WO2021039873A1 - ウイルスの非構造タンパク質が担持された複合タンパク質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン - Google Patents

ウイルスの非構造タンパク質が担持された複合タンパク質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン Download PDF

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amino acid
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virus
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隆史 上野
ダン クエ ギュエン
片山　和彦
玲子 戸高
慧 芳賀
成史 澤田
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国立大学法人東京工業大学
学校法人北里研究所
デンカ株式会社
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    • C12N2795/10111—Myoviridae
    • C12N2795/10122—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Definitions

  • the present invention is an invention relating to a functional protein and a vaccine using the same, and more specifically, a complex protein (monomer) of a non-structural protein of a virus which is an immunogen and a molecular needle and the monomer.
  • the present invention relates to an aggregate of the above, and a component vaccine containing the aggregate as an active ingredient (infection defense antigen).
  • Patent Document 1 A technique for a "molecular needle” invented focusing on the excellent gene transfer function of bacteriophage into cells is provided.
  • Patent Document 2 The present inventors have made an invention to provide a complex polypeptide in which a structural protein of norovirus is carried on this molecular needle as a component vaccine against norovirus, and have filed a patent application for this (Patent Document 2).
  • Vaccines are "live vaccines” that use pathogenic microorganisms such as viruses with weakened toxicity as infection defense antigens, “inactivation vaccines” that use all killed pathogenic microorganisms as infection defense antigens, and not infectious pathogenic microorganisms. It is roughly divided into “component vaccines” that use some (component) proteins and sugar chains as infection defense antigens, and “toxoids” that use toxins produced by denatured pathogens as infection defense antigens.
  • the norovirus component vaccine described in Patent Document 2 is a vaccine in which a structural protein of norovirus is carried on a molecular needle to acquire immunity to the structural protein introduced into the cell by the cell introduction function of the molecular needle.
  • the component vaccines currently in practical use are components of the pathogen, that is, humoral immunity to the structure is acquired immunity, and a group of microbial enzymes (non-) produced when the pathogen self-replicates in the host body. It cannot induce acquired immunity to structural proteins).
  • the live vaccine since the live vaccine is the microorganism itself (attenuated) that does not express pathogenicity, it expresses a non-structural protein for the microorganism to replicate. Therefore, the live vaccine can induce integrated (cell-mediated immunity plus humoral immunity) acquired immunity in the inoculator's body, which also targets the pathogen replication mechanism.
  • live vaccines are vaccines that use the live pathogenic virus itself, albeit attenuated, so there are specific risks. For example, there is a risk that an attenuated pathogenic virus, which is extremely rare, will be thrown back to a highly virulent pathogenic virus by mutation. In addition, even an attenuated pathogenic virus has a risk of causing toxicity in humans with weakened immunity.
  • non-structural protein pathogenic virus non-structural protein
  • the aggregate (trimer and / or hexamer) of the molecular needle carrying the non-structural protein alone or in combination with the molecular needle carrying the structural protein can be used as an active ingredient of the component vaccine.
  • the non-structural protein is a protein involved in a function such as proliferation of a pathogenic virus in a host, and it is difficult to accept an amino acid mutation in order to maintain the function, and the gene mutation is extremely low as compared with the structural protein. Therefore, within the same pathogenic virus species, there is a high possibility that immunogenicity will be common even if the virus strains are different, and even pathogenic virus species with a high frequency of structural protein mutation can effectively acquire immunity. It is possible.
  • the subjects provided by the present invention are (1) a "complex protein” (hereinafter, also referred to as a complex protein of the present invention) in which a non-structural protein that is an immunogen is carried on a molecular needle, and (2) this is a monomer. (Hereinafter, collectively referred to as the aggregate of the present invention), and (3) a “component vaccine” (hereinafter, also referred to as the vaccine of the present invention) containing the aggregate as an active ingredient (protective antigen for infection). is there.
  • the “component vaccine” is a component vaccine that requires an active ingredient (immune-infectious antigen), and the above-mentioned live vaccine, inactivated vaccine, and toxoid are excluded from this.
  • the active ingredient of the vaccine of the present invention contains an aggregate of the present invention (containing a trimer and / or a hexamer) as an infection protective antigen.
  • the complex protein of the present invention is a complex protein having the amino acid sequence of the following formula (1), and is a precursor molecule of the aggregate of the present invention.
  • the following formula (1), connecting to each other a predetermined amino acid sequences in (2) "-" is, W, L 1, X n, in order to clarify the distinction between the amino acid sequences between which collectively conceptually such as Y Is a simple molecular binding (substantially a peptide bond) indication.
  • W represents an amino acid sequence containing one or more of the non-structural proteins of the pathogenic virus that is the immunogen, and L 1 represents the first linker sequence having 0-100 amino acids.
  • X indicates the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
  • Y indicates the amino acid sequence of the cell introduction region
  • the number of repetitions n of X is an integer of 1-3.
  • the amino acid sequence of the cell introduction region Y is the following formula (2): Y 1- L 2- Y 2- Y 3 (2)
  • Y 1 represents any one amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 2-5
  • Y 2 represents any one amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 6-9.
  • L 2 indicates a second linker sequence having 0-30 amino acids
  • Y 3 indicates an amino acid sequence for modification
  • Y 2 or Y 3 may not be present.
  • n which is the number of repetitions of the amino acid sequence X in the above X n, is preferably 1, but may be 2 or 3.
  • the modified amino acid sequence in which one or more amino acids are deleted, substituted or added among the amino acid sequences represented by X n , Y 1 or Y 2 is included in the above formula (1).
  • “Deletion” means that any amino acid residue in the amino acid sequence of each SEQ ID NO: defined in the above formula (1) is deleted, and the N-terminal side (previous) of the deleted amino acid residue is deleted. ) And the amino acid residue on the C-terminal side (after) are linked by a peptide bond (in the case of deletion of the N-terminal amino acid residue and the C-terminal amino acid residue, the amino acid residue is simply deleted. The number of the deleted residues is counted as the "number of amino acid deletions".
  • substitution means that any amino acid residue in the amino acid sequence of each SEQ ID NO: defined in the above formula (1) is replaced with “another amino acid residue”, and the replaced amino acid residue is It is in a state of being connected to each amino acid residue on the N-terminal side (front) and C-terminal side (rear) by a peptide bond (in the case of substitution of the N-terminal amino acid residue, a peptide bond with the amino acid residue on the C-terminal side). In the case of substitution of a C-terminal amino acid residue, only a peptide bond with an amino acid residue on the N-terminal side), the number of the substituted amino acid residues is counted as "the number of amino acid substitutions".
  • “Addition” means that one or more new amino acid residues are inserted at any one or more peptide bond positions in the amino acid sequence of each SEQ ID NO: defined in the above formula (1). It is a state in which a new peptide bond is formed in the state. The content and number of modifications of these amino acid residues can be determined by aligning the amino acid sequence related to the above formula (1) with the amino acid sequence related to the modification on a computer using human power or software capable of analyzing the amino acid sequence. By doing so, it can be clarified.
  • linker sequence L 1 or L 2 defined by the above formula (1) or the amino acid sequence Y 3 for modification is an arbitrary sequence as necessary within the range of the number of amino acid residues defined above. Can be selected.
  • the trimer or hexamer (below) of the modified complex protein of the modified amino acid sequence has substantially the same immunostimulatory activity as the trimer or hexamer of the complex protein of the above formula (1). It is preferable to have.
  • “Substantially equivalent” means that when a method established for confirmation of immunostimulatory activity such as "neutralization test" is used, the significant difference in immunostimulatory activity from the unmodified complex protein of the amino acid sequence is defined. The degree of equivalence is not recognized at the significance level within 5%.
  • the number of modifications is 8 n or less for X n, preferably 4 n or less, more preferably 2 n or less;
  • Y 1 is 30 or less, preferably 20 or less, still more preferably 10 or less; and
  • Y 2 is 15 or less. It is preferably within 10 pieces, preferably within 10 pieces, and more preferably within 5 pieces;
  • W is an amino acid sequence containing one or more of all or part of the non-structural protein of the pathogenic virus.
  • Proteins encoded by genes of pathogenic viruses are roughly classified into structural proteins and non-structural proteins.
  • the structural protein is a protein that directly constitutes the structure of the virus, and examples thereof include a capsid protein, an envelope protein, and a core protein.
  • the non-structural protein is a protein encoded by a viral gene other than the structural protein, and is mainly an enzyme protein involved in the survival and proliferation of the virus in the host, and is expressed after the pathogenic virus invades the host. It is a protein. In “all or part of unstructured proteins", "all” means "all of the individual unstructured proteins of a given virus”.
  • the entire amino acid sequence thereof means the above "all”
  • the "part” means a part of the amino acid sequence of the P protein. doing.
  • the content is not limited as long as the antigenicity of the virus is recognized in "a part of each non-structural protein of a predetermined virus”.
  • the pathogenic virus for which a non-structural protein is selected as W is not particularly limited. It may be a DNA virus, an RNA virus, or a retrovirus. For example, poliovirus, measles virus, ruin virus, epidemic parotitis virus (mumps virus), varicella virus, yellow fever virus, rotavirus, herpes zoster virus (herpes virus), influenza virus, norovirus, mad dog disease virus, Japan RS virus (RSV) as well as pathogenic viruses of infectious diseases for which vaccines are currently provided such as encephalitis virus, hepatitis virus (hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, etc.), human papillomavirus, HIV, Ebola virus, etc. These include pathogenic viruses for infectious diseases for which such vaccines are not provided.
  • One of the features of the vaccine of the present invention is that it can be an effective vaccine against an infectious disease virus for which a vaccine is not currently provided.
  • the types of animals that can be infected with the pathogenic virus are not particularly limited, and animals in demand for vaccines other than humans, such as domestic animals such as cattle, horses, sheep, pigs, goats, and chickens, dogs, etc. Pets such as cats are also exemplified.
  • the non-structural protein to be specifically selected is individually and specifically selected according to the type of the target virus, and is RNA polymerase, DNA polymerase, reverse transcription enzyme, protease, Vpg, NTPase, DNA binding protein, RNA binding. Proteins, transcription factors, phosphorylated proteins, L proteins, N proteins and the like can be specified and selected from information on known viral unstructured proteins. In addition, proteins whose functions have not been clarified at this time but which have functions as non-structural proteins in the future and proteins which have both structural and non-structural functions are also non-structural. Included in protein.
  • non-structural proteins of RS virus examples include NS-1 protein, NS-2 protein, N protein, P protein, M2-1 protein, L protein and the like.
  • N protein, P protein, M2-1 protein, and L protein are bound to the genomic RNA inside the virus particle, and these are RNP (complex of RNA and other viral proteins, ribonucleoprotein complex). It functions as (called nucleocapsid).
  • RNP complex of RNA and other viral proteins, ribonucleoprotein complex
  • nucleocapsid functions as (called nucleocapsid).
  • These non-structural proteins that make up RNP are also contained in RS virus particles, but since they are a group of enzymes that transcribe viral messenger RNA and replicate the genome, they are abundant in cells after infection. It is synthesized.
  • the aggregate of the present invention is an aggregate containing the complex protein of the present invention as a monomer, and contains a trimer or a hexamer of the complex protein, or the trimer. Contains a mixture of body and hexamer.
  • the substance of the content of the aggregate of the present invention may be collectively referred to as "trimer and / or hexamer”.
  • the aggregate of the present invention is an aggregate containing a trimer or a hexamer having the complex protein of the present invention as a monomer.
  • the aggregate of the present invention is also defined as an aggregate formed by associating the complex protein of the present invention in an aqueous liquid.
  • the aggregate of the present invention may not form the above-mentioned aggregate depending on the compatibility between the protein to be carried and the molecular needle, but the complex protein of interest is contacted in an aqueous liquid, and the result is obtained by SDS-PAGE or the like.
  • SDS-PAGE SDS-PAGE or the like.
  • the trimer is a trimer protein in which the same or different complex protein of the present invention is used as a monomer protein, and the hexamer is a hexamer formed by associating two molecules of the trimer protein. It is a body protein.
  • the vaccine of the present invention is a vaccine containing the aggregate of the present invention as an active ingredient (protective antigen for infection), and is subcutaneous, intradermal, transdermal, mucosal, or muscle against a predetermined pathogenic virus. It is a component vaccine for internal administration. Specifically, the above-mentioned trimer and / or hexamer in which one or more of the peptides or proteins containing one or two or more non-structural proteins of the pathogenic virus is W is effective. It is a component vaccine for subcutaneous, intradermal, transdermal, mucosal, or intramuscular administration as an ingredient.
  • the above-mentioned trimer and / or hexamer used as an active ingredient carries all or a part of different non-structural proteins as W if the pathogenic virus strain that is the source of W, which is a non-structural protein, has the same genotype.
  • the active ingredient can be one kind or two or more kinds of the virus.
  • two or more of the units of active ingredients (W is a non-structural protein) between pathogenic viruses having different genotypes can be combined.
  • an aggregate of molecular needles carrying a” structural protein instead of the W (non-structural protein) of the trimer and / or hexamer of the present invention (three).
  • W non-structural protein
  • Patent Document 2 Containing a protein and / or a hexamer
  • this additional active ingredient it is also possible to add an aggregate in which the structural proteins of pathogenic viruses having different genotypes are W in combination as an active ingredient.
  • the structural protein portion may have a region to which a neutralizing antibody that loses the infectivity of the virus binds, and one or two or more of the peptide sequences containing the epitope or its vicinity are referred to as W. It is also possible to combine the combined aggregates.
  • the adjuvant can be contained in the vaccine of the present invention, for example, as a molecular needle carrying the B subunit of cholera toxin as W, but rather the adjuvant is excluded. It is preferable that the ability to obtain an adjuvant-free vaccine is prioritized as an advantage of the vaccine of the present invention.
  • the compounding ratio in the vaccine of the present invention can be selected according to the planning of the vaccine, and is not particularly limited.
  • the complex protein itself of the present invention can be produced by expressing the nucleic acid encoding the complex protein by a genetic engineering technique or synthesizing it by a peptide synthesis technique.
  • a trimer and a hexamer of the complex protein are spontaneously constructed, and a mixture containing the trimer and the hexamer is formed. Then, by further selectively separating and collecting the trimer or hexamer, the trimer and the hexamer can be produced separately.
  • the complex protein of the present invention when the complex protein of the present invention is produced by a genetic engineering method, the complex protein is biologically expressed, for example, by collecting, disrupting or lysing the expressed cells. It is an aggregate of the present invention in which association occurs spontaneously in an aqueous liquid such as water or various buffers used in the process of exposing the complex protein and further separating the complex protein by a known separation method. A mixture containing a trimeric and a hexamer can be obtained. Further, for example, by suspending the complex protein of the present invention produced by performing total chemical synthesis or split synthesis for each part and binding by a chemical modification method in an aqueous liquid such as water or various buffers. It can be spontaneously associated to give a mixture containing the trimer and hexamer which are the aggregates of the present invention.
  • the method for separating and collecting a trimer or a hexamer from the above-mentioned mixture containing a trimer and a hexamer is not particularly limited, and a known method for separating by molecular weight, for example, gel electrophoresis or affinity.
  • a known method for separating by molecular weight for example, gel electrophoresis or affinity.
  • Examples include molecular sieves such as chromatography and molecular exclusion chromatography, ion exchange chromatography and the like.
  • a transformant into which a nucleic acid encoding the complex protein of the present invention has been introduced is cultured in a liquid medium to express the complex protein, and spontaneously.
  • the aggregate of the present invention produced in this manner can be used as an active ingredient of the vaccine of the present invention.
  • the active ingredient (infection protection) of a component vaccine that efficiently introduces a non-structural protein of a virus that is an immunogen into cells of a target tissue by subcutaneous, intradermal, transdermal, mucosal, or intramuscular administration.
  • An aggregate of the complex protein capable of being produced, (3) a component vaccine containing the aggregate as an active ingredient is provided.
  • the proteins of F protein which is one of the structural proteins of RS virus, used in Example 3, the peptide corresponding to the region to which the neutralizing antibody binds (neutralizing epitope) is formed into a quadruple linkage form and used as an immunogen.
  • FIG. 1 It is a schematic diagram of the plasmid expressing the complex protein of the present invention carried. IgG and IgA 7 weeks after inoculation in the case of nasal inoculation of a vaccine containing an aggregate of the complex proteins of the present invention carrying a quadruple linkage form of the neutralized epitope peptide of F protein as an immunogen. It is a figure which shows the result of having examined the induction effect of.
  • Conjugated protein of the present invention which is an amino acid sequence formula representing the complex protein of the present invention: W-L 1- X n- Y (1)
  • W indicates an amino acid sequence containing one or two or more non-structural proteins of the virus that is the immunogen
  • L 1 indicates the first linker sequence having 0-100 amino acids.
  • X represents the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
  • Y represents the amino acid sequence of the cell introduction region
  • n is an integer of 1-3.
  • W includes an amino acid sequence based on the peptide composition of a part or all of the non-structural protein of the virus as described above.
  • “based” is a concept that includes not only the original peptide composition itself but also a modified amino acid sequence in which the amino acid sequence is modified.
  • L 1 showing a first linker sequence is necessary to suppress the steric hindrance reasonably keeping the distance immunogen W and molecular needle portion Y, the number of amino acid residues, the amino acid as described above
  • the number of residues is 0-100, preferably 4-40.
  • the specific contents of the sequence are not limited, but for example, (GGGGS) m and (PAPAP) m [m are repetition numbers, preferably an integer of 1-5, and particularly preferably 1-3. ] Etc. are exemplified. However, these are just examples.
  • X is a sequence of n times (integer times) of X in the amino acid sequence X n, which is composed of the amino acid of SEQ ID NO: 1.
  • Repetition format is the series of repetitions, for example, if X 2, "X-X" ( "-" peptide bond schematizes) is.
  • Xn the above-mentioned modification of the amino acid sequence is permitted.
  • n is an integer of 1-3 as described above, and 1 is preferable, but it may be 2 or 3.
  • the main purpose is to keep the distance of the molecular needle Y stable and appropriate according to the size and characteristics of the immunogen W.
  • the cell introduction region Y corresponds to the basic structure of the molecular needle and is based on the needle portion (intracellular introduction portion) of the tail of the bacteriophage, and formula (2): Y 1- L 2- Y 2- Y 3 (2)
  • Y 1 indicates an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 2-5
  • Y 2 indicates an amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 6-9
  • L 2 indicates the number of amino acids. It shows the second linker sequence of 0-30
  • Y 3 shows the amino acid sequence for a given modification
  • Y 2 or Y 3 may not be present.
  • It is a protein represented by.
  • Y 1 of the formula (2) up to 32 amino acids (32 Leu) on the N-terminal side are the amino acid sequences of the triple helix ⁇ -sheet structure of the bacteriophage T4. At least the N-terminal amino acid valine (1 Val) may be leucine (1 Leu).
  • the remaining C-terminal side is the amino acid sequence of the C-terminal portion of the bacteriophage needle protein. Examples of the amino acid sequence that can be used on the C-terminal side of Y 1 include the amino acid sequence of gp5 of bacteriophage T4, the amino acid sequence of gpV of bacteriophage P2, the amino acid sequence of gp45 of bacteriophage Mu, and gp138 of bacteriophage ⁇ 92.
  • Amino acid sequence and the like can be mentioned. More specifically, the amino acid sequence of the Y 1 as SEQ ID NO: 2 having the amino acid sequence of gp5 of bacteriophage T4 in the C-terminal side, SEQ number as Y 1 having the amino acid sequence of the gpV of bacteriophage P2 C-terminal 3 amino acid sequence, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 as Y 1 having the amino acid sequence of gp45 of bacteriophage Mu to C-terminal side, SEQ number as Y 1 having the amino acid sequence of gp138 of bacteriophage ⁇ 92 to C-terminal
  • the amino acid sequence of 5 is mentioned.
  • the nucleic acid sequence encoding the amino acid sequence of Y 1 can be selected according to the known relationship between the amino acid and the nucleobase.
  • Y 2 is the amino acid sequence of the region called foldon of bacteriophage T4, or the amino acid sequence of the region called bacteriophage P2 or bacteriophage Mu or bacteriophage ⁇ 92 tip.
  • the folon or tip is a region constituting the tip of a molecular needle structure called a bacteriophage fibritin.
  • Y 2 is present in the formula (2), by having the amino acid sequence of the foldon or tip, it is possible to improve efficiency of incorporation of molecular needle to the cell membrane, the Y 2 It is preferable to accompany it.
  • the amino acid sequence of the bacteriophage T4 earth is shown in SEQ ID NO: 6.
  • the nucleic acid sequence encoding this amino acid sequence can be selected according to the known relationship between the amino acid and the nucleobase.
  • the amino acid sequence of the bacteriophage P2 tip is shown in SEQ ID NO: 7.
  • the nucleic acid sequence encoding this amino acid sequence can be selected according to the known relationship between the amino acid and the nucleobase.
  • the amino acid sequence of the bacteriophage Mu tip is shown in SEQ ID NO: 8.
  • the nucleic acid sequence encoding this amino acid sequence can be selected according to the known relationship between the amino acid and the nucleobase.
  • the amino acid sequence of the tip of bacteriophage ⁇ 92 is shown in SEQ ID NO: 9.
  • the nucleic acid sequence encoding this amino acid sequence can be selected according to the known relationship between the amino acid and the nucleobase.
  • L 2 is a second linker interposed between Y 1 and Y 2.
  • Number of amino acids of the linker L 2 is a 0-30 carbon atoms, preferably a 0-5. When the number of amino acids in the linker is 0, it indicates that the second linker L 2 does not exist.
  • Y 3 is an amino acid sequence for modification, and can be selectively added and used in Y.
  • the amino acid sequence for the modification is added for the purpose of protein purification, protection, etc., and examples thereof include tag peptides such as histidine tag, GST tag, and FLAG tag.
  • a linker sequence can be appropriately added to Y 3 , and such a linker sequence itself can be a component of the amino acid sequence of Y 3.
  • the complex protein of the present invention can be produced by a known method, specifically, a genetic engineering method or a chemical synthesis method. It is also possible to produce all of the complex proteins of the present invention together, and it is also possible to produce each part and then bind the parts to each other by a chemical modification method. Bonding of polypeptides to each other via a linker (L 1 or L 2, etc.) can be performed by binding lysine residues or cysteine residues in each other's polypeptides with a linker having a succinimide group or a maleimide group. ..
  • a nucleic acid encoding all or part of the complex protein of the present invention to be produced is used as a transformant of a host cell such as Escherichia coli, yeast, insect cell, animal cell, or an Escherichia coli extract.
  • a host cell such as Escherichia coli, yeast, insect cell, animal cell, or an Escherichia coli extract.
  • Rabbit reticulated Escherichia coli extract, wheat germ extract and the like can be expressed in a cell-free expression system.
  • an expression vector in which these nucleic acids are incorporated one corresponding to each expression system can be used, for example, pET for Escherichia coli expression, pAUR for yeast expression, pIEx-1 for insect cell expression, animal cells. Examples thereof include pBApo-CMV for expression and pF3A for expression of wheat germ extract.
  • the chemical synthesis method it is possible to use a known chemical synthesis method for peptides. That is, it is possible to produce all or part of the complex protein of the present invention by using the liquid phase peptide synthesis method or the solid phase peptide synthesis method which has been established as a conventional method.
  • the solid-phase peptide synthesis method which is generally recognized as a suitable chemical synthesis method, can also use the Boc solid-phase method or the Fmoc solid-phase method, and as described above, the ligation method is required. It is also possible to use. Further, each amino acid can be produced by a known method, and a commercially available product can also be used.
  • FIG. 1 shows the process of constructing a trimer and a hexamer, which are aggregates of the present invention, based on the complex protein of the present invention.
  • 10 is a complex protein of the present invention as a monomer
  • 20 is a trimer of the present invention
  • 30 is a hexamer of the present invention.
  • the complex protein 10 of the present invention has "Y of formula (1)” in which "basic portion 131 corresponding to X n and Y 1 of formula (2)" and “foldon 132 corresponding to Y 2 of formula (2)” are bound. the corresponding molecular needle region 13 ', and, "wherein the immunogen 11 corresponding to W (1)” is "is configured attached via a linker 12" corresponding to L 1 of formula (1) There is. The illustration of the linkers other than the linker 12 and the modified sequence corresponding to Y 3 in the formula (2) is omitted.
  • the complex protein 10 of the present invention does not have a function of passing through the cell membrane of the cell of the target tissue.
  • the trimer 30 is a trimer formed by spontaneously associating the above-mentioned complex protein 10 as three monomers.
  • the trimer 30 has a trimer parallel ⁇ -sheet structure and a spiral structure due to the ⁇ -sheet structure itself (triple helix ⁇ -sheet) by gathering three molecular needle regions 13 and associating with each other at the C-terminals.
  • a needle-like structure called (structure) is formed, and molecular needles 13 ⁇ 3 are formed.
  • the molecular needle 13 ⁇ 3 is composed of a basic portion 131 ⁇ 3 and a foldon aggregate 132 ⁇ 3.
  • the hexamer 60 is a hexamer composed of two units of the above trimer 30 bonded at the N-terminal of the basic parts ((13 ⁇ 3) 1 and (13 ⁇ 3) 2) of each other's molecular needles. It is a body, and the hexamer 60 also has a cell membrane crossing function of cells of a target tissue.
  • Each linker six derived from the trimer (12 1, 12 2, 12 3 and, 12 5, 12 6:12 4 not shown), immunogens are respectively coupled to these linkers 6 pieces (11 1, 11 2, 11 3 and, 11 5, 11 6:11 4 is not shown), two molecules needle (13 ⁇ 3) 1 and (13 ⁇ 3) located outside the 2 doing.
  • the stability of this trimer or hexamer is extremely strong, for example, in an aqueous liquid environment at a temperature of 100 ° C., in an aqueous liquid environment at pH 2-11, and in an aqueous environment containing 50-70% by volume of an organic solvent. It is stable even in a liquid environment and is also excellent in safety. Even when isolated from an aqueous liquid and dried, the trimer or hexamer has excellent stability and cell membrane permeability.
  • the transition from the complex protein of the present invention to the aggregate proceeds spontaneously, usually becoming a hexamer, which is mostly the final form, but some remains as a trimer.
  • Vaccine of the present invention The vaccine of the present invention is administered subcutaneously, intradermally, or transdermally to cells of a target tissue due to the excellent cell permeability and immunogenicity of the aggregate of the present invention, which is the active ingredient thereof. It is possible to efficiently transfer some or all of the non-structural proteins of the virus that is the immunogenic source through administration, mucosal administration, or intramuscular administration to perform immunization, thereby subcutaneous administration or intradermal administration. , Transdermal administration, mucosal administration, or intramuscular administration can improve the efficacy and safety of viral component vaccines. The manifestation is that it can be used as an adjuvant-free vaccine.
  • the target mucosal tissue to be administered to the mucosa can be freely determined according to the nature of the target virus-affected site and the like, and is not particularly limited, but is limited to the nasal mucosa, throat mucosa, oral mucosa, bronchial mucosa, gastrointestinal mucosa, and vagina. Mucous membranes and the like can be mentioned.
  • a virus that causes airway inflammation such as RS virus
  • nasal mucosa, throat mucosa, oral mucosa, bronchial mucosa, sublingual mucosa, lung mucosa and the like are suitable.
  • a component vaccine containing only a molecular needle carrying the structural protein of the pathogenic virus described above as an active ingredient is disclosed here.
  • the vaccine of the present invention is provided as a pharmaceutical composition for subcutaneous administration, intradermal administration, transdermal administration, mucosal administration or intramuscular administration, which contains the above-mentioned aggregate of the present invention as an active ingredient (infection protective antigen).
  • a pharmaceutical composition for subcutaneous administration, intradermal administration, transdermal administration, mucosal administration or intramuscular administration which contains the above-mentioned aggregate of the present invention as an active ingredient (infection protective antigen).
  • subcutaneous administration, intradermal administration, transdermal administration, mucosal administration, or intramuscular administration of the aggregate in a buffer solution or the like is suspended and mixed at the time of use.
  • the morphology of the aggregate itself is also included in the pharmaceutical composition.
  • a spray as the dosage form for the above mucosal administration, a spray (aerosol, spray, etc.), a capsule, a coating agent, and the like are preferable forms.
  • the vaccine of the present invention comprises an aggregate of the present invention which is an essential active ingredient (protective antigen for infection), a molecular needle carrying a structural protein of a pathogenic virus as required, and an adjuvant (above) as required. (Including those in the form of molecular needles) and pharmaceutical preparation carriers are blended to prepare the form of the preparation composition.
  • the preparation carrier can be selected according to the mode of use, and excipients or diluents such as fillers, bulking agents, binders, wetting agents, disintegrants, and surfactants should be used. Can be done.
  • the form of the composition is basically a liquid preparation, but it can also be a desiccant, a powder preparation, a granule preparation or the like for diluting the liquid before use.
  • the amount of the aggregate of the present invention in the vaccine of the present invention is appropriately selected and is not constant, but is usually the present invention. It is preferable to use the aggregate as a liquid preparation containing 1-10% by mass at the time of administration.
  • the appropriate dose (inoculation) is about 0.01 ⁇ g-10 mg per adult, and if necessary, the initial inoculation and the booster inoculation are combined as appropriate, and one or more administrations (inoculation) are performed. It is possible.
  • An object of the present embodiment is to show the usefulness as an active ingredient of a component vaccine for a virus in the assembly of the present invention. Then, as a target to show this, RS virus (RSV) and orthopneumovirus were selected in view of the current difficulty and usefulness of vaccine production.
  • RS virus RSV
  • orthopneumovirus orthopneumovirus
  • Respiratory syncytial virus is widely distributed around the world and causes lifelong overt infections of all ages, but it is a very important pathogen, especially in infancy, despite the presence of maternally transferred antibodies. It causes the most serious symptoms in the first few weeks to months of life. In addition, there is a high risk of aggravation in low birth weight infants, underlying diseases in the cardiopulmonary system, and immunodeficiency, which has a great clinical and public health impact.
  • Vpg viral protein genome-linked
  • ORF1 open reading frame 1
  • ORF1 encodes a series of non-structural proteins of norovirus, the N-terminal protein, NTPase (p48), p22 (3A-like), Vpg, protease, and RNA-dependent RNA polymerase (RdRp), respectively.
  • Vpg of the immunogen LM14-2 strain used in this example is as shown in SEQ ID NO: 10 (where the N-terminal Met is derived from the start codon ATG).
  • the nucleic acid sequence encoding this can be selected according to the known relationship between amino acids and nucleobases.
  • HNV-VPg is the cDNA portion of the human norois LM14-2 strain incorporated in the plasmid pHuNoV-LM14-2F (1-1250 base: SEQ ID NO: 11) provided by Katayama of the Kitasato University Virus Infection Research Institute. 7640 bases: those contained in SEQ ID NO: 12) were used.
  • VPg is a sequence of 372 bases (SEQ ID NO: 13) corresponding to 2630 to 3028 bases of the cDNA portion (7640 bases) of this LM14-2 strain. The start codon ATG was added to the 5'end of this sequence and used for expression.
  • the UV-vis spectrum was measured with a SHIMADZU UV-2400PC UV-vis spectrometer.
  • the MALDI-TOF mass spectrum was measured by Bruker ultrafleXtreme.
  • MALDI-TOF-MS measurements show that the sample contains an equal volume of 70% (v / v) acetonitrile / containing 0.03% (w / v) sinapic acid and 0.1% (v / v) trifluoroacetic acid. Mixed with aqueous solution.
  • Gel permeation chromatography (GPC) was performed using an HPLC system and a column (Asahipack GF-510HQ, Shodex, Tokyo, Japan).
  • PN-Vpg is the above-mentioned formula (1): W-L 1- X n- Y (1) And the formula (2) representing the cell introduction region Y of the formula (1): Y 1- L 2- Y 2- Y 3 (2)
  • W is, be a "LM14-2 strain -Vpg" represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10; first linker L 1 is SEQ ID NO: 14 (SNSSSVPGG), 15 (GGGGS ), 16 (PAPAP) be amino acid sequences; repeating unit of a repeating sequence X n is an amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, the repetition number n is 1; the amino acid sequence of the main body portion Y 1 molecule needle, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 The second linker L 2 is "SVE"; the amino acid sequence of Foldon Y 2 is the amino acid sequence of SEQ ID NO:
  • the PN-VPg plasmid is constructed using a flexible linker (FL: SNSSSVPGG (SEQ ID NO: 14)) as a template, and based on this, a short flexible linker (sFL: GGGGS (SEQ ID NO: 15)) and a short rigid linker (sRL: PAPAP). (SEQ ID NO: 16)) was constructed with two types of linkers, these were expressed, and the contents of spontaneously occurring aggregates were analyzed, and it was confirmed that trimers and hexamers were contained. .. Based on these matters, the immediate object of producing and testing a component vaccine of RS virus is carried out, and the aggregate of the present invention using the non-structural protein of the virus is very useful as a component vaccine. showed that.
  • (B) -2 Construction of template plasmid using flexible linker (FL: SNSSSVPGG (SEQ ID NO: 14))
  • Amplification of VPg segment from LM14-2 plasmid is performed by gene amplification primer VPg_F (with NdeI restriction enzyme site: ACGCCATATGGGCAAGAAAGGGAAGAACAAGTCC).
  • VPg_R with EcoRI restriction enzyme site: GCTCGAATTCGACTCAAAGTTGAGTTTCTCATTGTAGTCAACAC (SEQ ID NO: 19)
  • PCR polymerase chain reaction
  • the plasmid pKN1-1 is obtained by first amplifying the gene corresponding to residues 461 to 484 of the wac protein of the T4 phage by PCR from the T4 phage genome and cloning it into pUC18, and then cloning it into pUC18. I got the gene encoding. Subsequently, this plasmid was cleaved with restriction enzymes EcoRI and SalI and inserted into the plasmid pET29b (Novagen) treated with EcoRI and XhoI to obtain plasmid pMTf1-3.
  • the gene corresponding to residues 474 to 575 of gp5 of the T4 phage was amplified by PCR from the T4 phage genome and cloned into pUC18 to obtain a gene encoding gp5. Subsequently, this plasmid was cleaved with restriction enzymes EcoRI and SalI and inserted into the above-mentioned plasmid pMTf1-3 treated with EcoRI and XhoI to obtain plasmid pKA176.
  • the GFP expression vector provided by Takahashi of Gunma University was cleaved with restriction enzymes NdeI and EcoRI to obtain a gene encoding GFP, and it was prepared by incorporating it into the above-mentioned plasmid pKA176 treated with restriction enzymes NdeI and EcoRI. ..
  • the cloned gene fragment was introduced into competent cells of Escherichia coli BL21 (DE3), confirmed by DNA sequencing, and mediated by a flexible linker (SNSSSVPGG: SEQ ID NO: 15), a plasmid construct of PN and VPg "PN-FL-". The existence of "VPg” was confirmed.
  • gene amplification primers VPgGS-F (XhoI restriction sites available: a set of JijieijijishijijijijijititishieishitishijiAGGGAAGCAATACAATATTTGTACG (SEQ ID NO: 22) and VPgGS-R (above VPgPA-R (SEQ ID NO: 21)) to , are used separately as primers for gene amplification of inverted PCR using "PN-FL-VPg" as a template, and the plasmid construct "PN-sRL-VPg” (L 1 is a short rigid linker of SEQ ID NO: 16). And “PN-sFL-VPg” (L 1 is a short flexible linker of SEQ ID NO: 15) was constructed.
  • PN-sRL-VPg and PN-sFL-VPg were expressed.
  • Example 2 Component vaccine against RS virus (a) Prerequisites
  • a genetic engineering technique is used to carry the immunogen, which is one of the non-structural proteins of the Long strain, which is a human RS virus.
  • a complex protein of the present invention called "P protein (phosphorylated protein: protein controlling phosphorylation)" was prepared.
  • the P-protein is encoded in the RS viral genome as a template sequence for P-protein messenger RNA.
  • the RS virus has a negative strand as a genome inside the virus particle, and a complementary strand of messenger RNA of each protein is present at the position shown in FIG.
  • RNP When the RS virus infects cells, RNP (described above) synthesizes messenger RNA of each protein using the negative-strand genome as a template. Various messenger RNAs have a start codon and a stop codon, and are translated intracellularly to produce various proteins.
  • the translated viral protein functions as a viral protein through the maturation process.
  • the P protein forms a tetramer and binds to the L protein and RNP on the C-terminal side to mediate the binding between the two.
  • the N-terminus it functions as a chaperone that binds free N-protein to RNA during synthesis.
  • the RNP is surrounded by an envelope derived from the host cell membrane, and two types of viral glycoproteins, a receptor-binding protein and a fusion protein (F protein), form spikes on the surface thereof.
  • RSV-P RSV Long strain of P protein
  • SEQ ID NO: 23 "MEKFAPEFHGEDANNRATKFLESIKGKFTSPKDPKKKDSIISVNSIDIEVTKESPITSNSTIINPTNETDDNAGNKPNYQRKPLVSFKEDPIPSDNPFSKLYKETIETFDNNEEESSYSYEEINDQTNDNITARLDRIDEKLSEILGMLHTLVVASAGPTSARDGIRDAMVGLREEMIEKIRTEALMTNDRLEAMARLRNEESEKMAKDTSDEVSLNPTSEKLNNLLEGNDSDNDLSLDDF", nucleic acid sequences encoding this, according to the known relationship between the amino acid and nucleic acid base You can choose.
  • the RSV-P gene fragment is a stop codon at the end of the P protein gene sequence from the genomic RNA of the RSV-Long strain provided by Sawada of Virus Infection Control Science I, Kitasato University Institute of Biomedical Sciences (in parentheses above). It was obtained by amplifying the portion excluding TGA).
  • the P region is amplified by InFusion RS-P sense 5'- GGAGATATACAT ATGGAAAAGTTTGCTCCTGA-3'(SEQ ID NO: 25) and InFusion RS-P antisense 5'- TGAACCCCCGCCTCC GAAATCATCAAGTGATAGAT-3' (SEQ ID NO: 26), and the underlined part is An amplification product of the added P region was obtained.
  • VPg by inverted PCR using the template plasmid construct "PN-FL-VPg" as a template and 5'-GGAGGCGGGGGTTCA-3'(SEQ ID NO: 27) and 5'-ATGTATATCTCCTTCTTAAAG-3' (SEQ ID NO: 28) as primers.
  • the entire vector portion excluding the sequence was amplified and prepared as a vector body. These two fragments were ligated by Infusion cloning to give the desired plasmid construct "PN-FL-P".
  • this plasmid was introduced into DH5 ⁇ competent cells. After verifying the obtained vector by the DNA sequencing method, PN-sFL-P was expressed.
  • Escherichia coli BL21 (DE3) carrying this “PN-sFL-P” plasmid was cultured overnight at 37 ° C. in LB medium containing 30 ⁇ g / ml kanamycin. After the OD 600 of the solution incubated at 37 ° C. reached 0.8, 1 mM isopropyl ⁇ -D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) and arabinose were added. After 16-17 hours after adding IPTG and arabinose, the bacteria were collected by centrifugation at 8000 rpm for 5 minutes and incubated at 20 ° C. at a rate of 180 rpm.
  • IPTG isopropyl ⁇ -D-1-thiogalactopyranoside
  • the cell pellet was then suspended on ice with 1 tablet of clonete, EDTA-free in buffer containing 100 mM Tris-HCl pH 8.0, 5 mM imidazole and lysed by sonication. Cell debris was removed by centrifugation (17,500 rpm for 50 minutes). The supernatant was filtered through a 0.8 ⁇ m filter, added to a Ni affinity column and eluted with the same buffer at 4 ° C. with a linear concentration gradient of 5 mM-250 mM imidazole. The PN-FL-P aggregate was then dialyzed against 20 mM Tris / HCl pH 8.0, 0.2 M NaCl and then further dialyzed against PBS and concentrated by ultrafiltration.
  • PN-sFL-P spontaneously becomes an aggregate containing trimers and / or hexamers. This was used in an immunological test as an "association of PN-sFL-P".
  • P-protein a recombinant P-protein obtained by a conventional method according to a series of processes from expression to recovery of "PN-sFL-P" based on the above-mentioned base sequence encoding P-protein. (Abbreviated) was prepared.
  • the immunological test was performed by nasal immunization as a solution (purified antigen) of 10 ⁇ g / mL PBS.
  • Example 2 Immunological test of Example 2 (1) (Measurement of antibody titer)
  • the above-mentioned PN-sFL-P aggregate (PN (+)) and P protein (PN (-)) were nasally inoculated into RS virus-sensitive cotton rats, respectively. All nasal inoculations were inoculation by dropping and inhaling the vaccine solution into the nasal cavity, and 1 mL (10 ⁇ g) of purified antigen was inhaled into the nasal cavity under anesthesia. This nasal inoculation is performed three times every other week after the first inoculation, before the first inoculation, one week after the first inoculation (before the first booster inoculation), and two weeks after the first inoculation (second addition).
  • the last booster vaccination was given 8 weeks after the first vaccination.
  • the antigen (RSVP protein) is diluted with PBS (-) to 2 ⁇ g / mL, 50 ⁇ L / well is added to a 96-well ELISA plate, and the mixture is incubated overnight at 4 ° C. PBST (0.1% Tween 20). The plates were washed 3 times in total with / PBS), 80 ⁇ L / well of PBSB (1% BSA / PBS) was added to each plate, and the mixture was incubated at room temperature for 2 hours for blocking.
  • PBSB 1% BSA / PBS
  • test serum was then diluted with PBSB to prepare a test sample (IgG detection: 5-fold serial dilution up to 10-31250-fold, IgA detection: 3-fold serial dilution up to 10-2430-fold).
  • the PBSB in the plate was discarded, 50 ⁇ L / well of each test sample was added to the plate, incubated at room temperature for 2 hours, and then the plate was washed 5 times with PBST.
  • the HRP substrate solution was added to the plate at a rate of 50 ⁇ L / Well, and incubation was carried out at room temperature in the dark until color development was confirmed. 2M sulfuric acid was added to the plate at 25 ⁇ L / Well to stop the reaction, and the absorbance at 490 nm was measured.
  • the vertical axis shows the absorbance
  • the horizontal axis shows the dilution ratio.
  • individual results for the test cotton rats are shown.
  • RS virus infection occurs by inhaling the virus by droplet infection. That is, since the main infection routes are the oral cavity and the nasal cavity, aggregates are directly penetrated into the nasal mucosal cells by nasal inoculation, P protein is injected into the nasal mucosal cells, and the cells are injected into the nasal cavity. It induced cell-mediated immunity and humoral immunity, and evoked protective immunity against RS virus. It has been clarified that by nasal inoculation using a molecular needle carrying a non-structural protein of RS virus as an immunogen, local immunity is induced, and infection protection against RS virus and symptom reduction effect can be obtained.
  • the induction of IgA against P-protein which is a non-structural protein of RS virus, means that when IgA produced in blood passes through cells and is secreted into the mucosal layer, it binds to P-protein and P-protein. Is expected to inhibit the function of.
  • PN-sFL-P aggregate (PN (+)) and P protein (PN (-)) were nasally inoculated into RS virus-sensitive cotton rats, respectively. All nasal inoculations were performed by inhaling 1 mL (10 ⁇ g) of purified antigen per animal into the nasal cavity under anesthesia. Similar to the above-mentioned "immunity test (1)", this nasal inoculation is performed by performing a total of 3 additional inoculations every other week after the initial inoculation, and further performing the final additional inoculation 8 weeks after the initial inoculation. After a week, test rats were infected with RS virus. Infectious doses of RS virus with 2 ⁇ 10 5 PFU / mL, were performed at vaccination the same method (nasal inoculation).
  • the lung tissue of the test rat was collected, and the amount of RS virus infection in the lung was measured by removing the lung, which is the target tissue of the infection, and suspending it in a medium with a homogenizer to release the virus. , The amount of infectious virus contained in 50 mg of lung tissue was measured by plaque assay.
  • test rats positive control (the cotton rat infected with RS virus without prior nasal inoculation) and negative control (the above cotton rat infected with RS virus without prior nasal inoculation) and negative control (no prior nasal inoculation or RS virus infection) Cotton rat) was used.
  • the vertical axis is the titer of RS virus (PFU / 50 mg lung tissue) in the recovered lung tissue.
  • rats administered with the PN-sFL-P aggregate had a significant difference (P ⁇ 0.0001) of RS virus infection by more than 1/2 as compared with RS virus-infected rats (positive control). Was suppressed.
  • the vaccine of the present invention exerts a substantial effect of suppressing virus infection by local immunity induction such as mucosal immunity induction and cell-mediated immunity induction.
  • Example 3 When carrying a structural protein of RS virus As described above, the RNP of RSV is surrounded by an envelope derived from the host cell membrane, and the surface thereof is a fusion protein (F protein) with a receptor binding protein. Two types of viral glycoproteins (structural proteins) form spikes.
  • a peptide SEQ ID NO: 29: DMPITNDQKKLMS
  • DMPITNDQKKLMS a peptide composed of 13 amino acids constituting the neutralization epitope region of the F protein, which is a structural protein
  • immunizes a (quadruple) fusion protein in which four are linked in series An aggregate carried as the original W was produced, and a test according to the immunological test of the above-mentioned Example was carried out on the aggregate.
  • F protein of RSV is 574 amino acids (SEQ ID NO 30: MELPILKANAITTILAAVTFCFASSQNITEEFYQSTCSAVSKGYLSALRTGWYTSVITIELSNIKENKCNGTDAKVKLINQELDKYKNAVTELQLLMQSTTAANNRARRELPRFMNYTLNNTKKTNVTLSKKRKRRFLGFLLGVGSAIASGIAVSKVLHLEGEVNKIKSALLSTNKAVVSLSNGVSVLTSKVLDLKNYIDKQLLPIVNKQSCRISNIETVIEFQQKNNRLLEITREFSVNAGVTTPVSTYMLTNSELLSLINDMPITNDQKKLMSNNVQIVRQQSYSIMSIIKEEVLAYVVQLPLYGVIDTPCWKLHTSPLCTTNTKEGSNICLTRTDRGWYCDNAGSVSFFPQAETCKVQSNRVFCDTMNSLTLPSEVNLCNVDIFNPKYDCKIMTSKTDVSSSVITSLGAIVSCYGKTKCTAS
  • the 263rd to 275th amino acid regions are epitope regions recognized by neutralizing antibodies.
  • a gene encoding a (quadruple) fusion protein is created by connecting four epitope regions of this F protein in series via (GGGG), and further fused to PN via a linker (GGGGS: SEQ ID NO: 15).
  • GGGG GGGGS: SEQ ID NO: 15
  • a plasmid (pET29b (+) / F-PN) designed as described above was prepared, transformed with Escherichia coli (BL21 DE3) (FIG. 8), and induced expression was performed with IPTG.
  • the inducible express was recovered as a solubilized protein, and the above-mentioned quadruplex fusion protein aggregate (Fnep ⁇ 4-PN aggregate (PN (+))) was purified by TAIRON to carry out the immunological test of Example 3 of this example. ..
  • Example 3 Immunological test of Example 3 (1) (Measurement of antibody titer)
  • the above-mentioned Fnep ⁇ 4PN aggregate (PN (+)) and the above-mentioned quadruple fusion protein (PN ( ⁇ )) of the neutralizing epitope of the F protein were nasally inoculated into RS virus-sensitive cotton rats, respectively. All nasal inoculations were inoculation by dropping and inhaling the vaccine solution into the nasal cavity, and 1 mL (20 ⁇ g) of purified antigen was inhaled into the nasal cavity under anesthesia.
  • This nasal inoculation is performed three times every other week after the first inoculation, before the first inoculation, one week after the first inoculation (before the first booster inoculation), and two weeks after the first inoculation (second addition). Blood was collected 3 weeks after the first inoculation (before the third booster inoculation) and 7 weeks after the first inoculation, reacted with the F protein, and the IgG and IgA antibody titers against the F protein were determined by the ELISA method. It was measured.
  • the last booster vaccination was given 9 weeks after the first vaccination.
  • FIG. 9 The results after the above 3 weeks are shown in FIG. 9 (results for IgA and IgG).
  • the vertical axis shows the absorbance and the horizontal axis shows the dilution ratio.
  • the results for each individual test cotton rat are shown.
  • the above Fnep ⁇ 4PN aggregate (PN (+)) and the quadruple fusion protein (PN ( ⁇ )) of the neutralizing epitope of the F protein were nasally inoculated into RS virus-sensitive cotton rats, respectively. All nasal inoculations were performed by inhaling 1 mL (20 ⁇ g) of purified antigen per animal into the nasal cavity under anesthesia. Similar to the above-mentioned "immunity test (1)", this nasal inoculation is performed by performing a total of 3 additional inoculations every other week after the initial inoculation, and then performing the final additional inoculation 7 weeks after the initial inoculation. After a week, test rats were infected with RS virus. Infectious doses of RS virus with 2 ⁇ 10 5 PFU / mL, were performed at vaccination the same method (nasal inoculation).
  • the lung tissue of the test rat was collected, and the amount of RS virus infection in the lung was measured by removing the lung, which is the target tissue of the infection, and suspending it in a medium with a homogenizer to release the virus. , The amount of infectious virus contained in 50 mg of lung tissue was measured by plaque assay.
  • test rats positive control (the cotton rat infected with RS virus without prior nasal inoculation) and negative control (the above cotton rat infected with RS virus without prior nasal inoculation) and negative control (no prior nasal inoculation or RS virus infection) Cotton rat) was used.
  • the vertical axis is the titer of RS virus (PFU / 50 mg lung tissue) in the recovered lung tissue.
  • rats administered with Fnep ⁇ 4PN aggregate suppressed RS virus infection by about 36%, with a significant difference (P ⁇ 0.0001), as compared with RS virus-infected rats (positive control). ..
  • the infection and proliferation of RS virus is induced by the action of cell-mediated immunity induced by immunization with the vaccine of the present invention. Can be suppressed more effectively.
  • IgA molecules synthesized by B cells in blood are secreted from the basement membrane side of epithelial cells toward the mucosal epithelium, they are formed between P protein and viral polymerase on the way through the cells. Interference with the formation of the P-polymer complex to be produced is believed to be a further effect in the vaccine of the present invention.
  • a component vaccine in which molecular needles carrying structural proteins such as aggregates are combined to form an active ingredient is expected to have a synergistic effect due to these combinations.

Abstract

本発明は、非構造タンパク質に対する免疫を惹起できるコンポーネントワクチンを提供する手段を確立することを課題とし、本発明者らは、病原ウイルスの非構造タンパク質を担持させた分子針であって、その三量体及び／又は六量体を含有する会合体を有効成分とするコンポーネントワクチンを提供することにより、上記の課題を解決することができることを見出した。

Description

ウイルスの非構造タンパク質が担持された複合タンパク質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン
　本発明は、機能性タンパク質とこれを用いるワクチンについての発明であり、さらに具体的には、免疫原であるウイルスの非構造タンパク質と分子針との複合タンパク質（単量体）と当該単量体の会合体、及び、当該会合体を有効成分（感染防御抗原）とする、コンポーネントワクチンに関する発明である。
　バクテリオファージの優れた細胞への遺伝子導入機能に着目して発明された「分子針」についての技術（特許文献１）が提供されている。
　本発明者らは、この分子針にノロウイルスの構造タンパク質を担持させた複合ポリペプチドを、ノロウイルスに対するコンポーネントワクチンとして提供する発明を行い、これについての特許出願を行った（特許文献２）。
特開２０１５－１６３０５６号公報 ＷＯ２０１８／０７４５５８号国際公開パンフレット
　ワクチンは、毒性を弱めたウイルス等の病原微生物を感染防御抗原として用いる「生ワクチン」、殺傷した病原微生物の全部を感染防御抗原として用いる「不活化ワクチン」、感染可能な病原微生物では無く、その一部（コンポーネント）のタンパク質や糖鎖を感染防御抗原として用いる「コンポーネントワクチン」、変性させた病原体の産生する毒素を感染防御抗原として用いる「トキソイド」、に大別されている。
　特許文献２に記載されたノロウイルスコンポーネントワクチンは、ノロウイルスの構造タンパク質を分子針に担持させて、当該分子針の細胞導入機能により細胞内に導入された当該構造タンパク質に対する免疫を獲得するワクチンである。
　しかしながら、ウイルスの構造タンパク質は、それをコードする遺伝子が変異を起こす確率が高く、既に多くの種類のウイルス株が存在している。流行するウイルス株を想定し、それに合わせた個別の構造タンパク質を準備してワクチン化する必要がある。
　一方、現在実用化されているコンポーネントワクチンは、病原体の構成成分、つまりは、構造物に対する液性免疫を獲得免疫としており、病原体が宿主体内で自己複製する際に産生する微生物の酵素群（非構造タンパク質）に対する獲得免疫を誘導できない。対して、生ワクチンは病原性を発現しないようにした（弱毒化）微生物そのものであるから、微生物が複製するための非構造タンパク質を発現する。従って、生ワクチンは、接種者体内に、病原体の複製機構をもターゲットとした、総合的な（細胞性免疫プラス液性免疫）獲得免疫を誘導できる。その反面で、生ワクチンは、弱毒化されているとはいえ生きた病原ウイルスそのものを用いるワクチンであるから、特有のリスクが認められる。例えば、極めて稀ではあるが、弱毒化された病原ウイルスが、突然変異によって毒力が強い病原ウイルスに先祖返りするリスクが認められる。また、弱毒化された病原ウイルスであっても、免疫力が落ちているヒトには毒性が惹起されるリスクも認められる。
　従って、一般に生ワクチンの接種は、コンポーネントワクチンに比べ慎重に行う必要がある。
　本発明者らは、この課題の解決に向けて検討を行った結果、上記分子針に「病原ウイルスの非構造タンパク質」（以下、単に「非構造タンパク質」ともいう）を担持させて、その複合体をコンポーネントワクチンの有効成分として用いることで、コンポーネントワクチンでありながら微生物の複製機構を標的とした獲得免疫を誘導できることに想到した。この非構造タンパク質を担持させた上記分子針の会合体（三量体及び／又は六量体）単独で、あるいは、さらに構造タンパクを担持させた上記分子針と組み合わせて、コンポーネントワクチンの有効成分とすることで、コンポーネントワクチンとしての安全性を保ちながら、生ワクチンに準じた総合的な免疫効果（液性免疫と細胞性免疫）を発揮することが可能である。さらに、非構造タンパク質は、病原ウイルスの宿主内の増殖等の機能に係わるタンパク質であり、その機能を維持するためにアミノ酸変異を受け入れがたく、構造タンパク質に比べて遺伝子変異が極めて低い。従って、同一病原ウイルス種内であればウイルス株が異なっても免疫原性を共通にする可能性が高く、構造タンパク質の変異頻度が激しい病原ウイルス種であっても有効に免疫を獲得させることが可能である。
　本発明が提供する主題は、（１）分子針に免疫原である非構造タンパク質を担持させた「複合タンパク質」（以下、本発明の複合タンパク質ともいう）と、（２）これを単量体としてなる会合体（以下、本発明の会合体と総称する）、及び（３）当該会合体を有効成分（感染防御抗原）とする「コンポーネントワクチン」（以下、本発明のワクチンともいう）、である。
　「コンポーネントワクチン」は、有効成分（免疫感染抗原）を必要とする成分ワクチンであり、これから、上記の生ワクチン、不活化ワクチン、及び、トキソイドは除外される。本発明のワクチンの有効成分は、感染防御抗原としての本発明の会合体（三量体及び／又は六量体を含有する）を含んでいる。
（１）本発明の複合タンパク質
　本発明の複合タンパク質は、下記式（１）のアミノ酸配列の複合タンパク質であり、本発明の会合体の前駆分子である。なお、下記式（１）、（２）における所定のアミノ酸配列同士を結ぶ「－」は、Ｗ、Ｌ１、Ｘｎ、Ｙ等の概念的に纏まったアミノ酸配列同士の区別を明確にするための、単純な分子結合（実質的にはペプチド結合）の表示である。
　Ｗ－Ｌ１－Ｘｎ－Ｙ　　　（１）
　［式中、Ｗは免疫原である病原ウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部を１個又は２個以上含むアミノ酸配列を示し、Ｌ１はアミノ酸数が０－１００の第１のリンカー配列を示し、Ｘは配列番号１のアミノ酸配列を示し、Ｙは細胞導入領域のアミノ酸配列を示し、Ｘの繰り返し数ｎは１－３の整数である。］
であって、
　当該細胞導入領域Ｙのアミノ酸配列は、下記式（２）：
　Ｙ１－Ｌ２－Ｙ２－Ｙ３　　　（２）
　［式中、Ｙ１は配列番号２－５からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を示し、Ｙ２は配列番号６－９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を示し、Ｌ２はアミノ酸数が０－３０の第２のリンカー配列を示し、Ｙ３は修飾用のアミノ酸配列を示し、Ｙ２又はＹ３は存在しない場合もある。］
で表される、複合タンパク質。
　上記Ｘｎにおけるアミノ酸配列Ｘの繰り返し数であるｎは、１であることが好適であるが、２又は３であってもよい。
　上記式（１）において、Ｘｎ、Ｙ１、又は、Ｙ２で示されるアミノ酸配列のうち、１個以上のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された改変アミノ酸配列が上記式（１）に含まれる。「欠失」とは、上記式（１）において定義されている各配列番号のアミノ酸配列におけるいずれかのアミノ酸残基が欠失しており、当該欠失したアミノ酸残基のＮ末端側（前）とＣ末端側（後）のアミノ酸残基がペプチド結合で結ばれた状態であり（Ｎ末端アミノ酸残基とＣ末端アミノ酸残基の欠失の場合は、当該アミノ酸残基が単に欠失した状態である）、当該欠失残基の個数が「アミノ酸欠失の個数」として数えられる。「置換」とは、上記式（１）において定義されている各配列番号のアミノ酸配列におけるいずれかのアミノ酸残基が「他のアミノ酸残基」に入れ替わっており、当該入れ替わったアミノ酸残基が、Ｎ末端側（前）とＣ末端側（後）の各アミノ酸残基とペプチド結合で結ばれた状態であり（Ｎ末端アミノ酸残基の置換の場合はＣ末端側のアミノ酸残基とのペプチド結合のみであり、Ｃ末端アミノ酸残基の置換の場合はＮ末端側のアミノ酸残基とのペプチド結合のみである）、当該置換残基の個数が「アミノ酸置換の個数」として数えられる。「付加」とは、上記式（１）において定義されている各配列番号のアミノ酸配列における、いずれか１箇所以上のペプチド結合の位置に、各々１個以上の新たなアミノ酸残基が挿入された状態で新たなペプチド結合が形成された状態である。これらのアミノ酸残基の改変の内容と個数は、上記式（１）に係わるアミノ酸配列と、改変に係わるアミノ酸配列のアライメントを、人力又はアミノ酸配列の解析が可能なソフトウエアを用いてコンピュータ上で行うことにより、明らかにすることができる。
　また、上記式（１）で定義されたリンカー配列Ｌ１又はＬ２、あるいは、修飾用のアミノ酸配列Ｙ３は、上記定義されたアミノ酸残基数の範囲内において、必要に応じて任意の配列を選択することができる。
　そして、当該改変アミノ酸配列の改変複合タンパク質の三量体又は六量体（下記）が、上記式（１）の複合タンパク質の三量体又は六量体と、実質的に同等の免疫賦活活性を有することが好ましい。「実質的に同等」とは、「中和試験」等の免疫賦活活性の確認について確立している手法を用いた場合に、アミノ酸配列の非改変複合タンパク質との免疫賦活活性の有意差が、５％以内の有意水準において認められない程度の同等性である。
　上記式（１）の、Ｘｎ、Ｙ１、又は、Ｙ２で示されるアミノ酸配列のうち、１個以上のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された改変アミノ酸配列における、各々のアミノ酸配列におけるアミノ酸改変の数は、Ｘｎが８ｎ個以内、好ましくは４ｎ個以内、さらに好ましくは２ｎ個以内；Ｙ１が３０個以内、好ましくは２０個以内、さらに好ましくは１０個以内；及びＹ２が１５個以内、好ましくは１０個以内、さらに好ましくは５個以内；であることが好適である。
　Ｗは、病原ウイルスの非構造タンパク質の全部又は一部を１個又は２個以上含むアミノ酸配列である。病原ウイルスの遺伝子にコードされているタンパク質は、構造タンパク質と非構造タンパク質に大別される。構造タンパク質は、ウイルスの構造を直接構成するタンパク質であり、カプシドタンパク質、エンベロープタンパク質、コアタンパク質等が例示される。非構造タンパク質は、当該構造タンパク質以外のウイルス遺伝子においてコードされたタンパク質であり、主に、宿主内でのウイルスの存続、増殖等に係わる酵素タンパク質であり、病原ウイルスが宿主内に侵入後に発現するタンパク質である。「非構造タンパク質の全部又は一部」において、「全部」とは、「所定のウイルスの個々の非構造タンパク質の全部」である。例えば、実施例に示したＲＳウイルスのＰタンパク質であれば、そのアミノ酸配列の全部が上記「全部」を意味しており、「一部」とは、当該Ｐタンパク質のアミノ酸配列の一部を意味している。また、「一部」である場合は、「所定のウイルスの個々の非構造タンパク質の一部」に当該ウイルスの抗原性が認められる限り、その内容は限定されない。
　Ｗとして非構造タンパク質が選択される病原ウイルスは特に限定されない。ＤＮＡウイルスであっても、ＲＮＡウイルスであっても、レトロウイルスであってもよい。例えば、ポリオウイルス、麻疹ウイルス、風疹ウイルス、流行性耳下腺炎ウイルス（ムンプスウイルス）、水痘ウイルス、黄熱病ウイルス、ロタウイルス、帯状疱疹ウイルス（ヘルペスウイルス）、インフルエンザウイルス、ノロウイルス、狂犬病ウイルス、日本脳炎ウイルス、肝炎ウイルス（Ａ型肝炎、Ｂ型肝炎、Ｃ型肝炎等）、ヒトパピローマウイルス、ＨＩＶ、エボラウイルス等の現在ワクチンが提供されている感染症の病原ウイルスだけではなく、ＲＳウイルス（ＲＳＶ）等のワクチンが提供されていない感染症の病原ウイルスも含めて挙げられる。現在ワクチンが提供されていない感染症ウイルスに対しても有効なワクチンであり得ることが、本発明のワクチンの特徴の一つである。
　また、病原ウイルスが感染し得る動物の種類は特に限定されず、ヒトの他にもワクチンの需要がある動物、例えば、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、鶏等の家畜類や、イヌ、ネコ等のペット類も例示される。
　具体的に選択されるべき非構造タンパク質は、対象となるウイルスの種類に応じて個別具体的に選択され、ＲＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素、プロテアーゼ、Ｖｐｇ、ＮＴＰａｓｅ、ＤＮＡ結合タンパク質、ＲＮＡ結合タンパク質、転写因子、リン酸化タンパク質、Ｌタンパク質、Ｎタンパク質等を、公知のウイルスの非構造タンパク質についての情報から特定して選択することが可能である。また、現時点では機能が明らかにされていないタンパク質であっても将来的に非構造タンパク質としての機能を有するタンパク質や、構造タンパク質と非構造タンパク質の両方の働きを有しているタンパク質も、非構造タンパク質に含まれる。
　例えば、ＲＳウイルスの非構造タンパク質としては、ＮＳ－１タンパク質、ＮＳ－２タンパク質、Ｎタンパク質、Ｐタンパク質、Ｍ２－１タンパク質、Ｌタンパク質等が挙げられる。ウイルス粒子内部のゲノムＲＮＡには、Ｎタンパク質、Ｐタンパク質、Ｍ２－１タンパク質、及びＬタンパク質が結合しており、これらは、ＲＮＰ（ＲＮＡと他ウイルスタンパク質の複合体、リボヌクレオプロテイン複合体でありヌクレオキャプシドと呼ばれている）として機能する。ＲＮＰを構成するこれらの非構造タンパク質は、ＲＳウイルス粒子内にも含まれているが、ウイルスのメッセンジャーＲＮＡの転写、ゲノムの複製を行う酵素群であることから、感染後に細胞内にて大量に合成される。
（２）本発明の会合体
　本発明の会合体は、本発明の複合タンパク質を単量体とする会合体であり、当該複合タンパク質の三量体又は六量体を含有し、あるいは当該三量体と六量体の混合物を含有する。以下、これら本発明の会合体の含有物の実質を、「三量体及び／又は六量体」と総称する場合も有る。言い換えれば、本発明の会合体は、本発明の複合タンパク質を単量体とする三量体又は六量体を含む会合体である。さらに、後述する本発明の会合体の生産過程を鑑みると、本発明の会合体は、本発明の複合タンパク質を水性液体中で会合させてなる会合体とも定義付けられる。本発明の会合体は、担持させるタンパク質と分子針の相性によっては、上記会合体が構成されない場合も考えられるものの、水性液体中で対象の複合タンパク質を接触させ、その結果をＳＤＳ－ＰＡＧＥ等で確認することにより、対象の複合タンパク質が三量体又は六量体を構成し、本発明のワクチンの有効成分として用いることができるか否かを、容易に把握することができる。このようにして構成される本発明の会合体は、それ自身が細胞内に浸透する作用を発揮することができる。
　上記三量体は、同一又は異なる本発明の複合タンパク質を単量体タンパク質としてなる、三量体タンパク質であり、上記六量体は、当該三量体タンパク質２分子が会合してなる、六量体タンパク質である。
（３）本発明のワクチン
　本発明のワクチンは、本発明の会合体を有効成分（感染防御抗原）とするワクチンであり、所定の病原ウイルスに対する、皮下、皮内、経皮、粘膜、又は筋肉内投与用コンポーネントワクチンである。具体的には、病原ウイルスの非構造タンパク質の一部若しくは全部を１個又は２個以上含むペプチド又はタンパク質の一種又は二種以上をＷとした、上記三量体及び／又は六量体を有効成分とする、皮下、皮内、経皮、粘膜、又は筋肉内投与用のコンポーネントワクチンである。有効成分として用いる上記三量体及び／又は六量体は、非構造タンパク質であるＷの出所となる病原ウイルス株が同一遺伝子型であれば、異なる非構造タンパク質の全部又は一部をＷとして担持させた一種又は二種以上を有効成分とすることができる。また、遺伝子型が異なる病原ウイルス同士の有効成分（Ｗは非構造タンパク質）の当該単位を二種以上組み合わせることもできる。
　さらに有効成分として、本発明の会合体と共に、「本発明の三量体及び／又は六量体のＷ（非構造タンパク質）に代えて、『構造タンパク質』を担持した分子針の会合体（三量体及び／又は六量体を含有する）（特許文献２）」を、追加有効成分として用いることも可能である。また、この追加有効成分として、遺伝子型が異なる病原ウイルス同士の構造タンパク質をＷとした会合体を、組み合わせて有効成分として追加することも可能である。また、構造タンパク質部分には、ウイルスの感染力を失わせる中和抗体が結合する領域が存在する場合があるが、そのエピトープ、又はその近傍を含むペプチド配列の１個又は２個以上をＷとした会合体を組み合わせることも可能である。
　用いる有効成分である上記会合体の種類が多様になると、獲得免疫の内容が生ワクチンに近似したものとなる。また、異なる病原微生物に由来する抗原タンパク質が用いられた場合、混合ワクチンに類似したものとなる。
　免疫原性をさらに高めるために、アジュバンドを、例えば、上記ＷとしてコレラトキシンのＢサブユニットを担持した分子針として、本発明のワクチンに含有させることも可能であるが、むしろアジュバンドを除外したアジュバンドフリーのワクチンとすることが可能であることが、本発明のワクチンの長所として優先されることが好ましい。
　上記の複数種類の三量体及び／又は六量体の分子針を用いる場合の、本発明のワクチンにおける配合比率は、ワクチンの企画に応じて選択可能であり、特に限定されない。
（４）本発明の会合体の生産方法
　本発明の会合体は、本発明の複合タンパク質の３分子以上を、水性液体を介して接触させることにより、当該複合タンパク質同士を単量体として会合させて、三量体と六量体の混合物形成を行い、さらに必要に応じて当該三量体又は六量体を選択的に分離・採取することにより生産できる。
　本発明の複合タンパク質自体は、当該複合タンパク質をコードする核酸を、遺伝子工学的な手法により発現させる、又は、ペプチド合成技術により合成する、ことにより生産することができる。当該複合タンパク質同士を、水性液体中で接触させることにより、自発的に複合タンパク質の三量体、及び、六量体が構築され、三量体と六量体を含有する混合物が形成される。そして、さらに当該三量体又は六量体を選択的に分離・採取することにより、三量体と六量体を分離して生産することができる。
　「水性液体」に関しては、特に、本発明の複合タンパク質を遺伝子工学的な手法により生産する場合は、当該複合タンパク質を生物学的に発現させて、例えば、発現細胞の収集、破砕又は溶解等による当該複合タンパク質の露出、さらに公知の分離方法による当該複合タンパク質の分離の工程を行う過程において用いる水や各種緩衝液等の水性液体中において、自発的に会合が起こり、本発明の会合体である三量体と六量体を含有する混合物を得ることができる。また、例えば、全化学合成や、パーツ毎の分割合成を行って化学修飾法により結合することにより製造した本発明の複合タンパク質を、水や各種緩衝液等の水性液体中に懸濁することで自発的に会合させて、本発明の会合体である三量体と六量体を含有する混合物を得ることができる。
　上記の三量体と六量体を含有する混合物から、三量体又は六量体を分離・採取する方法は、特に限定されず、公知の分子量による分別方法、例えば、ゲル電気泳動法、アフィニティークロマトグラフィー、分子排斥クロマトグラフィー等の分子篩、イオン交換クロマトグラフィー等が挙げられる。
　従って、上記会合体の生産方法の最も好適な態様の一つとして、「本発明の複合タンパク質をコードする核酸を導入した形質転換体を、液体培地で培養して当該複合タンパク質を発現させ、自発的な会合によって産生される、当該複合タンパク質を単量体とする三量体及び六量体を含む混合物を得る生産方法。さらに当該混合物からさらに当該三量体又は六量体を選択的に分離・採取する、複合タンパク質会合体の生産方法。」が挙げられる。
　このようにして生産される本発明の会合体を、本発明のワクチンの有効成分として用いることができる。
　本発明により、（１）皮下、皮内、経皮、粘膜、又は筋肉内投与により標的組織の細胞に免疫原であるウイルスの非構造タンパク質を効率的に導入するコンポーネントワクチンの有効成分（感染防御抗原）の基本単位として用いることができる、分子針に免疫原であるウイルスの非構造タンパク質を担持させた複合タンパク質（単量体）、（２）当該有効成分（感染防御抗原）として用いることができる当該複合タンパク質の会合体、（３）当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチンが提供される。
本発明の複合タンパク質を基にした、本発明の会合体である三量体と六量体の構築過程を示した図面である。 ＰＮ－ｓＲＬ－ＶＰｇに関してのＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ質量スペクトルの結果を示した図面であり、（ａ）は、単量体(monomer)のシグナル、（ｂ）は、三量体(trimer)のシグナル、（ｃ）は六量体(trimer-dimer)のシグナルをそれぞれ示し、それぞれの箇所に、本発明の複合タンパク質(monomer)の会合状態を示す略図を示した。 ＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇに関してのＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ質量スペクトルの結果を示した図面であり、（ａ）は、単量体(monomer)のシグナル、（ｂ）は、三量体(trimer)のシグナル、（ｃ）は六量体(trimer-dimer)のシグナルをそれぞれ示し、それぞれの箇所に、本発明の複合タンパク質(monomer)の会合状態を示す略図を示した。 ＲＳウイルスの遺伝子の構造を示した略図である。 実施例２に用いた、ＲＳウイルスの非構造タンパク質の一つであるＰタンパク質を担持した本発明の複合タンパク質の会合体を有効成分とするコンポーネントワクチンの経鼻接種によるＩｇＧの誘導効果を、接種３週間後と７週間後に検討した図面である。 実施例２に用いた、ＲＳウイルスの非構造タンパク質の一つであるＰタンパク質を担持した本発明の複合タンパク質の会合体を有効成分とするコンポーネントワクチンの経鼻接種によるＩｇＡの誘導効果を、接種３週間後と７週間後に検討した図面である。 実施例２に用いた、ＲＳウイルスの非構造タンパク質の一つであるＰタンパク質を担持した本発明の複合タンパク質の会合体を有効成分とするコンポーネントワクチンの経鼻接種による、ＲＳウイルスの肺感染の抑制効果を検討した図面である。 実施例３に用いた、ＲＳウイルスの構造タンパク質の一つであるＦタンパク質のタンパク質のうち、中和抗体が結合する領域（中和エピトープ）に相当するペプチドを４重連結形態とし、免疫原として担持した本発明の複合タンパク質を発現するプラスミドの模式図である。 上記Ｆタンパク質の中和エピトープペプチドの、４重連結形態を免疫原として担持した本発明の複合タンパク質の会合体を有効成分としたワクチンを経鼻接種した場合の、接種７週間後のＩｇＧとＩｇＡの誘導効果を検討した結果を示す図面である。 上記Ｆタンパク質の中和エピトープペプチドの、４重連結形態を免疫原として担持した本発明の複合タンパク質の会合体を有効成分としたワクチンを経鼻接種した場合の、ＲＳウイルスの肺感染の抑制効果を検討した図面である。
（１）本発明の複合タンパク質
　本発明の複合タンパク質を表すアミノ酸配列式である式（１）：
　Ｗ－Ｌ１－Ｘｎ－Ｙ　　　（１）
　［式中、Ｗは免疫原であるウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部を１個又は２個以上含むアミノ酸配列を示し、Ｌ１はアミノ酸数が０－１００の第１のリンカー配列を示し、Ｘは配列番号１のアミノ酸配列を示し、Ｙは細胞導入領域のアミノ酸配列を示し、ｎは１－３の整数である。］
において、
　免疫原であるＷは、上記のようにウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部のペプチド構成に基づくアミノ酸配列が挙げられる。ここで「基づく」とは、オリジナルのペプチド構成そのものだけではなく、アミノ酸配列が改変された改変アミノ酸配列も含まれる概念である。
　ウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部については、上述した通りである。
　第１のリンカー配列を示すＬ１は、免疫原Ｗと分子針部分Ｙの距離を適度に保って立体障害を抑制するために必要であり、このアミノ酸残基の個数は、上記の通りにアミノ酸残基数は０－１００個であり、好適には４－４０個である。具体的な配列の内容は限定されないが、例えば、（ＧＧＧＧＳ）ｍ、（ＰＡＰＡＰ）ｍ［ｍは繰り返し数であり、１－５の整数であることが好ましく、１－３であることが特に好ましい］等が例示される。ただしこれらはあくまでも例示である。
　Ｘは、配列番号１のアミノ酸からなる、アミノ酸配列ＸｎにおけるＸのｎ回（整数回）の繰り返し単位の配列である。繰り返しの形式は、直列の繰り返しであり、例えば、Ｘ２であれば、「Ｘ－Ｘ」（「－」は模式化したペプチド結合）である。また、繰り返し配列Ｘｎにおいては、上述したアミノ酸配列の改変が許容される。ここでｎは、上述のように１－３の整数であり、１が好適であるが、２又は３であってもよい。繰り返し配列Ｘｎのｎが２又は３である場合は、免疫原Ｗの大きさや特性に応じて、分子針Ｙの距離を安定して適切な距離に保つことが主要な目的となる。
　細胞導入領域Ｙは、分子針の基礎構造に該当し、バクテリオファージの尾（Ｔａｉｌ）の針部分（細胞内導入部）に基づいたものであり、式（２）：
　Ｙ１－Ｌ２－Ｙ２－Ｙ３　　　（２）
　［式中、Ｙ１は配列番号２－５からなる群より選択されるアミノ酸配列を示し、Ｙ２は配列番号６－９からなる群より選択されるアミノ酸配列を示し、Ｌ２はアミノ酸数が０－３０の第２のリンカー配列を示し、Ｙ３は所定の修飾用のアミノ酸配列を示し、Ｙ２又はＹ３は存在しない場合もある。］
で表されるタンパク質である。
　式（２）のＹ１のうち、Ｎ末端側３２アミノ酸（３２Ｌｅｕ）までが、バクテリオファージＴ４の三重らせんβシート構造の部分のアミノ酸配列である。なお、少なくともＮ末端のアミノ酸であるバリン（１Ｖａｌ）は、ロイシン（１Ｌｅｕ）であってもよい。残りのＣ末端側は、バクテリオファージのニードルタンパク質のＣ末端部分のアミノ酸配列である。このＹ１のＣ末端側に使用可能なアミノ酸配列としては、例えば、バクテリオファージＴ４のｇｐ５のアミノ酸配列、バクテリオファージＰ２のｇｐＶのアミノ酸配列、バクテリオファージＭｕのｇｐ４５のアミノ酸配列、バクテリオファージφ９２のｇｐ１３８のアミノ酸配列等が挙げられる。より具体的には、バクテリオファージＴ４のｇｐ５のアミノ酸配列をＣ末端側に有するＹ１として配列番号２のアミノ酸配列が、バクテリオファージＰ２のｇｐＶのアミノ酸配列をＣ末端側に有するＹ１として配列番号３のアミノ酸配列が、バクテリオファージＭｕのｇｐ４５のアミノ酸配列をＣ末端側に有するＹ１として配列番号４のアミノ酸配列が、バクテリオファージφ９２のｇｐ１３８のアミノ酸配列をＣ末端側に有するＹ１として配列番号５のアミノ酸配列が挙げられる。このＹ１のアミノ酸配列をコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。
　式（２）中、Ｙ２はバクテリオファージＴ４のｆｏｌｄｏｎと呼ばれる領域のアミノ酸配列、又は、バクテリオファージＰ２若しくはバクテリオファージＭｕ若しくはバクテリオファージφ９２のｔｉｐと呼ばれる領域のアミノ酸配列である。ｆｏｌｄｏｎ又はｔｉｐは、バクテリオファージのフィブリチンと呼ばれる分子針構造の先端部を構成する領域である。式（２）においてＹ２が存在することは必須とはいえないが、このｆｏｌｄｏｎ又はｔｉｐのアミノ酸配列を有することにより、細胞膜への分子針の取り込み効率を向上させることができるので、Ｙ２を伴っていることが好適である。バクテリオファージＴ４のｆｏｌｄｏｎのアミノ酸配列を配列番号６に示す。このアミノ酸配列をコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。
　バクテリオファージＰ２のｔｉｐのアミノ酸配列を配列番号７に示す。このアミノ酸配列をコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。バクテリオファージＭｕのｔｉｐのアミノ酸配列を配列番号８に示す。このアミノ酸配列をコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。バクテリオファージφ９２のｔｉｐのアミノ酸配列を配列番号９に示す。このアミノ酸配列をコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。
　Ｌ２は、前記Ｙ１とＹ２の間に介在する第２のリンカーである。リンカーＬ２のアミノ酸数は０－３０個であり、好適には０－５個である。リンカーのアミノ酸数が０個とは、第２のリンカーＬ２は存在しないことを示すものである。
　Ｙ３は、修飾用のアミノ酸配列であり、Ｙにおいて選択的に付加して用いることができる。当該修飾用のアミノ酸配列は、タンパク質精製や保護の目的等で付加するものであり、ヒスチジンタグ、ＧＳＴタグ、ＦＬＡＧタグ等のタグペプチド等が挙げられる。Ｙ３には、適宜リンカー配列を加えることが可能であり、このようなリンカー配列自体もＹ３のアミノ酸配列の構成要素となり得る。
　本発明の複合タンパク質は、公知の方法、具体的には、遺伝子工学的手法、又は、化学合成法により生産することができる。また、本発明の複合タンパク質全てを一緒に生産することも可能であり、パーツ毎に生産して当該パーツ同士を化学修飾法により事後的に結合させることにより生産することも可能である。リンカー（Ｌ１又はＬ２等）を介したポリペプチド同士の結合は、互いのポリペプチドにおけるリシン残基又はシステイン残基同士を、スクシンイミド基又はマレイミド基を有するリンカーにより結合させる等が可能である。
　遺伝子工学的手法では、生産対象の本発明の複合タンパク質の全部又は一部をコードする核酸を、例えば、大腸菌、酵母、昆虫細胞、動物細胞等の宿主細胞を形質転換体として、あるいは大腸菌抽出液、ウサギ網状赤血球抽出液、小麦胚芽抽出液等の無細胞発現系で発現させることができる。これらの核酸が組み込まれた発現用ベクターとしては、各発現系に応じたものを用いることができ、例えば大腸菌発現用のｐＥＴ、酵母発現用のｐＡＵＲ、昆虫細胞発現用のｐＩＥｘ－１、動物細胞発現用のｐＢＡｐｏ－ＣＭＶ、小麦胚芽抽出液発現用のｐＦ３Ａ等が挙げられる。
　化学合成法は、公知のペプチドの化学合成法を用いることが可能である。すなわち、常法として確立している液相ペプチド合成法、又は、固相ペプチド合成法を用いて、本発明の複合タンパク質の全部又は一部を製造することが可能である。そして、一般的に好適な化学合成法として認識されている固相ペプチド合成法も、Ｂｏｃ固相法又はＦｍｏｃ固相法を用いることが可能であり、上述のように、必要に応じてライゲーション法を用いることも可能である。また、個々のアミノ酸は、公知の方法により製造可能であり、市販品を用いることも可能である。
（２）本発明の会合体
　図１に、本発明の複合タンパク質を基にした、本発明の会合体である三量体と六量体の構築過程を示す。図１において、１０は、単量体としての本発明の複合タンパク質であり、２０は、本発明の三量体であり、３０は、本発明の六量体である。
　本発明の複合タンパク質１０は、「式（２）のＸｎとＹ１に該当する基本部分１３１」と「式（２）のＹ２に該当するｆｏｌｄｏｎ１３２」が結合した「式（１）のＹに該当する分子針領域１３」、及び、「式（１）のＷに該当する免疫原１１」が、「式（１）のＬ１に該当するリンカー１２」を介して結合して構成されている。リンカー１２以外のリンカーと、式（２）のＹ３に相当する修飾配列については、図示を省略した。本発明複合タンパク質１０自体には、標的組織の細胞の細胞膜を通過する機能は実質的に認められない。
　三量体３０は、上記の複合タンパク質１０が、３個の単量体として自発的に会合してなる三量体である。三量体３０は、上記の分子針領域１３が３個纏まり互いのＣ末端同士で会合することによって、三量体平行βシート構造、及び、当該βシート構造自身によるらせん構造（三重らせんβシート構造）と呼ばれる針状構造が形成され、分子針１３×３が形成されている。分子針１３×３は、基本部分１３１×３と、ｆｏｌｄｏｎ集合体１３２×３で構成されている。このように三量体化と自己組織化により標的組織の細胞の細胞膜を通過する機能を有する「分子針」が形成され、それぞれの単量体に由来するリンカー３本（１２１、１２２、１２３）と、これらのリンカーにそれぞれ結合している免疫原３個（１１１、１１２、１１３）が、この分子針１３×３の外側に存在している。
　六量体６０は、２単位の上記三量体３０が、互いの分子針の基本部分（（１３×３）１と（１３×３）２）のＮ末端において結合して構成される六量体であり、当該六量体６０もまた、標的組織の細胞の細胞膜通過機能を有している。それぞれの三量体に由来するリンカー６本（１２１、１２２、１２３、及び、１２５、１２６：１２４は図示せず）と、これらのリンカーにそれぞれ結合している免疫原６個（１１１、１１２、１１３、及び、１１５、１１６：１１４は図示せず）が、２本の分子針（１３×３）１と（１３×３）２の外側に存在している。
　本発明の複合タンパク質１０から、三量体３０への三量体化、及び、当該三量体３０から六量体６０へのマクロ的な２量体化は、水性液体中において自発的に進行し、三量体又は六量体として安定して存在する。この三量体又は六量体の安定性は極めて強いものであり、例えば、温度１００℃の水性液体環境下、さらにｐＨ２－１１の水性液体環境下、さらに有機溶媒を５０－７０容量％含む水性液体環境下であっても安定であり、その上、安全性にも優れている。水性液体から単離して乾燥させた状態でも、当該三量体又は六量体には優れた安定性と細胞膜透過性が認められる。
　上記のように、本発明の複合タンパク質から会合体への移行は、自発的に進行し、通常は大部分が最終形態である六量体化するが、一部は三量体として残る。
（３）本発明のワクチン
　本発明のワクチンは、その有効成分である本発明の会合体の優れた細胞透過性と免疫原性により、標的組織の細胞に、皮下投与、皮内投与、経皮投与、粘膜投与、又は筋肉内投与を介して免疫原であるウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部を効率よく移行させ、免疫を行うことが可能であり、これにより、皮下投与、皮内投与、経皮投与、粘膜投与、又は筋肉内投与による、ウイルスのコンポーネントワクチンの有効性と安全性を向上させることができる。その表れがアジュバンドフリーのワクチンとして用いることができる点である。粘膜投与する対象粘膜組織は、対象となるウイルスの罹患箇所等の性質に応じて自由に決定可能であり、特に限定されないが、鼻粘膜、喉粘膜、口腔粘膜、気管支粘膜、消化管粘膜、膣粘膜等が挙げられる。ＲＳウイルス等の気道炎（風邪）を引き起こすウイルスの場合は、鼻粘膜、喉粘膜、口腔粘膜、気管支粘膜、舌下粘膜、肺粘膜等が好適である。
　この粘膜投与形態のワクチンとして、上述した病原ウイルスの構造タンパク質を担持した分子針のみを有効成分とするコンポーネントワクチンをここに開示する。
　本発明のワクチンは、上述した本発明の会合体を有効成分（感染防御抗原）として含有する、皮下投与、皮内投与、経皮投与、粘膜投与又は筋肉内投与用の医薬品組成物として提供される。本発明の会合体の直接投与の場合であっても、当該会合体を緩衝液等において用時懸濁混合した液剤として、皮下投与、皮内投与、経皮投与、粘膜投与、又は筋肉内投与がなされるので、この会合体そのものの形態も医薬品組成物に含まれる。上記の粘膜投与の場合の剤形は、噴霧剤（エアロゾル剤、スプレー剤等）、カプセル剤、塗布剤等が好適な形態として挙げられる。
　本発明のワクチンは、必須の有効成分（感染防御抗原）である本発明の会合体、及び必要に応じて病原ウイルスの構造タンパク質を担持した分子針、さらに必要に応じて、アジュバンド（上記の分子針形態のものも含む）や、医薬製剤担体を配合して製剤組成物の形態に調製される。当該製剤担体としては、使用形態に応じて選択することが可能であり、充填剤、増量剤、結合剤、付湿剤、崩壊剤、界面活性剤等の賦形剤ないし希釈剤を使用することができる。組成物の形態は、基本的には液剤であるが、用時液体希釈用の乾燥剤、粉末剤、顆粒剤等とすることも可能である。
　本発明のワクチン中の本発明の会合体の量（構造タンパク質を担持した分子針の会合体も含む場合は、これを併せた量）は、適宜選択され一定ではないが、通常、本発明の会合体を、投与時に１－１０質量％含有する液剤として用いるのが好適である。適切な投与（接種）量は、１回成人１人当たり０．０１μｇ－１０ｍｇ程度であり、必要に応じて初回接種と追加接種を適宜組み合わせて、１回又は２回以上の投与（接種）を行うことが可能である。
　以下、本発明の実施例を開示する。
　本実施例の目的は、本発明の会合体におけるウイルスを対象とするコンポーネントワクチンの有効成分としての有用性、を示すことである。そしてこれを示す対象として、その現状のワクチン製造の困難性と有用性を鑑みて、ＲＳウイルス（ＲＳＶ）、オルソニューモウイルスともいう、を選択した。
　ＲＳウイルスは、世界中に広く分布しており、年齢を問わず、生涯にわたり顕性感染を引き起こすが、特に乳幼児期において非常に重要な病原体であり、母体からの移行抗体が存在するにもかかわらず、生後数週から数ヶ月の期間に最も重篤な症状を引き起こす。また、低出生体重児や、あるいは心肺系における基礎疾患や、免疫不全のある場合には重症化のリスクが高く、臨床上、公衆衛生上のインパクトは大きい。
　現在、認可されたＲＳＶワクチンはない。過去にホルマリン不活化ワクチンによる臨床試験が行われたが、対照群よりワクチン接種群の方が症状は悪化し、失敗に終わった。ＲＳＶ感染症に対する医薬品としては、ヒト化モノクローナル抗体のパリミズマブ（Ｐａｌｉｖｉｚｕｍａｂ）が予防用投与に用いられているのみであり、効果的なワクチンの登場が待望されている（以上、国立感染症研究所のウエブページより引用）。
［実施例１］　本発明の会合体の生産とその内容の確認
（ａ）前提事項
　本実施例では、遺伝子工学的手法を用いて、担持する免疫原をヒトノロウイルスＧＩＩ．４であるＬＭ１４－２株の非構造タンパク質の一つである「Ｖｐｇ(viral protein genome-linked)」とする本発明の複合タンパク質を調製した。Ｖｐｇは、ノロウイルスゲノム内のオープンリーディングフレーム１（ＯＲＦ１）に含まれる非構造タンパク質である。ＯＲＦ１は、ノロウイルスの一連の非構造タンパク質をコードしており、Ｎ末端タンパク質、ＮＴＰａｓｅ（ｐ４８）、ｐ２２（３Ａ様）、Ｖｐｇ、プロテアーゼ、及び、ＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ（ＲｄＲｐ）がそれぞれコードされ、ＯＲＦ１の全体翻訳後、当該プロテアーゼにより、それぞれの非構造タンパク質に切断され、成熟産物として機能する。これらの成熟産物のうち、ＶＰｇは、ゲノムＲＮＡ及びサブゲノムＲＮＡからの翻訳によってノロウイルスゲノム複製に必須の役割を果たすことが実証されており、リボソーム動員の際のキャップ代用品として機能する。本実施例において用いた免疫原であるＬＭ１４－２株のＶｐｇのアミノ酸配列は、配列番号１０（ただし、Ｎ末端のＭｅｔは、スタートコドンＡＴＧに由来するものである）に示した通りである。これをコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。
　この実施例１で使用したすべての試薬は、商業的供給元から購入し、さらに精製することなく使用した。ＨＮＶ－ＶＰｇの遺伝子断片は、北里大学ウイルス感染研究所の片山から提供されたプラスミドｐＨｕＮｏＶ－ＬＭ１４－２Ｆ（１－１２５５０塩基：配列番号１１）に組み込まれているヒトノロウイスＬＭ１４－２株のｃＤＮＡ部分（７６４０塩基：配列番号１２）に含まれていたものを用いた。ＶＰｇは、このＬＭ１４－２株のｃＤＮＡ部分（７６４０塩基）の２６３０塩基から３０２８塩基に相当する３７２塩基の配列（配列番号１３）である。この配列の５’末端にスタートコドンＡＴＧを付加して、発現に用いた。
　ＵＶ－ｖｉｓスペクトルは、ＳＨＩＭＡＤＺＵ　ＵＶ－２４００ＰＣ　ＵＶ－ｖｉｓ分光計で測定した。ＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ質量スペクトルは、Ｂｒｕｋｅｒ　ｕｌｔｒａｆｌｅＸｔｒｍｅで測定した。ＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ－ＭＳの測定は、試料を、０．０３％（ｗ／ｖ）シナピン酸及び０．１％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸を含む等容量の７０％（ｖ／ｖ）アセトニトリル／水溶液と混合した。ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）は、ＨＰＬＣシステム及びカラム（Ａｓａｈｉｐａｃｋ　ＧＦ－５１０ＨＱ、Ｓｈｏｄｅｘ、東京、日本）を用いて行った。
（ｂ）「ＰＮ－Ｖｐｇ」発現用プラスミドの作製と発現
　（ｂ）－１：　総論
　ここで「ＰＮ－Ｖｐｇ」とは、上述した式（１）：
　Ｗ－Ｌ１－Ｘｎ－Ｙ　　　（１）
と、式（１）の細胞導入領域Ｙを表す式（２）：
　Ｙ１－Ｌ２－Ｙ２－Ｙ３　　　（２）
において、
　免疫原Ｗが、配列番号１０のアミノ酸配列で表される「ＬＭ１４－２株－Ｖｐｇ」であり；第１のリンカーＬ１が、配列番号１４（ＳＮＳＳＳＶＰＧＧ）、１５（ＧＧＧＧＳ）、１６（ＰＡＰＡＰ）のアミノ酸配列であり；繰り返し配列Ｘｎの繰り返し単位が、配列番号１のアミノ酸配列であり、繰り返し数ｎは１であり；分子針の本体部分Ｙ１のアミノ酸配列が、配列番号２のアミノ酸配列であり；第２のリンカーＬ２が「ＳＶＥ」であり；フォールドンＹ２のアミノ酸配列が、配列番号６のアミノ酸配列であり；修飾配列Ｙ３のアミノ酸配列が、配列番号１７（ＶＥＨＨＨＨＨＨ）である、複合タンパク質である。
　ＰＮ－ＶＰｇのプラスミドは、フレキシブルリンカー（ＦＬ：ＳＮＳＳＳＶＰＧＧ（配列番号１４））を鋳型として構築し、これを基に短いフレキシブルリンカー（ｓＦＬ：ＧＧＧＧＳ（配列番号１５））、短いリジットリンカー（ｓＲＬ：ＰＡＰＡＰ（配列番号１６））の２種類のリンカーで構築して、これらを発現させ、自発的に生じる会合体の内容の解析を行い、三量体と六量体が含まれていることを確認した。そしてこれらの事項を基に、当面の目的であるＲＳウイルスのコンポーネントワクチンの製造と試験を行って、ウイルスの非構造タンパク質を用いた本発明の会合体が、コンポーネントワクチンとして非常に有用であることを示した。
　（ｂ）－２：　フレキシブルリンカー（ＦＬ：ＳＮＳＳＳＶＰＧＧ（配列番号１４））を用いた鋳型プラスミドの構築
　ＬＭ１４－２プラスミドからのＶＰｇセグメントを増幅は、遺伝子増幅用プライマーＶＰｇ＿Ｆ（ＮｄｅＩ制限酵素部位有り：ACGCCATATGGGCAAGAAAGGGAAGAACAAGTCC（配列番号１８））及びＶＰｇ＿Ｒ（ＥｃｏＲＩ制限酵素部位有り：GCTCGAATTCGACTCAAAGTTGAGTTTCTCATTGTAGTCAACAC（配列番号１９））の組を用いて、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行うことによって行った。その後、当該ＰＣＲ産物を、ＮｄｅＩ－ＥｃｏＲＩで消化したプラスミドｐＫＮ１－１（ＧＦＰ－ｇｐ５ｆ発現用プラスミド）（特許文献２）にクローニングした。
　当該プラスミドｐＫＮ１－１は、特許文献２における開示の通りに、まず、Ｔ４ファージのｗａｃタンパク質の４６１から４８４残基目に対応する遺伝子をＴ４ファージゲノムよりＰＣＲで増幅してｐＵＣ１８にクローニングし、ｆｏｌｄｏｎをコードする遺伝子を得た。続いて、このプラスミドを制限酵素ＥｃｏＲＩ及びＳａｌＩで切断し、ＥｃｏＲＩとＸｈｏＩで処理したプラスミドｐＥＴ２９ｂ（Ｎｏｖａｇｅｎ）に挿入し、プラスミドｐＭＴｆ１－３を得た。また、Ｔ４ファージのｇｐ５の４７４から５７５残基目に対応する遺伝子をＴ４ファージゲノムよりＰＣＲにより増幅してｐＵＣ１８にクローニングし、ｇｐ５をコードする遺伝子を得た。続いて、このプラスミドを制限酵素ＥｃｏＲＩ及びＳａｌＩで切断し、ＥｃｏＲＩとＸｈｏＩで処理した上述のプラスミドｐＭＴｆ１－３に挿入し、プラスミドｐＫＡ１７６を得た。また、群馬大・高橋より提供されたＧＦＰ発現ベクターを制限酵素ＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで切断し、ＧＦＰをコードする遺伝子を得、制限酵素ＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで処理した上述のプラスミドｐＫＡ１７６に組み込むことで作成された。
　クローニングされた遺伝子断片は大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）のコンピテント細胞に導入し、ＤＮＡ配列決定によって確認され、フレキシブルリンカー（ＳＮＳＳＳＶＰＧＧ：配列番号１５）を介在させたＰＮ及びＶＰｇのプラスミド構築物「ＰＮ－ＦＬ－ＶＰｇ」の存在が確認された。
　（ｂ）－３：　ｓＦＬ／ｓＲＬリンカーを用いた会合体の生産と、その内容の確認
　配列番号１６の「短いリジットリンカー」（ｓＲＬ：ＰＡＰＡＰ）を、リンカーＬ1として介在させるための、遺伝子増幅用プライマーＶＰｇＰＡ－Ｆ（ＸｈｏＩ制限部位有り：CCGGCTCCGGCCCCACTCGAGGGAAGCAATACAATATTTGTACG（配列番号２０））と、ＶＰｇＰＡ－Ｒ（CTCAAAGTTGAGTTTCTCATTGTAGTCAACAC（配列番号２１））の組、並びに、配列番号１５の「短いフレキシブルリンカー」（ｓＦＬ：ＧＧＧＧＳ）を、リンカーＬ1として介在させるための、遺伝子増幅用プライマーＶＰｇＧＳ－Ｆ（ＸｈｏＩ制限部位有り：GGAGGCGGGGGTTCACTCGAGGGAAGCAATACAATATTTGTACG（配列番号２２）とＶＰｇＧＳ－Ｒ（上記のＶＰｇＰＡ－Ｒ（配列番号２１）と同じ）の組、を「ＰＮ－ＦＬ－ＶＰｇ」を鋳型としたインバーテッドＰＣＲの遺伝子増幅用プライマーとして、それぞれ別個に用いて、プラスミド構築物「ＰＮ－ｓＲＬ－ＶＰｇ」（Ｌ1は配列番号１６の短いリジットリンカー）及び「ＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇ」（Ｌ1は配列番号１５の短いフレキシブルリンカー）を構築した。
　次いで、これらの２種のプラスミドをＤＨ５αコンピテント細胞に導入した。得られたベクターをＤＮＡ塩基配列決定法により検証した後、ＰＮ－ｓＲＬ－ＶＰｇ及びＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇの発現を行った。
　発現させた「ＰＮ－ｓＲＬ－ＶＰｇ」および「ＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇ」については、それぞれＮｉアフィニティーカラムに添加した後のタンパク質を、イミダゾール濃度が２０～５００ｍＭのより高いイミダゾール濃度勾配および１ｍＭ　ＤＴＴで溶出した。ＰＮ－ＶＰｇを含むこれらの画分を合わせ、容量を５ｍｌに減らし、４℃で一晩２０ｍＭトリス－ＨＣｌ　ｐＨ８．０を含む緩衝液中で透析膜により緩衝液を変更した。濃縮物を０．２μｍのフィルターで濾過し、次いでＨｉＴｒａｐ　Ｑカラムに添加し、塩化ナトリウムの段階濃度勾配（０－１Ｍ）で溶出した。ＰＮ－ＶＰｇ（短いリンカー）含有画分をＮａｔｉｖｅ　ＰＡＧＥおよびＳＤＳ－ＰＡＧＥにより同定した。
　ＳＤＳ　ＰＡＧＥの結果は、ＰＮ－ＶＰｇ（ｓＦＬ／ｓＲＬリンカー）、約３１ｋＤａの計算されたモノマーと同じ分子量を有するバンドを示した（図示せず）。それに加えて、ＰＮ－ｓＲＬ－ＶＰｇに関して、ＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ質量スペクトルの結果は、単量体のシグナル（図２（ａ）：ｍ／ｚ観測値：３１９５５、ｍ／ｚ計算値：３１５１４）、三量体（図２（ｂ）：ｍ／ｚ観測値：９５２５７、ｍ／ｚ計算値：９４５４２）、六量体(trimer-dimer)（図２（ｃ）：ｍ／ｚ観測値：１９０９２９、ｍ／ｚ計算値：１８９０８４）をそれぞれ示した。さらにＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇのＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ質量スペクトルは、ＰＮ－ｓＦＬ－ＶＰｇモノマー（図３（ａ）：ｍ／ｚ観測値：３１２６６、ｍ／ｚ計算値：３１３９６）、三量体（図３（ｂ）：ｍ／ｚ観測値：９３８５７、ｍ／ｚ計算値：９４１８８）、六量体(trimer-dimer)（図３（ｃ）：ｍ／ｚ観測値：１８７２１８、ｍ／ｚ計算値：１８８３７６）をそれぞれ示した。
　これらの結果は、本発明の会合体が三量体と六量体を含有することを示している。
［実施例２］　ＲＳウイルスに対するコンポーネントワクチン
（ａ）前提事項
　本実施例では、遺伝子工学的手法を用いて、担持する免疫原をヒトＲＳウイルスであるＬｏｎｇ株の非構造タンパク質の一つである「Ｐタンパク質（リン酸化タンパク質：リン酸化を司るタンパク質）」とする本発明の複合タンパク質を調製した。Ｐタンパク質は、ＲＳウイルスゲノム内にＰタンパク質のメッセンジャーＲＮＡの鋳型配列としてコードされている。ＲＳウイルスはウイルス粒子内部にゲノムとしてマイナス鎖を持っており、図４において示した位置にそれぞれのタンパク質のメッセンジャーＲＮＡのコンプリメンタリー鎖が存在している。ＲＳウイルスは細胞に感染すると、マイナス鎖ゲノムを鋳型としてＲＮＰ（前述）がそれぞれのタンパク質のメッセンジャーＲＮＡを合成する。各種メッセンジャーＲＮＡは開始コドンと終止コドンを持っており、細胞内で翻訳されることにより、各種タンパク質を産生する。翻訳されたウイルスタンパク質は、成熟行程を経てウイルスタンパク質として機能する。Ｐタンパク質は４量体を形成し、Ｃ末端側でＬタンパク質とＲＮＰに結合することにより、両者の結合を媒介する。また、Ｎ末端では遊離のＮタンパク質を合成途上のＲＮＡに結合させるシャペロンとして機能している。ＲＮＰは宿主細胞膜由来のエンベロープに囲まれ、その表面には、レセプター結合タンパク質と融合(fusion)タンパク質（Ｆタンパク質）の２種類のウイルス糖タンパク質がスパイクを形成している。
　本実施例においては、非構造タンパク質であるＷとして、上記のＰタンパク質を選択した。実際に用いた免疫原であるＲＳＶ　Ｌｏｎｇ株のＰタンパク質（ＲＳＶ－Ｐ）のアミノ酸配列は、配列番号２３「MEKFAPEFHGEDANNRATKFLESIKGKFTSPKDPKKKDSIISVNSIDIEVTKESPITSNSTIINPTNETDDNAGNKPNYQRKPLVSFKEDPIPSDNPFSKLYKETIETFDNNEEESSYSYEEINDQTNDNITARLDRIDEKLSEILGMLHTLVVASAGPTSARDGIRDAMVGLREEMIEKIRTEALMTNDRLEAMARLRNEESEKMAKDTSDEVSLNPTSEKLNNLLEGNDSDNDLSLDDF」であり、これをコードする核酸配列は、アミノ酸と核酸塩基の公知の関係に従って選択することができる。本実施例においては、「ATGGAAAAGTTTGCTCCTGAATTCCATGGAGAAGATGCAAACAACAGGGCTACTAAATTCCTAGAATCAATAAAGGGCAAATTCACATCACCTAAAGATCCCAAGAAAAAAGATAGTATCATATCTGTCAACTCAATAGATATAGAAGTAACCAAAGAAAGCCCTATAACATCAAATTCAACCATTATTAACCCAACAAATGAGACAGATGATAATGCAGGGAACAAGCCCAATTATCAAAGAAAACCTCTAGTAAGTTTCAAAGAAGACCCTATACCAAGTGATAATCCCTTTTCAAAACTATACAAAGAAACCATAGAGACATTTGATAACAATGAAGAAGAATCTAGCTATTCATATGAAGAAATAAATGATCAGACGAACGATAATATAACTGCAAGATTAGATAGGATTGATGAAAAATTAAGTGAAATACTAGGAATGCTTCACACATTAGTAGTAGCAAGTGCAGGACCTACATCTGCTAGGGATGGTATAAGAGATGCCATGGTTGGTTTAAGAGAAGAAATGATAGAAAAAATCAGAACTGAAGCATTAATGACCAATGACAGATTAGAAGCTATGGCAAGACTCAGGAATGAGGAAAGTGAAAAGATGGCAAAAGACACATCAGATGAAGTGTCTCTCAATCCAACATCAGAGAAATTGAACAACCTGTTGGAAGGGAATGATAGTGACAATGATCTATCACTTGATGATTTC（TGA）」（配列番号２４）を用いた。
　この実施例２で使用したすべての試薬は、商業的供給元から購入し、さらに精製することなく使用した。ＲＳＶ－Ｐの遺伝子断片は、北里大学生命医科学研究所ウイルス感染制御学Ｉの澤田から提供されたＲＳＶ－Ｌｏｎｇ株のゲノムＲＮＡより、Ｐタンパク質の遺伝子配列から末端のストップコドン（上記括弧内のＴＧＡ）を除いた部分を増幅して得た。
（ｂ）「ＰＮ－Ｐタンパク質」発現用プラスミドの作製と発現
　本実施例では、「実施例１（ｂ）－２」にて得られた、鋳型プラスミド構築物「ＰＮ－ＦＬ－ＶＰｇ」を鋳型として、ＲＳＶ－Ｌｏｎｇ株よりＰＣＲで増幅させたＰタンパク質をコードする核酸配列（配列番号２４）から末端のストップコドン（ＴＧＡ）を除いた遺伝子断片を、ＩｎＦｕｓｉｏｎクローニング法によりＶｐｇと入れ替えて、所望のプラスミド構築物「ＰＮ－ＦＬ－Ｐ」を構築した。
　すなわち、ＩｎＦｕｓｉｏｎ　ＲＳ－Ｐ　ｓｅｎｓｅ　5'-GGAGATATACATATGGAAAAGTTTGCTCCTGA-3'（配列番号２５）とＩｎＦｕｓｉｏｎ　ＲＳ－Ｐ　ａｎｔｉｓｅｎｓｅ　5'-TGAACCCCCGCCTCCGAAATCATCAAGTGATAGAT-3'（配列番号２６）でＰ領域を増幅して、下線部分が付加されたＰ領域の増幅産物を得た。一方、鋳型プラスミド構築物「ＰＮ－ＦＬ－ＶＰｇ」を鋳型として、5'-GGAGGCGGGGGTTCA-3'（配列番号２７）、5'-ATGTATATCTCCTTCTTAAAG-3'（配列番号２８）をプライマーとしてインバーテッドＰＣＲでＶＰｇの配列を除くベクター部分全体を増幅して、ベクターボディーとして準備した。これら二つのフラグメントをＩｎＦｕｓｉｏｎクローニングによって連結し、所望のプラスミド構築物「ＰＮ－ＦＬ－Ｐ」を得た。
　次いで、このプラスミドをＤＨ５αコンピテント細胞に導入した。得られたベクターをＤＮＡ塩基配列決定法により検証した後、ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐの発現を行った。
　この「ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ」のプラスミドを保有する大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）を３０μｇ／ｍｌのカナマイシンを含むＬＢ培地で３７℃で一晩培養した。３７℃でインキュベートした溶液のＯＤ６００が０．８に達した後、１ｍＭイソプロピルβ－Ｄ－１－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）とアラビノースを添加した。ＩＰＴＧとアラビノースを添加して１６－１７時間後に８０００ｒｐｍで５分間遠心分離して細菌を回収し、１８０ｒｐｍの速度で２０℃でインキュベートした。次いで、細胞ペレットを、１００ｍＭトリス－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、５ｍＭイミダゾールを含有する緩衝液中で氷上で１錠のｃＯｍｐｌｅｔｅ，ＥＤＴＡ－ｆｒｅｅと共に懸濁し、超音波処理によって溶解した。細胞破片を遠心分離（１７，５００ｒｐｍで５０分間）により除去した。上清を０．８μｍのフィルターでろ過し、Ｎｉアフィニティーカラムに添加し、４℃で５ｍＭ－２５０ｍＭのイミダゾールの直線濃度勾配で同じバッファーで溶出した。次いで、このＰＮ－ＦＬ－Ｐ会合体を、２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ　ｐＨ８．０、０．２Ｍ　ＮａＣｌで透析後さらにＰＢＳに透析して、限外濾過で濃縮した。この過程において、ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐは、自発的に三量体及び／又は六量体を含有する会合体となっている。これを「ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐの会合体」として免疫試験に用いた。また対照として、上記のＰタンパク質をコードする塩基配列を基に、「ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ」の発現から回収の一連の過程に準じた常法得られた組換えＰタンパク質（以下、Ｐタンパク質と略記する）を準備した。
　免疫試験は、１０μｇ／ｍＬ　ＰＢＳの溶液（精製抗原）として、鼻腔免疫にて行った。
（ｃ）実施例２の免疫試験（１）（抗体価の測定）
　上記のＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ会合体（ＰＮ（＋））、Ｐタンパク質（ＰＮ（－））を、それぞれＲＳウイルス感受性のコットンラットに経鼻接種を行った。全ての経鼻接種は鼻腔内へのワクチン液の滴下・吸引による接種であり、一匹あたり１ｍＬ（１０μｇ）の精製抗原を、麻酔下にて鼻腔に吸引させることにより行った。この経鼻接種は、初回接種後、一週間置きに、計３回行い、初回接種前、初回接種から１週間後（１回目の追加接種前）、初回接種から２週間後（２回目の追加接種前）、初回接種から３週間後（３回目の追加接種前）、初回接種から７週間後それぞれにて採血を行い、ＲＳＶＰタンパク質と反応させ、ＥＬＩＳＡ法によりＲＳＶＰタンパク質に対するＩｇＧ、ＩｇＡ抗体価を測定した。
　なお、初回接種から８週間後に最後の追加接種を行った。
　ＥＬＩＳＡ法は、抗原（ＲＳＶＰタンパク質）をＰＢＳ（－）で２μｇ／ｍＬに希釈し、９６穴ＥＬＩＳＡプレートに５０μＬ／ｗｅｌｌずつ添加し、４℃で一晩インキュベートを行い、ＰＢＳＴ（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０／ＰＢＳ）でプレートを計３回洗浄し、各プレートにＰＢＳＢ（１％ＢＳＡ／ＰＢＳ）を８０μＬ／ｗｅｌｌずつ添加し、室温で２時間インキュベートして、ブロッキングを行った。次に被験血清をＰＢＳＢで希釈し、調製して被験サンプルとした（ＩｇＧ検出：１０－３１２５０倍まで５倍の系列希釈、ＩｇＡ検出：１０－２４３０倍まで３倍の系列希釈）。プレート内のＰＢＳＢを棄てて、各被験サンプルを５０μＬ／ｗｅｌｌずつ、プレートに添加して、室温で２時間インキュベート後、ＰＢＳＴでプレートを５回洗浄した。ＨＲＰ基質溶液を５０μＬ／Ｗｅｌｌずつプレートに添加し、発色が確認できるまで、室温で遮光してインキュベートを行った。２Ｍ硫酸を２５μＬ／Ｗｅｌｌずつプレートに添加し反応を停止し、４９０ｎｍの吸光度を測定した。
　上記３週間後（３Ｗ）と７週間後（７Ｗ）の結果を、図５（ＩｇＧ）と図６（ＩｇＡ）に示す。両図とも、縦軸は吸光度、横軸は希釈倍率を示している。これらの図においては、被験コットンラットの個体毎の結果を示した。これらの結果は、Ｐタンパク質を直接免疫してもＩｇＧ、ＩｇＡ共に抗体価を示す吸光度が上昇しなかったのに対して、本発明の会合体として免疫した場合には、これらの値が著しく上昇したことを示している。しかも、アジュバンドを全く用いていないにもこれだけ顕著に抗体価が上昇したことは特筆すべきことであり、アジュバンドフリーのワクチンとして用いることが可能であることを示している。
　ＲＳウイルス感染は、飛沫感染によりウイルスを吸い込むことにより起こる。すなわち、主な感染経路が口腔、鼻腔であるため、経鼻接種で鼻腔粘膜細胞内に会合体が細胞膜に対して直接貫通導入され、鼻腔粘膜細胞内にＰタンパク質が注入され、鼻腔内での細胞性免疫及び液性免疫を誘導し、ＲＳウイルスに対する防御免疫が惹起された。このようにＲＳウイルスの非構造タンパク質を担持した分子ニードルを免疫原として経鼻接種することにより、局所免疫が誘導され、ＲＳウイルスに対する感染防御、症状軽減効果が得られることが明らかになった。特に、ＲＳウイルスの非構造タンパクであるＰタンパク質に対するＩｇＡを誘導したことは、血液中で作出されたＩｇＡが細胞内を通過して粘膜層に分泌される際、Ｐタンパク質に結合し、Ｐタンパク質の機能を阻害することが見込まれる。
（ｄ）実施例２の免疫試験（２）（肺の炎症抑制効果）
　本試験では、ＲＳウイルスの非構造タンパク質を担持した分子ニードルで免疫したＲＳウイルス感受性のコットンラットにおける、ＲＳウイルス感作による肺の炎症の抑制効果の直接的な検討を行った。
　上記のＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ会合体（ＰＮ（＋））、Ｐタンパク質（ＰＮ（－））を、それぞれＲＳウイルス感受性のコットンラットに経鼻接種を行った。全ての経鼻接種は、一匹あたり１ｍＬ（１０μｇ）の精製抗原を、麻酔下にて鼻腔に吸引させることにより行った。この鼻腔接種は、上記「免疫試験（１）」と同様に、初回接種後、一週間置きに、計３回追加接種を行い、さらに初回接種から８週間後に最後の追加接種を行い、この１週間後に被験ラットにＲＳウイルスの感染を行った。ＲＳウイルスの感染量は、２×１０５ＰＦＵ／ｍＬで、ワクチン接種と同様の方法（経鼻接種）にて行った。
　上記感染４日後に被験ラットの肺組織を回収して、肺内のＲＳウイルスの感染量を、感染の標的組織である肺を摘出し、ホモジェナイザーで培地に懸濁して、ウイルスを放出させ、肺組織５０ｍｇ中に含まれる感染性ウイルス量をプラークアッセイで求めることで測定した。
　被験ラットとして、これらの他に、ポジティブコントロール（事前の経鼻接種を行わずにＲＳウイルスの感染を行った上記コットンラット）とネガティブコントロール（事前の経鼻接種もＲＳウイルスの感染も行わない上記コットンラット）を用いた。
　結果を、図７に示す。図７において、横軸の「Ｎｏｔ　ｉｎｆｅｃｔｅｄ」はネガティブコントロール（ｎ＝１）を、ＰＮ（＋）はＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ会合体（ｎ＝３）を、ＰＮ（－）はＰタンパク質（ｎ＝３）を、「Ｎｏｔ　ｉｍｍｕｎｉｚｅｄ」はポジティブコントロール（ｎ＝３）を示している。縦軸は、回収した肺組織におけるＲＳウイルスの力価（ＰＦＵ／５０ｍｇ肺組織）である。図７により、ＰＮ－ｓＦＬ－Ｐ会合体を投与したラットは、ＲＳウイルス感染ラット（ポジティブコントロール）と比較して、ＲＳウイルス感染を１／２以上、有意差（Ｐ＜０．０００１）を伴って抑制した。
　この結果より、本発明のワクチンが実質的なウイルス感染抑制効果を、特に粘膜免疫誘導、細胞性免疫誘導などの局所的免疫誘導によって発揮することが明らかになった。
［実施例３］　ＲＳウイルスの構造タンパク質を担持した場合
　前述したように、ＲＳＶのＲＮＰは宿主細胞膜由来のエンベロープに囲まれ、その表面には、レセプター結合タンパク質と融合(fusion)タンパク質（Ｆタンパク質）の２種類のウイルス糖タンパク質（構造タンパク質）がスパイクを形成している。ここでは、構造タンパク質である、上記Ｆタンパク質の中和エピトープ領域を構成する１３アミノ酸から構成されるペプチド（配列番号２９：DMPITNDQKKLMS）が、４個直列に連結された（４重）融合タンパク質を免疫原Ｗとして担持させた会合体を製造し、これに対して上記実施例の免疫試験に準じた試験を行った。
　ＲＳＶのＦタンパク質は、５７４アミノ酸（配列番号３０：MELPILKANAITTILAAVTFCFASSQNITEEFYQSTCSAVSKGYLSALRTGWYTSVITIELSNIKENKCNGTDAKVKLINQELDKYKNAVTELQLLMQSTTAANNRARRELPRFMNYTLNNTKKTNVTLSKKRKRRFLGFLLGVGSAIASGIAVSKVLHLEGEVNKIKSALLSTNKAVVSLSNGVSVLTSKVLDLKNYIDKQLLPIVNKQSCRISNIETVIEFQQKNNRLLEITREFSVNAGVTTPVSTYMLTNSELLSLINDMPITNDQKKLMSNNVQIVRQQSYSIMSIIKEEVLAYVVQLPLYGVIDTPCWKLHTSPLCTTNTKEGSNICLTRTDRGWYCDNAGSVSFFPQAETCKVQSNRVFCDTMNSLTLPSEVNLCNVDIFNPKYDCKIMTSKTDVSSSVITSLGAIVSCYGKTKCTASNKNRGIIKTFSNGCDYVSNKGVDTVSVGNTLYYVNKQEGKSLYVKGEPIINFYDPLVFPSDEFDASISQVNEKINQSLAFIRKSDELLHHVNAGKSTTNIMITTIIIVIIVILLSLIAVGLLLYCKARSTPVTLSKDQLSGINNIAFSN：GenBank accession # AY911262）から構成される。２６３番目から２７５番目のアミノ酸領域は中和抗体が認識するエピトープ領域である。このＦタンパク質のエピトープ領域を（ＧＧＧＧ）を介して４つ直列につないだ（４重）融合タンパク質をコードする遺伝子を作出し、さらにリンカー（ＧＧＧＧＳ：配列番号１５）を介して、ＰＮと融合するように設計したプラスミド（ｐＥＴ２９ｂ（＋）／Ｆ－ＰＮ）を作製し、これを大腸菌（ＢＬ２１　ＤＥ３）において形質転換し（図８）、ＩＰＴＧで誘導発現を行った。誘導発現体を可溶化タンパク質として回収し、ＴＡＩＲＯＮにより上記４重融合タンパク質の会合体（Ｆｎｅｐ×４－ＰＮ会合体（ＰＮ（＋））を精製して、本実施例３の免疫試験を行った。
（ａ）実施例３の免疫試験（１）（抗体価の測定）
　上記のＦｎｅｐ×４ＰＮ会合体（ＰＮ（＋））、上記のＦタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質（ＰＮ（－））を、それぞれＲＳウイルス感受性のコットンラットに経鼻接種を行った。全ての経鼻接種は鼻腔内へのワクチン液の滴下・吸引による接種であり、一匹あたり１ｍＬ（２０μｇ）の精製抗原を、麻酔下にて鼻腔に吸引させることにより行った。この経鼻接種は、初回接種後、一週間置きに、計３回行い、初回接種前、初回接種から１週間後（１回目の追加接種前）、初回接種から２週間後（２回目の追加接種前）、初回接種から３週間後（３回目の追加接種前）、初回接種から７週間後それぞれにて採血を行い、Ｆタンパク質と反応させ、ＥＬＩＳＡ法によりＦタンパク質に対するＩｇＧ、ＩｇＡ抗体価を測定した。
　なお、初回接種から９週間後に最後の追加接種を行った。
　ＥＬＩＳＡ法の要領は、上記実施例２と同様の要領で行った。ただし、上記のように、抗原はＦタンパク質を用いた。
　上記３週間後の結果を、図９（ＩｇＡとＩｇＧについての結果）に示す。縦軸は吸光度、横軸は希釈倍率を示している。この図においては、被験コットンラットの個体毎の結果を示した。これらの結果は、Ｆタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質を直接免疫してもＩｇＧ、ＩｇＡ共に抗体価を示す吸光度が上昇しなかったのに対して、Ｆｎｅｐ×４ＰＮ会合体として免疫した場合には、これらの値が上昇したことを示している。この抗体価の上昇は、ＩｇＧにおいて顕著であったが、ＩｇＡにおいてはバラツキがあった。
（ｂ）実施例３の免疫試験（２）（肺の炎症抑制効果）
　本試験では、ＲＳウイルスの構造タンパク質である、Ｆタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質を担持した分子ニードルで免疫したＲＳウイルス感受性のコットンラットにおける、ＲＳウイルス感作による肺の炎症の抑制効果の直接的な検討を行った。
　上記のＦｎｅｐ×４ＰＮ会合体（ＰＮ（＋））、Ｆタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質（ＰＮ（－））を、それぞれＲＳウイルス感受性のコットンラットに経鼻接種を行った。全ての経鼻接種は、一匹あたり１ｍＬ（２０μｇ）の精製抗原を、麻酔下にて鼻腔に吸引させることにより行った。この鼻腔接種は、上記「免疫試験（１）」と同様に、初回接種後、一週間置きに、計３回追加接種を行い、さらに初回接種から７週間後に最後の追加接種を行い、この２週間後に被験ラットにＲＳウイルスの感染を行った。ＲＳウイルスの感染量は、２×１０５ＰＦＵ／ｍＬで、ワクチン接種と同様の方法（経鼻接種）にて行った。
　上記感染４日後に被験ラットの肺組織を回収して、肺内のＲＳウイルスの感染量を、感染の標的組織である肺を摘出し、ホモジェナイザーで培地に懸濁して、ウイルスを放出させ、肺組織５０ｍｇ中に含まれる感染性ウイルス量をプラークアッセイで求めることで測定した。
　被験ラットとして、これらの他に、ポジティブコントロール（事前の経鼻接種を行わずにＲＳウイルスの感染を行った上記コットンラット）とネガティブコントロール（事前の経鼻接種もＲＳウイルスの感染も行わない上記コットンラット）を用いた。
　結果を、図１０に示す。図１０において、横軸の「Ｎｏｔ　ｉｎｆｅｃｔｅｄ」はネガティブコントロール（ｎ＝１）を、ＰＮ（＋）はＦｎｅｐ×４ＰＮ会合体（ｎ＝３）を、ＰＮ（－）はＦタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質（ｎ＝３）を、「Ｎｏｔ　ｉｍｍｕｎｉｚｅｄ」はポジティブコントロール（ｎ＝３）を示している。縦軸は、回収した肺組織におけるＲＳウイルスの力価（ＰＦＵ／５０ｍｇ肺組織）である。図１０により、Ｆｎｅｐ×４ＰＮ会合体を投与したラットは、ＲＳウイルス感染ラット（ポジティブコントロール）と比較して、ＲＳウイルス感染を３６％程度、有意差（Ｐ＜０．０００１）を伴って抑制した。
　この結果より、実施例３のＲＳウイルスの構造タンパク質であるＦタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質会合体を用いたニードルワクチンにおいても、粘膜免疫誘導、細胞性免疫誘導などの局所的免疫誘導が認められることが明らかになった。しかしながら、非構造タンパク質を用いた本発明のワクチンの効果よりも弱い傾向も認められた。これは、Ｆタンパク質中和エピトープの４重融合タンパク質会合体で免疫され、誘導された、いわゆる粘膜上皮のムチン層に分泌されるセクレトリーＩｇＡ（ｓＩｇＡ）のウイルス中和効果だけでは、ウイルスの感染増殖を抑える力は限定的であることを示している。これに対して、本発明のワクチン（非構造タンパク質であるＰタンパク質を用いた分子ニードル）では、本発明のワクチンで免疫することにより誘導される、細胞性免疫の働きにより、ＲＳウイルスの感染増殖を、より効果的に抑制することができる。さらに、血液中のＢ細胞で合成されるＩｇＡ分子が、上皮細胞の基底膜側から粘膜上皮に向かって分泌される際、細胞内を通過する途上でＰタンパク質とウイルスのポリメラーゼとの間で形成されるＰ－ポリメラーゼ複合体の形成が妨害されることが、本発明のワクチンにおけるさらなる効果となって現れると考えられる。
　ただし、例えば、実施例２のＲＳウイルスの非構造タンパク質であるＰタンパク質を担持した本発明の会合体と、実施例３のＲＳウイルスの構造タンパク質であるＦタンパク質の中和エピトープの４重融合タンパク質会合体等の構造蛋白質を担持させた分子ニードルを、組み合わせて有効成分としたコンポーネントワクチンは、これらの組合せによる相乗効果が期待される。

Claims (9)

  1. 　下記式（１）のアミノ酸配列：
    　Ｗ－Ｌ１－Ｘｎ－Ｙ　　　（１）
    　［式中、Ｗは免疫原である病原ウイルスの非構造タンパク質の一部又は全部を１個又は２個以上含むアミノ酸配列を示し、Ｌ１はアミノ酸数が０－１００の第１のリンカー配列を示し、Ｘは配列番号１のアミノ酸配列を示し、Ｙは細胞導入領域のアミノ酸配列を示し、Ｘの繰り返し数であるｎは１－３の整数である。］
    であって、
    　当該細胞導入領域Ｙのアミノ酸配列は、下記式（２）：
    　Ｙ１－Ｌ２－Ｙ２－Ｙ３　　　（２）
    　［式中、Ｙ１は配列番号２－５からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を示し、Ｙ２は配列番号６－９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を示し、Ｌ２はアミノ酸数が０－３０の第２のリンカー配列を示し、Ｙ３は修飾用のアミノ酸配列を示し、Ｙ２又はＹ３は存在しない場合もある。］
    で表され、上記式の、Ｘｎ、Ｙ１、又は、Ｙ２で示されるアミノ酸配列のうち、１個以上のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された改変アミノ酸配列であり得る複合タンパク質。
  2. 　上記式の、Ｘｎ、Ｙ１、又は、Ｙ２で示されるアミノ酸配列のうち、１個以上のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された改変アミノ酸配列における、各々のアミノ酸配列におけるアミノ酸改変は、Ｘｎが８ｎ個以内、Ｙ１が３０個以内、及びＹ２が１５個以内である、請求項１に記載の複合タンパク質。
  3. 　請求項１又は２に記載の複合タンパク質をコードする核酸を組み込んでいる遺伝子発現用ベクター。
  4. 　請求項１又は２に記載の複合タンパク質をコードする核酸で形質転換された形質転換体。
  5. 　請求項１又は２のいずれか１項に記載の１種又は２種以上の複合タンパク質を水性液体中で会合させてなる会合体。
  6. 　請求項１又は２に記載の１種又は２種以上の複合タンパク質を単量体タンパク質とする、三量体タンパク質及び／又は六量体タンパク質を含有する会合体。
  7. 　請求項１又は２に記載の１種又は２種以上の複合タンパク質を水性液体中で会合させてなる会合体を有効成分とする、コンポーネントワクチン。
  8. 　請求項１又は２に記載の１種又は２種以上の複合タンパク質を単量体タンパク質とする三量体タンパク質及び／又は六量体タンパク質を含有する会合体を有効成分とする、コンポーネントワクチン。
  9. 　皮下、皮内、経皮、粘膜又は筋肉内投与用のコンポーネントワクチンである、請求項７又は８に記載のコンポーネントワクチン。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022149609A1 (ja) * 2021-01-07 2022-07-14 国立大学法人東京工業大学 Ｍｈｃ分子に適合する病原微生物由来のペプチドが担持された複合蛋白質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン、並びに、免疫後の生理活性物質の分泌に関する情報の取得方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2015163056A (ja) 2014-02-28 2015-09-10 国立大学法人東京工業大学 標的タンパク質の細胞内導入剤、核酸及び標的タンパク質の細胞内導入方法
WO2018074558A1 (ja) 2016-10-23 2018-04-26 デンカ株式会社 複合ポリペプチド単量体、細胞浸透機能を有する当該複合ポリペプチドの単量体の会合体、及び、当該会合体を有効成分とする皮下、皮内、経皮又は筋肉内投与用ノロウイルスコンポーネントワクチン

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2014310934B2 (en) * 2013-08-21 2019-09-12 CureVac SE Respiratory syncytial virus (RSV) vaccine

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2015163056A (ja) 2014-02-28 2015-09-10 国立大学法人東京工業大学 標的タンパク質の細胞内導入剤、核酸及び標的タンパク質の細胞内導入方法
WO2018074558A1 (ja) 2016-10-23 2018-04-26 デンカ株式会社 複合ポリペプチド単量体、細胞浸透機能を有する当該複合ポリペプチドの単量体の会合体、及び、当該会合体を有効成分とする皮下、皮内、経皮又は筋肉内投与用ノロウイルスコンポーネントワクチン

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"GenBank", Database accession no. AY911262
KADKHODAYAN, S. ET AL.: "Combination of cell penetrating peptides and heterologous DNA prime/protein boost strategy enhances immune responses against HIV-1 Nef antigen in BALB/c mouse model", IMMUNOLOGY LETTERS, vol. 188, 2017, pages 38 - 45, XP085138107, DOI: 10.1016/j.imlet.2017.06.003 *
QUE DAN NGUYEN, KAZUHIKO KATAYAMA, TAKAFUMI UENO: "2ESA03 Protein needle conjugated with cargo protein derived from norovirus", POLYMER PREPRINTS, vol. 67, no. 2, 30 November 2017 (2017-11-30), JP, pages 1 - 2, XP009535347 *
See also references of EP4026558A4
TANG, J. ET AL.: "A novel self-assembled nanoparticle vaccine with HIV-1 Tat49-57/HPV16 E749-57 fusion peptide and GM-CSF DNA elicits potent and prolonged CD 8+ T cell -dependent anti- tumor immunity in mice", VACCINE, vol. 30, no. 6, 2012, pages 1071 - 1082, XP028888925, DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.12.029 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022149609A1 (ja) * 2021-01-07 2022-07-14 国立大学法人東京工業大学 Ｍｈｃ分子に適合する病原微生物由来のペプチドが担持された複合蛋白質単量体、当該単量体の会合体、及び当該会合体を有効成分とするコンポーネントワクチン、並びに、免疫後の生理活性物質の分泌に関する情報の取得方法

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