CN102755665A - 一种异种骨移植材料的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于医学生物材料技术领域,具体涉及一种异种骨移植材料的制备方法。本发明主要解决目前异种骨移植材料存在的制备过程繁琐、清洗效果难以保证、化学物质引入过多易发生残留、没有进行病毒灭活等不足。本发明一种异种骨移植材料的制备方法包括取材、深低温冷冻、成型、清洗、除病毒、脱脂、酶处理、清洗、冷冻干燥和灭菌十个步骤,本发明的制备方法具有方法简单、清洗效果好、既降低了异种骨材料的免疫原性,又能保留骨诱导活性与力学强度的优点。
Description
技术领域
[0001] 本发明属于医学生物材料技术领域,具体涉及一种异种骨移植材料的制备方法。
背景技术
异种骨是采用动物源性如猪或牛等的骨组织,经过处理降低其免疫原性,用作骨移植材料,在临床上植入患者骨缺损处,起到填充、支撑的作用,并最终改建成宿主的自身骨组织,从而达到治疗的目的。
公告号为CN1456363,名称为异种骨胶原基质制备的新方法的专利,公开了一种异种骨胶原基质制备的新方法,但该专利对异种骨胶原的制备方法未做详述,所提到的部分脱钙会引起骨材料的力学强度明显下降;公告号为CN1188015,名称为新型块形脱脂去抗原异种骨移植材料及其制备方法的专利,采用脱脂、去抗原及部分脱钙的方法处理异种骨,骨矿成分与胶原蛋白的含量比例约为1:1,导致所制备材料力学强度明显下降;公告号为CN1296804,名称为强力抗感染型重组合异种骨的制备方法的专利,采用抗菌剂与重组合异种骨复合,使材料既有骨诱导活性又有抗感染性,但重组合异种骨要复合骨形态发生蛋白,剂量难于控制,加之受体个体差异的不确定性,如果剂量过大容易诱发骨肿瘤。由此可见现有的异种骨制备方法制备过程大多比较繁琐,或引入的化学试剂过多容易引起残留,或清洗效果难以保证,关键性的,未有针对性地对异种骨材料进行病毒灭活处理,以确保移植的安全性,都难以提供一种既保留生物活性与力学强度、又安全有效的异种骨移植材料。
发明内容
本发明主要针对目前异种骨移植材料存在的制备过程繁琐、清洗效果难以保证、化学物质引入过多易发生残留、没有进行病毒灭活等不足,而提供一种方法比较简单、清洗效果好、既降低了异种骨材料的免疫原性,又能保留骨诱导活性与力学强度的异种骨移植材料的制备方法。
本发明为实现上述目的而采取的技术方案为:
一种异种骨移植材料的制备方法,包括以下步骤:
1)取材:健康合格的动物,生长6个月以上,取其髂骨与四肢长骨,即异种骨;
2)深低温冷冻:将所取异种骨储存于深低温冰箱中保存;
3)成型:将深低温冷冻后的异种骨表面软组织剔除干净,锯裁成型;
4)清洗:将成型的异种骨浸于水中,超声条件下清洗2~5次,以骨组织不显血色为准;
5)除病毒:将步骤(4)所得异种骨,采用次氯酸钠溶液浸泡,以灭活可能潜在的病毒,每小时换液一次,然后用水在超声条件下清洗2~5次;
6)脱脂:将步骤(5)所得异种骨,用碳酸钠溶液进行脱脂清洗,每小时换液一次;
7)酶处理:将脱脂后的异种骨,采用胰酶溶液处理;
8)清洗:经胰酶溶液处理的异种骨,在超声条件下用水清洗干净;
9)冷冻干燥:清洗干净的异种骨,冷冻干燥至含水的质量分数为2-10%;
10)灭菌:冻干的异种骨,用不少于两层袋包装后,进行钴-60 γ射线辐照灭菌。
其中所述的深低温保存条件为-70度以下保存不少于1个月。
所述的次氯酸钠溶液的质量分数为0.05%~5%,处理时间为0.5~16小时。
所述的碳酸钠溶液的质量分数为0.05%~5%,水温35~70度,处理时间为0.5~20小时。
所述的胰酶溶液的浓度为0.1~10g/L,水温30~60度,处理时间为0.5~20小时。
所述的冷冻干燥至含水量为5%。
所述的钴-60 γ射线辐照灭菌剂量为15~30kGy。
本发明与现有技术相比具有以下有益效果:
(1)本发明采用深低温冷冻的方法保存异种骨,降低了其免疫原性;
(2)本发明采用超声条件下清洗的办法,提高了清洗的效率与效果;
(3)本发明采用次氯酸钠溶液对异种骨组织进行病毒灭活,杜绝病毒传播的可能性;
(4)本发明采用碳酸钠溶液进行脱脂,脱脂效果好,并且不引入其它可能对人健康有影响的化学试剂;
(5)本发明进一步采用酶处理异种骨,对其胶原结构进行切割,进一步降低其免疫原性。
附图说明
图1是实施例1制备的猪源性异种骨数码照片;
图2是实施例1制备的猪源性异种骨放大25倍的扫描电镜图;
图3是实施例1制备的猪源性异种骨放大2000倍的扫描电镜图;
图4是新鲜猪源性异种骨放大了200倍的光学显微镜图;
图5是实施例1制备的猪源性异种骨放大200倍的光学显微镜图,
图6是实施例1制备的猪源性异种骨体外细胞毒性试验的细胞生长曲线图。
具体实施方式
实施例1
一种异种骨移植材料的制备方法,包括以下步骤:
1)取材:健康合格的猪,生长7个月,取其髂骨与四肢长骨,即猪源性异种骨;
2)深低温冷冻:将所取猪源性异种骨储存于深低温冰箱中在-70度保存1个月;
3)成型:将深低温冷冻后的猪源性异种骨表面软组织剔除干净,锯裁成5mm×5mm×20mm的骨条;
4)清洗:将成型的猪源性异种骨浸于纯化水中,超声条件下清洗2次使骨组织不显血色;
5)除病毒:将步骤(4)所得猪源性异种骨,采用质量分数为0.05%的次氯酸钠溶液浸泡16小时,以灭活可能潜在的病毒,每小时换液一次,然后用纯化水在超声条件下清洗3次;
6)脱脂:将步骤(5)所得猪源性异种骨,用温度为35度,质量分数为0.05%的碳酸钠溶液进行脱脂清洗20小时,每小时换液一次;
7)酶处理:将脱脂后的猪源性异种骨,采用温度为30度,浓度为0.1g/L的胰酶溶液处理20小时;
8)清洗:经胰酶溶液处理的猪源性异种骨,在超声条件下用纯化水清洗干净;
9)冷冻干燥:清洗干净的猪源性异种骨,用冷冻干燥机冷冻干燥至含水的质量分数为2%;
10)灭菌:冻干的猪源性异种骨,用不少于两层袋包装后,进行钴-60 γ射线辐照灭菌,辐照灭菌剂量为15kGy。
进了进一步表明本实施例制备的猪源性异种骨的各种性能,本实施例还做了如下实验:
1、观察其形态结构以及清洗的效果。
附图1是利用数码相机对本实施例制备的猪源性异种骨拍照进行大体观察,同时采用离子溅射仪对猪源性异种骨表面喷金后,用JSM6360LV低真空扫描电子显微镜观察,扫描拍片,Smile View软件分析测量其腔隙直径,附图2是异种骨放大25倍的扫描电镜图,附图3是放大了2000倍的扫描电镜图。
图1、图2和图3的观察结果显示,与人松质骨结构相似,本实施例制备的猪源性异种骨呈蜂窝状三维多孔网状立体结构,孔隙分布均匀,材料的腔隙直径大小在150μm-600μm之间,在其松质骨小梁上有大量直径在10μm -100μm的小孔,这样的三维孔隙结构,植入体内时,有利于宿主组织与细胞的长入、营养成分的进入,便于宿主成骨相关细胞的迁徙、贴附与长入,进而发生爬行取代。制备的猪松质骨清洗彻底,无软组织与细胞组分的残留。
2、组织学观察
将新鲜的异种骨和本实施例制备的猪源性异种骨,用***溶液固定,石蜡包埋,切片,HE染色,光学显微镜下观察其显微结构,从而观察处理与清洗的效果,以及处理方法对异种骨组织的显微结构的影响。附图4是新鲜异种骨光学显微镜图,附图5是本实施例制备的猪源性异种骨光学显微镜图,从两个附图可以看出,制备出来的异种骨材料清洗效果好,显微结构保持良好。
3、异种骨力学强度检测,目的是比较制备过程对异种骨材料的力学强度是否影响。
表1是将本实施例制备的猪源性异种骨加工成10mm×10mm×20mm的骨块,于处理的不同阶段取材,分新鲜猪骨组、次氯酸钠处理组、胰酶处理后组、冻干辐照组,用RGT-20A微机控制电子万能材料试验机检测样品的抗压性能,试验条件为室温,湿度为30%,加载速度为5mm/min。
表1异种骨力学强度检测数据
结果表明,力学强度变化无统计学差别。
4、碳酸钠脱脂过程中材料的脂肪含量。
主要目的是比较不同制备阶段异种骨材料中脂肪的含量,检测脱脂的效果。
在制备的不同阶段,取部分骨材料,冷冻干燥后,采用索氏提取装置提取粗脂肪。样品称重,置于提取管内,加无水***150ml,经烘烤恒衡重的烧瓶接于底部, 40±2 ℃恒温水浴,接收回流提取液并继续加热蒸发,以每小时回流7~8次为宜。提取12h,将提取液蒸发回收,烧瓶经烘烤恒重。测量提取前后烧瓶重量的差别,从而计算脂肪含量。表2是按所述方法制备三批异种骨,于不同处理阶段的脂肪含量检测数据。
表2是三组不同阶段的脂肪含量检测数据
数据结果表明本发明采用的碳酸钠溶液脱脂方法,脱脂效果良好,并且胰酶也有能起到一定的脱脂效果。
5、体外细胞毒性试验
采用MTT法,检测不同培养时期兔骨髓间充质干细胞(BMSCs)的生长与增殖状况,评价异种骨对BMSCs生长与增殖的影响,从而判定其体外细胞毒性。
5.1 浸提液的制备
制备5mm×5mm×5mm的异种骨小块,按照中华人民共和国国家标准 《医疗器械生物学评价》,按1g异种骨:10ml浸提液的比例,无菌条件下将异种骨小块浸于含10%FBS的L-DMEM培养基中,装于无菌的密闭容器内,37℃浸取72h,取上清液作为实验组培养基。对照组的培养为含10%FBS的L-DMEM培养液。
5.2细胞生长曲线的测定
从幼兔骨髓提取、培养兔骨髓间充质干细胞,取生长状态良好的第2,3代细胞,待细胞刚好贴壁融合铺满瓶底后,以0.25%胰酶消化,离心,用10%FBS的L-DMEM培养基稀释,血细胞计数板进行细胞计数,制成细胞浓度约1×105/ml的细胞悬液,接种于96孔板中,接种前吹打混匀,每孔加细胞悬液200μl,置5%CO2培养箱37℃培养。培养24h,待细胞贴壁后,弃培养液,按组别分别加入异种骨浸提液与对照培养液,每3d换相应培养液1次,每隔24h取出培养板,每次取5孔,弃孔内培养液,加用PBS配成的5mg/ml MTT溶液20μl,培养4h,每孔加二甲基亚砜(DMSO)150μl,震荡10min,用酶标仪检测OD值,测试波长为490nm,绘制细胞生长曲线,见附图6。
附图6结果显示,采用异种骨(猪)材料浸提液对细胞生长与增殖无明显的影响,异种骨具有良好的组织相容性。
实施例2
一种异种骨移植材料的制备方法,包括以下步骤:
1)取材:健康合格的牛,生长10个月,取其髂骨与四肢长骨,即牛源性异种骨;
2)深低温冷冻:将所取牛源性异种骨储存于深低温冰箱中在-90度保存2个月;
3)成型:将深低温冷冻后的牛源性异种骨表面软组织剔除干净,锯裁成5mm×5mm×40mm的骨条;
4)清洗:将成型的牛源性异种骨浸于纯化水中,超声条件下清洗4次使骨组织不显血色;
5)除病毒:将步骤(4)所得牛源性异种骨,采用质量分数为2%的次氯酸钠溶液浸泡10小时,以灭活可能潜在的病毒,每小时换液一次,然后用纯化水在超声条件下清洗2次;
6)脱脂:将步骤(5)所得牛源性异种骨,用温度为55度,质量分数为2%的碳酸钠溶液进行脱脂清洗10小时,每小时换液一次;
7)酶处理:将脱脂后的牛源性异种骨,采用温度为45度,浓度为6g/L的胰酶溶液处理10小时;
8)清洗:经胰酶溶液处理的牛源性异种骨,在超声条件下用纯化水清洗干净;
9)冷冻干燥:清洗干净的牛源性异种骨,用冷冻干燥机冷冻干燥至含水的质量分数为5%;
10)灭菌:冻干的牛源性异种骨,用不少于两层袋包装后,进行钴-60 γ射线辐照灭菌,辐照灭菌剂量为20kGy。
实施例3
一种异种骨移植材料的制备方法,包括以下步骤:
1)取材:健康合格的猪,生长12个月,取其髂骨与四肢长骨,即猪源性异种骨;
2)深低温冷冻:将所取猪源性异种骨储存于深低温冰箱中在-100度保存3个月;
3)成型:将深低温冷冻后的猪源性异种骨表面软组织剔除干净,锯裁成5mm×5mm×5mm的骨块;
4)清洗:将成型的猪源性异种骨浸于纯化水中,超声条件下清洗5次使骨组织不显血色;
5)除病毒:将步骤(4)所得猪源性异种骨,采用质量分数为5%的次氯酸钠溶液浸泡0.5小时,以灭活可能潜在的病毒,每小时换液一次,然后用纯化水在超声条件下清洗5次;
6)脱脂:将步骤(5)所得猪源性异种骨,用温度为70度,质量分数为5%的碳酸钠溶液进行脱脂清洗0.5小时;
7)酶处理:将脱脂后的猪源性异种骨,采用温度为60度,浓度为10g/L的胰酶溶液处理0.5小时;
8)清洗:经胰酶溶液处理的猪源性异种骨,在超声条件下用纯化水清洗干净;
9)冷冻干燥:清洗干净的猪源性异种骨,用冷冻干燥机冷冻干燥至含水的质量分数为10%;
10)灭菌:冻干的猪源性异种骨,用不少于两层袋包装后,进行钴-60 γ射线辐照灭菌,辐照灭菌剂量为30kGy。
Claims (7)
1.一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是包括以下步骤:
1)取材:健康合格的动物,生长6个月以上,取其髂骨与四肢长骨,即异种骨;
2)深低温冷冻:将所取异种骨储存于深低温冰箱中保存;
3)成型:将深低温冷冻后的异种骨表面软组织剔除干净,锯裁成型;
4)清洗:将成型的异种骨浸于水中,超声条件下清洗2~5次,以骨组织不显血色为准;
5)除病毒:将步骤(4)所得异种骨,采用次氯酸钠溶液浸泡,以灭活可能潜在的病毒,每小时换液一次,然后用水在超声条件下清洗2~5次;
6)脱脂:将步骤(5)所得异种骨,用碳酸钠溶液进行脱脂清洗,每小时换液一次;
7)酶处理:将脱脂后的异种骨,采用胰酶溶液处理;
8)清洗:经胰酶溶液处理的异种骨,在超声条件下用水清洗干净;
9)冷冻干燥:清洗干净的异种骨,冷冻干燥至含水的质量分数为2-10%;
10)灭菌:冻干的异种骨,用不少于两层袋包装后,进行钴-60 γ射线辐照灭菌。
2.根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的深低温保存条件为-70度以下保存不少于1个月。
3.根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的次氯酸钠溶液的质量分数为0.05%~5%,处理时间为0.5~16小时。
4.根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的碳酸钠溶液的质量分数为0.05%~5%,水温35~70度,处理时间为0.5~20小时。
5.根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的胰酶溶液的浓度为0.1~10g/L,水温30~60度,处理时间为0.5~20小时。
6.根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的冷冻干燥至含水量为5%。
7. 根据权利要求1所述的一种异种骨移植材料的制备方法,其特征是所述的钴-60 γ射线辐照灭菌剂量为15~30kGy。
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