WO2018151046A1 - 肺線維症治療剤、ptprr発現促進剤及び肺線維症治療用キット - Google Patents

肺線維症治療剤、ptprr発現促進剤及び肺線維症治療用キット Download PDF

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WO2018151046A1
WO2018151046A1 PCT/JP2018/004623 JP2018004623W WO2018151046A1 WO 2018151046 A1 WO2018151046 A1 WO 2018151046A1 JP 2018004623 W JP2018004623 W JP 2018004623W WO 2018151046 A1 WO2018151046 A1 WO 2018151046A1
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WO
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pulmonary fibrosis
cells
mesenchymal stem
stem cells
therapeutic agent
Prior art date
Application number
PCT/JP2018/004623
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English (en)
French (fr)
Inventor
古野 哲生
利洋 伊藤
弘 木村
雅則 吉川
牧子 澤田
Original Assignee
ロート製薬株式会社
公立大学法人奈良県立医科大学
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/28Bone marrow; Haematopoietic stem cells; Mesenchymal stem cells of any origin, e.g. adipose-derived stem cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00Drugs for disorders of the respiratory system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Definitions

  • the present invention relates to a pulmonary fibrosis therapeutic agent, a PTPRR expression promoter, and a pulmonary fibrosis treatment kit.
  • Idiopathic interstitial pneumonia is a group of unexplained interstitial pneumonia diseases that share a similar clinical picture, and is classified into six subtypes according to histological type. All of them are characterized by inflammation and fibrosis to varying degrees, both causing dyspnea and typical X-ray abnormalities.
  • the six subtypes of idiopathic interstitial pneumonia according to the histological type are, in descending order, normal interstitial pneumonia (UIP), nonspecific interstitial pneumonia, obstructive bronchiolitis with organizing pneumonia, respiratory Interstitial lung disease (ILD) with bronchiolitis, exfoliative interstitial pneumonia and acute interstitial pneumonia.
  • UIP normal interstitial pneumonia
  • ILD respiratory Interstitial lung disease
  • Idiopathic pulmonary fibrosis (IPF, idiopathic fibrotic alveolitis) is the same as the above-mentioned UIP in the histological classification and accounts for 50% of IIP cases.
  • IPF is called pneumonia
  • inflammation plays a minor role and it is believed that environmental, genetic, or other unknown factors first induce damage to alveolar epithelial cells.
  • persistent and abnormal proliferation of stromal fibroblasts and mesenchymal cells is considered to be a cause of clinical diseases.
  • Most patients have moderate to severe clinical illness at the time of diagnosis and get worse despite treatment.
  • IPF Idiopathic pulmonary fibrosis
  • Non-Patent Document 1 Conventionally, corticosteroids and cytotoxic drugs (cyclophosphamide, azathioprine) have been empirically administered to patients with IPF to stop the progression of inflammation, but there are limited data supporting their effectiveness. (Non-Patent Document 1).
  • Pirfenidone and nintedanib which are antifibrotic drugs, have been confirmed to be effective using the “bleomycin model” that is widely used as a pulmonary fibrosis model.
  • the “bleomycin model” does not necessarily coincide with the pathology of pulmonary fibrosis, and pirfenidone and nintedanib only have an effect of suppressing the progression of the disease state.
  • lung transplantation is a method for treating pulmonary fibrosis.
  • donors are insufficient, and rejection at the time of transplantation is also a problem. Therefore, development of a novel treatment method for pulmonary fibrosis is desired.
  • mesenchymal stem cells are pluripotent progenitor cells isolated from bone marrow for the first time by Friedenstein (1982) (Non-patent Document 3). These mesenchymal stem cells have been revealed to exist in various tissues such as bone marrow, umbilical cord, and fat, and mesenchymal stem cell transplantation is expected as a new treatment method for various intractable diseases ( Patent Documents 1 to 4). Recently, it is known that cells having an equivalent function exist in stromal cells of fetal appendages such as adipose tissue, placenta, umbilical cord, and egg membrane. Therefore, the mesenchymal stem cell may be referred to as a stromal cell (Mesenchymal Stroma Cell).
  • the object of the present invention is to provide a novel therapeutic agent for pulmonary fibrosis, particularly idiopathic pulmonary fibrosis (IPF), for which effective pharmacotherapy has not been established.
  • pulmonary fibrosis particularly idiopathic pulmonary fibrosis (IPF)
  • IPF idiopathic pulmonary fibrosis
  • the present inventors verified the therapeutic effect of mesenchymal stem cells on pulmonary fibrosis using cells collected from pulmonary fibrosis lesion tissue. As a result, it was found that mesenchymal stem cells can suppress fibrosis.
  • the present invention provides a novel therapeutic agent for pulmonary fibrosis. That is, the gist of the present invention is as follows.
  • a therapeutic agent for pulmonary fibrosis containing mesenchymal stem cells [2] The therapeutic agent for pulmonary fibrosis according to [1], wherein the pulmonary fibrosis is normal interstitial pneumonia (UIP) or idiopathic pulmonary fibrosis (IPF). [3] The therapeutic agent for pulmonary fibrosis according to [1] or [2], wherein the mesenchymal stem cells are derived from adipose tissue. [4] The therapeutic agent for pulmonary fibrosis according to any one of [1] to [3], wherein the mesenchymal stem cells are derived from another family. [5] A therapeutic agent for pulmonary fibrosis containing a PTPRR expression promoter.
  • a pulmonary fibrosis treatment kit comprising the pulmonary fibrosis therapeutic agent according to any one of [1] to [6], a container, and a label.
  • a novel therapeutic agent for pulmonary fibrosis a PTPRR expression promoter, and a novel therapeutic kit for pulmonary fibrosis can be provided.
  • FIG. 1 is a graph showing the effect of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention on the expression of fibrosis-related genes ( ⁇ -SMA, CDH2, Collagen1) in cells derived from lung fibrosis lesions.
  • FIG. 2 is a graph showing the effect of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention on the dephosphorylation of phosphorylated ERK molecules in cells derived from lung fibrosis lesions.
  • FIG. 3 is a graph showing the effect of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention on fibrosis-related gene expression ( ⁇ -SMA, CDH2, FN1) in alveolar epithelial cell lines.
  • FIG. 4 is a diagram showing a lung histological image of a severe combined immunodeficient mouse (pulmonary fibrosis model) administered with cells derived from pulmonary fibrosis lesions.
  • pulmonary fibrosis therapeutic agent and pulmonary fibrosis treatment kit of the present invention will be described in detail.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention contains mesenchymal stem cells.
  • Mesenchymal stem cells act on cells of tissues causing pulmonary fibrosis, and have the effect of reducing the expression of cell fibrosis-related genes. Moreover, it can be expected that not only the cellular level but also the fibrosis can be reduced by administering mesenchymal stem cells to the fibrotic animal.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis in the present invention may contain other components in addition to the mesenchymal stem cells as long as the effects of the present invention are not impaired. The mesenchymal stem cells and other components will be described in detail below.
  • the mesenchymal stem cell refers to one or more cells belonging to the mesenchymal system, preferably two or more cells, more preferably three or more cells (bone cells, cardiomyocytes, chondrocytes, tendon cells, fat cells, etc.). It means a cell that has differentiation ability and can proliferate while maintaining the ability.
  • the term mesenchymal stem cell used in the present invention means the same cell as the stromal cell, and does not particularly distinguish them. Moreover, it may be simply described as a mesenchymal cell.
  • tissues containing mesenchymal stem cells include adipose tissue, umbilical cord, bone marrow, umbilical cord blood, endometrium, placenta, amniotic membrane, chorion, decidua, dermis, skeletal muscle, periosteum, dental follicle, periodontal ligament, Examples include dental pulp and tooth germ.
  • an adipose tissue-derived mesenchymal stem cell means a mesenchymal stem cell contained in an adipose tissue, and may be referred to as an adipose tissue-derived stromal cell.
  • adipose tissue-derived mesenchymal stem cells adipose tissue-derived mesenchymal stem cells, umbilical cord-derived mesenchymal stem cells, bone marrow-derived mesenchymal stem cells, placenta-derived mesenchymal system from the viewpoint of effectiveness for treatment of pulmonary fibrosis, availability, etc.
  • Stem cells and dental pulp-derived mesenchymal stem cells are preferred, adipose tissue-derived mesenchymal stem cells and umbilical cord-derived mesenchymal stem cells are more preferred, and adipose tissue-derived mesenchymal stem cells are more preferred.
  • the mesenchymal stem cells in the present invention may be derived from the same species as the subject to be treated (subject) or from a different species.
  • examples of the mesenchymal stem cell species in the present invention include humans, monkeys, horses, cows, sheep, pigs, dogs, cats, rabbits, mice, rats, and preferably cells derived from the same species as the subject to be treated (subject). It is.
  • the mesenchymal stem cells in the present invention may be derived from the subject (subject) to be treated, that is, autologous cells (allogeneic), or derived from another subject of the same species, ie, allogeneic cells (allogeneic). ). Preferred are allogeneic cells (allogeneic).
  • mesenchymal stem cells are less likely to cause rejection even in allogeneic subjects
  • cells prepared by pre-cultivating donor cells and cryopreserved are used in the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention. It can be used as a leaf stem cell. Therefore, compared to the case of preparing and using autologous mesenchymal stem cells, commercialization is easy, and from the viewpoint that a certain effect can be easily obtained stably, the mesenchymal stem cells in the present invention, More preferably, it is allogeneic.
  • the mesenchymal stem cell means an arbitrary cell population including the mesenchymal stem cell.
  • the cell population is at least 20% or more, preferably 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 93%, 96%, 97%, 98 % Or 99% are mesenchymal stem cells.
  • the adipose tissue in the present invention means a tissue containing mesenchymal stem cells including adipocytes and microvascular cells, and is a tissue obtained by surgical excision or aspiration of mammalian subcutaneous fat, for example. .
  • Adipose tissue can be obtained from subcutaneous fat.
  • the adipose tissue-derived mesenchymal stem cells described later are preferably obtained from the same animal as the subject of administration, and considering administration to humans, human subcutaneous fat is more preferable.
  • An individual supplying subcutaneous fat may be alive or dead, but the adipose tissue used in the present invention is preferably a tissue collected from a living individual.
  • liposuction is exemplified by PAL (power assist) liposuction, Erconia laser liposuction, or body jet liposuction. From the viewpoint of maintaining the state of cells, ultrasound is used. It is preferable not to use.
  • the umbilical cord is a white tubular tissue that connects the fetus and the placenta, and is composed of umbilical vein, umbilical artery, collagenous tissue (Wharton's Jelly), umbilical matrix itself, etc., and mesenchymal stem cells Including many.
  • the umbilical cord is preferably obtained from the same animal as the subject (administration subject) using the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention, and in consideration of administering the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention to humans, Preferably, it is a human umbilical cord.
  • the bone marrow refers to a soft tissue filling the bone lumen, and is a hematopoietic organ.
  • Bone marrow fluid is present in the bone marrow, and the cells present therein are called bone marrow cells.
  • Bone marrow cells include erythrocytes, granulocytes, megakaryocytes, lymphocytes, adipocytes and the like, as well as mesenchymal stem cells, hematopoietic stem cells, vascular endothelial progenitor cells, and the like.
  • Bone marrow cells can be collected, for example, from human iliac bone, long bone, or other bone.
  • the tissue-derived mesenchymal stem cells such as adipose tissue-derived mesenchymal stem cells, umbilical cord-derived mesenchymal stem cells, and bone marrow-derived mesenchymal stem cells are adipose tissue-derived mesenchymal stem cells and umbilical cord-derived mesenchymal stem cells, respectively. It means any cell population containing mesenchymal stem cells derived from each tissue such as stem cells and bone marrow-derived mesenchymal stem cells.
  • the cell population is at least 20% or more, preferably 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 93%, 96%, 97%, 98 % Or 99% are mesenchymal stem cells derived from each tissue such as adipose tissue-derived mesenchymal stem cells, umbilical cord-derived mesenchymal stem cells, and bone marrow-derived mesenchymal stem cells.
  • Mesenchymal stem cells have growth characteristics (eg, population doubling ability from aging to aging, doubling time), karyotype analysis (eg, normal karyotype, maternal line or neonatal line), flow cytometry ( For example, surface marker expression by FACS analysis, immunohistochemistry and / or immunocytochemistry (eg, epitope detection), gene expression profiling (eg, gene chip array; polymerase chain such as reverse transcription PCR, real-time PCR, conventional PCR, etc. Reaction), miRNA expression profiling, protein array, protein secretion such as cytokines (eg, plasma coagulation analysis, ELISA, cytokine array), metabolites (metabolome analysis), other methods known in the art, etc. May be.
  • growth characteristics eg, population doubling ability from aging to aging, doubling time
  • karyotype analysis eg, normal karyotype, maternal line or neonatal line
  • flow cytometry For example, surface marker expression by FACS analysis, immunohisto
  • Mesenchymal stem cells can be prepared by methods well known to those skilled in the art. Below, the preparation method of an adipose tissue origin mesenchymal stem cell is demonstrated as an example.
  • Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells may be obtained, for example, by the production method described in US Pat. No. 6,777,231.
  • the adipose tissue-derived mesenchymal stem cells can be produced by a method including the following steps (i) to (iii).
  • washing may be performed by sedimentation with vigorous stirring using a physiologically compatible saline solution (eg, phosphate buffered saline (PBS)).
  • PBS physiologically compatible saline solution
  • impurities also called debris, such as damaged tissue, blood, and red blood cells
  • washing and sedimentation are generally repeated until the debris is totally removed from the supernatant. Since the remaining cells exist as lumps of various sizes, in order to dissociate them while minimizing damage to the cells themselves, the washed cell lumps are made to have an enzyme (eg, an enzyme that weakens or breaks cell-cell junctions).
  • collagenase dispase or trypsin.
  • the amount of such enzyme and the duration of treatment vary depending on the conditions used, but are known in the art.
  • the cell mass can be broken down by other treatment methods such as mechanical agitation, ultrasonic energy, thermal energy, etc., but with minimal cell damage
  • an enzyme in order to minimize harmful effects on cells, it is desirable to deactivate the enzyme using a medium or the like after a suitable period of time.
  • the cell suspension obtained by the step (i) includes a slurry or suspension of aggregated cells, and various kinds of contaminated cells such as erythrocytes, smooth muscle cells, endothelial cells, and fibroblasts. Therefore, the cells in the aggregated state and these contaminated cells may be separated and removed, but they can be removed by adhesion and washing in step (iii) to be described later. May be. When contaminating cells are separated and removed, this can be achieved by centrifugation that forcibly separates the cells into a supernatant and a precipitate. The resulting precipitate containing contaminating cells is suspended in a physiologically compatible solvent.
  • Suspended cells may contain erythrocytes, but erythrocytes are excluded by selection by adhesion to the individual surface described later, and thus a lysis step is not always necessary.
  • a method for selectively lysing erythrocytes for example, a method well known in the art such as incubation in a hypertonic medium or a hypotonic medium by lysis with ammonium chloride can be used. After lysis, the lysate may be separated from the desired cells, for example, by filtration, centrifugation, or density fractionation.
  • the cells in step (ii), in order to increase the purity of the mesenchymal stem cells in the suspended cells, the cells may be washed once or continuously several times, centrifuged, and resuspended in the medium. Alternatively, cells may be separated based on cell surface marker profile or based on cell size and granularity.
  • the medium used in the resuspension is not particularly limited as long as it is a medium capable of culturing mesenchymal stem cells, but such a medium includes basal medium added with serum and / or albumin, transferrin, fatty acid, One or more serum substitutes such as insulin, sodium selenite, cholesterol, collagen precursor, trace elements, 2-mercaptoethanol, 3′-thiolglycerol, and the like may be added.
  • substances such as lipids, amino acids, proteins, polysaccharides, vitamins, growth factors, low molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, etc. are added as necessary. May be.
  • basal medium examples include IMDM medium, Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F16 medium, Ham's F16 medium.
  • EMEM Eagle's Minimum Essential Medium
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Medium
  • Ham's F16 medium Ham's F16 medium.
  • Examples include a medium, Fischer's medium, MCDB201 medium, and a mixed medium thereof.
  • the serum examples include, but are not limited to, human serum, fetal bovine serum (FBS), bovine serum, calf serum, goat serum, horse serum, pig serum, sheep serum, rabbit serum, rat serum and the like.
  • FBS fetal bovine serum
  • bovine serum bovine serum
  • calf serum goat serum
  • horse serum horse serum
  • pig serum sheep serum
  • rabbit serum rat serum
  • 5 v / v% to 15 v / v% preferably 10 v / v% may be added to the basal medium.
  • fatty acid examples include, but are not limited to, linoleic acid, oleic acid, linolenic acid, arachidonic acid, myristic acid, palmitoyl acid, palmitic acid, and stearic acid.
  • lipid examples include, but are not limited to, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylcholine, and the like.
  • Amino acids include, but are not limited to, for example, L-alanine, L-arginine, L-aspartic acid, L-asparagine, L-cysteine, L-cystine, L-glutamic acid, L-glutamine, L-glycine and the like.
  • proteins include, but are not limited to, ecotin, reduced glutathione, fibronectin and ⁇ 2-microglobulin.
  • polysaccharide examples include glycosaminoglycans, and among the glycosaminoglycans, hyaluronic acid, heparan sulfate and the like are particularly exemplified, but the polysaccharide is not limited thereto.
  • Growth factors include, for example, platelet derived growth factor (PDGF), basic fibroblast growth factor (bFGF), transforming growth factor beta (TGF- ⁇ ), hepatocyte growth factor (HGF), epidermal growth factor (EGF) Examples include, but are not limited to, connective tissue growth factor (CTGF), vascular endothelial growth factor (VEGF), and the like. From the viewpoint of using the adipose-derived mesenchymal stem cells obtained in the present invention for cell transplantation, it is preferable to use a (xenofree) medium that does not contain components derived from different species such as serum.
  • a (xenofree) medium that does not contain components derived from different species such as serum.
  • Such a medium is provided as a medium prepared in advance for mesenchymal stem cells (stromal cells) from, for example, PromoCell, Lonza, Biological Industries, Veritas, R & D Systems, Corning, and Roto. Has been.
  • the appropriate cell density and the appropriate cell medium are used on the solid surface without differentiating the cells in the cell suspension obtained in step (ii).
  • Culture under culture conditions the “solid surface” means any material that enables binding and adhesion of the adipose tissue-derived mesenchymal stem cells in the present invention.
  • such a material is a plastic material that has been treated to promote the attachment and adhesion of mammalian cells to its surface.
  • the shape of the culture vessel having a solid surface is not particularly limited, but a petri dish or a flask is preferably used. The cells are washed after incubation to remove unbound cells and cell debris.
  • cells that finally remain attached and adhered to the solid surface can be selected as a cell population of adipose tissue-derived mesenchymal stem cells.
  • the surface antigen may be analyzed by a conventional method using flow cytometry or the like. Further, the ability to differentiate into each cell line may be examined, and such differentiation can be performed by conventional methods.
  • Mesenchymal stem cells in the present invention can be prepared as described above, but may be defined as cells having the following characteristics; (1) It exhibits adhesiveness to plastic under the culture conditions in a standard medium. (2) Surface antigens CD44, CD73, CD90 are positive, CD31, CD45 are negative, and (3) Differentiated into bone cells, adipocytes, and chondrocytes under culture conditions.
  • the mesenchymal stem cell in the present invention may be a cell that has been appropriately cryopreserved and thawed as long as it has a therapeutic effect on pulmonary fibrosis.
  • cryopreservation can be performed by suspending and cooling mesenchymal stem cells in a cryopreservation solution well known to those skilled in the art.
  • the suspension can be performed by detaching the cells with a release agent such as trypsin, transferring the cells to a cryopreservation container, treating them appropriately, and then adding a cryopreservation solution.
  • the cryopreservation solution may contain DMSO (dimethylsulfoxide) as a frost damage protective agent.
  • DMSO dimethylsulfoxide
  • DMSO has a property of inducing differentiation of mesenchymal stem cells in addition to cytotoxicity. Is preferably reduced.
  • glycerol glycerol, propylene glycol or polysaccharides
  • sugar alcohols are exemplified.
  • DMSO contains a concentration of 5% to 20%, preferably a concentration of 5% to 10%, more preferably a concentration of 10%.
  • additives described in WO2007 / 058308 may be included.
  • cryopreservation solution for example, cryopreservation provided by Bioverde, Nippon Genetics, Reprocell, Xenoac, Cosmo Bio, Kojin Bio, Thermo Fisher Scientific, etc.
  • a liquid may be used.
  • the cooling rate may be appropriately controlled using a program freezer.
  • the cooling rate may be appropriately selected depending on the components of the cryopreservation solution, and may be performed according to the manufacturer's instructions for the cryopreservation solution.
  • the upper limit of the storage period is not particularly limited as long as the cells cryopreserved under the above conditions are thawed and retain the same properties as before freezing, for example, 1 week or more, 2 weeks or more, 3 weeks or more, 4 weeks or more, 2 months or more, 3 months or more, 4 months or more, 5 months or more, 6 months or more, 1 year or more, or more. Since cell damage can be suppressed by storing at a lower temperature, it may be transferred to a gas phase on liquid nitrogen (from about ⁇ 150 ° C. to ⁇ 180 ° C.). When storing in a gas phase on liquid nitrogen, it can be performed using a storage container well known to those skilled in the art. Although not particularly limited, for example, when storing for 2 weeks or more, it is preferable to store in a gas phase on liquid nitrogen.
  • the thawed mesenchymal stem cells may be appropriately cultured before the next cryopreservation.
  • the mesenchymal stem cells are cultured using the above-described medium capable of culturing mesenchymal stem cells, and are not particularly limited. However, at a culture temperature of about 30 to 40 ° C., preferably about 37 ° C., the CO 2 -containing air is cultured. It may be performed under an atmosphere. The CO 2 concentration is about 2-5%, preferably about 5%. In culture, after reaching the appropriate confluency for the culture vessel (for example, cells may occupy 50% to 80% of the culture vessel), the cells are detached with a release agent such as trypsin.
  • a release agent such as trypsin.
  • the culture may be continued by seeding in a separately prepared culture vessel at an appropriate cell density.
  • typical cell densities are 100 cells / cm 2 to 100,000 cells / cm 2 , 500 cells / cm 2 to 50,000 cells / cm 2 , 1,000 to 10,000 cells. / Cm 2 , 2,000 to 10,000 cells / cm 2, etc. are exemplified.
  • the cell density is between 2,000 and 10,000 cells / cm 2 . It is preferable to adjust the period until reaching an appropriate confluency to be 3 to 7 days. During culture, the medium may be changed as necessary.
  • Thawing of cryopreserved cells can be performed by methods well known to those skilled in the art.
  • the method is carried out by standing or shaking in a constant temperature bath or a hot water bath at room temperature to 37 ° C., preferably 37 ° C.
  • the mesenchymal stem cell of the present invention may be a cell in any state, for example, a cell recovered by detaching a cell in culture or a cell frozen in a cryopreservation solution Good. Use of the same lot of cells obtained by expanding and culturing in the same lot is preferable in that the same action and effect can be stably obtained and the handling property is excellent.
  • the mesenchymal stem cells in a cryopreserved state may be thawed immediately before use and directly mixed with a solution for suspending mesenchymal stem cells such as an infusion solution or a medium while being suspended in a cryopreservation solution.
  • the cryopreservation solution may be removed by a method such as centrifugation and then suspended in a solution for suspending mesenchymal stem cells such as an infusion solution or a medium.
  • the “infusion” in the present invention refers to a solution used in human treatment, and is not particularly limited.
  • the mesenchymal stem cell suspension solution such as the above infusion solution or culture medium may be prepared so as to contain other components (pharmaceutically acceptable carriers and additives) described later.
  • a pharmaceutically acceptable carrier in addition to the mesenchymal stem cells, a pharmaceutically acceptable carrier, An additive may be contained.
  • examples of such carriers and additives include isotonic agents, thickeners, sugars, sugar alcohols, preservatives (preservatives), bactericides or antibacterial agents, pH regulators, stabilizers, chelating agents.
  • Oily base Oily base, gel base, surfactant, suspending agent, binder, excipient, lubricant, disintegrant, foaming agent, fluidizer, dispersant, emulsifier, buffer, solubilizer , Antioxidants, sweeteners, sour agents, colorants, flavoring agents, fragrances or refreshing agents, but are not limited thereto.
  • typical components include the following carriers and additives.
  • Examples of the carrier include aqueous carriers such as water and hydrous ethanol.
  • examples of tonicity agents include sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, and magnesium chloride;
  • examples of polyhydric alcohols include glycerin, propylene glycol, and polyethylene glycol;
  • examples of the saccharide include carboxyvinyl polymer, hydroxyethyl cellulose, hydroxypropylmethyl cellulose, methyl cellulose, alginic acid, polyvinyl alcohol (completely or partially saponified product), polyvinyl pyrrolidone, macrogol and the like.
  • Examples of the saccharide include cyclodextrin and glucose.
  • Sugar alcohols include, for example, xylitol, sorbitol, mannitol and the like (which may be any of d-form, l-form or dl-form); Hydroxytoluene, butylhydroxyanisole, alkyldiaminoethylglycine hydrochloride, sodium benzoate, ethanol, benzalkonium chloride, benzethonium chloride, chlorhexidine gluconate, chlorobutanol, sorbic acid, potassium sorbate, trometamol, sodium dehydroacetate, paraoxybenzoic acid Methyl, ethyl paraoxybenzoate, propyl paraoxybenzoate, butyl paraoxybenzoate, oxyquinoline sulfate, phenethyl alcohol, benzyl alcohol, biguanide compounds (specifically, polyhexanide hydrochloride (polyhexamethylene biguanide), etc.), Glokill (Rhodia) Product
  • suspending agents examples include honey beeswax and various surfactants. Gum arabic, gum arabic powder, xanthan gum, soybean lecithin, etc .; examples of binders include hydroxyethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, hydroxypropyl methyl cellulose, sodium carboxymethyl cellulose, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl alcohol, etc.
  • Excipients include, for example, sucrose, lactose, starch, corn starch, crystalline cellulose, light anhydrous silicic acid, etc .
  • lubricants include, for example, sucrose fatty acid ester, magnesium stearate, talc, etc .
  • examples of the agent include low-substituted hydroxypropyl cellulose, crospovidone, croscarmellose sodium, etc .
  • examples of the foaming agent include sodium bicarbonate
  • examples of the fluidizing agent include sodium aluminate metasilicate, Examples include light anhydrous silicic acid.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention can be provided in various forms according to the purpose, for example, various dosage forms such as a solid preparation, a semi-solid preparation, and a liquid preparation.
  • various dosage forms such as a solid preparation, a semi-solid preparation, and a liquid preparation.
  • solid preparations tablets, powders, powders, granules, capsules, etc.
  • semi-solid preparations [ointment (hard ointment, ointment etc.), creams, etc.]
  • liquid preparations (lotions, extracts, suspensions) Suspensions, emulsions, syrups, injections (including infusions, implants, continuous injections, injections prepared at the time of use), dialysis agents, aerosols, soft capsules, drinks, etc.] patches
  • injections including infusions, implants, continuous injections, injections prepared at the time of use
  • dialysis agents aerosols, soft capsules, drinks, etc.
  • patches It can be
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention can also be used in the form of a solution or emulsion in an oily or aqueous vehicle. Furthermore, the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention can be applied to the affected area by spraying, and the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention can also be used in the form of gelation or sheeting at the affected area after spraying. The therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention can be applied to the affected area after the mesenchymal stem cells are formed into a sheet or a three-dimensional structure.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention comprises the above mesenchymal stem cells and other components (pharmaceutically acceptable carriers and additives), physiological saline, JP physiological saline, 5% glucose solution, Local glucose injection, Ringer's solution, JP's Ringer's solution, Lactated Ringer's solution, Acetate Ringer's solution, Bicarbonate Ringer's solution, 1st solution (starting solution), 2nd solution (dehydration replenisher), 3rd solution (maintenance solution), 4th solution ( It can be used after being suspended or diluted with an infusion solution such as a postoperative recovery solution) or a mesenchymal stem cell suspension solution such as a cell culture medium such as DMEM, preferably physiological saline, 5% Glucose solution, No.
  • physiological saline JP physiological saline
  • JP physiological saline 5% glucose solution
  • Local glucose injection Ringer's solution
  • JP's Ringer's solution Lact
  • the mesenchymal stem cell suspension solution may be prepared in advance so as to include the other components (pharmaceutically acceptable carriers and additives).
  • mesenchymal stem cells and a solution for suspending mesenchymal stem cells are sealed and stored in separate containers, and both may be used by mixing them. During storage, the mesenchymal stem cells and the mesenchymal stem cell suspension solution may be frozen or refrigerated.
  • the pH of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis is particularly limited as long as it is within a pharmaceutically, pharmacologically (pharmaceutically) or physiologically acceptable range.
  • An example is a range of 2.5 to 9.0, preferably 3.0 to 8.5, more preferably 3.5 to 8.0.
  • the mesenchymal stem cell suspension solution should satisfy the above conditions. Good.
  • the osmotic pressure of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis is not particularly limited as long as it is within a range acceptable to the living body.
  • the osmotic pressure can be adjusted by a method known in the art using inorganic salts, polyhydric alcohols, sugar alcohols, saccharides and the like.
  • the osmotic pressure ratio is the ratio of the osmotic pressure of the sample to the osmotic pressure of 286 mOsm (0.9 w / v% sodium chloride aqueous solution) based on the 15th revised Japanese Pharmacopoeia. Measure by referring to the freezing point method.
  • the standard solution for osmotic pressure ratio measurement (0.9 w / v% sodium chloride aqueous solution) was prepared by drying sodium chloride (Japanese Pharmacopoeia standard reagent) at 500 to 650 ° C. for 40 to 50 minutes, and then in a desiccator (silica gel).
  • the mixture is allowed to cool and 0.900 g is accurately weighed and dissolved in purified water to make exactly 100 mL, or a commercially available standard solution for osmotic pressure ratio measurement (0.9 w / v% sodium chloride aqueous solution) is used.
  • a commercially available standard solution for osmotic pressure ratio measurement 0.9 w / v% sodium chloride aqueous solution.
  • the mesenchymal stem cell suspension solution should satisfy the above conditions. Good.
  • the route of administration of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention to a subject includes oral administration, subcutaneous administration, intramuscular administration, intravenous administration, intraarterial administration, intrathecal administration, intraperitoneal administration, sublingual administration, and rectal administration.
  • Transvaginal administration, nasal administration, inhalation, transdermal administration, implant, spraying onto the lung surface and direct administration by attaching a sheet, etc., from the viewpoint of the effectiveness of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention Preferably implant, intraarterial administration, intravenous administration, and direct administration by spraying on the lung surface and sticking a sheet, etc., from the viewpoint of reducing the burden on the subject, more preferably intrapulmonary administration or intravenous administration And most preferably intravenous administration.
  • the dose may vary depending on the patient's condition (weight, age, symptoms, physical condition, etc.) and the dosage form of the pulmonary fibrosis therapeutic agent of the present invention, From the viewpoint of achieving sufficient treatment effects for pulmonary fibrosis, a larger amount tends to be preferable, while from the viewpoint of suppressing the occurrence of side effects, a smaller amount tends to be preferable.
  • the number of cells is 1 ⁇ 10 3 to 1 ⁇ 10 12 cells / time, preferably 1 ⁇ 10 4 to 1 ⁇ 10 11 cells / time, more preferably 1 ⁇ 10 5 to 1 ⁇ 10 10 cells / time, and further preferably 5 ⁇ 10 5. 6 to 1 ⁇ 10 9 pieces / time.
  • the dose per body weight of the patient is 1 ⁇ 10 to 5 ⁇ 10 10 cells / kg, preferably 1 ⁇ 10 2 to 5 ⁇ 10 9 cells / kg, more preferably 1 ⁇ 10 3 to 5 ⁇ 10 8 cells / kg, and further preferably 1 ⁇ 10 4 to 5 ⁇ 10. 7 / kg.
  • this dose may be administered multiple times as a single dose, or this dose may be administered in multiple doses.
  • the rate of administration of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention to the subject may vary depending on the patient's condition (weight, age, symptoms, physical condition, etc.) and the administration route of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention.
  • When administered to an adult it is 50 mL / h to 1,000 mL / h, preferably 75 mL / h to 500 mL / h, and more preferably 100 mL / h to 250 mL / h.
  • the administration temperature of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention to the subject may vary depending on the patient's condition (body weight, age, symptoms, physical condition, etc.) and the administration route of the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention. It is 4 ° C to 45 ° C, preferably 15 ° C to 37 ° C, and more preferably room temperature to 37 ° C.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention may be administered together with one or more other drugs.
  • Other drugs include any drugs that can be used as respiratory drugs, immunosuppressants, such as dimorpholine, doxapram hydrochloride hydrate, sivelestat sodium hydrate, lung surfactant, Dornase alpha, pirfenidone, Interferon- ⁇ -1b, prednisone, corticosteroid, pirfenidone (Pirespa TM), nintedanib (Ofeb TM), angiotensin receptor blocker, cyclosporine, azathioprine, mizoribine, basiliximab, tacrolimus hydrate, gusperimus Examples thereof include hydrochloride, mycophenolate mofetil, everolimus, and acetylcysteine.
  • the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention when administered together with one or more other drugs, either when the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention and other drugs are used at the same time, either In the case where the other drug is administered after a certain time has elapsed after the administration, it includes various cases such as a combination thereof.
  • the pulmonary fibrosis therapeutic agent of the present invention can also be expressed as containing a PTPRR expression promoter.
  • PTPRR is Protein tyrosine phosphatase receptor-type R and is a kind of receptor tyrosine phosphatase.
  • PTPRR is an enzyme that dephosphorylates protein tyrosine phosphorylated by tyrosine kinase.
  • Receptor-type tyrosine phosphatases are composed of an intracellular region having enzyme activity, a transmembrane domain, and an extracellular region, and the enzyme activity is controlled by binding of a ligand to the extracellular region.
  • the PTPRR expression promoter in the present invention refers to a composition having an action of promoting the expression of the PTPRR gene and / or PTPRR protein in cells and tissues. The PPTRR expression promoter of the present invention will be described below.
  • the PTPRR expression promoting agent in the present invention enhances the dephosphorylation of tyrosine phosphorylated protein by promoting PTPRR expression in cells and tissues causing pulmonary fibrosis, resulting in the proliferation of the cells. In turn, the tissue fibrosis can be suppressed.
  • tyrosine phosphorylated proteins include ERK, JNK, p38, etc. Among them, ERK is preferable from the viewpoint of excellent pulmonary fibrosis inhibiting effect.
  • the PPTRR expression promoter of the present invention preferably contains mesenchymal stem cells having a function of acting on cells and tissues causing pulmonary fibrosis and promoting their PTPRR expression.
  • mesenchymal stem cells contained in the PPTRR expression promoting agent of the present invention the description of the mesenchymal stem cells contained in the therapeutic agent for pulmonary fibrosis can be applied as it is.
  • pulmonary fibrosis of the present invention diseases for which the therapeutic agent for pulmonary fibrosis of the present invention is effective include, for example, normal interstitial pneumonia (UIP), idiopathic pulmonary fibrosis (IPF, idiopathic fibrotic alveolitis), non-specific interstitial Pneumonia, obstructive bronchiolitis with organizing pneumonia (unstructured organizing pneumonia), interstitial lung disease (ILD) with respiratory bronchiolitis, exfoliative interstitial pneumonia, acute interstitial pneumonia (acute progression) Interstitial pneumonia, Haman-rich syndrome), idiopathic interstitial pneumonia, drug-induced lung disease, eosinophilic lung disease and chronic eosinophilic pneumonia. Especially, it shows a remarkable effect with respect to normal interstitial pneumonia (UIP) and idiopathic pulmonary fibrosis (IPF, idiopathic fibrotic alveolitis).
  • UIP normal interstitial pneumonia
  • IPF idiopathic pulmonary
  • the present invention also includes a kit for treating pulmonary fibrosis comprising a mesenchymal stem cell and a mesenchymal stem cell suspension solution.
  • a kit for treating pulmonary fibrosis comprising a mesenchymal stem cell and a mesenchymal stem cell suspension solution.
  • the description in the section on therapeutic agent for pulmonary fibrosis can be applied.
  • the pulmonary fibrosis treatment kit of the present invention can also be expressed as including the pulmonary fibrosis therapeutic agent, container and label of the present invention.
  • the appropriate container included in the kit of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include a cryotube for cell freezing, a bottle for a solution for suspending mesenchymal stem cells, a vial, and a test tube. These containers may be formed from a variety of materials such as glass, metal, plastic, or combinations thereof.
  • the labels on these containers describe the contents that explain the mesenchymal stem cells, the mesenchymal stem cell suspension solution, and the like that are the contents.
  • the kit of the present invention includes other materials desirable from a commercial and user standpoint, including other additives, other drugs, diluents, filters, needles, syringes, and package inserts that describe the usage. can do.
  • the present invention also includes a method for treating pulmonary fibrosis characterized by using mesenchymal stem cells.
  • mesenchymal stem cells can effectively treat pulmonary fibrosis by suppressing gene expression that promotes pulmonary fibrosis.
  • the present invention also includes a method for promoting PTPRR expression in cells, tissues, etc., characterized by using mesenchymal stem cells.
  • mesenchymal stem cells act on cells and tissues, and the expression of PTPRR expression can be effectively promoted.
  • the description in the section of therapeutic agent for pulmonary fibrosis can be applied to the description of mesenchymal stem cells.
  • adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (Example 1) A serum-free medium for mesenchymal stem cells (Rohto) is added to commercially available cells (Lonza PT-5006), the cell suspension is centrifuged at 400 g for 5 minutes, and after removal of the supernatant, no mesenchymal stem cells are used. Resuspended in serum medium (Rohto) and seeded cells into flasks. Cells were subcultured at 37 ° C. for several days in 5% CO 2 . Several days later, the culture was washed with PBS to remove residual blood cells and adipose tissue contained in the culture solution, and mesenchymal stem cells adhered to a plastic container were obtained.
  • Rohto serum-free medium for mesenchymal stem cells
  • the obtained adipose tissue-derived mesenchymal stem cells were dispensed into a centrifuge tube, and centrifuged at 800 g for 5 minutes to obtain cell precipitates. After removing the supernatant, an appropriate amount of a cell cryopreservation solution (STEM-CELLBANKER (Zenoac)) was added and suspended. The cell suspension was dispensed into a cryotube, stored at ⁇ 80 ° C. in a freezer, transferred to the gas phase on liquid nitrogen, and the storage was continued.
  • ADMSC adipose tissue-derived mesenchymal stem cells
  • Example 2 Effect of adipose tissue-derived mesenchymal stem cells on fibrosis-related gene expression in UIP patient-derived lung fibroblasts (Example 2) Specimens were collected from patients who had been diagnosed with pulmonary fibrosis and operated on lung cancer. A site where fibrosis was not observed (fibrosis ( ⁇ )) and a site where fibrosis was observed (fibrosis (+)) were distinguished, and each tissue was minced and 37% in DMEM medium (manufactured by Wako) containing 15% serum.
  • DMEM medium manufactured by Wako
  • UIP User Interstitial pneumonia (normal interstitial pneumonia) patient-derived lung fibroblasts
  • UIP cells (5.0 ⁇ 10 4 cells / well) suspended in DMEM medium containing 15% serum were seeded in each well of a 24-well plate and overnight in a CO 2 incubator (37 ° C., 10% CO 2 ). After culturing, the culture solution was replaced with DMEM medium containing 1% serum.
  • the human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (Example 1) that have been cryopreserved after subculture are immersed in a 37 ° C. constant temperature bath to thaw the cell suspension, and then separated into 15 mL centrifuge tubes.
  • the volume was increased to 10 mL with DMEM medium (Wako), and centrifuged at 400 ⁇ g for 5 minutes at room temperature (Eppendorf, 5702).
  • a transwell insert (Corning, # 3460) was placed in a 24-well plate, and only 1% serum-containing DMEM medium (Control), 1% serum-containing DMEM medium containing HGF at a final concentration of 100 ng / ml, and 1 Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (2.0 ⁇ 10 5 cells / well) suspended in DMEM containing% serum were added.
  • UIP cell RNA was collected, and the expression levels of fibrosis-related factors, such as ACTA2 ( ⁇ -Smooth muscle actin; ⁇ -SMA), CDH2 (Cadherin2) and Collagen1, were quantified. Measured by PCR.
  • ACTA2 ⁇ -Smooth muscle actin
  • CDH2 CDH2
  • Collagen1 ⁇ -Smooth muscle actin2
  • Western blotting of UIP cells was performed. The results of quantitative PCR are shown in FIG. The results of Western blotting are shown in FIG.
  • alveolar epithelial cell line A549 (Example 3) A 24-well plate is seeded with an alveolar epithelial cell line (A549; 5.0 ⁇ 10 4 cells / well) suspended in DMEM medium containing 1% serum, and a CO 2 incubator (37 ° C., 5% CO 2 ). The culture was started. Twelve hours after the start of culture, epithelial-mesenchymal transition was induced at a final TGF- ⁇ concentration of 100 ng / ml.
  • transwell insert (corning, # 3460) was installed in the ADMSC co-culture group.
  • the transwell insert was the same as in Example 1.
  • Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (2.0 ⁇ 10 5 cells / well) that had been subcultured and cryopreserved were added in suspension in DMEM medium containing 1% serum.
  • RNA of A549 cells was collected, and mRNA expression of fibrosis-related genes, ACTA2 ( ⁇ -Smooth muscle actin; ⁇ -SMA), CDH2 (Cadherin2) and FN1 (Fibronctin1) The amount was measured by quantitative PCR. The results are shown in FIG.
  • Example 5 Therapeutic effect of ADMSC in the fibrosis model mouse (Example 5)
  • SCID-Beige mice CB17.Dg-PrkdcscidKystbg-J / CrlCrli mice (7-10 weeks old, female, Charles River Japan) were used in the same manner as in Example 2.
  • the adjusted UIP cells were administered intravenously.
  • a pathological section of the lung was prepared 63 days after the administration of the UIP cells, and masson trichrome staining was performed for histological analysis.
  • fibrosis was reduced as compared with the PBS group, suggesting that there was a therapeutic effect on pulmonary fibrosis.
  • a novel therapeutic agent for pulmonary fibrosis a PTPRR expression promoting agent, and a novel therapeutic kit for pulmonary fibrosis can be provided.
  • the novel therapeutic agent for pulmonary fibrosis and the novel therapeutic kit for pulmonary fibrosis according to the present invention have a remarkable therapeutic effect on pulmonary fibrosis for which no effective drug therapy has been established.

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Abstract

本発明は、現在有効な薬物療法が確立されていない肺線維症の新規治療剤を提供することを目的とする。 本発明は、間葉系幹細胞を含有する、肺線維症治療剤である。上記肺線維症は、通常型間質性肺炎(UIP)、又は特発性肺線維症(IPF)であることが好ましい。また、上記間葉系幹細胞は脂肪組織由来、他家由来であることが好ましい。

Description

肺線維症治療剤、PTPRR発現促進剤及び肺線維症治療用キット
 本発明は、肺線維症治療剤、PTPRR発現促進剤及び肺線維症治療用キットに関する。
 特発性間質性肺炎(IIP)とは、類似する臨床像を共有する、原因不明の間質性肺炎疾患群であり、組織型により6つのサブタイプに分類される。その全てが程度は異なるが炎症と線維化を特徴とし、いずれも呼吸困難及び典型的なX線異常を引き起こす。特発性間質性肺炎の組織型による6つのサブタイプは頻度の高い順に、通常型間質性肺炎(UIP)、非特異的間質性肺炎、器質化肺炎を伴う閉塞性細気管支炎、呼吸細気管支炎を伴う間質性肺疾患(ILD)、剥離性間質性肺炎及び急性間質性肺炎である。
 特発性肺線維症(IPF、特発性線維化肺胞炎)は、組織型分類の上記UIPと同一のもので、IIP症例の50%を占める。IPFは肺炎と呼ばれるが、炎症が果たす役割は小さく、環境、遺伝、又は他の未知の要因がまず肺胞上皮細胞の損傷を誘発すると考えられている。そして持続的かつ異常な間質繊維芽細胞及び間葉細胞の増殖(コラーゲン沈着及び線維化を伴う)が臨床的な疾患の発現原因と考えられている。診断時にほとんどの患者は中等度から重度の臨床疾患を有しており、治療にもかかわらず悪化する。現在、IPFに対して効果が証明されている特異的な治療法はない。従来より経験的にコルチコステロイド及び細胞毒性薬(シクロホスファミド、アザチオプリン)が、炎症の進行を止める目的でIPF患者に投与されているが、その有効性を支持するデータは限られている(非特許文献1)。
 抗線維化薬であるピルフェニドンやニンテダニブは、肺線維症モデルとして汎用される「ブレオマイシンモデル」を用いて、その薬効が確認されている。しかし、「ブレオマイシンモデル」は肺線維症の病態とは必ずしも一致せず、ピルフェニドンやニンテダニブは、病状の進行を抑制する効果が認められるのみである。さらに、「ブレオマイシンモデル」で有効性が示唆された薬物を用いた臨床試験において、IPF患者に対して有効な治療効果が得られないことがほとんどであることが報告されており(非特許文献2)、「ブレオマイシンモデル」で肺疾患に対する効果が認められたからと言って、実際に肺線維症に効果が認められるとは言えない状態である。また、肺線維症の治療法としては肺移植があるが、ドナーが不足している上に、移植した際の拒絶反応も問題となっている。そのため、肺線維症の新規治療法の開発が望まれている。
 一方、間葉系幹細胞は、Friedenstein(1982)によって初めて骨髄から単離された多分化能を有する前駆細胞である(非特許文献3)。この間葉系幹細胞は、骨髄、臍帯、脂肪等の様々な組織に存在することが明らかにされており、間葉系幹細胞移植は、様々な難治性疾患に対する新しい治療方法として、期待されている(特許文献1~4)。最近では、脂肪組織、胎盤、臍帯、卵膜等の胎児付属物の間質細胞に同等の機能を有する細胞が存在することが知られている。従って、間葉系幹細胞を間質細胞(Mesenchymal Stromal Cell)と称することもある。
特表2002-506831号公報 特表2000-508911号公報 特開2012-157263号公報 特表2012-508733号公報
メルクマニュアル 第18版 日本語版, pp.466-471, 2007年2月22日, 日経BP社発行 Timothy S. B. et al., American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine, p.214-222,189(2), 2014 Pittenger F. M. et al., Science 284, pp.143-147, 1999
 本発明は、上述のような状況の中、現在有効な薬物療法が確立されていない肺線維症、特に特発性肺線維症(IPF)の新規治療剤を提供することを目的とする。
 上記課題を解決するために本発明者らは、肺線維化病変組織から採取した細胞を用いて、間葉系幹細胞の肺線維症に対する治療効果について検証した。その結果、間葉系幹細胞が、線維化を抑制できることを見出した。本発明は、肺線維症の新規治療剤を提供するものである。すなわち本発明の要旨は、以下の通りである。
[1]間葉系幹細胞を含有する、肺線維症治療剤。
[2]肺線維症が、通常型間質性肺炎(UIP)、又は特発性肺線維症(IPF)である[1]に記載の肺線維症治療剤。
[3]間葉系幹細胞が脂肪組織由来である[1]又は[2]に記載の肺線維症治療剤。
[4]間葉系幹細胞が他家由来である、[1]~[3]のいずれかに記載の肺線維症治療剤。
[5]PTPRR発現促進剤を含有する、肺線維症治療剤。
[6]PTPRR発現促進剤が、リン酸化ERKを脱リン酸化する、[5]に記載の肺線維症治療剤。
[7][1]~[6]のいずれかに記載の肺線維症治療剤、容器及びラベルを含む、肺線維症治療用キット。
 本発明によると、肺線維症の新規治療剤、PTPRR発現促進剤及び肺線維症の新規治療用キットを提供することができる。
図1は、肺線維化病変由来細胞の線維化関連遺伝子発現(α-SMA、CDH2、Collagen1)に対する、本発明の肺線維症治療剤の効果を示す図である。 図2は、肺線維化病変由来細胞内のリン酸化ERK分子の脱リン酸化における、本発明の肺線維症治療剤の効果を示す図である。 図3は、肺胞上皮様細胞株の線維化関連遺伝子発現(α-SMA、CDH2、FN1)に対する、本発明の肺線維症治療剤の効果を示す図である。 図4は、肺線維化病変由来細胞を投与した重症複合免疫不全マウス(肺線維症モデル)の肺の組織像を示す図である。
 本発明の肺線維症治療剤、及び肺線維症治療用キットについて詳細に説明する。
<肺線維症治療剤>
 本発明の肺線維症治療剤は、間葉系幹細胞を含む。間葉系幹細胞は、肺線維化を起こしている組織の細胞に対して作用し、細胞の線維化関連遺伝子の発現を低下させる効果を奏する。また、細胞レベルのみでなく、線維化をおこしている動物に間葉系幹細胞を投与することで、線維化を軽減させることが期待できる。本発明における肺線維症治療剤は、間葉系幹細胞以外に、本発明の効果を損なわない範囲で、その他の成分を含有していてもよい。以下に間葉系幹細胞、その他の成分について詳細に説明する。
(間葉系幹細胞)
 本発明において間葉系幹細胞とは、間葉系に属する一種以上、好ましくは二種以上、更に好ましくは三種以上の細胞(骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、腱細胞、脂肪細胞など)への分化能を有し、当該能力を維持したまま増殖できる細胞を意味する。本発明において用いる間葉系幹細胞なる用語は、間質細胞と同じ細胞を意味し、両者を特に区別するものではない。また、単に間葉系細胞と表記される場合もある。間葉系幹細胞を含む組織としては、例えば、脂肪組織、臍帯、骨髄、臍帯血、子宮内膜、胎盤、羊膜、絨毛膜、脱落膜、真皮、骨格筋、骨膜、歯小嚢、歯根膜、歯髄、歯胚等が挙げられる。例えば脂肪組織由来間葉系幹細胞とは、脂肪組織に含有される間葉系幹細胞を意味し、脂肪組織由来間質細胞と称してもよい。これらのうち、肺線維症の治療に対する有効性の観点、入手容易性の観点等から、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞、胎盤由来間葉系幹細胞、歯髄由来間葉系幹細胞が好ましく、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞がより好ましく、脂肪組織由来間葉系幹細胞がさらに好ましい。
 本発明における間葉系幹細胞は、処置される対象(被検体)と同種由来であってもよいし、異種由来であってもよい。本発明における間葉系幹細胞の種として、ヒト、サル、ウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、ラビット、マウス、ラットが挙げられ、好ましくは処置される対象(被検体)と同種由来細胞である。本発明における間葉系幹細胞は、処置される対象(被検体)に由来、すなわち自家細胞(同種同系)であってもよいし、同種の別の対象に由来、すなわち他家細胞(同種異系)であってもよい。好ましくは他家細胞(同種異系)である。
 間葉系幹細胞は同種異系の被験体に対しても拒絶反応を起こしにくいため、あらかじめ調製されたドナーの細胞を拡大培養して凍結保存したものを、本発明の肺線維症治療剤における間葉系幹細胞として使用することができる。そのため、自己の間葉系幹細胞を調製して用いる場合と比較して、商品化も容易であり、かつ安定して一定の効果を得られ易いという観点から、本発明における間葉系幹細胞は、同種異系であることがより好ましい。
 本発明において間葉系幹細胞とは、間葉系幹細胞を含む任意の細胞集団を意味する。当該細胞集団は、少なくとも20%以上、好ましくは、30%、40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、93%、96%、97%、98%又は99%が間葉系幹細胞である。
 本発明において脂肪組織とは、脂肪細胞、及び微小血管細胞等を含む間葉系幹細胞を含有する組織を意味し、例えば、哺乳動物の皮下脂肪を外科的切除又は吸引して得られる組織である。脂肪組織は、皮下脂肪より入手され得る。後述する脂肪組織由来間葉系幹細胞の投与対象と同種動物から入手されることが好ましく、ヒトへ投与することを考慮すると、より好ましくは、ヒトの皮下脂肪である。皮下脂肪の供給個体は、生存していても死亡していてもよいが、本発明において用いる脂肪組織は、好ましくは、生存個体から採取された組織である。個体から採取する場合、脂肪吸引は、例えば、PAL(パワーアシスト)脂肪吸引、エルコーニアレーザー脂肪吸引、又は、ボディジェット脂肪吸引などが例示され、細胞の状態を維持するという観点から、超音波を用いないことが好ましい。
 本発明において臍帯とは、胎児と胎盤を結ぶ白い管状の組織であり、臍帯静脈、臍帯動脈、膠様組織(ウォートンジェリー;Wharton’s Jelly)、臍帯基質自体等から構成され、間葉系幹細胞を多く含む。臍帯は、本発明の肺線維症治療剤を使用する被験体(投与対象)と同種動物から入手されることが好ましく、本発明の肺線維症治療剤をヒトへ投与することを考慮すると、より好ましくは、ヒトの臍帯である。
 本発明において骨髄とは、骨の内腔を満たしている柔組織のことをいい、造血器官である。骨髄中には骨髄液が存在し、その中に存在する細胞を骨髄細胞と呼ぶ。骨髄細胞には、赤血球、顆粒球、巨核球、リンパ球、脂肪細胞等の他、間葉系幹細胞、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞等が含まれている。骨髄細胞は、例えば、ヒト腸骨、長管骨、又はその他の骨から採取することができる。
 本発明において、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞とは、それぞれ脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞を含む任意の細胞集団を意味する。当該細胞集団は、少なくとも20%以上、好ましくは、30%、40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、93%、96%、97%、98%又は99%が、脂肪組織由来間葉系幹細胞、臍帯由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞といった各組織由来間葉系幹細胞である。
 本発明における間葉系幹細胞は、成長特徴(例えば、継代から老化までの集団倍加能力、倍加時間)、核型分析(例えば、正常な核型、母体系統又は新生児系統)、フローサイトメトリー(例えば、FACS分析)による表面マーカー発現、免疫組織化学及び/又は免疫細胞化学(例えば、エピトープ検出)、遺伝子発現プロファイリング(例えば、遺伝子チップアレイ;逆転写PCR、リアルタイムPCR、従来型PCR等のポリメラーゼ連鎖反応)、miRNA発現プロファイリング、タンパク質アレイ、サイトカイン等のタンパク質分泌(例えば、血漿凝固解析、ELISA、サイトカインアレイ)、代謝産物(メタボローム解析)、本分野で知られている他の方法等によって、特徴付けられてもよい。
(間葉系幹細胞の調製方法)
 間葉系幹細胞は、当業者に周知の方法により調製することができる。以下に、一つの例として、脂肪組織由来間葉系幹細胞の調製方法を説明する。脂肪組織由来間葉系幹細胞は、例えば米国特許第6,777,231号に記載の製造方法によって得られて良く、例えば、以下の工程(i)~(iii)を含む方法で製造することができる:
(i) 脂肪組織を酵素による消化により細胞懸濁物を得る工程;
(ii) 細胞を沈降させ、細胞を適切な培地に再懸濁する工程;ならびに
(iii) 細胞を固体表面で培養し、固体表面への結合を示さない細胞を除去する工程。
 工程(i)において用いる脂肪組織は、洗浄されたものを用いることが好ましい。洗浄は、生理学的に適合する生理食塩水溶液(例えばリン酸緩衝食塩水(PBS))を用いて、激しく攪拌して沈降させることによって行い得る。これは、脂肪組織に含まれる夾雑物(デブリとも言い、例えば損傷組織、血液、赤血球など)を組織から除去するためである。したがって、洗浄及び沈降は一般に、上清からデブリが総体的に除去されるまで繰り返される。残存する細胞は、さまざまなサイズの塊として存在するので、細胞そのものの損傷を最小限に抑えながら解離させるため、洗浄後の細胞塊を、細胞間結合を弱めるか、又は破壊する酵素(例えば、コラゲナーゼ、ディスパーゼ又はトリプシンなど)で処理することが好ましい。このような酵素の量及び処理期間は、使用される条件に依存して変わるが、当技術分野で既知である。このような酵素処理に代えて、又は併用して、細胞塊を、機械的な攪拌、超音波エネルギー、熱エネルギーなどの他の処理法で分解することができるが、細胞の損傷を最小限に抑えるため、酵素処理のみで行うことが好ましい。酵素を用いた場合、細胞に対する有害な作用を最小限に抑えるために、適切な期間をおいた後に培地等を用いて酵素を失活させることが望ましい。
 工程(i)により得られる細胞懸濁物は、凝集状の細胞のスラリー又は懸濁物、ならびに各種夾雑細胞、例えば赤血球、平滑筋細胞、内皮細胞、及び線維芽細胞を含む。従って、続いて凝集状態の細胞とこれらの夾雑細胞を分離、除去してもよいが、後述する工程(iii)での接着及び洗浄により、除去可能であることから、当該分離、除去は割愛してもよい。夾雑細胞を分離、除去する場合、細胞を上清と沈殿に強制的に分ける遠心分離によって達成しえる。得られた夾雑細胞を含む沈殿は、生理学的に適合する溶媒に懸濁させる。懸濁状の細胞には、赤血球を含む恐れがあるが、後述する個体表面への接着による選択により、赤血球は除外されるため、溶解する工程は必ずしも必要ではない。赤血球を選択的に溶解する方法として、例えば、塩化アンモニウムによる溶解による高張培地又は低張培地中でのインキュベーションなど、当技術分野で周知の方法を使用することができる。溶解後、例えば濾過、遠心沈降、又は密度分画によって溶解物を所望の細胞から分離してもよい。
 工程(ii)において、懸濁状の細胞において、間葉系幹細胞の純度を高めるために、1回もしくは連続して複数回洗浄し、遠心分離し、培地に再懸濁してもよい。この他にも、細胞を、細胞表面マーカープロファイルを基に、又は細胞のサイズ及び顆粒性を基に分離してもよい。
 再懸濁において用いる培地は、間葉系幹細胞を培養できる培地であれば、特に限定されないが、このような培地は、基礎培地に、血清を添加する、及び/又は、アルブミン、トランスフェリン、脂肪酸、インスリン、亜セレン酸ナトリウム、コレステロール、コラーゲン前駆体、微量元素、2-メルカプトエタノール、3’-チオールグリセロール等の1つ以上の血清代替物を添加して作製してもよい。これらの培地には、必要に応じて、さらに脂質、アミノ酸、タンパク質、多糖、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類等の物質を添加してもよい。
 上記基礎培地としては、例えば、IMDM培地、Medium 199培地、Eagle’s Minimum Essential Medium(EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium(DMEM)培地、Ham’s F12培地、RPMI 1640培地、Fischer’s培地、MCDB201培地及びこれらの混合培地等が挙げられる。
 上記血清としては、例えば、ヒト血清、ウシ胎児血清(FBS)、ウシ血清、仔ウシ血清、ヤギ血清、ウマ血清、ブタ血清、ヒツジ血清、ウサギ血清、ラット血清等が挙げられるがこれらに限定されない。血清を用いる場合、基礎培地に対して、5v/v%~15v/v%、好ましくは、10v/v%を添加してもよい。
 上記脂肪酸としては、リノール酸、オレイン酸、リノレイン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸、パルミトイル酸、パルミチン酸、及びステアリン酸等が例示されるが、これらに限定されない。脂質は、フォスファチジルセリン、フォスファチジルエタノールアミン、フォスファチジルコリン等が例示されるが、これらに限定されない。アミノ酸は、例えば、L-アラニン、L-アルギニン、L-アスパラギン酸、L-アスパラギン、L-システイン、L-シスチン、L-グルタミン酸、L-グルタミン、L-グリシンなどを含むがこれらに限定されない。タンパク質は、例えば、エコチン、還元型グルタチオン、フィブロネクチン及びβ2-ミクログロブリン等が例示されるが、これらに限定されない。多糖は、グリコサミノグリカンが例示され、グリコサミノグリカンのうち特に、ヒアルロン酸、ヘパラン硫酸等が例示されるが、これらに限定されない。増殖因子は、例えば、血小板由来増殖因子(PDGF)、塩基性線維芽細胞成長因子(bFGF)、トランスフォーミング増殖因子ベータ(TGF-β)、肝細胞増殖因子(HGF)、上皮成長因子(EGF)、結合組織増殖因子(CTGF)、血管内皮細胞増殖因子(VEGF)等が例示されるが、これらに限定されない。本発明において得られる脂肪由来間葉系幹細胞を細胞移植に用いるという観点から、血清等の異種由来成分を含まない(ゼノフリー)培地を用いることが好ましい。このような培地は、例えば、PromoCell社、Lonza社、Biological Industries社、Veritas社、R&D Systems社、Corning社及びRohto社などから間葉系幹細胞(間質細胞)用として予め調製された培地として提供されている。
 続いて、工程(iii)では、工程(ii)で得られた細胞懸濁液中の細胞を分化させずに固体表面上で、上述の適切な細胞培地を使用して、適切な細胞密度及び培養条件で培養する。本発明において、「固体表面」とは、本発明における脂肪組織由来間葉系幹細胞の結合・接着を可能とする任意の材料を意味する。特定の態様では、このような材料は、その表面への哺乳類細胞の結合・接着を促すように処理されたプラスチック材料である。固体表面を有する培養容器の形状は特に限定されないが、シャーレやフラスコなどが好適に用いられる。非結合状態の細胞及び細胞の破片を除去するために、インキュベーション後に細胞を洗浄する。
 本発明では、最終的に固体表面に結合・接着した状態で留まる細胞を、脂肪組織由来間葉系幹細胞の細胞集団として選択することができる。
 選択された細胞について、本発明における脂肪組織由来間葉系幹細胞であることを確認するために、表面抗原についてフローサイトメトリー等を用いて従来の方法で解析してもよい。さらに、各細胞系列に分化する能力について検査してもよく、このような分化は、従来の方法で行うことができる。
 本発明における間葉系幹細胞は、上述の通り調製することができるが、次の特性を持つ細胞として定義してもよい;
(1)標準培地での培養条件で、プラスチックに接着性を示す、
(2)表面抗原CD44、CD73、CD90が陽性であり、CD31、CD45が陰性であり、及び
(3)培養条件にて骨細胞、脂肪細胞、軟骨細胞に分化可能。
(間葉系幹細胞の凍結保存)
 本発明における間葉系幹細胞は、肺線維症に対する治療効果を備えていれば、適宜、凍結保存及び融解を繰り返した細胞であってもよい。本発明において、凍結保存は、当業者に周知の凍結保存液へ間葉系幹細胞を懸濁し、冷却することによって行い得る。懸濁は、細胞をトリプシンなどの剥離剤によって剥離し、凍結保存容器に移し、適宜、処理した後、凍結保存液を加えることによって行い得る。
 凍結保存液は、凍害防御剤として、DMSO(Dimethyl sulfoxide)を含有していてもよいが、DMSOは、細胞毒性に加えて、間葉系幹細胞を分化誘導する特性を有することから、DMSO含有量を減らすことが好ましい。DMSOの代替物として、グリセロール、プロピレングリコール又は多糖類、糖アルコール類が例示される。DMSOを用いる場合、5%~20%の濃度、好ましくは5%~10%の濃度、より好ましくは10%の濃度を含有する。この他にも、WO2007/058308に記載の添加剤を含んでもよい。このような凍結保存液として、例えば、バイオベルデ社、日本ジェネティクス株式会社、リプロセル社、ゼノアック社、コスモ・バイオ社、コージンバイオ株式会社、サーモフィッシャーサイエンティフィック社などから提供されている凍結保存液を用いてもよい。
 上述の懸濁した細胞を凍結保存する場合、-80℃~-100℃の間の温度(例えば、-80℃)で保管することで良く、当該温度に達成しえる任意のフリーザーを用いて行い得る。特に限定されないが、急激な温度変化を回避するため、プログラムフリーザーを用いて、冷却速度を適宜制御してもよい。冷却速度は、凍結保存液の成分によって適宜選択しても良く、凍結保存液の製造者指示に従って行われ得る。
 保存期間は、上記条件で凍結保存した細胞が融解した後、凍結前と同等の性質を保持している限り、特に上限は限定されないが、例えば、1週間以上、2週間以上、3週間以上、4週間以上、2か月以上、3か月以上、4か月以上、5か月以上、6か月以上、1年以上、又はそれ以上が挙げられる。より低い温度で保存することで細胞障害を抑制することができるため、液体窒素上の気相(約-150℃以下から-180℃以下)へ移して保存してもよい。液体窒素上の気相で保存する場合、当業者に周知の保存容器を用いて行うことができる。特に限定されないが、例えば、2週間以上保存する場合、液体窒素上の気相で保存することが好ましい。
 融解した間葉系幹細胞は、次の凍結保存までに適宜、培養してもよい。間葉系幹細胞の培養は、上述した間葉系幹細胞を培養できる培地を用いて行われ、特に限定されないが、約30~40℃、好ましくは約37℃の培養温度で、CO含有空気の雰囲気下で行われてもよい。CO濃度は、約2~5%、好ましくは約5%である。培養において、培養容器に対して適切なコンフルエンシー(例えば、培養容器に対して、50%~80%を細胞が占有することが挙げられる)に達した後に、細胞をトリプシンなどの剥離剤によって剥離し、別途用意した培養容器に適切な細胞密度で播種して培養を継続してもよい。細胞を播種する際において、典型的な細胞密度として、100細胞/cm~100,000細胞/cm、500細胞/cm~50,000細胞/cm、1,000~10,000細胞/cm、2,000~10,000細胞/cmなどが例示される。特定の態様では、細胞密度は2,000~10,000細胞/cmである。適切なコンフルエンシーに達するまでの期間が、3日間~7日間となるように調整することが好ましい。培養中、必要に応じて、適宜、培地を交換してもよい。
 凍結保存した細胞の融解は、当業者に周知の方法によって行い得る。例えば、室温~37℃、好ましくは37℃の恒温槽内又は湯浴中にて静置又は振とうすることによって行う方法が例示される。
(間葉系幹細胞の形態)
 本発明の間葉系幹細胞は、いずれの状態の細胞であってもよいが、例えば培養中の細胞を剥離して回収された細胞でもよいし、凍結保存液中に凍結された状態の細胞でもよい。拡大培養して得られる同ロットの細胞を小分けして凍結保存したものを使用すると、安定して同様の作用効果が得られる点、取扱い性に優れる点等において好ましい。凍結保存状態の間葉系幹細胞は、使用直前に融解し、凍結保存液に懸濁したまま輸液もしくは培地等の間葉系幹細胞懸濁用溶液に直接混合してもよい。また、遠心分離等の方法により凍結保存液を除去してから輸液もしくは培地等の間葉系幹細胞懸濁用溶液に懸濁してもよい。ここで、本発明における「輸液」とは、ヒトの治療の際に用いられる溶液のことをいい、特に限定されないが、例えば、生理食塩水、日局生理食塩液、5%ブドウ糖液、日局ブドウ糖注射液、リンゲル液、日局リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、1号液(開始液)、2号液(脱水補給液)、3号液(維持液)、4号液(術後回復液)等が挙げられる。なお、上記の輸液もしくは培地等の間葉系幹細胞懸濁用溶液は、後述するその他の成分(薬学的に許容される担体や添加物)を含むように調製されてもよい。
 本発明の肺線維症治療剤は、本発明の効果を損なわない範囲であれば、上記間葉系幹細胞以外に、その用途や形態に応じて、常法に従い、薬学的に許容される担体や添加物を含有させてもよい。このような担体や添加物としては、例えば、等張化剤、増粘剤、糖類、糖アルコール類、防腐剤(保存剤)、殺菌剤又は抗菌剤、pH調節剤、安定化剤、キレート剤、油性基剤、ゲル基剤、界面活性剤、懸濁化剤、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、発泡剤、流動化剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、溶解補助剤、抗酸化剤、甘味剤、酸味剤、着色剤、呈味剤、香料又は清涼化剤等が挙げられるが、これらに限定されない。代表的な成分として例えば次の担体、添加物等が挙げられる。
 担体としては、例えば、水、含水エタノール等の水性担体が挙げられる。また、等張化剤(無機塩)としては、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム等が;多価アルコールとしては、例えば、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等が;増粘剤としては、例えば、カルボキシビニルポリマー、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、メチルセルロース、アルギン酸、ポリビニルアルコール(完全、又は部分ケン化物)、ポリビニルピロリドン、マクロゴール等が;糖類としては、例えば、シクロデキストリン、ブドウ糖等が;糖アルコール類としては、例えば、キシリトール、ソルビトール、マンニトール等(これらはd体、l体又はdl体のいずれでもよい)が;防腐剤、殺菌剤又は抗菌剤としては、例えば、ジブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、塩酸アルキルジアミノエチルグリシン、安息香酸ナトリウム、エタノール、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、グルコン酸クロルヘキシジン、クロロブタノール、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、トロメタモール、デヒドロ酢酸ナトリウム、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル、パラオキシ安息香酸ブチル、硫酸オキシキノリン、フェネチルアルコール、ベンジルアルコール、ビグアニド化合物(具体的には、塩酸ポリヘキサニド(ポリヘキサメチレンビグアニド)等)、グローキル(ローディア社製商品名)等が;pH調節剤としては、例えば、塩酸、ホウ酸、アミノエチルスルホン酸、イプシロン-アミノカプロン酸、クエン酸、酢酸、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸ナトリウム、ホウ砂、トリエタノールアミン、モノエタノールアミン、ジイソプロパノールアミン、硫酸、硫酸マグネシウム、リン酸、ポリリン酸、プロピオン酸、シュウ酸、グルコン酸、フマル酸、乳酸、酒石酸、リンゴ酸、コハク酸、グルコノラクトン、酢酸アンモニウム等が;安定化剤としては、例えば、ジブチルヒドロキシトルエン、トロメタモール、ナトリウムホルムアルデヒドスルホキシレート(ロンガリット)、トコフェロール、ピロ亜硫酸ナトリウム、モノエタノールアミン、モノステアリン酸アルミニウム、モノステアリン酸グリセリン、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等が;油性基剤としては、例えば、オリーブ油、トウモロコシ油、大豆油、ゴマ油、綿実油等の植物油、中鎖脂肪酸トリグリセリド等が;水性基剤としては、例えば、マクロゴール400等が;ゲル基剤としては、例えば、カルボキシビニルポリマー、ガム質等が;界面活性剤としては、例えば、ポリソルベート80、硬化ヒマシ油、グリセリン脂肪酸エステル、セスキオレイン酸ソルビタン等が;懸濁化剤としては、例えば、サラシミツロウや各種界面活性剤、アラビアゴム、アラビアゴム末、キサンタンガム、大豆レシチン等が;結合剤としては、例えば、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール等が;賦形剤としては、例えば、ショ糖、乳糖、デンプン、コーンスターチ、結晶セルロース、軽質無水ケイ酸等が;滑沢剤としては、例えば、ショ糖脂肪酸エステル、ステアリン酸マグネシウム、タルク等が;崩壊剤としては、例えば、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、クロスポビドン、クロスカルメロースナトリウム等が;発泡剤としては、例えば、炭酸水素ナトリウム等が;流動化剤としては、例えば、メタケイ酸アルミン酸ナトリウム、軽質無水ケイ酸等が、それぞれ挙げられる。
 本発明の肺線維症治療剤は、目的に応じて種々の形態、例えば、固形剤、半固形剤、液剤等の様々な剤形で提供することができる。例えば、固形剤(錠剤、粉末、散剤、顆粒剤、カプセル剤等)、半固形剤[軟膏剤(硬軟膏剤、軟軟膏剤等)、クリーム剤等]、液剤[ローション剤、エキス剤、懸濁剤、乳剤、シロップ剤、注射剤(輸液剤、埋め込み注射剤、持続性注射、用時調製型の注射剤を含む)、透析用剤、エアゾール剤、軟カプセル剤、ドリンク剤等]、貼付剤、パップ剤等の形態で利用できる。また、本発明の肺線維症治療剤は、油性又は水性のビヒクル中の溶液又は乳液等の形態でも利用できる。さらに、本発明の肺線維症治療剤は噴霧により、患部に適用することもでき、本発明の肺線維症治療剤は噴霧した後に患部でゲル化もしくはシート化される形態でも利用できる。本発明の肺線維症治療剤は上記間葉系幹細胞をシート状又は立体構造体とした後に、患部に適用することもできる。
 本発明の肺線維症治療剤は、上述した間葉系幹細胞、その他の成分(薬学的に許容される担体や添加物)を、生理食塩水、日局生理食塩液、5%ブドウ糖液、日局ブドウ糖注射液、リンゲル液、日局リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液、1号液(開始液)、2号液(脱水補給液)、3号液(維持液)、4号液(術後回復液)等の輸液、又は、DMEM等の細胞培養培地等の間葉系幹細胞懸濁用溶液を用いて、懸濁もしくは希釈して用いることができ、好ましくは生理食塩液、5%ブドウ糖液、1号液(開始液)で、より好ましくは5%ブドウ糖液、1号液(開始液)で懸濁もしくは希釈して用いることができる。また、上記間葉系幹細胞懸濁用溶液は、上記その他の成分(薬学的に許容される担体や添加物)が予め含まれるように調製されていてもよい。
 本発明の肺線維症治療剤は、間葉系幹細胞と、間葉系幹細胞懸濁用溶液とが別々の容器に封入されて保管され、使用時に両者を混合して用いてもよい。なお、保管の際、上記間葉系幹細胞及び間葉系幹細胞懸濁用の溶液は凍結状態であってもよいし、冷蔵状態であってもよい。
 本発明の肺線維症治療剤が液剤である場合、肺線維症治療剤のpHは、医薬上、薬理学的に(製薬上)又は生理学的に許容される範囲内であれば特に限定されるものではないが、一例として、2.5~9.0、好ましくは3.0~8.5、より好ましくは3.5~8.0となる範囲が挙げられる。なお、間葉系幹細胞と、間葉系幹細胞懸濁用溶液とが別々の容器に封入されて保管されている場合には、間葉系幹細胞懸濁用溶液が、上記条件を満たしていればよい。
 本発明の肺線維症治療剤が液剤である場合、肺線維症治療剤の浸透圧については、生体に許容される範囲内であれば、特に制限されない。本発明の肺線維症治療剤の浸透圧比の一例として、好ましくは0.7~5.0、より好ましくは0.8~3.0、さらに好ましくは0.9~1.4となる範囲が挙げられる。浸透圧の調整は無機塩、多価アルコール、糖アルコール、糖類等を用いて、当該技術分野で既知の方法で行うことができる。浸透圧比は、第十五改正日本薬局方に基づき286mOsm(0.9w/v%塩化ナトリウム水溶液)の浸透圧に対する試料の浸透圧の比とし、浸透圧は日本薬局方記載の浸透圧測定法(氷点降下法)を参考にして測定する。なお、浸透圧比測定用標準液(0.9w/v%塩化ナトリウム水溶液)は、塩化ナトリウム(日本薬局方標準試薬)を500~650℃で40~50分間乾燥した後、デシケーター(シリカゲル)中で放冷し、その0.900gを正確に量り、精製水に溶かし正確に100mLとして調製するか、市販の浸透圧比測定用標準液(0.9w/v%塩化ナトリウム水溶液)を用いる。なお、間葉系幹細胞と、間葉系幹細胞懸濁用溶液とが別々の容器に封入されて保管されている場合には、間葉系幹細胞懸濁用溶液が、上記条件を満たしていればよい。
 本発明の肺線維症治療剤の対象への投与経路は、経口投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、動脈内投与、髄腔内投与、腹腔内投与、舌下投与、経直腸投与、経腟投与、経鼻投与、吸入、経皮投与、インプラント、肺表面への噴霧及びシート等の貼付による直接投与等が挙げられるが、本発明の肺線維症治療剤の有効性の観点から、好ましくはインプラント、動脈内投与、静脈内投与及び肺表面への噴霧及びシート等の貼付による直接投与であり、対象者の負担の軽減の観点から、より好ましくは肺動脈内投与もしくは静脈内投与であり、最も好ましくは静脈内投与である。
 本発明の肺線維症治療剤において、その用量(投与量)は、患者の状態(体重、年齢、症状、体調等)、及び本発明の肺線維症治療剤の剤形等によって異なりうるが、十分な肺線維症の治療効果を奏する観点からは、その量は多い方が好ましい傾向にあり、一方、副作用の発現を抑制する観点からはその量は少ない方が好ましい傾向にある。通常、成人に投与する場合には、細胞数として、1x10~1x1012個/回、好ましくは1x10~1x1011個/回、より好ましくは1x10~1x1010個/回、さらに好ましくは5x10~1x10個/回である。また、患者の体重あたりの投与量としては、1x10~5x1010個/kg、好ましくは1x10~5x10個/kg、より好ましくは1x10~5x10個/kg、さらに好ましくは1x10~5x10個/kgである。なお、本用量を1回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与してもよい。
 本発明の肺線維症治療剤の対象への投与速度は、患者の状態(体重、年齢、症状、体調等)、及び本発明の肺線維症治療剤の投与経路等によって異なりうるが、通常、成人に投与する場合には、50mL/h~1,000mL/hであり、75mL/h~500mL/hであることが好ましく、100mL/h~250mL/hであることがより好ましい。
 本発明の肺線維症治療剤の対象への投与温度は、患者の状態(体重、年齢、症状、体調等)、及び本発明の肺線維症治療剤の投与経路等によって異なりうるが、通常、4℃~45℃であり、15℃~37℃であることが好ましく、室温~37℃であることがより好ましい。
 本発明の肺線維症治療剤は、1又は2以上の他の薬剤と共に投与してもよい。他の薬剤としては、呼吸器用薬、免疫抑制薬として用いることができる任意の薬剤が挙げられ、例えば、ジモルホラミン、ドキサプラム塩酸塩水和物、シベレスタットナトリウム水和物、肺サーファクタント、ドルナーゼ アルファ、パーフェニドン、インターフェロン-γ-1b、プレドニソン、コルチコステロイド、ピルフェニドン(ピレスパ(商標登録))、ニンテダニブ(オフェブ(商標登録))、アンギオテンシン受容体遮断薬、シクロスポリン、アザチオプリン、ミゾリビン、バシリキシマブ、タクロリムス水和物、グスペリムス塩酸塩、ミコフェノール酸モフェチル、エベロリムス、アセチルシステイン等が挙げられる。なお、本発明の肺線維症治療剤が、1又は2以上の他の薬剤と共に投与される場合とは、本発明の肺線維症治療剤と他の薬剤とを同時に使用する場合、どちらか一方を投与した後に一定の時間が経過してから他方の薬剤を投与する場合、これらの組み合わせ等、種々の場合を含む。
 本発明の肺線維症治療剤は、PTPRR発現促進剤を含有すると表現することもできる。ここで、PTPRRとは、Protein tyrosine phosphatase receptor-type Rであり、受容体型チロシンホスファターゼの一種である。PTPRRはチロシンキナーゼによってリン酸化されたタンパク質のチロシンを脱リン酸化する酵素である。受容体型チロシンホスファターゼは、酵素活性を有する細胞内領域と、膜貫通ドメインと、細胞外領域とからなり、細胞外領域にリガンドが結合することにより酵素活性が制御される。本発明におけるPTPRR発現促進剤とは、細胞や組織におけるPTPRR遺伝子及び/又はPTPRRタンパクの発現を促進する作用を示す組成物をいう。以下に本発明のPTPRR発現促進剤について説明する。
[PTPRR発現促進剤]
 本発明におけるPTPRR発現促進剤は、肺線維化の原因となる細胞や組織におけるPTPRR発現を促進することで、チロシンリン酸化されたタンパク質の脱リン酸化を亢進し、結果的に、その細胞の増殖、ひいては組織の線維化を抑制することができる。このようなチロシンリン酸化されたタンパク質としては、例えば、ERK、JNK、p38等が挙げられ、これらのうち肺線維化抑制効果に優れるという観点から、ERKが好ましい。
 本発明のPTPRR発現促進剤は、肺線維化の原因となる細胞や組織に作用して、それらのPTPRR発現を促進する機能を有する間葉系幹細胞を含むことが好ましい。本発明のPTPRR発現促進剤が含む間葉系幹細胞については、上述の肺線維症治療剤が含む間葉系幹細胞の説明をそのまま適用できる。
 本発明の肺線維症治療剤が有効な疾患としては、例えば、通常型間質性肺炎(UIP)、特発性肺線維症(IPF、特発性線維化肺胞炎)、非特異的間質性肺炎、器質化肺炎を伴う閉塞性細気管支炎(原因不明の器質化肺炎)、呼吸細気管支炎を伴う間質性肺疾患(ILD)、剥離性間質性肺炎、急性間質肺炎(急性進行性間質性肺炎、ハマン-リッチ症候群)、特発性間質性肺炎、薬物誘発性肺疾患、好酸球性肺疾患及び慢性好酸球性肺炎である。中でも、通常型間質性肺炎(UIP)、特発性肺線維症(IPF、特発性線維化肺胞炎)に対して、顕著な効果を示す。
<肺線維症治療用キット>
 本発明は、間葉系幹細胞と、間葉系幹細胞懸濁用溶液と含む、肺線維症治療用のキットも含む。本発明のキットが含む間葉系幹細胞、間葉系幹細胞懸濁用溶液については、肺線維症治療剤の項における説明を適用できる。
 また、本発明の肺線維症治療用キットは、本発明の肺線維症治療剤、容器及びラベルを含むものであると表現することもできる。本発明のキットが含む適切な容器としては、特に限定されないが、例えば、細胞凍結用のクライオチューブ、間葉系幹細胞懸濁用溶液用のボトル、バイアル、試験管等が挙げられる。これらの容器は、ガラス、金属、プラスチック又はこれらの組み合わせ等の多様な材料から形成されていてもよい。これらの容器上のラベルには、内容物である間葉系幹細胞、間葉系幹細胞懸濁用溶液等を説明する内容が記載されている。
 本発明のキットは、その他の添加剤、その他の薬剤、希釈剤、フィルター、針、シリンジ、使用法を記載した添付文書を含めた、商業的、及び利用者の観点から望ましい他の材料を包含することができる。
<肺線維症の治療方法、PTPRR発現の促進方法>
 本発明は、間葉系幹細胞を用いることを特徴とする、肺線維症の治療方法も含む。本発明の治療方法によると、間葉系幹細胞が、肺線維化を促進する遺伝子発現を抑制することにより、肺線維症を効果的に治療することが可能である。また、本発明は、間葉系幹細胞を用いることを特徴とする、細胞・組織等におけるPTPRR発現の促進方法も含む。本発明の促進方法によると、間葉系幹細胞が細胞や組織に作用し、PTPRR発現の発現を効果的に促進させることができる。なお、間葉系幹細胞についての説明は、肺線維症治療剤の項における説明を適用できる。
 以下に、実施例及び試験例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例等によって限定されるものではない。
1.脂肪組織由来間葉系幹細胞の調製(実施例1)
 市販細胞(Lonza社製PT―5006)に間葉系幹細胞用無血清培地(Rohto社)を加え、当該細胞懸濁液を400gで5分間遠心分離し、上清除去後に間葉系幹細胞用無血清培地(Rohto社)に再懸濁し、フラスコに細胞を播種した。細胞を37℃で数日間、5%CO中で継代培養した。数日後に培養物をPBSで洗浄して、培養液中に含まれていた血球や脂肪組織の残存等を除去し、プラスチック容器に接着している間葉系幹細胞を得た。
 得られた脂肪組織由来間葉系幹細胞を遠沈管に分注し、800gで5分間、遠心分離し細胞の沈殿を得た。上清を除去した後、細胞凍結保存液(STEM-CELLBANKER(ゼノアック社))を適量加え懸濁した。当該細胞懸濁溶液を、クライオチューブに分注した後、フリーザー内で-80度にて保存後、液体窒素上の気相に移し、保存を継続した。以下、脂肪組織由来間葉系幹細胞をADMSC又はASCともいう。
2.UIP患者由来肺線維芽細胞の線維化関連遺伝子発現に対する脂肪組織由来間葉系幹細胞の効果(実施例2)
 肺線維化病変を指摘され、肺癌で手術した症例から検体を採取した。線維化が見られない部位(線維化(-))、線維化が見られる部位(線維化(+))を区別し、それぞれ組織を切り刻み、15%血清入りDMEM培地(Wako社製)で37℃、10%CO中で培養を開始し、各1、2、4、7日目にはPBS(Wako社製)で洗浄した後に培地交換を行い、計10日間培養を行い、UIP(Usual interstitial pneumonia;通常型間質性肺炎)患者由来の肺線維芽細胞、(以下「UIP細胞」という)を得た。
 15%血清入りDMEM培地に懸濁したUIP細胞(5.0×10cells/well)を24ウェルプレートの各ウェルに播種し、COインキュベーター(37℃、10%CO)内で一晩培養し、培養液を1%血清入りDMEM培地に入れ替えた。上記継代培養して凍結保存されていたヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(実施例1)を、37℃の恒温槽に浸して細胞懸濁液を融解した後に、15mL遠沈管に分取し、DMEM培地(Wako社製)で10mLまでメスアップし、室温、400×gで5分間遠心した(Eppendorf社製、5702)。24ウェルプレートにトランスウェルインサート(Corning,#3460)を設置し、トランスウェルインサートには1%血清入りDMEM培地のみ(Control)、終濃度100ng/mlのHGFを含む1%血清入りDMEM培地及び1%血清入りDMEMに懸濁したヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(2.0×10cells/well)を添加した。共培養を開始してから24時間後に、UIP細胞のRNAを回収し、線維化関連因子であるACTA2(α-Smooth muscle actin; α-SMA)、CDH2(Cadherin2)及びCollagen1のmRNA発現量を定量PCRで測定した。また、UIP細胞のウェスタンブロットを行った。定量PCRの結果を図1に示した。また、ウェスタンブロットの結果を図2に示した。
 図1に示すとおり、UIP細胞とヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞と共培養することにより、UIP細胞におけるACTA2(α-SMA)、CDH2及びCollagen1の発現が有意に減少した。その効果はHGFよりも顕著であった。また、図2に示すとおり、UIP細胞とヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞と共培養することにより、UIP細胞におけるリン酸化ERKの量が減少したことがわかった。
 なお、マイクロアレイ解析によりヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞を添加することで、UIP細胞においてPTPRR遺伝子の発現が上昇することが確認された。このことから、UIP細胞において、ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞の作用で発現が促進されたPTPRRにより、リン酸化ERKの脱リン酸化がおこり、結果的にUIP細胞のような線維化に関与する細胞の増殖が抑制され、線維症治療に繋がる可能性が示唆された。
3.肺胞上皮細胞株A549の線維化関連遺伝子発現に対する脂肪組織由来間葉系幹細胞の効果(実施例3)
 24ウェルプレートに、1%血清入りDMEM培地に懸濁した肺胞上皮様細胞株(A549;5.0×10cells/well)を播種し、COインキュベーター(37℃、5%CO)内に入れ、培養を開始した。培養を開始してから12時間後に、TGF-β最終濃度100ng/mlにて上皮間葉転換を誘導した。1日間培養後、TGF-βを、DMEM培地を用いて完全にwash outし、ADMSC共培養群にはトランスウェルインサート(corning, #3460)を設置し、トランスウェルインサートに、実施例1と同様に調整した継代培養して凍結保存されていたヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(2.0×10cells/well)を、1%血清入りDMEM培地に懸濁して添加した。共培養を開始してから24時間後に、A549細胞のRNAを回収し、線維化関連遺伝子であるACTA2(α-Smooth muscle actin; α-SMA)、CDH2(Cadherin2)及びFN1(Fibronectin1)のmRNA発現量を定量PCRで測定した。
結果を図3に示した。
 図3に示すとおり、A549細胞とヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞とを共培養することにより、A549細胞におけるα-SMA、CDH2及びFN1の発現が有意に減少した。以上より、ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞はTGF-β添加により誘導される線維化の原因とされる上皮間葉転換(EMT)を抑制し、線維化関連遺伝子であるα-SMA、CDH2及びFN1量を減少させることが明らかとなった。
4.重症複合免疫不全マウスを用いた線維症モデルマウスの作製(実施例4)
 重症複合免疫不全マウスSCID-Beige(CB17.Dg-PrkdcscidKystbg-J/CrlCrli)マウス(7-10週齢、雌、日本チャールズリバー株式会社)に、実施例2と同様に調整したUIP細胞を静脈内投与した。なお、UIP細胞は遠心して培地を取り除き、PBS(Wako社製)に懸濁した細胞(2x10cells)500μLを上記投与に用いた。PBSのみを投与したマウスを陰性対照とした。PBS及びUIP細胞懸濁液投与63日後に、肺の病理切片を作成し、マッソントリクローム染色を行った。結果を図4に示す。図4に示すとおり、UIP細胞懸濁液投与群においては明らかな線維化が認められ、ヒトにおいてみられるのと同様のUIP特異的な病変が認められた。
5.上記線維症モデルマウスにおけるADMSCの治療効果(実施例5)
 実施例4と同様に、重症複合免疫不全マウスSCID-Beige(CB17.Dg-PrkdcscidKystbg-J/CrlCrli)マウス(7-10週齢、雌、日本チャールズリバー株式会社)に、実施例2と同様に調整したUIP細胞を静脈内投与した。UIP細胞投与35日後に、それぞれPBSのみ(200μL、Lonza社製;PBS群)及び実施例1と同様に調製して継代培養したヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(200μL、1.5x10cells;ADMSC群)を静脈内投与した。UIP細胞投与63日後に肺の病理切片を作成し、マッソントリクローム染色を行い、組織学的解析を行った。ADMSC群ではPBS群と比較して線維化の軽減が見られ、肺線維症に対して治療効果があることが示唆された。
 本発明により、肺線維症の新規治療剤、PTPRR発現促進剤及び肺線維症の新規治療用キットを提供することができる。本発明の肺線維症の新規治療剤及び肺線維症の新規治療用キットは、現在有効な薬物療法は確立されていない肺線維症に対して、顕著な治療効果を奏するものである。

Claims (7)

  1.  間葉系幹細胞を含有する、肺線維症治療剤。
  2.  肺線維症が、通常型間質性肺炎(UIP)または、特発性肺線維症(IPF)である請求項1に記載の肺線維症治療剤。
  3.  間葉系幹細胞が脂肪組織由来である、請求項1又は2に記載の肺線維症治療剤。
  4.  間葉系幹細胞が他家由来である、請求項1から3のいずれか1項に記載の肺線維症治療剤。
  5.  PTPRR発現促進剤を含有する、肺線維症治療剤。
  6.  PTPRR発現促進剤が、リン酸化ERKを脱リン酸化する、請求項5に記載の肺線維症治療剤。
  7.  請求項1~6のいずれか1項に記載の肺線維症治療剤、容器及びラベルを含む、肺線維症治療用キット。
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