CN103103171A - 耐表面活性剂的纤维素酶及其修饰方法 - Google Patents

耐表面活性剂的纤维素酶及其修饰方法 Download PDF

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Abstract

公开了一种抑制在存在表面活性剂时内切糖苷酶活性降低的方法，其特征在于通过修饰具有内切糖苷酶活性，N末端氨基酸不是焦谷氨酸的蛋白，使其转变为N末端具有焦谷氨酸的蛋白。另外，公开了一种具有内切糖苷酶活性，其N末端通过氨基酸修饰转变为焦谷氨酸的修饰蛋白，编码该蛋白的多核苷酸，包含该多核苷酸的表达载体，用该表达载体转化的宿主细胞和通过培养宿主细胞而生产蛋白的方法。

Description

耐表面活性剂的纤维素酶及其修饰方法
本申请是申请日为2004年12月7日，申请号为200480036453.4的、发明名称和本发明相同的发明专利申请的分案申请。 
技术领域
本发明涉及一种修饰具有内切葡聚糖酶活性的蛋白(特别是属于家族45并具有内切葡聚糖酶活性的纤维素酶)的N-末端为焦谷氨酸，从而使其成为在表面活性剂时内切葡聚糖酶活性降低很小的纤维素酶的方法，并涉及该纤维素酶。 
技术背景
纤维素是自然资源中最丰富的资源，因此可有效分解纤维素的纤维素酶***在各个领域具有广泛用途。在本发明过程中，纯化和测定了多种纤维素酶，进一步，克隆了多种纤维素酶的基因，并通过序列同源性分析而进行家族分类(参见非专利参考文献1)。 
另一方面，根据其性质，可将纤维素酶应用于多个工业领域，特别是纺织品加工领域。例如，纤维素酶处理可改善含纤维素的织物的手感和/或外观，或通过“酵素洗涤”，赋予含纤维素的有色织物“石磨”外观，从而使织物的色彩局部性变化。另外，在莱塞尔加工过程中，可用纤维素酶除去加工过程中在织物表面产生的绒毛。在本文中，莱塞尔是一种来源于木浆的再生纤维素织物，最近由于其本身特性，例如高强度或吸水性，并且其生产过程造成的环境污染小而倍受关注。 
目前认为纤维素酶是通过多个酶的共同作用，例如协同作用来分解纤维素的。在由多个酶组成的纤维素酶组中含有可降低织物韧性的酶等不适于纺织品加工领域的酶。因此，需要通过蛋白分离技术和/或基因工程技术从纤维素酶组中分离适于纺织品加工的酶组分，并生产这些酶组分。特别地，对来源于丝状真菌例如木霉属(Trichoderma)或腐质霉属(Humicola)的微生物的纤维素酶已进行了深入研究。例如，已分离到腐质霉属中的纤维素酶组分CBH I、EG V(参见专利文献1)、NCE2、NCE4和NCE5，及木霉属中的CBH I、CBH II、EG II和EG III等，因此，可通过基因工程技术制备过表达的酶或单一组分的酶等，从而来生产含一种或多种特定的纤维素酶组分为主要组分，适于不同目的的纤维素酶制品。另外，已表明属于家族45的 纤维素酶，例如NCE4(参见专利文献2)、NCE5(参见专利文献3)、RCE1(参见专利文献4)或STCE1(参见国际专利申请PCT/JP2004/15733)在上述领域是非常有用的。 
另一方面，当纤维素酶用于衣物洗涤剂时，则不仅要改善纤维素酶组分的量，而且要改善其性质。更具体地，衣物洗涤剂含多种表面活性剂，而且将其溶解于水所获得的溶液是碱性的(pH10-pH 11)。因此，包含在衣物洗涤剂中的纤维素酶要在碱性条件下可耐受多种表面活性剂的作用。Otzen，D.E.等人已报道向来源于Humicola insolens的Cel45的内部氨基酸序列中引入一个突变，可使其在pH7，存在线性烷基苯磺酸盐(LAS)的条件下表现出约3.3倍于野生型Cel45的活性(参见非专利文献2)。但由该突变提供的在存在表面活性剂时抑制活性降低的作用仅限于Cel45或其同源蛋白，并不适于与Cel45同源性较低的，属于家族45的内切葡聚糖酶。 
(专利文献1)国际专利WO91/17243 
(专利文献2)国际专利WO98/03667 
(专利文献3)国际专利WO01/90375 
(专利文献4)国际专利WO00/24879 
非专利文献1：Henrissat B.，Bairoch A.Updating the sequence-bas ed classification of glycosyl hydrolases.Biochem.J.316：695-696(1996) 
非专利文献2：Daniel E.Otzen，Lars Christiansen，Martin Schulein.A comparative study of the unfolding of the endoglucanase Cel45 from Humicola insolens in denaturant and surfactant.Protein Sci.8：1878-1887(1999) 
发明描述 
本发明要解决的问题 
本发明的一个目标是提供将具有内切葡聚糖酶活性的蛋白(特别是属于家族45，并具有内切葡聚糖酶活性的蛋白)转变为具有内切葡聚糖酶活性，而且其活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白的方法；该方法中使用的载体；具有内切葡聚糖酶活性，而且其活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白；及其编码多核苷酸。本发明的另一 个目标是用上述微生物提供一种可有效地生产用于洗涤衣物的酶蛋白的微生物。 
解决问题的方法 
本发明人进行了广泛研究，发现将焦谷氨酸(以下有时以pQ表示)或含pQ的肽加到属于家族45，并具有内切葡聚糖酶活性的蛋白的N末端的蛋白，例如N末端添加型纤维素酶，与野生型纤维素酶相比较，其内切葡聚糖酶活性在表面活性剂存在时没有显著降低。 
在存在阴离子表面活性剂时保持高内切葡聚糖酶活性的性质对用于衣物洗涤的酶来说是非常有用的，但没有发现这样的纤维素酶。另外，也没有关于通过添加焦谷氨酸或含焦谷氨酸的肽而在存在表面活性剂时保持酶活性的作用的报道。 
本发明的另一个方面是关于所有N末端未被保护而在存在表面活性剂时保持酶活性的纤维素酶，可通过向纤维素酶中加入焦谷氨酸或含焦谷氨酸的肽来抑制在表面活性剂存在时活性降低。可添加焦谷氨酸或含焦谷氨酸的肽的纤维素酶无特别的限定，但优选属于家族45的纤维素酶。 
因此，本发明包括以下方面： 
(1)一种抑制在存在表面活性剂时内切葡聚糖酶活性降低的方法，其特征在于修饰具有内切葡聚糖酶活性、而N末端不是焦谷氨酸的蛋白的N末端，使其成为N末端具有焦谷氨酸的蛋白； 
(2)(1)中的方法，其中通过向具有内切葡聚糖酶活性、而N末端不是焦谷氨酸的蛋白的N末端加入焦谷氨酸或可转变为焦谷氨酸的氨基酸，或N末端含有焦谷氨酸或可转变为焦谷氨酸的氨基酸的肽来进行修饰； 
(3)(1)中的方法，其中通过用焦谷氨酸或可转变为焦谷氨酸的氨基酸，或N末端含有焦谷氨酸或可转变为焦谷氨酸的氨基酸的肽替换具有内切葡聚糖酶活性、而N末端不是焦谷氨酸的蛋白的N末端氨基酸或包含N末端的区域来进行修饰； 
(4)(1)到(3)任一项中的方法，其中具有内切葡聚糖酶活性、而N末端不是焦谷氨酸的蛋白是属于家族45的纤维素酶； 
(5)一种具有内切葡聚糖酶活性的修饰蛋白，其N末端氨基酸通过氨基酸修饰转变为焦谷氨酸； 
(6)(5)中的修饰蛋白，其是通过(1)到(4)任一项中的方法获得的； 
(7)一种从以下组中选择的蛋白： 
(a)包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白； 
(b)包含在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中缺失、替换、***或添加一个或多个氨基酸所得的氨基酸序列，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的修饰蛋白；及 
(c)同源蛋白，其氨基酸序列与包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白的同源性至少为85％，并且，其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小； 
(8)编码(5)到(7)任一项中的蛋白的多核苷酸； 
(9)从以下组中选择的多核苷酸： 
(a)包含SEQ ID NO：1、3、37或39所示的核酸序列的多核苷酸； 
(b)包含在SEQ ID NO：1、3、37或39所示的核酸序列中缺失、替换、***或添加一个或多个碱基所得的碱基序列，而且其所编码蛋白的内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的多核苷酸；及 
(c)与SEQ ID NO：1、3、37或39所示的核酸序列在严紧条件下杂交，而且编码内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白的多核苷酸； 
(10)含(8)或(9)所述的多核苷酸的表达载体； 
(11)用(10)所述的表达载体转化的宿主细胞； 
(12)(11)所述的宿主细胞，其中所述宿主细胞是酵母或丝状真菌； 
(13)(12)所述的宿主细胞，其中，所述丝状真菌是属于腐质霉属(Humicola)或木霉属的微生物； 
(14)(13)中的宿主细胞，其中，所述丝状真菌是Humicola insolens或绿色木霉(Trichoderma viride)； 
(15)一种生产(5)到(7)中任何一种蛋白的方法，包括：培养(11)到(14)任一项中的宿主细胞，从培养的宿主细胞或培养物 中回收蛋白；及 
(16)一种由(15)所述的方法产生的蛋白。 
发明效果 
根据本发明可有效产生用于衣物洗涤，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的新型纤维素酶。 
发明的优选实施方案 
属于家族45并具有内切葡聚糖酶活性的蛋白(此后有时指“属于家族45的纤维素酶”)
家族45
此处所用术语“家族45”是指根据Henrissat B.等人.关于碳水化合物活性酶的疏水簇分析而划分为家族45的蛋白[Henrissat B.，Bairoch A.Updating the sequence-based classification of glycosyl hydrolases.Biochem.J.316：695-696(1996)]。 
具有内切葡聚糖酶活性的蛋白
此处所用术语“具有内切葡聚糖酶活性的蛋白”是指具有内切葡聚糖酶活性的酶，例如内切-1，4-β-葡聚糖酶(EC3.2.1.4)，它可水解β-1，4-葡聚糖中的β-1，4-吡喃型葡萄糖基键。 
表面活性剂
此处所用术语“表面活性剂”是一种含在衣物洗涤剂中的洗涤剂成分，可广泛地分为阴离子、阳离子和非离子表面活性剂。通常使用的是阴离子表面活性剂。本发明中所用的优选阴离子表面活性剂可以是，例如线性烷基苯磺酸盐(以下有时以LAS表示)。 
内切葡聚糖酶活性
此处所用术语“内切葡聚糖酶(以下以“EGU”表示)活性”定义为通过以下流程测定的羧甲基纤维素溶液粘度的降低而得到的酶活性。 
更具体地，作为底物溶液，将羧甲基纤维素(Hercules)溶解在0.1mol/L的Tris-HCl缓冲液(pH10.0)中，使终浓度为3.5％。预先将底物溶液(5mL)在40℃加热10分钟，然后加入0.15mL酶溶液，将整个溶液混匀，在40℃反应30分钟。通过R型粘度计(RE100；TOKI SANGYO CO.，LTD.)在40℃测定混合液的粘度。“1单位”酶活性定义为在每个反应条件下，将最初粘度降低到1/2所用的酶量。 使用的阴离子表面活性剂是线性烷基苯磺酸盐(Wako Pure Chemical Industries，Co.，Ltd.)，将其加到羧甲基纤维素溶液中，至终浓度为800ppm。 
存在表面活性剂时内切葡聚糖酶活性降低的抑制
此处所用术语“存在表面活性剂时其内切葡聚糖酶活性降低较小“是指将其N末端根据本发明进行修饰的蛋白(N末端修饰型蛋白)与修饰前的原始蛋白(以下简称为原始蛋白)在存在表面活性剂时，对其内切葡聚糖酶活性进行比较，N末端修饰型蛋白的内切葡聚糖酶活性比原始蛋白高。 
原始蛋白
本发明方法中所用的原始蛋白并无特别限定，只要N末端是除焦谷氨酸外的氨基酸，并具有内切葡聚糖酶活性的蛋白即可。原始蛋白优选地可以包括，例如纤维素酶(例如，内切葡聚糖酶、纤维二糖水解酶或β-葡萄糖苷酶)，及属于家族45的纤维素酶。在本文中，只要原始蛋白至少具有内切葡聚糖酶活性即可，因此可以是只具有内切葡聚糖酶活性的蛋白，或具有除内切葡聚糖酶活性外其它一种或多种酶活性的蛋白。另外，原始蛋白可以是天然蛋白或经遗传修饰的蛋白。 
属于家族45的纤维素酶的来源
属于家族45的纤维素酶可通过基因工程技术，例如重组DNA技术或多肽合成技术产生，或从分离的野生型菌株获得。另外，纤维素酶包括属于家族45的野生型纤维素酶的突变体。 
属于家族45的纤维素酶可从微生物，例如丝状真菌或接合菌获得。丝状真菌包括，例如属于腐质霉属(例如Humicola insolens)、木霉属(例如绿色木霉)、圆孢霉属(例如Staphylotrichum coccosporum)或Myriococcum(例如Myriococcum thermophilum)的微生物。更具体地，来源于腐质霉属的纤维素酶包括，例如CBH I、EG V、NCE2、NCE4或NCE5等；来源于木霉属的纤维素酶包括，例如CBH I、CBH II、EG II和EG III等；来源于Staphylotrichum属的纤维素酶包括，例如STCE1和STCE3等；及来源于Myriococcum属的纤维素酶包括，例如MTE1等。接合菌包括，例如属于根霉属(Rhizopus)(例如米曲霉(Rhizopus oryzae))、毛霉属(Mucor)(例如卷枝毛霉(Mucor circinelloides))或须霉属(Phycomyces) (例如闪光须霉(Phycomyces nitens))的微生物。更具体地，包括来源于米曲霉的RCE I、RCE II或RCE III；来源于卷枝毛霉的MCEI或MCE II；或来源于闪光须霉的PCE I(WO00/24879)。 
焦谷氨酸或含焦谷氨酸的肽
此处所用术语“焦谷氨酸“是指通过成熟蛋白N末端谷氨酰胺或谷氨酸的环化而产生的焦谷氨酸。焦谷氨酸具有N末端氨基不暴露在外的性质。可在体内或体外进行焦谷氨酸的环化。体内，通过将编码经基因工程设计而使成熟蛋白的N末端为谷氨酰胺或谷氨酸的修饰蛋白的多核苷酸在宿主中进行表达，从而得到焦谷氨酸环化的蛋白。体外，将N末端具有谷氨酰胺或谷氨酸的蛋白用酸性溶液，例如甲酸进行处理，从而得到焦谷氨酸环化的蛋白。 
此处所用术语“肽”是指含一个或多个氨基酸，而且氨基酸通过肽键聚合的化合物。因此，此处所用术语“含焦谷氨酸的肽”是指其N末端为焦谷氨酸的肽。含焦谷氨酸的肽包括两个或多个交联的氨基酸，例如2到40个氨基酸，优选地为2到30个氨基酸，更优选地为2到20个氨基酸，更优选地为2到10个氨基酸，更优选地为2到5个氨基酸，最优选地为2到4个氨基酸交联。氨基酸并无特别限定，只要他们可被本领域技术人员用于所述目的即可。 
在本发明的方法中，对将原始蛋白修饰为N末端具有焦谷氨酸的蛋白的方法不进行限定，只要可进行蛋白修饰即可。这些方法包括，例如基因工程技术或化学技术。 
根据基因工程技术，原始蛋白可通过，例如基因工程水平上的添加和/或替代合适的氨基酸或氨基酸序列而进行修饰。 
在一个通过基因工程添加的实施例中，通过向原始蛋白(例如，具有内切葡聚糖酶活性，且N末端不是焦谷氨酸的蛋白)的N末端加入焦谷氨酸或N末端含焦谷氨酸的肽而进行蛋白修饰。 
例如，更具体地，通过基因工程技术进行添加的实施例可包括以下步骤： 
(1)向编码原始蛋白的多核苷酸的5’末端添加编码可转变为焦谷氨酸的氨基酸(谷氨酰胺或谷氨酸)的多核苷酸，或编码N末端具有可转变为焦谷氨酸的氨基酸的多肽的多核苷酸；及 
(2)在可使N末端氨基酸进行焦谷氨酸环化的宿主中表达 (1)中所得的多核苷酸。 
在通过基因工程替代的实施例中，通过将原始蛋白的N末端氨基酸或N末端区替代为焦谷氨酸或N末端含焦谷氨酸的肽而进行蛋白修饰。 
例如，更具体地，通过基因工程替代的实施例可包括以下步骤： 
(1)将编码原始蛋白的5’末端或含5’末端区的多核苷酸用编码可转变为焦谷氨酸的氨基酸(谷氨酰胺或谷氨酸)的多核苷酸，或编码N末端具有可转变为焦谷氨酸的氨基酸的肽的多核苷酸替代；及 
(2)在可使N末端氨基酸进行焦谷氨酸环化的宿主中表达(1)中所得的多核苷酸。 
使用化学技术的实施例可包括，例如， 
(a)将焦谷氨酸(或N末端含焦谷氨酸的肽)直接加到原始蛋白的N末端的实施例； 
(b)将可转变为焦谷氨酸的氨基酸(或N末端具有可转变为焦谷氨酸的氨基酸的肽)通过化学方法加到原始蛋白N末端，并通过化学方法进行N末端氨基酸焦谷氨酸化的实施例；或 
(c)将N末端具有可转变为焦谷氨酸的氨基酸的原始蛋白的N末端氨基酸通过化学方法焦谷氨酸化的实施例。 
在属于家族45的纤维素酶的N末端加入焦谷氨酸或合焦谷氨酸的肽的方法
修饰方法可通过用属于家族45的纤维素酶在实施例中进行进一步阐述。在属于家族45的纤维素酶的N末端加入焦谷氨酸或含焦谷氨酸的肽的方法可通过基因工程技术进行。在通常所用的纤维素酶的生产中，编码所需纤维素酶的多核苷酸的编码区可连接到在丝状真菌等宿主中有功能的启动子和终止子之间，然后将得到的表达盒转入宿主中。另外，编码在宿主细胞中具有分泌功能的信号肽序列的多核苷酸也可以加到表达盒中。当将表达盒引入到宿主细胞中时，所需的纤维素酶可分泌到培养基中，从而可很容易地收集所需的纤维素酶。在这种情况下，可通过向紧邻分泌信号肽序列的下游加入编码氨基酸的多核苷酸而将所需氨基酸加到纤维素酶的N末端。另外，也可通过用宿主中的分泌信号序列进行N末端氨基酸的氨基基团的修饰。例 如，在来源于绿色木霉的cbh1或cbh2，或来源于Humicola insolens的NCE2或NCE5中，N末端是焦谷酸化的，这种修饰可通过用来源于这种微生物的分泌信号序列并在绿色木霉或Humicola insolens中表达来制备。根据优选实施例，如上所述制备的属于家族45的修饰纤维素酶具有在存在表面活性剂时其内切葡聚糖酶活性降低很小的优势性质。 
根据另一个实施例，整个序列可根据本领域技术人员常用的技术进行化学合成。在这种情况下，可用部分天然蛋白进行合成。 
本发明中的蛋白
本发明中的蛋白通过将具有内切葡聚糖酶活性的原始蛋白的N末端修饰为焦谷氨酸而进行制备(例如，通过获得属于家族45的纤维素酶，并向该成熟蛋白的N末端氨基酸中链加入焦谷氨酸(pQ)或含焦谷氨酸的肽而制备)，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小。另外，本发明包括通过上述方法制备的，其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白。 
更具体地，本发明中的蛋白包括从由以下蛋白组成的组中选择的蛋白： 
(a)包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白； 
(b)含有在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中缺失、替换、***或添加一个或多个氨基酸所得的氨基酸序列，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的修饰蛋白；及 
(c)同源蛋白，其氨基酸序列与SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白的同源性至少为85％，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小。 
SEQ ID NO：2的氨基酸序列是N末端添加型NCE4的氨基酸序列(参见实施例A2)，其中含有5个氨基酸(N末端为焦谷氨酸)的肽加到来源于Humicola insolens MN200-1的内切葡聚糖酶NCE4的N末端。 
SEQ ID NO：4的氨基酸序列是N末端替代型STCE1的氨基酸序列(参见实施例B2)，其中含有4个氨基酸(N末端为焦谷氨酸)的肽替代来源于Staphylotrichum coccosporum IFO 31817的内切葡聚 糖酶STCE1的N末端氨基酸(Ala)。 
SEQ ID NO：38的氨基酸序列是pQ添加型STCE1的氨基酸序列(参见实施例B3)，其中焦谷氨酸加到来源于Staphylotrichum coccosporum IFO 31817的内切葡聚糖酶STCE1的N末端。 
SEQ ID NO：40的氨基酸序列是N末端添加型STCE1的氨基酸序列(参见实施例B4)，其中含有4个氨基酸(N末端为焦谷氨酸)的肽加到来源于Staphylotrichum coccosporum IFO 31817的内切葡聚糖酶STCE1的N末端。 
此处所用术语“修饰蛋白”是指包含在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中缺失、替代、***或添加一个或多个氨基酸(例如，一个或几个氨基酸)所得的氨基酸序列，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白。修饰例如“缺失、替代、***或添加”的氨基酸的数目优选地是1到30，更优选地是1到10，最优选地是1到6。 
另外，修饰蛋白是指包含在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中保守替代一个或多个氨基酸，而且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白。此处所用术语“保守替代”是指蛋白中一个或多个氨基酸残基可被具有相同化学性质的不同氨基酸替代，从而使其蛋白活性不发生实质性改变。保守替代可包括，例如将疏水残基替代为另一个疏水残基，或将极性残基替代为另一个具有相同电荷的极性残基。具有相同化学性质并可互相保守替代的氨基酸是本领域技术人员已知的。更具体地，非极性(疏水)氨基酸包括，例如丙氨酸、缬氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、脯氨酸、色氨酸、苯丙氨酸或蛋氨酸。极性(中性)氨基酸包括，例如甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸、谷氨酰胺、天冬酰胺或半胱氨酸。带正电荷的碱性氨基酸包括，例如精氨酸、组氨酸或赖氨酸。带负电荷的酸性氨基酸包括，例如天冬氨酸或谷氨酸。 
此处所用术语“同源蛋白”是指其与包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的同源性(序列相似性)至少为85％(优选地是90％或以上，最优选地是95％或以上)，且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的蛋白。此处所用同源性以用已知的同源性分析软件FASTA3，根据缺省参数计算出的值(相似性)表示 [Science，227，1438-1441(1985)；Proc.Natl.Acad.Sci.USA，85，2444-2448(1988)；http://www.ddbj.nig.ac.jp/E-mail/homology-j.html]。 
如上所述，在本发明的“由氨基酸序列SEQ ID NO：2所示的蛋白”中，除了加到N末端的由5个氨基酸组成的肽外，其它部分来源于内切葡聚糖酶NCE4。另外，在本发明的“氨基酸序列SEQ ID NO：4、38或40所示的蛋白”中，除了N末端氨基酸或肽外，其它部分来源于内切葡聚糖酶STCE1。内切葡聚糖酶NCE4和STCE1属于家族45。已知属于家族45的内切葡聚糖酶包括，例如来源于腐质霉属的NCE5(WO01/90375)。 
在图1和2中，所示的是内切葡聚糖酶STCE1的氨基酸序列[信号肽(SEQ ID NO：43)，成熟蛋白(SEQ ID NO：44)]、内切葡聚糖酶NCE4的氨基酸序列[信号肽(SEQ ID NO：45)，成熟蛋白(SEQ ID NO：46)]和内切葡聚糖酶NCE5的氨基酸序列[信号肽(SEQ ID NO：47)，成熟蛋白(SEQ ID NO：48)]的比对结果。 
图1所示的是前半部分(即N末端部分)的比对结果，图2所示的是后半部分(即C末端部分)的比对结果。图1和2中的符号“＊”表示与STCE1一致的氨基酸。 
如图1和2所示，属于家族45的内切葡聚糖酶包括作为共有结构域的催化结构域(1到207位)，有些含有接头(208到258位)和/或纤维素结合结构域(CBD)(259到295位)。在本文中，以上结构域之后的括号中的数字表示内切葡聚糖酶STCE1的氨基酸序列(SEQ ID NO：44)中的氨基酸编号。 
在内切葡聚糖酶的催化结构域和纤维素结合结构域均存在保守氨基酸，但在接头没有明显的保守区存在。含多个保守氨基酸或在该区域所含的共有氨基酸的区域(例如，催化结构域或纤维素结合结构域，特别是催化结构域)是对内切葡聚糖酶(例如STCE1或NCE4)酶活性重要的区域或氨基酸。因此，在除了这种重要区域或氨基酸的其它区域或氨基酸处进行氨基酸修饰(例如缺失、替代、***和/或添加，特别是保守替代)，可高效率获得该酶活性得到维持的修饰蛋白质或同源蛋白质，而无需过度试验。。 
另外，即使在内切葡聚糖酶含多个保守氨基酸的区域中，用不同 的氨基酸对非共有氨基酸进行修饰(优选地是相同的氨基酸进行保守替代)也可以保持酶活性。因此，通过这种修饰，可高效率获得该酶活性得到维持的修饰蛋白质或同源蛋白质，而无需过度试验。 
即使是含有大量保守氨基酸的区域内的共有氨基酸，改变为其它氨基酸时，有时也可维持其酶活性，尤其是改变为可保守取代类似氨基酸的时候，其可能性增高。本发明的修饰蛋白质或同源蛋白质，只有是具有内切葡聚糖酶活性，可以是任意区域，例如催化区域、接头或纤维素结合区域所含的氨基酸改变的蛋白质。 
编码本发明中蛋白的多核苷酸
根据本发明，提供编码包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白，或其修饰或同源蛋白(以下统称为本发明中的蛋白)的多核苷酸。当给定一个蛋白的氨基酸序列时，则可容易地选择编码该氨基酸序列的核苷酸序列，因此可选择多种编码本发明中蛋白的核苷酸序列。此处所用术语“多核苷酸”包括DNA和RNA，DNA是优选的。 
本发明中的多核苷酸包括从由以下多核苷酸组成的组中选择的多核苷酸： 
(a)包含核苷酸序列SEQ ID NO：1、3、37或39的多核苷酸； 
(b)包含在核苷酸序列SEQ ID NO：1、3、37或39中缺失、替代、***或添加一个或多个碱基所得的碱基序列，而且其所编码蛋白的内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的多核苷酸；及 
(c)在严紧条件下与核苷酸序列SEQ ID NO：1、3、37或39所示的多核苷酸杂交，而且其所编码蛋白的内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的多核苷酸。 
在上述(b)中的核苷酸序列中，被缺失、替代、***或添加的核苷酸的数目可以是例如1到90，优选地是1到30，更优选地是1到18，最优选地是1到9。 
此处所用术语“在严紧条件下”是指以下条件。根据ECL直接DNA/RNA标记和检测***(Amersham)的说明书所述，在42℃预杂交1小时后，加入核苷酸序列SEQ ID NO：1、3、37或39所示的多核苷酸，并在42℃杂交14到16小时。杂交后，用含0.4％SDS和6mol/L尿素的0.5×SSC(1×SSC；15mmol/L柠檬酸钠，150mmol/L 氯化钠)在42℃洗涤20分钟，并重复2次，然后用5×SSC在室温下洗涤5分钟，并重复2次。 
本发明中的多核苷酸包括天然多核苷酸。也可以是全合成的多核苷酸。而且可用部分天然多核苷酸进行合成。典型地，本发明中的多核苷酸可从来源于微生物的基因组文库，通过基因工程的普通方法，例如用根据部分氨基酸序列信息设计的合适的DNA探针，进行筛选而获得。 
本发明中的蛋白的产生
本发明中的蛋白可通过用含编码本发明蛋白的多核苷酸片段的多核苷酸分子(优选以表达载体形式)转化宿主细胞，从而使多核苷酸分子在宿主细胞中复制，并进行基因表达而在宿主细胞中产生。 
根据本发明，提供了含编码本发明中的蛋白的多核苷酸片段，从而使多核苷酸片段可在宿主微生物中复制并表达蛋白的表达载体。 
本发明中的表达载体可基于存在于染色体外并能独立于染色体复制而进行复制的自主复制载体(例如质粒)进行构建。选择性地，本发明中的表达载体可以是用载体转化宿主时将其整合到宿主微生物基因组中，与染色体一起复制的载体。本发明中载体的构建可通过基因工程中通用流程或方法进行。 
为了用本发明中的表达载体转化宿主微生物而表达具有所需活性的蛋白。优选地是表达载体除了本发明中的多核苷酸片段外还包括，例如可调控表达的多核苷酸，或筛选转化子的基因标记。 
在本发明中可使用多种调控转录或翻译的信号作为可调控表达的多核苷酸，例如启动子、终止子或编码分泌信号肽的多核苷酸。可通过普通方法将调控的多核苷酸与其***片段进行连接。 
本发明中所用的启动子并无特别限定，只要其在宿主微生物中具有转录活性即可。启动子可以是调控来源于相同或不同宿主微生物的编码蛋白的基因表达的多核苷酸。例如，可在大肠杆菌中使用乳糖操纵子或色氨酸操纵子的启动子；在酵母中使用乙醇脱氢酶基因、酸性磷酸酶基因、半乳糖利用基因或甘油醛-3-磷酸脱氢酶基因的启动子；在真菌例如丝状真菌中使用α-淀粉酶基因、葡糖淀粉酶基因、纤维二糖水解酶基因或甘油醛-3-磷酸脱氢酶基因的启动子。 
信号肽并无特别限定，只要其可在宿主微生物中提供蛋白分泌作 用即可。信号肽多核苷酸可从与编码蛋白的基因相同或不同来源的宿主微生物中获得。 
基因标记可根据筛选转化子的方法进行合适的选择。例如，在本发明中可使用抗药基因或与营养缺陷型突变互补的基因作为基因标记。例如，当宿主是细菌时，可使用氨苄青霉素抗性基因、卡那霉素抗性基因或四环素抗性基因。当宿主是酵母时，可使用色氨酸合成基因(trpI，trpC)、尿嘧啶合成基因(ura3)、亮氨酸合成基因(leu2)或组氨酸合成基因(his3)。当宿主是真菌例如丝状真菌时，可使用越霉素抗性基因、硝酸盐利用基因(niaD)、精氨酸合成基因(argB)、尿嘧啶合成基因(pyr4)、潮霉素抗性基因、除草剂抗性基因、博来霉素抗性基因或aureobasidin抗性基因。 
根据本发明，提供用表达载体转化的微生物。本发明中所用的宿主-载体***并无特别限定。例如，可使用大肠杆菌、放线菌、酵母或丝状真菌***，或利用这种微生物进行融合蛋白表达的***。当用酵母作为宿主时，包括，例如，使用酿酒酵母属(Saccharomyces)、汉逊酵母属(Hansenula)、或毕赤酵母属(Pichia)的微生物，优选地是酿酒酵母。当使用丝状真菌作为宿主时，可以使用任何丝状真菌，优选地是属于腐质霉属、木霉属、曲霉属(Aspergillus)、Acremonium或镰刀菌属(Fusarium)的微生物，更优选地是属于腐质霉或木霉属的微生物。更优选地是Humicola insolens、Humicola thermoidea、绿色木霉、里氏木霉(Trichoderma reesei)、长梗木霉(Trichoderma longibrachiatum)、Staphylotrichum coccosporum、黑曲霉(Aspergillus niger)、米曲霉(Aspergillus oryzae)、尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)或Acremonium cellulolyticus，优选地是Humicola insolens或绿色木霉。 
可通过普通方法，例如钙离子法、锂离子法、电穿孔法、PEG法、土壤杆菌法或基因枪法用表达载体转化微生物，根据待转化宿主选择合适的方法。 
在本发明中，将本发明中的转化子进行培养，得到的培养物用来获得本发明的目的蛋白。本发明中的转化子可通过普通方法选择合适的培养基或培养条件进行培养。 
可向培养基中补充例如可被本发明中的转化子代谢或利用的碳 源或氮源、无机盐、各种维生素、各种氨基酸例如谷氨酸或天冬酰胺、微量营养物质例如核苷酸、或选择试剂例如抗生素。另外，可适当添加利于本发明中的转化子生长或促进本发明中的蛋白产生的有机和/或无机物质。另外，如果需要，可使用含其它营养物质的天然或合成培养基。 
可在培养基中使用任何碳源和氮源，只要它可被本发明中的转化子利用即可。可利用碳源可使用例如蔗糖、淀粉、甘油、葡萄糖、果糖、麦芽糖、乳糖、纤维素、纤维二糖、糊精、动物油或植物油或其水解物。一般来说，其浓度在培养基中优选地是0.1％到5％。可利用氮源可使用例如动植物组分或其提取物、例如蛋白胨、肉提取物、玉米浸出液或脱脂豆粉、有机酸铵盐例如琥珀酸铵盐或酒石酸铵盐、尿素或其它多种含氮化合物例如无机酸或有机酸。无机盐可使用例如那些可产生钠、钾、钙、镁、钴、磷酸、硫酸或其它离子的无机盐。 
可适当使用任何含其它组分，例如细胞、分泌液或微生物例如酵母提取物、或细小植物粉的培养基，只要这种培养基不干预本发明中的转化子生长和本发明中的蛋白的产生和积累即可。当培养具有营养需求的突变株时，通常向培养基中加入满足其营养需求的物质。在本文中，如果培养基中含天然底物，则不需加入这种营养物质。 
根据所用的转化子和外部条件，对培养条件例如培养基成分、培养基流动性、培养温度、搅拌速率或通气速率进行合适的选择和控制，从而得到优选的结果。如果在液体培养基中产生泡沫，则可使用消泡剂例如硅树脂油、植物油、矿物油或表面活性剂。 
在获得的培养物中积累的本发明中的蛋白包含于本发明中的转化子和培养物滤液中。因此，可通过离心分离培养物组分而从培养物滤液和转化子细胞中获得本发明中的蛋白。 
本发明中的蛋白可通过普通方法从培养物滤液中回收。从培养物中回收本发明中的蛋白的流程可按单独或按任意顺序组合，或重复进行。例如，可使用萃取过滤、离心、透析、浓缩、干燥、冷冻、吸附、解吸附、基于在各种溶剂中溶解度不同的分离方法(例如沉淀、盐析、结晶、重结晶、反向溶解或层析)。 
另外，本发明中的蛋白可从本发明中的转化子的培养物中获得。例如，通过普通方法从培养物中提取(例如，研磨处理或压力破碎)、 回收(例如，过滤或离心)、或纯化(例如，盐析或溶剂沉淀)。 
可根据普通方法对得到的粗物质进行纯化，例如用载体物质例如葡聚糖、纤维素、琼脂糖、合成多聚物或硅胶进行柱层析。本发明中的目的蛋白的纯品可从本发明中的转化子培养物中通过上述方法单独或以合适组合而获得。 
如上所述，根据本发明的另一个实施例，提供本发明中的新型蛋白的生产过程。可以与制备转化子的原始宿主实质上相同的方式进行转化子的培养(包括培养条件)。转化子培养后的目的蛋白的回收方法可通过常用的方法进行。 
保藏菌株
用本发明的表达载体pEGD01转化的大肠杆菌JM109(Escherichia coli/pEGD01)(FERM BP-5973)在1996年7月12日国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心[(以前名称)通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(地址：
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300011
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)]，并于1997年6月13日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERM BP-5973[FERM P-15729]。 
用本发明的表达载体pMKD01转化的大肠杆菌JM109(Escherichia coli/pMKD01)(FERM BP-5974)在1996年7月12日在国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心[(以前名称)通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(地址： 
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300012
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)]，并于1997年6月13日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERM BP-5974[FERM P-15730]。 
用本发明的表达载体pCB1-M2XR转化的大肠杆菌JM109(Escherichia coli/pCB1-M2XR)(FERM BP-6045)在1996年9月9日在国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心[(以前名称)通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(地址： 
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300013
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)]，并于1997年8月11日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERM BP-6045[FERM P-15840]。 
在本文中，本发明中的质粒pCB1-M2不仅可通过实施例中描述的 方法获得，而且也可以通过预先用限制性酶XbaI消化的质粒pCB1-M2XR的自连而获得。 
作为本发明中的表达载体的宿主的Humicola insolens MN200-1(FERM BP-5977)在1996年7月15日在国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心[(以前名称)通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(地址：
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300021
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)]，并于1997年6月13日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERMBP-5977[FERM P-15736]。 
作为本发明中的表达载体的宿主的绿色木霉MC300-1(Trichoderma viride MC300-1)(FERM BP-6047)在1996年9月9日在国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心[(以前名称)通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(地址： 
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300022
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)]，并于1997年8月11日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERM BP-6047[FERM P-15842]。 
用本发明的表达载体pUC118-STCEex转化的大肠杆菌JM109(E.coli DH5α/pUC118-STCEex)(FERM BP-10127)在2003年12月1日在国内保藏于独立行政法人产业技术综合研究所特许生物寄托中心(地址：
Figure DEST_PATH_GDA00002950124300023
305-8566日本国茨城县筑波东1丁目1番地1中央第6)，并于2004年9月15日转为国际保藏。国际保藏号(国际保藏号后的括号[]中的数字是国内保藏号)是FERM BP-10127[FERM P-19602]。在本文中，质粒pUC118-STCEex是通过将STCE基因***到质粒pUC118的BamHI位点而得到的质粒。包含在BamHI片段中的内切葡聚糖酶STCE1基因包括一个内含子，其序列为SEQ ID NO：5。 
实施例
本发明将通过以下实施例进行进一步描述，但不作为对本发明的限制。 
实施例A1：在Humicola insolens中表达N末端添加型纤维素酶和野生型纤维素酶的表达载体的构建
(1)用于表达N末端添加型纤维素酶的表达载体pMKD01的构建 
用BamHI消化质粒pUC118(Takara Bio)。得到的片段用DNA平端化试剂盒(Takara Bio)进行平端化，然后用DNA连接试剂盒(Takara Bio)进行自连，从而得到pUC118BN。将所得的pUC118BN用SphI消化，平末端化后自连得到pUC118BSN。然后，根据特开平No.8-126492中所述的方法从Humicola insolens MN200-1(FERM BP-5977)获得含纤维素酶NCE2基因全长的3.4kb PstI-XbaI片段。将该片段连接到预先用相同的限制性酶消化的pUC118BSN中，得到pUC118BSN-PX。用Sculptor体外突变***(Amersham Bioscience)在pUC118BSN-PX引入定点突变，得到质粒pM21。用于突变的寡核苷酸使用的是寡核苷酸MNC-02和MNC-03。 
MNC-02：5’-GAGCGCCAGAACTGTGGATCCACTTGGTGAGCAAT G-3’(SEQ ID NO：6) 
MNC-03：5’-TCCGCCGTTCTGAGCGGATCCAGGCGTTTGGCGCG-3’(SEQ ID NO：7) 
用BamHI消化质粒pM21，并与来源于Humicola insolens MN200-1的纤维二糖水解酶基因(NCE3)的BamHI消化的PCR片段连接，得到质粒pKM04。用来源于Humicola insolens MN200-1(FERM BP-5977)的基因组DNA(WO98/03640)为模板，以下列引物MKA-05和MKA-06扩增NCE3的PCR片段。 
MKA-05：5’-GCCGCCCAGCAGGCGGGATCCCTCACCACCGAGAG G-3’(SEQ ID NO：8) 
MKA-06：5’-TGATCGTCGAGTCAGGGATCCAGAATTTACAGGCA C-3’(SEQ ID NO：9) 
然后，用来源于构巢曲霉(Aspergillus nidulans)的trpC基因的启动子和终止子(Mullaney，E.J.，et.al.，Mol.Gem.Genet.，199，37-45，1985)制备可在Humicola insolens中表达特开昭59-175889号公报记载的越霉素抗性基因的基因。将得到的基因连接到用XbaI消化的质粒pKM04中，得到表达N末端添加型纤维素酶的表达载体 pKMD01(FERM BP-5974)。在pKMD01中，在距NCE2基因的成熟蛋白N末端下游10bp和其终止密码子下游3bp处引入BamHI识别位点，从而在属于家族45的纤维素酶的N末端加入5个氨基酸残基。 
表1
Figure BDA00002161947800191
(2)表达野生型纤维素酶的表达载体pJD01的构建 
向以上(1)中获得的质粒pM21中用寡核苷酸pMN-Bam引入定点突变，得到引入突变的质粒pM21-m-A1。 
pMN-Bam：5’-GGTCAAACAAGTCTGTGCGGATCCTGGGACAAGA TGGCCAAGTTCTTCCTTAC-3’(SEQ I D NO：12) 
用限制性酶HindIII和BamHI消化质粒pM21-m-A1，回收约1kb的片段。然后，将实施例A1(1)中获得的pMKD01用HindIII和BamHI消化，回收约7kb的片段。将这些片段连接，得到质粒pJD01。在该载体中，在距NCE2基因翻译起始位点上游15bp和其终止密码子下游3bp处引入BamHI识别位点，从而将属于家族45的纤维素酶从转录起始位点进行表达。 
表2
实施例A2：表达野生型NCE4和N末端添加型NCE4的表达载体的构建，Humicola insolens的转化及活性评估
(1)表达载体的构建 
将全长NCE4基因编码区连接到实施例A1(2)中获得的pJD01中，构建pN2EX-N4作为野生型NCE4的表达载体。 
首先，用来源于Humicola insolens MN200-1的基因组DNA为模板，以引物组合NCE4-Ne和NCE4-Ce进行PCR扩增，得到NCE4基因的全长编码区。将得到的约0.9kb的PCR产物用BamHI消化，并连接到预先用相同的限制性酶消化的pJD01中，得到pN2EX-N4。 
NCE4-Ne：5’-GGGGGGATCCTGGGACAAGATGCGTTCCTCCCCTC TC-3’(SEQ ID NO：15) 
NCE4-Ce：5’-GGGGGGATCCCTGCGTTTACAGGCACTGATGG-3’(SEQ ID NO：16) 
将已去除分泌信号序列的NCE4基因成熟蛋白的编码区连接到实施例A1(1)中获得的pMKD01(FREM BP-5974)中，得到pEGD01(FREM BP-5973)作为N末端添加型NCE4的表达载体。首先，用来源于Humicola insolens MN200-1的基因组DNA为模板，以引物组合NCE4-Ns和NCE4-Cs进行PCR扩增，得到NCE4基因的成熟蛋白编码区。将得到的约0.8kb的PCR产物用BamHI消化，并连接到预先用相同的限制性酶消化的pMKD01中，得到PEG01。 
NCE4-Ns：5’-CCGGTGTTGGCCGGATCCGCTGATGGCAAG-3’(SEQ ID NO：17) 
NCE4-Cs：5’-TAAGGCCCTCAAGGATCCCTGCGTCTACAG-3’(SEQ ID NO：18) 
(2)含野生型NCE4和N末端添加型NCE4的转化子 
将Humicola insolens MN200-1在S培养基(3.0％葡萄糖，2.0％酵母提取物，0.1％聚胨，0.03％氯化钙和0.03％硫酸镁pH6.8)中37℃培养24小时。通过离心收集得到的菌丝体，用0.5mol/L蔗糖洗涤，并悬浮在含3mg/mL β-葡糖醛酸苷酶(Sigma)、1mg/mL几丁质酶和1mg/mL消解酶20T(Seikagaku Corp.)的0.5mol/L蔗糖溶液中。悬浮液在30℃轻轻振荡60到90分钟以得到原生质体。通过过滤和离心收集得到的原生质体，用SUTC缓冲液(0.5mol/L蔗糖，10mmol/L氯化钙和10mmol/L Tris-HCl，pH7.5)洗涤，并重悬到 SUTC中而得到原生质体悬浮液。 
向100μL原生质体悬浮液中加入10μL DNA溶液(pEGD01或pN2EX-N4)。每个在冰上静置5分钟，然后加入400μL PEG溶液(60％聚乙二醇4000，10mmol/L氯化钙和10mmol/L Tris-HCl，pH7.5)，整个溶液在冰上静置20分钟。将得到的原生质体悬浮液用SUTC洗涤后，用含200μg/mL潮霉素B的YMG培养基(1％葡萄糖，0.4％酵母提取物，0.2％麦芽提取物及1％琼脂；pH6.8)与YMG软琼脂一起覆盖在原生质体悬浮液上。平板在37℃培养5天，以获得转化子克隆。 
(3)培养基上清中野生型NCE4和N末端添加型NCE4的EGU活性比较 
根据WO98/03667中所述方法培养得到的转化子，得到培养上清。将培养上清进行SDS-PAGE，选择可清晰检测到约43kDa的NCE4带的培养上清。测定培养上清在pH10，存在或不存在LAS时的EGU活性，并比较活性的降低程度。结果如表3所示。在表3中，以pH10时的EGU活性为100，用相应的百分比来表示EGU活性。 
表3
Figure BDA00002161947800211
结果表明，从N末端添加型NCE4转化子获得的培养上清在存在LAS时活性降低很小。与存在LAS时的EGU活性相比较发现，N末端添加型NCE4的活性是野生型NCE4的2.1倍。另外，Humicola insolens MN200-1的EGU活性约占转化子4％，从而表明几乎所有EGU活性均来源于整合表达载体表达的重组酶。 
(4)野生型NCE4和N末端添加型NCE4N末端氨基酸序列分析 
将上述转化子的培养上清进行SDS-PAGE，并将电泳的蛋白电转移到PVDF膜(Immobilon-PSQ；Millipore)上。从blot上剪切下约43kDa的NCE4带，并用蛋白测序仪Model 492(Applied Biosystems) 分析氨基酸序列。 
结果表明，从pN2EX-N4转化子获得的野生型NCE4序列与WO98/03667所述的来源于Humicola insolens MN200-1的NCE4的DNA序列一致。 
但从pEGD01转化子获得的N末端添加型NCE4氨基酸序列不能用上述方法测定。用pfu焦谷氨酸氨肽酶(Takara Bio)除去N末端添加型NCE4修饰的N末端，然后测定其氨基酸序列(SEQ NO：2)。 
结果总结于表4中，比较野生型NCE4和N末端添加型NCE4的N末端氨基酸序列表明，每个NCE4的N末端氨基酸序列与从构建的相应表达载体预测的序列一致。 
表4
Figure BDA00002161947800221
实施例B1：在绿色木霉中表达N末端替代型纤维素酶和野生型纤维素酶的表达载体的构建
(1)表达载体的构建 
将来源于绿色木霉MC300-1(根据WO98/11239获得)含全长cbh1基因的7kb PstI片段、含cbh1启动子区的3.1kb HindIII片段和含cbh1终止子区的2.7kb SalI片段克隆到质粒pUC119中，分别构建质粒pCB1-H4和质粒pCB1-S1。用辅助噬菌体M13KO7转染含每种质粒的大肠杆菌JM109，从而获得单链DNA。以质粒pCB1-H4和pCB1-S1中得到的单链DNAs为模板，将磷酸化的寡核苷酸CBn-Stu和CBc-Xho退火，从而通过Sculptor体外突变***(Amersham Bioscience)引入突变分别得到质粒pCB1H4-19和质粒pCB1S1-17。将通过用XbaI和XhoI消化质粒pCB1H4-19而获得的约6kb的片段与用XbaI消化，然后用XhoI部分消化质粒pCB1S1-17而获得的约1.2kb片段连接，得到pCB1-M。 
CBn-Stu：5’-GATACATGATGCGCAGGCCTTAGTCGACTAGAATG C-3’(SEQ ID NO：21) 
CBc-Xho：5’-GATCCTCAAGCTTTTGCTCGAGTACCTTACAAGCA C-3’(SEQ ID NO：22) 
然后将用SalI消化pCB1-M而得到的约2.7kb片段克隆到质粒pUC119中，得到质粒pCB1-SalM。对从质粒pCB1-SalM获得的单链DNA用磷酸化寡核苷酸CB1-SmSph、CB1-Bam和CB1-Pst退火，从而通过Sculptor体外突变***引入突变。 
CB1-SmSph：5’-GGAGGGTGCATGCCGACTGAGCCCGGGCAGTAG CC-3’(SEQ ID NO：23) 
CB1-Bam：5’-GCCGGGAGAGGATCCAGTGGAGG-3’(SEQ ID NO：24) 
CB1-Pst：5’-GCTCGAGTACCTTACTGCAGGCACTGAGAG-3’(SEQ ID NO：25) 
然后用XbaI和EcoRI消化质粒pUC118，用DNA平端化试剂盒进行平端化并自连，从而得到质粒pUC118-SBN。将预先用相同的限制性酶剪切的约1.4kb的cbh1启动子片段克隆到用HindIII和SalI消化的pUC118-SBN中。将得到的质粒用SalI消化，并与约2.8kb引入突变的cbh1编码区和终止子区连接，得到pCB2-M2。引入的突变(除BamHI突变外)如表5所示。 
表5
Figure BDA00002161947800231
实施例B2：表达N末端替代型STCE1和野生型STCE1的表达载体的构建，绿色木霉的转化和活性评估
(1)表达载体的构建 
将STCE1基因编码区连接到实施例1中获得的质粒pCB1-M2中，得到pCB-Ste作为野生型STCE1的表达载体。 
首先，以质粒pUC118-STCEex(FERM BP-10127)为模板，用引物组合STCE1-TNERV和STCE1-TCET22I进行PCR，扩增STCE1基因的编码区。将得到的约1kbp的PCR产物用EcoRV和EcoT22I消化，并与预先用StuI和PstI消化的pCB1-M2连接，得到pCB-Ste。 
STCE1-TNERV：GGGGATATCGCGCATCATGCGTTCCTCCCCCGT CCTC(SEQ ID NO：30) 
STCE1-TCET22I：GGGATGCATTTAAAGGCACTGCGAGTACCAGT C(SEQ ID NO：31) 
将去除分泌信号序列的STCE1基因成熟蛋白的编码区连接到实施例B1中获得的pCB1-M2中，得到pCB-Sts作为N末端替代型STCE1的表达载体。 
首先，以质粒pUC118-STCEex(FERM BP-10127)为模板，用引物组合STCE1-TmNSph和STCE1-TCET22I进行PCR，扩增STCE1基因成熟蛋白的编码区。将得到的约1kbp的PCR产物用SphI和EcoT22I消化，并与预先用SphI和PstI消化的pCB1-M2连接，得到pCB-Sts。 
STCE1-TmNSph：GGGGCATGCGATGGCAAGTCGACCCGCTAC(SEQ ID NO：32) 
(2)绿色木霉菌株2的产生 
将绿色木霉MC300-1(FERM BP-6047)孢子悬液(约109CFU/mL)用位于30cm处的两盏UV灯的UV进行照射，并轻轻振荡。将悬液铺在选择性培养基上，28℃培养7天。筛选长出的菌株作为具有尿嘧啶需求的绿色木霉菌株。 
在本文中，选择培养基是补充10μg/mL尿嘧啶和1mg/mL 5-氟乳清酸的基本培养基[0.2％磷酸二氢钾，0.4％硫酸铵，0.03％尿素，0.03％七水硫酸镁，0.03％氯化钙，0.5％葡萄糖，2.5％琼脂和0.01％痕量元素(通过在1L水中溶解5mg七水硫酸铁，1.56mg七水硫酸镁，1.4mg七水硫酸锌和2mg氯化钴而制备)]。 
(3)含野生型STCE1或N末端替代型STCE1的转化子 
用实施例B2(1)中获得的pCB-Ste或pCB-Sts通过共转化方法， 用实施例B2(2)中获得的绿色木霉菌株2和来源于Neurospora crassa的含pyr4基因的标记质粒pPYR4转化绿色木霉，得到在基本培养基上生长的菌株作为转化子。 
首先，将绿色木霉菌株2接种到含50mL菌丝形成培养基[1％酵母提取物，1％麦芽提取物，2％聚胨，2.5％葡萄糖，0.1％磷酸氢二钾，0.05％七水硫酸镁和0.0001％尿嘧啶(pH7.0)]的200mL锥形瓶中，并在28℃培养2天。通过离心收集得到的细胞，并用0.5mol/L蔗糖洗涤，并悬浮在含3mg/mL β-葡糖醛酸糖苷酶(Sigma)、1mg/mL几丁质酶和1mg/mL消解酶20T(Seikagaku Corp.)的0.5mol/L蔗糖溶液中。悬浮液在30℃轻轻振荡60到90分钟以得到原生质体。通过过滤和离心收集得到的原生质体，用SUTC缓冲液洗涤，并重悬到SUTC中而得到原生质体悬浮液。 
向100μL原生质体悬浮液中加入10μL DNA溶液(pCB-Ste或pCB-Sts)。在冰上静置5分钟，加入400μL PEG溶液，然后整个溶液在冰上静置20分钟。将得到的原生质体悬浮液用SUTC洗涤后，用含0.5mol/L蔗糖的基本培养基和软琼脂一起覆盖在原生质体悬浮液上。平板在28℃培养5天，然后将长出的克隆转移到基本培养基上，在其上获得转化子克隆。 
(4)培养基上清中野生型STCE1和N末端替代型STCE1的EGU活性比较 
根据WO98/11239中所述方法培养得到的转化子，得到培养上清。将培养上清进行SDS-PAGE，选择可清晰检测到约45kDa的STCE1带的培养上清。测定培养上清在pH10，存在或不存在LAS时的EGU活性，并比较存在LAS时活性的降低程度。结果如表6所示。在表6中，以pH10时的EGU活性为100，用相应的百分比来表示EGU活性。 
表6
Figure BDA00002161947800251
结果表明，比较存在LAS时的EGU活性发现，N末端替代型STCE1的EGU活性约是野生型STCE1的1.8倍。另外，不能检测到绿色木霉菌株2的EGU活性，因此表明EGU活性均来源于整合表达载体表达的重组酶。 
(5)野生型STCE1和N末端替代型STCE1 N末端氨基酸分析 
用以上转化子的培养上清制备含0.05mol/L Tris-HCl(pH8.0)/1mol/L硫酸钠的溶液，并吸附在具有相等床体积(BV)的TOYOPEARL Butyl-650S(Tosoh Corporation)上。用3个BVs的0.05mol/L Tris-HCl(pH8.0)/1mol/L硫酸钠洗去非吸附性成分，以除去非吸附性成分。然后用3个BVs的0.05mol/L Tris-HCl(pH8.0)/0.5mol/L硫酸钠进行洗脱，并将洗脱液用Pellicon XL(截留5000；Millipore)和Ultrafree-15(截留5000；Millipore)进行浓缩。用获得的浓缩液制备含0.1mol/L磷酸钠(pH5.8)/1mol/L硫酸铵溶液。将得到的溶液用Resource PHE(6mL；Amersham Bioscience)进行疏水层析，以回收非吸附组分。将非吸附组分浓缩，并用PD-10(Amersham Bioscience)脱盐，并用该组分制备含0.05mol/L Tris-HCl(pH7.5)的溶液。将该溶液通过Resource Q(6mL；Amersham Bioscience)，回收非吸附组分。将非吸附组分脱盐，并制备含0.05mol/L醋酸钠(pH5.0)的溶液。将该溶液通过Resource S(6mL；Amersham Bioscience)，回收非吸附组分。将非吸附组分浓缩，并用Superdex 75pg(16×60mm；Amersham Bioscience)进行凝胶过滤，以回收分子量约为45000的组分。每个组分(来源于以上转化子培养上清)仅含一条45kDa的带。 
将纯化的组分进行SDS-PAGE，并将电泳的蛋白电转移到PVDF膜上。从blot上剪切下约45kDa的STCE1带，并用蛋白测序仪Model492(Applied Biosystems)分析氨基酸序列。 
结果表明，从pCB1-Ste转化子获得的野生型STCE1序列(SEQ ID NO.5)与来源于Staphylotrichum coccosporum IFO(目前名称：NBRC)31817的DNA序列一致。 
但从N末端替代型STCE1转化子获得的STCE1的氨基酸序列 不能用上述方法测定。用pfu焦谷酰胺氨肽酶(Takara Bio)除去N末端替代型STCE1修饰的N末端，然后测定其氨基酸序列(SEQ NO：4)。 
结果总结于表7中，比较野生型STCE1和N末端替代型STCE1的N末端氨基酸序列。结果表明，每个STCE1的N末端氨基酸序列与从构建的相应表达载体预测的序列一致。 
表7
Figure BDA00002161947800271
(6)纯化的野生型STCE1和纯化的N末端替代型STCE1的EGU活性比较 
测定实施例B2(5)中获得的纯化的野生型STCE1和纯化的N末端替代型STCE1在pH10，不存在或存在LAS时的EGU活性，并比较存在LAS时活性的降低程度。结果如表8所示。在表8中，以pH10时的EGU活性为100，用相应的百分比来表示EGU活性。 
表8
Figure BDA00002161947800272
结果表明，比较存在LAS时的EGU活性发现，纯化的N末端替代型STCE1的EGU活性约是纯化的野生型STCE1的1.9倍。 
实施例B3：添加到STCE1的N末端序列的改变，载体的构建，绿色木霉的转化及活性评估
(1)仅向成熟蛋白N末端添加焦谷氨酸的表达载体的构建 
将去除分泌信号序列的STCE1基因成熟蛋白的编码区连接到实施例B1获得的质粒pCB1-M2中，得到pCB-Stm11作为仅添加焦谷氨酸的STCE1的表达载体。 
首先，以质粒pUC118-STCEex(FERM BP-10127)为模板，用引物组合STCE-TmNSma和STCE1-TCET22I进行PCR，扩增STCE1基因成熟蛋白的编码区。将得到的约1kbp的PCR产物用SmaI和EcoT22I消化，并与预先用SmaI和PstI消化的pCB1-M2连接，得到pCB-Stm11。用上述载体pCB-Stm11转化的绿色木霉可产生N末端氨基酸序列为pQADGKSTR(SEQ ID NO：41)的STCE1[即1个焦谷氨酸(pQ)加到野生型STCE1N末端的序列]。 
