CN101173215A - 用于小球藻异养培养的低磷培养基 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种用于小球藻异养培养的低磷培养基,属生物技术领域。本发明组份及其浓度含量(mg/l):Glucose·H2O 5000-50000,KH2PO4 10-1000,KNO3 300-7500,MgSO4·7H2O 1000-1250,EDTA 500-625,H3BO3 114.2-142.75,CaCl2·2H2O 111-138.75,FeSO4·7H2O 49.8-62.25,ZnSO4·7H2O 88.2-110.25,MnCl2·4H2O 14.2-17.75,MoO3 7.1-8.875,CuSO4·5H2O 15.7-19.625,Co(NO3)2·6H2O 4.9-6.125。在小球藻培养中应用本发明提供的低磷培养基,KH2PO4的用量仅为原Basal配方的1.6%-16%,但小球藻培养的接种量、比生长速率、生物量产量、生物量对葡萄糖转化率、生长趋势、培养时间达到原Basal培养的相当水平。
Description
技术领域
本发明涉及的是一种生物工程技术领域微藻培养基,具体是一种小球藻异养培养的低磷培养基。
背景技术
小球藻是一种单细胞微藻,含有丰富的蛋白质、类胡萝卜素、多糖、维生素和小球藻生长因子等多种营养及活性成份,具有抗氧化、抗肿瘤、提高免疫力和预防心血管疾病等生理功能。小球藻的培养目前以开放式光照自养培养方式为主,其缺点是占地面积大、受自然条件和季节气候的影响和限制、产量质量难以维持稳定、生长速度慢、生物量低(在小球藻自养培养中,细胞浓度通常为200-600mg细胞干重/l)、易受到异种生物的污染或吞食而造成培养的失败、小球藻的收获成本较高等。与自养培养方式相比,异养培养方式具有以下优点:不受环境和气候等条件的限制;可保持纯培养,保证产品质量的稳定和均一性;能够获得较高的细胞浓度和生产效率,降低生产成本;可借鉴和利用比较成熟的工业发酵技术和生产设备等,因而近年来日益受到国内外学者的关注。
磷是细胞生长所必需的营养元素,与细胞的ATP、核酸以及其它细胞组份的合成密切相关,因而是培养基中的重要组分。但长时间以来,关于小球藻对磷的吸收利用,尤其是异养培养条件下小球藻对磷的吸收利用报道很少。
Basal培养基自1958年以来被广泛应用于培养微藻,但研究结果显示,在绝大多数培养条件下,该培养基中的磷浓度均远高于小球藻生长所需。例如,研究结果表明,在10g起始葡萄糖/l浓度下,Basal培养基中的PO4 3--P浓度为小球藻异养生长实际需求量的6.25-62.5倍,造成培养结束后培养基中的磷残留。较高浓度的磷残留不仅是一种资源浪费,而且可能造成湖泊及其它天然水体的富营养化。因此,确定培养基中合适的磷浓度范围,不仅可以降低生产成本,而且可以有效减少排放废水中的磷含量,减轻废水处理压力,利于环境保护。
目前关于小球藻异养培养的培养基研究主要集中在碳和氮方面,而关于小球藻对磷元素吸收利用的研究则多在自养条件下进行,包括小球藻对废水中磷的去除、对磷的超量吸收、氮磷比对小球藻生长的影响等。
经对现有技术的文献检索发现,史贤明等在《Process Biochemistry》(生物化学进展,1999;34:341-347)上发表的《Production of biomass and luteinby Chlorella protothecoides at various glucose concentrations inheterotrophic cultures(不同葡萄糖浓度下异养培养原壳小球藻生物量和叶黄素的生产)》一文,文中提出在异养培养条件下,培养基中不同葡萄糖浓度对小球藻生物量和叶黄素产量的影响,具体技术内容为:葡萄糖浓度在10,20,30,40,50,60,70,80和100g/l的摇瓶培养条件下,10和40g/l的发酵罐培养条件下,其对小球藻生物量和叶黄素产量的影响,并给出了适合的动力学模型。其不足在于:(1)未研究异养培养条件下小球藻对磷的吸收特性,和碳磷比值对小球藻生长和生物量的影响;(2)按照文中给出的技术方案,Basal培养基中的磷含量严重过量,培养结束后在培养基中残留较高浓度的磷,造成资源浪费和环境污染。
发明内容
本发明的目的在于改进现有技术的不足,提供一种用于小球藻异养培养的低磷培养基,使其用于小球藻异养培养,相对原Basal培养基,在不降低小球藻异养培养产量水平的前提下,减少了磷用量,可直接降低生产成本、减少污染源。
