CN105954514A - ***和伪狂犬病二联快速检测试纸条及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种***和伪狂犬病二联快速检测试纸条及其制备方法。该试纸条基于膜免疫层析的原理,采用胶体金双抗原夹心法来制备,以葡萄球菌A蛋白(SPA)为捕获抗原,以***病毒3ABC和伪狂犬病毒GE蛋白为检测抗原。在检测一份血清样品时,可同时诊断猪***和伪狂犬病的野毒感染。该试纸条操作便捷,不需要仪器设备,结果判读简单,能够满足基层组织、农户对于重大疫病诊断的需求,对猪***、伪狂犬病防控具有重要意义。
Description
技术领域
本发明总体涉及动物疫病快速诊断试纸条,具体涉及***和伪狂犬病二联快速检测试纸条。
背景技术
***(foot-and-mouth disease,FMD)是一种急性、热性、高度接触性传染病,猪、牛、羊等偶蹄类动物最易感。猪***的发病率高,传播迅速,可造成母猪流产、仔猪大批死亡,带来严重的经济损失。我国对***采取强制免疫策略,每年都会使用大量的灭活疫苗,并监测疫苗免疫效果,提高动物临床抗体水平。如何区分疫苗免疫动物和野毒感染动物成为影响***防控的关键。在***疫苗生产过程中,3ABC非结构蛋白会被除去,因此动物接种***疫苗不产生3ABC抗体。因此,检测3ABC蛋白抗体,可作为诊断野毒感染的重要指标。
伪狂犬病(Pseudorabies virus,PRV)是一种猪的急性传染病,主要侵害生殖***,可导致母猪***、流产、死胎,哺乳仔猪大量死亡,对成年育肥猪猪可引起生长停滞、增重缓慢等,是危害养猪业的重大传染病之一。疫苗免疫接种是防控伪狂犬病的重要措施。目前,可用的伪狂犬疫苗均为弱毒活疫苗,能否鉴别免疫动物和野毒感染动物是伪狂犬病净化的关键。通过基因工程技术构建缺失GE蛋白基因的伪狂犬病毒突变株,所制备的疫苗接种动物,不会诱导产生GE蛋白抗体。所以,通过检测GE蛋白抗体,可以精确区分伪狂犬疫苗免疫猪群和野毒感染猪群。
随着生物技术的发展,目前市面上已经有猪***3ABC和伪狂犬病GE抗体检测试剂盒,但主要是酶联免疫吸附试验(ELISA)检测法。ELISA操作繁琐,耗时较长,而且需要仪器,不利于临床实地的疾病诊断。之后出现了一种类似专利CN103792373A的胶体金快速检测卡,但是只能单一诊断伪狂犬病野毒感染。猪***、伪狂犬病对怀孕母猪和仔猪危害大,严重破坏养猪业可持续发展,研制快速、多联的疾病诊断技术具有重大意义。
发明内容
本发明的目的在于:提供一种动物疫病快速诊断试纸条及其制备方法,该试纸条可同时诊断猪***和伪狂犬病的野毒感染。
本发明通过以下技术方案实现:该试纸条包括底板、包被膜、玻璃纤维膜、吸水纸和样品垫;其中,包被膜的底面粘贴在底板上,包被膜正面的两端分别粘贴玻璃纤维膜和吸水纸;在玻璃纤维膜远离吸水纸一端的正面粘贴样品垫;在包被膜上设有检测线I、检测线II和质控线,检测线I包被***病毒3ABC蛋白,检测线II包被伪狂犬病毒GE蛋白,质控线包被兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体;玻璃纤维膜上喷涂有葡萄球菌A蛋白(SPA)胶体金颗粒标记偶联物。
本发明试纸条应用双抗原夹心法,当被检样品中含有3ABC或GE抗体时,则在样品垫处与SPA蛋白结合,形成“SPA抗原-抗体复合物”,并在吸水纸的作用下向前渗透泳动。当复合物到达检测线I,3ABC抗体与***病毒3ABC蛋白发生特异性结合,形成“SPA抗原-3ABC抗体-3ABC抗原复合物”,在包被膜上出现肉眼可见的色带。当复合物到达检测线II,GE抗体与伪狂犬病毒GE蛋白发生特异性结合,形成“SPA抗原-GE抗体-GE抗原复合物”,在包被膜上出现肉眼可见的色带。当被检样品中不含3ABC和GE抗体时,胶体金标记的SPA泳动至质控线,与兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体结合,在包被膜上出现肉眼可见的色带。检测时,吸取待检血清样品1滴,滴到样品垫上,观察检测线I、II和质控线是否出现红色色带,从而判定动物是否被***、伪狂犬野毒感染。
本发明的积极效果是:
1、本发明操作便捷,不需要仪器设备,结果判读简单。在检测一份血清样品时,可同时诊断猪***和伪狂犬病野毒感染。能够满足基层组织、农户对于重大疫病诊断的需求。
2、本发明采用双抗原夹心法,不受样品的宿主来源限制,除了诊断猪***和伪狂犬病野毒感染,还可用于多种动物***野毒感染的鉴别诊断。
3、本发明将免疫层析法与胶体金技术相结合,研制出快速诊断试纸条。相对于ELISA,试纸条原辅料更为简单,成本低,有益于推广应用。
附图说明
图1为本发明试纸条的侧面结构示意图。图中1:底板;2:包被膜;3:玻璃纤维膜;4:吸水纸;5:样品垫。
图2为图1的正面结构示意图。图中6:检测线I;7:检测线II;8:质控线。
图3为***野毒感染阳性和伪狂犬野毒感染阳性结果示意图。包被膜2上的检测线I6、检测线II7和质控线8均出现红色色带。
图4为***野毒感染阳性和伪狂犬野毒感染阴性结果示意图。包被膜2上的检测线I6和质控线8均出现红色色带,检测线II7不出现红色色带。
图5为伪狂犬野毒感染阳性和***野毒感染阴性结果示意图。包被膜2上的检测线II7和质控线8均出现红色色带,检测线I6不出现红色色带。
图6为***野毒感染阴性和伪狂犬野毒感染阴性结果示意图。包被膜2上的质控线8出现红色色带,检测线I6和检测线II7均不出现红色色带。
图7为本发明检测无效结果示意图。包被膜2上的质控线8、检测线I6和检测线II7均不出现红色色带。
图8为本发明检测无效结果示意图。包被膜2上的质控线8不出现红色色带,检测线I6和检测线II7出现红色色带。
图9为本发明检测无效结果示意图。包被膜2上的质控线8和检测线I6均不出现红色色带,检测线II7出现红色色带。
图10为本发明检测无效结果示意图。包被膜2上的质控线8和检测线II7均不出现红色色带,检测线I6出现红色色带。
具体实施方式
下面结合附图具体介绍本发明的***和伪狂犬病二联快速检测试纸条及其制备方法。本领域技术人员应该理解,下面描述的实施例只是为了更好地理解本发明,并不用来限制本发明。
如图1所示,根据本发明的***和伪狂犬病二联快速检测试纸条包括底板1、包被膜2、玻璃纤维膜3、吸水纸4以及样品垫5。其中,包被膜2粘贴在底板1上面,包被膜2正面的两端分别粘贴玻璃纤维膜3和吸水纸4。在玻璃纤维膜3远离吸水纸4的一端的正面粘贴样品垫5。底板1通常为PVC材质,包被膜2为硝酸纤维素膜(NC膜)。在玻璃纤维膜3上涂覆有胶体金标记SPA蛋白。
如图2所示,在包被膜2上设有检测线I6、检测线II7和质控线8。检测线I6包被***病毒3ABC蛋白,检测线II7包被伪狂犬病毒GE蛋白,质控线8包被兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体。所述检测线I6、检测线II7和质控线8在包被膜2上呈3条线平行排列,依据检测线I6、检测线II7和质控线8是否出现红色色带来进行结果判定。
下述实施例中的主要原材料来源为:***病毒3ABC蛋白、伪狂犬病毒GE蛋白由郑州中道生物技术有限公司制备。其它试剂和材料均可来源于商业途径。所述的实验方法,若无特别说明,均为常规实验方法。
本发明所述试纸条采用3条带显色的胶体金免疫层析法制备,显示条带为红色色带,具体制备方法如下:
1.1包被膜2的制备
在硝酸纤维素膜上分别喷涂***病毒3ABC蛋白、伪狂犬病毒GE蛋白和兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体,并呈3条线平行排列,分组组成检测线I6、检测线II7和质控线8。37℃烘干处理2小时,置装有干燥剂的密封袋中保存备用。
检测线I6:调试喷膜仪,喷液量为1ul/cm,用包被缓冲液稀释***病毒3ABC蛋白,浓度为2.5mg/mL,用喷膜仪喷涂划线。
检测线II7:调试喷膜仪,喷液量为1ul/cm,用包被缓冲液稀释伪狂犬病毒GE蛋白,浓度为3.0mg/mL,用喷膜仪喷涂划线。
质控线8:调试喷膜仪,喷液量为1ul/cm,用包被缓冲液稀释兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体,浓度为1mg/mL,用喷膜仪喷涂划线。
所述包被缓冲液配方:称取牛血清白蛋白0.01g,十二水合磷酸氢二钠30.072g,磷酸二氢钾2.176g,用超纯水溶解,并定容至1000mL。
包被膜2上所划3条线应细致均匀,相邻两线间隔0.4-1.0cm。
1.2玻璃纤维膜3的制备
(1)胶体金溶液的制备
将双蒸水置于磁力搅拌器上加热至沸腾,迅速加入浓度为1%的氯金酸溶液至终浓度为0.02%。煮沸5分钟,之后加入浓度为1%的柠檬酸三钠溶液,加样体积为氯金酸溶液的1.8倍。煮沸10分钟后,冷却至室温,再用双蒸水调整氯金酸浓度为0.02%,常温避光保存备用。
(2)胶体金标记SPA玻璃纤维膜3的制备
用5M碳酸钾调节胶体金溶液PH值至7.5-8.0,按60ug抗体/mL胶体金溶液的比例加入SPA蛋白,混匀后静置5分钟。再按5%体积的量加入10%牛血清白蛋白溶液,混匀后静置5分钟。10000rpm离心30分钟,弃去上清,用标记洗涤液洗涤1次。沉淀用十分之一初始胶体金体积的金标蛋白保存液溶解,然后按照每毫升溶液铺10cm2的量喷涂于玻璃纤维膜3上。真空干燥3小时,置装有干燥剂的密封袋中保存备用。
所述10%牛血清白蛋白溶液:取牛血清白蛋白100g,用双蒸水定容至1000mL。
所述标记洗涤液:取牛血清白蛋白4g,聚乙二醇80002g,聚乙烯吡咯烷酮2g,蔗糖2g,Tris 1.211g,用双蒸水定容至1000mL,并调节PH至8.1。
所述金标蛋白保存液:取牛血清白蛋白25g,聚乙二醇80005g,Tris 10.2g,氢氧化钠2.5g,吐温207.5mL,用双蒸水定容至1000mL,并调节PH至8.5。
1.3大板组条
各组份规格(长×宽):底板1(30cm×7.6cm)、包被膜2(30cm×2.0cm)、样品垫5(30cm×3.0cm)、涂覆胶体金标记SPA蛋白的玻璃纤维膜3(30cm×0.7cm)和吸水纸4(30cm×3.2cm)。
各层的组合方式如下:将包被膜2粘贴在底板1上面,包被膜2正面的两端分别粘贴玻璃纤维膜3和吸水纸4。在玻璃纤维膜3远离吸水纸4的一端的正面粘贴样品垫5。即在底板1上按顺序依次粘贴包被膜2、玻璃纤维膜3、吸水纸4、样品垫5。
1.4切条
用切条机将大板切成单条,每条宽度为3-5cm。
下面再详细描述本发明的试纸条检测原理和结果判定。
2.1试纸条检测原理
本发明试纸条应用双抗原夹心法,用SPA蛋白作为捕获抗原,用***病毒3ABC和伪狂犬病毒GE蛋白作为检测抗原。其原理是当被检样品中含有3ABC或GE抗体时,则在样品垫5处与SPA蛋白结合,形成“SPA抗原-抗体复合物”,并在吸水纸4的作用下向前渗透泳动。当复合物到达检测线16,3ABC抗体与***病毒3ABC蛋白发生特异性结合,形成“SPA抗原-3ABC抗体-3ABC抗原复合物”,在包被膜2上出现肉眼可见的色带。当复合物到达检测线117,GE抗体与伪狂犬病毒GE蛋白发生特异性结合,形成“SPA抗原-GE抗体-GE抗原复合物”,在NC膜上出现肉眼可见的色带。当溶液泳动至质控线8,与兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体结合,在包被膜2上出现肉眼可见的色带。检测时,吸取待检血清样品1滴,滴到样品垫5上,观察检测线I6、II7和质控线8是否出现红色色带,从而判定动物是否被***、伪狂犬病野毒感染。
2.2试纸条结果判定
下面结合附图,具体介绍本发明试纸条的结果判定标准。
如图3所示,包被膜2上的检测线I6、检测线II7和质控线8均出现红色色带,则***和伪狂犬病均为野毒感染阳性。
如图4所示,包被膜2上的检测线I6和质控线8均出现红色色带,检测线II7不出现红色色带,则***野毒感染阳性,而伪狂犬病野毒感染阴性。
如图5所示,包被膜2上的检测线II7和质控线8均出现红色色带,检测线I6不出现红色色带,则***野毒感染阳性和伪狂犬病野毒感染阴性。
如图6所示,包被膜2上的质控线8出现红色色带,检测线I6和检测线II7均不出现红色色带,则***和伪狂犬病均为野毒感染阴性;
当出现以下几种情况时,检测结果无效:包被膜2上的质控线8、检测线I6和检测线II7均不出现红色色带(图7);包被膜2上的质控线8不出现红色色带,检测线I6和检测线II7出现红色色带(图8);包被膜2上的质控线8和检测线I6不出现红色色带,检测线II7出现红色色带(图9);包被膜2上的质控线8和检测线II7不出现红色色带,检测线I6出现红色色带(图10)。
Claims (3)
1.一种***和伪狂犬病二联快速检测试纸条,该试纸条包括底板、包被膜、玻璃纤维膜、吸水纸和样品垫;
其中,包被膜的底面粘贴在底板上,包被膜正面的两端分别粘贴玻璃纤维膜和吸水纸;在玻璃纤维膜远离吸水纸一端的正面粘贴样品垫;在包被膜上设有检测线I、检测线II和质控线,检测线I包被***病毒3ABC蛋白,检测线II包被伪狂犬病毒GE蛋白,质控线包被兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体;玻璃纤维膜上喷涂有葡萄球菌A蛋白胶体金颗粒标记偶联物。
2.根据权利要求1所述的***和伪狂犬病二联快速检测试纸条,其中检测线I、检测线II和质控线三条线呈平行布置,相邻两线间隔0.4-1.0cm。
3.一种***和伪狂犬病二联快速检测试纸条的制备方法,包括以下步骤:
(1)将***病毒3ABC蛋白、伪狂犬病毒GE蛋白、兔抗葡萄球菌A蛋白IgG抗体分别用包被缓冲液稀释后形成浓度为1.0-3.0mg/mL的喷涂液;用喷膜仪在包被膜上分别喷涂划线相应喷涂液,形成检测线I、检测线II和质控线;
(2)将双蒸水置于磁力搅拌器上加热至沸腾,迅速加入氯金酸溶液;煮沸之后加入柠檬酸三钠溶液,加样体积为氯金酸溶液的1.5-3倍;煮沸10-30分钟后,冷却至室温形成胶体金溶液;
(3)用碳酸钾调节胶体金溶液PH值至7.5-8.0,按60ug抗体/mL胶体金溶液的比例加入SPA蛋白,混匀后静置;再按5%体积的量加入10%牛血清白蛋白溶液,混匀后静置;离心弃去上清,用标记洗涤液洗涤;沉淀物用十分之一初始胶体金溶液体积的金标蛋白保存液溶解,然后按照每毫升溶液铺10-15cm2的量喷涂于玻璃纤维膜上,真空干燥后备用;
(4)将步骤(1)中制成的包被膜粘贴在底板上面,再将步骤(3)中制成的玻璃纤维膜粘贴在包被膜的一端,将吸水纸粘贴在包被膜的另一端,在玻璃纤维膜远离吸水纸的一端的正面粘贴样品垫;
(5)用切条机将步骤(4)中制成的大板切成宽度为3-5cm的单条,形成***和伪狂犬病二联快速检测试纸条。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20160921 |
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |