CN104073469B - 裂解水产致病菌噬菌体的分离与筛选方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种裂解水产致病菌噬菌体的分离与筛选方法,噬菌体名称为ΦA8‑29,分类名称为Aeromonas veronii phage,保藏编号:CGMCC No.9152;维氏气单胞菌名称为A8‑29,分类名称为Aeromonas veronii,保藏编号:CGMCC No.9093,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年04月25日。本发明提供了一种水产致病菌噬菌体的筛选与鉴定方法,分离得到的噬菌体能够用于预防和控制水产致病菌的感染,避免或减少抗菌素在水产养殖中的使用,发展水产养殖的绿色模式。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,涉及一种裂解水产致病菌噬菌体的分离与筛选方法。
背景技术
我国2007年全国水产养殖面积5633.21kha,养殖产量4747.5万吨,占全世界水产养殖总产量的2/3以上,养殖产量超过捕捞产量。每年约1/10的养殖面积发生病害,每年因病害损失的养殖产量约占30%,直接经济损失超过百亿元,其中细菌性鱼病的发病率和致死率都接近或超过50%。
重要水产病原菌包括弧菌属、气单胞菌属、邻单胞菌属、黄杆菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、巴氏杆菌属菌属、爱德华菌、迟缓爱德华氏菌、耶尔森氏菌属、沙雷氏菌、葡萄球菌属、链球菌属、诺卡氏菌属、梭状杆菌属和结核菌属等。
水产养殖中细菌性疾病的预防和控制,主要通过饲料中添加抗菌素实现。我国年产抗菌素为40万吨,其中近一半用于畜牧水产养殖。长期使用抗菌素的结果,直接导致90%的细菌对一种以上抗菌素具有耐药性,20%的细菌对5种以上抗菌素具有耐药性,降低了治疗效果,造成了环境污染,对食品安全产生极大威胁。因此,我们迫切需要一个能够控制水产致病菌的代替方法。
噬菌体(Bacteriophage或phage)是自然界存在数量最多的生物,约有1031个噬菌体。噬菌体是感染细菌等微生物的病毒,能够特异地裂解宿主菌,同时与宿主菌是否耐药无关。噬菌体不感染人类、动物、植物以及其它非宿主的细菌,几乎对环境不产生压力。另一方面,某些噬菌体能够编码一种酶,可以降解宿主菌的胞外多糖聚合物(EPS),从而破坏致病菌形成的生物被膜。这些特性使噬菌体可以用来控制致病菌的感染。
虽然噬菌体广泛存在于自然界的各种环境中,但是噬菌体的分布存在不确定性。很多情况下,采用常规方法,很难分离到噬菌体,这种情况出现在多种致病菌噬菌体的分离。本发明涉及的方法,采用从特定环境分离致病菌,并以该致病菌为宿主菌,从相同样品中,直接分离特异性的噬菌体,解决了噬菌体的来源于特异性问题,分离到的噬菌体可直接用于水产品细菌性疾病的防控。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足之处,提供一种高效快速地水产致病菌噬菌体的筛选与鉴定方法,采用本方法可以高效快速地筛选针对不同致病菌的噬菌体,能够避免或减少抗菌素在水产养殖中的使用,对于发展水产养殖的绿色模式,对于食品安全,都具有重要价值
本发明另外一个目的是分离噬菌体与维氏气单胞,命名且已保藏。
本发明的目的是通过以下技术方案实现的
一株能够裂解维氏气单胞菌的噬菌体,噬菌体名称为ΦA8-29,分类名称为Aeromonas veronii phage,保藏编号:CGMCC No.9152;保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年04月25日。
噬菌体ΦA8-29裂解的维氏气单胞菌,名称为A8-29,分类名称为Aeromonasveronii,保藏编号:CGMCC No.9093,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年04月25日。
一种裂解水产致病菌噬菌体的分离与筛选方法,步骤如下:
⑴水产致病菌的分离
收集各种水产品样品,将样品匀浆,稀释匀浆液,取稀释液100μl在选择性培养基上涂板,选择性培养基包括SS培养基、TCBS培养基和麦康凯培养基,37℃倒置培养24-48h,挑取菌落,在同样的选择培养基上划线纯化菌株,反复纯化三次,将形态一致的菌株用灭菌的牙签挑取单菌落,接入LB液体培养基中,37℃振荡培养12h,取对数期菌液与甘油溶液混和后置于-80℃冰箱保藏;
⑵噬菌体的分离
将所有养殖种类的肠道内容物各1g置于50mlTSB-YE培养基中,37℃震荡培养72h,将培养物加入50ml离心管,加1ml氯仿轻轻混匀几次,10000×g离心5min,取上清液置于4℃储存,该上清液作为分离噬菌体的来源;
⑶培养上述分离的水产致病菌至对数生长期,与上述制备的上清液混和,再与0.6%琼脂培养基混匀倒双层平板,37℃培养4-8h,观察噬菌斑的出现,挑取单个噬菌斑,置于LB液体培养基中重悬,制备噬菌体溶液,稀释噬菌体溶液,与对数期的指示菌混匀,再与0.6%琼脂培养基混匀到双层平板,37℃培养4h后观察噬菌斑,重复此步骤纯化噬菌体,
⑷宿主菌基因组DNA的制备
将宿主菌接种于LB液体培养基中,37℃振荡培养过夜后,菌液离心弃上清,沉淀中加入TE缓冲液重悬菌体,加溶菌酶室温放置10min,加入SDS和蛋白酶K混匀后,60℃水浴保温6h,加入等体积的苯酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),振荡混匀,离心取上清液于新的离心管中,抽提至没有蛋白膜为止;向上清液中加入氯仿抽提,取上清液于新的离心管中,向上清液中加入2倍体积的95%乙醇(预冷),振荡混匀,离心弃掉上清液;沉淀中加入70%乙醇,10000rpm离心5min,弃掉上清,室温下干燥;加入双蒸水或TE缓冲液(pH8.0),获得宿主菌染色体DNA溶液,用0.8%琼脂糖凝胶电泳检测,
⑸扩增宿主菌的16SrRNA基因
采用PCR方法,扩增宿主菌的16SrRNA基因片段,PCR扩增产物直接进行DNA序列测定,获得序列经过同源性分析,确定指示菌的生物学分类,
⑹噬菌体保存
噬菌体纯化后,将噬菌体在相应的宿主菌内扩增,用滤膜过滤除菌,添加无菌甘油,混匀,-80℃保存备用;
⑺噬菌体效价测定
将噬菌体溶液稀释,噬菌体稀释液与对数生长期的宿主菌混匀,倒双层平板,37℃培养4-6h后,进行噬菌斑计数,计算噬菌体效价或滴度,
⑻噬菌体的宿主范围分析
培养噬菌体的宿主菌和其它分类相近或相同的细菌,通过双层平板法或直接点样法,观察噬菌体裂解上述细菌的图谱,确定该噬菌体的宿主范围。
本发明的优点和积极效果如下:
1、本申请分离的噬菌体用于研制针对重要水产致病菌的噬菌体制剂,控制由致病菌引起的水产品的细菌性感染,避免或减少抗菌素在水产养殖过程中的使用,减少多重耐药性细菌的富集,对食品安全具有重要意义。
2、本发明提供的方法可以高效快速地筛选针对不同致病菌的噬菌体,能够避免或减少抗菌素在水产养殖中的使用,对于发展水产养殖的绿色模式,对于食品安全,都具有重要价值。
3、本发明筛选的噬菌体命名ΦA8-29,分类名称为Aeromonas veronii phage,保藏编号:CGMCC No.9152;效价测定为3.3×1010pfu/ml,分离得到的烈性噬菌体能够用于预防和控制水产致病菌的感染,避免或减少抗菌素在水产养殖中的使用,发展水产养殖的绿色模式。
具体实施方式
下面通过具体实施例对发明作进一步详述,以下实施例只是描述性的,不是限定性的,不能以此限定本发明的保护范围。
一种裂解水产致病菌噬菌体的分离与筛选方法,步骤如下:
⑴水产致病菌的分离
收集各种水产品样品,将样品匀浆,稀释匀浆液,取稀释液100μl在选择性培养基上涂板,选择性培养基包括SS培养基、TCBS培养基和麦康凯培养基,37℃倒置培养24-48h,挑取菌落,在同样的选择培养基上划线纯化菌株,反复纯化三次,将形态一致的菌株用灭菌的牙签挑取单菌落,接入LB液体培养基中,37℃振荡培养12h,取对数期菌液与甘油溶液混和后置于-80℃冰箱保藏;
⑵噬菌体的分离
将所有种类(鱼)的肠道内容物各1g置于50ml TSB-YE培养基中,37℃震荡培养72h,将培养物加入50ml离心管,加1ml氯仿轻轻混匀几次,10000×g离心5min,取上清液置于4℃储存,该上清液作为分离噬菌体的来源。
