 g/L甘露醇为碳源的培养基的L-鸟氨酸产量最高(图5)。
实施例5
谷氨酸棒杆菌P NCgl0824 强启动子***mtlD基因重组质粒的构建。
以谷氨酸棒杆菌S9114的基因组为模板,以引物mtlD-up-F(aacgacggccagtgccaagctAACGTTGTGGGTTTCCCTCGT)和mtlD-up-R(GTTTAGCTCGAAAAACAGTTAGG)为引物进行PCR,获得mtlD上游约800bp的同源片段mtlD-up并利用PCR产物回收试剂盒进行纯化(图6,泳道1)。以谷氨酸棒杆菌S9114的基因组为模板,以引物P-F(mtlD)(CCTAACTGTTTTTCGAGCTAAACAACTGTGCCACTAATACGGATAG)和P-R(mtlD)(GGAAAAGATCCTTTCAAGGATGGCAATTTCGCCTGCTTCCGATT)为引物进行PCR扩增,获得200 bp左右的P NCgl0824 强启动子DNA片段,使用PCR产物回收试剂进行纯化(图6,泳道2)。以谷氨酸棒杆菌S9114的基因组为模板,以引物mtlD-down-F(CCATCCTTGAAAGGATCTTTTCC)和mtlD-down-R(cggtacccggggatcctctagCCCATTGGGTGAAATCTTCAG)为引物进行PCR扩增,获得mtlD下游约800bp的同源片段mtlD-down使用PCR产物回收试剂进行纯化(图6,泳道3)。以mtlD-up、P NCgl0824 强启动子和mtlD-down片段为模板,以mtlD-up-F和mtlD-down-R为引物进行重叠PCR扩增,获得mtlD-up-P NCgl0824 -down片段(图7)。将谷氨酸棒杆菌***性质粒 pK18mobsacB用HindI和XbaI进行双酶切,利用一步法克隆试剂盒(诺唯赞)将mtlD-up-P NCgl0824 -down片段一步连接到pK18mobsacB上,获得的重组质粒命名为pK18-P NCgl0824 -mtlD。
实施例6
利用强启动子***策略过表达mtlD基因重组菌的构建。
利用电穿孔仪(伯乐)将pK18-P NCgl0824 -mtlD通过电转化转入到产L-鸟氨酸的C. glutamicumΔmtlR中,电击条件为电压3000 V,4ms(电击杯宽度为2mm)。一次重组菌在含25mg/L的卡那霉素LB平板上筛选。该重组菌进一步在液体LB培养基里培养2h,之后涂布于含有10 g/L蔗糖的LB平板上进行二次筛选。利用P-F(mtlD)和mtlD-down-R为引物进行菌落PCR,如若能扩增到1000左右条带(图8),则认为P NCgl0824 启动子成功***mtlD基因上游,该重组菌命名为C. glutamicumΔmtlRP NCgl0824 -mtlD。
实施例7
重组谷氨酸棒杆菌C.glutamicumSO26 ΔmtlR和C. glutamicumΔmtlRP NCgl0824 -mtlD发酵培养。
重组谷氨酸棒杆菌C.glutamicumSO26 ΔmtlR和C. glutamicumΔmtlRP NCgl0824 -mtlD在LB平板上过夜培养。从该新鲜平板上单菌落接种到含有10 mL种子培养基的100 mL三角摇瓶中,32℃,220rpm 培养12小时。
种子培养基的配方包括(g/L):葡萄糖30、玉米浆10、酵母粉10、(NH4)2SO4 15、MgSO42.5、KH2PO4 1、K2HPO4 0.5、Na2HPO4 0.5、CaCO310。
以10%的接种量将种子培养液接种到20 mL发酵培养基当中,发酵采用250 mL三角瓶,温度为32℃,转速控制为250 rpm。
发酵培养基配方包括(g/L):甘露醇80 g/L、玉米浆20 g/L、硫酸铵50g/L、MgSO42.5 g/L、KH2PO41 g/L、Na2HPO4 0.5 g/L、K2HPO40.5 g/L、MnSO40.02 g/L、FeSO4 0.02g/L、CaCO3 10 g/L。
发酵72h结束。谷氨酸棒杆菌菌株C. glutamicumSO26 ΔmtlRP NCgl0824 -mtlD的L-鸟氨酸产量达到27 g/L(图9)。较C. glutamicumSO26 ΔmtlR提高了22.5%。
说明在mtlR基因敲除菌的基础上过表达mtlD可以显著提升谷氨酸棒杆菌利用甘露醇发酵合成L-鸟氨酸的产量。
Claims (3)
1.利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)重组谷氨酸棒杆菌:构建含有敲除负调控蛋白MtlR同源上下臂的重组质粒,导入谷氨酸棒杆菌,敲除负调控蛋白MtlR的编码基因mtlR;然后将强启动子为P NCgl0824 启动子***在mtlD基因上游非编码区,强化表达甘露醇脱氢酶的编码基因mtlD,获得重组谷氨酸棒杆菌;
(2)好氧发酵合成L-鸟氨酸:将步骤(1)中获得的重组谷氨酸棒杆菌接种于发酵培养基中进行好氧发酵合成L-鸟氨酸,谷氨酸棒杆菌的接种量为1-20体积%,发酵温度为30℃;控制摇床转速为250 rpm,发酵时间:72 h;发酵结束后收集发酵液,对所述发酵液的OD600测定与L-鸟氨酸浓度测定;
所述发酵培养基包含甘露醇、玉米浆、硫酸铵、MgSO4、KH2PO4、Na2HPO4、K2HPO4、MnSO4、FeSO4、CaCO3。
2.根据权利要求1所述利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法,其特征在于所述发酵培养基中各组分的含量为:甘露醇 20-100 g/L、玉米浆 5-25 g/L、硫酸铵10-60g/L、MgSO4 0.2-5 g/L、KH2PO4 0.5-5 g/L、Na2HPO4 0.5-5 g/L、K2HPO4 0.5-5 g/L、MnSO4 0.001-1 g/L、FeSO4 0.001-1 g/L、CaCO3 10-30 g/L。
3.根据权利要求1所述利用重组谷氨酸棒杆菌代谢甘露醇合成L-鸟氨酸的方法,其特征在于所述发酵培养基中各组分的含量为:甘露醇80 g/L、玉米浆20 g/L、硫酸铵50g/L、MgSO42.5 g/L、KH2PO41 g/L、Na2HPO4 0.5 g/L、K2HPO40.5 g/L、MnSO40.02 g/L、FeSO4 0.02g/L、CaCO3 10 g/L。
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Highly efficient biosynthesis of L-ornithine from mannitol by using recombinant Corynebacterium glutamicum;ZHANG,Q. et al.;《Bioresource Technology》;20210201;文章124799 * |
Lysine production from the sugar alcohol mannitol: Design of the cell factory Corynebacterium glutamicum SEA-3 through integrated analysis and engineering of metabolic pathway fluxes;HOFFMANN,S.L.et al.;《Metabolic Engineering》;20180427;第47卷;摘要, 2.2-2.4节,表1 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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CN110951766A (zh) | 2020-04-03 |
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