CN104186295A - 兜兰种子萌发培养基及培养方法 - Google Patents
兜兰种子萌发培养基及培养方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104186295A CN104186295A CN201410514229.7A CN201410514229A CN104186295A CN 104186295 A CN104186295 A CN 104186295A CN 201410514229 A CN201410514229 A CN 201410514229A CN 104186295 A CN104186295 A CN 104186295A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- seed germination
- concentration
- medium
- blue
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- Y02P60/216—
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
Abstract
本发明公开了一种兜兰种子萌发培养基及培养方法。本发明所述的兜兰种子萌发培养基以1/4MS培养基为基础培养基,并添加有抗坏血酸、活性炭、香蕉泥、赤霉素、琼脂粉和白砂糖,能够缩短兜兰种子的萌发时间,提高种子萌发率。
Description
技术领域
本发明涉及兰花组织培养技术领域,特别是涉及一种兜兰种子萌发培养基及培养方法。
背景技术
兜兰,又称“拖鞋兰”、“仙履兰”,是兰科兜兰属(Paphiopedilum)植物的统称。兜兰是兰科植物中最具特色的一个类群,也是最奇特的观赏兰花,以其独特魅力和许多优异特性而备受世界花卉爱好者的钟爱。
近年来,兰花的组织培养技术及试管苗工厂化生产取得了迅猛的发展,但作为兰科较原始的兜兰属,其种子没有胚乳,存在萌发率极低、萌发时间长等问题。现有的兜兰种子萌发培养基通常在1/4MS培养基的基础上,添加质量浓度10%的椰子汁、0.5mg/L的6-BA、0.5mg/L的NAA、6g/L的琼脂粉、30g/L的蔗糖和2g/L的活性炭。然而,6-BA和NAA为广谱性植物生长调节剂,主要用于生根、生芽和诱导原球茎,对打破种子休眠作用较差。因此,采用现有的兜兰种子萌发培养进行培养,难以实现兜兰的快速繁殖,难以满足规模化种植的需求。
发明内容
基于此,有必要针对兜兰种子萌发率低的问题,提供一种能提高兜兰种子萌发率的培养基。
此外,有必要针对兜兰种子萌发率低的问题,提供一种能提高兜兰种子萌发率的培养方法。
一种兜兰种子萌发培养基,其以1/4MS培养基为基础培养基,并添加有抗坏血酸、赤霉素、活性炭、香蕉泥、琼脂粉和白砂糖。
在其中一个实施例中,抗坏血酸的浓度为80~100mg/L,赤霉素的浓度为40~60mg/L,活性炭的浓度为1.8~2g/L,香蕉泥的浓度为40~50g/L,琼脂粉的浓度为6~7g/L,白砂糖的浓度为25~30g/L。
在其中一个实施例中,抗坏血酸的浓度为100mg/L,赤霉素的浓度为50mg/L,活性炭的浓度为2g/L,香蕉泥的浓度为50g/L,琼脂粉的浓度为6g/L,白砂糖的浓度为30g/L。
在其中一个实施例中,所述兜兰种子萌发培养基的pH值为6.0。
一种兜兰种子萌发培养方法,包括以下步骤:
1)取生长健康、授粉140~150天的果荚,用质量浓度为70~75%的酒精浸泡25~30秒,再用质量浓度为0.10~0.12%的氯化汞溶液消毒18~25分钟,再用无菌水清洗干净后,切开果荚,取出种子;
2)种子用浓度为0.05~0.1mol/L的KOH溶液浸泡处理8~10分钟,用无菌水清洗干净后,再用频率为50~60KHz、功率为80~90W的超声波处理25~30分钟,然后接种到本发明所述的兜兰种子萌发培养基中,于暗培养条件下培养至种子萌发,然后于光暗周期为12h光照/12h黑暗、光照强度为1800~2000lux的条件下培养至长成小苗。
在其中一个实施例中,步骤3)中,所述的兜兰种子萌发培养基上铺设有灭菌滤纸,所述的灭菌滤纸经本发明所述的兜兰种子萌发培养基浸泡处理。
