CN105483189A - 一种利巴韦林的制备方法 - Google Patents

一种利巴韦林的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105483189A
CN105483189A CN201610060219.XA CN201610060219A CN105483189A CN 105483189 A CN105483189 A CN 105483189A CN 201610060219 A CN201610060219 A CN 201610060219A CN 105483189 A CN105483189 A CN 105483189A
Authority
CN
China
Prior art keywords
ribavirin
concentration
preparation
cell
crystallization
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201610060219.XA
Other languages
English (en)
Inventor
谢希贤
曹化杰
王法松
陈宁
范晓光
李燕军
徐庆阳
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin University of Science and Technology
Original Assignee
Tianjin University of Science and Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tianjin University of Science and Technology filed Critical Tianjin University of Science and Technology
Priority to CN201610060219.XA priority Critical patent/CN105483189A/zh
Publication of CN105483189A publication Critical patent/CN105483189A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28—N-glycosides
    • C12P19/38—Nucleosides

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明涉及一种利巴韦林的制备方法，以过表达嘌呤核苷磷酸化酶(PNPase)的基因工程菌BL21/pET-His-pupG为生产菌株，采用乳糖诱导培养收集细胞，并利用明胶包埋法对细胞进行固定化处理。在pH7.6的磷酸盐缓冲液中，使用固定化细胞催化底物鸟苷和1,2,4-三氮唑-3-甲酰胺(TCA)连续多批次生产利巴韦林，批次最高转化率可达到83％以上。最后提取转化液中的利巴韦林，产品纯度可达到99％以上，提取过程总收率达75％以上。

Description

一种利巴韦林的制备方法
技术领域
本发明涉及核苷类产品生物技术生产领域，尤其是一种利巴韦林的制备方法。
背景技术
利巴韦林(Ribavirin)为鸟苷、次黄嘌呤核苷类似物，是一种广谱抗病毒药物，对多种DNA和RNA病毒均有较好抑制作用。具有作用位点多、不易产生耐药性、疗效高、毒性低，副作用小等特点，现已用于多种病毒的治疗。在临床上用于治疗丙型肝炎病毒、呼吸道合孢病毒和拉沙热病毒感染。目前利巴韦林的工业化生产方法主要有微生物发酵法、酶法以及化学合成法。发酵法存在着生产周期长、容易污染杂菌、利巴韦林提取工艺复杂以及能耗高等缺点。化学合成法，反应条件苛刻，周期长，需要进行异构体的分离，成本居高不下，而且容易造成环境污染，所以，在工业化生产中受到一定的限制。酶法克服了发酵法和化学法的不足，同时生产成本较低，因而是较为有效的工业化生产方法。
其中，可以作为酶法合成利巴韦林的起始原料有鸟苷、肌苷、腺苷、胞苷或尿苷等。由于目前市场上鸟苷的生产成本较低，而且鸟苷作为反应底物时的分解产物为鸟嘌呤，它的溶解度极低(几乎不溶于水)，使得整个反应平衡倾向于利巴韦林的合成方向，因而可以得到更高的底物转化率。而未反应的底物鸟苷可以被离心后重新利用，反应副产物鸟嘌呤则可以用作药物阿昔洛韦的原料，所以鸟苷经常作为反应底物，选择PNPase作为催化剂。
酶或细胞作为催化剂由于易失活、难以反复使用、不易保藏，限制了工业化应用。全细胞固定化技术与游离酶和细胞催化相比具有很大优势。细胞固定化避免了的酶的提取过程，操作相对容易，并且具有更高的操作稳定性。细胞固定化的方法有很多种，适用于细胞固定化的方法主要有包埋法，吸附法，交联法等，其中包埋法是最为常用的方法。由于细胞被固定化，减少了转化液中由游离细胞裂解产生的蛋白，降低了提取的困难，减少了提取成本。
在现有技术的基础上，研究一种高纯度利巴韦林的制备方法具有非常重要的生产实践价值。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供一种利巴韦林的制备方法，利用酶催化法合成利巴韦林并对利巴韦林分离提取。
为解决上述技术问题，本发明的技术方案是：
本发明所用的利巴韦林生产菌，是将以枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis168(ATCC23857))基因组为模板扩增表达的PNPase基因pupG(核苷酸序列为序列表<400>1所示序列)，与pET-His质粒连接转入EscherichiacoliBL21(DE3)(CICC23796)中，获得的大肠杆菌重组菌BL21/pET-His-pupG。
一种利巴韦林的制备方法，具体方法为：
(1)以基因工程菌BL21/pET-His-pupG为菌种，使用发酵罐培养，获得细胞；
(2)使用明胶包埋细胞，制成固定化重组表达PNPase的全细胞作为催化剂，经酶促反应得到利巴韦林转化液；
(3)利巴韦林转化液提取
a.对利巴韦林转化液8000r/min离心5-10min，获得上清液，将上清液加热至60-80℃，使用1-2％的活性炭脱色20-40min，过滤得滤清液；
b.将滤清液减压蒸发浓缩至1/4-1/3，在0-4℃结晶10-12h，过滤析出的鸟苷，继续浓缩至利巴韦林即将析出为止，加入纯乙醇，至乙醇终浓度90％左右，利巴韦林浓度35-45g/L，在85-95℃加热，充分搅拌溶解利巴韦林，趁热过滤，将上清在0-4℃结晶1-2d，过滤制得利巴韦林结晶；
c.将利巴韦林晶体重新溶解于90％的乙醇，利巴韦林浓度35-45g/L，85-95℃加热溶解过滤，0-4℃结晶10-12h，即重结晶，经过两次重结晶后，离心分离、干燥即可得到利巴韦林纯品。
上述利巴韦林的制备方法，最终利巴韦林晶体纯度达到99％以上，提取过程总收率达到75％以上。
优选的，上述利巴韦林的制备方法，所述步骤(1)的具体步骤包括：
a.斜面活化，37℃培养12-14h，斜面培养基组分(g/L)：蔗糖1，蛋白胨10，牛肉膏10，酵母粉5，NaCl5，琼脂条25，pH7.0-7.2；
b.无菌条件下吸取无菌水于3-5支活化斜面，使用无菌水将菌体重悬后接入5L发酵罐中，初始装液量为3L，通气量2-4L/min，搅拌转速200-500r/min，通过自动流加氨水控制pH在7.0，培养温度35-37℃，培养至OD600＝12-14时，离心收集菌体，发酵培养基(g/L)：蛋白胨10，酵母粉5，KH2PO41，NaCl2，MgSO4·7H2O1，葡萄糖2，乳糖15，pH7.0-7.2。
优选的，上述利巴韦林的制备方法，所述步骤(2)的具体方法包括：明胶浓度15％，戊二醛浓度0.5％，细胞包埋浓度100g/L-400g/L，制成固定化重组表达PNPase的全细胞为催化剂，在20mmol/L的pH7.0-8.0磷酸盐缓冲液中，底物鸟苷和TCA浓度各100mmol/L，进行酶促反应，固定化重组表达PNPase的全细胞用量10g/L-40g/L，反应温度50-60℃，经酶促反应16h-28h生产利巴韦林。
优选的，上述利巴韦林的制备方法，所述步骤(2)中磷酸盐缓冲液pH7.6，酶促反应温度55℃，细胞包埋浓度200g/L，固定化重组表达PNPase的全细胞用量20g/L，反应周期20h，连续反应8批次后固定化细胞酶活力基本没有损失，最高转化率可达83％以上。
优选的，上述利巴韦林的制备方法，所述步骤(2)所得利巴韦林采用HPLC法进行测定，使用Agilent1260型高效液相色谱仪，进样量5μL，流动相：4％乙腈，柱温18.5℃，流速1mL/min，检测波长207nm。
优选的，上述利巴韦林的制备方法，所述步骤(3)b中减压蒸发浓缩条件为：真空度-0.06至-0.1Mpa，温度85-95℃。
本发明的有益效果是：
上述产生利巴韦林的基因工程菌为表达PNPase的大肠杆菌重组菌BL21/pET-His-pupG，通过明胶为固定化细胞包埋材料包埋该细胞进行固定化，利用固定化细胞作为催化剂，同时对多种影响因素进行优化考察，以鸟苷和TCA为底物，催化制备利巴韦林；具有培养细胞成本低，固定化过程简便快捷，酶促反应催化效率高，产物利巴韦林分离简单的特点，因此为固定化细胞法制备利巴韦林的绿色生产工艺提供了一条新的途径，在利巴韦林的工业化生产领域具有良好的产业化前景。
附图说明
图1为利巴韦林液相图，其中，(a)利巴韦林标准品，(b)利巴韦林产品。
具体实施方式
为了使本领域的技术人员更好的理解本发明的技术方案，下面结合具体实施方式对本发明所述技术方案作进一步的详细说明。
(1)菌种构建：以枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis168(ATCC23857))基因组为模板，设计引物并引入酶切位点及保护碱基，扩增表达PNPase基因pupG(核苷酸序列为序列表<400>1所示序列)。质粒pET-His和扩增片段pupG分别经限制性内切酶BamHI和NheI双酶切，纯化回收后，使用连接酶SolutionI在16℃连接12h,连接体系转化DH5α感受态，涂布于Ampr平板，37℃过夜培养。次日挑取平板上长出的单菌落进行菌落PCR，将初步验证为阳性的单菌落转接摇管，放大培养后提取其质粒，将其进行酶切后做进一步验证。将酶切验证正确的质粒转化EscherichiacoliBL21(DE3)(CICC23796)中，获得大肠杆菌重组菌BL21/pET-His-pupG。其中，引物序列为序列表<400>2、<400>3所示序列：CGCGGATCCAAGGACAGAATTGAACGCGCAG(BamHΙ)和CTAGCTAGCGTCTTTTGGTCCTGCATTGATTCAT(NheΙ)。转化过程：将连接体系全部加入DH5α感受态细胞中，混匀后冰浴30min，42℃热激60s，立即冰浴2min，加入900μL预热过的SOC培养基，于37℃复苏1h。8000r/min离心2min，弃部分上清，留200μL左右将菌体重悬后涂布到Ampr平板，并在37℃继续培养。PCR反应条件：第一步在95℃预变性5min，在以下条件下进行25轮循环：94℃变性30s，合适的退火温度下(55℃)退火30s，72℃延伸1min，最后一个循环完成后，72℃继续延伸10min。
(2)细胞培养：以BL21/pET-His-pupG为菌种，使用斜面活化，37℃培养14h。无菌条件下吸取适量无菌水于4支活化斜面，使用无菌水将菌体重悬后接入5L发酵罐中。初始装液量为3L，通气量2-4L/min，搅拌转速200-500r/min，通过自动流加氨水控制pH在7.0，培养温度37℃，培养至OD600＝14时，离心收集菌体。
所用培养基组成如下：斜面培养基组成(g/L)：蔗糖1，蛋白胨10，牛肉膏10，酵母粉5，NaCl5，琼脂条25，pH7.0-7.2。发酵培养基组成(g/L)：蛋白胨10，酵母粉5，KH2PO41，NaCl2，MgSO4·7H2O1，葡萄糖2，乳糖15，pH7.0-7.2。
(3)固定化细胞制备：配置15％的明胶20mL溶解后与细胞混合，加入5％戊二醛2mL充分搅拌，凝固后4℃静置一段时间，切成3mm的小方块，用0.5％的戊二醛浸泡16h，洗涤后备用，细胞包埋浓度200g/L。
(4)固定化细胞催化：以固定化细胞作为催化剂，在20mmol/L的pH7.6磷酸盐缓冲液中，底物鸟苷和TCA浓度各100mmol/L，进行酶促反应，固定化细胞用量20g/L，反应温度55℃，反应20h生产利巴韦林。连续反应8批次后固定化细胞酶活力基本没有损失，最高转化率可达83％以上。
(5)利巴韦林转化液提取：
a.对转化液8000r/min离心8min，获得上清液，将上清液加热至60℃，使用1.5％的活性炭脱色30min，过滤得滤清液。
b.将滤清液减压蒸发浓缩至1/4，在4℃结晶12h，过滤析出的鸟苷，继续浓缩至利巴韦林即将析出为止，加入纯乙醇，至乙醇终浓度90％，利巴韦林浓度40g/L，在95℃加热，充分搅拌溶解利巴韦林，趁热过滤，将上清在4℃结晶2d，过滤制得利巴韦林结晶。
c.将利巴韦林晶体重新溶解于90％的乙醇，利巴韦林浓度40g/L，95℃加热溶解过滤，4℃结晶12h，即重结晶，经过两次重结晶后，离心分离、干燥即可得到利巴韦林纯品。检测方法：采用HPLC法来测定利巴韦林，使用Agilent1260型高效液相色谱仪，色谱柱AccurasilC18(5μm,250×4.6mm)，进样量5L，流动相：4％乙腈，柱温18.5℃，流速1mL/min，检测波长207nm。结果如图1所示，检测利巴韦林晶体纯度为99.1％以上，提取过程总收率为75.2％。
实施例2
步骤(1)-(2)同实施例1。
(3)固定化细胞制备：配置15％的明胶20mL溶解后与细胞混合，加入5％戊二醛2mL充分搅拌，凝固后4℃静置一段时间，切成3mm的小方块，用0.5％的戊二醛浸泡16h，洗涤后备用，细胞包埋浓度100g/L。
(4)固定化细胞催化：以固定化细胞作为催化剂，在20mmol/L的pH7磷酸盐缓冲液中，底物鸟苷和TCA浓度各100mmol/L，进行酶促反应，固定化细胞用量10g/L，反应温度50℃，反应28h生产利巴韦林。
(5)利巴韦林转化液提取：
a.对转化液8000r/min离心10min，获得上清液，将上清液加热至70℃，使用2％的活性炭脱色20min，过滤得滤清液。
b.将滤清液减压蒸发浓缩至1/3，在0℃结晶10h，过滤析出的鸟苷，继续浓缩至利巴韦林即将析出为止，加入纯乙醇，至乙醇终浓度90％，利巴韦林浓度35g/L，在85℃加热，充分搅拌溶解利巴韦林，趁热过滤，将上清在2℃结晶1d，过滤制得利巴韦林结晶。
c.将利巴韦林晶体重新溶解于90％的乙醇，利巴韦林浓度35g/L，85℃加热溶解过滤，2℃结晶11h，即重结晶，经过两次重结晶后，离心分离、干燥即可得到利巴韦林纯品。
实施例3
步骤(1)-(2)同实施例1。
(3)固定化细胞制备：配置15％的明胶20mL溶解后与细胞混合，加入5％戊二醛2mL充分搅拌，凝固后4℃静置一段时间，切成3mm的小方块，用0.5％的戊二醛浸泡16h，洗涤后备用，细胞包埋浓度400g/L。
(4)固定化细胞催化：以固定化细胞作为催化剂，在20mmol/L的pH8磷酸盐缓冲液中，底物鸟苷和TCA浓度各100mmol/L，进行酶促反应，固定化细胞用量40g/L，反应温度60℃，反应16h生产利巴韦林。
(5)利巴韦林转化液提取：
a.对转化液8000r/min离心5min，获得上清液，将上清液加热至80℃，使用1％的活性炭脱色40min，过滤得滤清液。
b.将滤清液减压蒸发浓缩至1/4，在2℃结晶11h，过滤析出的鸟苷，继续浓缩至利巴韦林即将析出为止，加入纯乙醇，至乙醇终浓度90％，利巴韦林浓度45g/L，在90℃加热，充分搅拌溶解利巴韦林，趁热过滤，将上清在0℃结晶1.5d，过滤制得利巴韦林结晶。
c.将利巴韦林晶体重新溶解于90％的乙醇，利巴韦林浓度45g/L，90℃加热溶解过滤，0℃结晶10h，即重结晶，经过两次重结晶后，离心分离、干燥即可得到利巴韦林纯品。
上述参照具体实施方式对该一种利巴韦林的制备方法进行的详细描述，是说明性的而不是限定性的，可按照所限定范围列举出若干个实施例，因此在不脱离本发明总体构思下的变化和修改，应属本发明的保护范围之内。

Claims (6)

1.一种利巴韦林的制备方法，其特征在于：具体方法为：
(1)以基因工程菌BL21/pET-His-pupG为菌种，使用发酵罐培养，获得细胞；
(2)使用明胶包埋细胞，制成固定化重组表达PNPase的全细胞作为催化剂，经酶促反应得到利巴韦林转化液；
(3)利巴韦林转化液提取
a.对利巴韦林转化液8000r/min离心5-10min，获得上清液，将上清液加热至60-80℃，使用1-2％的活性炭脱色20-40min，过滤得滤清液；
b.将滤清液减压蒸发浓缩至1/4-1/3，在0-4℃结晶10-12h，过滤析出的鸟苷，继续浓缩至利巴韦林即将析出为止，加入纯乙醇，至乙醇终浓度90％，利巴韦林浓度35-45g/L，在85-95℃加热，充分搅拌溶解利巴韦林，趁热过滤，将上清在0-4℃结晶1-2d，过滤制得利巴韦林结晶；
c.将利巴韦林晶体重新溶解于90％的乙醇，利巴韦林浓度35-45g/L，85-95℃加热溶解过滤，0-4℃结晶10-12h，即重结晶，经过两次重结晶后，离心分离、干燥即可得到利巴韦林纯品。
2.根据权利要求1所述的利巴韦林的制备方法，其特征在于：所述步骤(1)的具体步骤包括：
a.斜面活化，37℃培养12-14h，斜面培养基组成(g/L)：蔗糖1，蛋白胨10，牛肉膏10，酵母粉5，NaCl5，琼脂条25，pH7.0-7.2；
b.无菌条件下吸取无菌水于3-5支活化斜面，使用无菌水将菌体重悬后接入5L发酵罐中，初始装液量为3L，通气量2-4L/min，搅拌转速200-500r/min，通过自动流加氨水控制pH在7.0，培养温度35-37℃，培养至OD600＝12-14时，离心收集菌体，发酵培养基组成(g/L)：蛋白胨10，酵母粉5，KH2PO41，NaCl2，MgSO4·7H2O1，葡萄糖2，乳糖15，pH7.0-7.2。
3.根据权利要求1所述的利巴韦林的制备方法，其特征在于：所述步骤(2)的具体方法包括：明胶浓度15％，戊二醛浓度0.5％，细胞包埋浓度100g/L-400g/L，制成固定化重组表达PNPase的全细胞为催化剂，在20mmol/L的pH7.0-8.0磷酸盐缓冲液中，底物鸟苷和TCA浓度各100mmol/L，进行酶促反应，固定化重组表达PNPase的全细胞用量10g/L-40g/L，反应温度50-60℃，经酶促反应16h-28h生产利巴韦林。
4.根据权利要求3所述的利巴韦林的制备方法，其特征在于：所述步骤(2)中磷酸盐缓冲液pH7.6，酶促反应温度55℃，细胞包埋浓度200g/L，固定化重组表达PNPase的全细胞用量20g/L，反应周期20h。
5.根据权利要求1所述的利巴韦林的制备方法，其特征在于：所述步骤(2)所得利巴韦林采用HPLC法进行测定，使用Agilent1260型高效液相色谱仪，进样量5μL，流动相：4％乙腈，柱温18.5℃，流速1mL/min，检测波长207nm。
6.根据权利要求1所述的利巴韦林的制备方法，其特征在于：所述步骤(3)b中减压蒸发浓缩条件为：真空度-0.06～-0.1Mpa，温度85-95℃。
CN201610060219.XA 2016-01-28 2016-01-28 一种利巴韦林的制备方法 Pending CN105483189A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610060219.XA CN105483189A (zh) 2016-01-28 2016-01-28 一种利巴韦林的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610060219.XA CN105483189A (zh) 2016-01-28 2016-01-28 一种利巴韦林的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN105483189A true CN105483189A (zh) 2016-04-13

Family

ID=55670460

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610060219.XA Pending CN105483189A (zh) 2016-01-28 2016-01-28 一种利巴韦林的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105483189A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108517326A (zh) * 2017-12-22 2018-09-11 天津科技大学 一种利用透性化细胞制备利巴韦林的方法
CN109134566A (zh) * 2017-08-18 2019-01-04 樊艳芳 一种1/20水利巴韦林化合物

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101974585A (zh) * 2010-11-02 2011-02-16 天津科技大学 一种微生物产酶发酵酶法生产抗病毒药物利巴韦林的工艺
CN102286574A (zh) * 2011-06-14 2011-12-21 天津科技大学 一种采用基因工程菌发酵产酶制备利巴韦林的方法
CN103146785A (zh) * 2013-03-25 2013-06-12 天津科技大学 解淀粉芽孢杆菌添加前体物发酵法生产抗病毒药物利巴韦林的生产工艺

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101974585A (zh) * 2010-11-02 2011-02-16 天津科技大学 一种微生物产酶发酵酶法生产抗病毒药物利巴韦林的工艺
CN102286574A (zh) * 2011-06-14 2011-12-21 天津科技大学 一种采用基因工程菌发酵产酶制备利巴韦林的方法
CN103146785A (zh) * 2013-03-25 2013-06-12 天津科技大学 解淀粉芽孢杆菌添加前体物发酵法生产抗病毒药物利巴韦林的生产工艺

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BARBE等: "Bacillus subtilis subsp. subtilis str. 168 chromosome, complete genome", 《GENBANK DATABASE》 *
WEI LUO等: "Cloning and characterization of purine nucleoside phosphorylase in Escherichia coli and subsequent ribavirin biosynthesis using immobilized recombinant cells", 《ENZYME AND MICROBIAL TECHNOLOGY》 *
YI-XIN TANG等: "Kinetic resolution of DL-pantolactone by immobilized Fusarium moniliforme SW-902", 《PROCESS BIOCHEMISTRY》 *
李浚明: "《植物组织培养基教程（第2版）》", 31 January 2004, 中国农业大学出版社 *
杨书尧 等: "过表达PNP对肌苷生产菌合成利巴韦林的影响", 《天津科技大学学报》 *
范文斌 等: "《发酵工业技术》", 31 August 2014, 重庆大学出版社 *
陈本川 等: "广谱抗病毒药-三氮唑核苷的工艺研究", 《医药工业》 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109134566A (zh) * 2017-08-18 2019-01-04 樊艳芳 一种1/20水利巴韦林化合物
CN108517326A (zh) * 2017-12-22 2018-09-11 天津科技大学 一种利用透性化细胞制备利巴韦林的方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101603015A (zh) 一种地衣芽孢杆菌菌株及用途和用其生产聚γ-谷氨酸的方法
CN107828806A (zh) 一种新型耐葡萄糖的β‑葡萄糖苷酶基因及其应用
CN105861529A (zh) 一种精氨酸脱羧酶及其应用
CN105734092B (zh) 一种酶法制备d-塔格糖的方法
CN104498365A (zh) 一株产甲壳素脱乙酰酶菌株及在发酵产甲壳素脱乙酰酶中的应用
CN105505899A (zh) 一种菊粉内切酶的制备方法及其应用
CN105483189A (zh) 一种利巴韦林的制备方法
CN103205391A (zh) 一种基因工程菌及其应用
CN102174456A (zh) 产谷氨酰胺转氨酶的基因工程菌及其构建方法
CN105801675A (zh) 一种高活性壳聚糖酶控制基因csn及利用该基因生产高活性壳聚糖酶的方法
CN108018252A (zh) 一种中间体2’-脱氧鸟苷的制备方法
CN104789586A (zh) 大肠杆菌基因组整合载体、基因工程菌以及在生产木糖醇中的应用
CN105274041B (zh) 一株重组大肠杆菌及其在生产2-丁醇中的应用
CN102329745B (zh) 高稳定性耐有机溶剂脂肪酶产生菌及脂肪酶和其基因与应用
WO2023025292A1 (zh) 一种凝结芽孢杆菌及其催化生产2&#39;-脱氧腺苷的方法
CN101469318B (zh) (r)-羰基还原酶与甲酸脱氢酶偶联促进(r)-苯基乙二醇的合成
CN103146785B (zh) 解淀粉芽孢杆菌添加前体物发酵法生产抗病毒药物利巴韦林的生产工艺
CN107245471A (zh) 一种重组吸水链霉菌及其在提高井冈霉素a产量中的应用
CN109456898A (zh) 一种球毛壳菌右旋糖酐酶的发酵制备及其应用
CN101942489B (zh) 一种7-磷酸景天庚酮糖的制备方法
CN109943583A (zh) 一种利用基因工程菌制备利巴韦林的方法
CN101875951B (zh) 一种4-磷酸赤鲜糖的制备方法
CN103757086A (zh) 大肠杆菌与酿酒酵母偶联合成s-腺苷甲硫氨酸的制备方法
CN103757035B (zh) 鼠灰链霉菌amp脱氨酶基因的乳酸克鲁维酵母真核表达方法
CN107841497A (zh) 一种植物基因组dna快速提取液及基于该提取液的提取方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20160413

RJ01 Rejection of invention patent application after publication