CN108866102A - 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法 - Google Patents

一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法 Download PDF

Info

Publication number
CN108866102A
CN108866102A CN201810635308.1A CN201810635308A CN108866102A CN 108866102 A CN108866102 A CN 108866102A CN 201810635308 A CN201810635308 A CN 201810635308A CN 108866102 A CN108866102 A CN 108866102A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mouse
adgrv1
gene
y6236fsx1
guide rna
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201810635308.1A
Other languages
English (en)
Other versions
CN108866102B (zh
Inventor
徐志刚
杜海波
王燕飞
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shenzhen Research Institute Of Shandong University
Shandong University
Original Assignee
Shenzhen Research Institute Of Shandong University
Shandong University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shenzhen Research Institute Of Shandong University, Shandong University filed Critical Shenzhen Research Institute Of Shandong University
Priority to CN201810635308.1A priority Critical patent/CN108866102B/zh
Publication of CN108866102A publication Critical patent/CN108866102A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN108866102B publication Critical patent/CN108866102B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/90Stable introduction of foreign DNA into chromosome
    • C12N15/902Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination
    • C12N15/907Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination in mammalian cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
    • A01K67/027New or modified breeds of vertebrates
    • A01K67/0275Genetically modified vertebrates, e.g. transgenic
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/16Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/22Ribonucleases RNAses, DNAses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2227/00Animals characterised by species
    • A01K2227/10Mammal
    • A01K2227/105Murine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2267/00Animals characterised by purpose
    • A01K2267/03Animal model, e.g. for test or diseases
    • A01K2267/0306Animal model for genetic diseases

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法,步骤是(1)设计并选择合适的靶向小鼠Adgrv1基因的Guide RNA及修复模板DNA;(2)体外合成Cas9 mRNA、Guide RNA和修复模板DNA;(3)将Guide RNA、Cas9 mRNA和修复模板DNA等摩尔比共同配制成注射样品对受精卵注射;(4)对获得的F0代小鼠进行鉴定;(5)阳性F0代小鼠传代及F1代小鼠的获得与鉴定。本方法可以成功获得与人类中Y6244fsX1致病突变对应的Adgrv1基因Y6236fsX1突变小鼠模型,为研究人类中Y6244fsX1致病突变的相关因素和诊断治疗提供了基础。

Description

一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法
技术领域
本发明属于利用基因修饰技术制作基因突变动物模型技术领域,具体涉及一种基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法。
背景技术
CRISPR/Cas(Clustered Regularly Interspaced Shot Palindromic repeats/CRISPR-associated)***是原核生物中一种抵抗外源基因侵入的获得性免疫***,在细菌和古生菌中CRISPR***整合侵入宿主的噬菌体或者质粒DNA片段到CRISPR位点,然后通过相应的CRISPR RNAs(cr RNAs)引导Cas核酸内切酶对外源DNA序列进行切割,从而抵抗病毒或者噬菌体的入侵。CRISPR/Cas***分为3种类型(TypeⅠ、TypeⅡ和TypeⅢ),其中TypeⅡ***因其简单、高效以及功能多样化等优点,自2013在哺乳动物细胞中成功实现基因编辑后,现已被广泛用于多种模式生物的基因组修饰技术应用中。Ⅱ型***可以通过crRNA的引导利用单个Cas9核酸酶对DNA靶位点进行精确充分地切割。CRISPR/Cas9***相关载体构建简单快速,便于操作,实验周期较短,且广泛适用于多个物种。在基因编辑的过程中,CRISPR/Cas9***需要一段特殊的引导RNA,即sgRNA(single guide RNA),sgRNA的序列选择限制性较小,只需要基因组序列中出现PAM(NGG)区即可。在sgRNA的引导下,Cas9蛋白可以对基因组实现定点切割,引起DNA双链断裂,继而引发细胞的自主修复,修复的过程可以是随机的片段缺失或***,也可以利用特定的模板修复,从而实现对基因组的永久性修饰。
Usher综合征(Usher syndrome,USH)是一种能够引起视觉和听觉双重感官障碍的遗传性疾病,在目前已知的超过50种的视力下降合并听力受损的综合征中,以Usher综合征最为常见,该病的全球发病率为1/6000~1/10000。USH为常染色体隐性遗传病,其特征表现为视网膜色素变性(retinitis pigmentosa,RP)和感音神经性耳聋(sensorineuralhearing loss,SNHL)。USH在临床上分为3种类型,都存在因视网膜色素变性而引起的进行性视力下降,区别在于听力和前庭功能的变现各不相同。其中USH1型最为严重,临床表现有先天性耳聋、严重的听力损失,并因听力障碍导致的语言发育迟缓;此类患者还经常伴有前庭功能障碍,患儿学会独立行走的时间较同龄儿童晚。USH2型患者听力损失较轻,为中到重度耳聋,但前庭功能正常。USH3型以渐进性听力损失为特点,伴随不同程度的前庭功能失调。此外,部分Usher综合征患者还可能伴有智力衰退,嗅觉丧失,癫痫等神经***病变。
ADGRV1是属于黏附受体亚家族(Adhesion receptor)的一种G蛋白偶联受体(GPCR),是听纤毛踝连接(Ankle-link)的重要组成成分,在听纤毛形成过程中起到重要的作用。ADGRV1是目前已知最大的GPCR蛋白,其mRNA经可变剪切产生不同的蛋白亚型。人ADGRV1 Y6244fsX1突变引起USH2综合征,临床表现为先天性耳聋和渐进性色素性视网膜炎,严重影响患者日常交流与工作学习等。目前对于ADGRV1突变致聋机制尚不明确,因此也缺乏有效的治疗手段。在小鼠中模拟人ADGRV1 Y6244fsX1突变,构建Adgrv1基因Y6236fsX1突变小鼠模型,对ADGRV1突变致聋机制进行深入探讨,以及利用这一模型进行药物筛选,具有重要的临床意义。但检索发现目前虽有Adgrv1基因敲除小鼠,没有仿真模拟人相关耳聋突变的小鼠模型,因此建立一种构建Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的方法意义重大。
发明内容
本发明的目的是提供一种基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法。
本发明所述基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法,步骤是:
(1)在小鼠Adgrv1基因89号外显子上6236位点Tyrosine附近设计合适的GuideRNA;其中引物Guide RNA target site1的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,引物Guide RNAtarget site2的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;设计合适的修复模板DNA以产生Y6236fsX1突变;其中修复模板DNA的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
(2)体外合成Guide RNA、Cas9 mRNA与修复模板DNA;
(3)将合成后的Guide RNA、Cas9 mRNA与修复模板DNA等摩尔比共同配制成100ul注射样品,并将样品注射到取自C57BL/6J母鼠受精卵的雄原核中,培养恢复后移植入假孕受体小鼠,等待获得的F0代小鼠;
(4)利用PCR反应体系对获得的F0代小鼠进行鉴定;
(5)将阳性F0代小鼠与野生型C57BL/6J交配获得F1代小鼠,筛选出的阳性F1代小鼠即为Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型小鼠。
上所述基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法中:步骤(2)所述Guide RNA、Cas9 mRNA及修复模板DNA体外合成由生工生物工程(上海)股份有限公司完成。
上述基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法中:步骤(4)所述PCR反应体系的引物为GPR98-test-F3和GPR98-test-R3;其中GPR98-test-F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,GPR98-test-R3的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示。
本发明公开的基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法能够成功获得与人类中Y6244fsX1致病突变对应的Adgrv1基因Y6236fsX1突变小鼠模型。方法中涉及的设计并挑选合适的靶向小鼠Adgrv1基因的Guide RNA,难点在于寻找6236位Tyrosine附近合适的Guide RNA靶点以实现能够模拟人类Y6244fsX1突变的效果。本发明的构建方法为获得模拟人类Adgrv1基因Y6244fsX1致病突变的小鼠模型提供了便利,为研究人类中Y6244fsX1致病突变的相关因素和诊断治疗提供了基础。
附图说明
图1、Adgrv1基因Y6236fsX1突变小鼠构建策略图及基因鉴定引物设计。
图2、F0代阳性小鼠PCR产物测序图谱比对结果。
具体实施方式
如下实施例使用的Taq酶及PCR相关试剂购自TaKaRa公司。化学试剂主要购自Sigma和上海化学试剂公司。胶回收Kit,质粒抽提Kit购于Qiagen公司。修复模板DNA和RNA合成自生工生物工程(上海)股份有限公司。引物合成自英潍捷基(上海)贸易有限公司。
实施例1:基于CRISPR/Cas9技术构建Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法通过以下步骤实现:
(1)靶向小鼠Adgrv1基因的Guide RNA及修复模板DNA的选择和设计
设计Adgrv1基因Y6236fsX1突变小鼠构建策略,如图1所示。
根据构建策略,在Adgrv1基因相应的位置设计合适的Guide RNA,并订购相应的修复模板DNA,其中Guide RNA target site1的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,Guide RNAtarget site2的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,修复模板DNA的核苷酸序列如SEQ IDNO.3所示,具体序列如下:
(2)体外合成Guide RNA、Cas9 mRNA和修复模板DNA
Guide RNA、Cas9 mRNA和修复模板DNA由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
(3)受精卵显微注射制备F0代小鼠
1)单细胞受精卵的获得
小鼠超排:第一天,为C57BL/6J小鼠腹腔注射马绒毛膜***5IU/只,46-48小时后注射人绒毛膜***,注射完人绒毛膜***后将2只雌鼠与单放雄鼠1只合笼。第四天上午检栓,见栓的记为0.5天。
获取受精卵:将见栓0.5天后的小鼠脱颈处死,取出输卵管,在解剖镜下小心取出成团的卵子并用透明质酸酶消化,挑取形态饱满且胞质均匀的胚胎放置于M16培养液中培养。
2)显微注射受精卵
将挑选后的受精卵转移入M2条带中依次排列(30-50枚左右)。提前将Guide RNA、Cas9 mRNA及修复模板DNA等摩尔比共同配制成100ul注射样品,待注射管刺入受精卵后匀速将样品注入,见到胞质松散后迅速退针。注射结束后,将受精卵移入M16培养液中,并于37℃、5%二氧化碳培养箱中恢复0.5-1小时。将注射后的受精卵移植到E0.5天假孕小鼠体内。
移植后大约19-21天生出F0代小鼠。
(4)利用PCR反应体系对获得的F0代小鼠进行鉴定
1)F0代小鼠基因组制备
F0代小鼠出生14天剪取鼠尾0.3cm,加400μl裂解液及40μl蛋白酶K(10mg/ml),56℃消化过夜。离心取上清,两倍体积无水乙醇沉淀,75%乙醇洗涤,稍晾干后溶解于100μl纯水中,50℃烘箱助溶1小时。
2)F0代小鼠基因型鉴定
以制取的F0代小鼠基因组为模板使用TaKaRa Lataq扩增鉴定片段,引物为GPR98-test-F3和GPR98-test-R3,如图1所示,可扩增出0.8kb条带。其中,GPR98-test-F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,GPR98-test-R3的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示。
GPR98-test-F3:5′-ATCATAGCAATCTGCGTGTGACTCTGA-3′
GPR98-test-R3:5′-ACACTTTGGCAATGTTAGTTGCTTCTGA-3′
反应条件为94℃5min变性后,94℃40s,60℃30s,72℃1min,进行34个循环,72℃延伸2min,PCR体系参见TaKaRa说明书。
1%琼脂糖凝胶电泳后割胶回收0.8kb条带,分别连接pGEM-T载体(Promega),转化,每个平板挑取6个单克隆测序鉴定,引物为GPR98-test-F3。测序结果显示有19bp碱基缺失,如图2所示。
(5)将阳性F0代小鼠与野生型C57BL/6J交配获得F1代小鼠,筛选出的阳性F1代小鼠即为Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型小鼠。
阳性F0代小鼠在8周龄左右性成熟后和野生型C57BL/6J回交进行配繁,得到F1代小鼠。同F0代相似,待小鼠出生14天后,剪尾进行PCR鉴定,得到5只F1代杂合子。
筛选出的阳性F1代小鼠即为Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型小鼠。
序列表
<110> 山东大学
<120> 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法
<141> 2018-6-9
<160> 5
<170> PatentIn Version 3.5
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 小鼠
<222>(1)…(20)
<223> Guide RNA target site1的核苷酸序列
<400> 1
ttcttctgga ggttatggcc 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 小鼠
<222>(1)…(20)
<223> Guide RNA target site2的核苷酸序列
<400> 2
tcatcggcta tcagggaccc 20
<210> 3
<211> 98
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 小鼠
<222>(1)…(98)
<223> 修复模板DNA的核苷酸序列
<400> 3
tttgaagaca agtccccaga atggtgcctc attcccttct tctggaggtt agccgatgaa 60
gagtcccagg agtttgatga cctgatattt gcattaaa 98
<210> 4
<211> 27
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 小鼠
<222>(1)…(27)
<223> 引物GPR98-test-F3的核苷酸序列
<400> 4
atcatagcaa tctgcgtgtg actctga 27
<210> 5
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 小鼠
<222>(1)…(28)
<223> 引物GPR98-test-R3的核苷酸序列
<400> 5
acactttggc aatgttagtt gcttctga 28

Claims (2)

1.一种基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法,步骤是:
(1)在小鼠Adgrv1基因89号外显子上6236位点Tyrosine附近设计合适的Guide RNA;其中Guide RNA target site1的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,Guide RNA target site2的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;设计合适的修复模板DNA以产生Y6236fsX1突变;其中修复模板DNA的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
(2)体外合成Guide RNA、Cas9 mRNA和修复模板DNA;
(3)将Guide RNA、Cas9 mRNA与修复模板DNA等摩尔比共同配制成100ul注射样品,并将样品注射到取自C57BL/6J母鼠受精卵的雄原核中,培养恢复后移植入假孕受体小鼠,等待获得的F0代小鼠;
(4)利用PCR反应体系对获得的F0代小鼠进行鉴定;
(5)将阳性F0代小鼠与野生型C57BL/6J交配获得F1代小鼠,筛选出的阳性F1代小鼠即为Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型小鼠。
2.根据权利要求1所述基于CRISPR/Cas9技术的Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法,其特征在于:步骤(4)所述PCR反应体系的引物为GPR98-test-F3和GPR98-test-R3;其中GPR98-test-F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,GPR98-test-R3的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示。
CN201810635308.1A 2018-06-20 2018-06-20 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法 Active CN108866102B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810635308.1A CN108866102B (zh) 2018-06-20 2018-06-20 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810635308.1A CN108866102B (zh) 2018-06-20 2018-06-20 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN108866102A true CN108866102A (zh) 2018-11-23
CN108866102B CN108866102B (zh) 2021-11-16

Family

ID=64339662

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810635308.1A Active CN108866102B (zh) 2018-06-20 2018-06-20 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108866102B (zh)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110551759A (zh) * 2018-12-28 2019-12-10 赛业(广州)生物科技有限公司 一种提高转基因细胞重组效率的组合物及方法
CN111778246A (zh) * 2020-06-16 2020-10-16 首都医科大学附属北京同仁医院 Sdk2基因突变小鼠模型构建方法及其应用
CN112005968A (zh) * 2020-09-02 2020-12-01 南京农业大学 半乳糖基转移酶GalT基因点突变小鼠模型的构建方法及其用途