⑶培养上述分离的水产致病菌至对数生长期,与上述制备的上清液混和,再与0.6%琼脂培养基混匀倒双层平板,37℃培养4-8h,观察噬菌斑的出现。挑取单个噬菌斑,置于LB液体培养基中重悬,制备噬菌体溶液,稀释噬菌体溶液,与对数期的指示菌混匀,再与0.6%琼脂培养基混匀到双层平板,37℃培养4h后观察噬菌斑,重复此步骤纯化噬菌体。
⑷宿主菌基因组DNA的制备
将宿主菌接种于LB液体培养基中,37℃振荡培养过夜后,菌液离心弃上清,沉淀中加入TE缓冲液重悬菌体,加溶菌酶室温放置10min,加入SDS和蛋白酶K混匀后,60℃水浴保温6h,加入等体积的苯酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),振荡混匀,离心取上清液于新的离心管中,抽提至没有蛋白膜为止;向上清液中加入氯仿抽提,取上清液于新的离心管中,向上清液中加入2倍体积的95%乙醇(预冷),振荡混匀,离心弃掉上清液;沉淀中加入70%乙醇,10000rpm离心5min,弃掉上清,室温下干燥;加入双蒸水或TE缓冲液(pH8.0),获得宿主菌染色体DNA溶液,用0.8%琼脂糖凝胶电泳检测。
⑸扩增宿主菌的16S rRNA基因
采用PCR方法,扩增宿主菌的16S rRNA基因片段,PCR扩增产物直接进行DNA序列测定,获得序列经过同源性分析,确定指示菌的生物学分类。
⑹噬菌体保存
噬菌体纯化后,将噬菌体在相应的宿主菌内扩增,用滤膜过滤除菌,添加无菌甘油,混匀,-80℃保存备用;
⑺噬菌体效价测定
将噬菌体溶液稀释,噬菌体稀释液与对数生长期的宿主菌混匀,倒双层平板,37℃培养4-6h后,进行噬菌斑计数,计算噬菌体效价或滴度。
⑻噬菌体的宿主范围分析
培养噬菌体的宿主菌和其它分类相近或相同的细菌,通过双层平板法或直接点样法,观察噬菌体裂解上述细菌的图谱,确定该噬菌体的宿主范围。
筛选实施例1
按照上述技术方案,分离到1株能够裂解维氏气单胞菌的噬菌体和相应的宿主菌维氏气单胞菌1株。噬菌体名称为ΦA8-29,分类名称为Aeromonas veroniiphage,保藏编号:CGMCC No.9152;维氏气单胞菌名称为A8-29,分类名称为Aeromonas veronii,保藏编号:CGMCC No.9093,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年04月25日。
⑴标本:收集不同品种的淡水鱼等水产品样品。
⑵标本处理:收集鱼的胃肠道内容物,置于1.5ml离心管中,4℃保存。
⑶水产致病菌的分离:将胃肠道内容物混匀,悬浮液用生理盐水做系列稀释。分别取10-1和10-2稀释度稀释液100μl,在选择性固体培养基SS、TCBS和麦康凯上分别涂板,用灭菌的涂布器涂布,涂布至均匀,等平板干燥之后37℃倒置培养24-48h,从培养箱内取出平板,挑取菌落,在选择性培养基上进行三区划线,37℃倒置培养12-16h,反复纯化三次,将形态一致的菌株用灭菌的牙签挑取单菌落,接入5mlLB液体培养基中,37℃200rpm振荡培养12h,取对数期菌液1ml加入冻存管,接着加入0.5ml50%的甘油溶液混匀后于-80℃冰箱保藏。
⑷噬菌体的富集:取肠道内容物各1ml,置于50mlTSB-YE培养基中,37℃震荡培养72h。将培养物加入50ml离心管,加1ml氯仿轻轻混匀几次后,10000×g离心5min,取上清液置于4℃储存。此时,混合上清液作为分离噬菌体的来源。
⑸噬菌体的分离与纯化:取100μl上清液于离心管中,加入200μl处于对数生长期的指示菌混匀,10min后,将混合物与5mL0.6%的半固体LB培养基(60℃)混匀,倒双层平板,37℃培养4h,观察噬菌斑的出现。用接种环挑取噬菌斑,将噬菌体重悬于1mLLB液体培养基中。稀释噬菌体溶液,分别取各稀释度100μl,分别与200μl宿主菌悬液混匀5min,再与5mL0.6%琼脂培养基(60℃)混匀,迅速倒入1.5%底层琼脂培养基上,37℃培养4h后,观察噬菌斑的形态,重复此步骤纯化噬菌斑。
⑹噬菌体的保存:挑取噬菌斑,与对数期的宿主菌混合,37℃培养4h,加入几滴氯仿,放置10min,10000×g离心5min,取上清液用0.22μm滤膜过滤进一步除菌,加入无菌甘油,使其终浓度为30%(v/v),混匀后置于-80℃保存备用。
⑺宿主菌的分子鉴定:首先制备宿主菌的基因组DNA,挑取已经分离噬菌体的宿主菌的单菌落,接种于5mLLB液体培养基中,37℃振荡培养8-10h;取富集培养后的菌液1.5mL,10000rpm离心4-5min;弃上清,沉淀中加入0.5mL TE缓冲液重悬菌体;加入20mg/mL溶菌酶10μl,室温放置10min;加入20%SDS10μl,摇匀,加入10mg/mL蛋白酶K50μl,振荡混匀,60℃水浴保温2h;加入等体积的苯酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),振荡混匀,10000rpm离心10min,取上清液于新的离心管中,重复苯酚氯仿抽提3-7次;向上清液中加入等体积氯仿抽提,振荡混匀,10000rpm离心10min,取上清液于新的离心管中;向上清液中加入1/10体积的NaAc(3mol/L),2倍体积的95%乙醇(预冷),振荡混匀,10000rpm离心10min,弃掉上清液;沉淀中加入200μl70%乙醇,10000rpm离心5min,弃掉乙醇,室温下干燥;加入100-200μL双蒸水或TE缓冲液(pH8.0)重悬沉淀;0.8%琼脂糖凝胶电泳检测。
利用PCR方法,以制备的DNA作为模板,扩增16SrDNA基因片段,所用引物序列包括正向引物:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'(E.coli bases 8 to27)和反向引物:5'-TACCTTGTTACGACTT-3'(E.coli bases 1507to1492)。扩增产物直接测序,获得的序列在GenBank中利用Basic Local Alignment SearchTool(BLAST 2.2.26)工具进行同源性分析比对,确定宿主菌为维氏气单胞菌。
⑻噬菌体效价测定:噬菌体溶液用生理盐水做系列稀释,分别取10-6、10-7和10-8稀释液各100μl,分别与200μl对数生长期的气单胞菌混合均匀,倒双层平板,37℃培养4-6h后,记录噬菌斑数量,计算噬菌体效价,噬菌体溶液滴度或效价为3.3×1010pfu/ml。
筛选实施例2
采取相同的技术方案和步骤,采集不同的水产品标本,从标本中分离得到温和气单胞菌的噬菌体ФA33,该噬菌体的效价或滴度为3.0×109pfu/ml。
筛选实施例3
采取相同的技术方案和步骤,采集不同的水产品标本,从标本中分离得到普通变形杆菌的噬菌体ФP5-9,该噬菌体的效价或滴度为6.5×106pfu/ml。
在水产品养殖过程中,能够导致细菌性疾病的重要水产病原菌有多种,包括弧菌属、气单胞菌属、邻单胞菌属、黄杆菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、巴氏杆菌属菌属、爱德华菌、迟缓爱德华氏菌、耶尔森氏菌属、沙雷氏菌、葡萄球菌属、链球菌属、诺卡氏菌属、梭状杆菌属和结核菌属等。利用本发明的方法,可以高效快速地筛选针对不同致病菌的噬菌体,能够避免或减少抗菌素在水产养殖中的使用,对于发展水产养殖的绿色模式,对于食品安全,都具有重要价值。
Claims (1)
1.一株能够裂解维氏气单胞菌的噬菌体,其特征在于:噬菌体名称为ΦA8-29,分类名称为Aeromonas veroniiphage,保藏编号:CGMCC No.9152;保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年05月06日。
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维氏气单胞菌研究进展;吴同垒 等;《中国兽药杂志》;20111231;第45卷(第7期);第41-44页 * |
鲍曼不动杆菌烈性噬菌体的分离与纯化;梁莉 等;《生物学杂志》;20100831;第27卷(第4期);第88-93页 * |
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