STCE-TmNSma：GGCCCGGGCTCAGGCCGATGGCAAGTCGACCCG(SEQ ID NO：35) 
(2)添加焦谷氨酸的STCE1的EGU活性比较 
用pCB-Stm11根据实施例B2(3)所述的方法转化绿色木霉菌株2。根据WO98/11239培养得到的转化子，得到培养上清。将培养上清进行SDS-PAGE，选择可清晰检测到约45kDa的STCE1带的培养上清。测定培养上清在pH10，存在或不存在LAS时的EGU活性，并与实施例B2(4)中野生型STCE1比较存在LAS时活性的降低程度。结果如表9所示。在表9中，以pH10时的EGU活性为100，用相应的百分比来表示EGU活性。 
表9
Figure BDA00002161947800281
结果表明，比较存在LAS时的EGU活性发现，焦谷氨酸添加型STCE1的EGU活性约是野生型STCE1的1.6倍。 
实施例B4：添加到STCE1的N末端序列的改变，载体的构建，绿色木霉的转化及活性评估
(1)向成熟蛋白N末端添加含pQ的4个氨基酸的表达载体的构建 
将去除分泌信号序列的STCE1基因成熟蛋白的编码区连接到实 施例B1获得的质粒pCB1-M2中，得到pCB-Stm12作为添加含焦谷氨酸的4个氨基酸的STCE1的表达载体。 
首先，以质粒pUC118-STCEex(FERM BP-10127)为模板，用引物组合STCE-TmNSph-2和STCE1-TCET22I进行PCR，扩增STCE1基因成熟蛋白的编码区。将得到的约1kbp的PCR产物用SphI和EcoT22I消化，并与预先用SphI和PstI消化的pCB1-M2连接，得到pCB-Stm12。用上述载体pCB-Stm12转化的绿色木霉可产生N末端氨基酸序列为pQSACADGKSTR(SEQ ID NO：42)[即含4个氨基酸(N末端为焦谷氨酸)的肽加到野生型STCE1N末端的序列)的STCE1。 
STCE-TmNSph-2：GGGCATGCGCCGATGGCAAGTCGACCCGC (SEQ ID NO：36) 
(2)含4个氨基酸的pQ-STCE1的EGU活性比较 
用pCB-Stm12根据实施例B2(3)所述的方法转化绿色木霉菌株2。根据WO98/11239培养得到的转化子，得到培养上清。将培养上清进行SDS-PAGE，选择可清晰检测到约45kDa的STCE1带的培养上清。测定培养上清在pH10，存在或不存在LAS时的EGU活性，并与实施例B2(4)中野生型STCE1比较存在LAS时活性的降低程度。结果如表10所示。在表10中，以pH10时的EGU活性为100，用相应的百分比来表示EGU活性。 
表10
结果表明，比较存在LAS时的EGU活性发现，含焦谷氨酸的4个氨基酸的添加型STCE1的EGU活性约是野生型STCE1的1.5倍。 
工业应用 
与野生型纤维素酶相比较，本发明中的蛋白的内切葡聚糖酶活性 在存在表面活性剂时降低较小，因此可作为衣物洗涤剂的成分。 
虽然本发明通过特定实施例进行描述，但各种对本领域技术人员明显的改变和修饰并不偏离所附权利要求的范围。 
附图的简要描述 
图1所示的是内切葡聚糖酶STCE1[信号肽(SEQ ID NO：43)，成熟蛋白(SEQ ID NO：44)]的氨基酸序列与已知属于家族45的内切葡聚糖酶NCE4[信号肽(SEQ ID NO：45)，成熟蛋白(SEQ ID NO：46)]和NCE5[信号肽(SEQ ID NO：47)，成熟蛋白(SEQ ID NO：48)]的氨基酸序列关于N末端序列的比较结果。 
图2所示的是图1描述的关于C末端序列的比较结果。 
序列列表文本文件 
“人工序列”的特征在序列列表中以数字标识进行描述。每个核苷酸序列SEQ ID NOS：6-10、12-13、15-18、21-26、28、30-32和35-36是引物MNC-02、引物MNC-03、引物MKA-05、引物MKA-06、pMKD01、引物pMN-Bam、pJD01、引物NCE4-Ne、引物NCE4-Ce、引物NCE4-Ns、引物NCE4-Cs、引物CBn-Stu、引物CBc-Xho、引物CB1-SmSph、引物CB1-Bam、引物CB1-Pst、pCB1-M2、pCB1-M2、引物STCE1-TNERV、引物STCE1-TCET22I、引物STCE1-TmNSph、引物STCE1-TmNSma和引物STCE1-TmNSph-2。每个氨基酸序列SEQ ID NOS：11、14、27和29是pMKD01、pJD01、pCB1-M2和pCB1-M2。 
Figure IDA00002161948500011
Figure IDA00002161948500031
Figure IDA00002161948500051
Figure IDA00002161948500061
Figure IDA00002161948500071
Figure IDA00002161948500081
Figure IDA00002161948500091
Figure IDA00002161948500101
Figure IDA00002161948500111
Figure IDA00002161948500121
Figure IDA00002161948500131
Figure IDA00002161948500141
Figure IDA00002161948500151
Figure IDA00002161948500161
Figure IDA00002161948500171
Figure IDA00002161948500181
Figure IDA00002161948500191
Figure IDA00002161948500211
Figure IDA00002161948500221
Figure IDA00002161948500231
Figure IDA00002161948500241
Figure IDA00002161948500251
Figure IDA00002161948500261

Claims (9)

1.选自下述的、N末端为焦谷氨酸的蛋白质：
（a）由在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中缺失、替换、***或添加1～30个氨基酸所得的氨基酸序列组成、所述氨基酸序列的N末端被转变为焦谷氨酸、且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的修饰蛋白质；
（b）由在SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列中保守替换1～30个氨基酸所得的氨基酸序列组成、所述氨基酸序列的N末端被转变为焦谷氨酸、且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小的修饰蛋白质；及
（c）同源蛋白质，其由与包含SEQ ID NO：2、4、38或40所示的氨基酸序列的蛋白质的同源性至少为85％的氨基酸序列组成、所述氨基酸序列的N末端被转变为焦谷氨酸、且其内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小。
2.选自下述的、编码N末端为焦谷氨酸的蛋白质的多核苷酸：
（a）多核苷酸，其由在SEQ ID NO：1、3、37或39所示的碱基序列中缺失、替换、***或添加1～90个碱基所得的碱基序列组成、所述碱基序列的N末端密码子编码谷氨酸或谷氨酰胺、且所述多核苷酸编码蛋白质的内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小；及
（b）多核苷酸，其在严紧条件下与SEQ ID NO：1、3、37或39的碱基序列组成的多核苷酸序列杂交、所述碱基序列的N末端密码子编码谷氨酸或谷氨酰胺、且所述多核苷酸编码蛋白质的内切葡聚糖酶活性在存在表面活性剂时降低很小。
3.包含权利要求2的多核苷酸的表达载体。
4.用权利要求3的表达载体转化的宿主细胞。
5.权利要求4的宿主细胞，其中所述宿主细胞是酵母或丝状真菌。
6.权利要求5的宿主细胞，其中，所述丝状真菌是属于腐质霉（Humicola）或木霉属（Trichoderma）的微生物。
7.权利要求6中的宿主细胞，其中，所述丝状真菌是Humicolainsolens或绿色木霉（Trichoderma viride）。
8.生产前述蛋白质的方法，包括：培养权利要求5~7任一项中的宿主细胞的步骤，以及从培养获得的宿主细胞或其培养物中回收权利要求1的蛋白质的步骤。
9.根据权利要求8的方法生产的蛋白质。
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