本发明的兜兰种子萌发培养基中,采用1/4MS培养基,通过降低大量元素的离子浓度,有利于兜兰种子萌发,提高萌发率;此外,通过抗坏血酸、赤霉素、活性炭和香蕉泥联合作用于种子,能有效促进种子萌发,提高种子萌发率。其中,抗坏血酸为抗氧化剂,对种子无毒副作用,可与褐化所产生的氧化产物——醌类物质发生作用,使其重新还原为酚类物质,从而降低褐化程度,提高种子萌发率;赤霉素能够调节种子的生理状态,通过转录介导因子影响种子中的α-淀粉酶基因,促进α-淀粉酶mRNA的形成和α-淀粉酶的合成,提高α-淀粉酶的水平,从而促进α-淀粉酶水解淀粉,增加种子萌发所需的碳源,打破种子的休眠,促进种子萌发,显著缩短萌发时间;活性炭能够有效吸附种子产生的酚类、醌类物质,抑制褐化,提高种子萌发率;香蕉泥富含氨基酸、激素和酶等多种种子萌发所需物质,可弥补兜兰种子没有胚乳的缺陷,为其提供营养物质,从而提高萌发率,并使原球茎生长健壮;琼脂作为固体培养平台,为植材提供养分、水分与透气的效用,并以白砂糖作为碳源,在萌发时间和萌发率不受影响的前提下,降低了培养基的制备成本。
本发明的兜兰种子萌发培养基中,抗坏血酸的浓度优选为80~100mg/L,若其用量过少,则抗氧化作用不明显;赤霉素的浓度优选为40~60mg/L,若其用量过少,难以促进种子萌发,若其用量过多,则会造成外植体疯长,玻璃化严重;活性炭的浓度优选为1.8~2g/L,若其用量过少,不能充分吸附酚类和醌类物质,褐化抑制效果差,若其用量过多,则除了吸附酚类和醌类物质外,还会吸附培养基中的营养物质,影响种子萌发和外植体生长;香蕉泥的浓度优选为40~50g/L,若其用量过少,则难以满足兜兰种子萌发所需的营养。
本发明的兜兰种子萌发培养基,将pH值控制在6.0,呈弱酸性环境,有利于兜兰种子的萌发,从而提高萌发率,缩短萌发时间。
本发明所述的兜兰种子萌发培养基,通过生化手段,在培养基中添加抗坏血酸,阻止酚类物质氧化成褐色的醌类物质;通过生理手段,在培养基中添加赤霉素和香蕉泥,调节种子生理状况,打破种子休眠,促进种子萌发;并通过物理手段,在培养基中添加活性炭,吸收酚类、醌类物质,减少组织褐化,从而提高种子萌发率。本发明的兜兰种子萌发培养基,通过生化、生理和物理三方面的协同作用,能显著提高兜兰种子的萌发率。
本发明所述的兜兰种子萌发培养方法,采用了本发明的兜兰种子萌发培养基,再通过化学、生理等多方面的同时作用,相互促进,能够显著提高兜兰种子萌发率,种子萌发率高达60%,缩短兜兰种子萌发时间,并降低外植体褐化率。在获取无菌种子后对种子进行KOH溶液浸泡和超声波处理,以打破种子休眠,促进种子萌发。其中,化学方面,采用KOH溶液浸泡,能溶解抑制种子萌发的物质、腐蚀种皮,使种子更容易萌发,提高萌发率,采用KOH溶液而非常用的NaOH溶液,因为KOH的吸水性比NaOH低,能更好地保持种子的水分;而生理方面,采用超声波处理,则可使酶的活性增加,破除种子的休眠。种子经KOH溶液浸泡和超声波处理后,接种到本发明所述的兜兰种子萌发培养基中进行暗培养,能够调节种子生理活动,打破种子休眠,促进种子萌发。种子发芽后及时转移到光暗交替环境下进行培养,以避免原球茎生长膨大、颜色变白,而不能转绿成苗。此外,采用酒精和氯化汞对果荚进行灭菌处理,能够同时杀灭细菌和真菌,达到最佳灭菌效果。
本发明的兜兰种子萌发培养方法中,采用KOH溶液对种子作浸泡处理时,KOH溶液的浓度优选为0.05~0.1mol/L,浸泡时间优选为8~10分钟,若KOH溶液浓度过高或浸泡时间过长,会对兜兰种子造成伤害甚至使之失活,若KOH溶液浓度过低或浸泡时间过短,则促进种子萌发的效果不明显;对种子进行超声波处理时,频率优选为50~60KHz,功率优选为80~90W,处理时间优选为25~30分钟,若超声波处理的频率、功率过高或处理时间过长,会造成种子生理紊乱,破坏种子生理结构,影响种子萌发甚至造成种子失活,若超声波处理的频率、功率过低或处理时间过短,则促进种子萌发的效果不明显;种子暗培养至种子萌发,若暗培养时间过长,会导致外植体黄化,生长不正常和外植体玻璃化,若暗培养时间过短,则促进种子萌发的效果不明显。
此外,通过在种子萌发培养基上铺设经培养基浸泡的灭菌滤纸,能够防止种子陷入培养基中窒息而降低种子萌发率。
具体实施方式
实施例一:本发明所述的兜兰种子萌发培养基的制备
根据表1所示的1/4MS培养基配方以及表2所示的兜兰种子萌发培养基配方,制备本发明所述的兜兰种子萌发培养基。
按配制1100mL培养基的量,分别称取1/4MS培养基中的各成分以及活性炭、香蕉泥、琼脂粉、白砂糖,置于三角瓶中,加入适量纯化水,搅拌溶解,定容至1000mL,并调节pH值至6.0。将三角瓶封口,置于高压灭菌锅中,于121℃灭菌20min,然后置于超净工作台中自然冷却,得到灭菌培养基母液,备用。
