WO2023188896A1 - 生体粒子解析システム、情報処理装置、及び生体粒子解析方法 - Google Patents
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Definitions
- the present technology relates to a biological particle analysis system, an information processing device, and a biological particle analysis method. More specifically, the present invention relates to a bioparticle analysis system, an information processing device, and a bioparticle analysis method that can correlate morphological information and molecular information with high accuracy.
- Non-Patent Document 1 a substrate to which cell membrane-binding molecules are bonded via a photodegradable linker is used to create a pattern by light irradiation, and then cells are seeded to trap single cells and the cell motility is analyzed. A method to do so has been disclosed.
- one biological particle is sealed in each well for imaging
- one barcode bead or barcode gel is sealed in each well
- one biological particle is sealed in each well.
- barcoded molecules from all wells can be sequenced at once, reducing analysis costs.
- barcode beads are randomly sealed into wells, it is difficult to link wells and barcode information. Therefore, it is difficult to connect the captured image information and molecular information for each well.
- the main purpose of the present technology is to provide a technology that can correlate morphological information and molecular information with high accuracy.
- a cleavable linker, a bioparticle capture section, a molecule capture arrangement section, and a barcode arrangement section are attached to a surface fixed to a bioparticle via the bioparticle capture section.
- a trapping device that traps particles, morphological information about the biological particles obtained based on captured image information, and a barcode array section added to molecules derived from the biological particles captured by the molecule trapping array section.
- a bioparticle analysis system is provided, including an information processing device that associates information regarding the molecules obtained based on the information processing method.
- the present technology also provides information processing that associates morphological information about biological particles obtained based on captured image information with information about the molecules obtained based on a barcode arrangement section added to the molecules derived from the biological particles.
- information processing that associates morphological information about biological particles obtained based on captured image information with information about the molecules obtained based on a barcode arrangement section added to the molecules derived from the biological particles.
- the cleavable linker, the bioparticle capture section, the molecule capture array section, and the barcode arrangement section are further attached to the surface fixed to the bioparticle capture section via the bioparticle capture section.
- morphological information about the biological particles obtained based on the captured image information obtained in the imaging step, and the arrangement of the barcode array portion obtained in the sequence analysis step.
- a bioparticle analysis method is also provided, which includes an association step of associating information regarding the molecules.
- FIG. 1 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a biological particle analysis system 100 according to a first embodiment.
- 1 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a capturing device 1.
- FIG. 3 is a schematic diagram showing an example of a different embodiment from FIG. 2 of the capturing device 1.
- FIG. FIG. 2 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a biological particle analysis system 100 according to a second embodiment.
- FIG. 3 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a biological particle analysis system 100 according to a third embodiment.
- 3 is a flowchart illustrating flow example 1.
- FIG. FIG. 3 is a schematic diagram for explaining a particle isolation step.
- FIG. 3 is a schematic diagram for explaining a particle isolation step.
- FIG. 3 is a schematic diagram for explaining a particle isolation step.
- FIG. 2 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a microchannel used in a particle isolation step.
- FIG. 1 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of a nucleic acid-binding antibody. 1 is a diagram schematically showing an example of an embodiment of a biological particle sorting device used in a particle isolation step.
- 12 is a flowchart illustrating flow example 2.
- FIG. 13 is a flowchart illustrating flow example 3. It is a conceptual diagram explaining inference step S12. It is a schematic diagram for demonstrating the operation in each process included in the bioparticle analysis method based on 4th Embodiment.
- Biological particle analysis system 100 (1) Overall configuration (2) Capture device 1 (2-1) Linker 11 (2-2) Amplification array section 12 (2-3) Barcode array section 13 (2-4) UMI (Unique Molecular Identifier) section 14 (2-5) Array section 15 for molecule capture (2-6) Biological particle capture unit 16 (2-7) Recovery array section 17 (3) Information processing measures 2 (3-1) Processing unit 21 (3-2) Storage section 22 (3-3) User interface section 23 (3-4) Output section 24 (4) Imaging device 3 2.
- Second embodiment biological particle analysis system 100
- First embodiment biological particle analysis system 100
- First embodiment biological particle analysis system 100
- Capture device 1 (2-1) Linker 11 (2-2) Amplification array section 12 (2-3) Barcode array section 13 (2-4) UMI (Unique Molecular Identifier) section 14 (2-5) Array section 15 for molecule capture (2-6) Biological particle capture unit 16 (2-7) Recovery array section 17 (3) Information processing measures 2 (3-1) Processing unit 21 (3-2) Storage section 22 (3-3) User interface section 23 (3-4) Output section 24 (4) Imaging device 3 2.
- a biological particle analysis system 100 includes a capturing device 1, an information processing device 2, and an imaging device 3. Additionally, other devices and parts may be included as necessary. Each device and each part will be explained in detail below.
- FIG. 2 is a schematic diagram showing an example of an embodiment of the capturing device 1.
- the capture device 1 has a surface 101 on which a cleavable linker 11 , a bioparticle capture section 16 , a molecule capture array section 15 , and a barcode array section 13 are fixed via the linker 11 , and the bioparticle capture section 16 . This is a part that captures biological particles via the capture section 16.
- biological particles may include chromosomes, ribosomes, mitochondria, organelles (cellular organelles), etc. that constitute various cells.
- Cells can include animal cells (eg, blood cells, etc.) and plant cells.
- the cell may in particular be a blood-based cell or a tissue-based cell.
- Floating cells may also be included.
- the blood cells may be, for example, floating cells such as T cells and B cells.
- the tissue-based cells may be, for example, adherent cultured cells or adherent cells separated from tissue.
- Cell masses can include, for example, spheroids, organoids, and the like.
- Microorganisms may include bacteria such as Escherichia coli, viruses such as tobacco mosaic virus, and fungi such as yeast.
- the biological particles can also include biological macromolecules such as nucleic acids, proteins, and complexes thereof.
- the biological macromolecule may be, for example, extracted from cells or contained in a blood sample or other liquid sample.
- the biological particles are preferably cells or cell aggregates.
- cell clusters include spheroids and organoids.
- a barcode sequence is attached to each of these cell clusters on an analysis substrate 102, which will be described later. Thereafter, by performing cleavage, isolation, and destruction, it is possible to impart a unique barcode sequence to each cell mass. As a result, the captured image information and morphological information for each cell mass are associated with information regarding molecules derived from biological particles.
- the biological particles may be stimulated by a drug.
- drug refers to chemical substances that kill pathogenic microorganisms such as bacteria and viruses, cancer cells (malignant neoplasms), or suppress their proliferation, and blood system cells such as T cells and B cells. It means a chemical substance that acts on cells, and is not particularly limited in the present technology. Furthermore, “drug” is a broad concept that includes drug candidates in the development stage.
- the capture device 1 shown in FIG. 2 includes a linker 11, an amplification array section 12, a barcode array section 13, a UMI (Unique Molecular Identifier) section 14, a molecule capture array section 15, and a biological particle capture section 16. .
- Capture device 1 is fixed to surface 101 via linker 11 .
- the capture device 1 can be provided on the surface 101 of an analysis substrate 102 such as a glass slide.
- the capture device 1 may be, for example, a single molecule or a complex molecule, and a single molecule means, for example, one type of molecule having multiple functions.
- a complex molecule may be, for example, a molecular assembly consisting of two or more types of molecules (e.g., a combination of two or more types of molecules), and may include a nucleic acid and a polypeptide (e.g., a protein or a part thereof, or an oligopeptide). etc.).
- the amplification sequence section 12, barcode sequence section 13, and UMI section 14, which will be described later, may be configured as a continuous nucleic acid (particularly, DNA).
- the biological particle capturing section 16 is a nucleic acid
- the molecule capturing array section 15 may also be configured as a continuous nucleic acid (particularly, DNA).
- the end closer to the fixed portion of the surface 101 and the capture device 1 may be the 5' end, and the other end may be the 3' end.
- the linker 11 may be a linker that can be cleaved by stimulation, for example, a linker that can be cleaved by optical stimulation or chemical stimulation.
- Optical stimulation is preferable because stimulation can be applied selectively to specific locations.
- the linker 11 may be selected from the group consisting of an arylcarbonylmethyl group, a nitroaryl group, a coumarin-4-ylmethyl group, an arylmethyl group, a metal-containing group, and other conventionally known groups as a linker cleavable by optical stimulation, for example. It may contain one or more selected groups.
- Examples of the arylcarbonylmethyl group include a phenacyl group, an o-alkylphenacyl group, and a p-hydroxyphenacyl group.
- Examples of the nitroaryl group include o-nitrobenzyl group, o-nitro-2-phenethyloxycarbonyl group, and o-nitroanilide.
- the arylmethyl group may have, for example, a hydroxy group introduced therein, or may not have a hydroxy group introduced therein.
- the linker 11 When the linker 11 is a linker that can be cleaved by light stimulation, the linker 11 may preferably be cleaved by light having a wavelength of 360 nm or more.
- the linker 11 may preferably be a linker that is cleaved with an energy of 0.5 ⁇ J/ ⁇ m 2 or less.
- the linker 11 may be a linker that is cleaved by light in the short wavelength region, specifically in the wavelength region of 360 nm to 410 nm, or can be cleaved by light in the near-infrared region or infrared region, specifically Specifically, it may be a linker that is cleaved by light in a wavelength range of 800 nm or more. If the linker 11 is a linker that is efficiently cleaved by light with a wavelength in the visible light range, handling of the surface for analysis may become difficult. Therefore, the linker 11 is preferably a linker that is cleaved by light in the short wavelength region or light in the near-infrared region or infrared region.
- the linker 11 may include, for example, a disulfide bond, a restriction endonuclease recognition sequence, a sequence complementary to guide RNA (gRNA), or an RNA sequence, as a linker that can be cleaved by chemical stimulation. It can be included.
- reducing agents such as Tris (2-carboxyethyl) phosphine (TCEP), Dithiothreitol (DTT), and 2-Mercaptoethanol are used, for example.
- TCEP Tris (2-carboxyethyl) phosphine
- DTT Dithiothreitol
- 2-Mercaptoethanol 2-Mercaptoethanol
- 1 U of restriction enzyme activity is the amount of enzyme that can completely decompose 1 ⁇ g of ⁇ DNA in 50 ⁇ L of each enzyme reaction solution in 1 hour at 37°C, and the amount of enzyme should be adjusted according to the amount of restriction enzyme identification sequence.
- CRISPR associated (Cas) nuclease enables dissociation of the gRNA complementary sequence portion.
- the linker 11 may include a protospacer adjacent motif (PAM) sequence. In this case, the PAM sequence is flanked by a sequence complementary to the gRNA. If an RNA sequence is included, the RNA sequence portion is dissociated by treatment with RNase.
- the linker 11 may include a plurality of cleavable linkers in the capture device 1 in order to increase the cleavage efficiency.
- the amplification sequence section 12 may include, for example, a nucleic acid having a primer sequence used for amplifying a nucleic acid or a promoter sequence used for transcription of a nucleic acid in the target molecule analysis step S9 described below.
- the nucleic acid may be DNA or RNA, especially DNA.
- the amplification sequence section 12 may have both a primer sequence and a promoter sequence.
- the primer sequence may be, for example, a PCR handle.
- the promoter sequence may be, for example, a T7 promoter sequence.
- the barcode sequence section 13 contains a nucleic acid having a barcode sequence.
- the nucleic acid may in particular be DNA or RNA, more particularly DNA.
- Barcode sequences may be used, for example, to identify captured biological particles (particularly cells or exosomes), and in particular to identify biological particles isolated in one microspace to those isolated in another microspace. It can be used as an identifier to distinguish it from other biological particles.
- the barcode arrangement can be used as an identifier to distinguish the capture device 1 including a certain barcode arrangement from the capture device 1 including another barcode arrangement.
- the barcode sequence may be associated with a biological particle to which a capture device 1 containing the barcode sequence is bound.
- the barcode array may be associated with a microspace in which biological particles bound by the capture device 1 including the barcode array are isolated, and in particular, information regarding the position of the microspace (hereinafter referred to as "location information") may be associated with the barcode array. ).
- the position information may be for specifying a position on the surface 101, for example, information regarding XY coordinates, but the present technology is not limited thereto.
- the barcode array is associated with morphological information regarding the biological particles obtained based on captured image information.
- captured image information may be the data of the captured image itself, but the present technology is not limited thereto. For example, it may be data obtained by compressing a captured image.
- morphological information includes the captured image itself, the feature amount extracted from the captured image, etc., and is a broad concept that includes one-dimensional, two-dimensional, and three-dimensional information.
- the feature values include, for example, radius(mean of distances from center to points on the perimeter), texture(standard deviation of gray-scale values), perimeter, area, smoothness(local variation in radius lengths), compactness(perimeter ⁇ ) 2/area-1.0), concavity(severity of concave portions of the contour), concave points(number of concave portions of the contour), symmetry, fractal dimension(coastline approximation-1), roundness, mean intensity, max intensity, speckles
- Examples include within a nucleus, distances between the nucleus and individual cytoplasmic vesicles, but the present technology is not limited thereto.
- feature amounts other than those described above can also be extracted from the captured image using, for example, a convolutional neural network or the like. Note that the extraction of these feature amounts may be performed by the information processing device 2, which will be described later.
- an ID number may be assigned to the captured image itself and the barcode array associated with the feature amount extracted from the captured image.
- the ID number can be used in the steps after the cleavage step S6, which will be described later.
- the ID number may have a one-to-one correspondence with the barcode sequence, and may be used as data corresponding to the barcode sequence in the steps after the cleavage step S6.
- a plurality of capturing devices 1 fixed within a certain area of the surface 101 can have the same barcode arrangement. This associates the certain region with the barcode sequence.
- the capturing device 1 including the barcode array can be associated with the position where one biological particle is present.
- the region R to which a plurality of capturing devices 1 having the same barcode arrangement are fixed may be smaller than the size of the biological particle.
- the surface 101 used in the biological particle analysis system 100 may have a plurality of regions on which a plurality of capturing devices 1 having the same barcode arrangement are fixed.
- the barcode sequence may be different for each region.
- the size of each region (for example, the maximum dimension of the region, such as the diameter, major axis, or length of the long side) is preferably smaller than the size of the biological particle, for example, 50 ⁇ m or less, preferably 10 ⁇ m or less, or more. Preferably, it may be 5 ⁇ m or less.
- the plurality of regions may be arranged at intervals such that, for example, biological particles captured in one region are not captured by the capturing device 1 fixed to another region.
- the distance may be, for example, a distance greater than or equal to the size of the biological particle, preferably a distance greater than the size of the biological particle.
- the number of the plurality of regions is preferably greater than the number of biological particles applied to the surface 101 in the capturing step S2 described below. This prevents two biological particles from being captured in one area.
- a capture device 1 containing a barcode sequence with a known arrangement can be fixed in a predetermined area.
- the surface 101 may have a plurality of regions, and the plurality of capture devices 1 fixed to each of the plurality of regions may include the same barcode arrangement.
- the plurality of regions can be set to be smaller than the size of the biological particles to be captured.
- the surface 101 configured in this manner allows each of the plurality of regions to be associated with the barcode array included in the plurality of capturing devices 1 fixed to each region.
- the area where the capturing device 1 including the same barcode arrangement is fixed is also referred to as a "spot".
- the size of the spot may be, for example, 50 ⁇ m or less, preferably 10 ⁇ m or less, more preferably 5 ⁇ m or less.
- the surface 101 configured as described above has a barcode array included in a certain capturing device 1 and the position where the certain capturing device 1 is present at the time when the capturing device 1 is immobilized on the surface 101. can be associated with.
- biotin is bound to the linker 11 of the capture device 1
- streptavidin is bound to the surface 101 on which the capture device 1 is immobilized, and the biotin and the streptavidin are bound. By doing so, the capturing device 1 is immobilized on the surface 101.
- the capture devices 1 containing barcode arrays may be randomly arranged on the surface 101.
- the barcode included in a certain capturing device 1 is read by reading the barcode array included in the fixed capturing device 1.
- the arrangement and the position where the certain capturing device 1 is present are associated.
- the barcode array included in a certain capturing device 1 and the position where the certain capturing device 1 is present do not need to be associated with each other. Since the biological particles and the capturing device 1 are isolated in the microspace in the isolation step S7 described later, the biological particles and the capturing device 1 (particularly, the barcode array included in the capturing device 1) are paired as one pair. It can be associated with 1. In this case, for example, beads (eg, gel beads) to which a plurality of capture devices 1 containing the same barcode sequence are bound may be used, and the beads may be immobilized on the surface 101. The size of the beads may be, for example, 50 ⁇ m or less, preferably 10 ⁇ m or less, more preferably 5 ⁇ m or less.
- a combination of biotin and streptavidin may be used to bind the capture device 1 to the beads.
- biotin is bound to the linker 11 of the capture device 1
- streptavidin is bound to the beads
- the capture device 1 is immobilized to the beads by binding the biotin and the streptavidin. Ru.
- the surface 101 may be provided with a plurality of recesses.
- One spot or one bead as described above may be placed in each of the plurality of recesses.
- the plurality of recesses allows the spot or the bead to be placed on the surface 101 more easily.
- the size of the recess is preferably such that, for example, one bead can fit therein.
- the shape of the recess may be circular, oval, hexagonal, or square, but the present technology is not limited thereto.
- the surface condition of the surface portion of the surface 101 where the spot or the bead is placed may be different from that of other surface portions.
- the surface portion on which the spot or the bead is placed may be hydrophilic and the other surface portion may be hydrophobic, or the other surface portion may be hydrophobic and have a convex portion. You may do so.
- Examples of techniques for imparting hydrophilicity to the surface include reactive ion etching in the presence of oxygen and irradiation with deep ultraviolet light in the presence of ozone. In these methods, a mask having a portion imparting hydrophilicity pierced through may be used.
- silicone spray spray-on-silicone
- Techspray 2101-12S may be used.
- a mask through which a portion imparting hydrophobicity is penetrated can be used.
- the capture device 1 can also be synthesized on the substrate 102 using, for example, a DNA microarray production technique or an oligo pool synthesis technique.
- the capturing device 1 can be synthesized at a specific position using a technique such as a DMD (Digital Mircomirror Device) used in photolithography, a liquid crystal shutter, or a spatial light phase modulator.
- a technique such as a DMD (Digital Mircomirror Device) used in photolithography, a liquid crystal shutter, or a spatial light phase modulator.
- bases or oligonucleotides are electrically induced and bonded to specific locations.
- a technique such as electrochemically removing the protecting group of the base at a specific location and synthesizing it can be carried out.
- all of the surface-fixed capture devices 1 may contain a common oligo sequence.
- a fluorescently labeled nucleic acid that has a complementary sequence to the oligo sequence By using a fluorescently labeled nucleic acid that has a complementary sequence to the oligo sequence, the position where the capture device 1 is immobilized (in particular, the position of the spot or the position of the bead) is confirmed. It can be seen especially in the dark field. Further, if the surface does not have the above-mentioned recesses or protrusions, it may be difficult to grasp the position where the capturing device 1 is fixed. In this case, the fluorescent label makes it easier to determine the position where the capturing device 1 is fixed.
- the UMI portion 14 may contain a nucleic acid, particularly DNA or RNA, and more particularly DNA.
- the UMI portion 14 may have a sequence of, for example, 5 bases to 30 bases, particularly 6 bases to 20 bases, and more particularly 7 bases to 15 bases.
- the UMI unit 14 may be configured such that the biological particle-derived molecules fixed on the surface 101 have different arrangements. For example, when the UMI section 14 has a 10 base nucleic acid sequence, the number of types of UMI sequences is 4 to the 10th power, that is, 1 million or more.
- the UMI section 14 can be used to quantify molecules derived from biological particles.
- a UMI sequence can be added to cDNA obtained by reverse transcribing the mRNA molecule.
- a large number of cDNAs obtained by amplifying cDNA reverse transcribed from one mRNA molecule have the same UMI sequence, but a large number of cDNAs obtained by amplifying cDNAs transcribed from other mRNA molecules having the same sequence as the mRNA in question have the same UMI sequence.
- cDNAs have different UMI sequences. Therefore, the number of copies of mRNA can be determined by counting the number of types of UMI sequences that have the same cDNA sequence.
- the UMI unit 14 may be configured, for example, so that molecules derived from a plurality of biological particles containing the same barcode sequence immobilized on one region R (for example, the spot or the bead) have different sequences from each other. That is, molecules derived from a plurality of biological particles immobilized on the region R (eg, the spot or the bead) may have the same barcode sequence but different UMIs.
- the molecule-trapping array section 15 includes components for capturing molecules derived from biological particles (hereinafter also referred to as "target molecules") captured via the biological particle capturing section 16, which will be described later.
- the component can be, for example, a nucleic acid or a protein.
- the nucleic acid may be, for example, a poly T sequence in order to comprehensively capture mRNA contained in cells.
- the nucleic acid may have a sequence complementary to the target sequence.
- the component is a protein
- the protein may be, for example, an antibody.
- the component may be an aptamer or a Molecular Imprinted Polymer.
- the molecule-trapping array section 15 may include two or more types of components for capturing molecules contained in cells.
- the molecular capture sequence section 15 may contain both a protein and a nucleic acid, for example, an antibody and a poly T sequence. This allows both protein and mRNA to be detected simultaneously.
- the bioparticle capture unit 16 includes components for capturing bioparticles, and particularly includes components for capturing cells.
- the component can be, for example, an antibody, an aptamer, or an oleyl group.
- the antibody can be, for example, an antibody that binds to a component (particularly a surface antigen) present on the surface of a biological particle such as a cell or an exosome.
- the aptamer can be a nucleic acid aptamer or a peptide aptamer.
- the aptamer can also bind to components (particularly surface antigens) present on the surface of biological particles, such as cells or exosomes.
- the oleyl group can bind biological particles formed from lipid bilayer membranes, such as cells or exosomes.
- FIG. 3 is a schematic diagram showing an example of a different embodiment from FIG. 2 of the capturing device 1.
- the capture device 1 includes a linker 11, an amplification array section 12, a barcode array section 13, a UMI (Unique molecular identifier) section 14, a molecule capture array section 15, and a biological particle capture section.
- the capture device 1 may further include a collection array section 17.
- the recovery array section 17 contains a nucleic acid used to recover the capture device 1 released from the biological particle when the biological particle is destroyed.
- the nucleic acid may be DNA or RNA, especially DNA. Note that for the recovery, beads on which a nucleic acid complementary to the nucleic acid described above is immobilized may be used. With such beads, the capture device 1 having the recovery array section 17 can be efficiently recovered.
- the base sequence of the nucleic acid contained in the recovery sequence section 17 may be appropriately set by a person skilled in the art.
- the information processing device 2 includes a processing section 21 . Furthermore, it may include a storage section 22, a user interface section 23, an output section 24, etc., as necessary. Note that each part of the information processing device 2 may be connected via a network. In addition, there may be a plurality of these units, and they may be provided externally, such as in a cloud, and connected via a network. Each part of the information processing device 2 will be described in detail below.
- the processing section 21 uses the morphological information regarding the biological particles obtained based on the captured image information and the arrangement of the barcode arrangement section 13 given to the biological particle-derived molecules captured by the molecule capture arrangement section 15. and the information regarding the molecule obtained based on the information. A specific method will be explained in detail in "(2-5) Association step S5" described later.
- the processing unit 21 can analyze all matters in the bioparticle analysis system 100 according to the present technology.
- the trained model created in “(4-1) Learned model creation step S11” may also be constructed within the processing unit 21.
- the trained model is a trained model obtained by machine learning, inputs morphological information regarding the biological particles, and outputs related molecular information data. This makes it possible, for example, to construct a data set in which the morphology, phenotype, genotype, etc. of cells into which genetic mutations have been intentionally inserted are associated.
- processing unit 21 can estimate information regarding the molecule from the morphological information regarding the biological particle using the constructed trained model. A specific method will be explained in detail in "(4-2) Inference step S12" described later.
- the storage unit 22 can store all matters in the biological particle analysis system 100 according to the present technology. For example, the morphological information regarding the biological particles obtained based on the captured image information or the arrangement of the barcode array section 13 attached to the biological particle-derived molecules captured by the molecule capture array section 15 can be obtained. Information regarding the molecules, information relating these pieces of information, and the like are stored. Note that as the storage unit 22, an external storage device or the like may be used to store all matters related to the biological particle analysis system 100 related to the present technology.
- the installation location and number of storage units 22 are not particularly limited, and they may be installed on the side of the casing that includes the processing unit 21 described above.
- the storage unit 22 is not an essential component of the information processing device 2, and may be installed outside such as a cloud and connected to the processing unit 21 via a network, or an external storage device may be used.
- the user interface unit 23 is a part for the user to operate.
- the user interface unit 23 presents the user with all matters in the biological particle analysis system 100 according to the present technology. Further, the user accesses each section of the information processing device 2 and the imaging device 3 through the user interface section 23 and controls these sections.
- installation location and number of user interface units 23 are not particularly limited, and they may be installed on the side of the casing that includes the processing unit 21, they may be installed on the imaging device 3 described later, or they may be installed on both. may have been done.
- the user interface unit 23 for example, a display, one or more buttons, a mouse, a keyboard, a touch panel, a mobile information terminal, etc. can be used. Further, the user interface section 23 is not an essential component in the information processing device 2, and an external display device may be used.
- the output unit 24 is a unit that receives instructions from the processing unit 21 and outputs, for example, all matters related to the bioparticle analysis system 100 according to the present technology.
- the installation location and number of output units 24 are not particularly limited, and they may be installed on the side of the casing that includes the processing unit 21, they may be installed on the imaging device 3, which will be described later, or they may be installed on both. You can leave it there. Further, the output unit 24 may receive instructions from the processing unit 21 and output different contents depending on the installation location.
- the output unit 24 a printer, speaker, mobile information terminal, etc. can be used. Further, the output unit 24 is not an essential component in the information processing device 2, and an external output device may be used.
- the imaging device 3 images the biological particle BR>Q captured on the surface 101.
- a specific method will be described in detail in "(2-3) Imaging step S3" described later.
- a biological particle analysis system 100 includes a capturing device 1, an information processing device 2, an imaging device 3, and a fluid control section 4.
- a capturing device 1 an information processing device 2, an imaging device 3, and a fluid control section 4.
- other parts may be included as necessary. Each part will be explained in detail below. Note that the capturing device 1, the information processing device 2, and the imaging device 3 are the same as those described above, so a description thereof will be omitted here.
- the biological particle analysis system 100 may be connected to a fluid control unit 4, as shown in FIG. This involves seeding of bioparticles, stimulation of bioparticles with drugs, staining with reagents (including cell surface barcode reagents in which nucleic acid barcodes are bound to antibodies), washing, and cleavage with reagents (cell barcodes). ) can be automatically performed on the biological particle analysis system 100. Thereafter, the target molecule is identified by passing through a target molecule analysis step S9, which will be described later.
- the fluid control unit 4 includes a multi-way valve and a pump that can supply a desired reagent or a desired amount from a plurality of reagents (Reagents 1 to 3). (pump), waste section (waste), collection section (collect), and tubes connecting these parts, but the present technology is not limited to these.
- the biological particle analysis system 100 includes a capturing device 1, an information processing device 2, an imaging device 3, a fluid control section 4, and a microchip 150.
- a capturing device 1 an information processing device 2, an imaging device 3, a fluid control section 4, and a microchip 150.
- other parts may be included as necessary. Each part will be explained in detail below. Note that the capturing device 1, the information processing device 2, the imaging device 3, and the fluid control unit 4 are the same as those described above, so a description thereof will be omitted here.
- the biological particle analysis system 100 may be connected to a microchip 150, as shown in FIG.
- the barcoded cell solution collected in the collection section of the fluid control section 4 may be connected to the inlet of the microchip 150 via a collection bag.
- the isolation step S7 to the destruction step S8, which will be described later.
- the target molecule is identified by passing through a target molecule analysis step S9, which will be described later.
- the microchip 150 will be described in detail in "(2-7) Isolation step S7" described later.
- the biological particle analysis method includes a capture step S2, an imaging step S3, a sequence analysis step S4, and an association step S5.
- it may include a preparation step S1, a stimulus application step S10, a cleavage step S6, an isolation step S7, a destruction step S8, a target molecule analysis step S9, a trained model creation step S11, an inference step S12, etc. .
- FIG. 6 is a flowchart illustrating flow example 1. An example of the flow of the biological particle analysis method according to the present technology will be described in detail with reference to FIG. 6. Further, FIG. 15 is a schematic diagram for explaining operations in each step included in the biological particle analysis method according to the fourth embodiment.
- a surface on which the capturing device 1 is fixed via the linker 11 is prepared.
- an analysis substrate for example, a glass slide
- a surface 101 on which a plurality of capturing devices 1 are fixed may be prepared.
- the capturing device 1 is as described above, so a description thereof will be omitted here.
- Surface 101 is preferably the surface of a transparent substrate.
- the substrate may be transparent in its entirety, or only in the portion to which the capturing device 1 is fixed.
- the surface of the substrate is preferably flat for good contact with the specimen.
- the transparent substrate may be, for example, a glass substrate or a resin substrate.
- the substrate may be, for example, a glass slide. Being transparent makes it easier to select bioparticles to be cleaved in the cleavage step S6, which will be described later.
- the number and density of capture devices 1 bound to the surface 101 can be increased, for example, by increasing the surface area of the surface 101.
- a plurality of capturing devices 1 may be connected in series.
- the cleavage conditions between the substrate 102 and the capture device 1 and the cleavage conditions between the two capture devices 1 are preferably different.
- the cleaved molecules can bond to other adjacent biological particles. can be prevented from happening.
- the linker 11 that connects the substrate 102 and the capture device 1 is a linker that can be cleaved by optical stimulation
- the linker that connects the capture device 1 and the capture device 1 is a linker that can be cleaved by chemical stimulation. It may be a linker that is possible or vice versa.
- the linker that connects the substrate 102 and the capture device 1 is a linker that can be cleaved by chemical stimulation
- the linker that connects the capture device 1 and the capture device 1 is a linker that can be cleaved by other chemical stimulation. It may be some linker.
- the former may contain one restriction enzyme identification sequence and the latter may contain another restriction enzyme identification sequence.
- the former may contain a disulfide bond
- the latter may contain a restriction enzyme identification sequence.
- intermolecular bonds may be formed using amino acids, and the bonds may be cleaved using a reagent used for cell lysis (for example, proteinase K, etc.) in the disruption step S8 described below (particularly at the same time as cell lysis).
- the cleavable linker 11, the bioparticle capture section 16, the molecule capture arrangement section 15, and the barcode arrangement section 13 are attached to the surface 101 fixed via the linker 11 to the bioparticle capture section 16.
- Biological particles are captured via the capture unit 16 .
- the biological particles and the biological particle capturing section 16 may be combined in a specific or non-specific manner.
- the bioparticle when the bioparticle is a cell or a cell mass, the surface antigen of the cell or cell mass and the antibody or aptamer contained in the bioparticle capture unit 16 bind, so that the cell can be captured by the capture device 1. .
- the antibody and the aptamer may be specific or non-specific.
- the cell may be captured by the capturing device 1 by bonding the lipid bilayer of the cell with the oleyl group contained in the bioparticle capturing portion 16.
- the bioparticle when the bioparticle is an exosome, the bioparticle is can be captured by the capturing device 1.
- the bioparticles may be captured by the capture device 1 by binding the surface components of the exosomes to the antibodies or aptamers contained in the bioparticle capture unit 16 .
- the capture step S2 may include a step of applying biological particles to the surface 101.
- the application may be performed, for example, by bringing a biological particle-containing sample (for example, a biological particle-containing liquid) into contact with the surface 101.
- a biological particle-containing sample can be dropped onto the surface 101.
- multiple molecules bound to one biological particle may have the same barcode sequence.
- the UMI portions 14 included in the plurality of molecules can have different sequences. Thereby, for example, the copy number of mRNA can be determined.
- nucleic acid-binding antibodies in which a nucleic acid containing an antibody barcode sequence is bound to a biological particle surface antigen or a protein within the biological particle (for example, a transcription factor, etc.).
- membrane permeabilization may be performed, for example, treatment with 20mM Tris HCl, 150mM NaCl, 3mM MgCl 2 (pH 7.4) containing 0.01% w/v digitonin.
- surfactants such as 1% Tween-20 and 0.1% Nonident P40 substitute may be used.
- the membrane treatment time depends on the target biological particles, but membrane permeation treatment is possible in a treatment time of about 1 to 10 minutes. In this manner, by selecting appropriate processing conditions, the membrane is not completely destroyed, the captured state on the substrate 102 is maintained, and the barcode remains bound.
- the antibody barcode sequence is a barcode sequence for specifying a nucleic acid-binding antibody.
- the nucleic acid-binding antibody shown in FIG. 10 is bound to the biological particle instead of or in addition to the fluorescent dye-labeled antibody.
- the nucleic acid-binding antibody shown in FIG. 10 includes antibody 10 and a nucleic acid bound to the antibody.
- the nucleic acid includes, for example, a first nucleic acid 201, a second nucleic acid 202, and a third nucleic acid 203, as shown in FIG. These nucleic acids may be arranged in the order shown in FIG. 10, or in any other order.
- the first nucleic acid 201 may include an amplification primer sequence. Since the first nucleic acid 201 includes an amplification primer sequence, the barcode sequence part 13 and/or the UMI part 14 contained in the capture device 1 are added to the second nucleic acid 202 and third nucleic acid 203, which will be described later, during amplification. can be granted. Furthermore, a sequence processing sequence, for example, an adapter sequence, etc. can also be provided.
- the second nucleic acid 202 may include a barcode sequence for an antibody.
- Antibody barcode sequences can be used to distinguish nucleic acid-binding antibodies bound to one biological particle from nucleic acid-binding antibodies bound to other biological particles.
- the arrangement of the antibody barcode sequence may be different for each type of antibody, or the antibody barcode sequence may be different for each type of biological particle.
- the third nucleic acid 203 may include a polyA sequence.
- the nucleic acid containing the first nucleic acid 201 and the second nucleic acid 202 described above is transferred to the molecule capture array section 15 of the capture device 1 via the third nucleic acid 203. It can be captured with a poly-T array. Then, by the capture, a complex between the nucleic acid and the capture device 1 is formed. By amplifying the complex using, for example, the first nucleic acid 201, a nucleic acid to which the antibody barcode sequence of the second nucleic acid 202 is added is generated in the capture device 1.
- the nucleic acid produced by the amplification has an antibody barcode sequence, and as described above, the antibody barcode sequence differs depending on the type of antibody, that is, it is associated with the type of antibody. Therefore, information regarding the type and/or number of nucleic acid binding antibodies is maintained in the product of the amplification in the form of antibody barcode sequences, e.g. from the sequence and/or number of nucleic acids bearing the antibody barcode sequence. , the type and/or number of nucleic acid-binding antibodies associated with the antibody barcode sequence can be identified. Thereby, the type and number of nucleic acid-binding antibodies bound to the biological particles can be specified. These specifications may be performed, for example, in the target molecule analysis step S9 described below. Sequence analysis of the amplification product for this identification can be performed, for example, by NGS.
- the capturing step S2 may include an incubation step for bonding the biological particles and the biological particle capturing section 16. Incubation conditions such as incubation time and temperature may be determined depending on the type of biological particle capture unit 16 used.
- a removal step for removing biological particles that have not bound to the capture device 1 may be performed. Further, after performing the capture step S2, a removal step may be performed to remove unnecessary substances in the cleavage step S6, which will be described later, such as antibodies that have not bound to the biological particles.
- the removal step may include, for example, washing the surface 101 with a liquid such as a buffer.
- the capturing device 1 images the biological particles captured on the surface. Imaging is performed on the stage S with biological particles captured on the surface 101. Further, it is preferable that the resolution is such that individual biological particles can be identified.
- the image sensor 103 may be, for example, a CCD or a COMS.
- the light source 104 emits light when the captured biological particles are imaged by the image sensor 103.
- the light source 104 is, for example, an LED (light emitting diode) that emits light of a specific wavelength.
- the imaging may be bright field (including phase difference) or dark field imaging, and both bright field imaging and dark field imaging may be performed.
- the imaging may be performed once or multiple times, for example, may be performed once or multiple times for a part of a region selected by a user or a control unit (not shown), so as to cover the entire area or a part of the area. It may be performed once or multiple times.
- the imaging by the image sensor 103 can be controlled by a control unit (not shown) connected to the image sensor.
- the control unit may be composed of, for example, a hard disk, a CPU, a memory, etc., and its functions may be realized by a general-purpose computer, an information processing device, or the like. Further, the control unit may be provided within the above-mentioned image sensor.
- An image sensor including a control unit may be configured as a one-chip semiconductor device having a stacked structure in which a plurality of dies (for example, two or three dies) are stacked. In this, one of the dies includes a plurality of pixels arranged side by side in two dimensions.
- Components for example, a CPU, a memory, etc.
- Components for example, a CPU, a memory, etc.
- An example of an image sensor including such a control unit is the image sensor disclosed in International Publication No. 2018/051809 pamphlet.
- the image sensor may transmit captured image information obtained by imaging to the control unit.
- the control unit receives this captured image information and uses the image data in subsequent steps. Further, the captured image information received by the control unit may be stored in a storage unit connected to the control unit, for example.
- the storage unit may be a general-purpose storage device. When the control section performs subsequent steps, the control section can acquire captured image information from the storage section.
- sequence analysis step S4 the sequence of the barcode array section 13 attached to the bioparticle-derived molecule (target molecule) captured by the molecule capture array section 15 is analyzed. Note that the sequence analysis step S4 may be performed before the cleavage step S6, which will be described later, and may be performed, for example, after the preparation step S1 and before the capture step S2.
- Analysis of the array of the barcode array section 13 is performed, for example, by reading the barcode array that the barcode array section 13 has. Reading can be performed by, for example, techniques such as sequencing by synthesis, sequencing by ligation, and sequencing by hybridization.
- association step S5 morphological information regarding the biological particles obtained based on the captured image information obtained in the imaging step S3 and the arrangement of the barcode array portion 13 obtained in the sequence analysis step S4 are obtained. and information regarding the molecule.
- the association may be performed, for example, by the information processing device 2 described above, and may be performed via positional information (for example, XY coordinates, etc.) associated with the barcode arrangement section 13 in advance.
- positional information for example, XY coordinates, etc.
- the barcode array located at the location where the biological particle was captured is associated with the captured image information.
- the captured image of the biological particle and the feature amount extracted from the captured image may be associated with the ID number. Thereby, the captured image and the feature amount extracted from the captured image can be associated with the barcode array section 13 via the ID number.
- the linker 11 is cleaved.
- the bioparticles with attached molecules are released from the surface 101.
- the linker 11 of the capture device 1 is cleaved, the capture device 1 is released from the surface 101, and accordingly, the biological particles are also released from the surface 101.
- the linker 11 can be cleaved by stimulation such as chemical stimulation or optical stimulation.
- stimulation such as chemical stimulation or optical stimulation.
- Optical stimulation is preferable because it can selectively stimulate a specific narrow range.
- Stimulation may be performed by a stimulation device.
- the driving of the stimulation device may be controlled by, for example, an information processing device such as a general-purpose computer.
- the information processing device can drive a stimulation device to selectively apply stimulation to the position of the biological particle to be released.
- a light irradiation device is used as a stimulation device that applies optical stimulation to selective positions of biological particles.
- examples include a DMD (Digital Micromirror Device) and a liquid crystal display device.
- the micromirrors that make up the DMD allow light to be irradiated onto selected locations on the surface 101.
- the liquid crystal display device may be, for example, a reflective liquid crystal display, such as SXRD (manufactured by Sony Corporation).
- SXRD manufactured by Sony Corporation
- a liquid crystal shutter or a spatial light modulator may be used to apply optical stimulation to selective positions of biological particles. These also allow optical stimulation to be applied to selective locations.
- the wavelength of the light irradiated by the light irradiation device may be appropriately selected by those skilled in the art depending on the type of linker 11 included in the capturing device 1.
- the chemical stimulus may be applied by bringing a reagent that cleaves the linker 11 into contact with the surface 101.
- the reagent may be appropriately selected by those skilled in the art depending on the type of linker 11.
- the reagent may be a reducing agent capable of cleaving the bond, such as Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP), Dithiothreitol (DTT), 2- Examples include Mercaptoethanol.
- the linker 11 is a nucleic acid containing a restriction enzyme identification sequence
- the reagent may be a restriction enzyme corresponding to each restriction enzyme identification sequence.
- At least one biological particle liberated by the cleavage may be recovered in a liquid such as a buffer.
- the liquid may be, for example, a hydrophilic liquid.
- the biological particle-containing liquid obtained by collection can be used in the isolation step S7 described below.
- fluid force may be used by flowing a liquid such as a buffer
- the bioparticles may be suspended in the liquid by vibration
- gravity may be used to collect bioparticles in the liquid.
- the particles may also be suspended.
- the vibration may be, for example, a vibration of the analysis substrate 102 or a vibration of a liquid containing biological particles.
- the analysis substrate 102 may be moved so that the surface 101 faces in the direction of gravity in order to suspend the biological particles in the liquid due to the gravity.
- the biological particles released from the surface 101 in the cleavage step S6 are isolated in a microspace.
- the isolation allows the capture device 1 to bind to a target substance, for example contained in a biological particle.
- a target substance for example contained in a biological particle.
- Target molecule analysis using the information of the barcode sequence section 13 becomes possible, and in particular, single cell analysis becomes possible.
- the microspace may be, for example, a space within an emulsion particle or a space within a well.
- one biological particle particularly one biological particle bound to at least one capturing device 1 is isolated in one emulsion particle or one well.
- the isolation step S7 includes a determination step (not shown) for determining whether or not to isolate biological particles in a microspace, and a determination step (not shown) in which biological particles determined to be isolated in the determination step are placed in a microspace. and a particle isolation step (not shown) for isolating the particles.
- the discrimination may be performed based on, for example, light generated from the biological particle (for example, scattered light and/or autofluorescence), light generated from a substance bound to the biological particle, a morphological image of the biological particle, etc.
- the substance bound to the biological particle may be, for example, the capture device 1, or an antibody (particularly a fluorescent dye-labeled antibody) bound to the biological particle.
- the scattered light originating from biological particles may be, for example, forward scattered light and/or side scattered light. Doublet detection is possible from the signal height and area value obtained by scattered light detection. It is also possible to determine single cells based on morphological images of biological particles.
- a discrimination step may be performed immediately before the isolation step S7, and thereby only a single cell to which a barcode has been assigned can be isolated reliably.
- only the particle isolation step may be performed without performing the discrimination step. Thereby, the number of steps in the biological particle analysis method according to the present technology can be reduced.
- the discrimination step may be performed in the above-described cleavage step S6 instead of being performed in the isolation step S7.
- the biological particles or biological particle populations selected as a result of the discrimination in these steps are subjected to the particle isolation step.
- a device such as a cell sorter may not be used.
- the discrimination step it is determined whether the released biological particles should be isolated in a microspace.
- the discrimination may be performed based on light generated from the biological particles or light generated from a substance bound to the biological particles.
- the discrimination step may include, for example, an irradiation step of irradiating the biological particles with light, and a detection step of detecting the light generated by the irradiation.
- the irradiation step may be performed, for example, by a light irradiation unit that irradiates the biological particles with light.
- the light irradiation unit may include, for example, a light source that emits light. Further, the light irradiation unit may include an objective lens that focuses light on the biological particles.
- the light source may be appropriately selected by those skilled in the art depending on the purpose of analysis.
- the light irradiation unit may include other optical elements in addition to the light source and the objective lens.
- the detection step may be performed, for example, by a detection unit that detects light generated from the biological particle or a substance bound to the biological particle.
- the detection unit detects, for example, light (eg, scattered light and/or fluorescence) generated from the biological particles or a substance bound to the biological particles by light irradiation by the light irradiation unit.
- the detection unit may include, for example, a condenser lens that condenses light generated from biological particles and a detector.
- the detection section may include other optical elements as necessary. For example, it may further include a spectroscopic section. With the spectroscopic section, for example, light of a wavelength to be detected can be detected separately from light of other wavelengths.
- the detection unit can convert the detected light into an analog electrical signal by photoelectric conversion, and further convert the analog electrical signal into a digital electrical signal by AD conversion.
- the determination process of whether or not to identify biological particles may be performed by a determination unit (not shown) based on the light detected in the detection step.
- the processing by the determination unit can be realized, for example, by an information processing device such as a general-purpose computer, particularly by a processing unit included in the information processing device according to the present technology.
- the particle isolation step isolates biological particles in a microspace.
- the term "microspace" may refer to a space having dimensions capable of accommodating one biological particle to be analyzed. The dimensions may be appropriately determined by a person skilled in the art depending on factors such as the size of the biological particle, for example.
- the microspace may have dimensions that can accommodate two or more biological particles to be analyzed, but in this case, in addition to the case where one biological particle is accommodated in one microspace, , cases may occur in which more than one biological particle is accommodated.
- the bioparticles in the microspace containing two or more bioparticles may be excluded from the destruction target in the destruction step S8 described later, and may be excluded from the analysis target in the target molecule analysis step S9 described later.
- a complex between the target molecules and the target molecules may be generated.
- the plurality of microspaces used in the present technology are preferably separated from each other so that the complex generated in one microspace does not migrate to another microspace.
- Examples of the microspaces separated in this way include spaces within wells and spaces within emulsion particles. That is, in a preferred embodiment of the present technology, the microspace may be a space within a well or a space within an emulsion particle.
- FIG. 7 is a schematic illustration of an example well used to perform a particle isolation step.
- a plurality of wells 40 having dimensions capable of accommodating, for example, one biological particle may be formed on the surface of the substrate 41.
- the bioparticle-containing liquid obtained in the above-described cleavage step S6 to the surface of the substrate 41 from, for example, an arbitrary nozzle 42, the bioparticles 43 are released into the well 40 as shown in FIG. isolated in a space of In this way, one biological particle may enter one well interior space, and the biological particle may be isolated within the microspace.
- the particle isolation step may be performed without performing the above-mentioned discrimination step.
- a device such as a cell sorter or a single cell dispenser that can contain one biological particle in one well may be used.
- a substrate eg, a plate, etc.
- a commercially available device may be used as the device.
- the device includes, for example, a light irradiation unit that irradiates light, a detection unit that detects light, a determination unit that determines whether or not the biological particle should be placed in the well based on the detected light, and a part that determines whether or not the biological particle should be placed in the well. It may have a dispensing section or the like for distributing biological particles to the wells.
- the dispensing unit may include a microfluidic chip having a nozzle that forms droplets containing biological particles.
- the device operates the position of the microfluidic chip according to the discrimination result by the discrimination section, and places one biological particle-containing droplet in a predetermined well.
- the device controls the traveling direction of the biological particle-containing droplet discharged from the nozzle using the charge applied to the droplet according to the determination result by the determination unit. According to the control, one biological particle-containing droplet is placed in a predetermined well. In this way, one bioparticle is distributed per well. For example, as shown in FIG. 8, droplets containing biological particles exit from a nozzle 52 provided in the microfluidic chip of the device.
- the light irradiation unit 54 irradiates the biological particles contained in the droplet with light (for example, laser light L), and the detection unit 55 executes a detection step and detects the light (fluorescence F). . Then, the determination unit executes a determination step based on the detected light. Then, depending on the determination result, the distribution section controls the traveling direction of the droplet using the charge applied to the droplet. Through this control, droplets containing the target biological particles are collected into predetermined wells. This distributes one biological particle to one well.
- light for example, laser light L
- the detection unit 55 executes a detection step and detects the light (fluorescence F).
- the determination unit executes a determination step based on the detected light.
- the distribution section controls the traveling direction of the droplet using the charge applied to the droplet. Through this control, droplets containing the target biological particles are collected into predetermined wells. This distributes one biological particle to one well.
- the discrimination unit By performing the discrimination by the discrimination unit, for example, it is possible to identify a cell population to which a biological particle belongs, a biological particle to which a barcode is attached, a droplet containing a singlet biological particle, etc. according to the detection signal. It is possible. Thereby, only the droplets containing the target biological particles can be collected. As a result, there is no need to exclude data in the target molecule analysis step S9, which will be described later, and analysis efficiency is improved.
- Emulsion particles can be produced using, for example, a microchannel.
- the device includes, for example, a flow path through which a first liquid that mutually forms a dispersoid of an emulsion flows, and a flow path through which a second liquid that forms a dispersion medium flows.
- the first liquid may contain biological particles.
- the device may further include a region where the two liquids come into contact to form an emulsion.
- the microchannel shown in FIG. 9 includes a channel 61 through which a first liquid containing biological particles flows, and channels 62-1 and 62-2 through which a second liquid flows, and the first liquid contains emulsion particles (dispersed particles).
- the second liquid forms the dispersion medium of the emulsion.
- the flow path 61 and the flow paths 62-1 and 62-2 merge, and emulsion particles are formed at this merge point.
- the biological particles 63 are isolated inside the emulsion particles.
- the size of the emulsion particles can be controlled. Note that in order to form an emulsion, the first liquid and the second liquid are immiscible with each other.
- the first liquid may be a hydrophilic liquid and the second liquid may be a hydrophobic liquid, or vice versa.
- the microchannel shown in FIG. 9 may also include a channel 64 for introducing a bioparticle disruptor into the emulsion particles. By configuring the microchannel so that the channel 64 joins the channel 61 immediately before the merging point, the bioparticles are prevented from being destroyed by the bioparticle-destroying substance before emulsion particles are formed. be able to.
- one biological particle can be isolated in one emulsion particle with extremely high probability, and the number of empty emulsion particles can be reduced. Furthermore, the emulsion forming device also increases the probability of isolating one biological particle and one barcode sequence within one emulsion particle.
- FIG. 11 is a diagram schematically showing an example of an embodiment of a microchip used to form emulsion particles in the device.
- a microchip 150 shown in FIG. 11 is provided with a sample liquid inlet 151 and a sheath liquid inlet 153. Further, a sample liquid containing biological particles and a sheath liquid not containing biological particles are introduced from these inlets into the sample liquid flow path 152 and the sheath liquid flow path 154, respectively.
- the microchip 150 has a flow path structure in which a sample liquid flow path 152 through which the sample liquid flows and a sheath liquid flow path 154 through which the sheath liquid flows merge at a confluence portion 162 to form a main flow path 155 .
- the sample liquid and the sheath liquid join together at the confluence section 162, forming a laminar flow in which the sample liquid is surrounded by the sheath liquid.
- the laminar flow flows through the main channel 155 toward the particle separation section 157 .
- the bioparticles flow in a line within the main channel 155.
- the biological particles are irradiated with light in the detection region 156.
- the detection unit 192 detects the light generated by this light irradiation. Depending on the characteristics of the light detected by the detection unit 192, a determination unit included in the control unit 193 determines whether the biological particles are particles to be collected. In the particle sorting section 157, only when particles to be collected flow in, a flow is formed that enters the recovery channel 159 from the main channel 155, and the particles to be recovered are collected into the recovery channel 159. On the other hand, microparticles that are not particles to be collected flow into the waste channel 158.
- the microchip 150 may constitute a part of a biological particle sorting device that includes a light irradiation section 191, a detection section 192, and a control section 193 in addition to the microchip 150.
- the control section 193 includes a signal processing section, a determination section, and a sorting control section. That is, the biological particle sorting device can be used as the above-mentioned emulsion forming device.
- a first liquid containing bioparticles is passed through the main channel 155, and a first liquid containing the bioparticles is passed through the main channel 155.
- a determination step of determining whether the biological particles are particles to be collected and a recovery step of collecting the particles to be collected into the collection channel 159 can be performed.
- the discrimination step corresponds to the discrimination step described in (2-7-1) above.
- the recovery step corresponds to the particle isolation step described in (2-7-2) above.
- the biological particles are destroyed within the microspace.
- the capture device 1 coupled to the bioparticle via the bioparticle capture unit 16 may be dissociated from the bioparticle. Note that among the constituent components of the destroyed biological particles, the components that were bound to the biological particle trap 16 remain bound to the trapping device 1 via the biological particle trap 16 even after the destruction. Good too.
- the target molecules constituting or bonding to the biological particles are captured by the molecule capture array section 15 included in the capture device 1.
- a complex is formed between the capture device 1 and the target molecule, and the target molecule can be associated with the barcode array section 13 included in the capture device 1 in the target molecule analysis step S9 described later. That is, the complex thus formed is analyzed in a target molecule analysis step S9 described below.
- the destruction step S8 is preferably performed while the biological particles are kept isolated within the microspace. Thereby, the formation of a complex between the capture device 1 and the target molecule is efficiently performed. Furthermore, it is possible to prevent the target molecule from binding to the molecule-trapping array section 15 that exists outside the microspace.
- maintaining the isolation state may mean maintaining the emulsion particles, and particularly means not destroying the emulsion particles.
- maintaining the isolation state may mean that components within the well remain in the well, and furthermore, components within other wells do not invade the well. It can mean that.
- the nucleic acid-binding antibody is bound to the biological particle in the capture step S2 described above, the nucleic acid-binding antibody is dissociated from the biological particle in the destruction step S8. Then, the nucleic acid-binding antibody binds to the target molecule, and a complex between the nucleic acid-binding antibody and the target molecule can be formed.
- the polyA sequence constituting the first nucleic acid 201 can bind to mRNA within a biological particle, which is a target substance. Since the second nucleic acid 202 containing the antibody barcode sequence is bound to the first nucleic acid 201, the target molecule can be associated with the antibody barcode sequence. The complex thus formed is analyzed in a target molecule analysis step S9 described later.
- the destruction step S8 can be performed by chemically or physically destroying the biological particles.
- the bioparticle disrupting agent and the bioparticle may be brought into contact within a microspace.
- the bioparticle-destroying substance may be appropriately selected by those skilled in the art depending on the type of bioparticle.
- the bioparticle-disrupting substance may be, for example, a lipid double membrane-disrupting component, and specific examples include surfactants, alkaline components, enzymes, etc. .
- microspace When the microspace is a space within a well, destruction is performed, for example, by adding a bioparticle-destroying substance to each well. Since each well is isolated from each other, the components within the well remain within the well even if disruption occurs. Furthermore, when the microspace is a space within an emulsion particle, for example, a bioparticle-destroying substance may be introduced into the emulsion particle at the same time as the emulsion particle is formed. After the emulsion particles are formed, the bioparticles can be destroyed by the bioparticle-destroying substance.
- a physical stimulus that destroys the biological particles can be applied to the biological particles.
- treatments for applying physical stimulation to biological particles include optical treatment, thermal treatment, electrical treatment, acoustic treatment, freeze-thaw treatment, mechanical treatment, and the like. These treatments can destroy cells or exosomes. Physical destruction of biological particles by these treatments can be applied both when the microspace is a space within a well and when it is a space within an emulsion particle. When the microspace is a space within emulsion particles, optical treatment, thermal treatment, electrical treatment, and freeze-thaw treatment are particularly suitable.
- the recovery array section 17 included in the capture device 1 may be used.
- a target molecule may be bound to the capture device 1, and by using the recovery array section 17, the target molecule can be efficiently recovered. That is, the destruction step S8 may include a step of recovering the capture device 1 (particularly, the target molecule bound to the capture device 1) using the recovery array section 17.
- the target molecule analysis step S9 analysis regarding biological particles is performed.
- the target molecule is analyzed.
- the analysis method may be appropriately determined by a person skilled in the art depending on the type of target molecule and the purpose of the analysis.
- the sequence of the barcode sequence section 13 and the target molecule are associated.
- the morphological information regarding the biological particle obtained based on the captured image information and the analysis result obtained from the arrangement of the barcode arrangement section 13 attached to the target molecule are combined. , are connected via the sequence.
- one biological particle is isolated in one microspace, and the plurality of trapping devices 1 that capture the biological particle all have the same arrangement of barcode array parts 13. . Therefore, all the analysis results associated with the array of one barcode array section 13 by performing the above association are derived from one, and thereby, for the analysis of the one biological particle. Morphological information and the analysis results can be linked via a barcode sequence.
- the capture device 1 including the array of the barcode array section 13 is combined with the target molecule in the above-described destruction step S8, different bioparticles present in a plurality of micro spaces are collectively collected. Even when the bioparticles are analyzed, the analysis results can be associated with each biological particle based on the arrangement.
- each of the biological particle destruction products within the well may be analyzed separately, and the biological particle destruction products of multiple wells may be combined as one sample, and the biological particle destruction products in the well may be analyzed separately. may be analyzed all at once.
- the target molecule in each biological particle destruction product forms a complex with the capture device 1 containing the sequence of the barcode array section 13 or the nucleic acid-binding antibody containing the sequence of the antibody barcode. Therefore, it is possible to associate each biological particle with its analysis results.
- microspace is a space within an emulsion particle
- a plurality of emulsion particles may be analyzed at once, for example, the entire obtained emulsion may be analyzed at once. Since the target molecules in each bioparticle destruction product form a complex with the capture device 1 containing a barcode sequence or a nucleic acid-binding antibody containing an antibody barcode sequence, each bioparticle and its analysis results are Can be associated. Thereby, analysis efficiency can be improved.
- the analysis may be performed, for example, on the complex of the capture device 1 and the target molecule formed in the destruction step S8, and/ Alternatively, it may be performed on a complex of a nucleic acid-binding antibody and a target molecule. Since the capture device 1 and the nucleic acid binding antibody each contain the sequence of the barcode sequence section 13 and the sequence of the antibody barcode, the biological particle from which the target molecule is derived can be identified based on these sequences.
- the target molecule has a base sequence, specifically, for example, when it is RNA (particularly mRNA) or DNA, a sequencing process is performed on the base sequence of the target substance in the target molecule analysis step S9. It's fine.
- the sequencing process may be performed by, for example, a next generation sequencer.
- the analysis in the target molecule analysis step S9 may be performed using, for example, the amplification array section 12 included in the capture device 1. That is, the target molecule analysis step S9 includes a nucleic acid amplification step using the amplification sequence section 12. Thereby, for example, the nucleic acid (particularly mRNA) bound to the capture device 1 can be amplified. Then, by sequencing the sequence of the nucleic acid, information regarding the nucleic acid can be obtained. Furthermore, along with the amplification, the sequence of the barcode sequence section 13 can also be amplified. Thereby, the information regarding the nucleic acid can be associated with the arrangement of the barcode array section 13 included in the capture device 1, and furthermore, can be associated with the biological particle.
- the target molecule analysis step S9 may be performed using an analyzer.
- the analysis device may be, for example, a device that performs a sequencing process on the complex.
- the sequencing process is carried out, for example, when the target molecule is a nucleic acid, particularly DNA or RNA, more particularly mRNA.
- Sequencing processing may be performed by a sequencer, and may be performed by a next-generation sequencer or a Sanger method sequencer. In order to perform comprehensive analysis of multiple biological particles (particularly, cell populations) at a higher speed, sequencing processing can be performed using a next-generation sequencer.
- the constituent components of each biological particle can be analyzed based on the results of the sequencing process. For example, in the target molecule analysis step S9, the sequence of mRNA contained in each biological particle and/or the copy number of each mRNA may be determined. Furthermore, in the target molecule analysis step S9, the type and/or number of antigens and the type and/or number of transcription factors can be determined for each biological particle.
- Such analysis of the constituents of each biological particle can be performed based on the arrangement of barcode sequences in the arrangement determined by sequencing. For example, a sequence including the same barcode sequence is selected from among a large number of barcode sequences determined by sequencing. Sequences containing the same barcode sequence are based on target molecules taken up by one cell. Therefore, analyzing the constituent components for each barcode arrangement means analyzing the constituent components for each biological particle.
- FIG. 12 is a flowchart illustrating flow example 2. An example of the flow of the biological particle analysis method according to the present technology will be described in detail with reference to FIG. 12. Note that the preparation step S1, capture step S2, imaging step S3, sequence analysis step S4, association step S5, cleavage step S6, isolation step S7, destruction step S8, and target molecule analysis step S9 are as described above. Since this is the same as , the explanation is omitted here.
- Flow example 2 further includes a stimulus application step S10 after the capture step S2.
- the stimulation step S10 the biological particles are stimulated with a drug. Thereby, it is possible to carry out observation over time by applying stimulation, observe drug response, drug resistance, etc., and obtain morphological information including feature amounts. As a result, this method can be applied to drug discovery screening with high throughput and low cost.
- the process moves to the imaging step S3.
- the stimulus is appropriately selected by those skilled in the art depending on the captured biological particles.
- examples include antigen stimulation that can be recognized by T cell receptors, tetramers and pentamers on which antigens are immobilized, and anti-CD3 antibodies and anti-CD3/CD28 antibodies that promote proliferation.
- cytokines such as IL-2, IL-7, IL-15, and IL-22.
- B cells it may be an antigen stimulus that can be recognized by B cell receptors, such as tetramers and pentamers on which antigens are immobilized.
- drugs approved as anticancer drugs can be selected.
- Anticancer drugs include, for example, cytotoxic anticancer drugs, molecular target drugs (e.g., small molecule compounds (e.g., tyrosine kinase inhibitors, multikinase inhibitors, mTOR inhibitors, etc.), antibody drugs (e.g., Examples include anti-HER2 antibody drugs, anti-epidermal growth factor receptor antibodies (anti-epidermal growth factor receptor antibodies, etc.), nucleic acid drugs, etc.), and endocrine therapy drugs.
- molecular target drugs e.g., small molecule compounds (e.g., tyrosine kinase inhibitors, multikinase inhibitors, mTOR inhibitors, etc.)
- antibody drugs e.g., Examples include anti-HER2 antibody drugs, anti-epidermal growth factor receptor antibodies (anti-epidermal growth factor receptor antibodies, etc.), nucleic acid drugs, etc.
- endocrine therapy drugs e.g., endocrine therapy drugs.
- a drug it is also possible, for example, to seed cells at a lower density, capture them, and then allow the cells to proliferate. Therefore, it is also possible to integrate morphological information, including characteristic amounts, and molecular information of cells that have proliferated in response to stimulation.
- FIG. 13 is a flowchart illustrating flow example 3. An example of the flow of the bioparticle analysis method according to the present technology will be described in detail with reference to FIG. 14. Note that the preparation step S1, capture step S2, imaging step S3, sequence analysis step S4, association step S5, cleavage step S6, isolation step S7, destruction step S8, and target molecule analysis step S9 are as described above. Since this is the same as , the explanation is omitted here.
- Flow example 3 further includes a trained model creation step S11 after the target molecule analysis step S9.
- a trained model is created using the morphological information regarding the biological particles and the information regarding the target molecules.
- the morphological information regarding the bioparticle obtained based on the captured image information and the analysis result obtained from the barcode sequence given to the target molecule are linked in the target molecule analysis step S9 described above. Build a dataset using the association data. Then, the plurality of data sets are stored in, for example, the information processing device 2 to create a database.
- FIG. 14 is a conceptual diagram explaining the inference step S12.
- the database 70 created in the above-described learned model creation step S11 is linked to, for example, the inference section 71 and the learning section 72, and is linked to the inference section 71 and the learning section 72, and is Information regarding the molecule is estimated based on the captured image information obtained by the method and the morphological information obtained based on the captured image information.
- the explanatory variable is a feature extracted from the captured image information
- the objective variable is information regarding a target molecule
- the inference unit 71 can infer molecular information derived from biological particles. Therefore, there is no need to perform molecular assays.
- the cell composition of cells used for cell therapy can be identified without staining, and optimal culture conditions can be suggested.
- activated T cells and B cells can be identified even without antigen information, which can be expected to be applied to cell therapy and antibody development. That is, the biological particle analysis method according to the present technology is also useful in applications where it is desired to avoid staining using reagents.
- Molecular information derived from biological particles includes, for example, identification of cell types (including subtypes), identification of genetic mutations (e.g. presence or absence of drug resistance genes, etc.), and information on cell states such as cell cycle and activity/inactivity. Examples include identification (presence or absence of antigen-specific reaction of immune cells, particularly T cells, etc.).
- a trained model including a predictive model
- it is possible to construct a trained model by integrating morphological information about the biological particle and information about the target molecule at a single cell level with high throughput and low cost. It also saves you the trouble and cost of measuring.
- a cleavable linker, a bioparticle capture section, a molecule capture arrangement section, and a barcode arrangement section are fixed to a surface via the linker, and a capture device for capturing bioparticles via the bioparticle capture section.
- an information processing device that associates information with Bioparticle analysis system including: [2] The bioparticle analysis system according to [1], wherein the information processing device extracts feature amounts based on morphological information of the bioparticles.
- An information processing device that associates morphological information regarding a biological particle obtained based on captured image information with information regarding the molecule obtained based on a barcode arrangement section attached to the molecule derived from the biological particle.
- Bioparticle analysis methods including: [12] The bioparticle analysis method according to [11], further comprising a stimulation step of stimulating the bioparticles with a drug. [13] The biological particle analysis method according to [11] or [12], further comprising a trained model creation step of creating a trained model using the morphological information regarding the biological particles and the information regarding the molecules.
- Capture device 11 Linker 12: Amplification array unit 13: Barcode array unit 14: UMI unit 15: Molecule capture array unit 16: Biological particle capture unit 17: Collection array unit 2: Information processing device 21: Processing unit 22: Storage unit 23: User interface unit 24: Output unit 3: Imaging device 4: Fluid control unit 150: Microchip 100: Biological particle analysis system 101: Surface 102: Analysis substrate 103: Image sensor 104: Light source
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Abstract
形態情報と分子情報とを精度高く関連付けることが可能な技術を提供すること。 本技術では、開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉用デバイスと、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける情報処理装置と、を含む、生体粒子解析システムなどを提供する。
Description
本技術は、生体粒子解析システム、情報処理装置、及び生体粒子解析方法に関する。より詳しくは、形態情報と分子情報とを精度高く関連付けることが可能な、生体粒子解析システム、情報処理装置、及び生体粒子解析方法に関する。
従来、単一細胞解析(single cell analysis)を実施するための様々な手法が提案されている。例えば、非特許文献1には、光分解性リンカーを介して細胞膜結合分子が結合した基板を用い、光照射でパターニング作成した後、細胞播種してシングルセルをトラップし、細胞の運動性を解析する手法が開示されている。
Collagen Surfaces Modified with Photo-Cleavable Polyethylene Glycol-Lipid Support Versatile Single-Cell Arrays of Both Non-adherent and Adherent Cells, Macro Molecular Bioscience, 1670-6, (2014)
しかしながら、従来、単一細胞解析などにおいて、形態情報と分子情報とを精度高く関連付けるための手法が無いという課題があった。
これに対して、シングルセルレベルで形態情報と分子情報とを1:1で統合させるために、96ウェルや384ウェルプレートを用いた手法が考えられるが、1つのプレートで解析できるのは数百程度の細胞数であり、1つの生体粒子/ウェルずつシーケンスするのはコストが高い。
また、数千から数万のマイクロウェルを有するプレートを用いる場合、各ウェルに1つの生体粒子を封入してイメージング、バーコードビーズ又はバーコードゲルを各ウェルに1つ封入、1つの生体粒子をウェル内で溶解して分子をバーコードビーズで捕捉してバーコードを付与するという工程を経ることで、全てのウェルのバーコード化分子をまとめてシーケンスできるため、分析コストは下がる。しかしながら、バーコードビーズはランダムにウェルへ封入されるため、ウェルとバーコード情報を連結することは困難である。したがって、ウェルごとの撮像画像情報と分子情報を連結することが困難である。
そこで、本技術では、形態情報と分子情報とを精度高く関連付けることが可能な技術を提供することを主目的とする。
本技術では、まず、開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉用デバイスと、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける情報処理装置と、を含む、生体粒子解析システムを提供する。
本技術では、また、撮像画像情報に基づき得られた生体粒子に関する形態情報と、前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける、情報処理装置も提供する。
本技術では、更に、開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉工程と、前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像工程と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列を解析する配列解析工程と、前記撮像工程で得られた撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記配列解析工程で得られたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける関連付け工程と、を含む、生体粒子解析方法も提供する。
以下、本技術を実施するための好適な形態について図面を参照しながら説明する。以下に説明する実施形態は、本技術の代表的な実施形態の一例を示したものであり、いずれの実施形態も組み合わせることが可能である。また、これらにより本技術の範囲が狭く解釈されることはない。なお、説明は以下の順序で行う。
1.第1実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)捕捉用デバイス1
(2-1)リンカー11
(2-2)増幅用配列部12
(2-3)バーコード配列部13
(2-4)UMI(Unique Molecular Identifier)部14
(2-5)分子捕捉用配列部15
(2-6)生体粒子捕捉部16
(2-7)回収用配列部17
(3)情報処理措置2
(3-1)処理部21
(3-2)記憶部22
(3-3)ユーザインターフェース部23
(3-4)出力部24
(4)撮像装置3
2.第2実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)流体制御部4
3.第3実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)マイクロチップ150
4.第4実施形態(生体粒子解析方法)
(1)全体構成
(2)フロー例1
(2-1)準備工程S1
(2-2)捕捉工程S2
(2-3)撮像工程S3
(2-4)配列解析工程S4
(2-5)関連付け工程S5
(2-6)開裂工程S6
(2-7)隔離工程S7
(2-7-1)判別工程
(2-7-2)粒子隔離工程
(2-7-2-1)ウェル内の空間の場合
(2-7-2-2)エマルション粒子内の空間の場合
(2-8)破壊工程S8
(2-9)標的分子分析工程S9
(3)フロー例2
(3-1)刺激付与工程S10
(4)フロー例3
(4-1)学習済みモデル作成工程S11
(4-2)推論工程S12
1.第1実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)捕捉用デバイス1
(2-1)リンカー11
(2-2)増幅用配列部12
(2-3)バーコード配列部13
(2-4)UMI(Unique Molecular Identifier)部14
(2-5)分子捕捉用配列部15
(2-6)生体粒子捕捉部16
(2-7)回収用配列部17
(3)情報処理措置2
(3-1)処理部21
(3-2)記憶部22
(3-3)ユーザインターフェース部23
(3-4)出力部24
(4)撮像装置3
2.第2実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)流体制御部4
3.第3実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
(2)マイクロチップ150
4.第4実施形態(生体粒子解析方法)
(1)全体構成
(2)フロー例1
(2-1)準備工程S1
(2-2)捕捉工程S2
(2-3)撮像工程S3
(2-4)配列解析工程S4
(2-5)関連付け工程S5
(2-6)開裂工程S6
(2-7)隔離工程S7
(2-7-1)判別工程
(2-7-2)粒子隔離工程
(2-7-2-1)ウェル内の空間の場合
(2-7-2-2)エマルション粒子内の空間の場合
(2-8)破壊工程S8
(2-9)標的分子分析工程S9
(3)フロー例2
(3-1)刺激付与工程S10
(4)フロー例3
(4-1)学習済みモデル作成工程S11
(4-2)推論工程S12
1.第1実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
図1を参照して、本技術の第1実施形態に係る生体粒子解析システム100の全体構成について説明する。本実施形態に係る生体粒子解析システム100は、捕捉用デバイス1と、情報処理装置2と、撮像装置3と、を有する。また、必要に応じて、その他の装置や部位を有していてもよい。
以下、各装置や各部位について詳細に説明する。
以下、各装置や各部位について詳細に説明する。
(2)捕捉用デバイス1
図2は、捕捉用デバイス1の実施形態の一例を示す模式図である。捕捉用デバイス1は、開裂可能なリンカー11と生体粒子捕捉部16と分子捕捉用配列部15とバーコード配列部13とが、前記リンカー11を介して固定されている表面101に、前記生体粒子捕捉部16を介して生体粒子を捕捉する部位である。
本明細書において、「生体粒子」には、各種細胞を構成する染色体、リボソーム、ミトコンドリア、オルガネラ(細胞小器官)などが含まれうる。細胞には、動物細胞(例えば、血球系細胞など)、植物細胞、が含まれうる。当該細胞は、特には、血液系細胞又は組織系細胞でありうる。また、浮遊細胞も含まれうる。前記血液系細胞は、例えば、T細胞、B細胞などの浮遊系細胞であってよい。前記組織系細胞は、例えば、接着系の培養細胞又は組織からばらされた接着系細胞などであってよい。細胞塊には、例えば、スフェロイド、オルガノイドなどが含まれうる。微生物には、大腸菌などの細菌類、タバコモザイクウイルスなどのウイルス類、イースト菌などの菌類などが含まれうる。更に、当該生体粒子には、核酸、タンパク質、これらの複合体などの生物学的高分子も包含されうる。当該生物学的高分子は、例えば、細胞から抽出されたものであってよく、又は、血液サンプル若しくは他の液状サンプルに含まれるものであってもよい。
本技術において、生体粒子は、細胞又は細胞塊であることが好ましい。細胞塊としては、例えば、spheroid、organoidなどが挙げられる。これらの細胞塊は、後述する分析用基板102上で細胞塊毎にバーコード配列が結合する。その後、開裂、隔離、及び破壊を実施することで、細胞塊毎にユニークなバーコード配列の付与が可能である。その結果、細胞塊毎の撮像画像情報及び形態情報と、生体粒子由来の分子に関する情報とが関連付けされる。
本技術において、前記生体粒子は、薬剤による刺激が与えられたものであってもよい。本明細書において、「薬剤」とは、細菌、ウイルス等の病原性微生物やがん細胞(悪性新生物)を殺す、或いはその増殖を抑制する化学物質や、T細胞、B細胞等の血液系細胞に作用する化学物質などを意味し、本技術において特に限定されない。また、「薬剤」には、開発段階の薬剤候補も含まれる広い概念である。
以下、捕捉用デバイス1の構造の一例について、図2を参照しながら詳細に説明する。図2に示される捕捉用デバイス1は、リンカー11、増幅用配列部12、バーコード配列部13、UMI(Unique Molecular Identifier)部14、分子捕捉用配列部15、及び生体粒子捕捉部16を含む。捕捉用デバイス1は、リンカー11を介して、表面101に固定されている。
捕捉用デバイス1は、例えば、図2に示すように、スライドガラスなどの分析用基板102の表面101に用意されうる。捕捉用デバイス1は、例えば、単一分子(single molecule)及び複合分子(complex molecule)のいずれであってもよく、単一分子は、例えば、複数の機能を有する1種類の分子を意味してよく、前記リンカー11として構成されている各部分を含む1つの核酸(例えば、DNA又はRNA)であってよい。複合分子は、例えば、2種以上の分子からなる分子集合体(例えば、2種以上の分子の結合物など)であってよく、核酸とポリペプチド(例えば、タンパク質若しくはその一部、又はオリゴペプチドなど)との結合体であってよい。
なお、後述する増幅用配列部12、バーコード配列部13、及びUMI部14は、一続きの核酸(特には、DNA)として構成されてよい。生体粒子捕捉部16が核酸である場合は、これらに加えて、分子捕捉用配列部15も、一続きの核酸(特には、DNA)として構成されてよい。これらの場合、例えば、表面101と捕捉用デバイス1との固定部分に近い端が5’末端であり、他方の端が3’末端でありうる。
(2-1)リンカー11
リンカー11は、刺激によって開裂可能なリンカーであってよく、例えば、光刺激又は化学刺激によって開裂可能なリンカーでありうる。光刺激は、特定の位置に選択的に刺激を与えることができるため、好適である。
リンカー11は、例えば、光刺激によって開裂可能なリンカーとして、アリールカルボニルメチル基、ニトロアリール基、クマリン-4-イルメチル基、アリールメチル基、金属含有基、及びその他の従来公知の基からなる群より選ばれるいずれか1種以上の基を含みうる。
前記アリールカルボニルメチル基としては、例えば、フェナシル基、o-アルキルフェナシル基、p-ヒドロキシフェナシル基などが挙げられる。
前記ニトロアリール基としては、例えば、o-ニトロベンジル基、o-ニトロ-2-フェネチルオキシカルボニル基、o-ニトロアニリドなどが挙げられる。
前記アリールメチル基としては、例えば、ヒドロキシ基を導入されたものであってよく、導入されていないものであってもよい。
前記ニトロアリール基としては、例えば、o-ニトロベンジル基、o-ニトロ-2-フェネチルオキシカルボニル基、o-ニトロアニリドなどが挙げられる。
前記アリールメチル基としては、例えば、ヒドロキシ基を導入されたものであってよく、導入されていないものであってもよい。
リンカー11が光刺激によって開裂可能なリンカーである場合に、当該リンカー11は、好ましくは360nm以上の波長の光によって開裂されるものであってよい。当該リンカー11は、好ましくは0.5μJ/μm2以下のエネルギーで切断されるリンカーであってよい。上記波長の光又は上記エネルギーで切断されるリンカーを採用することによって、光刺激を与える際に生じうる細胞ダメージ(特には、DNA又はRNAの切断など)を低減することができる。
好ましくは、当該リンカー11は、短波長領域の光、具体的には360nm~410nmの波長領域の光によって開裂されるリンカーであってよく、又は、近赤外領域若しくは赤外領域の光、具体的には、800nm以上の波長領域の光によって開裂されるリンカーであってもよい。当該リンカー11が、可視光領域の波長の光で効率よく切断されるリンカーである場合は、分析用表面の取扱いが難しくなりうる。そのため、当該リンカー11は、上記短波長領域の光又は上記近赤外領域若しくは赤外領域の光によって開裂されるリンカーであることが好ましい。
また、リンカー11は、例えば、化学刺激によって開裂可能なリンカーとして、ジスルフィド結合(disulfide bond)又は制限酵素識別配列(restriction endonuclease recognition sequence)又はguide RNA(gRNA)と相補的な配列又はRNA配列などを含みうる。ジスルフィド結合の開裂のためには、例えば、Tris (2-carboxyethyl) phosphine(TCEP)、Dithiothreitol(DTT)、2-Mercaptoethanolなどの還元剤が使用される。例えば、TCEPを用いた場合は、50mMで約15min反応させる。制限酵素識別配列の解離には、各配列に応じて、適切な制限酵素を使用する。制限酵素活性の1Uは、各酵素反応液50μL中、原則として37℃で1時間に1μgのλDNAを完全に分解する酵素量であり、制限酵素識別配列の量に応じて、酵素量を調整すればよい。gRNAを用いる場合、CRISPR associated(Cas) nucleaseにより、gRNA相補配列部の解離が可能となる。Cas nucleaseの種類に応じて、リンカー11にprotospacer adjacent motif (PAM) 配列が含まれてもよい。この場合、PAM配列はgRNAと相補的な配列と隣接する。RNA配列が含まれる場合、RNaseによる処理でRNA配列部の解離がなされる。
更に、リンカー11は、開裂効率を上げるために、捕捉用デバイス1に、開裂可能なリンカーを複数含んでよい。好ましくは、複数のリンカー11は直列に連結されていてよい。例えば、1つのリンカーの開裂確率が0.8である場合、当該リンカーを3つ直列連結することで、開裂確率は、0.992(=1-0.23)へと向上する。
(2-2)増幅用配列部12
増幅用配列部12は、例えば、後述する標的分子分析工程S9において核酸の増幅のために用いられるプライマー配列若しくは核酸の転写のために用いられるプロモーター配列を有する核酸を含みうる。当該核酸は、DNA又はRNAであってよく、特には、DNAである。増幅用配列部12は、プライマー配列及びプロモーター配列の両方を有していてもよい。前記プライマー配列は、例えばPCRハンドルであってよい。前記プロモーター配列は、例えばT7プロモーター配列であってよい。
(2-3)バーコード配列部13
バーコード配列部13は、バーコード配列を有する核酸を含む。当該核酸は、特には、DNA又はRNAであってよく、より特には、DNAである。バーコード配列は、例えば、捕捉した生体粒子(特には、細胞又はエクソソーム)を特定するために用いられてよく、特には、或る微小空間に隔離された生体粒子を他の微小空間に隔離された生体粒子から区別可能とするための識別子として用いられうる。また、バーコード配列は、或るバーコード配列を含む捕捉用デバイス1を、他のバーコード配列を含む捕捉用デバイス1と区別可能とするための識別子として用いられうる。バーコード配列は、当該バーコード配列を含む捕捉用デバイス1が結合した生体粒子と関連付けられてよい。また、バーコード配列は、当該バーコード配列を含む捕捉用デバイス1が結合した生体粒子が隔離された微小空間と関連付けられてよく、特には、当該微小空間の位置に関する情報(以下、「位置情報」ともいう。)と関連付けられてもよい。位置情報は、表面101上の位置を特定するためのものであってよく、例えば、XY座標に関する情報であるが、本技術ではこれに限定されない。
また、本技術では、バーコード配列は、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と関連付けられる。本明細書において、「撮像画像情報」とは、撮像画像のデータそのものであってもよいが、本技術ではこれに限定されない。例えば、撮像画像を圧縮したデータなどであってもよい。また、「形態情報」とは、撮像画像自体、及び当該撮像画像から抽出される特徴量などを含み、一次元、二次元、及び三次元の情報を含む広い概念である。前記特徴量としては、例えば、radius(mean of distances from center to points on the perimeter),texture(standard deviation of gray-scale values), perimeter, area, smoothness(local variation in radius lengths), compactness(perimeter^2/area-1.0), concavity(severity of concave portions of the contour), concave points(number of concave portions of the contour), symmetry, fractal dimension(coastline approximation-1) , roundness, mean intensity, max intensity, speckles within a nucleus, distances between the nucleus and individual cytoplasmic vesicles等が挙げられるが、本技術ではこれに限定されない。また、例えば、畳み込みニューラルネットワーク等を用いて、撮像画像から上述した以外の特徴量を抽出することもできる。なお、これら特徴量の抽出は、後述する情報処理装置2にて、行われてもよい。
また、撮像画像自体、及び当該撮像画像から抽出される特徴量などと関連付けられたバーコード配列には、IDナンバーが割り当てられてよい。当該IDナンバーは、後述する開裂工程S6以降の工程において用いられうる。当該IDナンバーは、バーコード配列と1対1で対応するものであってよく、開裂工程S6以降の工程において、バーコード配列に対応するデータとして用いられてもよい。
本技術では、表面101のうちの或る領域内に固定された複数の捕捉用デバイス1が同じバーコード配列を有しうる。これにより、当該或る領域と当該バーコード配列とが関連付けられる。当該或る領域のサイズを、生体粒子のサイズよりも小さく設定することによって、当該バーコード配列を含む捕捉用デバイス1を、1つの生体粒子が存在する位置に関連付けることができる。例えば、同じバーコード配列を含む複数の捕捉用デバイス1が固定された領域Rは、生体粒子のサイズよりも小さくてよい。
本技術に係る生体粒子解析システム100において用いられる表面101は、同じバーコード配列を有する複数の捕捉用デバイス1が固定された領域を複数有しうる。領域毎にバーコード配列は異なってよい。各領域のサイズ(例えば、領域の最大寸法であり、直径、長径、又は長辺の長さなど)は、好ましくは、生体粒子のサイズより小さく、例えば、50μm以下、好ましくは、10μm以下、より好ましくは、5μm以下でありうる。当該複数の領域は、例えば、1つの領域に捕捉された生体粒子が、他の領域に固定された捕捉用デバイス1により捕捉されないように、間隔を開けて配置されうる。当該間隔は、例えば生体粒子のサイズ以上の距離であってよく、好ましくは生体粒子のサイズよりも大きい距離でありうる。当該複数の領域の数は、好ましくは、後述する捕捉工程S2において表面101に施与される生体粒子の数より多いことが好ましい。これにより、1つの領域に2つの生体粒子が捕捉されることが抑制される。
本技術の一つの実施態様において、配列が既知のバーコード配列を含む捕捉用デバイス1が、所定の領域に固定されうる。例えば、表面101は、複数の領域を有し、当該複数の領域のそれぞれに固定された複数の捕捉用デバイス1は、同じバーコード配列を含みうる。当該複数の領域は、捕捉される生体粒子のサイズよりも小さく設定されうる。このように構成された表面101により、前記複数の領域のそれぞれと、各領域に固定されている複数の捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列とを、関連付けることができる。このように同じバーコード配列を含む捕捉用デバイス1が固定されている領域を、本明細書内において、「スポット」ともいう。スポットのサイズは、例えば、50μm以下、好ましくは10μm以下、より好ましくは5μm以下でありうる。
以上のように構成された表面101は、捕捉用デバイス1が表面101に固定化された時点で、或る捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列と当該或る捕捉用デバイス1が存在する位置とを関連付けることができる。当該固定のために、例えば、捕捉用デバイス1のリンカー11にビオチンが結合され、且つ、捕捉用デバイス1が固定される表面101にストレプトアビジンが結合され、そして、前記ビオチン及び前記ストレプトアビジンが結合することによって、前記捕捉用デバイス1が表面101に固定化される。
本技術の他の実施態様において、表面101に、バーコード配列を含む捕捉用デバイス1が、ランダムに配置されてもよい。この場合、バーコード配列を含む捕捉用デバイス1が表面101に固定された後に、固定された捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列を読み取ることで、或る捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列と、当該或る捕捉用デバイス1が存在する位置とが、関連付けられる。
また、或る捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列と、当該或る捕捉用デバイス1が存在する位置とが、関連付けらなくてもよい。後述する隔離工程S7により微小空間内に生体粒子と捕捉用デバイス1とが隔離されるので、生体粒子と捕捉用デバイス1(特には、捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列)とは1対1で対応付けられる。この場合、例えば、同じバーコード配列を含む複数の捕捉用デバイス1が結合したビーズ(例えば、ゲルビーズ)が用いられてよく、当該ビーズが表面101に固定されうる。ビーズのサイズは、例えば、50μm以下、好ましくは、10μm以下、より好ましくは、5μm以下でありうる。捕捉用デバイス1をビーズに結合させるために、例えば、ビオチンとストレプトアビジンとの組合せが用いられてよい。例えば、捕捉用デバイス1のリンカー11にビオチンが結合され、且つ、ビーズにストレプトアビジンが結合され、そして、前記ビオチン及び前記ストレプトアビジンが結合することによって、前記捕捉用デバイス1がビーズに固定化される。
表面101には、複数の凹部が設けられていてもよい。当該複数の凹部のそれぞれに、上述した1つのスポット又は1つのビーズが配置されてよい。当該複数の凹部によって、当該スポット又は当該ビーズを、より容易に表面101に配置することができる。凹部のサイズは、例えば、ビーズが一つ入るサイズであることが好ましい。凹部の形状は、円形、楕円形、六角形、又は四角形であってよいが、本技術ではこれに限定されない。
また、表面101のうち、前記スポット又は前記ビーズが配置される表面部分の表面状態が、他の表面部分と異なっていてもよい。例えば、前記スポット又は前記ビーズが配置される表面部分が親水性であり、その他の表面部分が疎水性であってよく、又は、その他の表面部分が疎水性を有し、且つ、凸部を有していてもよい。表面に親水性を付与するため手法として、例えば、酸素存在下での反応性イオンエッチング及びオゾン存在下で深紫外光の照射などが挙げられる。これらの手法において、親水性を付与する部分が貫通されたマスクが用いられうる。また、表面に疎水性を付与するための手法として、シリコーンスプレー(spray-on-silicone)を挙げることができ、例えば、Techspray 2101-12Sなどが用いられてよい。疎水性を付与する場合においても、例えば、疎水性を付与する部分が貫通されたマスクを用いられうる。
また、例えば、DNAマイクロアレイ作製技術やオリゴプール合成技術などを用いて、基板102上で捕捉用デバイス1を合成することもできる。例えば、フォトリソグラフィーに用いられるDMD(Digital Mircomirror Device)、液晶シャッター、又は空間光位相変調器などの技術を用いて、特定の位置に捕捉用デバイス1を合成することができる。或いは、電気的に特定の場所に塩基やオリゴヌクレオチドを誘導して結合させる。或いは、電気化学的に特定場所の塩基の保護基を外して合成するなどの手法が実施できる。当該合成のための手法は、例えば、Basic Concepts of Microarrays and Potential Applications in Clinical Microbiology, CLINICAL MICROBIOLOGY REVIEWS, Oct. 2009, p. 611-633に記載されている。なお、当該合成により捕捉用デバイス1を基板102上で合成する場合、合成される際に、当該捕捉用デバイス1が合成される位置の情報を取得し、バーコード配列と位置情報とが関連付けられる。その際に、IDナンバーが付与されてもよい。
本技術の一つの実施態様において、表面に固定されている捕捉用デバイス1のいずれもが、共通のオリゴ配列を含みうる。当該オリゴ配列に相補的な配列を有し、且つ、蛍光標識された核酸を用いることで、捕捉用デバイス1が固定されている位置(特には、前記スポットの位置又は前記ビーズの位置)を確認することができ、特には暗視野において確認することができる。また、表面に上記で述べた凹部又は凸部が無い場合、捕捉用デバイス1が固定されている位置が把握しにくくなりうる。前記蛍光標識は、この場合において、捕捉用デバイス1が固定されている位置を把握し易くなる。
(2-4)UMI部14
UMI部14は、核酸を含んでよく、特には、DNA又はRNAを含んでよく、より特には、DNAを含む。UMI部14は、例えば、5塩基~30塩基、特には、6塩基~20塩基、より特には、7塩基~15塩基の配列を有しうる。UMI部14は、表面101に固定された生体粒子由来の分子間で互いに異なる配列を有するように構成されうる。例えば、UMI部14が10塩基の核酸配列を有する場合、UMI配列の種類は、4の10乗、すなわち100万以上である。
また、UMI部14は、生体粒子由来の分子を定量するために用いられうる。例えば、当該分子がmRNAである場合、当該分子であるmRNAを逆転写して得られるcDNAにUMI配列が付加されうる。1つのmRNA分子から逆転写されたcDNAを増幅して得られる多数のcDNAは同じUMI配列を有するが、当該mRNAと同じ配列を有する他のmRNA分子から転写されたcDNAを増幅して得られる多数のcDNAは異なるUMI配列を有する。そのため、同じcDNA配列を有するUMI配列の種類の数を数えることで、mRNAのコピー数を決定することができる。
UMI部14は、例えば、1つの領域R(例えば、前記スポット又は前記ビーズ)に固定された同じバーコード配列を含む複数生体粒子由来の分子間で互いに異なる配列を有するように構成されうる。すなわち、前記領域R(例えば、前記スポット又は前記ビーズ)に固定された複数の生体粒子由来の分子は、同じバーコード配列を有する一方で、互いに異なるUMIを有しうる。
(2-5)分子捕捉用配列部15
分子捕捉用配列部15は、後述する生体粒子捕捉部16を介して捕捉された生体粒子に由来する分子(以下、「標的分子」ともいう。)を捕捉するための構成要素を含む。当該構成要素は、例えば、核酸又はタンパク質でありうる。当該構成要素が核酸である場合、当該核酸は、細胞に含まれるmRNAを網羅的に捕捉するために、例えばポリT配列であってよい。代替的には、当該核酸は、標的配列に相補的な配列を有しうる。当該構成要素がタンパク質である場合、当該タンパク質は、例えば、抗体であってよい。当該構成要素は、アプタマー又は分子鋳型ポリマー(Molecular Imprinted Polymer)であってもよい。
分子捕捉用配列部15は、細胞に含まれる分子を捕捉するための2種類以上の構成要素を含んでいてもよい。分子捕捉用配列部15は、タンパク質及び核酸の両方を含んでよく、例えば、抗体とポリT配列の両方を含みうる。これにより、タンパク質とmRNAの両方を同時に検出することができる。
(2-6)生体粒子捕捉部16
生体粒子捕捉部16は、生体粒子を捕捉するための構成要素を含み、特には、細胞を捕捉するための構成要素を含む。当該構成要素は、例えば、抗体、アプタマー、又はオレイル基でありうる。当該抗体は、例えば、細胞又はエクソソームなどの生体粒子の表面に存在する成分(特には、表面抗原)と結合する抗体でありうる。当該アプタマーは、核酸アプタマー又はペプチドアプタマーでありうる。当該アプタマーも、例えば細胞又はエクソソームなどの生体粒子の表面に存在する成分(特には、表面抗原)と結合しうる。当該オレイル基は、例えば細胞又はエクソソームなど、脂質二重膜から形成された生体粒子を結合しうる。
(2-7)回収用配列部17
図3は、捕捉用デバイス1の、図2とは異なる実施形態の一例を示す模式図である。捕捉用デバイス1は、図2で示したように、リンカー11、増幅用配列部12、バーコード配列部13、UMI(Unique molecular identifier)部14、分子捕捉用配列部15、及び生体粒子捕捉部16の他に、図3に示すように、回収用配列部17を更に含んでいてよい。
回収用配列部17は、生体粒子を破壊した際に生体粒子から遊離した捕捉用デバイス1を回収するために用いられる核酸を含む。当該核酸は、DNA又はRNAであってよく、特には、DNAである。なお、当該回収のために、前記核酸と相補的な核酸が固定されたビーズが用いられてよい。このようなビーズによって、回収用配列部17を有する捕捉用デバイス1を効率的に回収することができる。回収用配列部17に含まれる核酸の塩基配列は、当業者により適宜設定されてよい。
(3)情報処理装置2
情報処理装置2は、処理部21を有する。また、必要に応じて、記憶部22、ユーザインターフェース部23、出力部24などを有していてもよい。なお、情報処理装置2の各部は、ネットワークを介して接続されていてもよい。また、これら各部は、複数あってもよく、クラウド等の外部に設けて、ネットワークを介して接続されていてもよい。
以下、情報処理装置2の各部位について詳細に説明する。
以下、情報処理装置2の各部位について詳細に説明する。
(2-1)処理部21
処理部21は、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部15によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部13の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける。具体的な手法については、後述する「(2-5)関連付け工程S5」において詳細に説明する。
また、処理部21は、本技術に係る生体粒子解析システム100におけるあらゆる事項を解析しうる。また、「(4-1)学習済みモデル作成工程S11」において作成される学習済みモデルも処理部21内で構築されてよい。当該学習済みモデルは、機械学習により得られる学習済みモデルであって、前記生体粒子に関する形態情報を入力し、関連する分子情報データを出力する。これにより、例えば、意図的に遺伝子変異を挿入された細胞のMorphology、Phenotype、Genotypeなどが関連付けられたデータセットの構築も可能となる。
また、処理部21は、構築した学習済みモデルを用いて、前記生体粒子に関する形態情報から前記分子に関する情報を推定することができる。具体的な手法については、後述する「(4-2)推論工程S12」において詳細に説明する。
(2-2)記憶部22
記憶部22は、本技術に係る生体粒子解析システム100におけるあらゆる事項を記憶しうる。例えば、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報や、前記分子捕捉用配列部15によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部13の配列に基づき得られた前記分子に関する情報や、これらの情報を関連付けた情報などが記憶される。なお、記憶部22としては、外部の記憶装置等を用いて、本技術に関わる生体粒子解析システム100に関わるあらゆる事項を記憶してもよい。
なお、記憶部22の設置場所や設置数などは特に限定されず、上述した処理部21を有する筐体側に設置されていてよい。また、記憶部22は、情報処理装置2において必須の構成ではなく、クラウド等の外部に設置し、ネットワークを介して処理部21に接続したり、外部の記憶装置を用いたりしてもよい。
(2-3)ユーザインターフェース部23
ユーザインターフェース部23は、ユーザが操作するための部位である。ユーザインターフェース部23は、本技術に係る生体粒子解析システム100におけるあらゆる事項をユーザに提示する。また、ユーザは、ユーザインターフェース部23を通じて、情報処理装置2や撮像装置3の各部にアクセスし、これら各部を制御する。
なお、ユーザインターフェース部23の設置場所や設置数は特に限定されず、処理部21を有する筐体側に設置されていてよく、後述する撮像装置3に設置されていてよく、或いは、その両方に設置されていてもよい。
ユーザインターフェース部23としては、例えば、ディスプレイ、1又は複数のボタン、マウス、キーボード、タッチパネル、携帯情報端末などを用いることができる。また、ユーザインターフェース部23は、情報処理装置2において必須の構成ではなく、外部の表示装置を用いてもよい。
(2-4)出力部24
出力部24は、処理部21による指示を受け、例えば、本技術に係る生体粒子解析システム100に関わるあらゆる事項を出力する部位である。
なお、出力部24の設置場所や設置数は特に限定されず、処理部21を有する筐体側に設置されていてよく、後述する撮像装置3に設置されていてよく、或いは、その両方に設置されていてもよい。また、出力部24は、処理部21による指示を受け、設置場所に応じて、出力する内容が異なっていてもよい。
出力部24としては、プリンタ、スピーカー、携帯情報端末などを用いることができる。また、出力部24は、情報処理装置2において必須の構成ではなく、外部の出力装置を用いてもよい。
(3)撮像装置3
撮像装置3では、前記表面101に捕捉された前記生体粒・BR>Qを撮像する。具体的な手法については、後述する「(2-3)撮像工程S3」において詳細に説明する。
2.第2実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
図4を参照して、本技術の第2実施形態に係る生体粒子解析システム100の全体構成について説明する。本実施形態に係る生体粒子解析システム100は、捕捉用デバイス1と、情報処理装置2と、撮像装置3と、流体制御部4と、を有する。また、必要に応じて、その他の部位を有していてもよい。
以下、各部位について詳細に説明する。
なお、捕捉用デバイス1、情報処理装置2、及び撮像装置3については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
以下、各部位について詳細に説明する。
なお、捕捉用デバイス1、情報処理装置2、及び撮像装置3については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
(2)流体制御部4
本技術に係る生体粒子解析システム100は、図4に示すように、流体制御部4が接続されていてもよい。これにより、生体粒子の播種、薬剤による生体粒子への刺激付与、試薬(抗体に核酸バーコードが結合された細胞表面バーコード試薬などを含む。)による染色、洗浄、試薬による開裂(細胞バーコードの付与)までが、生体粒子解析システム100上で、自動的に実施可能となる。その後、後述する標的分子分析工程S9を経ることで、標的分子が特定される。
流体制御部4は、例えば、図4に示すように、複数の試薬(Reagent 1~3)から、所望の試薬や、所望の量などを供給することができるバルブ(Multi-way valve)、ポンプ(pump)、廃棄部(Waste)、回収部(Collect)、これら各部位を繋ぐチューブなどを有していてよいが、本技術ではこれに限定されない。
3.第3実施形態(生体粒子解析システム100)
(1)全体構成
図5を参照して、本技術の第3実施形態に係る生体粒子解析システム100の全体構成について説明する。本実施形態に係る生体粒子解析システム100は、捕捉用デバイス1と、情報処理装置2と、撮像装置3と、流体制御部4と、マイクロチップ150と、を有する。また、必要に応じて、その他の部位を有していてもよい。
以下、各部位について詳細に説明する。
なお、捕捉用デバイス1、情報処理装置2、撮像装置3、及び流体制御部4については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
以下、各部位について詳細に説明する。
なお、捕捉用デバイス1、情報処理装置2、撮像装置3、及び流体制御部4については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
(2)マイクロチップ150
本技術に係る生体粒子解析システム100は、図5に示すように、マイクロチップ150が接続されていてもよい。例えば、流体制御部4の前記回収部で回収されたバーコード化細胞溶液が、コレクションバッグを介して、マイクロチップ150のインレットに連結されてもよい。これにより、後述する隔離工程S7から破壊工程S8までを連続的に実施可能となる。その後、後述する標的分子分析工程S9を経ることで、標的分子が特定される。マイクロチップ150については、後述する「(2-7)隔離工程S7」において詳細に説明する。
4.第4実施形態(生体粒子解析方法)
(1)全体構成
本技術に係る生体粒子解析方法は、捕捉工程S2と、撮像工程S3と、配列解析工程S4と、関連付け工程S5と、とを有する。また、その他に、準備工程S1、刺激付与工程S10、開裂工程S6、隔離工程S7、破壊工程S8、標的分子分析工程S9、学習済みモデル作成工程S11、推論工程S12などを有していてもよい。
以下、各工程について、図面を参照しながら詳細に説明する。
以下、各工程について、図面を参照しながら詳細に説明する。
(2)フロー例1
図6は、フロー例1を説明するフローチャートである。本技術に係る生体粒子解析方法のフローの一例について、図6を参照しながら詳細に説明する。また、図15は、第4実施形態に係る生体粒子解析方法に含まれる各工程における操作を説明するための模式図である。
(2-1)準備工程S1
準備工程S1においては、捕捉用デバイス1が前記リンカー11を介して固定されている表面が用意される。具体的には、例えば、複数の捕捉用デバイス1が固定された表面101を有する分析用基板(例えば、スライドガラスなど)102が用意されうる。なお、捕捉用デバイス1については、上述した通りであるため、ここでは説明を割愛する。
表面101は、好ましくは透明な基板の表面である。当該基板は、その全体が透明であってよく、捕捉用デバイス1が固定される部分だけが透明であってもよい。基板の表面は、標本との接触を良好に行うために、好ましくは平面である。当該透明の基板は、例えば、ガラス製の基板又は樹脂製の基板でありうる。当該基板は、例えば、スライドガラスであってよい。透明であることによって、後述する開裂工程S6において、開裂される生体粒子を選択しやすくなる。
表面101に結合する捕捉用デバイス1の数及び密度は、例えば、表面101の表面積を増大させることによって、高めることができる。また、複数の捕捉用デバイス1が、直列に接続されてもよい。この場合、基板102と捕捉用デバイス1との間の開裂条件と、2つの捕捉用デバイス1の間の開裂条件とは、異なることが好ましい。基板102と捕捉用デバイス1との開裂の際に、分子同士も開裂されると、開裂された分子が隣り合う他の生体粒子に結合しうるところ、これらの開裂条件が互いに異なることで、結合が起こることを防ぐことができる。
例えば、基板102と捕捉用デバイス1とを結合するリンカー11は、光刺激により開裂可能であるリンカーであり、且つ、捕捉用デバイス1と捕捉用デバイス1とを結合するリンカーは、化学刺激により開裂可能であるリンカーであってよく、この反対であってもよい。また、基板102と捕捉用デバイス1とを結合するリンカーが化学刺激により開裂であるリンカーであり、且つ、捕捉用デバイス1と捕捉用デバイス1とを結合するリンカーが他の化学刺激により開裂可能であるリンカーであってもよい。例えば、前者が或る制限酵素識別配列を含み、後者が他の制限酵素識別配列を含みうる。また、例えば、前者がジスルフィド結合を含み、後者が制限酵素識別配列を含みうる。また、分子間の結合をアミノ酸で行い、当該結合が、細胞溶解に使う試薬(例えば、プロテイナーゼKなど)で、後述する破壊工程S8において(特には、細胞溶解と同時に)開裂されてもよい。
(2-2)捕捉工程S2
捕捉工程S2においては、開裂可能なリンカー11と生体粒子捕捉部16と分子捕捉用配列部15とバーコード配列部13とが、前記リンカー11を介して固定されている表面101に、前記生体粒子捕捉部16を介して生体粒子(特には、細胞又は細胞塊)が捕捉される。捕捉工程S2において、前記生体粒子と生体粒子捕捉部16とは、特異的又は非特異的な様式で結合しうる。
例えば、生体粒子が細胞又は細胞塊である場合、細胞又は細胞塊の表面抗原と生体粒子捕捉部16に含まれる抗体又はアプタマーとが結合することによって、当該細胞が捕捉用デバイス1により捕捉されうる。当該抗体及び当該アプタマーは、特異的なものであってよく、非特異的なものであってもよい。また、この場合、細胞の脂質二重膜と、生体粒子捕捉部16に含まれるオレイル基とが結合することによって、当該細胞が捕捉用デバイス1により捕捉されてもよい。代替的には、例えば、生体粒子がエクソソームである場合、生体粒子の表面成分(すなわち、脂質二重膜成分)と生体粒子捕捉部16に含まれるオレイル基とが結合することによって、当該生体粒子が捕捉用デバイス1により捕捉されうる。また、この場合において、エクソソームの表面成分と生体粒子捕捉部16に含まれる抗体又はアプタマーとが結合することによって、当該生体粒子が捕捉用デバイス1により捕捉されてもよい。
また、捕捉工程S2は、生体粒子を表面101に付与する付与工程を含んでいてよい。付与の様式は、例えば、生体粒子含有試料(例えば、生体粒子含有液など)を表面101と接触させることにより行われてよい。例えば、生体粒子含有試料が、表面101に滴下されうる。
捕捉工程S2において、好ましくは、1つの生体粒子に結合した複数の分子は、同一のバーコード配列を有しうる。これにより、1つのバーコード配列を1つの生体粒子に関連付けることができる。また、好ましくは、当該複数の分子に含まれるUMI部14は、互いに異なる配列を有しうる。これにより、例えば、mRNAのコピー数を決定することができる。
また、本技術において、生体粒子は、特には、生体粒子表面抗原、生体粒子内蛋白質(例えば、転写因子など)に、抗体用バーコード配列を含む核酸を結合した抗体(以下、「核酸結合抗体」ともいう。)が結合されていてよい。抗体を結合させる場合、膜透過処理を行ってよく、例えば、0.01%w/v digitoninを含む20mM Tris HCl,150mM NaCl,3mM MgCl2(pH7.4)により処理することなどが挙げられる。更に、1% Tween-20、0.1% Nonident P40 substituteなどの界面活性剤が用いられてもよい。膜処理時間は対象生体粒子によるが、1~10分間程度の処理で膜透過処理が可能である。このように、適切な処理条件を選択することで、膜が完全に破壊されず、基板102上の捕捉状態が維持され、且つ、バーコードが結合した状態を維持できる。
抗体用バーコード配列は、核酸結合抗体を特定するためのバーコード配列である。例えば、図10に示される核酸結合抗体が、蛍光色素標識抗体の代わりに又は当該蛍光色素標識抗体に加えて、生体粒子に結合される。
図10に示される核酸結合抗体は、抗体10と、当該抗体に結合した核酸を含む。当該核酸は、例えば、図10に示すように、第一核酸201、第二核酸202、及び第三核酸203を含む。これら核酸は、図10に示される順に並んでいてよく、又は、他の順番で並んでいてもよい。
第一核酸201は、増幅用プライマー配列を含みうる。第一核酸201が増幅用プライマー配列を含むことによって、増幅時に、後述の第二核酸202及び第三核酸203に、捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列部13及び/又はUMI部14などを付与することができる。また、シークエンス処理用配列、例えば、アダプター配列などを付与することもできる。
第二核酸202は、抗体用バーコード配列を含みうる。抗体用バーコード配列は、或る生体粒子に結合した核酸結合抗体を、他の生体粒子に結合した核酸結合抗体から区別するために用いられうる。例えば、抗体の種類ごとに、抗体用バーコード配列の配列は異なってよく、又は、生体粒子の種類ごとに、抗体用バーコード配列は異なっていてもよい。これにより、後述する破壊工程S8において生体粒子が破壊された後に、核酸結合抗体が結合していた生体粒子を特定することができる。
第三核酸203は、ポリA配列を含みうる。これにより、後述する破壊工程S8の後に、前述の第一核酸201及び第二核酸202を含む当該核酸を、第三核酸203を介して、捕捉用デバイス1の分子捕捉用配列部15に含まれるポリT配列で捕捉できる。そして、当該捕捉によって当該核酸と捕捉用デバイス1との複合体が形成される。当該複合体を、例えば、第一核酸201を利用して増幅することによって、捕捉用デバイス1に、第二核酸202の抗体用バーコード配列が付与された核酸が生成される。当該増幅により生成された核酸は抗体用バーコード配列を有し、当該抗体用バーコード配列は、上述した通り、例えば、抗体の種類毎に異なり、すなわち、抗体の種類に関連付けられている。そのため、核酸結合抗体の種類及び/又は数に関する情報が、抗体用バーコード配列という形式で当該増幅の産物中に維持されており、例えば、抗体バーコード配列を有する核酸の配列及び/又は数から、当該抗体用バーコード配列に関連付けられた核酸結合抗体の種類及び/又は数を特定することができる。これにより、生体粒子に結合した核酸結合抗体の種類及び数を特定することができる。これらの特定は、例えば、後述する標的分子分析工程S9において行われてよい。当該特定のための増幅産物の配列分析は、例えば、NGSにより行われうる。
捕捉工程S2は、前記生体粒子と前記生体粒子捕捉部16とを結合させるためのインキュベート工程を含みうる。インキュベート時間及び温度などのインキュベート条件は、用いられる生体粒子捕捉部16の種類に応じて決定されてよい。
また、捕捉工程S2を実行した後に、捕捉用デバイス1に結合しなかった生体粒子を除去する除去工程が行われてもよい。また、捕捉工程S2を実行した後に、生体粒子に結合しなかった抗体などの、後述する開裂工程S6において不要な物質を除去する除去工程が行われてもよい。除去工程は、例えば、バッファーなどの液体による表面101の洗浄を含みうる。
(2-3)撮像工程S3
撮像工程S3においては、捕捉用デバイス1により表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する。撮像は、ステージS上で、表面101に生体粒子が捕捉された状態で実施される。また、個々の生体粒子が識別できるような分解能で行われることが好ましい。撮像素子103は、例えば、CCDであってよくCOMSであってもよい。光源104は、捕捉された生体粒子を撮像素子103で撮像する際に、光を照射する。光源104には、例えば、特定の波長の光を照射するLED(light emitting diode)等が用いられる。
前記撮像は、明視野(位相差を含む。)若しくは暗視野での撮像であってよく、明視野の撮像及び暗視野の撮像の両方が行われてもよい。前記撮像は1回又は複数回行われてよく、例えば、ユーザ若しくは制御部(不図示)により選択された一部の領域について1回又は複数回行われてよく、全域又は一部を網羅するように1回又は複数回行われてもよい。
撮像素子103による前記撮像は、撮像素子に接続された制御部(不図示)により制御されうる。制御部は、例えば、ハードディスク、CPU、メモリなどにより構成されていてよく、汎用のコンピュータや情報処理装置などによりその機能が実現されうる。また、制御部は、上述した撮像素子内に備えられていてもよい。制御部を備えている撮像素子は、例えば、複数のダイ(例えば、2枚又は3枚のダイ)が積層された積層構造を有する1チップの半導体装置として構成されていてよい。これには、当該ダイのうちの1つが、2次元に並んで配列された複数の画素を含む。残りのダイに、制御部の機能を実現させるための構成要素(例えば、CPU及びメモリなど)が搭載されうる。このような制御部を含む撮像素子としては、例えば、国際公開第2018/051809号パンフレットに開示された撮像素子などが挙げられる。前記撮像素子として制御部を備えている撮像素子を用いることによって、標本画像データを撮像素子の外部に出力することなく各種処理を行うことができ、その結果、情報処理の高速化が実現できる。
撮像素子は、撮像により得られた撮像画像情報を前記制御部に送信しうる。制御部は、この撮像画像情報を受信し、以降の工程において当該画像データを用いる。
また、前記制御部が受信した撮像画像情報は、例えば前記制御部に接続された記憶部に格納されてもよい。この場合、前記記憶部は、汎用の記憶装置であってよい。前記制御部が、以降の行程を行う場合に、前記記憶部から撮像画像情報を取得しうる。
また、前記制御部が受信した撮像画像情報は、例えば前記制御部に接続された記憶部に格納されてもよい。この場合、前記記憶部は、汎用の記憶装置であってよい。前記制御部が、以降の行程を行う場合に、前記記憶部から撮像画像情報を取得しうる。
(2-4)配列解析工程S4
配列解析工程S4においては、前記分子捕捉用配列部15によって捕捉された前記生体粒子由来の分子(標的分子)に付与されたバーコード配列部13の配列を解析する。なお、配列解析工程S4は、後述する開裂工程S6の前に行われればよく、例えば、準備工程S1の後であって、捕捉工程S2の前に行われてもよい。
バーコード配列部13の配列の解析は、例えば、バーコード配列部13が有するバーコード配列を読み取ることにより行われる。読み取りは、例えば、Sequencing By Synthesis、sequencing by ligation、sequencing by hybridizationなどの手法により行うことができる。
(2-5)関連付け工程S5
関連付け工程S5においては、前記撮像工程S3で得られた撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記配列解析工程S4で得られたバーコード配列部13の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける。
前記関連付けは、例えば、上述した情報処理装置2により行われ、バーコード配列部13に予め関連付けられた位置情報(例えば、XY座標など)を介して行われてよい。これにより、生体粒子が捕捉された場所にあるバーコード配列と、撮像画像情報とが関連付けられる。各バーコード配列部13にIDナンバーが付与されている場合は、生体粒子の撮像画像及び当該撮像画像から抽出される特徴量とIDナンバーとが関連付けられてもよい。これにより、撮像画像及び当該撮像画像から抽出される特徴量とバーコード配列部13とが、IDナンバーを介して関連付けられうる。
(2-6)開裂工程S6
開裂工程S6においては、リンカー11を開裂させる。リンカー11の開裂によって、分子が結合した生体粒子が、表面101から遊離する。例えば、捕捉用デバイス1のリンカー11が開裂することによって、捕捉用デバイス1が、表面101から遊離し、これに伴い、生体粒子も表面101から遊離する。
開裂工程S6において、例えば、化学刺激又は光刺激などの刺激により前記リンカー11を開裂させることができる。光刺激は、特定の狭い範囲に選択的に刺激を与えることができるため、好適である。刺激付与は、刺激付与装置により行われうる。刺激付与装置の駆動は、例えば、汎用のコンピュータなどの情報処理装置などにより制御されてよい。例えば、当該情報処理装置が、刺激付与装置を駆動して、遊離されるべき生体粒子の位置に選択的に刺激を付与させうる。
生体粒子の選択的位置に光刺激を与える刺激付与装置としては、例えば、光照射装置が用いられる。具体的には、例えば、DMD(Digital Micromirror Device)、液晶ディスプレイデバイスなどが挙げられる。DMDを構成するマイクロミラーによって、表面101のうちの選択された位置に光を照射することができる。液晶ディスプレイデバイスは、例えば、反射型液晶ディスプレイであってよく、例えば、SXRD(ソニー株式会社製)などが挙げられる。液晶ディスプレイデバイスの液晶を制御することによって、表面101のうちの選択的位置に光を照射することができる。また、生体粒子の選択的位置に光刺激を与えるために、液晶シャッターや、空間光変調器が用いられてもよい。これらによっても、選択的位置に光刺激を与えることができる。なお、光照射装置により照射される光の波長は、捕捉用デバイス1に含まれるリンカー11の種類に応じて当業者により適宜選択されてよい。
化学刺激の付与は、リンカー11を開裂する試薬を表面101に接触させることにより行われてよい。当該試薬は、リンカー11の種類に応じて当業者により適宜選択されてよい。例えば、リンカー11がジスルフィド結合を含む場合には、当該試薬は、当該結合を開裂可能な還元剤であってよく、例えば、Tris(2-carboxyethyl)phosphine(TCEP)、Dithiothreitol(DTT)、2-Mercaptoethanolなどが挙げられる。また、例えば、リンカー11が、制限酵素識別配列を含む核酸である場合には、当該試薬は、各制限酵素識別配列に対応する制限酵素であってよい。
開裂工程S6において、開裂によって遊離した少なくとも1つの生体粒子は、例えば、バッファーなどの液体中に回収されてよい。当該液体は、例えば、親水性の液体であってよい。回収によって得られた生体粒子含有液体が、後述する隔離工程S7において用いられうる。遊離した生体粒子を回収するために、バッファーなどの液体を流すことによる流体力が用いられてよく、振動させて液体中に生体粒子が浮遊させられてよく、重力などを使って液体中に生体粒子を浮遊させてもよい。当該振動は、例えば、分析用基板102の振動であってよく、生体粒子が含まれている液体の振動であってもよい。また、当該重力による生体粒子の液体中への浮遊のために、表面101が重力方向に向くように分析用基板102が移動されてよい。
(2-7)隔離工程S7
隔離工程S7においては、開裂工程S6において表面101から遊離した生体粒子が微小空間内に隔離される。隔離によって、捕捉用デバイス1を、例えば、生体粒子に含まれる標的物質に結合させることができる。これにより、例えば、捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列部13と生体粒子由来の分子(すなわち、標的分子)とを関連付けることが可能となる。当該バーコード配列部13の情報を利用した標的分子の分析が可能となり、特には、単一細胞解析が可能となる。
前記微小空間は、例えば、エマルション粒子内の空間又はウェル内の空間であってよい。好ましくは、隔離工程S7において、1つのエマルション粒子又は1つのウェル内に、1つの生体粒子(特には、少なくとも1つの捕捉用デバイス1が結合した1つの生体粒子)が隔離される。
本技術の一実施態様において、隔離工程S7は、生体粒子を微小空間に隔離するか否かを判別する判別工程(不図示)と、当該判別工程において隔離すると判別された生体粒子を微小空間に隔離する粒子隔離工程(不図示)とを含みうる。これにより、目的とする生体粒子だけ隔離することが可能となる。そのため、例えば、目的外の生体粒子を、後述する標的分子分析工程S9における対象から除外することができる。
判別は、例えば、生体粒子から生じた光(例えば、散乱光及び/又は自家蛍光など)、生体粒子に結合した物質から生じた光、生体粒子の形態画像などに基づき行われてよい。生体粒子に結合した物質は、例えば、捕捉用デバイス1であってよく、生体粒子に結合している抗体(特には、蛍光色素標識抗体)であってもよい。生体粒子から生じた散乱光は、例えば、前方散乱光及び/又は側方散乱光であってよい。散乱光検出によって取得されたシグナルの高さやエリア値などから、ダブレット検出ができる。また、生体粒子の形態画像による単一細胞判定も可能である。散乱光及び/又は形態画像、死細胞染色試薬による染色後の蛍光などから、生体粒子が死細胞であるか否かを判別することができ、これにより死細胞を除去することができる。また、本技術においては、隔離工程S7の直前に判別工程が行われてよく、これにより、バーコードが付与された単一細胞のみを確実に隔離できる。
また、本技術の他の実施態様において、判別工程を実行することなく、粒子隔離工程のみが実行されてもよい。これにより、本技術に係る生体粒子解析方法における工程数を減らすことができる。
本技術の更に他の実施態様において、判別工程は、隔離工程S7において実行する代わりに、上述した開裂工程S6において実行されてもよい。この場合、これらの工程における判別の結果選択された生体粒子又は生体粒子集団が、粒子隔離工程に付される。この場合においては、例えば、セルソーターなどの装置は用いなくてもよい。
(2-7-1)判別工程
判別工程においては、遊離した生体粒子を微小空間に隔離するかの判別が行われる。当該判別は、生体粒子から生じた光や、生体粒子に結合した物質から生じた光に基づき行われてよい。この場合、判別工程は、例えば、生体粒子に光を照射する照射工程と、当該照射によって生じた光を検出する検出工程と、を含みうる。
照射工程は、例えば、生体粒子に光を照射する光照射部により実行されてよい。光照射部は、例えば、光を出射する光源を含んでよい。また、光照射部は、生体粒子に対して光を集光する対物レンズを含みうる。当該光源は、分析の目的に応じて当業者により適宜選択されてよい。光照射部は、光源及び対物レンズに加えて、他の光学素子を含んでいてもよい。
検出工程は、例えば、生体粒子又は生体粒子に結合した物質から生じた光を検出する検出部により実行されてよい。検出部は、例えば、前記光照射部による光照射によって生体粒子又は生体粒子に結合した物質から生じた光(例えば、散乱光及び/又は蛍光など)を検出する。検出部は、例えば、生体粒子から生じた光を集光する集光レンズと検出器とを含みうる。検出部は、集光レンズ及び検出器に加えて、必要に応じて他の光学素子を含んでいてもよい。例えば、分光部を更に含んでいてよい。当該分光部によって、例えば、検出されるべき波長の光を、他の波長の光から分けて検出することができる。検出部は、検出された光を光電変換によって、アナログ電気信号に変換し、更に当該アナログ電気信号をAD変換によってデジタル電気信号に変換しうる。
また、検出工程において検出された光に基づき、生体粒子を判別するか否かの判定処理は、判定部(不図示)により実行されてよい。判定部による処理は、例えば、汎用のコンピュータなどの情報処理装置、特には、本技術に係る情報処理装置に含まれる処理部によって実現されうる。
(2-7-2)粒子隔離工程
粒子隔離工程は、生体粒子を微小空間に隔離する。本明細書において、「微小空間」とは、分析対象となる生体粒子を1つ収容することができる寸法を有する空間を意味してよい。当該寸法は、例えば、生体粒子のサイズなどの要因に応じて、当業者により適宜決定されてよい。当該微小空間は、分析対象となる生体粒子を2つ以上収容可能な寸法を有していてもよいが、この場合には、1つの微小空間内に1つの生体粒子が収容される場合に加え、2つ以上の生体粒子が収容される場合も生じうる。2つ以上の生体粒子が収容された微小空間内の当該生体粒子は、後述する破壊工程S8における破壊対象から除外されてよく、後述する標的分子分析工程S9における分析対象から除外されてもよい。
また、後述する破壊工程S8において、例えば、標的分子と標的分子との複合体が生成されうる。本技術において用いられる複数の微小空間は、1つの微小空間内で生成した前記複合体が他の微小空間へと移行しないように、互いに隔てられていることが好ましい。このように隔てられた微小空間としては、例えば、ウェル内の空間及びエマルション粒子内の空間などを挙げることができる。すなわち、本技術の好ましい実施態様において、前記微小空間は、ウェル内の空間又はエマルション粒子内の空間であってよい。
(2-7-2-1)ウェル内の空間の場合
図7は、粒子隔離工程を実行するために用いられるウェルの例の模式図である。図7に示されるように、例えば1つの生体粒子を収容可能な寸法を有する複数のウェル40が、基板41の表面に形成されていてよい。基板41の当該表面に、上述した開裂工程S6において得られた生体粒子含有液体を、例えば、任意のノズル42から施与することによって、図7に示されるように、生体粒子43がウェル40内の空間に隔離される。このようにして、1つのウェル内空間に1つの生体粒子が入り、生体粒子が微小空間内に隔離されてよい。
また、図7で示すように、複数の生体粒子を含む液体をウェルが形成された基板に施与する場合は、上述した判別工程を実施することなく、粒子隔離工程が実行されてよい。これに対して、判別工程を実施する場合は、例えば、セルソーター、シングルセルディスペンサーなどの1ウェルに1つの生体粒子を入れることが可能な装置が用いられてもよい。当該装置についても、複数のウェルが形成された基板(例えば、プレートなど)が生体粒子を隔離するために用いられうる。当該装置として、市販のものが用いられてもよい。当該装置は、例えば、光を照射する光照射部、光を検出する検出部、検出された光に基づき当該生体粒子をウェルに入れるか否かを判別する判別部、ウェルに入れると判定された生体粒子をウェルに分配する分配部などを有していてよい。当該分配部は、生体粒子を含む液滴を形成するノズルを有するマイクロ流体チップを含みうる。
前記装置は、前記判別部による判別結果に応じて、前記マイクロ流体チップの位置を操作して、所定のウェルに1つの生体粒子含有液滴を入れる。代替的には、前記装置は、前記判別部による判別結果に応じて、前記ノズルから出た生体粒子含有液滴の進行方向を、当該液滴に付与された電荷を利用して制御する。当該制御によって、所定のウェル内に1つの生体粒子含有液滴を入れる。このようにして、1ウェルに1つの生体粒子が分配される。例えば、図8に示されるように、前記装置のマイクロ流体チップに備えられているノズル52から、生体粒子含有液滴が出る。当該液滴に含まれる生体粒子に対して、光照射部54により光(例えば、レーザ光L)が照射され、そして、検出部55により検出工程が実行され、光(蛍光F)が検出される。そして、前記判別部が、検出された光に基づき、判定工程を実行する。そして、判定結果に応じて、前記分配部が、液滴に付与された電荷を利用して、当該液滴の進行方向を制御する。当該制御によって、目的の生体粒子を含む液滴が所定のウェルに回収される。これにより、1つのウェルに1つの生体粒子が分配される。
前記判別部による判別を実行することによって、例えば、検出シグナルに応じた、生体粒子が属する細胞集団の特定、バーコードが付与された生体粒子の特定、シングレット生体粒子を含む液滴の特定などが可能である。これにより、目的の生体粒子を含む液滴だけを回収することができる。その結果、後述する標的分子分析工程S9においてデータの除外を行う必要がなくなり、分析効率が向上する。
(2-7-2-2)エマルション粒子内の空間の場合
エマルション粒子は、例えば、マイクロ流路を用いて生成されうる。当該装置は、例えば、互いにエマルションの分散質を形成する第一液体が流れる流路と、分散媒を形成する第二液体が流れる流路とを含む。この場合、第一液体に、生体粒子が含まれていてよい。当該装置は、更に、これら2つの液体が接触してエマルションが形成される領域を含んでいてよい。
図9に示されるマイクロ流路は、生体粒子を含む第一液体が流れる流路61と、第二液体が流れる流路62-1及び62-2とを含み、第一液体がエマルション粒子(分散質)を形成し、第二液体がエマルションの分散媒を形成している。流路61と流路62-1及び62-2とが合流しており、この合流地点において、エマルション粒子が形成される。そして、当該エマルション粒子の内部に、生体粒子63が隔離される。例えば、これら流路の流速を制御することによって、エマルション粒子のサイズを制御することができる。なお、エマルションを形成するために、前記第一液体及び前記第二液体は互いに非混和性である。例えば、前記第一液体が親水性の液体であり、且つ、前記第二液体は疎水性の液体であってよく、この反対であってもよい。また、図9に示されるマイクロ流路は、生体粒子破壊物質をエマルション粒子内に導入するための流路64を含みうる。流路64が、前記合流地点の直前において流路61に合流するようにマイクロ流路を構成することによって、エマルション粒子が形成される前に生体粒子が生体粒子破壊物質によって破壊されることを防ぐことができる。
次に、1つの生体粒子を含むエマルション粒子を含むエマルションをより効率的に形成するための装置の例を、図11を参照しながら説明する。当該エマルション形成装置によって、極めて高い確率で、1つのエマルション粒子内に1つの生体粒子を隔離することができ、空のエマルション粒子の数を減らすことができる。さらに、当該エマルション形成装置によって、1つのエマルション粒子内に1つの生体粒子且つ1つのバーコード配列を隔離する確率も高められる。
図11は、当該装置においてエマルション粒子を形成するために用いられるマイクロチップの実施形態の一例を模式的に示す図である。図11に示されるマイクロチップ150は、サンプル液インレット151及びシース液インレット153が設けられている。また、これらインレットから生体粒子を含むサンプル液及び生体粒子を含まないシース液が、それぞれサンプル液流路152及びシース液流路154に導入される。マイクロチップ150は、前記サンプル液が流れるサンプル液流路152及び前記シース液が流れるシース液流路154が合流部162で合流して主流路155となる流路構造を有する。当該サンプル液及び当該シース液が合流部162で合流して、サンプル液の周囲がシース液で囲まれた層流が形成される。当該層流は、主流路155を、粒子分取部157に向かって流れる。好ましくは、生体粒子は、主流路155内を一列に並んで流れている。主流路155中、検出領域156にて、生体粒子に対して光照射が行われる。
この光照射により生じた光を検出部192が検出する。検出部192により検出された光の特徴に応じて、制御部193に含まれる判定部が、生体粒子が回収対象粒子であるか否かを判定する。粒子分取部157では、回収対象粒子が流れてきた場合にのみ、主流路155から回収流路159へ入る流れが形成されて、回収対象粒子が回収流路159内へ回収される。一方で、回収対象粒子でない微小粒子は、廃棄流路158へと流れる。
また、マイクロチップ150は、当該マイクロチップ150に加えて、光照射部191、検出部192、及び制御部193を含む生体粒子分取装置の一部を構成しうる。制御部193は、信号処理部、判定部、及び分取制御部を含む。すなわち、前記生体粒子分取装置が、上述したエマルション形成装置として用いられうる。
1つの目的とする生体粒子を含むエマルション粒子を含むエマルションを形成するために、例えば、マイクロチップ150において、生体粒子を含む第一液体を主流路155に流す通流工程と、主流路155を流れる生体粒子が回収対象粒子であるか否かを判定する判別工程と、回収対象粒子を回収流路159内へと回収する回収工程とが実行されうる。ここで、判別工程が、上述した(2-7-1)において述べた判別工程に相当する。回収工程が、上述した(2-7-2)において述べた粒子隔離工程に相当する。
(2-8)破壊工程S8
破壊工程S8においては、微小空間内で前記生体粒子が破壊される。破壊に伴い、例えば、前記生体粒子に生体粒子捕捉部16を介して結合していた捕捉用デバイス1が、前記生体粒子から解離してよい。なお、破壊された前記生体粒子の構成成分のうち、生体粒子捕捉部16と結合していた成分は、当該破壊後も、捕捉用デバイス1に、生体粒子捕捉部16を介して結合していてもよい。
破壊工程S8において、捕捉用デバイス1に含まれている分子捕捉用配列部15により、前記生体粒子を構成又は結合している標的分子が捕捉される。これにより、捕捉用デバイス1と標的分子との複合体が形成され、後述する標的分子分析工程S9において、当該標的分子を捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列部13と関連付けることができる。すなわち、このようにして形成された複合体が、後述する標的分子分析工程S9において分析される。
破壊工程S8は、好ましくは、前記微小空間内への生体粒子の隔離状態が維持されながら実行される。これにより、捕捉用デバイス1と標的分子との複合体の形成が効率的に行われる。また、標的分子が、微小空間外に存在する分子捕捉用配列部15と結合することを防ぐことができる。前記微小空間がエマルション粒子内の空間を意味する場合、前記隔離状態の維持は、エマルション粒子の維持を意味してよく、特には、エマルション粒子が破壊されないことを意味する。前記微小空間がウェル内の空間を意味する場合、前記隔離状態の維持は、ウェル内の成分が当該ウェルに留まることを意味してよく、更には、ウェルに他のウェル内の成分が侵入しないことを意味してよい。
また、上述した捕捉工程S2において、核酸結合抗体が生体粒子に結合している場合、破壊工程S8において、当該核酸結合抗体が生体粒子から解離する。そして、当該核酸結合抗体が標的分子に結合し、当該核酸結合抗体と当該標的分子との複合体が形成されうる。例えば、第一核酸201を構成するポリA配列が、標的物質である生体粒子内mRNAに結合しうる。そして、第一核酸201には、抗体バーコード配列を含む第二核酸202が結合しているので、標的分子を当該抗体バーコード配列と関連付けることができる。このようにして形成された複合体が、後述する標的分子分析工程S9において分析される。
また、破壊工程S8は、化学的に又は物理的に生体粒子を破壊することにより実行されうる。
化学的な生体粒子の破壊のために、生体粒子破壊物質と生体粒子とが微小空間内で接触させられてよい。当該生体粒子破壊物質は、生体粒子の種類に応じて当業者により適宜選択されてよい。生体粒子が細胞又はエクソソームである場合、生体粒子破壊物質としては、例えば、脂質二重膜破壊成分が用いられてよく、具体的には、例えば、界面活性剤、アルカリ成分、酵素などが挙げられる。
前記微小空間がウェル内の空間である場合、例えば各ウェルに生体粒子破壊物質を添加することによって、破壊が実施される。各ウェルは互いに隔離されているので、破壊が行われても、ウェル内の成分はそのウェル内に維持される。また、前記微小空間がエマルション粒子内の空間である場合、例えば、エマルション粒子形成と同時に生体粒子破壊物質をエマルション粒子内に導入されうる。そして、エマルション粒子形成後に、当該生体粒子破壊物質による生体粒子の破壊が実施されうる。
物理的な生体粒子の破壊のために、生体粒子を破壊する物理刺激が生体粒子に与えられうる。物理刺激を生体粒子に与えるための処理としては、例えば、光学的処理、熱的処理、電気的処理、音響的処理、凍結融解処理、機械的処理などが挙げられる。これらの処理によって、細胞又はエクソソームを破壊することができる。これらの処理による物理的な生体粒子の破壊は、前記微小空間がウェル内の空間である場合及びエマルション粒子内の空間である場合の両方に適用することができる。前記微小空間がエマルション粒子内の空間である場合は、特には、光学的処理、熱的処理、電気的処理、及び凍結融解処理が好適である。
また、破壊工程S8において、捕捉用デバイス1に含まれる回収用配列部17が用いられてよい。捕捉用デバイス1には標的分子が結合していてよく、回収用配列部17を用いることで、標的分子を効率的に回収することができる。すなわち、破壊工程S8は、回収用配列部17を用いて捕捉用デバイス1(特には、捕捉用デバイス1に結合した標的分子)を回収する工程を含みうる。
(2-9)標的分子分析工程S9
標的分子分析工程S9においては、生体粒子に関する分析が行われる。特には、標的分子分析工程S9において、前記標的分子の分析が行われる。当該分析の手法は、標的分子の種類及び分析の目的に応じて当業者により適宜決定されてよい。
本技術において、標的分子分析工程S9において、バーコード配列部13の配列と前記標的分子とが関連付けられる。具体的には、上述した関連付け工程S5において、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記標的分子に付与されたバーコード配列部13の配列により得られた分析結果とが、当該配列を介して連結される。これにより、Morphology、Phenotype、Genotypeなどの関連付けが可能となり、特に、ゲノム編集などの遺伝子改変技術を用いて改変された細胞を準備した場合には、意図的に遺伝子変異を挿入された細胞のMorphology、Phenotype、Genotypeなどが関連付けられたデータセットの構築も可能となる。
上述した隔離工程S7において、1つの微小空間内に1つの生体粒子が隔離され、且つ、当該生体粒子を捕捉している複数の捕捉用デバイス1はいずれも同じバーコード配列部13の配列を有する。そのため、前記関連付けを実行することによって1つのバーコード配列部13の配列に関連付けられた分析結果はいずれも、1つに由来するものであり、これにより、当該1つの生体粒子の解析のために形態情報と、前記分析結果とが、バーコード配列を介して連結できる。
標的分子分析工程S9では、上述した破壊工程S8においてバーコード配列部13の配列を含む捕捉用デバイス1が標的分子と結合されているので、複数の微小空間にそれぞれ存在する異なる生体粒子を一括して分析した場合においても、前記配列に基づき、分析結果を各生体粒子に関連付けることができる。
例えば、前記微小空間がウェル内の空間である場合、ウェル内の生体粒子破壊産物それぞれが、別々に分析されてよく、複数のウェルの生体粒子破壊産物を1つの試料としてまとめ、当該1つの試料に対して一括して分析が行われてもよい。前者の場合は、生体粒子と分析結果とを対応付けることが容易である。また、後者の場合においても、各生体粒子破壊産物中の標的分子は、バーコード配列部13の配列を含む捕捉用デバイス1、又は抗体バーコードの配列を含む核酸結合抗体と複合体を形成しているので、各生体粒子とその分析結果とを対応付けることができる。
また、前記微小空間がエマルション粒子内の空間である場合、複数のエマルション粒子を一括して分析してよく、例えば、得られたエマルション全体を一括して分析してもよい。各生体粒子破壊産物中の標的分子は、バーコード配列を含む捕捉用デバイス1、又は抗体バーコード配列を含む核酸結合抗体と複合体を形成しているので、各生体粒子とその分析結果とを対応付けることができる。これにより、分析効率を向上させることができる。
標的分子分析工程S9において、生体粒子の分析が行われる場合、当該分析は、例えば、破壊工程S8において形成された捕捉用デバイス1と標的分子との複合体に対して実行されてよく、及び/又は、核酸結合抗体と標的分子との複合体に対して実行されてよい。捕捉用デバイス1及び核酸結合抗体はそれぞれバーコード配列部13の配列及び抗体バーコードの配列を含むものであるので、これらの配列に基づき、標的分子が由来する生体粒子を特定することができる。
前記標的分子が塩基配列を有する場合、具体的には、例えば、RNA(特には、mRNA)又はDNAである場合、標的分子分析工程S9において、前記標的物質の塩基配列に対するシークエンシング処理が行われてよい。当該シークエンシング処理は、例えば、次世代シークエンサーにより実行されてよい。
標的分子分析工程S9における分析は、例えば、捕捉用デバイス1に含まれる増幅用配列部12を用いて実行されてよい。すなわち、標的分子分析工程S9は、増幅用配列部12を用いた核酸増幅工程を含む。これにより、例えば、捕捉用デバイス1に結合した核酸(特には、mRNA)が増幅されうる。そして、当該核酸の配列をシークエンシング処理することによって、核酸に関する情報を取得することができる。また、増幅に伴い、バーコード配列部13の配列も増幅されうる。これにより、当該核酸に関する情報を、捕捉用デバイス1に含まれるバーコード配列部13の配列と関連付けることができ、更には、生体粒子と関連付けることもできる。
標的分子分析工程S9は、分析装置を用いて行われてよい。分析装置は、例えば、前記複合体に対するシークエンシング処理を行う装置でありうる。当該シークエンシング処理は、例えば、標的分子が、核酸、特には、DNA又はRNA、より特には、mRNAである場合に行われる。シークエンシング処理は、シークエンサーにより行われてよく、次世代型シークエンサー又はサンガー法によるシークエンサーにより行われよい。複数の生体粒子(特には、細胞集団)の網羅的な解析をより高速に行うために、シークエンシング処理は、次世代型シークエンサーにより行われうる。
標的分子分析工程S9において、シークエンシング処理結果に基づき、生体粒子毎に構成成分が分析されうる。例えば、標的分子分析工程S9において、生体粒子毎に含まれるmRNAの配列及び/又は各mRNAのコピー数が決定されうる。また、標的分子分析工程S9において、生体粒子毎に抗原の種類及び/又は数や、転写因子の種類及び/又は数が決定されうる。このような生体粒子毎の構成成分の分析は、シークエンス処理により決定された配列中のバーコード配列の配列に基づき行われうる。例えばシークエンス処理により決定された多数のバーコード配列の配列の中から、同じバーコード配列の配列を含む配列が選択される。同じバーコード配列の配列を含む配列は、1つの細胞に取り込まれた標的分子に基づくものである。そのため、バーコード配列の配列毎に構成成分を分析することは、生体粒子毎に構成成分を分析することを意味する。
(3)フロー例2
図12は、フロー例2を説明するフローチャートである。本技術に係る生体粒子解析方法のフローの一例について、図12を参照しながら詳細に説明する。なお、準備工程S1、捕捉工程S2と、撮像工程S3と、配列解析工程S4と、関連付け工程S5と、開裂工程S6、隔離工程S7、破壊工程S8、標的分子分析工程S9については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
(3-1)刺激付与工程S10
フロー例2では、捕捉工程S2の後に、刺激付与工程S10を更に含む。刺激付与工程S10においては、前記生体粒子に対して薬剤による刺激を与える。これにより、刺激付与による経時的な観察を実施することができ、薬剤応答や薬剤耐性などを観察して、特徴量を含む形態情報を入手できる。その結果、創薬スクリーニングへの応用として、高スループット且つ低コストな手法となりうる。刺激付与工程S10の後は、図12に示すように、撮像工程S3へ移行する。
刺激は、捕捉された生体粒子に応じて当業者により適宜選択される。例えば、T細胞である場合、T cell receptorが認識しうる抗原刺激や抗原が固定されたテトラマーやペンタマーなど、増殖を促進するanti-CD3 antibody、anti-CD3/CD28 antibodyなどが挙げられる。また、IL-2、IL-7、IL-15、IL-22等のサイトカインなども挙げられる。B細胞の場合、B cell receptorが認識しうる抗原刺激であってよく、抗原が固定されたテトラマーやペンタマーなどが挙げられる。患者由来のがん細胞やcancer cell lineの場合、抗がん剤として承認されている薬剤が選択されうる。抗がん剤には、例えば、細胞障害性抗がん剤、分子標的薬(例えば、小分子化合物(例えば、チロシンキナーゼ阻害薬、マルチキナーゼ阻害薬、mTOR阻害薬など)、抗体薬(例えば、抗HER2抗体薬、抗上皮成長因子受容体抗体など)、核酸薬など)、内分泌療法薬などが挙げられる。
また、薬剤を添加することで、例えば、密度を低して細胞などを播種して捕捉後、細胞増殖させることも可能となる。したがって、刺激応答を受けて増殖した細胞の、特徴量を含む形態情報と分子情報とを統合することもできる。
(4)フロー例3
図13は、フロー例3を説明するフローチャートである。本技術に係る生体粒子解析方法のフローの一例について、図14を参照しながら詳細に説明する。なお、準備工程S1、捕捉工程S2と、撮像工程S3と、配列解析工程S4と、関連付け工程S5と、開裂工程S6、隔離工程S7、破壊工程S8、標的分子分析工程S9については、上述したものと同様であるため、ここでは説明を割愛する。
(4-1)学習済みモデル作成工程S11
フロー例3では、標的分子分析工程S9の後に、学習済みモデル作成工程S11を更に含む。刺激付与工程S10においては、前記生体粒子に関する形態情報と、前記標的分子に関する情報とを用いて、学習済みモデルを作成する。
具体的には、上述した標的分子分析工程S9において連結された、撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記標的分子に付与されたバーコード配列により得られた前記分析結果との関連付けデータを用いて、データセットを構築する。そして、複数のデータセットを、例えば、情報処理装置2に格納し、データベースを作成する。
(4-2)推論工程S12
図14は、推論工程S12について説明する概念図である。上述した学習済みモデル作成工程S11にて作成されたデータベース70は、例えば、推論部71や学習部72とリンクしており、図14で示す測定部(特には、上述した撮像装置3)を介して得られた撮像画像情報や、これに基づき得られた形態情報に基づいて、前記分子に関する情報を推定する。例えば、説明変数は撮像画像情報から抽出された特徴量とし、目的変数は標的分子に関する情報となり、前記推論部71から、生体粒子由来の分子情報を推論できる。したがって、分子アッセイをする必要が無い。
また、非染色の画像から標的分子に関する情報を得ることができると、時間やコストの削減にも繋がる。更に、細胞治療に使う細胞に対して、細胞構成が非染色で特定でき、最適な培養条件を提示できる。加えて、抗原情報が無くとも、活性化されたT細胞やB細胞を特定でき、細胞治療や抗体開発への応用が期待できる。すなわち、本技術に係る生体粒子解析方法は、試薬を用いた染色などを回避したい用途においても有用である。
生体粒子由来の分子情報としては、例えば、細胞タイプ(サブタイプを含む。)の特定、遺伝子変異の特定(例えば、薬剤耐性遺伝子の有無など)、細胞周期や活性/不活性などの細胞状態の特定(免疫細胞、特には、T細胞の抗原特異的反応の有無など)等が挙げられる。また、シングルセルレベルにおいて高スループット且つ低コストで、前記生体粒子に関する形態情報と、前記標的分子に関する情報とを統合して学習済みモデル(予測モデルを含む。)を構築できることから、標的分子を直接測定する手間やコストも省ける。
なお、本技術では、以下の構成を採用することもできる。
〔1〕
開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉用デバイスと、
撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける情報処理装置と、
を含む、生体粒子解析システム。
〔2〕
前記情報処理装置は、前記生体粒子の形態情報に基づき特徴量を抽出する、〔1〕に記載の生体粒子解析システム。
〔3〕
前記バーコード配列部は、前記表面の位置情報と予め関連付けられている、〔1〕又は〔2〕に記載の生体粒子解析システム。
〔4〕
前記バーコード配列部には、IDナンバーが付与されており、
前記情報処理装置は、前記特徴量と、前記IDナンバーとを関連付ける、〔2〕に記載の生体粒子解析システム。
〔5〕
前記生体粒子は、薬剤による刺激が与えられたものである、〔1〕から〔4〕のいずれかの生体粒子解析システム。
〔6〕
前記情報処理装置は、機械学習により得られる学習済みモデルを作成し、
前記学習済みモデルは、前記生体粒子に関する形態情報を入力し、関連する分子情報データを出力する、〔1〕から〔5〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔7〕
前記学習済みモデルを用いて、前記生体粒子に関する形態情報から前記分子に関する情報を推定する、〔6〕に記載の生体粒子解析システム。
〔8〕
前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像装置、を更に含む、〔1〕から〔7〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔9〕
前記生体粒子は、細胞又は細胞塊である、〔1〕から〔8〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔10〕
撮像画像情報に基づき得られた生体粒子に関する形態情報と、前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける、情報処理装置。
〔11〕
開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉工程と、
前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像工程と、
前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列を解析する配列解析工程と、
前記撮像工程で得られた撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記配列解析工程で得られたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける関連付け工程と、
を含む、生体粒子解析方法。
〔12〕
前記生体粒子に対して薬剤による刺激を与える刺激付与工程、を更に含む、〔11〕に記載の生体粒子解析方法。
〔13〕
前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子に関する情報とを用いて、学習済みモデルを作成する学習済みモデル作成工程、を更に含む、〔11〕又は〔12〕に記載の生体粒子解析方法。
〔1〕
開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉用デバイスと、
撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける情報処理装置と、
を含む、生体粒子解析システム。
〔2〕
前記情報処理装置は、前記生体粒子の形態情報に基づき特徴量を抽出する、〔1〕に記載の生体粒子解析システム。
〔3〕
前記バーコード配列部は、前記表面の位置情報と予め関連付けられている、〔1〕又は〔2〕に記載の生体粒子解析システム。
〔4〕
前記バーコード配列部には、IDナンバーが付与されており、
前記情報処理装置は、前記特徴量と、前記IDナンバーとを関連付ける、〔2〕に記載の生体粒子解析システム。
〔5〕
前記生体粒子は、薬剤による刺激が与えられたものである、〔1〕から〔4〕のいずれかの生体粒子解析システム。
〔6〕
前記情報処理装置は、機械学習により得られる学習済みモデルを作成し、
前記学習済みモデルは、前記生体粒子に関する形態情報を入力し、関連する分子情報データを出力する、〔1〕から〔5〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔7〕
前記学習済みモデルを用いて、前記生体粒子に関する形態情報から前記分子に関する情報を推定する、〔6〕に記載の生体粒子解析システム。
〔8〕
前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像装置、を更に含む、〔1〕から〔7〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔9〕
前記生体粒子は、細胞又は細胞塊である、〔1〕から〔8〕のいずれかに記載の生体粒子解析システム。
〔10〕
撮像画像情報に基づき得られた生体粒子に関する形態情報と、前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける、情報処理装置。
〔11〕
開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉工程と、
前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像工程と、
前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列を解析する配列解析工程と、
前記撮像工程で得られた撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記配列解析工程で得られたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける関連付け工程と、
を含む、生体粒子解析方法。
〔12〕
前記生体粒子に対して薬剤による刺激を与える刺激付与工程、を更に含む、〔11〕に記載の生体粒子解析方法。
〔13〕
前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子に関する情報とを用いて、学習済みモデルを作成する学習済みモデル作成工程、を更に含む、〔11〕又は〔12〕に記載の生体粒子解析方法。
1:捕捉用デバイス
11:リンカー
12:増幅用配列部
13:バーコード配列部
14:UMI部
15:分子捕捉用配列部
16:生体粒子捕捉部
17:回収用配列部
2:情報処理装置
21:処理部
22:記憶部
23:ユーザインターフェース部
24:出力部
3:撮像装置
4:流体制御部
150:マイクロチップ
100:生体粒子解析システム
101:表面
102:分析用基板
103:撮像素子
104:光源
11:リンカー
12:増幅用配列部
13:バーコード配列部
14:UMI部
15:分子捕捉用配列部
16:生体粒子捕捉部
17:回収用配列部
2:情報処理装置
21:処理部
22:記憶部
23:ユーザインターフェース部
24:出力部
3:撮像装置
4:流体制御部
150:マイクロチップ
100:生体粒子解析システム
101:表面
102:分析用基板
103:撮像素子
104:光源
Claims (13)
- 開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉用デバイスと、
撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける情報処理装置と、
を含む、生体粒子解析システム。 - 前記情報処理装置は、前記生体粒子の撮像画像情報に基づき特徴量を抽出する、請求項1に記載の生体粒子解析システム。
- 前記バーコード配列部は、前記表面の位置情報と予め関連付けられている、請求項1に記載の生体粒子解析システム。
- 前記バーコード配列部には、IDナンバーが付与されており、
前記情報処理装置は、前記特徴量と、前記IDナンバーとを関連付ける、請求項2に記載の生体粒子解析システム。 - 前記生体粒子は、薬剤による刺激が与えられたものである、請求項1に記載の生体粒子解析システム。
- 前記情報処理装置は、機械学習により得られる学習済みモデルを作成し、
前記学習済みモデルは、前記生体粒子に関する形態情報を入力し、関連する分子情報データを出力する、請求項1に記載の生体粒子解析システム。 - 前記学習済みモデルを用いて、前記生体粒子に関する形態情報から前記分子に関する情報を推定する、請求項6に記載の生体粒子解析システム。
- 前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像装置、を更に含む、請求項1に記載の生体粒子解析システム。
- 前記生体粒子は、細胞又は細胞塊である、請求項1に記載の生体粒子解析システム。
- 撮像画像情報に基づき得られた生体粒子に関する形態情報と、前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける、情報処理装置。
- 開裂可能なリンカーと生体粒子捕捉部と分子捕捉用配列部とバーコード配列部とが、前記リンカーを介して固定されている表面に、前記生体粒子捕捉部を介して生体粒子を捕捉する捕捉工程と、
前記表面に捕捉された前記生体粒子を撮像する撮像工程と、
前記分子捕捉用配列部によって捕捉された前記生体粒子由来の分子に付与されたバーコード配列部の配列を解析する配列解析工程と、
前記撮像工程で得られた撮像画像情報に基づき得られた前記生体粒子に関する形態情報と、前記配列解析工程で得られたバーコード配列部の配列に基づき得られた前記分子に関する情報とを関連付ける関連付け工程と、
を含む、生体粒子解析方法。 - 前記生体粒子に対して薬剤による刺激を与える刺激付与工程、を更に含む、請求項11に記載の生体粒子解析方法。
- 前記生体粒子に関する形態情報と、前記分子に関する情報とを用いて、学習済みモデルを作成する学習済みモデル作成工程、を更に含む、請求項11に記載の生体粒子解析方法。
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