CN101220080A - 一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 - Google Patents
一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101220080A CN101220080A CNA2008100467723A CN200810046772A CN101220080A CN 101220080 A CN101220080 A CN 101220080A CN A2008100467723 A CNA2008100467723 A CN A2008100467723A CN 200810046772 A CN200810046772 A CN 200810046772A CN 101220080 A CN101220080 A CN 101220080A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- algae
- sheath
- little
- tool
- phycocyanins
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法,首先将硝酸钠、磷酸氢二钾、硫酸镁、氯化钙、柠檬酸、柠檬酸铁铵、乙二胺四乙酸二钠盐、碳酸钠,微量元素溶液按比例配制成具鞘微鞘藻培养液;其次是将具鞘微鞘藻置于培养液中培养并制得具鞘微鞘藻粉;最后从具鞘微鞘藻粉中提取具鞘微鞘藻藻蓝蛋白并将其纯化。本发明所用方法易行、操作方便、安全可靠、产量高、产品质量好,且所用设备简单适用于工业化规模生产。
Description
技术领域
本发明涉及一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法,属于生物技术领域。
背景技术
具鞘微鞘藻属于蓝藻门、蓝藻纲、段殖体目、颤藻科、微鞘藻属。它是干旱、半干旱地区生物结皮中的优势种群。目前,对具鞘微鞘藻的利用一般只停留在进行人工藻结皮上,具鞘微鞘藻之所以用于形成人工藻结皮进行荒漠治理,主要的是由于其富含藻蓝蛋白。藻胆蛋白是存在于某些藻类(主要是红藻和蓝藻)藻胆体中的一类色素复合蛋白。藻胆蛋白具有强烈的荧光性,发橙红色荧光,而其本身则呈红色、紫色或蓝色等,故为有色多肽。按光谱特性可把藻胆蛋白分成四类:藻红蛋白,藻蓝蛋白,藻红蓝蛋白和别藻蓝蛋白。藻蓝蛋白是其中的一类蓝色色素蛋白。藻蓝蛋白除可用于植物光合作用研究外,还具有很高的应用开发价值:可作为纯天然的色素,用于食品、化妆品和染料等工业;试剂级藻蓝蛋白可制成荧光试剂,应用于医学临床诊断和免疫学及生物工程等研究领域中;还可制成药品用于医疗保健。目前在食品等行业中使用的蓝色素主要还是化学合成色素,而天然蓝色素使用的很少,藻蓝蛋白大多是从螺旋藻和大型海藻中提取得到,它们的藻蓝蛋白含量大都比具鞘微鞘藻的要低,另外,培养大型海藻的成本远比培养具鞘微鞘藻的成本要高。
发明内容
本发明目的在于提供一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法。
为实现上述目的,本发明提供一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法包括如下步骤:
A、培养液的配制:按每升水加入硝酸钠0.8~2.5g、磷酸氢二钾0.02~0.05g、硫酸镁0.06~0.09g、氯化钙0.02~0.05g、柠檬酸0.004~0.008g、柠檬酸铁铵0.004~0.008g、乙二胺四乙酸二钠盐0.001~0.003g、碳酸钠0.01~0.04g,微量元素溶液0.5~2ml,其中微量元素溶液按每100ml蒸馏水中加入硼酸270~300mg、四水氯化锰170~200mg、七水硫酸锌18~25mg、二水钼酸钠15~30mg、五水硫酸铜6~10mg,完全溶解后搅匀制得培养液;
B、具鞘微鞘藻的培养:首先是一级培养,将具鞘微鞘藻藻种接入培养液中通气培养,调节气流在1.5~3.5L.min-1,光强控制在65~85μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后转入到二级培养;其次是二级培养,将一级培养所得的培养物接入到新的培养液中通气培养,调节气流在2.5~5L.min-1,无菌处理,光强控制在75~95μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后转入到三级培养;第三是三级培养,将二级培养所得的培养物接入到新的培养液中通气培养,调节气流在3~6L.min-1,无菌处理,光强控制在70~100μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后作为继续培养的接种种源;第四是继续培养,首先是小循环培养池培养,将三级培养后所得的藻种,接入小循环培养池,控制温度在22~35℃,利用自然光进行光照,控制光照强度在120~180μE.m-2.s-1,搅动培养基;其次是大循环培养池培养,将小循环培养池中培养4~7天后的具鞘微鞘藻转接到大循环培养池中,小循环培养池与大循环培养池中培养液的体积比为1∶20~25,将大循环培养池中控制温度在22~35℃,利用自然光进行光照,控制光照强度在120~180μE.m-2.s-1培养10~20天后的具鞘微鞘藻过滤收得具鞘微鞘藻藻浆;