按配制1100mL培养基的量,分别称取抗坏血酸和赤霉素,加入适量纯化水溶解,混匀,定容至100mL,在超净工作台中过滤灭菌,备用。
在超净工作台中,待灭菌培养基母液冷却至60℃后,加入灭菌后的抗坏血酸和赤霉素溶液,混匀,制得1100mL兜兰种子萌发培养基。
取滤纸,裁剪成与组织培养瓶相匹配的大小,置于高压灭菌锅在121℃下灭菌20min,灭菌后放到超净工作台中,并用所制得的兜兰种子萌发培养基浸泡,备用。
取所制得的兜兰种子萌发培养基,分装至组织培养瓶中,晾凉,待其凝固后在其表面铺设经培养基浸泡后的无菌滤纸,然后将组织培养瓶封口,备用。
表1 1/4MS培养基的成分及其用量
备注:1/4MS培养基中的大量元素用量为标准MS培养基的大量元素用量的1/4。
表2 兜兰种子萌发培养基的成分及其用量
成分 | 终浓度 |
1/4MS培养基 | - |
抗坏血酸 | 100mg/L |
赤霉素 | 50mg/L |
活性炭 | 2g/L |
香蕉泥 | 50g/L |
琼脂粉 | 6g/L |
白砂糖 | 30g/L |
实施例二:本发明所述的兜兰种子萌发培养方法
选取生长健康、授粉140天的果荚,用质量浓度为75%的酒精浸泡30秒,再用质量浓度为0.1%的氯化汞溶液消毒20分钟,再用无菌水清洗干净后,切开果荚,取出种子,备用。
取实施例一制备的组织培养瓶备用,该组织培养瓶装有固态的兜兰种子萌发培养基,培养基的表面铺设有经培养基浸泡后的无菌滤纸。
取消毒处理后得到的无菌种子,用浓度为0.1mol/L的KOH溶液浸泡处理10分钟,用无菌水清洗干净后,再用频率为60KHZ、功率为90W的超声波处理30分钟,然后接种到实施例一制备的组织培养瓶中。将接种后的组织培养瓶置于人工气候箱中,于暗培养条件下培养12天至种子萌发,人工气候箱的环境参数设置为:温度26±1℃;然后于光暗周期为12h光照/12h黑暗、光照强度为2000lux、温度为25±1℃的条件下培养至长成小苗。
实施例三:本发明所述的兜兰种子萌发培养基的测试
根据表1所示的1/4MS培养基配方以及表3所示的兜兰种子萌发培养基配方,参照实施例一所述的培养基制备方法,分别制备各试验组、对照组的兜兰种子萌发培养基。
表3 兜兰种子萌发培养基
选取生长健康、授粉140天的果荚,用质量浓度为75%的酒精浸泡30秒,再用质量浓度为0.1%的氯化汞溶液消毒20分钟,再用无菌水清洗干净后,切开果荚,取出种子,在无菌环境下,分别接种于表3所示各试验组、对照组的培养基中,然后于光暗周期为12h光照/12h黑暗、光照强度为2000lux、温度为25±1℃的条件下进行培养。培养30天后记录种子萌发率、萌发时间以及褐化率,结果如表4所示。
表4 兜兰种子萌发率、萌发时间、褐化率测试结果
备注:综合评分y=a*0.5-b*0.3-c*0.2。
由表4的试验结果可知,采用本发明所述的兜兰种子萌发培养基,能够显著提高兜兰种子萌发率,缩短兜兰种子萌发时间,并降低其褐化率。由对照组2、对照组3与试验组9的结果对比可见,赤霉素与抗坏血酸之间存在协同促进作用,两者同时使用时,能够进一步提高兜兰种子萌发率,缩短种子萌发时间。
实施例四:本发明所述的兜兰种子萌发培养方法的测试
选取生长健康、授粉140天的果荚,用质量浓度为75%的酒精浸泡30秒,再用质量浓度为0.1%的氯化汞溶液消毒20分钟,再用无菌水清洗干净后,切开果荚,取出种子,备用。
参照实施例二所述的兜兰种子萌发培养方法,按照表5所示的处理方法和培养条件,将消毒处理后得到的无菌种子接种于兜兰种子萌发培养基后,分别对各试验组、对照组的种子进行培养。培养30天后记录种子萌发率和萌发时间,结果如表5所示。
表5 兜兰种子萌发培养条件及其试验结果
备注:1.“+”表示处理;“-”表示不处理;
2.综合评分y=a*0.7-b*0.3;
3.对照组4以及各试验组均采用实施例一所制得的兜兰种子萌发培养基,对照组5、对照组6采用1/4MS培养基并添加有6g/L的琼脂粉、30g/L的蔗糖,对照组7采用1/4MS培养基并添加有10%的椰子汁、0.5mg/L的6-BA、0.5mg/L的NAA、6g/L的琼脂粉、30g/L的蔗糖和2g/L的活性炭。
由表5的试验结果可知,在采用本发明所述的兜兰种子萌发培养基的基础上,再通过KOH溶液浸泡处理、超声波处理和接种后暗培养处理的相互作用,以及通过铺设经培养基浸泡的无菌滤纸,能够进一步显著缩短兜兰种子的萌发时间,提高种子萌发率。此外,由对照组4、5、7的试验结果可知,本发明所述兜兰种子萌发培养基的培养效果,明显优于基础培养基及现有的兜兰种子萌发培养基。有对照组5、对照组6的试验结果可知,在培养基一致的条件下,采用本发明所述的兜兰种子萌发培养条件,亦能显著提高兜兰种子萌发率,缩短种子萌发时间。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (6)
1.一种兜兰种子萌发培养基,其特征在于:以1/4MS培养基为基础培养基,并添加有抗坏血酸、赤霉素、活性炭、香蕉泥、琼脂粉和白砂糖。
2.根据权利要求1所述的兜兰种子萌发培养基,其特征在于:抗坏血酸的浓度为80~100mg/L,赤霉素的浓度为40~60mg/L,活性炭的浓度为1.8~2g/L,香蕉泥的浓度为40~50g/L,琼脂粉的浓度为6~7g/L,白砂糖的浓度为25~30g/L。
3.根据权利要求2所述的兜兰种子萌发培养基,其特征在于:抗坏血酸的浓度为100mg/L,赤霉素的浓度为50mg/L,活性炭的浓度为2g/L,香蕉泥的浓度为50g/L,琼脂粉的浓度为6g/L,白砂糖的浓度为30g/L。
4.根据权利要求1至3的其中之一所述的兜兰种子萌发培养基,其特征在于:所述兜兰种子萌发培养基的pH值为6.0。
5.一种兜兰种子萌发培养方法,包括以下步骤:
1)取生长健康、授粉140~150天的果荚,用质量浓度为70~75%的酒精浸泡25~30秒,再用质量浓度为0.10~0.12%的氯化汞溶液消毒18~25分钟,再用无菌水清洗干净后,切开果荚,取出种子;
2)种子用浓度为0.05~0.1mol/L的KOH溶液浸泡处理8~10分钟,用无菌水清洗干净后,再用频率为50~60KHz、功率为80~90W的超声波处理25~30分钟,然后接种到权利要求1所述的兜兰种子萌发培养基中,于暗培养条件下培养至种子萌发,然后于光暗周期为12h光照/12h黑暗、光照强度为1800~2000lux的条件下培养至长成小苗。
6.根据权利要求5所述的兜兰种子萌发培养方法,其特征在于:步骤3)中,所述的兜兰种子萌发培养基上铺设有灭菌滤纸,所述的灭菌滤纸经权利要求1所述的兜兰种子萌发培养基浸泡处理。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410514229.7A CN104186295B (zh) | 2014-09-29 | 2014-09-29 | 兜兰种子萌发培养基及培养方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410514229.7A CN104186295B (zh) | 2014-09-29 | 2014-09-29 | 兜兰种子萌发培养基及培养方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104186295A true CN104186295A (zh) | 2014-12-10 |
CN104186295B CN104186295B (zh) | 2017-03-15 |
Family
ID=52071816
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410514229.7A Active CN104186295B (zh) | 2014-09-29 | 2014-09-29 | 兜兰种子萌发培养基及培养方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104186295B (zh) |
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105325274A (zh) * | 2015-10-30 | 2016-02-17 | 华南农业大学 | 一种兜兰种子萌发培养基及培养方法与应用 |
CN106305113A (zh) * | 2016-08-29 | 2017-01-11 | 宿州市埇桥区杨园种植专业合作社 | 一种提高洋葱发芽率的种植方法 |
CN106717265A (zh) * | 2016-12-02 | 2017-05-31 | 黑龙江省农业科学院草业研究所 | 一种羊草种子高效萌发的方法 |
CN107056414A (zh) * | 2017-01-23 | 2017-08-18 | 中国林业科学研究院林业研究所 | 一种广谱性热带兰无菌播种培养基二 |
CN107285933A (zh) * | 2017-08-23 | 2017-10-24 | 太仓市新滨农场专业合作社 | 一种农作物种子育苗培养基 |
CN107493728A (zh) * | 2017-09-12 | 2017-12-22 | 中国科学院华南植物园 | 一种利用超声波处理提高超低温保存的海伦兜兰种子萌发率的方法 |
CN108157166A (zh) * | 2018-01-24 | 2018-06-15 | 董春燕 | 一种兜兰新品种培育及组培快繁方法 |
CN110809935A (zh) * | 2019-11-08 | 2020-02-21 | 广东省农业科学院果树研究所 | 一种提高香蕉种子萌发率的方法 |
CN110881478A (zh) * | 2019-11-07 | 2020-03-17 | 中国林业科学研究院林业研究所 | 蜡壳属真菌促进树兰属植物和兜兰属植物种子萌发的方法 |
CN114507361A (zh) * | 2022-02-28 | 2022-05-17 | 新疆农业大学 | 一种无土栽培种子用琼脂活性炭水凝胶及其制备方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2001251962A (ja) * | 2000-03-14 | 2001-09-18 | Iwate Prefecture | アツモリソウ属植物用培養液,アツモリソウ属植物用培地及びアツモリソウ属植物の培養方法 |
-
2014
- 2014-09-29 CN CN201410514229.7A patent/CN104186295B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2001251962A (ja) * | 2000-03-14 | 2001-09-18 | Iwate Prefecture | アツモリソウ属植物用培養液,アツモリソウ属植物用培地及びアツモリソウ属植物の培養方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
丁长春等: "影响杏黄兜兰种子萌发的因素", 《云南植物研究》 * |
尤佳妍等: "小叶兜兰的种子发育和无菌萌发", 《植物生理学报》 * |
曾宋君等: "彩云兜兰的离体快速繁殖", 《植物生理学通讯》 * |
江玲等: "植物激素ABA和GA调控种子休眠和萌发的研究进展", 《江苏农业学报》 * |
Cited By (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105325274A (zh) * | 2015-10-30 | 2016-02-17 | 华南农业大学 | 一种兜兰种子萌发培养基及培养方法与应用 |
CN106305113A (zh) * | 2016-08-29 | 2017-01-11 | 宿州市埇桥区杨园种植专业合作社 | 一种提高洋葱发芽率的种植方法 |
CN106717265A (zh) * | 2016-12-02 | 2017-05-31 | 黑龙江省农业科学院草业研究所 | 一种羊草种子高效萌发的方法 |
CN107056414A (zh) * | 2017-01-23 | 2017-08-18 | 中国林业科学研究院林业研究所 | 一种广谱性热带兰无菌播种培养基二 |
CN107285933A (zh) * | 2017-08-23 | 2017-10-24 | 太仓市新滨农场专业合作社 | 一种农作物种子育苗培养基 |
CN107493728A (zh) * | 2017-09-12 | 2017-12-22 | 中国科学院华南植物园 | 一种利用超声波处理提高超低温保存的海伦兜兰种子萌发率的方法 |
CN108157166A (zh) * | 2018-01-24 | 2018-06-15 | 董春燕 | 一种兜兰新品种培育及组培快繁方法 |
CN110881478A (zh) * | 2019-11-07 | 2020-03-17 | 中国林业科学研究院林业研究所 | 蜡壳属真菌促进树兰属植物和兜兰属植物种子萌发的方法 |
CN110809935A (zh) * | 2019-11-08 | 2020-02-21 | 广东省农业科学院果树研究所 | 一种提高香蕉种子萌发率的方法 |
CN114507361A (zh) * | 2022-02-28 | 2022-05-17 | 新疆农业大学 | 一种无土栽培种子用琼脂活性炭水凝胶及其制备方法 |
CN114507361B (zh) * | 2022-02-28 | 2024-01-19 | 新疆农业大学 | 一种无土栽培种子用琼脂活性炭水凝胶及其制备方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104186295B (zh) | 2017-03-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104186295A (zh) | 兜兰种子萌发培养基及培养方法 | |
CN102002474B (zh) | 一种以川贝母植株叶为外植体的鳞茎快速增殖方法 | |
CN105638477A (zh) | 一种竹叶石斛种子快速繁殖方法 | |
CN104041412B (zh) | 一种贵州半蒴苣苔的组织培养快速繁殖方法 | |
CN104106468B (zh) | 一种五指毛桃的组织培养快速繁殖方法 | |
CN103688865B (zh) | 诱导培养基、及提高蝴蝶兰花梗成活率的方法 | |
CN103109743A (zh) | 一种湖州百合组培快繁方法 | |
CN105359781A (zh) | 一种辣椒的种植方法 | |
CN105165581A (zh) | 一种辣椒的水培方法 | |
CN106171978A (zh) | 一种滇黄精的组培快繁方法 | |
CN104541659A (zh) | 一种促进心叶紫金牛种子萌发的方法 | |
CN105191792B (zh) | 扁桃斑鸠菊的快速繁殖方法 | |
CN103460854B (zh) | 一种青钱柳种子在鲁南地区催芽方法 | |
CN101926284B (zh) | 一种川附子组织培养及快速繁殖方法 | |
CN102934582A (zh) | 辣椒发芽期病虫害防治管理 | |
CN104737668A (zh) | 一种提高野大豆种子发芽率和成活率的方法及野大豆种子 | |
CN106172008A (zh) | 一种卡特兰快速培养繁殖方法 | |
CN105830918A (zh) | 一种提高千层塔芽孢移栽成活率的方法 | |
CN106165648B (zh) | 一种紫荆组培培养基及培养方法 | |
CN105432470B (zh) | 铜皮石斛的组织培养方法 | |
CN104585040B (zh) | 一种利用走马胎幼芽胚轴快速繁殖其种苗的方法 | |
CN103766039A (zh) | 一种打破青天葵球茎休眠的方法 | |
CN104396746A (zh) | 一种黄花贝母不定芽诱导增殖方法 | |
CN104920218A (zh) | 地皮消的繁殖方法 | |
CN107821169A (zh) | 一种滇黄***苗的组培方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
TR01 | Transfer of patent right |
Effective date of registration: 20191119 Address after: Room 607, block B, University Pioneer Park, No. 99, University Road, Tongshan District, Xuzhou hi tech Industrial Development Zone, Jiangsu Province Patentee after: Jiangsu Luzi Mali Food Co., Ltd Address before: 528313 Flower World Orchid Science Park, Chencun village, Shunde District, Foshan, Guangdong Patentee before: Foshan Shunde District Todayorchid Biological Technology Co., Ltd. |
|
TR01 | Transfer of patent right |