发明内容
本发明的目的是提供一种家蚕膜镁转运蛋白Bm-MMgT的表达纯化方法,通过设计引物,构建重组表达载体pET-32a- Bm-MMgT,诱导表达得到大量重组目的蛋白,然后经30mM、50mM浓度的咪唑水溶液洗掉未结合的蛋白,200mM浓度的咪唑水溶液洗脱重组目的蛋白,可以得到纯度较高的重组目的蛋白。
为达到上述目的,本发明提供一种家蚕膜镁转运蛋白Bm-MMgT的表达纯化方法,包括以下步骤:
(a) Bm-MMgT基因的合成;
(b)分别双酶切Bm-MMgT基因和载体,连接构建重组表达载体;
(c)转化表达菌,培养,诱导表达重组目的蛋白;
(d)纯化所得重组目的蛋白。
优选地,其中所述步骤(a) 具体包括:
(1)设计上游引物F: 5’-CTGGAATTCATGGCTTCATTTC-3’ (下划线为 EcoRⅠ位点)
下游引物R: 5’-CAGCTCGAGTCATTCTAGATTTTCTAG-3’(下划线为XhoⅠ位点);
(2)以家蚕蚕蛹cDNA为模板,用所设计引物F和R扩增特异性片段,具体程序为:95℃预变性5min,95℃变性35s,52℃退火35s,72℃延伸40s,循环30次;最后72℃延伸5min,回收产物;
(3)以步骤(2)的回收产物为模板,用所设计引物F2和R第2次扩增目的片段,具体程序同上,最后回收产物,得到Bm-MMgT基因。
优选地,其中所述步骤(b) 具体包括:
Bm-MMgT基因和pET-32a载体利用EcoRⅠ和XhoⅠ同时进行双酶切,将酶切回收的产物用ligation high进行连接30min并转化E.coli TG1感受态细胞,挑取单菌落摇菌培养后提取重组表达载体pET-32a-Bm-MMgT。
优选地,其中所述步骤(c) 具体包括:
将重组好的表达载体转化至E.coliBL21中,在含50 mg/mL氨苄青霉素的LB培养基中37℃,220 rpm振荡培养至OD600=0.5,加入终浓度为1 mM 的IPTG,37℃诱导表达5h,得到重组目的蛋白。
优选地,其中所述步骤(d) 具体包括:
(1)将得到的可溶的重组目的蛋白通过0.45μm纤维素膜过滤后,与镍离子亲和层析柱结合,用浓度为20Mm、50mM、100mM、150mM、200mM、300mM、500mM的咪唑水溶液进行洗涤;
(2)经洗涤条件的摸索(取10ml的上清液与2ml的镍离子亲和层析柱填料结合,室温孵育1h,以步骤(1)中所述的咪唑浓度进行洗脱,每个浓度洗涤20ml,其中上述上清液为所述步骤(c)所得重组目的蛋白经超声(超声功率为60%,超声总时间为4s,停3s,超1s)破碎后,12000rpm离心后的上清液,用浓度为30mM、50mM的咪唑水溶液洗脱杂蛋白,用浓度为200mM的咪唑水溶液洗脱重组目的蛋白。
优选地,其中所述方法在步骤(a)之前还包括:
经家蚕蚕蛹cDNA文库筛选,筛选出一条家蚕膜镁转运蛋白(Bm-MMgT),经TMHMM服务器(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM)对该蛋白进行跨膜分析,发现此蛋白是含有一个跨膜区的膜蛋白(是为了预测BmMMgT基因表达出的蛋白是一个一次跨膜蛋白)。
本发明通过设计引物,构建重组表达载体pET-32a-Bm-MMgT,诱导表达得到大量重组目的蛋白,重组目的蛋白经镍离子亲和层析柱一步纯化等简易的技术可以得到纯度较高的重组目的蛋白,为以后研究其三维结构和生物学功能奠定了极其重要的基础;膜蛋白的表达和纯化就本身而言是一个世界性的难题,此文用基因工程的手段成功表达了膜蛋白且以可溶性的形式存在,是目前研究膜蛋白的另一种途径;此外,该方法还解决了天然膜蛋白表达量低、难纯化的问题。
具体实施方式
应该指出,以下具体说明都是事例性的,旨在对本发明提供进一步说明,除非另有说明,本文中使用的所有科学和技术术语具有与本发明所属技术领域人员通常理解的相同含义。
下面结合附图和实施例对本发明做进一步说明。
实施例1:引物设计
扩增Bm-MMgT目的基因,基因序列如SEQ ID NO.1所示,引物设计如下:
F: 5’-CTGGAATTCATGGCTTCATTTC-3’(下划线为 EcoRⅠ位点)
R: 5’-CAGCTCGAGTCATTCTAGATTTTCTAG-3’(下划线为XhoⅠ位点)
实施例2:pET-32a-Bm-MMgT重组表达载体的构建
(1)以家蚕蚕蛹cDNA(购自Fermentas公司)为模板,用实施例1所设计引物F和R扩增特异性片段,具体程序为:95℃预变性5min,95℃变性35s,52℃退火35s,72℃延伸40s,循环30次;最后72℃延伸5min;
在50μL离心管中,加入下列组分:
ddH2O 32.5μL
TAQ Buffer 5μL
2mM dNTPs 5μL
F 1.5μL
R 1.5μL
cDNA 3μL
TAQ Polymerase(2U/μL) 1.5μL
各组分混合均匀后,放入PCR仪中,按上述反应参数设计30个循环。待反应结束后,电泳鉴定扩增片段,同时割胶回收目的片段;
(2)以步骤(1)中回收产物为模板,用实施例1所设计引物F和R第2次扩增目的片段,具体程序同上;最后回收的片段如图1所示(说明BmMMgT基因片段已成功获得);
(3)将第2次PCR割胶回收产物和pET-32a载体(购自Fermentas公司)利用EcoRⅠ(购自Fermentas公司)和XhoⅠ(购自Fermentas公司)同时进行双酶切,将酶切回收的产物用ligation high(购自 TOYOBO)进行室温连接30min,并转化到E.coliTG1感受态细胞(购自Fermentas公司)中;挑取单菌落摇菌培养后利用质粒提取试剂盒(购自康为世纪生物科技公司)抽提质粒,用PCR和双酶切进行鉴定,挑选pET-32a-Bm-MMgT重组表达载体,将重组好的表达载体进行双酶切、PCR鉴定如图2所示,说明克隆成功,并送华大基因测序,其结果与预期相同。
实施例3:重组目的蛋白的表达
将实施例2重组好的表达载体转化至E.coliBL21(购自Fermentas公司)中得到重组菌,在含50 mg/mL氨苄青霉素(上海恒远生物科技有限公司)的LB培养基(购自Oxoid公司)中37℃,220 rpm振荡培养至OD600≈0.5,加入IPTG(终浓度 1 mM),37℃诱导培养5h,取1.5mL菌液12000rpm离心后,将沉淀加入50μL 1×PBS重悬,然后取40μL,加入10μL 5×上样缓冲液,于100℃煮10min,然后在12000rpm下离心5min得到重组目的蛋白样品,取15μL走12% SDS-PAGE,结果如图3示,表明利用上述方法成功表达了含有HIS标签的重组目的蛋白且表达量很高。
将重组菌扩大培养,超声(超声的目的是为了让菌体破碎,释放出包裹在里面的蛋白)后分别取上清和沉淀制备蛋白样品,走12%SDS-PAGE,如图4所示,结果说明该重组目的蛋白是以可溶的形式存在于缓冲液中。
实施例4:重组目的蛋白的纯化
(1)将实施例3收集的上清中的可溶的重组目的蛋白通过0.45μm纤维素膜过滤后,与镍离子亲和层析柱(购自GE Healthcare)结合,用浓度为20mM、50mM、100mM、150mM、200mM、300mM、500mM的咪唑水溶液进行洗涤,分别取不同浓度的咪唑水溶液的洗脱液加入10μL 5×上样缓冲液,于100℃煮10min,然后在12000rpm下离心5min制备蛋白样品,走12%SDS-PAGE,结果如图5所示,说明20mM、50mM浓度的咪唑水溶液可以洗去几乎所有与镍柱未结合的蛋白,100mM浓度的咪唑水溶液就可以洗下重组目的蛋白;
(2)经洗涤条件的摸索,SDS-PAGE发现,用浓度为30mM、50mM的咪唑水溶液可以洗脱未结合在柱子上的杂蛋白,用浓度为200mM的咪唑水溶液可以洗脱下所有的重组目的蛋白且纯度很高,纯化后的蛋白走12%SDS-PAGE,结果如图6所示(图6 所选的洗脱杂蛋白的咪唑条件是以实施例3中的洗脱条件为基础的,图6表明重组目的蛋白可以通过镍离子亲和层析柱一步纯化可得到纯度较高的目的蛋白)。
实施例5:重组目的蛋白的鉴定
由于重组目的蛋白带有HIS标签,所以用HIS的抗体(二抗用辣根过氧化酶(HRP)标记羊抗鼠IgG,上海江莱生物科技有限公司 )作为一抗鉴定重组目的蛋白,如图7A、图7B所示,结果表明重组目的蛋白已成功表达。重组目的蛋白经挖点打质谱鉴定如图8所示,图8中显示的肽指纹图谱与NCBI数据库比对,结果表明所表达的未知重组目的蛋白确定为家蚕膜镁转运蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。
本发明通过设计引物,构建重组表达载体pET-32a- Bm-MMgT,诱导表达得到大量重组目的蛋白,重组目的蛋白经镍离子亲和层析柱一步纯化等简易的技术可以得到纯度较高的重组目的蛋白,为以后研究其三维结构和生物学功能奠定了极其重要的基础;此外,该方法还解决了天然膜蛋白表达量低、难纯化的问题。
以上所述,仅为本发明的实施例,应当指出,对于本技术中的普通技术人员来说,在不脱离本发明的核心技术特征的前提下,还可以做若干的改进和润饰,这些润饰和改进也应属于本发明的专利保护范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 天津耀宇生物技术有限公司
<120> 一种家蚕膜镁转运蛋白Bm-MMgT的表达纯化方法
<130> 121962-I-CP-TJYU
<160> 2
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 351
<212> DNA
<213> Bm-MMgT基因
<400> 1
atggcttcat ttcataaagt tattgtgatc attggttttc tttcgttatt ccatacagct 60
ttctcagcta cacaacatcg atcatatttg aggatcacgt cacaagagtt taccacgtta 120
ccattggata ttgtcatcca agctgtggtc agtttgtttg ctgtcatgtg gggagtgttg 180
aatgtggcgg gtaatcttcg cgaaatacca gctgctgctg aattaaatgc tatcaaatgg 240
gagacacaga acaatcttcc ctcattttat atcttcaatc acagagggaa ggcattatct 300
tatgattatg ttcccacacc aactaaagca gatctagaaa atctagaatg a 351
<210> 2
<211> 116
<212> PRT
<213> Bm-MMgT 蛋白
<400> 2
Met Ala Ser Phe His Lys Val Ile Val Ile Ile Gly Phe Leu Ser Leu
1 5 10 15
Phe His Thr Ala Phe Ser Ala Thr Gln His Arg Ser Tyr Leu Arg Ile
20 25 30
Thr Ser Gln Glu Phe Thr Thr Leu Pro Leu Asp Ile Val Ile Gln Ala
35 40 45
Val Val Ser Leu Phe Ala Val Met Trp Gly Val Leu Asn Val Ala Gly
50 55 60
Asn Leu Arg Glu Ile Pro Ala Ala Ala Glu Leu Asn Ala Ile Lys Trp
65 70 75 80
Glu Thr Gln Asn Asn Leu Pro Ser Phe Tyr Ile Phe Asn His Arg Gly
85 90 95
Lys Ala Leu Ser Tyr Asp Tyr Val Pro Thr Pro Thr Lys Ala Asp Leu
100 105 110
Glu Asn Leu Glu
115