本发明是通过以下技术方案实现的,在Basal培养基的基础上,依据小球藻生长消耗的碳磷、碳氮比值,参照Basal培养基,小球藻异养培养的低磷培养基组份及其浓度含量(mg/l):Glucose·H2O 5000-50000,KH2PO4 10-1000,KNO3300-7500,MgSO4·7H2O 1000-1250,EDTA 500-625,H3BO3 114.2-142.75,CaCl2·2H2O 111-138.75,FeSO4·7H2O 49.8-62.25,ZnSO4·7H2O 88.2-110.25,MnCl2·4H2O 14.2-17.75,MoO3 7.1-8.875,CuSO4·5H2O 15.7-19.625,Co(NO3)2·6H2O 4.9-6.125。
根据上述的组份及组份浓度,准确称量培养基各组份,用水溶解定容,调节pH到6.1-6.5,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下,即获得用于小球藻异养培养的低磷培养基产品。
本发明用自来水,或自来水和啤酒废水按一定比例配合溶解使用。
本发明的基本原理是根据小球藻培养过程中所消耗的碳磷、碳氮比值,按物质摩尔比计算,碳磷比值为206/1-2060/1,碳氮比值为20/1-51/1,通过以上方案调整配方组份含量,降低培养基中磷、氮含量,以达到在不降低小球藻异养培养产量水平的前提下,消除培养结束后培养液中的磷残留,减少污染源和对环境危害,直接降低生产原料投入,提高生产效益。
与现有技术相比,在小球藻培养中应用本发明提供的低磷培养基,KH2PO4的用量仅为原Basal配方的1.6%-16%,但小球藻培养的接种量、比生长速率、生物量产量、生物量对葡萄糖转化率、生长趋势、培养时间达到原Basal培养的相当水平,经济和环保效益显著,体现了小球藻的生态化生产。
附图说明
图15g起始葡萄糖/l,2.28mg起始磷酸根磷/l,19-l发酵罐中进行的小球藻异养分批培养试验的曲线示意图。
其中:□,生物量;△,葡萄糖;×,磷酸根磷。
图2 10g起始葡萄糖/l,22.8mg起始磷酸根磷/l,19-l发酵罐中进行的小球藻异养分批培养试验的曲线示意图。
其中:□,生物量;△,葡萄糖;×,磷酸根磷。
图3 40g起始葡萄糖/l,22.8mg起始磷酸根磷/l,19-l发酵罐中进行的小球藻异养分批培养试验的曲线示意图。
其中:□,生物量;△,葡萄糖;×,磷酸根磷。
图4 50g起始葡萄糖/l,228mg起始磷酸根磷/l,19-l发酵罐中进行的小球藻异养分批培养试验的曲线示意图。
其中:□,生物量;△,葡萄糖;×,磷酸根磷。
图5 10g起始葡萄糖/l,4.56mg起始磷酸根磷/l,19-l发酵罐中进行的小球藻异养流加培养试验的曲线示意图。
其中:□,生物量;△,葡萄糖;×,磷酸根磷。
具体实施方式
下面结合附图对本发明的实施例作详细说明:本实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方式和过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
下列实施例中未注明的具体实验方法,通常按照常规条件,例如生化实验方法和技术(高等教育出版社,1997),或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1:
小球藻异养培养的低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 5000,KH2PO4 10,KNO3 300,MgSO4·7H2O 1000,EDTA 500,H3BO3 114.2,CaCl2·2H2O 111,FeSO4·7H2O49.8,ZnSO4·7H2O 88.2,MnCl2·4H2O 14.2,MoO3 7.1,GuSO4·5H2O 15.7,Co(NO3)2·6H2O4.9。
用于19-l发酵罐小球藻异养分批培养,培养基用自来水溶解配制,装量12l,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量8%(v/v),pH6.5,温度28℃,搅拌速度与培养液氧饱和浓度相关联,控制氧饱和浓度大于50%。
5g起始葡萄糖/l,2.28mg起始磷酸根磷/l,小球藻生长迅速,最大细胞浓度为2.6g/l,说明培养基中的磷浓度满足其生长所需,且培养基中PO4 3--P基本耗尽(图1),结果证明应用本发明的培养基,可成功实施低浓度碳的发酵罐分批培养。
实施例2:
小球藻异养培养的低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 10000,KH2PO4 100,KNO3 1250,MgSO4·7H2O 1000,EDTA 500,H3BO3 114.2,CaCl2·2H2O 111,FeSO4·7H2O49.8,ZnSO4·7H2O 88.2,MnCl2·4H2O 14.2,MoO3 7.1,CuSO4·5H2O 15.7,Co(NO3)2·6H2O4.9。
用于19-l发酵罐小球藻分批异养培养,培养基用自来水溶解配制,装量12l,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量10%(v/v),pH6.5,温度28℃,搅拌速度与培养液氧饱和浓度相关联,控制氧饱和浓度大于50%。
培养至48小时左右,小球藻细胞浓度达到最大值,最大细胞浓度为5.5g/l,说明培养基中的磷浓度满足其生长所需,且培养基中PO4 3--P基本耗尽(图2),结果证明应用本发明的培养基,可成功实施中浓度碳的发酵罐分批培养。
实施例3:
小球藻异养培养的低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 40000,KH2PO4 100,KNO3 5000,MgSO4·7H2O 1000,EDTA 500,H3BO3 114.2,CaCl2·2H2O 111,FeSO4·7H2O49.8,ZnSO4·7H2O 88.2,MnCl2·4H2O 14.2,MoO3 7.1,CuSO4·5H2O 15.7,Co(NO3)2·6H2O4.9。
用于19-l发酵罐小球藻分批异养培养,培养基用自来水溶解配制,装量12l,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量10%(v/v),pH6.5,温度28℃,搅拌速度与培养液氧饱和浓度相关联,控制氧饱和浓度大于50%。
培养至84小时左右,小球藻细胞浓度达到最大值,最大细胞浓度为21g/l,说明培养基中的磷浓度满足其生长所需,且培养基中PO4 3--P基本耗尽(图3),结果证明应用本发明的培养基,可成功实施高浓度碳的发酵罐分批培养。
实施例4:
小球藻异养培养的低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 50000,KH2PO4 1000,KNO3 7500,MgSO4·7H2O 1250,EDTA 625,H3BO3 142.75,CaCl2·2H2O 138.75,FeSO4·7H2O 62.25,ZnSO4·7H2O 110.25,MnCl2·4H2O 17.75,MoO3 8.875,CuSO4·5H2O19.625,Co(NO3)2·6H2O 6.125。
用于19-l发酵罐小球藻分批异养培养,培养基用自来水溶解配制,装量12l,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量10%(v/v),pH6.5,温度28℃,搅拌速度与培养液氧饱和浓度相关联,控制氧饱和浓度大于50%。
培养至95小时左右,小球藻细胞浓度达到最大值,最大细胞浓度为26g/l,说明培养基中的磷浓度满足其生长所需,且培养基中PO4 3--P基本耗尽(图4),结果证明应用本发明的培养基,可成功实施高浓度碳的发酵罐分批培养。
实施例5:
小球藻流加培养的前期低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 10000,KH2PO420,KNO3 1000,MgSO4·7H20 1000,EDTA 500,H3BO3 114.2,CaCl2·2H2O 111,FeSO4·7H2O 49.8,ZnSO4·7H2O 88.2,MnCl2·4H2O 14.2,MoO3 7.1,CuSO4·5H2O15.7,Co(NO3)2·6H2O 4.9。
用于19-l发酵罐小球藻流加培养的前期,培养基用自来水溶解配制,装量12l,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量10%(v/v),pH6.5,温度28℃,搅拌速度与培养液氧饱和浓度相关联,控制氧饱和浓度大于50%。
补料培养液配方(mg/l):Glucose·H2O 417000,KH2PO4 834(PO4 3--P190),KNO3 52125,MgSO4·7H2O 41700,EDTA 20850,H3BO3 4762.14,CaCl2·2H2O 4628.7,FeSO4·7H2O 2076.66,ZnSO4·7H2O 3677.94,MnCl2·4H2O 592.14,MoO3 296.07,CuSO4·5H2O 654.69,Co(NO3)2·6H2O 204.33。用自来水溶解配制,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下待用。
补料方案为:0-31.5h,0 l/24h,31.5-55.5h,0.29 l/24h,55.5-79.5h,1.13 l/24h;79.5-127.5h,1.54 l/24h。
培养结束后小球藻最大细胞浓度达到70g/l左右,说明培养基中的磷浓度能满足其生长所需,且培养基中PO4 3--P基本耗尽(图5),结果证明应用本发明的培养基,可成功实施小球藻高浓度流加培养。
实施例6:
某啤酒公司一段工序废水:CODcr:5020mg/l BOD5:1976mg/l NO3 1--N:18mg/l PO4 3--P:10mg/l。
小球藻异养培养的低磷培养基配方(mg/l):Glucose·H2O 10000,KH2PO420,KNO3 300,MgSO4·7H2O 1000,EDTA 500,H3BO3 114.2,CaCl2·2H2O 111,FeSO4·7H2O49.8,ZnSO4·7H2O 88.2,MnCl2·4H2O 14.2,MoO3 7.1,CuSO4·5H2O 15.7,Co(NO3)2·6H2O4.9。
培养基用啤酒废水溶解,用250ml锥形瓶,装量100ml,初始pH为6.1,121℃灭菌20分钟,冷却到30℃以下。培养条件:接种量8%(v/v),28℃,180rpm,无光培养。
用啤酒废水代替自来水进行小球藻的异养培养,能得到相同的培养产量,且最终排放废水中的BOD、氮、磷都有很大程度(80%以上)的降低。结果证明应用本发明的培养基,利用啤酒废水部分代替自来水进行小球藻异养培养是可行的。
在上述培养基配方中,用本发明低磷培养基进行小球藻异养培养,相对原Basal培养基,在不降低小球藻异养培养产量水平的前提下,减少了磷用量,提高了经济效益。
Claims (3)
1.一种用于小球藻异养培养的低磷培养基,其特征在于,组份及其浓度含量mg/l:Glucose·H2O 5000-50000,KH2PO4 10-1000,KNO3 300-7500,MgSO4·7H2O1000-1250,EDTA 500-625,H3BO3 114.2-142.75,CaCl2·2H2O 111-138.75,FeSO4·7H2O 49.8-62.25,ZnSO4·7H2O 88.2-110.25,MnCl2·4H2O 14.2-17.75,MoO3 7.1-8.875,CuSO4·5H2O 15.7-19.625,Co(NO3)2·6H2O 4.9-6.125。
2.根据权利要求1所述的用于小球藻异养培养的低磷培养基,其特征是,所述的培养基,按物质摩尔比计算,碳磷比为206/1-2060/1,碳氮比为20/1-51/1。
3.根据权利要求1所述的用于小球藻异养培养的低磷培养基,其特征是,所述培养基用自来水,或自来水和啤酒废水配合溶解。
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CN102465098A (zh) * | 2010-11-05 | 2012-05-23 | 中国石油化工股份有限公司 | 一种用于培养小球藻的培养基组合物 |
CN105102608A (zh) * | 2013-03-29 | 2015-11-25 | 罗盖特兄弟公司 | 稳定由小球藻属的微藻产生的氧化敏感性代谢物的方法 |
CN107828660A (zh) * | 2017-09-30 | 2018-03-23 | 南京大学昆山创新研究院 | 一种高效高密度培养生物饵料的方法 |
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