具体实施方式
通过以下具体实施例进一步说明本发明的具体实施方式
实施例1
本发明使用核酸提取试剂盒(厦门艾德生物医药科技股份有限公司产品,货号:ADx-FF01 c1806264)对结直肠癌组织样本、进展期腺瘤组织样本、癌旁组织样本进行DNA提取。提取步骤如下:
1.根据FFPE切片组织面积的大小,刮取1~5片FFPE样品至1.5mL离心管中,加入1mL二甲苯,振荡混匀10s;
2.室温13000×g离心2min,小心去除上清(勿吸到沉淀);
3.加入1mL无水乙醇,振荡混匀10s,室温下13000×g离心2min,小心去除上清(勿吸到沉淀);
4.室温开盖放置10min或37℃下开盖放置5min,使乙醇充分挥发。
5.加入180μL Buffer DTL及20μL Proteinase K Solution,振荡混匀,56℃消化1h,如样品量较多,可消化过夜;
6.加入10μL Buffer DES,混匀后放入温度已升至90℃的恒温加热器中,孵育1h;
7.掌式离心机离心5~10s。如有需要,可加入2μL 100mg/mL RNase A,室温放置5min以去除RNA;
8.加入200μL Buffer DTB和200μL无水乙醇,振荡混匀后用掌式离心机离心5~10s;
9.将全部液体转移至DNA吸附柱中,10000×g离心1min,倒掉收集管中的液体;
10.往DNA吸附柱中加入600μL Buffer DW1,10000×g离心1min,倒掉收集管中的液体;
11.往DNA吸附柱中加入600μL Buffer DW2,10000×g离心1min,丢弃收集管;
12.换用新的收集管,13000×g离心3min,丢弃收集管;
13.将吸附柱小心转移至干净的1.5mL离心管中;往DNA吸附膜中心滴加30~100μLBuffer DTE(勿碰到DNA吸附膜),室温静置1~5min,13000×g离心1min,收集样品DNA并保存。
提取出的组织DNA样本使用EpiTect Fast DNA Bisulfite Kit(QIAGEN公司产品,货号:59826)进行亚硫酸氢盐转化,转化操作如下:
1.将提取出的组织样本DNA稀释至50ng/uL;
2.将稀释的样本DNA 20uL、Bisulfite Solution 85uL、DNA Protect Buffer35uL进行混合于200uL离心管,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
3.放置于普通PCR仪上运行程序:95℃5min,60℃20min,95℃5min,60℃20min,20℃保存。
4.将上述转化液转移至干净的1.5mL离心管中,加入310uL Buffer BL、250uL无水乙醇,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
5.将以上全部液体转移至吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
6.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
7.加入500uL Buffer BD于吸附柱中,室温静置15min,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
8.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
9.重复一次第8步;
10.加入250uL无水乙醇于吸附柱中,13000g离心1min;
11.换用新的收集管,空甩13000g离心2min;
12.换用1.5mL离心管,往吸附柱膜中心滴加15uL Buffer EB,室温放置1min,15000g离心1min;
13.收集转化产物ssDNA并保存。
针对四个基因的启动子CpG位点设计测序引物,每个基因设计4-8组测序引物组合将CpG岛进行覆盖,其中CpG岛位置可能涵盖启动子区、外显子、内含子等区域。
使用PCR反应体系扩增测序引物,将扩增产物进行Sanger测序,分析测序结果,查找甲基化热点位点。具体操作步骤如下。
结直肠癌组织样本、进展期腺瘤组织样本、癌旁组织样信息如表3-5所示:
表3结直肠癌组织样本信息
表4进展期腺瘤组织样本信息
表5癌旁组织样本信息
将亚硫酸氢盐转化产物ssDNA使用以下PCR反应体系进行扩增:
组织核酸ssDNA:20-80ng
5×PCR Buffer:5-10uL
MgCL2:1-8mmol
dNTP:0.1-0.8mmol
Taq DNA聚合酶:1-5U
上游测序引物:0.1-0.8umol
上游测序引物:0.1-0.8umol
补水至总体系:25-50uL
普通PCR仪扩增组织样本,检测各基因甲基化程序如下所示:
第一阶段:95℃5min
第二阶段:95℃30s,55℃30s,72℃30s,40个循环
将测序引物扩增产物进行Sanger测序,汇总测序结果,发现四基因中甲基化热点区域,且在癌旁组织中甲基化水平相对较低,测序结果如下所示,其中“MC”位置为建议进行检测结直肠癌甲基化位点:
分析甲基化Sanger测序结果时,根据测序结果峰图中的CpG位点中“C”碱基与“T”碱基的有无判定是否发生甲基化,根据“C”碱基与“T”碱基的峰高低占比确定甲基化比例的高低。以肉眼可见的CpG位点中的“C”存在情况进行各个甲基化位点敏感度与特异性统计,确定每个位点甲基化程度与不同类型样本的区分度。
其中MAL基因序列中结直肠癌组织敏感度74%、进展期腺瘤组织敏感度86%、癌旁组织特异性92%,“MC”甲基化热点位点如下所示:
MCGTTMCGTAGMCGGGGTTTMCGAAGAGGTTTAGGGMCGGTGTTMCGMCGGMCGTTMCGGGTMCGGGTTTTTMCGGGGMCGTGGGGMCGGGGGGMCGGGGTTGGGMCGGMCGGTMCGGGGTTTTTTTTTTTTTTGTTTMCGGGTTTTTTTGTTTTTAATTMCGMCGMCGMCGGGGGMCGTTTAGGTTATTGGGTTTMCGMCGGAGTTAGMCGAGAGGTTTGMCGMCGGAGTTTGAGMCGGMCGTTMCGTTTMCGTTTTAAGGTMCGAMCGTTAGTAMCGTMCGTTATGGTTTTMCGTAGMCGGMCGAMCGGGGGGTAGTATTTTGTTTAGTGG
其中SDC2基因序列中结直肠癌组织敏感度84%、进展期腺瘤组织敏感度84%、癌旁组织特异性98%,“MC”甲基化热点位点如下所示:
TAGGAGTTTTGGTTTGTMCGGTGAGTAGAGTMCGGMCGTAGTTATAGMCGMCGGAGTMCGMCGGMCGTTTATTGGTTTTMCGGAGTTGTTAATMCGGMCGTGTAATTTTGTAGGAATTTTTTTCGGGTTTATTTGGGAGTTATATTGTCGTTTTTTTTTTTTAGTCGTTTAGGGGAGTTCGGAGAAGTAGGTTTAGGAGGGAGGGAGTTAGAGGAAAAGAAGAGGAGGAGAAGGAGGAGGATTCGGGGAGGGAGGCGCGGCGCGGGAGGAGGAGGGGCGTAGTCGCGGAGTTAGTGGTTTCGTTTGGACGCGTTGTTTTTTAGATATTTTMCGGAGTTTTAGTMCGMCGMCGGATMCGMCGMCGTTTTMCGTMCGTTTTGTTTTTAAATTTTTGTMCGTAGTTTTTTTTTAAGTTAGMCGAATTTATTTTTTAAAATTAGAAATTGAATTTMCGGTAMCGGGAAAGGAGTTMCGMCGGAGGAGTAAAATTATAGTAGAGTAAGAAGAGTTTTAGAGAGTAGTTTTTTCGGAGTATTAATTTCGTGTCGGGAGTGTAGAAATTAATAAGTGAGAGGGMCGTMCGMCGTTTTMCGGGGMCGTAGTTGMCGGGMCGGMCGGGAGTAGGMCGTAGGAGGAGGAAGMCGAGMCGTTTTMCGAGTTTMCGAGTTMCGAGTTTTMCGAGTTTGAGTMCGTAATMCGTTGMCGGTATTTTGTTTMCGGATTMCGTGTGMCGMCGGGTTGMCGTMCGAGMCGTTGGGTAGGAGGTTTMCGTTTTGTTTTGGTTGTAAGTAGMCGGTTGGGAGTAGTMCGGTTTTTGGGGAATATGMCGGMCGMCGMCGTGGATTTTGTTTATTTTGGGTTTGGTGGTTTGMCGTGTMCGGMCGGAGTMCGGTGAGTGGGTTAGGMCGGAGGATGMCGMCGMCGTT
其中TFPI2基因序列中结直肠癌组织敏感度90%、进展期腺瘤组织敏感度96%、癌旁组织特异性100%,“MC”甲基化热点位点如下所示:
MCGMCGGGGGMCGGMCGGGGTGATAGTTTTMCGTGTATGAATTAGTTATTTTTTAGGTTTMCGTTTMCGGMCGGGGGTMCGGTMCGGAMCGTTMCGTTTMCGTATAAAGMCGGGTATTMCGGGTMCGTTTGGAGTAGAAAGTMCGMCGTATTTTTTTTMCGTTAGGMCGTTTTTTMCGGAMCGTTTTGTTTAGMCGGGTMCGTTMCGATTTTTTGTATTATGGATTTMCGTTMCGTTTTTTGGGGTTGT
其中Vimentin基因序列中结直肠癌组织敏感度86%、进展期腺瘤组织敏感度80%、癌旁组织特异性96%,“MC”甲基化热点位点如下所示:
GTTGGGATGGTAGTGGGAGGGGATTTTTTTTTTTAAMCGGGGTTATAAAAATAGMCGTTTTMCGGMCGGGGTTTAGTTTTTTGTTATTTTMCGTTTMCGAGGTTTTMCGMCGTTAGAGAMCGTAGTMCGMCGTTTTTATTATTTATATTTATMCGMCGTTTTMCGTTMCGTTTTTTTTTMCGGGAGTTAGTTMCGMCGTTATMCGTMCGTMCGTTTAGGTTATMCGTTATTTTTMCGTAGTTATGTTTATTAGGTTMCGTGTTTTMCGTTTTTTTATMCGTAGGATGTTMCGGMCGGTTMCGGGTATMCGMCGAGTMCGGTMCGAGTTTTAGTMCGGAGTTAMCGTGATTAMCGTTTATTMCGTATTTATAGTTTGGGTAGMCGMCGTTGMCGTTTTAGTATTAGT
实施例2
针对MAL/SDC2/TFPI2/Vimentin四个基因启动子甲基化区域设计引物探针,引物探针位置针对实施例1所述甲基化热点区域重点设计,所述设计引物探针序列SEQ IDNO.1-131如表6所示:
表6引物探针信息
使用核酸提取试剂盒(厦门艾德生物医药科技股份有限公司产品,货号:ADx-TI01c1814560)对结直肠癌细胞系HCT15/HCT116进行DNA提取,提取DNA步骤如下所示:
1.取20-60mg细胞系样本加入1mL生理盐水,震荡混匀,1200g离心2min,小心去除上清;
2.加入180uL Buffer DTL,加入20uL Proteinase K Solution,震荡混匀,56℃消化至获得较清澈的溶解液,可消化过夜;
3.取出样品管,用掌式离心机离心5-10s;
4.加入200uL Buffer DTB和200uL无水乙醇,震荡混匀后用掌式离心机离心5-10s。
5.将全部液体转移至DNA吸附柱中,8000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
6.往DNA吸附柱中加入600uL Buffer DW1,8000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
7.往DNA吸附柱中加入600uL Buffer DW2,8000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
8.换用新的收集管,12000g离心3min,丢弃收集管;
9.将吸附柱小心转移至干净的1.5mL离心管中,往DNA吸附柱膜中心滴加100uLBuffer DTE,室温静置1-5min,12000g离心1min,收集样品DNA并保存。
将提取出的细胞系DNA样本使用EpiTect Fast DNA Bisulfite Kit(QIAGEN公司产品,货号:59826)进行亚硫酸氢盐转化,亚硫酸氢盐转化步骤如下所示:
1.将提取出的组织样本DNA稀释至50ng/uL;
2.将稀释的样本DNA 20uL、Bisulfite Solution 85uL、DNA Protect Buffer35uL进行混合于200uL离心管,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
3.放置于普通PCR仪上运行程序:95℃5min,60℃20min,95℃5min,60℃20min,20℃保存。
4.将上述转化液转移至干净的1.5mL离心管中,加入310uL Buffer BL、250uL无水乙醇,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
5.将以上全部液体转移至吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
6.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
7.加入500uL Buffer BD于吸附柱中,室温静置15min,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
8.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
9.重复一次第8步;
10.加入250uL无水乙醇于吸附柱中,13000g离心1min;
11.换用新的收集管,空甩13000g离心2min;
12.换用1.5mL离心管,往吸附柱膜中心滴加15uL Buffer EB,室温放置1min,15000g离心1min;
13.收集转化产物ssDNA并保存。
转化后的ssDNA使用PCR反应体系检测不同引物探针扩增性能,确定各个组合在细胞系样本中的扩增效率,PCR扩增体系如下:
细胞系核酸ssDNA:20-80ng
5×PCR Buffer:5-10uL
MgCL2:1-8mmol
dNTP:0.1-0.8mmol
Taq DNA聚合酶:1-5U
上游扩增引物:0.1-0.8umol
上游扩增引物:0.1-0.8umol
PCR检测探针:0.1-0.8umol
补水至总体系:25-50uL
荧光PCR仪扩增细胞系样本,检测各基因引物探针性能程序如下所示:
第一阶段:95℃5min
第二阶段:95℃30s,65℃30s,72℃30s,15个循环
第三阶段:95℃30s,60℃30s,72℃30s,30个循环,60℃时收集荧光信号
实验结果中,以下引物探针使用细胞系样本具有优异的扩增效率,可正常扩增的引物探针具有良好的“S”型扩增曲线,且能特异性的扩增目的区段,扩增曲线图形如图2所示,较优引物探针序列如表7所示:
表7扩增效率优异引物探针信息
实施例3
比较直接使用QIAamp Fast DNA Stool Mini Kit(QIAGEN产品,货号:51604)提取粪便样本DNA后,再使用EpiTect Fast DNA Bisulfite Kit(QIAGEN公司产品,货号:59826)进行亚硫酸氢盐转化,与本发明在提取过程中完成提取、亚硫酸氢盐转化、洗涤纯化与回收两种样本处理方式。使用Quantus检测样本浓度,使用PCR反应体系检测不同样本提取与亚硫酸氢盐转化后的样本回收量。比较各自优缺点,具体操作步骤如下所示。
先进行提取粪便DNA后再进行亚硫酸氢盐转化法:先使用QIAamp Fast DNA StoolMini Kit(QIAGEN产品,货号:51604)提取粪便样本DNA,提取操作如下所示:
1.取1g粪便样本于10mL InhibitEx Buffer于15mL蓝盖离心管中,震荡仪震荡1min;
2.取2mL悬浊液至5mL离心管中,离心机12000rpm 1min;
3.取上清分成两支2.0mL EP管,分别600uL;
4.两支600uL离心上清液,分别加入25uL蛋白酶K、加入600uL Buffer AL震荡混匀、瞬时离心;
5. 56℃裂解10min,将裂解产物转移至2mL离心管中;
6.往裂解产物中加入600uL无水乙醇,震荡混匀、瞬时离心;
7.取以上两支产物过同一只离心柱,每次700uL,13000rpm 1min;
8.使用500uL Buffer AW1,13000rpm 1min。换用新的收集管;
9.使用500uL Buffer AW2,13000rpm 3min。换用新的收集管;
10.空甩13000rpm 3min。使用EP管替换收集管;
11.使用50uL纯化水洗脱产物,静置5min后13000rpm 1min;
12.收集提取产物,保存,待用。
再使用EpiTect Fast DNA Bisulfite Kit(QIAGEN公司产品,货号:59826)进行亚硫酸氢盐转化,获取最终亚硫酸氢盐转化后的样本ssDNA,操作步骤如下所示:
1.将提取出的组织样本DNA稀释至50ng/uL;
2.将稀释的样本DNA 20uL、Bisulfite Solution 85uL、DNA Protect Buffer35uL进行混合于200uL离心管,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
3.放置于普通PCR仪上运行程序:95℃5min,60℃20min,95℃5min,60℃20min,20℃保存。
4.将上述转化液转移至干净的1.5mL离心管中,加入310uL Buffer BL、250uL无水乙醇,掌式离心机震荡混匀15s后瞬时离心;
5.将以上全部液体转移至吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
6.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
7.加入500uL Buffer BD于吸附柱中,室温静置15min,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
8.加入500uL Buffer BW于吸附柱中,13000g离心1min,倒掉收集管中的液体;
9.重复一次第8步;
10.加入250uL无水乙醇于吸附柱中,13000g离心1min;
11.换用新的收集管,空甩13000g离心2min;
12.换用1.5mL离心管,往吸附柱膜中心滴加15uL Buffer EB,室温放置1min,15000g离心1min;
13.收集转化产物ssDNA并保存。
将收集的亚硫酸氢盐转化产物ssDNA使用Quantus的ssDNA检测试剂盒进行核酸浓度定量,使用荧光PCR仪测定产物浓度Cq值。
进行粪便样本裂解沉淀DNA后直接进行亚硫酸氢盐转化法:一次性从粪便样本进行保护、裂解、沉淀获得的DNA直接用于亚硫酸氢盐转化,进而获得转化后的ssDNA。进行样本DNA浓度质控。使用以下步骤进行粪便样本的提取与亚硫酸氢盐转化同步进行:
1.取6mL Buffer SPB(50mM EDTA、50mM Tris、100mM NaCl、30%无水乙醇)至离心管中,再取1g粪便样本至管中,充分振荡混匀;
2.先加入500μL Buffer SLS(50mM EDTA、50mM Tris、20%SDS),颠倒混匀,再加入50μL蛋白酶K,颠倒混匀后置恒温水浴锅70℃水浴10min;
3.将离心管转至室温水浴3min,10000g离心1min;
4.取5mL上清于新的离心管中,加入1mL Buffer SDL(50mM EDTA、50mM Tris、2%PVP10和1M醋酸钠)上下颠倒混匀,10000g离心2min;
5.取全部上清于新的离心管中,再加3mL异丙醇,上下颠倒混匀,12000g离心10min,弃上清;
6.往离心管加入250μL Buffer DTE(20mM Tris,10mM EDTA),涡旋混匀至沉淀散开;
7.12000g离心2min,吸取全部液体至离心管,再往离心管加500μL Buffer BCB;
8.再往离心管加入50μL Buffer DPB(50mM EDTA、50mM Tris、100mM对苯二酚),混匀后瞬离;
9.将离心管放在扩增仪器上转化;
10.完成转化后,加入600μL Buffer DBB(50mM EDTA、50mM Tris及4.5M异硫氰酸胍)和600μL无水乙醇,充分振荡混匀;
11.将混合液体加到纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
12.将剩余液体全部转移至纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
13.加入700μL Buffer BDD(50mM Tris,50mM EDTA,50mM NaOH,90%乙醇)于纯化柱中,室温静置15min,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
14.加入700μL Buffer DW1(50mM Tris,50mM EDTA,2M异硫氰酸胍,50%乙醇)于纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
15.加入700μL Buffer DW2(50mM Tris,0.8M NaCl,80%乙醇)于纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
16.换用新的收集管,12000g离心2min;
17.丢弃收集管,将纯化柱放置于新的离心管中;
18.滴加50μL Buffer DTE(20mM Tris,10mM EDTA)于纯化柱膜上,60℃孵育2min;
19. 12000g离心2min,得到转化后的人类粪便DNA。
将收集的亚硫酸氢盐转化产物ssDNA使用Quantus的ssDNA检测试剂盒进行核酸浓度定量,使用荧光PCR仪测定产物浓度Cq值。
比较两种获得亚硫酸氢盐转化后产物ssDNA的质控数据如表8所示:
表8不同获得产物方法实验结果
比较两种获得亚硫酸氢盐转化后ssDNA方法的结果,其中使用Quantus的ssDNA检测试剂盒进行样本回收浓度质控,其中:先提取DNA再进行亚硫酸氢盐转化的方法获得10例样本终浓度均值30.4ng/uL,qPCR检测Cq均值19.54;进行粪便样本裂解、沉淀DNA后直接进行亚硫酸氢盐转化法获得10例样本终浓度均值76.5ng/uL,qPCR检测Cq均值16.67。即使用粪便样本裂解、沉淀DNA后直接进行亚硫酸氢盐转化法可获得更大量的DNA总量,相比传统获得转化后的ssDNA的方法具有简便、快速、高效等优点,且相比链霉亲和素磁珠杂交捕获法,可将提取费用降低至1/5以下,甚至1/10以下。可减轻受检人员经济负担,对将粪便样本检测结直肠癌甲基化试剂盒用于早筛提供经济支持。
实施例4
将结直肠癌粪便样本、大肠进展期腺瘤粪便样本、健康人粪便样本进行裂解、沉淀DNA后直接进行亚硫酸氢盐转化法,将获得的亚硫酸氢盐转化后ssDNA进行荧光PCR检测,操作步骤如下所示:
1.取5~35mL样本保护液SPB(10~500mM EDTA、10~500mM Tris、50~500mMNaCl、10~70%无水乙醇)至离心管中,再取1~5g新鲜粪便样本至保护液的管中,充分振荡混匀;
2.先加入50~1000μL 20%SDS,颠倒混匀,再加入50~500μL蛋白酶K,颠倒混匀后置恒温水浴锅70℃水浴5~30min;
3.将离心管转至室温水浴3min室温平衡,10000g离心1min;
4.取2~6mL上清于新的离心管中,加入1~2mL去抑制液SDL(10~500mM EDTA、10~500mM Tris、0.5~5%PVP10和0.5~3.5M醋酸钠)上下颠倒混匀,10000g离心2min;
5.取全部上清于新的离心管中,再加2~5mL预冷有机溶剂(异丙醇或乙醇),上下颠倒混匀,12000g离心10min,弃上清;
6.往离心管加入100~800μL洗脱液DTE(10~20mM Tris,5~10mM EDTA),涡旋混匀至沉淀散开;
7. 12000g离心2min,吸取全部液体至离心管,再往离心管加100~800μL转化液BCB(10~500mM EDTA、10~500mM Tris及0.5~5M亚硫酸盐,至少含亚硫酸钠、亚硫酸氢钠、亚硫酸氢镁、焦亚硫酸钠和亚硫酸氢铵中的一种,溶液pH4.0~7.0);
8.再往离心管加入10~300μL核酸保护液DPB(10~500mM EDTA、10~500mM Tris、20~1000mM对苯二酚),混匀后瞬离;
9.将离心管放在扩增仪器上转化;
10.完成转化后,加入200~800μL结合液DBB(10~500mM EDTA、10~500mM Tris及3~5.5M异硫氰酸胍)和300~700μL无水乙醇,充分振荡混匀;
11.将混合液体加到纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
12.将剩余转移至纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
13.加入500~750μL洗涤液BDD(20~400mM Tris,20~500mM EDTA,20~500mMNaOH,60~100%乙醇)于纯化柱中,室温静置5~20min,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
14.加入500~750μL洗涤液DW1(150~400mM Tris,40~100mM EDTA,2~5M异硫氰酸胍,40~70%乙醇)于纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
15.加入500~750μL洗涤液DW2(300~700mM Tris,0.8~1.2M NaCl,70~90%乙醇)于纯化柱中,12000g离心30s,倒去收集管中液体;
16.换用新的收集管,12000g离心2min;
17.丢弃收集管,将纯化柱放置于新的离心管中;
18.小心滴加30~200μL洗脱液DTE(10~20mM Tris,5~10mM EDTA)于纯化柱膜上,60℃孵育1~5min;
19. 12000g离心2min,得到转化后的人类粪便DNA。
使用荧光PCR法检测实施例2中选出的引物探针组合,其中样本信息如表9-11所示:
表9结直肠癌粪便样本信息
表10进展期腺瘤粪便样本信息
表11肠癌特异性人群粪便样本信息
使用荧光PCR法检测以上结直肠癌粪便样本、进展期腺瘤粪便样本、肠癌特异性人群群粪便样本,PCR反应体系如下所示:
结直肠癌、进展期腺瘤、肠癌特异性人群群粪便样本ssDNA:20-80ng
5×PCR Buffer:5-10uL
MgCL2:1-8mmol
dNTP:0.1-0.8mmol
Taq DNA聚合酶:1-5U
上游扩增引物:0.1-0.8umol
上游扩增引物:0.1-0.8umol
PCR检测探针:0.1-0.8umol
补水至总体系:25-50uL
荧光PCR仪扩增细胞系样本,检测各基因引物探针性能程序如下所示:
第一阶段:95℃5min
第二阶段:95℃30s,65℃30s,72℃30s,15个循环
第三阶段:95℃30s,60℃30s,72℃30s,30个循环。60℃时收集荧光信号。
使用筛选出的引物探针组合进行检测结直肠癌粪便样本、进展期腺瘤粪便样本、肠癌特异性人群群粪便样本提取转化后进行荧光PCR检测,将每组目的甲基化相关基因检测组合Cq值减去该样本的ACTB基因检测Cq值以获得不同组合的ΔCq值,以不同ΔCq的cut-off值进行判定不同基因的检出性能,检测结果如图3所示。检测结果中以下单组合检测结果较优,检测结果如表12-13所示:
表12单组合引物探针单管检测粪便样本性能信息
表13单组合引物探针重复2管检测粪便样本性能信息
4个基因组合结直肠癌粪便样本、进展期腺瘤粪便样本、肠癌特异性人群粪便样本,使用多组合联合检测时,检测结果如表14-16所示:
表14两组合引物探针检测粪便样本性能
表15三组合引物探针检测粪便样本性能
表16四组合引物探针检测粪便样本性能
即有组合越多时检测敏感度越高,但同时特异性有下降表现。
序列表
<110> 厦门艾德生物医药科技股份有限公司
<120> 一种用于粪便检测进展期腺瘤、结直肠癌相关基因甲基化位点的试剂盒
<160> 131
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
cgtttaggtt attgggtttc gc 22
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ttaggttatt gggtttcgc 19
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<211> 20
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
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<212> DNA
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<400> 4
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tgggtttcgc ggagttagc 19
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cgaaacgaac gccg 14
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gaacgccgct caaactc 17
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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cataacgacg tactaacgtc g 21
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gaaaaccata acgacgtact aacg 24
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actacccccc gtcgccg 17
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<211> 21
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 21
acaaaatact accccccgtc g 21
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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accactaaac aaaatactac 20
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tcggtgagta gagtcggc 18
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cgagtttgag tcgtaatcgt tgc 23
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<212> DNA
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cgtggatttt gtttattttg ggtttg 26
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<212> DNA
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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gaaacaaaat accgcaacga ttacg 25
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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cctctacgac taaaccaaac cg 22
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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tcgttttttt taggtttttg tc 22
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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cgcgtatttt ttttcg 16
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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cttctctccc caaccg 16
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
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<212> DNA
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gaaaaaacgc ctaacgaaaa aaaatacg 28
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<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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