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106929533A (zh) * 2017-03-10 2017-07-07 上海交通大学医学院附属新华医院 Kars基因点突变小鼠模型的构建方法及其应用
CN107475300A (zh) * 2017-09-18 2017-12-15 上海市同济医院 Ifit3‑eKO1基因敲除小鼠动物模型的构建方法和应用
WO2018045727A1 (zh) * 2016-09-06 2018-03-15 陕西慧康生物科技有限责任公司 粘多糖贮积症ii型动物模型的构建方法及应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018045727A1 (zh) * 2016-09-06 2018-03-15 陕西慧康生物科技有限责任公司 粘多糖贮积症ii型动物模型的构建方法及应用
CN106929533A (zh) * 2017-03-10 2017-07-07 上海交通大学医学院附属新华医院 Kars基因点突变小鼠模型的构建方法及其应用
CN107475300A (zh) * 2017-09-18 2017-12-15 上海市同济医院 Ifit3‑eKO1基因敲除小鼠动物模型的构建方法和应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
QIAO-XIA HU等: "Constitutive Gαi Coupling Activity of Very Large G Protein-coupled Receptor 1 (VLGR1) and Its Regulation by PDZD7 Protein", 《THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY》 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110551759A (zh) * 2018-12-28 2019-12-10 赛业(广州)生物科技有限公司 一种提高转基因细胞重组效率的组合物及方法
CN110551759B (zh) * 2018-12-28 2021-10-15 广州赛业百沐生物科技有限公司 一种提高转基因细胞重组效率的组合物及方法
CN111778246A (zh) * 2020-06-16 2020-10-16 首都医科大学附属北京同仁医院 Sdk2基因突变小鼠模型构建方法及其应用
CN111778246B (zh) * 2020-06-16 2022-04-19 首都医科大学附属北京同仁医院 Sdk2基因突变小鼠模型构建方法及其应用
CN112005968A (zh) * 2020-09-02 2020-12-01 南京农业大学 半乳糖基转移酶GalT基因点突变小鼠模型的构建方法及其用途

Also Published As

Publication number Publication date
CN108866102B (zh) 2021-11-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
d'Amato Nuclear cytology in relation to development
Liu et al. Targeted disruption of tyrosinase causes melanin reduction in Carassius auratus cuvieri and its hybrid progeny
GB2578026A (en) Method for constructing GLRX1 gene knock-out animal model based on CRISPR/CAS9
CN108949824A (zh) 基于HMEJ的方法介导Ipr1定点***获取转基因牛胎儿成纤维细胞的方法
CN105505879B (zh) 一种培养转基因动物胚胎细胞或转基因动物的方法及培养基
CN108866102A (zh) 一种Adgrv1基因Y6236fsX1突变动物模型的构建方法
CN106119284A (zh) 一种用于构建免疫缺陷动物模型的产品及其应用
CN106282231A (zh) 粘多糖贮积症ii型动物模型的构建方法及应用
CN108893495A (zh) 一种Pdzd7基因突变动物模型的构建方法
CN109628464A (zh) 一种增加大豆产量的方法
CN109385431A (zh) OsERF2基因调控水稻籽粒大小的应用
CN106148406B (zh) 猪ApoE基因敲除载体及其构建方法与应用
CN108949832A (zh) 一种用于敲除猪ghr基因的打靶载体及其应用
CN115968834A (zh) 一种rs1点突变小鼠模型的制备方法及其用途
WO2021243881A1 (zh) 用于猪MBP基因敲除的sgRNA组合物及用途
CN109423499A (zh) Mettl3敲除的***发生障碍动物模型及其构建方法
KR101435635B1 (ko) 넉인 벡터 및 이를 이용한 장기이식용 형질전환 동물의 제조방법
CN106591364B (zh) 一种获取转基因牛胎儿成纤维细胞的方法
Navrátilová et al. Biotechnological methods utilized in Cucumis research-A review
KR101068479B1 (ko) 알파 1,3-갈락토실트랜스퍼라아제 유전자 타겟팅 벡터 및그의 용도
CN104805100B (zh) 水稻基因OsSμBP‑2在延缓植物叶片衰老中的应用
KR20130106944A (ko) 세포질 웅성 불임성을 가지는 nwb―cms 양채류 식물체 및 이의 용도
CN106834270A (zh) 一种离子束注入裂盖马鞍菌全基因组突变及定向进化的方法
CN103923215B (zh) 使ACC-α基因启动子PⅢ失活的物质及其应用
CN101412999A (zh) 一种基因打靶定点转基因方法及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant