CN110592267A

CN110592267A - 鲤春病毒血症病毒（svcv）的raa恒温荧光检测方法及试剂

Info

Publication number: CN110592267A
Application number: CN201810606494.6A
Authority: CN
Inventors: 刘荭; 钱冬; 程奇; 王津津; 黄震巨; 张建勋; 肖文; 余国君; 史秀杰; 郑晓聪; 贾鹏; 于力; 何俊强; 刘莹; 温智清
Original assignee: Hangzhou Public Survey Biological Technology Co Ltd
Current assignee: Hangzhou Public Survey Biological Technology Co Ltd
Priority date: 2018-06-13
Filing date: 2018-06-13
Publication date: 2019-12-20

Abstract

本发明公开了一种鲤春病毒血症病毒（SVCV）RAA恒温荧光检测方法和检测试剂盒。检测试剂盒包括一条正向引物SEQ ID NO.1、一条反向引物SEQ ID NO.2、一条特异性荧光探针SEQ ID NO.3、反应液、逆转录酶、重组聚合酶和对照品。本发明的试剂盒特异性强；检测灵敏度高，可达到0.1fg/μL；准确度高、可靠；操作简便快捷，适合现场检测，具有广泛的应用场景。

Description

鲤春病毒血症病毒(SVCV)的RAA恒温荧光检测方法及试剂

技术领域

本发明属于分子生物学技术领域，涉及海洋水产养殖业的检测方法，具体涉及一种鲤春病毒血症病毒的RAA恒温荧光检测方法及试剂盒。

背景技术

鲤春病毒血症(Spring viraemia of carp，SVC)是一种以出血为主要临床症状并伴有高度传染性的急性流行病，其病原为鲤春病毒血症病毒(Spring viraemia of carpvirus，SVCV)鲤春病毒血症病毒(SVCV)，又名鲤弹状病毒，属弹状病毒科(Rhabdoriridae)，水泡病毒属(Vesiculorirus)。病毒粒子90nm～180nm,宽60nm～90nm，有类脂囊膜，核衣壳中空，螺旋状对称，直径50nm。病毒基因组为单股、负链、不分节段的RNA，长约11019个核苷酸，主要包含5个基因。病毒粒子浮力密度在CsCl中为1.195g/ml～1.200g/ml，在15％～60％的蔗糖溶液中为1.16g/ml，在5％～25％的蔗糖梯度中沉降系数为38s～40s。病毒的抵抗力不强，感染性受环境因子的影响较大，对酸、热及脂溶剂敏感，pH值7～10时稳定，在13℃～22℃均可生长，最适生长温度为17℃。

鲤春病毒血症病毒破坏鱼体内的水盐平衡，鲤鱼急性感染时，在临床上表现为病鱼无目的的漂游，体发黑，腹部肿大。皮肤和鳃渗血，无外部溃疡及其他细菌病症状。消化道出血，可见到腹水严重带血；肠炎、心、肾、鳔有时连同肌肉也出血，内脏水肿。肝部血管有血管炎及水肿。最后导致血管坏死，肝实质也多处坏死。

目前，尚缺乏有效控制鲤春病毒血症病毒的药物和方法。国际上通行的控制该病的有效措施是进行鲤春病毒血症的监测，及早发现并进行隔离或扑杀。目前SVCV检测方法主要包括核蛋白基因特异性探针原位杂交、免疫组织化学、ELISA方法和核蛋白基因RT-PCR方法等。例如：基于组织病理学的方法不仅操作繁琐、费时，而且灵敏度较低；基于免疫学的方法虽然具有敏感性高、检测快速等特点，可用于大批标本的检测，但对新鲜样品进行检测时出现的假阳性问题在一定程度上还限制着该方法的广泛应用；而PCR方法敏感、准确、快速，可替代病原学检测，但由于需要昂贵的仪器设备、较高检测费用以及对检测人员较高的技术要求而使其不适用于现场快速检测及基层普及应用。与一般PCR技术相比，荧光PCR检测技术简化了操作步骤，而且可消除扩增产物引起的交叉污染，减少假阳性的发生。但实时荧光PCR耗时长，成本较高，目前在水产养殖动物的常规病原体检测中的应用还不多。LAMP等温扩增技术同样由于假阳性较高，准确度低，水产病原检测中的应用还是比较局限。本发明建立了RAA恒温荧光来检测鲤春病毒血症病毒的方法，快速方便，准确可靠，是适应口岸快速检测和大通关的时代要求，对促进中国海洋养殖及其产品的贸易有重要作用。

重组酶介导扩增(Recombinase-aid Amplification，RAA)技术也是一种在恒温下可以使核酸快速扩增的方法。与RPA不同的是，RAA扩增法使用的是从细菌或真菌中获得的重组酶，在37℃恒温下，该重组酶可与引物DNA紧密结合，形成酶和引物的聚合体，当引物在模板DNA上搜索到与之完全互补的序列时，在单链DNA结合蛋白(single-strandedDNAbinding，SSB)的帮助下，使模板DNA解链，并在DNA聚合酶的作用下，形成新的DNA互补链，反应产物也是以指数级增长，通常在1h内即能得到可以用琼脂糖凝胶电泳检测到的扩增片段。在RAA反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号的积累实时监控整个RAA扩增过程，20分钟内，可实现对起始模板的定量及定性分析。整个反应简单快速，因为不需要高温循环，所以特别适合在有大量样品的非实验室检测场所使用，适用于食品快速检测领域。

发明内容

有鉴于此，本发明的目的是提供鲤春病毒血症病毒(SVCV)的RAA恒温荧光核酸检测试剂盒及检测方法。

为实现以上目的，本发明采用以下技术方案：

一种鲤春病毒血症病毒(SVCV)核酸的检测试剂盒，包括：鲤春病毒血症病毒正向引物、反向引物以及特异性荧光探针，其中所述鲤春病毒血症病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示、所述鲤春病毒血症病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。

在一些实施方案中，所述特异性荧光探针的荧光报告基团选自FAM、VIC、JOE、TET、CY3、CY5、ROX、Texas Red或LC RED460中的一种，荧光淬灭基因选自BHQ1、BHQ2、BHQ3、Dabcy1或Tamra中的一种。

在一些实施方案中，所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、A Buffer、B Buffer、RAA干粉试剂、鲤春病毒血症病毒标准品和DEPC处理水中至少一种。

在一些实施方案中，所述的试剂盒，所述的逆转录体系由RTE逆转录酶、RNA酶抑制剂组成。

在一些实施方案中，所述的试剂盒，其中，所述A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc。

在一些实施方案中，所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/L dNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白(SC-recA/BS-recA)或30ng/μLRad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶，30ng/mL RTE逆转录酶、100mmol/L Tricine、20％PEG、5mmol/L二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶。

在一些实施方案中，所述的核酸检测试剂盒，鲤春病毒血症病毒标准品为含有鲤春病毒血症病毒保守基因部分序列的阳性质粒。

在一些实施方案中，所述的试剂盒，所述含有鲤春病毒血症病毒保守区域基因部分序列的阳性质粒的序列如SEQ ID NO.4所示。

本发明还提供了一种鲤春病毒血症病毒的RAA恒温荧光检测方法，提取待测样品的RNA，以待测样品的RNA为模板，在鲤春病毒血症病毒的正向引物、反向引物、特异性荧光探针及RAA干粉试剂、A Buffer、B Buffer和DEPC处理水存在下进行实时荧光RAA反应，根据实时荧光RAA扩增曲线分析待测样品；其中所述鲤春病毒血症病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示、所述鲤春病毒血症病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID No.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。

在一些实施方案中，所述的鲤春病毒血症病毒核酸RNA提取采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。

在一些实施方案中，所述实施荧光RAA反应程序为：39℃，40s；39℃，20min，共计40个循环；

本发明所述检测方法需要实时荧光RAA反应结束后，利用实时荧光RAA仪分析软件，根据实时荧光RAA的扩增曲线分析待测样品。优选的，所述分析待测样品为待测样本FAM通道荧光曲线呈“S”型且CT值≤35，判断为鲤春病毒血症病毒阳性结果；当待测样本曲线不呈“S”型或CT值＞35，判断为鲤春病毒血症病毒阴性结果。

有益效果

1、快速高效：整个扩增只需20-30min即可完成，扩增产量可以达到10⁹-10¹⁰个拷贝；

2、操作简单：不需要特殊试剂，不需要预先进行双链DNA的变形等繁琐步骤，只需要恒温的荧光仪，条件比较温和；

3、高特异性：本发明对鱼的其他的病症如病毒性神经坏死病毒(VNNV)、病毒性出血败血症病毒(VHSV)、传染性造血器官坏死病毒(IHNV)、鲤鱼春季病毒血症(SVCV)、牙鲆弹状病毒(HRV)、传染性鲑鱼贫血症病毒(ISAV)、草鱼出血病I型病毒(GCRV-I)、罗湖病毒(TiLV)。

4、高灵敏度：本发明的检测极限可以达到0.1fg/反应

5、鉴定简单：根据实时荧光数据，直接判断扩增结果，无需电泳检测，适合现场检测。

附图说明

图1为本发明中涉及的4对引物RAA扩增曲线图。

图2为RAA检测方法对SVCV的灵敏度实验图，从左到右依次为100fg/μL、10fg/μL、1fg/μL、0.1fg/μL、0.01fg/μL的阳性标准品的扩增结果。

图3为RAA检测方法对SVCV的特异性实验图。

具体实施方法

以下通过具体实施例对本发明进一步说明，但并不局限于此。

实施例1：

本发明对鲤春病毒血症病毒在Genebank数据库中搜索鲤春病毒血症病毒株基因序列，使用DNAMAN6.0软件对多序列进行比对，找出保守的区段。在保守区域设计了4组引物和探针，并在NCBI数据库中进行BLAST比对，引物和探针的序列如表1所示。阳性样本扩增曲线如图1所示。

表1 引物和探针序列:

由图1结果可见，第四组引物和探针的扩增曲线最为典型，有明显的指数期和平台期，有较高荧光强度(纵坐标值)，且CT值较小(曲线与阈值线的交叉点所对应的横坐标)结果分析见表2。其它引物探针曲线上升高度较低，CT值较大，平台期不明显；或者没有出现扩增，出现漏检。说明第四组引物和探针目的产物的复制速度更快、数量更多，扩增反应效率更高。

表2 引物探针筛选结果分析

实时例2：所述试剂盒鲤春病毒血症病毒

本发明所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、A Buffer、BBuffer、RAA干粉试剂、鲤春病毒血症病毒标准品和DEPC处理水。

本发明所述的试剂盒，其中，所述的A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc。

本发明所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/L dNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白(SC-recA/BS-recA)或30ng/μL Rad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶，100mmol/L Tricine、20％PEG、5mmol/L二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶、30ng/mL RTE逆转录酶。

本发明所述的引物混合液中，所述的正向引物碱基序列如SEQ ID NO.1所示，所述反向引物的碱基序列SEQ ID NO.2所示，正向引物和反向引物的摩尔配比为SEQ ID NO.1：SEQ ID NO.2为1:1。

本发明提供的鲤春病毒血症病毒的特异性探针碱基序列如SEQ ID NO.3所示，探针的5’端标记有FAM荧光报告基团，3’端标记有BHQ1荧光淬灭基团。

本发明提供的鲤春病毒血症病毒标准品包含有鲤春病毒血症病毒保守区基因序列的阳性质粒，该质粒的碱基序列如SEQ ID NO.4所示。

质粒的碱基序列(SEQ ID NO.4):

GGGGTTTCCCCCTCAAAGTTGCGGATGGGCATCTGTCACAACAGTGTCAAATACTAATTACAAGGTAGTACCCCATTCTGTTCATTTGGAGCCGTACGGAGGACACTGGATCGATCATGAATTCAATGGGGGCGAATGCAGAGAAAAAGTGTGTGAAATGAAAGGGAACCACTCTATTTGGATCACAGATGAGACCGTGCAGCATGAATGTGAAAAGCACATAGAGGAAGTTGAAGGAATTATGTACGGGAATGCTCCGAGAGGGGATGCAATATATATTAACAACTTTATTATAGATAAACATCATAGAGTATACAGATTCGGGGGGTCTTGTCGAATGAAATTCTGTAATAAAGATGGTATAAAATTCACAAGAGGAGACTGGGTAGAAAAAACAGCTGGAACATTGACGAATATTTATGCAAATATACCTGAATGTGCTGATGGAACGTTGGTATCTGGTCACCGACCTGGATTAGACTTGATTGACACAGTCTTCAATTTGGAAAATGTGGTAGAATATACTTTGTGTGAAGGGACTAAAAGAAAAATCAATAACCAAGAAAAGTTGACGTCAGTGGATCTGAGTTATTTGGCCCCA

本发明提供的DEPC处理水购买于Solarbio公司。

实例3：本发明所述试剂盒鲤春病毒血症病毒

1、阳性样品核酸的提取

1.1、核酸提取：采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。

2、RAA反应体系的配置：每个检测样品对应一个RAA反应干粉管，每个RAA反应干粉管中各反应组分和所加入的体积如表3所示。

表3:

RAA反应体系组分	体积(μL)
		A Buffer	12.5μL
B Buffer	2.5μL
		引物混合液	4μL
特异性荧光探针	0.6μL
		DNA模板	2μL
DEPC处理水	28.4μL
		总体积	50μL

A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc

3、将配置好反应体系的RAA反应管放置于ABI7500扩增仪中，按照下列程序进行RAA扩增：37℃，40s；37℃，20min，共计40个循环。每个循环收集FAM通道的荧光。

4、扩增结束后根据荧光曲线判断和CT值判定鲤春病毒血症病毒阳性或阴性结果。

判定结果：FAM通道荧光曲线呈“S”型且CT值≤35，判断为鲤春病毒血症病毒阳性结果；当待测样本曲线不呈“S”型或CT值＞35，判断为鲤春病毒血症病毒阴性结果。

实施例4：本发明RAA检测试剂盒在临床实际应用中的评估

采用本发明试剂盒进行临床盲样的实验，检测60份对虾；实验结果表明，本发明的第四引物对可以区分出鲤春病毒血症病毒，与反转录PCR阳性符合率很高。在50份中，反转录PCR，有33份为阳性结果，27份为阴性结果，通过RAA方法检测的结果为33份为阳性，有27份也为阴性结果，结果与实际样本的情况完全一致，说明本发明的RAA检测试剂有更高的准确率。

试验例5：本发明所述试剂盒的灵敏度试验

本发明实施例2所述试剂盒提供的鲤春病毒血症病毒标准品质粒，提取阳性质粒，并用NanoDrop测量阳性质粒的浓度，并将其分别稀释到100fg/μL、10fg/μL、1fg/μL、0.1fg/μL、0.01fg/μL 5个浓度梯度进行灵敏度试验。

检测结果如图2所示，从左到右依次为100fg/μL、10fg/μL、1fg/μL、0.1fg/μL、0.01fg/μL的阳性标准品的扩增结果，从中可以看出本发明的RAA荧光扩增试剂和检测的灵敏度可达1fg/μL，精确性优于普通PCR检测方法，表明本发明的RAA恒温荧光检测试剂盒和检测方法对SVCV的诊断具有高度的灵敏性。

试验例6：本发明所述试剂盒的特异性试验

为了检测本发明试剂盒的特异性，采用实例3中的检测方法，分别对病毒VNNV、IHNV、VHSV、SVCV、HRV、ISAV、SVCV、TiLV样本进行检测，分析本试剂盒对SVCV和对虾其他常见病毒的检测情况。

检测结果表明：仅SVCV样品出现正常扩增，阴性对照(DEPC处理水)及VNNV、SVCV、VHSV、SVCV、HRV、ISAV、TiLV样品均未出现扩增(如图3所示)。上述结果说明，本发明RAA恒温荧光检测试剂盒能特异性扩增出SVCV中的靶序列，而不与其他病毒核酸发生交叉反应。说明本发明方法及试剂盒特异性好，未出现假阴性。

同时，采用本发明设计的1-3对引物进行同样的特异性实验，发现这些引物不能很好的特异区分不同的样本，特异性不是很好(具体实验数据略)。

在缺少本文中所具体公开的任何元件、限制的情况下，可以实现本文所示和所述的发明。所采用的术语和表达法被用作说明的术语而非限制，并且不希望在这些术语和表达法的使用中排除所示和所述的特征或其部分的任何等同物，而且应该认识到各种改型在本发明的范围内都是可行的。因此应该理解，尽管通过各种实施例和可选的特征具体公开了本发明，但是本文所述的概念的修改和变型可以被本领域普通技术人员所采用，并且认为这些修改和变型落入所附权利要求书限定的本发明的范围之内。

本文中所述或记载的文章、专利、专利申请以及所有其他文献和以电子方式可得的信息的内容在某种程度上全文包括在此以作参考，就如同每个单独的出版物被具体和单独指出以作参考一样。申请人保留把来自任何这种文章、专利、专利申请或其他文献的任何及所有材料和信息结合入本申请中的权利。

序列表

<110> 杭州众测生物科技有限公司

<120> 鲤春病毒血症病毒（SVCV）的RAA恒温荧光检测方法及试剂

<130> 18-100070-00005409

<141> 2018-06-13

<160> 4

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 26

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

gtgaaaagca catagaggaa gttgaa 26

<210> 2

<211> 30

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

ctacccagtc tcctcttgtc aattttatac 30

<210> 3

<211> 37

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

taacaacttt attatagata aacacaagag tatacag 37

<210> 4

<211> 601

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

ggggtttccc cctcaaagtt gcggatgggc atctgtcaca acagtgtcaa atactaatta 60

caaggtagta ccccattctg ttcatttgga gccgtacgga ggacactgga tcgatcatga 120

attcaatggg ggcgaatgca gagaaaaagt gtgtgaaatg aaagggaacc actctatttg 180

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tatgtacggg aatgctccga gaggggatgc aatatatatt aacaacttta ttatagataa 300

acatcataga gtatacagat tcggggggtc ttgtcgaatg aaattctgta ataaagatgg 360

tataaaattc acaagaggag actgggtaga aaaaacagct ggaacattga cgaatattta 420

tgcaaatata cctgaatgtg ctgatggaac gttggtatct ggtcaccgac ctggattaga 480

cttgattgac acagtcttca atttggaaaa tgtggtagaa tatactttgt gtgaagggac 540

taaaagaaaa atcaataacc aagaaaagtt gacgtcagtg gatctgagtt atttggcccc 600

a 601

Claims

1.一种鲤春病毒血症病毒（SVCV）核酸的检测试剂盒，包括：鲤春病毒血症病毒正向引物、反向引物以及特异性荧光探针，其中所述鲤春病毒血症病毒正向引物核苷酸序列如SEQID NO.1所示、所述鲤春病毒血症病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。

2.根据权利要求1所述的核酸检测试剂盒，所述特异性荧光探针的荧光报告基团选自FAM、VIC、JOE、TET、CY3、CY5、ROX、Texas Red或LC RED460中的一种，荧光淬灭基因选自BHQ1、BHQ2、BHQ3、Dabcy1或Tamra中的一种。

3.根据权利要求1和2所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、ABuffer、B Buffer、RAA干粉试剂、鲤春病毒血症病毒标准品和DEPC处理水中至少一种。

4.根据权利要求3所述的试剂盒，所述的逆转录体系由RTE逆转录酶、RNA酶抑制剂组成。

5.根据权利要求3所述的试剂盒，其中，所述A Buffer为20% PEG ；B Buffer为280mMMgAc。

6.根据权利要求5所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/LdNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白（SC-recA/BS-recA）或30ng/μL Rad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶， 30ng/mL RTE逆转录酶、 100mmol/L Tricine、20% PEG、5mmol/L二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶。

7.根据权利要求1-5任意一项所述的核酸检测试剂盒，鲤春病毒血症病毒标准品为含有鲤春病毒血症病毒保守区基因部分序列的阳性质粒。

8.根据权利要求6所述的试剂盒，所述含有鲤春病毒血症病毒保守区基因部分序列的阳性质粒的序列如SEQ ID NO.4所示。

9.鲤春病毒血症病毒的RAA恒温荧光检测方法，提取待测样品的RNA，以待测样品的RNA为模板，在鲤春病毒血症病毒的正向引物、反向引物、特异性荧光探针及RAA干粉试剂、ABuffer、B Buffer和DEPC处理水存在下进行实时荧光RAA反应，根据实时荧光RAA扩增曲线分析待测样品；其中所述鲤春病毒血症病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1 所示、所述鲤春病毒血症病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2 所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID No.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。

10.根据权利要求9所述，鲤春病毒血症病毒核酸RNA提取采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。