CN103469309B - 一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 - Google Patents
一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103469309B CN103469309B CN201310413590.6A CN201310413590A CN103469309B CN 103469309 B CN103469309 B CN 103469309B CN 201310413590 A CN201310413590 A CN 201310413590A CN 103469309 B CN103469309 B CN 103469309B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- tissue
- cell
- cells
- homogenate
- placenta
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 56
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 212
- 238000011282 treatment Methods 0.000 claims abstract description 45
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 claims abstract description 22
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims abstract description 14
- 210000002826 placenta Anatomy 0.000 claims description 54
- 210000005059 placental tissue Anatomy 0.000 claims description 24
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 claims description 18
- 238000012545 processing Methods 0.000 claims description 17
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 claims description 15
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 claims description 11
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 10
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 10
- 238000007789 sealing Methods 0.000 claims description 10
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 9
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 8
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 8
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 8
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 7
- 238000000227 grinding Methods 0.000 claims description 6
- 210000003701 histiocyte Anatomy 0.000 claims description 6
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims description 5
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 claims description 5
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 208000026350 Inborn Genetic disease Diseases 0.000 claims description 3
- 238000011109 contamination Methods 0.000 claims description 3
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 claims description 3
- 208000016361 genetic disease Diseases 0.000 claims description 3
- 230000017525 heat dissipation Effects 0.000 claims description 3
- 208000030507 AIDS Diseases 0.000 claims description 2
- 241000701022 Cytomegalovirus Species 0.000 claims description 2
- 208000005176 Hepatitis C Diseases 0.000 claims description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 2
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 claims description 2
- 208000002672 hepatitis B Diseases 0.000 claims description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 2
- 208000006379 syphilis Diseases 0.000 claims description 2
- 230000036039 immunity Effects 0.000 claims 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 abstract description 11
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 abstract description 9
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 abstract description 8
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 6
- 238000003908 quality control method Methods 0.000 abstract description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 abstract description 2
- 238000002203 pretreatment Methods 0.000 abstract description 2
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 abstract 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 135
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 description 45
- 230000003169 placental effect Effects 0.000 description 28
- 210000001691 amnion Anatomy 0.000 description 20
- 239000008055 phosphate buffer solution Substances 0.000 description 19
- 210000002901 mesenchymal stem cell Anatomy 0.000 description 17
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 11
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 11
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 11
- 238000005138 cryopreservation Methods 0.000 description 9
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 9
- 210000003425 amniotic epithelial cell Anatomy 0.000 description 7
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 7
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 7
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 6
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 6
- 210000005151 decidua basalis Anatomy 0.000 description 6
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 6
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 5
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 4
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 4
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 208000018737 Parkinson disease Diseases 0.000 description 4
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 4
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 4
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 4
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 4
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 4
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 4
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 4
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 4
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 4
- 238000011160 research Methods 0.000 description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 4
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 4
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 4
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 4
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 3
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 3
- 230000008859 change Effects 0.000 description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 3
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 3
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 3
- 102000038379 digestive enzymes Human genes 0.000 description 3
- 108091007734 digestive enzymes Proteins 0.000 description 3
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 3
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 description 3
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 3
- 210000004700 fetal blood Anatomy 0.000 description 3
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 3
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 3
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 3
- 210000004991 placental stem cell Anatomy 0.000 description 3
- 210000001778 pluripotent stem cell Anatomy 0.000 description 3
- 230000031877 prophase Effects 0.000 description 3
- 238000010008 shearing Methods 0.000 description 3
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 2
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 2
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 2
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 2
- 108010019160 Pancreatin Proteins 0.000 description 2
- 108091000117 Tyrosine 3-Monooxygenase Proteins 0.000 description 2
- 102000048218 Tyrosine 3-monooxygenases Human genes 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 210000002469 basement membrane Anatomy 0.000 description 2
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 description 2
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 2
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 2
- 238000003320 cell separation method Methods 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 2
- 210000000805 cytoplasm Anatomy 0.000 description 2
- 230000001086 cytosolic effect Effects 0.000 description 2
- 210000003785 decidua Anatomy 0.000 description 2