上述具鞘微鞘藻接种时,按每升培养液0.1~0.5g湿重的比例接入。
C、具鞘微鞘藻粉的制备:将藻浆经过离心获得具鞘微鞘藻藻泥,经浓缩、脱水、干燥、粉碎后得到具鞘微鞘藻粉;
D、具鞘微鞘藻藻蓝蛋白的抽提:向具鞘微鞘藻粉中加入7~10倍重量的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲溶液,充分搅匀,然后置于-10~-20℃下冰冻,待冻结后取出,置于20~30℃下融溶,待其完全融溶后,再将其冰冻,如此反复冻融3~5次,然后3000~6000rpm离心10~15min,收集上清液,即为藻蓝蛋白粗提液;
E、纯化:在冰浴条件下,在藻蓝蛋白的粗提液中加入饱和度为50~70%的硫酸铵避光盐析20~40min,然后在3~5℃下3000~6000rpm离心15~25min,弃除上清液,用一倍体积的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液溶解沉淀物,避光透析20~30h后离心,取上清液用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液平衡好的DEAE-52离子交换柱,并用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液和0.1~0.3mol.L-1的NaCl溶液洗脱,用收集蓝色组分,冷冻干燥得纯化的藻蓝蛋白。
本发明具有以下优点和卓著的效果:方法易行、经济快捷、操作方便、产量高、产品质量好、安全可靠,且所用设备简单适用于工业化规模生产。
具体实施方式
从具鞘微鞘藻提取藻蓝蛋白的具体实施步骤如下:
A、培养液的配制
按每升水加入硝酸钠1.5g、磷酸氢二钾0.04g、硫酸镁0.075g、氯化钙0.036g、柠檬酸0.006g、柠檬酸铁铵0.006g、乙二胺四乙酸二钠盐0.001g、碳酸钠0.02g,微量元素溶液1ml,其中微量元素溶液按每100ml蒸馏水中加入硼酸286mg、四水氯化锰181mg、七水硫酸锌22.2mg、二水钼酸钠25.2mg、五水硫酸铜7.9mg,完全溶解后搅匀制得培养液。
B、具鞘微鞘藻的培养
(1)一级培养:将具鞘微鞘藻种接入装有培养液的三角瓶(150~200ml)中,静止培养或通气培养,通气培养时,调节气流大小在2.5L.min-1,气流经过棉花球进行无菌处理,光强控制在70μE.m-2.s-1,温度控制在30℃。当培养7~10天后,转入到二级培养。
(2)二级培养:将一级培养所得的培养物接入到装有培养液的培养瓶(500~1000ml)中,通气培养,调节气流大小在3L.min-1,无菌处理,光强控制在80μE.m-2.s-1,温度控制在30℃。当培养7~10天后,转入到三级培养。
(3)三级培养:将二级培养所得的培养物接入到装有培养液的培养瓶(5000~20000ml),通气培养,调节气流大小在5L.min-1,无菌处理,光强控制在90μE.m-2.s-1,温度控制在30℃。培养7~10天后,便可作为继续培养的接种种源。
(4)继续培养
①小循环培养池(1~2m3)培养:采用三级培养后所得的藻种,接入小循环培养池。采用玻璃温棚控制温度在30℃,利用自然光进行光照,采用遮荫网控制光照强度在120~180μE.m-2.s-1,叶轮或潜水泵搅动培养基。
②大循环培养池(40~60m3)培养:将小循环培养池中培养4~7天的具鞘微鞘藻转接到大循环培养池中,小循环培养池与大循环培养池中培养液的体积比为1∶20~25,其他培养条件与小循环培养池的培养条件相同。
上述具鞘微鞘藻接种时,按每升培养液0.1~0.5g湿重的比例接入。
C、具鞘微鞘藻粉的制备
将大循环培养池中培养15~20天后的具鞘微鞘藻用泵抽到过滤装置——振动斜面筛上,经过振动斜面筛后,收得具鞘微鞘藻藻浆,然后将藻浆经过离心机离心,获得具鞘微鞘藻藻泥。将具鞘微鞘藻藻泥经浓缩、脱水、干燥、粉碎后得到具鞘微鞘藻粉。
D、具鞘微鞘藻藻蓝蛋白的抽提
向具鞘微鞘藻粉中加入7~10倍重量的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0-8.0的磷酸缓冲溶液,充分搅匀。然后置于-10~-20℃下冰冻,待冻结后取出,置于20~30℃下融溶,待其完全融溶后,再将其冰冻。如此反复冻融3~5次。绝大部分藻蓝蛋白从伪枝藻细胞中被提取出来,然后3000~6000rpm离心10~15min,收集上清液,即为藻蓝蛋白粗提液。
E、纯化
在冰浴条件下,在藻蓝蛋白的粗提液中加入饱和度为50~70%的硫酸铵避光盐析20~40min,然后在3~5℃下3000~6000rpm离心15~25min,弃除上清液,用一倍体积的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液溶解沉淀物,避光透析20~30h后离心,取上清液用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液平衡好的DEAE-52离子交换柱,并用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液和0.1~0.3 mol.L-1的NaCl溶液洗脱,用自动部分收集器收集蓝色组分,冷冻干燥得纯化的藻蓝蛋白。
Claims (2)
1.一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法,其特征在于包括如下步骤:
A、培养液的配制:按每升水加入硝酸钠0.8~2.5g、磷酸氢二钾0.02~0.05g、硫酸镁0.06~0.09g、氯化钙0.02~0.05g、柠檬酸0.004~0.008g、柠檬酸铁铵0.004~0.008g、乙二胺四乙酸二钠盐0.001~0.003g、碳酸钠0.01~0.04g,微量元素溶液0.5~2ml,其中微量元素溶液按每100ml蒸馏水中加入硼酸270~300mg、四水氯化锰170~200mg、七水硫酸锌18~25mg、二水钼酸钠15~30mg、五水硫酸铜6~10mg,完全溶解后搅匀制得培养液;
B、具鞘微鞘藻的培养:首先是一级培养,将具鞘微鞘藻藻种接入培养液中静止培养或通气培养,调节气流在1.5~3.5L.min-1,光强控制在65~85μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后转入到二级培养;其次是二级培养,将一级培养所得的培养物接入到新的培养液中通气培养,调节气流在2.5~5L.min-1,无菌处理,光强控制在75~95μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后转入到三级培养;第三是三级培养,将二级培养所得的培养物接入到新的培养液中通气培养,调节气流在3~6L.min-1,无菌处理,光强控制在70~100μE.m-2.s-1,温度控制在22~35℃,培养5~10天后作为继续培养的接种种源;第四是继续培养,首先是小循环培养池培养,将三级培养后所得的藻种,接入小循环培养池,控制温度在22~35℃,利用自然光进行光照,控制光照强度在120~180μE.m-2.s-1,搅动培养基;其次是大循环培养池培养,将小循环培养池中培养4~7天后的具鞘微鞘藻转接到大循环培养池中,将大循环培养池中控制温度在22~35℃,利用自然光进行光照,控制光照强度在120~180μE.m-2.s-1培养10~20天后的具鞘微鞘藻过滤收得具鞘微鞘藻藻浆;
C、具鞘微鞘藻粉的制备:将藻浆经过离心获得具鞘微鞘藻藻泥,经浓缩、脱水、干燥、粉碎后得到具鞘微鞘藻粉;
D、具鞘微鞘藻藻蓝蛋白的抽提:向具鞘微鞘藻粉中加入7~10倍重量的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲溶液,充分搅匀,然后置于-10~-20℃下冰冻,待冻结后取出,置于20~30℃下融溶,待其完全融溶后,再将其冰冻,如此反复冻融3~5次,然后3000~6000rpm离心10~15min,收集上清液,即为藻蓝蛋白粗提液;
E、纯化:在冰浴条件下,在藻蓝蛋白的粗提液中加入饱和度为50~70%的硫酸铵避光盐析20~40min,然后在3~5℃下3000~6000rpm离心15~25min,弃除上清液,用一倍体积的0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液溶解沉淀物,避光透析20~30h后离心,取上清液用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液平衡好的DEAE-52离子交换柱,并用0.05~0.1mol.L-1,pH值为6.0~8.0的磷酸缓冲液和0.1~0.3mol.L-1的NaCl溶液洗脱,用收集蓝色组分,冷冻干燥得纯化的藻蓝蛋白。
2.根据权利要求1所述的一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法,其特征在于:小循环培养池与大循环培养池中培养液的体积比为1∶20~25。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2008100467723A CN101220080B (zh) | 2008-01-25 | 2008-01-25 | 一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2008100467723A CN101220080B (zh) | 2008-01-25 | 2008-01-25 | 一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101220080A true CN101220080A (zh) | 2008-07-16 |
CN101220080B CN101220080B (zh) | 2012-01-04 |
Family
ID=39630182
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2008100467723A Expired - Fee Related CN101220080B (zh) | 2008-01-25 | 2008-01-25 | 一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101220080B (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103146582A (zh) * | 2013-03-25 | 2013-06-12 | 哈尔滨工业大学 | 一种富油微藻的高通量筛选方法 |
WO2018227665A1 (zh) * | 2017-06-14 | 2018-12-20 | 湖南炎帝生物工程有限公司 | 一种葛仙米藻胆蛋白的提取、纯化方法及纯化的藻蓝蛋白 |
CN110801520A (zh) * | 2019-09-25 | 2020-02-18 | 广东石油化工学院 | 一种螺旋藻生物荧光金属有机框架化合物的制备方法 |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1130028A (zh) * | 1995-02-27 | 1996-09-04 | 陈志龙 | 藻蓝蛋白的制备方法 |
US5807536A (en) * | 1996-04-09 | 1998-09-15 | The Regents Of The University Of California | Anatomical imaging with phycocyanins |
CN1156490C (zh) * | 2001-09-03 | 2004-07-07 | 中国科学院海洋研究所 | 藻胆蛋白的分离方法 |
-
2008
- 2008-01-25 CN CN2008100467723A patent/CN101220080B/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103146582A (zh) * | 2013-03-25 | 2013-06-12 | 哈尔滨工业大学 | 一种富油微藻的高通量筛选方法 |
WO2018227665A1 (zh) * | 2017-06-14 | 2018-12-20 | 湖南炎帝生物工程有限公司 | 一种葛仙米藻胆蛋白的提取、纯化方法及纯化的藻蓝蛋白 |
CN110801520A (zh) * | 2019-09-25 | 2020-02-18 | 广东石油化工学院 | 一种螺旋藻生物荧光金属有机框架化合物的制备方法 |
CN110801520B (zh) * | 2019-09-25 | 2022-01-28 | 广东石油化工学院 | 一种螺旋藻生物荧光金属有机框架化合物的制备方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101220080B (zh) | 2012-01-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103820325B (zh) | 波吉卵囊藻高密度培养方法及藻细胞收集方法 | |
CN105647825B (zh) | 一种同时提高螺旋藻生物质和多糖产率的方法 | |
CN105316217B (zh) | 人工光源微藻养殖装备 | |
CN103834570B (zh) | 三角褐指藻和小新月菱形藻混合培养的培养基及培养方法 | |
CN110627213B (zh) | 一种微藻光发酵法高效处理高氨氮废水的方法 | |
CN209722114U (zh) | 一种盐藻培养装置 | |
CN105316235A (zh) | 一种淡水真核微藻养殖方法 | |
CN106133147A (zh) | 虾青素的生产方法 | |
CN101036445A (zh) | 一种人工快速培养葛仙米藻种的方法 | |
CN101220080B (zh) | 一种从具鞘微鞘藻中提取藻蓝蛋白的方法 | |
CN101235075B (zh) | 一种从纤细席藻中提取藻蓝蛋白的方法 | |
CN110845015A (zh) | 一种利用盐藻提高盐湖卤水蒸发效率的方法 | |
CN103966102A (zh) | 一种利用尿素厂废水培养莱茵衣藻的培养基及培养方法 | |
CN105754862A (zh) | 一种用污水养殖微藻的方法 | |
CN208328019U (zh) | 光合细菌的培养装置 | |
CN102294227B (zh) | 小球藻海水净化生物吸附剂的制备方法及其应用方法 | |
CN101220386A (zh) | 一种从爪哇伪枝藻中提取多糖的方法 | |
CN101235096B (zh) | 一种从纤细席藻中提取多糖的方法 | |
CN101240012A (zh) | 一种从爪哇伪枝藻中提取藻蓝蛋白的方法 | |
CN1314711C (zh) | 一种葛仙米多糖的提取方法 | |
CN108977402A (zh) | 一种获得高含量甘油葡萄糖苷藻细胞的养殖方法 | |
CN102304463B (zh) | 基于白炭黑生产***的螺旋藻养殖***及方法 | |
CN205368378U (zh) | 微藻培养装置 | |
CN106635815B (zh) | 原多甲藻的培养基与培养方法 | |
CN106496312A (zh) | 一种采用壳聚糖吸附法制备高纯度藻红蛋白的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20120104 Termination date: 20130125 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |