CN110894551A - 草鱼出血病i型病毒（gcrv-i）的raa恒温荧光检测方法及试剂 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种草鱼出血病I型病毒（GCRV‑I）RAA恒温荧光检测方法和检测试剂盒。检测试剂盒包括一条正向引物SEQ ID NO.1、一条反向引物SEQ ID NO.2、一条特异性荧光探针SEQ ID NO.3、反应液、逆转录酶、重组聚合酶和对照品。本发明的试剂盒特异性强；检测灵敏度高，可达到1.89fg/μL；准确度高、可靠；操作简便快捷，适合现场检测，具有广泛的应用场景。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域，涉及海洋水产养殖业的检测方法，具体涉及一种草鱼出血病I型病毒的RAA恒温荧光检测方法及试剂盒。
背景技术
草鱼出血病病毒(Grass carp reovirus，GCRV)隶属水生呼肠孤病毒属，为呼肠孤病毒科一新成员，是中国大陆分离的第一株鱼类病毒。该病毒主要引起中国、越南、缅甸等亚洲国家淡水养殖中的草鱼品种在鱼种阶段发生出血病，死亡率可高达60％以上。该病毒流行广、危害大、死亡率高、发病季节长，严重威胁渔业生产。草鱼呼肠孤病毒具双层衣壳，病毒粒子平均直径为60nm～70nm，二十面体对称，无囊膜，基因组由11条分节段的双链RNA组成。目前己经报道了20多个分离株，包括GCRV854、GCRV861、GCRV873、GCRV875、GCRV876、GCRV991、GCRV H962、ZV-8802、GCRV-854、GCRV HZ08、GCRV JX09-01、GCRV JX09-02、GCRVGD10、GCRV GCRV104株等，不同分离株在基因组序列、基因组带型、细胞病变、对草鱼的致病力等方面差异较大。到目前为止，已完成全基因组序列分析的毒株有GCRV 873株、GCRVHZ08、GCRV GD10、GCRV 104等，也有比较多的毒株只完成了部分节段或者部分序列的测序工作。草鱼呼肠孤病毒比较复杂，不同分离株的各基因节段存在重配和抗原漂移现象，使得目前还没在血清学或者基因型上对其进行亚型分类。但是通过现有的分离株序列信息来看，至少应该有三类，各类的代表株分别是：第一类为873株和JX09-01株，第二类为HZ08株和GD10株，第三类型为104株。在相关的研究报道中已有提到将其进行基因分型的探讨，即分别把一、二和三类按照基因序列差异分为Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型。
当前，全国各地分离到的流行株中，三类亚型均有报道，有的单独感染，也有混合感染。根据近几年的草鱼出血病监测和流行病学调查分析表明，目前导致草鱼出血病流行和爆发的最主要为GCRVⅡ型，其次是GCRVⅠ型。
草鱼出血Ⅰ型病毒的检测方法有多种,病毒分离、电镜观察、核酸带型分析至今仍是检测草鱼出血Ⅰ型病毒普遍采用的方法，但是现有的这些方法都存在一定的不足，例如：基于组织病理学的方法不仅操作繁琐、费时，而且灵敏度较低；基于免疫学的方法虽然具有敏感性高、检测快速等特点，可用于大批标本的检测，但对新鲜样品进行检测时出现的假阳性问题在一定程度上还限制着该方法的广泛应用；而PCR方法敏感、准确、快速，可替代病原学检测，但由于需要昂贵的仪器设备、较高检测费用以及对检测人员较高的技术要求而使其不适用于现场快速检测及基层普及应用。与一般PCR技术相比，荧光PCR检测技术简化了操作步骤，而且可消除扩增产物引起的交叉污染，减少假阳性的发生。但实时荧光PCR耗时长，成本较高，目前在水产养殖动物的常规病原体检测中的应用还不多。LAMP等温扩增技术同样由于假阳性较高，准确度低，水产病原检测中的应用还是比较局限。本发明建立了RAA恒温荧光来检测草鱼出血病I型病毒的方法，快速方便，准确可靠，是适应口岸快速检测和大通关的时代要求，对促进中国海洋养殖及其产品的贸易有重要作用。
重组酶介导扩增(Recombinase-aid Amplification，RAA)技术也是一种在恒温下可以使核酸快速扩增的方法。与RPA不同的是，RAA扩增法使用的是从细菌或真菌中获得的重组酶，在37℃恒温下，该重组酶可与引物DNA紧密结合，形成酶和引物的聚合体，当引物在模板DNA上搜索到与之完全互补的序列时，在单链DNA结合蛋白(single-strandedDNAbinding，SSB)的帮助下，使模板DNA解链，并在DNA聚合酶的作用下，形成新的DNA互补链，反应产物也是以指数级增长，通常在1h内即能得到可以用琼脂糖凝胶电泳检测到的扩增片段。在RAA反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号的积累实时监控整个RAA扩增过程，20分钟内，可实现对起始模板的定量及定性分析。整个反应简单快速，因为不需要高温循环，所以特别适合在有大量样品的非实验室检测场所使用，适用于食品快速检测领域。
发明内容
有鉴于此，本发明的目的是提供草鱼出血病I型病毒(GCRV-I)的RAA恒温荧光核酸检测试剂盒及检测方法。
为实现以上目的，本发明采用以下技术方案：
一种草鱼出血病I型病毒(GCRV-I)核酸的检测试剂盒，包括：草鱼出血病I型病毒正向引物、反向引物以及特异性荧光探针，其中所述草鱼出血病I型病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示、所述草鱼出血病I型病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。
在一些实施方案中，所述特异性荧光探针的荧光报告基团选自FAM、VIC、JOE、TET、CY3、CY5、ROX、Texas Red或LC RED460中的一种，荧光淬灭基因选自BHQ1、BHQ2、BHQ3、Dabcy1或Tamra中的一种。
在一些实施方案中，所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、A Buffer、B Buffer、RAA干粉试剂、草鱼出血病I型病毒标准品和DEPC处理水中至少一种。
在一些实施方案中，所述的试剂盒，所述的逆转录体系由RTE逆转录酶、RNA酶抑制剂组成。
在一些实施方案中，所述的试剂盒，其中，所述A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc。
在一些实施方案中，所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/L dNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白(SC-recA/BS-recA)或30ng/μLRad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶，30ng/mL RTE逆转录酶、100mmol/L Tricine、20％PEG、5mmol/L二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶。
在一些实施方案中，所述的核酸检测试剂盒，草鱼出血病I型病毒标准品为含有草鱼出血病I型病毒保守基因部分序列的阳性质粒。
在一些实施方案中，所述的试剂盒，所述含有草鱼出血病I型病毒保守区域基因部分序列的阳性质粒的序列如SEQ ID NO.4所示。
本发明还提供了一种草鱼出血病I型病毒的RAA恒温荧光检测方法，提取待测样品的RNA，以待测样品的RNA为模板，在草鱼出血病I型病毒的正向引物、反向引物、特异性荧光探针及RAA干粉试剂、A Buffer、B Buffer和DEPC处理水存在下进行实时荧光RAA反应，根据实时荧光RAA扩增曲线分析待测样品；其中所述草鱼出血病I型病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示、所述草鱼出血病I型病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID No.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。
在一些实施方案中，所述的草鱼出血病I型病毒核酸RNA提取采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。
在一些实施方案中，所述实施荧光RAA反应程序为：39℃，40s；39℃，20min，共计40个循环；
本发明所述检测方法需要实时荧光RAA反应结束后，利用实时荧光RAA仪分析软件，根据实时荧光RAA的扩增曲线分析待测样品。优选的，所述分析待测样品为待测样本FAM通道荧光曲线呈“S”型且CT值≤35，判断为草鱼出血病I型病毒阳性结果；当待测样本曲线不呈“S”型或CT值＞35，判断为草鱼出血病I型病毒阴性结果。
有益效果
1、快速高效：整个扩增只需20-30min即可完成，扩增产量可以达到109-1010个拷贝；
2、操作简单：不需要特殊试剂，不需要预先进行双链DNA的变形等繁琐步骤，只需要恒温的荧光仪，条件比较温和；
3、高特异性：本发明对鱼的其他的病症如鳗鲡疱疹病毒(HVA)、传染性胰腺坏死病(IPNV)、鲤鱼浮肿病(CEV)、细菌性败血症(FBS)、鲑鱼甲病毒(SAV)和传染性鲑鱼贫血症病毒(ISAV)。
4、高灵敏度：本发明的检测极限可以达到1.89fg/μL反应。
5、鉴定简单：根据实时荧光数据，直接判断扩增结果，无需电泳检测，适合现场检测。
附图说明
图1为本发明中涉及的4对引物RAA扩增曲线图。
图2为RAA检测方法对GCRV-Ⅰ的灵敏度实验图，从左到右依次为1893fg/μL、189.3fg/μL、18.93fg/μL、1.89fg/μL、0.19fg/μL的阳性标准品的扩增结果。
图3为RAA检测方法对GCRV-Ⅰ的特异性实验图。
具体实施方法
以下通过具体实施例对本发明进一步说明，但并不局限于此。
实施例1：
本发明对草鱼出血病I型病毒在Genebank数据库中搜索草鱼出血病I型病毒株基因序列，使用DNAMAN 6.0软件对多序列进行比对，找出保守的区段。在保守区域设计了4组引物和探针，并在NCBI数据库中进行BLAST比对，引物和探针的序列如表1所示。阳性样本扩增曲线如图1所示。
表1引物和探针序列:
由图1结果可见，第四组引物和探针的扩增曲线最为典型，有明显的指数期和平台期，有较高荧光强度(纵坐标值)，且CT值较小(曲线与阈值线的交叉点
所对应的横坐标)结果分析见表2。其它引物探针曲线上升高度较低，CT值较大，平台期不明显；或者没有出现扩增，出现漏检。说明第四组引物和探针目的产物的复制速度更快、数量更多，扩增反应效率更高。
表2引物探针筛选结果分析
| 组别\结果 | CT值 | 荧光强度 |
| 第一组 | 12.87 | 250,000 |
| 第二组 | 7.35 | 270,000 |
| 第三组 | 9.69 | 330,000 |
| 第四组 | 7.35 | 390,000 |
实时例2：所述试剂盒草鱼出血病I型病毒
本发明所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、A Buffer、BBuffer、RAA干粉试剂、草鱼出血病I型病毒标准品和DEPC处理水。
本发明所述的试剂盒，其中，所述的A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc。
本发明所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/L dNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白(SC-recA/BS-recA)或30ng/μL Rad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶，100mmol/L Tricine、20％PEG、5mmol/L 二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶、30ng/mL RTE逆转录酶。
本发明所述的引物混合液中，所述的正向引物碱基序列如SEQ ID NO.1所示，所述反向引物的碱基序列SEQ ID NO.2所示，正向引物和反向引物的摩尔配比为SEQ ID NO.1：SEQ ID NO.2为1:1。
本发明提供的草鱼出血病I型病毒的特异性探针碱基序列如SEQ ID NO.3所示，探针的5’端标记有FAM荧光报告基团，3’端标记有BHQ1荧光淬灭基团。
本发明提供的草鱼出血病I型病毒标准品包含有草鱼出血病I型病毒保守区基因序列的阳性质粒，该质粒的碱基序列如SEQ ID NO.4所示。
质粒的碱基序列(SEQ ID NO.4):
GTTATTTCGACACTTCGCACTCTCTCTACAATGGGGAACGTTCAAACCTCCGTCAACACTTACAATATTACTGGGGATGGTAATTCATTTACCCCCACCTCTGACATGACATCCACCGCCGCCCCGGCCATTGACCTCAAACCTGGGGTTCTCAATCCTACCGGTAAGCTATGGCGACCCGTCGGTACCTCTGTTGCTACCATCGACTCACTTGCCATCGTTAGCGATCGTTTTGGTCAGTATTCATTTGTCAATGAAGGCATGCGAGAGACCTTTTCAAAAGCGCTCTTCGACATCAACATGTGGCAACCTTTATTCCAAGCGACAAAGACTGGCTGCGGACCGATTGTACTCTCCTCCTTCACAACCACCACCTCCGGTTATGTTGGCGCCACCGCCGGTGATGCCCTTGACAACCCTGTAACGAATGGCGTTTTCATCAGTACTGTGCAAATCATGAACCTTCAGCGGACCATCGCTGCCCGCATGCGTGACGTCGCTCTCTGGCAGAAACACTTAGACACCGCCATGACCATGCTAACACCTGACATTTCTGCCGGTAGCGCCTCCTGCAACTGGAAGAGCTTGCTCGCTTTTGCGAAGGATATCCTCCCCCTCGACAACCTGTGCCTCACCTACCCAAATGAGTTCTACAACGTTGCCATCCACCGCTATCCCGCACTCAAGCCTGGTAACCCAGACACCAAGCTTCCCGATGCCCAGGCTCATCCGCTGGGAGAAGTAGCCGGTGCGTTCAATGCCGCCACCTCTGAAGTTGGGAGTCTCGTTGGTTCCAGCTCCACCCTCTCACAGGCCATCTCCACCATGGCTGGCAAAGACCTCGATCTAATTGAAGCCGACACTCCGCTCCCCGTGAGCGTATTTACTCCATCTCTCGCCCCTCGTTCTTATCGACCCGCCTTCATTAAACCTGAGGATGCTAAGTGGATCGCGGAATTCAATAACTCATCCCTCATACGTAAGACTCTTACCTACTCGGGTGCCACCTACACCGTTCAACTCGGCCCTGGTCCAACTCGCGTCATTGATATGAATGCGATGATCGACTCCGTGTTGACCCTGGATGTGAGCGGTACCATCCTCCCATATGACACAAACCCTGATCTGTCTACTTCAGTCCCGGCTTTCGTCCTCATCCAGACCTCAGTACCAATTCAACAAGTCACTACCGCTGCTAACATCACAGCCATCACCGTCGTATCCGCCGCTGGCGCTTCCGCCATCAATCTCGCTATCAATGTACGCGGCCAGCCCCGCTTCAACATGCTCCACCTGCAAGCCACCTTTGAGCGCGAGACAATCACCGGGATCCCGTATATCTATGGCTTGGGCACATTCCTCATCCCATCACCCACATCCTCCTCCAATTTCTCCAACCCCACGCTGATGGACGGCCTTCTCACTGTCACCCCCGTACTGCTACGTGAGACGACATACAAGGGCGAAGTCGTTGACGCTATCGTACCAGCTACCGTCATGGCCAACCAAACGTCTGAGGAGGTCGCCTCTGCCTTAGCCAACGACGCGATCGTGTTAGTGTCGAATCATCTCAACAAGTTGGCCAATGTCGTAGGAGACGCGATTCCCGTCGCCTCAAGAACGGATGATTCCGCGACTAGCGCCATCGTCAGTCGACTCGCCGTCCAGCACAAGCTGTCACAGGTAGGCCAAGCCTCACCCACTCCCCCCGATTATCCACTTCTGTGGCGCCGTGCCAAGCGTGCCGCGTCTATGTTCGTCTCCAACCCCTCCCTGGCCTTGCAGGTAGGTATCCCTGTGTTAACTCAATCTGGTATGCTTTCCGCCCTAACGTCTGGCGTAGGCACGGCTTTACGTACTGGTAGCTTGGGCAAAGGTGTAACCGATGCGTCAGAAAAACTACGTGCACGTCAGAGTTTGACGGTTGCGAAGCAAGCGTTCTTCGACCAGATAGGGAGCTTGTGGCCCGGCAAGTGAGGGGTGGGTTGACAACCCCCTTCCATGCCCGCGTGAACGGCGGGAAGTGTCGTACTTTCATC
本发明提供的DEPC处理水购买于Solarbio公司。
实例3：本发明所述试剂盒草鱼出血病I型病毒
1、阳性样品核酸的提取
1.1、核酸提取：采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。
2、RAA反应体系的配置：每个检测样品对应一个RAA反应干粉管，每个RAA反应干粉管中各反应组分和所加入的体积如表3所示。
表3:
| RAA反应体系组分 | 体积(μL) |
| A Buffer | 12.5μL |
| B Buffer | 2.5μL |
| 引物混合液 | 4μL |
| 特异性荧光探针 | 0.6μL |
| DNA模板 | 2μL |
| DEPC处理水 | 28.4μL |
| 总体积 | 50μL |
A Buffer为20％PEG；B Buffer为280mM MgAc
3、将配置好反应体系的RAA反应管放置于ABI7500扩增仪中，按照下列程序进行RAA扩增：37℃，40s；37℃，20min，共计40个循环。每个循环收集FAM通道的荧光。
4、扩增结束后根据荧光曲线判断和CT值判定草鱼出血病I型病毒阳性或阴性结果。
判定结果：FAM通道荧光曲线呈“S”型且CT值≤35，判断为草鱼出血病I型病毒阳性结果；当待测样本曲线不呈“S”型或CT值＞35，判断为草鱼出血病I型病毒阴性结果。
实施例4：本发明RAA检测试剂盒在临床实际应用中的评估
采用本发明试剂盒进行临床盲样的实验，检测48份鱼；实验结果表明，本发明的第四引物对可以区分出草鱼出血病I型病毒，与反转录PCR阳性符合率很高。在50份中，反转录PCR，有26份为阳性结果，22份为阴性结果，通过RAA方法检测的结果为27份为阳性，有21份也为阴性结果，存在一份阳性结果不同，对这个样本进行反转录PCR扩增并测序，测序结果显示该样本为阳性，说明本发明的RAA检测试剂有更高的准确率。
试验例5：本发明所述试剂盒的灵敏度试验
本发明实施例2所述试剂盒提供的草鱼出血病I型病毒标准品质粒，提取阳性质粒，并用NanoDrop测量阳性质粒的浓度，并将其分别稀释到1893fg/μL、189.3fg/μL、18.93fg/μL、1.89fg/μL、0.19fg/μL 5个浓度梯度进行灵敏度试验。
检测结果如图2所示，从左到右依次为1893fg/μL、189.3fg/μL、18.93fg/μL、1.89fg/μL、0.19fg/μL的阳性标准品的扩增结果，从中可以看出本发明的RAA荧光扩增试剂和检测的灵敏度可达1.89fg/μL，精确性优于普通PCR检测方法，表明本发明的RAA恒温荧光检测试剂盒和检测方法对GCRV-Ⅰ的诊断具有高度的灵敏性。
试验例6：本发明所述试剂盒的特异性试验
为了检测本发明试剂盒的特异性，采用实例3中的检测方法，分别对病毒HVA、IPNV、CEV、SAV、ISAV和FBS样本进行检测，分析本试剂盒对GCRV-Ⅰ和对虾其他常见病毒的检测情况。
检测结果表明：仅GCRV-Ⅰ样品出现正常扩增，阴性对照(DEPC处理水)及HVA、IPNV、CEV、SAV、ISAV和FBS样品均未出现扩增(如图3所示)。上述结果说明，本发明RAA恒温荧光检测试剂盒能特异性扩增出GCRV-Ⅰ中的靶序列，而不与其他病毒核酸发生交叉反应。说明本发明方法及试剂盒特异性好，未出现假阴性。
同时，采用本发明设计的1-3对引物进行同样的特异性实验，发现这些引物不能很好的特异区分不同的样本，特异性不是很好(具体实验数据略)。
在缺少本文中所具体公开的任何元件、限制的情况下，可以实现本文所示和所述的发明。所采用的术语和表达法被用作说明的术语而非限制，并且不希望在这些术语和表达法的使用中排除所示和所述的特征或其部分的任何等同物，而且应该认识到各种改型在本发明的范围内都是可行的。因此应该理解，尽管通过各种实施例和可选的特征具体公开了本发明，但是本文所述的概念的修改和变型可以被本领域普通技术人员所采用，并且认为这些修改和变型落入所附权利要求书限定的本发明的范围之内。
本文中所述或记载的文章、专利、专利申请以及所有其他文献和以电子方式可得的信息的内容在某种程度上全文包括在此以作参考，就如同每个单独的出版物被具体和单独指出以作参考一样。申请人保留把来自任何这种文章、专利、专利申请或其他文献的任何及所有材料和信息结合入本申请中的权利。
序列表
<110> 杭州众测生物科技有限公司
<120> 草鱼出血病I型病毒（GCRV-I）的RAA恒温荧光检测方法及试剂
<130> 18-100070-00006984
<141> 2018-09-13
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 31
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
caactcggcc ctggtccaac tcgcgtcatt g 31
<210> 2
<211> 30
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
cgaaagccgg gactgaagta cacagatcag 30
<210> 3
<211> 45
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
tgcgatgatc gactccgtgt tgacccgagt gagcggtacc atcct 45
<210> 4
<211> 2039
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
gttatttcga cacttcgcac tctctctaca atggggaacg ttcaaacctc cgtcaacact 60
tacaatatta ctggggatgg taattcattt acccccacct ctgacatgac atccaccgcc 120
gccccggcca ttgacctcaa acctggggtt ctcaatccta ccggtaagct atggcgaccc 180
gtcggtacct ctgttgctac catcgactca cttgccatcg ttagcgatcg ttttggtcag 240
tattcatttg tcaatgaagg catgcgagag accttttcaa aagcgctctt cgacatcaac 300
atgtggcaac ctttattcca agcgacaaag actggctgcg gaccgattgt actctcctcc 360
ttcacaacca ccacctccgg ttatgttggc gccaccgccg gtgatgccct tgacaaccct 420
gtaacgaatg gcgttttcat cagtactgtg caaatcatga accttcagcg gaccatcgct 480
gcccgcatgc gtgacgtcgc tctctggcag aaacacttag acaccgccat gaccatgcta 540
acacctgaca tttctgccgg tagcgcctcc tgcaactgga agagcttgct cgcttttgcg 600
aaggatatcc tccccctcga caacctgtgc ctcacctacc caaatgagtt ctacaacgtt 660
gccatccacc gctatcccgc actcaagcct ggtaacccag acaccaagct tcccgatgcc 720
caggctcatc cgctgggaga agtagccggt gcgttcaatg ccgccacctc tgaagttggg 780
agtctcgttg gttccagctc caccctctca caggccatct ccaccatggc tggcaaagac 840
ctcgatctaa ttgaagccga cactccgctc cccgtgagcg tatttactcc atctctcgcc 900
cctcgttctt atcgacccgc cttcattaaa cctgaggatg ctaagtggat cgcggaattc 960
aataactcat ccctcatacg taagactctt acctactcgg gtgccaccta caccgttcaa 1020
ctcggccctg gtccaactcg cgtcattgat atgaatgcga tgatcgactc cgtgttgacc 1080
ctggatgtga gcggtaccat cctcccatat gacacaaacc ctgatctgtc tacttcagtc 1140
ccggctttcg tcctcatcca gacctcagta ccaattcaac aagtcactac cgctgctaac 1200
atcacagcca tcaccgtcgt atccgccgct ggcgcttccg ccatcaatct cgctatcaat 1260
gtacgcggcc agccccgctt caacatgctc cacctgcaag ccacctttga gcgcgagaca 1320
atcaccggga tcccgtatat ctatggcttg ggcacattcc tcatcccatc acccacatcc 1380
tcctccaatt tctccaaccc cacgctgatg gacggccttc tcactgtcac ccccgtactg 1440
ctacgtgaga cgacatacaa gggcgaagtc gttgacgcta tcgtaccagc taccgtcatg 1500
gccaaccaaa cgtctgagga ggtcgcctct gccttagcca acgacgcgat cgtgttagtg 1560
tcgaatcatc tcaacaagtt ggccaatgtc gtaggagacg cgattcccgt cgcctcaaga 1620
acggatgatt ccgcgactag cgccatcgtc agtcgactcg ccgtccagca caagctgtca 1680
caggtaggcc aagcctcacc cactcccccc gattatccac ttctgtggcg ccgtgccaag 1740
cgtgccgcgt ctatgttcgt ctccaacccc tccctggcct tgcaggtagg tatccctgtg 1800
ttaactcaat ctggtatgct ttccgcccta acgtctggcg taggcacggc tttacgtact 1860
ggtagcttgg gcaaaggtgt aaccgatgcg tcagaaaaac tacgtgcacg tcagagtttg 1920
acggttgcga agcaagcgtt cttcgaccag atagggagct tgtggcccgg caagtgaggg 1980
gtgggttgac aacccccttc catgcccgcg tgaacggcgg gaagtgtcgt actttcatc 2039
Claims (10)
1.一种草鱼出血病I型病毒（GCRV-I）核酸的检测试剂盒，包括：草鱼出血病I型病毒正向引物、反向引物以及特异性荧光探针，其中所述草鱼出血病I型病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示、所述草鱼出血病I型病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。
2.根据权利要求1所述的核酸检测试剂盒，所述特异性荧光探针的荧光报告基团选自FAM、VIC、JOE、TET、CY3、CY5、ROX、Texas Red或LC RED460中的一种，荧光淬灭基因选自BHQ1、BHQ2、BHQ3、Dabcy1或Tamra中的一种。
3.根据权利要求1和2所述的核酸检测试剂盒，还包括引物混合液、特异性荧光探针、ABuffer、B Buffer、RAA干粉试剂、草鱼出血病I型病毒标准品和DEPC处理水中至少一种。
4.根据权利要求3所述的试剂盒，所述的逆转录体系由RTE逆转录酶、RNA酶抑制剂组成。
5.根据权利要求3所述的试剂盒，其中，所述A Buffer为20% PEG ；B Buffer为280mMMgAc。
6.根据权利要求5所述的试剂盒，其中，所述的RAA干粉试剂的成分如下：1mmol/LdNTP、90ng/μL SSB蛋白、120ng/μL recA重组酶蛋白（SC-recA/BS-recA）或30ng/μL Rad51、30ng/μL Bsu DNA聚合酶， 30ng/mL RTE逆转录酶、 100mmol/L Tricine、20% PEG、5mmol/L二硫苏糖醇、100ng/μL肌酸激酶、Exo核酸外切酶。
7.根据权利要求1-5任意一项所述的核酸检测试剂盒，草鱼出血病I型病毒标准品为含有草鱼出血病I型病毒保守区基因部分序列的阳性质粒。
8.根据权利要求6所述的试剂盒，所述含有草鱼出血病I型病毒保守区基因部分序列的阳性质粒的序列如SEQ ID NO.4所示。
9.草鱼出血病I型病毒的RAA恒温荧光检测方法，提取待测样品的RNA，以待测样品的RNA 为模板，在草鱼出血病I型病毒的正向引物、反向引物、特异性荧光探针及RAA干粉试剂、A Buffer、B Buffer和DEPC处理水存在下进行实时荧光RAA反应，根据实时荧光RAA扩增曲线分析待测样品；其中所述草鱼出血病I型病毒正向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.1 所示、所述草鱼出血病I型病毒反向引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2 所示，所述特异性荧光探针的核苷酸序列如SEQ ID No.3，其5’端标记有荧光报告基团，3’端标记有荧光淬灭基团。
10.根据权利要求9所述，草鱼出血病I型病毒核酸RNA提取采用传统的Trizol-RNA试剂或者采用等效的RNA提取试剂盒。
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| PB01 | Publication | ||
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| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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| WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication | ||
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Application publication date: 20200320 |