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 2
- VYFYYTLLBUKUHU-UHFFFAOYSA-N dopamine Chemical compound NCCC1=CC=C(O)C(O)=C1 VYFYYTLLBUKUHU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 2
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000012520 frozen sample Substances 0.000 description 2
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 description 2
- 238000011134 hematopoietic stem cell transplantation Methods 0.000 description 2
- 230000007365 immunoregulation Effects 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 235000015110 jellies Nutrition 0.000 description 2
- 239000008274 jelly Substances 0.000 description 2
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 2
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 2
- 210000003716 mesoderm Anatomy 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 2
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 2
- 229940055695 pancreatin Drugs 0.000 description 2
- 210000005259 peripheral blood Anatomy 0.000 description 2
- 239000011886 peripheral blood Substances 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 239000012089 stop solution Substances 0.000 description 2
- 210000002536 stromal cell Anatomy 0.000 description 2
- 230000000451 tissue damage Effects 0.000 description 2
- 231100000827 tissue damage Toxicity 0.000 description 2
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 2
- 210000002993 trophoblast Anatomy 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 208000011231 Crohn disease Diseases 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 102100031573 Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Human genes 0.000 description 1
- 101000777663 Homo sapiens Hematopoietic progenitor cell antigen CD34 Proteins 0.000 description 1
- 241000713772 Human immunodeficiency virus 1 Species 0.000 description 1
- 206010020880 Hypertrophy Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 208000012902 Nervous system disease Diseases 0.000 description 1
- 241000288906 Primates Species 0.000 description 1
- 208000009527 Refractory anemia Diseases 0.000 description 1
- 206010072684 Refractory cytopenia with unilineage dysplasia Diseases 0.000 description 1
- 206010039710 Scleroderma Diseases 0.000 description 1
- GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J Trypan blue Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Na+].C1=C(S([O-])(=O)=O)C=C2C=C(S([O-])(=O)=O)C(/N=N/C3=CC=C(C=C3C)C=3C=C(C(=CC=3)\N=N\C=3C(=CC4=CC(=CC(N)=C4C=3O)S([O-])(=O)=O)S([O-])(=O)=O)C)=C(O)C2=C1N GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J 0.000 description 1
- OIPILFWXSMYKGL-UHFFFAOYSA-N acetylcholine Chemical compound CC(=O)OCC[N+](C)(C)C OIPILFWXSMYKGL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960004373 acetylcholine Drugs 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 238000004115 adherent culture Methods 0.000 description 1
- 210000001789 adipocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 description 1
- 230000001363 autoimmune Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 210000002459 blastocyst Anatomy 0.000 description 1
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 1
- 210000001772 blood platelet Anatomy 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 150000003943 catecholamines Chemical class 0.000 description 1
- 239000002458 cell surface marker Substances 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 208000015114 central nervous system disease Diseases 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000001136 chorion Anatomy 0.000 description 1
- 230000009194 climbing Effects 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 229960003638 dopamine Drugs 0.000 description 1
- 238000002651 drug therapy Methods 0.000 description 1
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004696 endometrium Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 1
- 238000001976 enzyme digestion Methods 0.000 description 1
- 210000002219 extraembryonic membrane Anatomy 0.000 description 1
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 description 1
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000003897 hepatic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000036737 immune function Effects 0.000 description 1
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 1
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 1
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 208000032839 leukemia Diseases 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000003041 ligament Anatomy 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 1
- 206010025135 lupus erythematosus Diseases 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 230000008774 maternal effect Effects 0.000 description 1
- 239000002906 medical waste Substances 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000663 muscle cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000001178 neural stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004498 neuroglial cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000002858 neurotransmitter agent Substances 0.000 description 1
- 238000011017 operating method Methods 0.000 description 1
- 238000000053 physical method Methods 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000000275 quality assurance Methods 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 208000020431 spinal cord injury Diseases 0.000 description 1
- 210000000952 spleen Anatomy 0.000 description 1
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 1
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 1
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 1
- 239000010409 thin film Substances 0.000 description 1
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种组织匀浆法分离胎儿附属物组织细胞构建细胞库的方法,目的在于构建细胞库时步骤简单、省时、易于质控和规范化。本发明由下述步骤组成:(1)胎儿附属物组织的清洗;(2)组织的匀浆前处理;(3)组织匀浆处理分离细胞(团);(4)匀浆后组织的过滤处理和细胞(团)的收集;(5)细胞(团)检测;(6)冻存分离的细胞(团),构建细胞库。与现有方法相比,本发明方法具有操作简单、用时短、不引入外源试剂、易于标准化和质量控制以及细胞获得量大等优点,为提高胎儿附属物细胞库的构建效率,获得高质量用于治疗的干细胞具有重要的意义。
Description
技术领域
本发明涉及胎儿附属物组织细胞库的构建方法,更具体地说是一种从胎儿附属物组织分离细胞构建细胞(团)库的物理方法。
背景技术
胎儿附属物组织主要由胎盘小叶、胎盘底座、基蜕膜、羊膜和脐带组织构成。起源于胚胎发育期胚外中胚层的胎盘是由间质、血管及滋养细胞组成,是胎儿最早期的造血器官,含有大量的间质成分。最新的研究表明胎盘中含有间充质干细胞、胎盘亚全能干细胞和丰富的造血干细胞,从胎盘中分离培养出这些多能干细胞将为实验研究和临床应用开辟一个崭新而丰富的来源。
胎盘亚全能干细胞来源于胎盘组织,自胚胎形成的第5到7天开始出现,能分化形成200多种人体组织器官细胞,但不能形成一个完整的人体。具备多能干细胞的许多生物学特征,该细胞体外可向脂肪细胞、成骨细胞、神经细胞、肝上皮样细胞等定向分化。
胎盘造血干细胞是存在于胎盘组织中的一群原始造血细胞,是血细胞(红细胞、白细胞、血小板等)的始祖,是高度未分化细胞,也可以说它是一切血细胞(其中大多数是免疫细胞)的原始细胞。胎盘组织中造血干细胞的含量是脐带血中造血干细胞含量的5-10倍,足可供小孩自用几次,或提供给1-2个成人患者的治疗。同时有效解决了移植时骨髓或动员后外周血来源不足,脐带血数量不够等技术难题,将有望取代骨髓、动员后外周血和脐带血用于造血干细胞移植。
基蜕膜是母亲妊娠时胚泡的滋养层细胞一经与子宫内膜接触,引起其附近的内膜***肥大增殖形成的组织。基蜕膜形成胎盘隔将丛密绒毛膜分隔成若干个绒毛小叶,其中含有母亲源的基蜕膜干细胞。
羊膜(amnion)是覆盖在羊膜腔内表面的一层薄膜,从细胞滋养层演化而来,是人类两层胎膜的内层,其厚度为0.02~0.05mm,是人体中最厚的基底膜,由羊膜上皮细胞(humanamnioticepithelialcell,HAEC)、基底膜、实质层、纤维母细胞层、海绵层5层结构组成。人羊膜上皮细胞位于羊膜的最内层,羊膜上皮细胞在受精后第8天从外胚叶发育而来,使其可能维持原肠胚形成前期胚胎干细胞的可塑性,在治疗中枢神经障碍方面具有独特的应用价值:1996年,Sakuragawa等最先发现培养的人羊膜上皮细胞表达神经元和神经胶质细胞的标志。随后的研究表明,培养的人羊膜上皮细胞能合成和释放神经递质如乙酰胆碱,儿茶酚胺和多巴胺。人羊膜上皮细胞移植治疗大鼠帕金森病(PD)的实验表明其在体内不仅能存活并表达络氨酸羟化酶(TH)活性,而且可以逆转病情和防止神经元死亡。人羊膜上皮细胞对于灵长类的脊髓损伤同样具有良好的治疗效果。
脐带是胎儿和母体连接的纽带。脐带内有三根血管通过,一根静脉和二根动脉,起着沟通母子间血液循环的作用。足月胎儿的脐带长约30~70厘米。脐带华通氏胶(Wharton’sJelly)中的干细胞主要是脐带间充质干细胞。
间充质干细胞(mesenchymalstemcell,MSC)是一种多能干细胞,在胚胎发育中来源于中胚层。在机体正常的组织损伤修复过程中,MSC是一种重要的参与组织再生的细胞。在组织损伤引起的特殊信号作用下,MSC迁移到受损部位,在局部聚集增殖,依据不同的损伤信号沿着不同途径分化。MSC易于分离扩增,体外倍增能力旺盛,即使扩增1亿倍仍能保持其多向分化能力。因此,MSC是一种实用的组织修复种子细胞。
MSC具有强大的增殖能力和多向分化潜能,在适宜的体内或体外环境下具有分化为:上皮干细胞、神经干细胞、肝干细胞,肌细胞、成骨细胞、软骨细胞、基质细胞等多种细胞的能力。可以用来修复受损或病变的组织器官,治疗心、脑血管疾病、神经***疾病、肝脏疾病、骨组织病、角膜损伤、烧伤烫伤、肌病等多种疾病;并且,MSC具有免疫调节作用,通过负性免疫调节功能,抑制机体亢进的免疫反应,使机体免疫功能恢复平衡,从而可以用来治疗造血干细胞移植之后的免疫排斥反应以及克隆氏病、红斑狼疮,硬皮病等自身免疫***疾病;MSC还是人体微环境的重要组成部分,移植间充质干细胞可以改变造血微环境,重建免疫***,促进造血功能恢复,与造血干细胞共移植能显著提高白血病和难治性贫血等的治疗效果。
胎儿附属物细胞库的构建,将原来作为医疗废弃物直接处理掉的新生儿的脐带和胎盘组织通过处理,提取其中丰富的干细胞资源,并通过成熟的深低温冷冻技术使之在休眠状态下长时间储存,作为一种宝贵的生物资源储备,将来,可以应用于许多自体重大疾病的治疗;同时,也可以用于异体的移植与治疗;还可以通过再研发和处理,开发成干细胞药物,造福全社会。
胎儿附属物细胞库构建包括细胞的组织分离,纯化,冷冻保存,病原微生物的检测以及质量控制等方面。本专利所涉及的胎儿附属物细胞库构建方法是其中组织中细胞分离的方法,尤其是细胞从实体组织中分离的技术。从组织中分离细胞构建细胞库的方法目前有化学酶解法和细胞团培养法。其中化学酶解法是广为采用的主要方法。
化学酶解法是利用消化酶将活体细胞从组织中分离的方法。具体分离过程先将组织剪切成约1-1.5mm3的小块,再采用胶原酶或胶原酶和胰酶组合使用进行细胞团消化,并利用血清等酶消化终止液终止消化,最后过滤清洗获取细胞。例如授权号CN101608174B《一种人脐带间充质干细胞库的构建方法》的专利,间充质干细胞的分离就是采用胶原酶消化的方法。授权号CN100344757C《人胎盘、脐带间充质干细胞库及其构建方法》的专利,建库的间充质干细胞采用的方法为胶原酶和胰酶依次消化法。化学酶解法具有以下特点:1)由于需要使用大量的化学酶和消化终止液,实验成本较高;2)由于不同的操作方法和人员情况,每次获得的细胞产量差异较大。3)由于采用的消化方法不同,整个消化酶解的时间长短不一,从30分钟到几小时都有。
细胞团培养法是一种物理和培养相结合将细胞从组织中分离的方法,也是构建细胞库可选用的一种方法。具体分离过程先将组织剪切成约1-1.5mm3的小块,接种到培养皿中培养分离细胞。例如授权号CN102010850B《一种脐带组织间充质干细胞爬片分离的方法》的专利,脐带组织间充质干细胞的分离就是采用的细胞团培养法。该方法具有以下特点:1)仅需要将组织剪切成1-1.5mm3的细胞团和简单的培养,操作比较简单;2)细胞团的培养需要几天的时间才能实现细胞的分离,耗时较长;3)细胞的长期培养,污染的可能性比较大。
由此可见,目前构建细胞库的实体组织细胞分离方法操作流程比较繁琐,耗时长,完全依赖于人工操作,对技术员的操作技能要求高。另外,化学酶解法又引入了动物来源的外源性试剂,会加大公共细胞库的干细胞药物治疗的风险性。
在本发明基于细胞库构建中保证细胞分离方法简单、省时、易于质控和规范化的原则,采用组织匀浆方法分离胎儿附属物组织,获得大量用于建库的细胞,以满足科研、医药和临床等领域对细胞库资源的需求。
发明内容
本发明的目的是提供一种组织匀浆分离胎儿附属物细胞(团)建立细胞库的方法。
本发明优选使用的组织细胞处理器PlacentaPro是发明人为本发明设计的一种仪器,该仪器包含控制装置和匀浆容器两部分,如图1所示,控制装置包括机身(1),匀浆容器放置孔(2),旋转头(3),卡槽(4),散热孔(5);匀浆容器包括杯体(6),杯盖(7),密封圈(8),旋转头连接器(9),固定轴(10),刀头(11),卡头(12)。
机身(1)侧面设置有散热孔(5),机身(1)顶部为匀浆容器放置孔(2),匀浆容器放置孔(2)内壁设有卡槽(4),匀浆容器放置孔(2)底部为旋转头(3),处理组织时,匀浆容器放置入匀浆容器放置孔(2)中,杯盖(7)底部的旋转头连接器(9)下端与旋转头(3)接合,上端通过固定轴(10)与刀头(11)连接,杯盖(7)通过密封圈(8)与杯身(6)紧密接合,杯身(6)外侧壁的卡头(12)与卡槽(4)接合。
其中关键部件为特殊设计的刀头(11)。刀头(11)呈四叶刀刃,由上下层叠放置且互相垂直的刀片(13)和刀片(14)组成。刀片(13)分5段,包含4个弯折,两端两个弯折呈130-150度(优选138度),中间两个弯折呈140-160度(优选148度);刀片(14)分3段,包含2个弯折,两个弯折呈110-130度(优选123度);
工作时,将组织块装入杯身(6),盖上杯盖(7)后,将匀浆容器放入匀浆容器放置孔(2)内,通过控制器-旋转头(3)-旋转头连接器(9)-固定轴(10)-刀头(11)的一些列传动。带动刀头(11)转动,从而起到匀浆作用。
虽然目前市场上已经有少量与本发明所用的组织细胞处理器PlacentaPro作用相似的仪器,如德国美天旎公司的gentleMACS标本处理器也能分离组织得到细胞悬液。但是第一,市面上已有的仪器的处理量都相对较小,一般只能处理5克以下的样本,而PlacentaPro最多能处理400克的样本,为建立细胞库和大规模细胞培养奠定了很好的基础;第二,市面上已有的仪器由于结构限制,只能处理易破碎的组织,如脾脏、肝脏、肺等,对于具有很强韧性的胎儿附属物组织,如含有大量华通氏胶的脐带也无能为力,而PlacentaPro由于结构的特殊性,能够在不破坏细胞活性的情况下,将韧性大的组织,如胎儿附属物组织进行匀浆,直接分离得到细胞/细胞团。
本发明的技术方案包括组织的清洗、匀浆前处理、组织匀浆处理、过滤回收及细胞库构建的过程,具体步骤如下:
(1)组织清洗:通过适量清洗液(例如含双抗的PBS缓冲液)对获得的胎儿附属物组织进行冲洗,直到组织表面的残留血液被冲洗干净。
(2)组织匀浆前处理:根据组织细胞处理器PlacentaPro的匀浆容器的大小,将得到的组织剪成小块,放入组织细胞处理器中,加入0.5-2倍质量的缓冲液(例如PBS缓冲液)并密封组织细胞处理器;
(3)组织匀浆处理:组织细胞处理器PlacentaPro通过转子带动特殊刀头的旋转将组织切碎和匀浆,对组织进行细胞分离和提取;
(4)组织过滤处理,细胞收集:将步骤(3)得到的组织碎片转移至过滤装置,对胎盘组织进行研磨,收集滤液,对滤液进行细胞清洗,离心收集细胞;对脐带组织收集过滤器上的细胞团,清洗细胞团并收集。
(5)分离的细胞(团)构建细胞库:将步骤(4)分离的细胞(团)置液氮保存,按其ABO/Rh血型和HLA分型进行保存,建立可供检索的细胞信息档案,即构建出细胞库。
根据本发明步骤(1)所述需要处理的样品是胎儿附属物组织,包括胎盘小叶和基蜕膜组织、胎盘底座组织、胎盘羊膜组织和脐带组织。
根据本发明步骤(2)所述处理的组织样品大小为:
胎盘小叶和基蜕膜30-120g,优选60-90g,加入的缓冲液或培养基的体积为20-110ml,优选50-80ml;
脐带5-30g,优选10-20g,加入的缓冲液或培养基的体积为10-45ml,优选15-30ml;
胎盘底座100-300g,优选150-200g,加入的缓冲液或培养基的体积为100-300m1,优选150-200ml;
胎盘羊膜5-25g,优选10-20g,加入的缓冲液或培养基的体积为10-40ml,优选15-25ml;
根据本发明步骤(2)所述组织细胞处理器PlacentaPro处理:
胎盘小叶和基蜕膜组织处理转速为1000-2400rpm,优选地,1400-1800rpm;
脐带组织处理转速为1500-3500rpm,优选地,2500-2800rpm;
胎盘底座组织处理转速为1500-2500rpm,优选地,2000rpm;
胎盘羊膜组织处理转速为2000-3000rpm,优选地,2300-2500rpm;
根据本发明步骤(4)所述组织碎片过滤装置为100-400目金属过滤器,胎盘小叶和基蜕膜组织、胎盘底座组织过滤时优选200目的过滤器,脐带组织、胎盘羊膜组织过滤时优选400目的过滤器。
本发明的有益效果为:本发明采用自主研制的组织细胞处理器PlacentaPro对胎儿附属物组织细胞进行分离的方法,具有操作简单、用时短、无外源试剂加入、易于标准化和质量控制以及细胞获得量大等优点,为提高细胞库的构建效率,保障细胞库优质的质量具有重要的意义。
附图说明
图1组织细胞处理器PlacentaPro结构示意图
图2原代细胞培养形态
图3脐带组织处理得到的细胞团培养并传至P3代的细胞培养形态图
图4脐带组织处理得到的细胞团培养并传至P3代的细胞流式图
图5胎盘羊膜组织处理后得到的细胞团的原代培养形态图
具体实施方式
实施例中未注明具体技术或条件者,按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规产品。
实施例1:采用组织匀浆法分离胎盘小叶细胞构建细胞库
胎盘小叶组织匀浆的方法包括以下步骤:
(1)胎盘组织清洗:胎盘组织是在生物安全柜内进行处理,根据胎盘大小使用适量含1%双抗的PBS缓冲液对胎盘组织进行冲洗,至胎盘组织表面残留血液冲洗干净,胎盘表面无血液凝块;
(2)胎盘小叶组织前期处理:使用手术剪从步骤(1)得到的胎盘组织上剪下胎盘小叶,把胎盘小叶转移到培养皿上并剪成小块,把60-90克的胎盘小叶组织块放入组织细胞处理器PlacentaPro的匀浆容器中,加入50-80毫升的PBS并密封处理杯;
(3)胎盘小叶组织匀浆处理:利用组织细胞处理器PlacentaPro将步骤(2)得到的胎盘小叶组织块通过组织切碎和匀浆的物理处理进行细胞分离和提取,搅拌速度为1400rpm-1800rpm之间,处理时间为5分钟;
(4)胎盘小叶组织过滤处理:将步骤(3)处理完毕后的胎盘小叶组织转移到200目金属过滤器上,对组织碎片进行研磨并利用另一个培养皿收集过滤完的液体,分成2次往金属过滤器加入10-15ml的PBS清洗组织并继续研磨。
(5)细胞计数:用50ml离心管收集步骤(4)获得的细胞悬液,以1400rpm/分钟的速度离心10分钟,去上清并加入PBS重悬细胞,抽取小量样本进行细胞计数。
胎盘小叶组织细胞分离处理测试共分8组分别进行,每一组进行了两个不同的测试设定,分别为(a)1400rpm,5分钟和(b)1800rpm,5分钟。胎盘组织来源于8个不同的供者,处理量在60克左右之间。实验结果如表1所示。
表1(a)胎盘小叶组织匀浆处理细胞提取数据
表1(b)胎盘小叶组织匀浆处理细胞提取数据
由以上结果可以看出,全自动胎盘组织器在测试条件为(a)1400rpm,5分钟和测试条件为(b)1800rpm,5分钟的设定下处理胎盘小叶组织,最终得到的每克有核细胞平均数分别为2.98×106和2.8×106,两者得到的细胞数量没有明显差别,证明了速度的提升对细胞提取的效率没有明确的线性关系。而且,在补充的试验中,通过流式细胞测试发现,其中的细胞表面标志物CD34阳性表达的细胞分别是2.92×104/g和2.78×104/g;另一个补充实验中,过高和过低的转速以及匀浆时间的不合适都会影向细胞提取的效率。通过存活率测试可以发现,经过胎盘组织处理器分离并获取的有核细胞依然保持良好的活力,8个测试结果存活率都能达到98%以上。以上结果表明,全自动组织细胞处理器PlacentaPro能有效地从胎盘小叶组织中分离并提取有核细胞,而且简单易行、耗时短,为细胞库的构建提供了有效保障。
实施例2:胎盘小叶组织匀浆处理和手工处理的比较实验
比较实验分8组进行。参考实施例1的方法进行全自动组织处理实验。参考专利CN201210292509.9(公开号CN102807966A)中所述方法进行手工处理(消化)实验。胎盘组织来源自8个不同的供者,处理量在60-90克之间。对比实验结果如表2所示。
全自动处理 | 手工处理(消化) | |
测试 | 提取细胞数/g | 提取细胞数/g |
1 | 3.8×106/g | 2.0×106/g |
2 | 3.9×106/g | 0.79×106/g |
3 | 2.3×106/g | 1.0×106/g |
4 | 2.9×106/g | 1.1×106/g |
5 | 2.6×106/g | 1.4×106/g |
6 | 2.7×106/g | 1.1×106/g |
7 | 3.1×106/g | 0.86×106/g |
8 | 2.5×106/g | 1.7×106/g |
平均 | 2.98×106/g | 1.24×106/g |
表2全自动处理和手工处理胎盘小叶组织数据对比表
结果表明,胎盘小叶组织经过全自动组织细胞处理器PlacentaPro处理后获得的每克平均细胞量是手工处理的2.4倍,明显高于手工消化处理所得细胞,为细胞库的建立提供了大量细胞,节省了后续细胞扩增的时间。
实施例3:胎盘小叶组织经匀浆法分离的细胞原代生长情况
(1)细胞培养前准备:以1份细胞悬液比2-3份红细胞裂解液的比例加入红细胞裂解液(Roche),在15-25℃的环境下培养10-15分钟,放进离心机以1400rpm的速度离心10分钟,去上清,观察红细胞裂解情况,如有需要再重复此步骤进行裂解。裂解完毕后,加入PBS重悬细胞并抽取小量样本进行细胞计数,放进离心机以1400rpm的速度离心10分钟以清洗细胞,去上清,加入间充质干细胞培养基(15%FBS+1%L-Glutamine+0.05%Gentamicin+84%DMEM-F12)重悬细胞,并以2-5×104/cm2的密度把胎盘来源有核细胞接种到培养瓶中。
(2)原代细胞培养:把培养瓶放进C02浓度为5%,温度为37℃的培养箱进行培养,培养至第6天时进行第一次半换液,在第9天进行第二次半换液,在第12天把平皿里面的培养基抽走,重新加入15ml培养基,往后每2-3天进行一次全换液。通过显微镜观察细胞培养形态,细胞贴壁生长呈典型的梭形,有胞浆突起为成纤维细胞样,细胞浆丰富,核仁明显,呈漩涡状生长。(见图2)
(3)细胞传代:当培养瓶里面的贴壁细胞融合率达到80%左右,可利用消化酶(TrypLEExpress)把贴壁细胞脱离培养瓶底部,离心后把上清抽走并加入细胞专用培养基重悬细胞,接种于细胞培养瓶进行传代并继续扩增培养,往后每2天换液一次直至融合率达到80%后,即得,必要时再进行传代。
针对实施例3提取的8组细胞进行原代培养,生长结果如表3所示。
表3胎盘小叶分离的细胞原代生长情况
8组胎盘小叶经组织细胞处理器PlacentaPro分离获得的有核细胞在相同培养条件,各组细胞的原代生长状态基本一致,都在12-14天左右原代细胞长满。这种一致性表明,全自动匀浆法在进行大规模样品处理时,样品间差异性小,标准化程度高,具有较高的质量保证。
实施例4:采用组织匀浆法分离脐带细胞团
脐带组织匀浆方法包括以下步骤:
(1)脐带组织清洗:脐带组织是在生物安全柜内进行处理,将脐带组织剖开,取出脐带中的血管,然后用含1%双抗的PBS缓冲液对脐带组织进行冲洗,至脐带组织表面残留血液冲洗干净,脐带表面无血液凝块;
(2)脐带组织前期处理:将步骤(1)得到的脐带组织转移到培养皿上,使用手术剪将脐带组织剪成2cm*2cm小块,把10-20克的脐带组织块放入组织细胞处理器PlacentaPro的匀浆容器中,加入20-30毫升含1%双抗的PBS并密封匀浆容器;
(3)脐带组织匀浆处理:使用组织细胞处理器PlacentaPro将步骤(2)得到的脐带组织通过组织切碎和匀浆的物理处理进行细胞团分离和提取,搅拌速度为2500-2800rpm,处理时间为10分钟;
(4)脐带组织过滤处理:将步骤(3)处理完毕后的脐带组织转移到400目金属过滤器上,收集过滤器上的细胞团,分成2次用5ml的生理盐水清洗细胞团。
(5)脐带细胞团贴壁培养原代细胞:将步骤(4)得到的细胞团铺在平皿中,加间充质干细胞培养基(15%FBS+1%L-Glutamine+0.05%Gentamicin+84%DMEM-F12),把平皿放进CO2浓度为5%的37℃培养箱进行培养,培养至第6天时进行第一次半换液,在第9天进行第二次半换液,在第12天开始,每2到3天进行一次全换液。通过显微镜观察细胞培养形态,细胞贴壁生长呈典型的梭形,有胞浆突起为成纤维细胞样,细胞浆丰富,核仁明显,呈漩涡状生长。
(6)细胞传代:当平皿里面的贴壁细胞融合率达到80%左右,可利用消化酶(TrypLEExpress)把贴壁细胞脱离培养瓶底部,离心后把上清抽走并加入细胞专用培养基重悬细胞,接种于细胞培养瓶进行传代并继续扩增培养,往后每2天换液一次直至融合率达到80%后,即得,必要时再进行传代。图3为脐带组织处理得到的细胞团培养并传至P3代的细胞培养形态图,图4为脐带组织处理得到的细胞团培养并传至P3代的细胞流式图。
实施例5:采用组织匀浆法分离胎盘底座细胞
胎盘底座组织匀浆的方法包括以下步骤:
(1)胎盘组织清洗:胎盘组织是在生物安全柜内进行处理,根据胎盘大小使用适量PBS缓冲液对胎盘组织进行冲洗2-3遍,使胎盘组织表面残留血液冲洗干净,胎盘表面无血液凝块;
(2)胎盘底座组织前期处理:使用手术剪从步骤(1)得到的胎盘组织上剪下胎盘底座,把胎盘底座转移到培养皿上并剪成小块,把150-200克之间的胎盘底座组织块放入组织细胞处理器PlacentaPro的匀浆容器中,加入150-200毫升的PBS并密封匀浆容器;
(3)胎盘底座组织匀浆处理:利用组织细胞处理器PlacentaPro将步骤(2)得到的胎盘底座组织通过组织切碎和匀浆的物理处理进行细胞分离和提取,搅拌速度为2000rpm之间,处理时间为5分钟;
(4)胎盘底座组织过滤处理:将步骤(3)处理完毕后的胎盘底座组织转移到200目金属过滤器上,对组织碎片进行研磨并利用另一个培养皿收集过滤完的液体,分成2次往金属过滤器加入20-25ml的PBS清洗组织并继续研磨。
(5)细胞计数:用50ml离心管收集步骤(4)获得的细胞悬液,以1400rpm/分钟的速度离心10分钟,去上清并加入PBS重悬细胞,抽取小量样本进行细胞计数。
胎盘底座组织细胞分离处理测试共分8组分别进行,测试条件为2000rpm,5分钟。胎盘组织来源自8个不同的供者,处理量在150-200克之间。实验结果如表4所示。
表4胎盘底座组织匀浆处理细胞提取数据
由以上结果可以看出,组织细胞处理器PlacentaPro在测试条件为2000rpm,5分钟的设定下处理胎盘底座组织,最终得到的每克有核细胞平均数为6.1×105。在补充的试验中,过高和过低的转速以及匀浆时间的不合适都会影响细胞提取的效率。通过存活率测试可以发现,经过组织细胞处理器分离并获取的有核细胞依然保持良好的活力,8个测试结果存活率都能达到99%以上。以上结果表明,全自动组织细胞处理器PlacentaPro能有效地从胎盘底座组织中分离并提取有核细胞,而且简单易行、耗时短,为细胞库的构建提供了有效保障。
实施例6:采用组织匀浆法分离胎盘羊膜细胞
胎盘羊膜组织匀浆方法包括以下步骤:
(1)胎盘组织清洗:脐带组织是在生物安全柜内进行处理,根据脐带大小使用适量PBS缓冲液对脐带组织进行冲洗2-3遍,使脐带组织表面残留血液冲洗干净,脐带表面无血液凝块;
(2)胎盘羊膜组织前期处理:使用手术剪从步骤(1)得到的胎盘组织上剪下胎盘羊膜,把羊膜组织转移到培养皿上并剪成小块,把10-20克的胎盘羊膜组织块放入组织细胞处理器PlacentaPro的匀浆容器中,加入15-25毫升的PBS并密封匀浆容器;
(3)胎盘羊膜组织匀浆处理:使用组织细胞处理器PlacentaPro将步骤(2)得到的胎盘羊膜组织通过组织切碎和匀浆的物理处理进行细胞分离和提取,搅拌速度为2300-2500rpm,处理时间为8分钟;
(4)胎盘羊膜组织过滤处理:将步骤(3)处理完毕后的胎盘羊膜组织转移到400目金属过滤器上,收集过滤器上的细胞团,分2次用5ml的PBS缓冲液清洗细胞团。
(5)原代细胞培养:在步骤(5)获得的细胞团中加入羊膜上皮细胞培养基(10%FBS+90%DMEM+10ng/mlEGF+4mmo1/L谷氨酰胺),把平皿放进C02浓度为5%,温度为37℃的培养箱进行培养,培养至第6天时进行第一次半换液,在第9天进行第二次半换液,在第12天开始,每2到3天进行一次全换液。通过显微镜观察细胞培养形态,细胞贴壁生长呈饱满的鹅卵石状,如图5所示。
实施例7:胎儿附属物组织匀浆法分离细胞(团)的冻存
经过组织细胞处理器匀浆处理、过滤并清洗的细胞/细胞团,若暂时不适用的话,可进行深低温冷冻保存,待以后需要时再取出复苏培养。
胎盘细胞的冻存方法如下:
取1×106细胞加入到1ml细胞冻存液(含65份DMEM-F12+10份二甲基亚砜+15份人血白蛋白)中,经过程序降温进行冷冻处理,最后将冷冻的样品放入液氮罐中冻存。
脐带细胞团的冻存方法如下:
取1ml细胞冻存液(含80份人血白蛋白+20份二甲基亚砜)加入冻存管中,将脐带细胞团加入冻存液中,总体积不超过1.8ml,经过程序降温进行冷冻处理,最后将冷冻的样品放入液氮罐中冻存。
实施例8:胎儿附属物细胞(团)库的建立
1、细胞来源的调查
记录胎盘提供者(父母)的详细资料,并记录在案。
2、细胞污染的检测
利用少量细胞培养,检测细胞是否受到真菌和细菌的污染。利用病原学方法,检测细胞是否受到乙肝两对半、丙肝、艾滋、巨细胞病毒、EB病毒和梅毒、HbsAg、HbsAb、HBcAb、HbeAg、HbeAb、HCVAb、HIV-1/2Ab、CMV-IgM和EBV-IgA、TRUST感染。
3、遗传病的检测
利用分子遗传学的方法,检测冻存细胞是否存在遗传病。
4、HLA-ABC/DR配型
检测细胞HLA-ABC/DR表型,并记录在案。
5、细胞活性的检测
利用台盼蓝染色法计数冻存前后活细胞的数目。
6、胎盘干细胞数据库的建立
在保存正常的胎盘干细胞后,建立胎盘干细胞的数据库,其中包括前五项资料,并建立与冻存细胞的关联。
Claims (5)
1.一种组织匀浆法分离胎儿附属物组织构建细胞库的方法,其包括下述步骤:
(1)对胎儿附属物组织提供者进行ABO/Rh血型检测、HLA分型检测、微生物免疫检测,用含双抗的缓冲液去除残留血液,所述胎儿附属物组织是胎盘底座;
(2)组织匀浆前处理:将清洗后的组织剪成小块,放入组织细胞处理装置样品室中,加入0.5-2倍质量的缓冲液或培养基,密封组织细胞处理装置;
(3)组织匀浆处理:运转组织细胞处理装置,在规定的转速和时间的条件下将组织切碎和匀浆,对组织进行细胞的分离处理;其中处理转速为2000rpm,时间为5分钟;
(4)组织过滤处理:将步骤(3)得到的匀浆液通过200目的滤网过滤:对于胎盘底座组织,对滤网上残留的少许胎盘组织块进行研磨,收集滤液;
(5)细胞收集与清洗:对于细胞,用离心管收集步骤(4)得到的细胞悬液,以1400-1800rpm/分钟的速度离心5-15分钟,去上清并加入缓冲液重悬细胞;
(6)将步骤(5)分离的细胞置液氮保存,按其ABO/Rh分型和HLA分型进行保存,建立可供检索的细胞信息档案,即构建出细胞库,
其中,
所述组织细胞处理装置为组织细胞处理器,其包含控制装置和匀浆容器两部分,其中:
控制装置包括机身(1),匀浆容器放置孔(2),旋转头(3),卡槽(4),散热孔(5);
匀浆容器包括杯身(6),杯盖(7),密封圈(8),旋转头连接器(9),固定轴(10),刀头(11),卡头(12);
所述机身(1)侧面设置有散热孔(5),机身(1)顶部为匀浆容器放置孔(2),匀浆容器放置孔(2)内壁设有卡槽(4),匀浆容器放置孔(2)底部为旋转头(3),处理组织时,匀浆容器放置入匀浆容器放置孔(2)中,杯盖(7)底部的旋转头连接器(9)下端与旋转头(3)接合,上端通过固定轴(10)与刀头(11)连接,杯盖(7)通过密封圈(8)与杯身(6)紧密接合,杯身(6)外侧壁的卡头(12)与卡槽(4)接合;
所述刀头(11)呈四叶刀刃,由上下层叠放置且互相垂直的第一刀片(13)和第二刀片(14)组成;第一刀片(13)分5段,包含4个弯折,两端两个弯折呈130-150度,中间两个弯折呈140-160度;第二刀片(14)分3段,包含2个弯折,两个弯折呈110-130度;
该组织细胞处理装置工作时,将组织块装入杯身(6),盖上杯盖(7)后,将匀浆容器放入匀浆容器放置孔(2)内,通过控制器-旋转头(3)-旋转头连接器(9)-固定轴(10)-刀头(11)的一系列传动,带动刀头(11)转动,从而起到匀浆作用。
2.如权利要求1的方法,所述的步骤(2)中,组织细胞处理装置所处理的胎盘底座组织为100-300g。
3.如权利要求1的方法,步骤(6)中,细胞库选自:胎盘造血干细胞库、胎盘亚全能细胞库。
4.如权利要求1的方法,步骤(6)中,所述建立可供检索的细胞信息档案包括细胞来源的调查;细胞污染的检测;遗传病检测;HLA-ABC/DR配型检测;细胞活性的检测。
5.如权利要求4的方法,其中细胞污染的检测包括如下项目的检测:乙肝两对半、丙肝、艾滋、巨细胞病毒、EB病毒和梅毒。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310413590.6A CN103469309B (zh) | 2013-09-12 | 2013-09-12 | 一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 |
HK14105416.9A HK1192290A1 (zh) | 2013-09-12 | 2014-06-10 | 種組織勻漿法分離活細胞構建細胞庫的方法 |
TW103131629A TW201510223A (zh) | 2013-09-12 | 2014-09-12 | 一種組織勻漿法分離活細胞構建細胞庫的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310413590.6A CN103469309B (zh) | 2013-09-12 | 2013-09-12 | 一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103469309A CN103469309A (zh) | 2013-12-25 |
CN103469309B true CN103469309B (zh) | 2015-12-23 |
Family
ID=49794342
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310413590.6A Active CN103469309B (zh) | 2013-09-12 | 2013-09-12 | 一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103469309B (zh) |
HK (1) | HK1192290A1 (zh) |
TW (1) | TW201510223A (zh) |
Families Citing this family (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104480533A (zh) * | 2014-12-29 | 2015-04-01 | 黑龙江天晴干细胞股份有限公司 | 一种胎盘干细胞库的构建方法及胎盘组织复苏方法 |
WO2018058435A1 (zh) * | 2016-09-29 | 2018-04-05 | 高雄医学大学 | 一种从组织分离细胞的装置 |
CN106399237A (zh) * | 2016-11-30 | 2017-02-15 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种脐带间充质干细胞的原代分离方法 |
CN106801032B (zh) * | 2017-02-17 | 2021-03-02 | 沈阳艾米奥生物工程技术研发中心有限公司 | 人羊膜上皮干细胞库的构建方法 |
CN107541485A (zh) * | 2017-10-19 | 2018-01-05 | 四川农业大学 | 一种鹅原始、初级、次级卵泡的分离方法 |
CN108795853B (zh) * | 2018-05-28 | 2021-08-24 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 制备犬胎膜间充质干细胞的方法和犬胎膜间充质干细胞 |
CN108728408B (zh) * | 2018-05-28 | 2021-08-24 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 犬胎膜间充质干细胞及制备方法和使用的培养基 |
CN110859856A (zh) * | 2019-10-21 | 2020-03-06 | 中冠赛尔生物科技(北京)有限公司 | 一种降低gvhd发病率的移植物 |
CN112506620B (zh) * | 2020-12-28 | 2023-11-24 | 网络通信与安全紫金山实验室 | 基于docker容器部署的ospf协议的清洗恢复方法、装置、设备和介质 |
CN114958717B (zh) * | 2022-04-06 | 2023-03-10 | 中山大学附属第一医院 | 一种从微量的钙化血管中快速分离活细胞的方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1884492A (zh) * | 2006-07-07 | 2006-12-27 | 蒋礼先 | 一种用于治疗神经退行性病变的胚胎干细胞及其培养基和制备方法 |
CN101608174A (zh) * | 2009-07-23 | 2009-12-23 | 章毅 | 一种人脐带间充质干细胞库的构建方法 |
CN102382757A (zh) * | 2010-08-27 | 2012-03-21 | 日本光电工业株式会社 | 细胞离析装置 |
CN102965336A (zh) * | 2011-08-30 | 2013-03-13 | 姚惟琦 | 一种人脐带间充质干细胞分离培养方法 |
-
2013
- 2013-09-12 CN CN201310413590.6A patent/CN103469309B/zh active Active
-
2014
- 2014-06-10 HK HK14105416.9A patent/HK1192290A1/zh unknown
- 2014-09-12 TW TW103131629A patent/TW201510223A/zh unknown
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1884492A (zh) * | 2006-07-07 | 2006-12-27 | 蒋礼先 | 一种用于治疗神经退行性病变的胚胎干细胞及其培养基和制备方法 |
CN101608174A (zh) * | 2009-07-23 | 2009-12-23 | 章毅 | 一种人脐带间充质干细胞库的构建方法 |
CN102382757A (zh) * | 2010-08-27 | 2012-03-21 | 日本光电工业株式会社 | 细胞离析装置 |
CN102965336A (zh) * | 2011-08-30 | 2013-03-13 | 姚惟琦 | 一种人脐带间充质干细胞分离培养方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
TW201510223A (zh) | 2015-03-16 |
TWI515299B (zh) | 2016-01-01 |
CN103469309A (zh) | 2013-12-25 |
HK1192290A1 (zh) | 2014-08-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103469309B (zh) | 一种组织匀浆法分离活细胞构建细胞库的方法 | |
EP2222234B1 (en) | Apparatus and methods for cell isolation | |
TWI836505B (zh) | 從臍帶的羊膜分離間質幹細胞的方法、從臍帶的羊膜分離的間質幹細胞群以及用於從臍帶的羊膜分離間質幹細胞的細胞培養基 | |
CN107299082B (zh) | 从组织中分离胎盘***并培养成间充质干细胞的方法 | |
CN114317443B (zh) | 乳腺癌类器官培养液及其培养试剂组合和培养方法 | |
CN109234229B (zh) | 从胎盘血管分离间充质干细胞的方法和所用消化酶组合物 | |
CN104450611A (zh) | 一种人羊膜间充质干细胞原代分离及培养方法 | |
CN108315297B (zh) | 一种从脂肪组织中分离、纯化脂肪干细胞的方法 | |
CN103667187A (zh) | 一种人脂肪干细胞的分离培养方法和干细胞库的构建方法 | |
CN113249317A (zh) | 一种人脐带间充质干细胞的分离培养扩增方法及*** | |
WO2010043076A1 (zh) | 适于临床应用的人胎盘***库的建立方法 | |
CN111088226A (zh) | 一种胎盘间充质干细胞外泌体的制备和储存方法 | |
CN107354130B (zh) | 一种人胎盘绒毛膜间充质干细胞分离方法 | |
CN109628388B (zh) | 用消化酶组合物从胎盘血管分离间充质干细胞 | |
CN110885784B (zh) | 一种临床应用级脂肪干细胞及其制备方法 | |
CN110628706B (zh) | 一种体外提取并培养胚胎神经干细胞的方法及培养基的制备 | |
CN108660108A (zh) | 一种可增强脐带间充质干细胞免疫调节能力的方法 | |
CN108034634B (zh) | 一种从经血中分离宫内膜间充质干细胞的方法 | |
RU2303632C1 (ru) | Способ получения мезенхимальных стволовых клеток из костного мозга млекопитающих и популяция мезенхимальных стволовых клеток, полученная этим способом | |
CN103160462B (zh) | 一种优秀冰雪运动员脐带血间充质干细胞的分离方法 | |
CN112342182B (zh) | 一种高效分离小鼠肝脏胆管细胞的方法 | |
CN114807031A (zh) | 一种人外周血免疫细胞库和干细胞库的构建方法 | |
CN111197028A (zh) | 一种人体脂肪干细胞的培养方法 | |
CN110592005A (zh) | 间充质干细胞的分离方法 | |
CN112662618B (zh) | 脐带间充质干细胞及其制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
REG | Reference to a national code |
Ref country code: HK Ref legal event code: DE Ref document number: 1192290 Country of ref document: HK |
|
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
REG | Reference to a national code |
Ref country code: HK Ref legal event code: GR Ref document number: 1192290 Country of ref document: HK |