WO2011145518A1 - アルデヒド除去組成物 - Google Patents

アルデヒド除去組成物 Download PDF

Info

Publication number
WO2011145518A1
WO2011145518A1 PCT/JP2011/061048 JP2011061048W WO2011145518A1 WO 2011145518 A1 WO2011145518 A1 WO 2011145518A1 JP 2011061048 W JP2011061048 W JP 2011061048W WO 2011145518 A1 WO2011145518 A1 WO 2011145518A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
acetaldehyde
aldehyde
gluconobacter
composition according
cells
Prior art date
Application number
PCT/JP2011/061048
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
中山　亨
美穂 細矢
山口　晴彦
Original Assignee
国立大学法人東北大学
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 国立大学法人東北大学 filed Critical 国立大学法人東北大学
Priority to JP2012515860A priority Critical patent/JP5637209B2/ja
Priority to KR1020127033072A priority patent/KR20130043114A/ko
Priority to US13/698,331 priority patent/US20130058887A1/en
Priority to EP11783452.3A priority patent/EP2572590A4/en
Publication of WO2011145518A1 publication Critical patent/WO2011145518A1/ja

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L5/00—Preparation or treatment of foods or foodstuffs, in general; Food or foodstuffs obtained thereby; Materials therefor
    • A23L5/20—Removal of unwanted matter, e.g. deodorisation or detoxification
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00—Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/96—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution
    • A61K8/99—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing materials, or derivatives thereof of undetermined constitution from microorganisms other than algae or fungi, e.g. protozoa or bacteria
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L2/00—Non-alcoholic beverages; Dry compositions or concentrates therefor; Their preparation
    • A23L2/52—Adding ingredients
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00—Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/065—Microorganisms
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/135—Bacteria or derivatives thereof, e.g. probiotics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L5/00—Preparation or treatment of foods or foodstuffs, in general; Food or foodstuffs obtained thereby; Materials therefor
    • A23L5/20—Removal of unwanted matter, e.g. deodorisation or detoxification
    • A23L5/28—Removal of unwanted matter, e.g. deodorisation or detoxification using microorganisms
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/02—Stomatological preparations, e.g. drugs for caries, aphtae, periodontitis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P39/00—General protective or antinoxious agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P39/00—General protective or antinoxious agents
    • A61P39/02—Antidotes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61Q—SPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
    • A61Q11/00—Preparations for care of the teeth, of the oral cavity or of dentures; Dentifrices, e.g. toothpastes; Mouth rinses
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23F—COFFEE; TEA; THEIR SUBSTITUTES; MANUFACTURE, PREPARATION, OR INFUSION THEREOF
    • A23F3/00—Tea; Tea substitutes; Preparations thereof
    • A23F3/16—Tea extraction; Tea extracts; Treating tea extract; Making instant tea
    • A23F3/166—Addition of, or treatment with, enzymes or microorganisms
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2002/00—Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs

Definitions

  • the present invention relates to a composition for removing aldehyde, for example.
  • Non-Patent Document 1 Alcohol (ethanol) is carcinogenic to animals based on the work committee of IARC (the International Agency for Research). We conclude that there is sufficient evidence.
  • alcohol After drinking, alcohol is generally decomposed into acetaldehyde by alcohol dehydrogenase in the liver, further oxidized by aldehyde dehydrogenase (aldehyde dehydrogenase) to become acetic acid, and finally decomposed into carbon dioxide and water.
  • aldehyde dehydrogenase aldehyde dehydrogenase
  • the acetaldehyde produced as an intermediate during the catabolism of ethanol is not only a causative substance of so-called “drunk” symptoms such as flushing of the face, headache, sleepiness, nausea and vomiting, but also a carcinogenic substance of Group I in IARC ( Acetaldehyde derived from alcohol by metabolism is considered to play a major role in the carcinogenicity of alcohol.
  • acetaldehyde is a cause of blue odor, off-flavor, and altered odor in brewed beer such as beer and sake, beer-like alcoholic beverages, and distilled spirits such as shochu, and is called a flavor-inhibiting substance (off-flavor).
  • off-flavor a flavor-inhibiting substance
  • excess acetaldehyde produced by drinking can accumulate in saliva and cause a bad breath ("ripe odor").
  • the Japanese population has a high proportion of aldehyde dehydrogenase isozyme type 2 (ALDH2) deficiency responsible for detoxification of acetaldehyde (hetero-deficient ALDH2 * 1 / * 2: about 40% of the total population; homo-deficient ALDH2 * 2 / * 2: Approximately 10%). Since people with this genotype have a slow metabolism rate of acetaldehyde, they become a flusher type whose face becomes remarkably red by drinking (Non-patent Document 2). The flasher type person has about 50 times higher risk of carcinogenesis in the upper digestive organ group (oral cavity, pharynx and esophagus) due to drinking than the non-flasher type (Non-patent Document 3).
  • acetaldehyde is secreted into the blood and released by exhalation, and accumulates in saliva.
  • Alcohol in the oral cavity is metabolized into acetaldehyde by oral bacteria and accumulates in the upper digestive organs.
  • saliva of flasher-type humans with slow acetaldehyde metabolism it has been observed that the acetaldehyde concentration rises significantly after drinking and circulates and stays in the upper digestive tract over several hours to several tens of hours. It has been found that the circulation and retention of acetaldehyde in the upper gastrointestinal tract due to alcohol drinking is the main cause of the increased risk of flasher upper gastrointestinal cancer.
  • Alcohol beverages, particularly some distilled liquors originally contain trace amounts of acetaldehyde.
  • Non-patent Document 4 As a means for removing acetaldehyde in the oral cavity after drinking, use of L-cysteine (sulfur-containing amino acid), barley green juice, etc. is considered (Non-patent Document 4). This method was devised based on the fact that L-cysteine and flavonoids in green juice add to acetaldehyde to inactivate acetaldehyde. However, the complex formation reaction between flavonoids in L-cysteine or green juice and acetaldehyde is a reversible reaction, and this method has a drawback that acetaldehyde may be regenerated. L-cysteine and green juice itself are substances having a unique taste and odor and are practically difficult to use by taking.
  • Patent Document 1 discloses an alcohol-decomposable composition containing acetic acid bacteria that degrade alcohol at pH 3 or lower.
  • Patent Document 1 discloses that when an acetic acid bacterium exhibiting alcohol oxidase activity even at pH 3 or lower is ingested before or before drinking alcohol, alcohol is oxidized into acetic acid through acetaldehyde in the stomach by the acetic acid bacterium. Indicate that it is not absorbed in the digestive tract.
  • microorganisms In practice, however, such microorganisms also have the ability to oxidize ethanol in most cases, and this method has the disadvantage that a large amount of acetaldehyde is generated from alcohol remaining in the oral cavity by taking rather than before taking it. . Further, it should be noted that components in food such as beer and saliva components significantly increase acetaldehyde generation activity. Therefore, the adverse effect that acetaldehyde increases rather by taking a microorganism having aldehyde-degrading activity is brought about. Such a problem can be solved by purifying acetaldehyde-generating activity from microorganisms or selectively inactivating acetaldehyde-generating activity by applying an appropriate treatment. However, the use of microorganisms having aldehyde-degrading activity still has practical disadvantages such as the generation of harmful substances in the acetaldehyde-degrading enzyme reaction and the necessity of adding a coenzyme.
  • Aldehyde oxidase and aldehyde dehydrogenase can be used as the main acetaldehyde-degrading enzymes of microorganisms.
  • Aldehyde oxidase uses oxygen molecules to oxidize aldehydes and catalyze a reaction that produces carboxylic acid and hydrogen peroxide. Hydrogen peroxide, one of the reaction products, is a carcinogenic harmful substance, and its production is not preferable.
  • aldehyde dehydrogenase catalyzes the oxidation of aldehyde using NAD + , NADP +, etc. as coenzymes. These coenzymes are very expensive. In practice, it is necessary to add a large excess of coenzyme compared to the substrate or to incorporate an oxidized coenzyme regeneration system, but this is not practical from the viewpoint of cost.
  • an object of the present invention is to provide a method for removing acetaldehyde accumulated in the oral cavity after drinking from the oral cavity by a safe means.
  • the present invention is a carcinogenic risk factor for upper gastrointestinal tract cancer in a flasher, decomposes acetaldehyde accumulated in the oral cavity after drinking, and rapidly reduces the oral concentration to a carcinogenic concentration (2.2 ppm) or less. It is an object of the present invention to provide a method.
  • a method of decomposing and removing acetaldehyde using bacteria that are naturally present in the human body, such as food microorganisms and enteric bacteria, or microorganisms that are harmless to humans in the environment is considered. It is done.
  • the problem to be satisfied by this method is i) special treatment (purification, heat treatment, etc.) for the purpose of preventing the production of acetaldehyde from alcohol remaining in the oral cavity after drinking or eating or drinking, or preventing acetaldehyde Ii) not requiring the addition of oxidized coenzymes (NAD, etc.) to promote the decomposition and removal of acetaldehyde, and iii) not producing harmful substances in the process of decomposing acetaldehyde, or It is not necessary to add an additive for the purpose of decomposing harmful substances generated in the process of acetaldehyde decomposition.
  • special treatment purification, heat treatment, etc.
  • the concentration of alcohol ranges from several hundred to several thousand times that of acetaldehyde, and it is necessary to efficiently decompose acetaldehyde under such conditions.
  • microorganisms with acetaldehyde-degrading ability have a strong ethanol oxidation activity, and thus acetaldehyde is produced in the presence of a large excess of ethanol. For this reason, there is no known microbial preparation capable of removing acetaldehyde accumulated in the oral cavity after drinking from the oral cavity.
  • the present invention includes the following.
  • An aldehyde-removing composition containing a microorganism belonging to the genus Gluconobacter having aldehyde-degrading activity, or an extract thereof or a crushed cell, wherein the microorganism belonging to the genus Gluconobacter is more aldehyde than aldehyde-forming activity.
  • the said aldehyde removal composition characterized by having high decomposition activity.
  • the aldehyde removal composition according to (1) which is a composition for reducing the risk of upper gastrointestinal cancer.
  • acetaldehyde which increases the risk of carcinogenesis of the upper gastrointestinal tract associated with drinking habits, and aldehyde which is the cause of odor, and to fundamentally remove the carcinogenic risk factor of the upper gastrointestinal tract and the cause of the odor.
  • a possible composition is provided.
  • the aldehyde-removing composition according to the present invention contains a microorganism belonging to the genus Gluconobacter having aldehyde-degrading activity, an extract thereof, or a crushed cell. .
  • the microorganism belonging to the genus Gluconobacter has higher aldehyde decomposing activity than aldehyde producing activity, and can decompose aldehyde under conditions where the alcohol concentration is higher than the aldehyde concentration.
  • the composition according to the present invention can be used for decomposing and removing acetaldehyde that increases the risk of carcinogenesis in the upper gastrointestinal tract associated with drinking habits and the aldehyde that is the cause of odor, and the composition for reducing the risk of suffering from upper gastrointestinal cancer or the composition for removing odor Can be used as a thing.
  • examples of upper gastrointestinal cancer include oral cancer, pharyngeal cancer, and esophageal cancer.
  • acetaldehyde associated with drinking was classified as Group 1 in 2010, and it is recognized that it is definitely carcinogenic to humans.
  • the carcinogenic concentration of acetaldehyde associated with alcohol consumption is estimated to be 2 ppm (50 microM). Therefore, if the acetaldehyde in the oral cavity can be immediately reduced to 2 ppm or less by the aldehyde removing composition according to the present invention, it can be considered that the composition according to the present invention can reduce the risk of carcinogenesis.
  • acetaldehyde in the oral cavity after drinking can be decomposed and removed by taking, and acetaldehyde that increases the risk of carcinogenesis in the upper gastrointestinal tract associated with drinking habits can be fundamentally removed.
  • examples of the odor include a body odor such as a ripe odor caused by acetaldehyde, an aging odor caused by nonenal, and a blue odor caused by hexanal.
  • a body odor such as a ripe odor caused by acetaldehyde, an aging odor caused by nonenal, and a blue odor caused by hexanal.
  • acetaldehyde which is a mature odor substance in the oral cavity after drinking, can be decomposed and removed by taking, and the cause of odor can be fundamentally removed.
  • the composition according to the present invention can also be used for removing body odor.
  • the composition which concerns on this invention can also be used for the blue odor removal in food-drinks, such as soy milk.
  • examples of the aldehyde compound include acetaldehyde, nonenal, hexanal and the like.
  • the microorganism used in the present invention has higher aldehyde decomposition activity than aldehyde (for example, acetaldehyde) production activity, and aldehydes under conditions where alcohol (for example, ethanol) concentration is higher than aldehyde (for example, acetaldehyde) concentration. It can be disassembled.
  • the microorganism used in the present invention is efficient in the presence of an alcohol such as ethanol in a large excess (for example, several hundred to several thousand times in molar ratio) with respect to the aldehyde such as acetaldehyde. Can be decomposed.
  • Gluconobacter that does not produce harmful substances such as hydrogen peroxide during the decomposition reaction.
  • microorganisms belonging to the genus Gluconobacter include microorganisms belonging to species such as Gluconobacter kondonii, Gluconobacter kanchanaburiensis.
  • strains that can be used in the present invention include Gluconobacter kondonii RC NBRC3266 and Gluconobacter chanchanaburiensis NBRC103587. These strains can be obtained from the Biological Genetic Resource Department (NBRC) (2-5-8 Kazusa Kamashi, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) of the National Institute for Product Evaluation and Technology (NITE).
  • NBRC Bio Genetic Resource Department
  • the microorganism used in the present invention is a bacterium belonging to the genus Gluconobacter, which does not produce acetaldehyde in the presence of ethanol and can efficiently decompose acetaldehyde, or acetaldehyde from ethanol even in a liquor / saliva mixed system.
  • Any microorganism may be used as long as it is a microorganism that decomposes acetaldehyde without producing it and does not produce harmful substances such as hydrogen peroxide during the decomposition reaction.
  • ethanol does not produce acetaldehyde in the presence of ethanol
  • ethanol is not oxidized at all, or even if it has weak ethanol oxidation activity (ie, acetaldehyde production activity), it has acetaldehyde oxidation activity (ie, acetaldehyde). It is extremely weak compared to (degradation activity).
  • the ethanol oxidation activity is about 1/10, preferably about 1/50 of the acetaldehyde oxidation activity.
  • mutant strains can be used without mutation treatment with ethyl methanesulfonic acid, a commonly used mutation agent, treatment with other chemical substances such as nitrosoguanidine and methylmethanesulfonic acid, ultraviolet irradiation, or treatment with a mutation agent. It can be obtained by the natural mutation obtained.
  • microorganisms with high acetaldehyde-degrading ability from a large number of microbial species and recognized strong activity against many acetic acid bacteria, gluconic acid bacteria and Pseudomonas bacteria.
  • these microorganisms exhibit the ability to produce acetaldehyde in the presence of ethanol, and that ingredients in foods such as beer and ingredients in saliva further increase such acetaldehyde producing activity.
  • the microorganism used in the composition according to the present invention can be identified as follows, for example.
  • a microorganism that specifically degrades acetaldehyde without producing acetaldehyde from ethanol is searched.
  • a strain satisfying these requirements can be obtained by screening as follows as an example. 1) Applying fruit epidermis washing liquid, fermented food, human intestinal contents, etc. to an appropriate selective medium, 2) isolate the grown colonies, and 3) efficiently decompose acetaldehyde without producing acetaldehyde in the presence of ethanol. Select possible microbial strains.
  • a microorganism capable of decomposing acetaldehyde without producing acetaldehyde from ethanol even in a liquor / saliva mixed system is obtained.
  • the presence or absence of hydrogen peroxide during the acetaldehyde decomposition reaction is confirmed by a colorimetric method using peroxidase.
  • aldehyde-degrading microorganisms such as nonenal and hexanal, which are odor-causing substances, can also be used.
  • the microorganism can be identified according to the screening for microorganisms having the acetaldehyde-degrading activity.
  • the medium used for the growth of the microorganism used in the present invention may contain, for example, a carbon source (for example, glucose etc.) and a nitrogen source that can be assimilated by the microorganism.
  • a carbon source for example, glucose etc.
  • a nitrogen source that can be assimilated by the microorganism.
  • the nitrogen source include organic nitrogen sources (peptone, meat extract, yeast extract, corn, steeper, liquor, etc.), inorganic nitrogen sources (ammonium sulfate, ammonium chloride, etc.) and the like.
  • the medium may contain salts composed of a cation such as sodium ion, potassium ion, calcium ion and magnesium ion and an anion such as sulfate ion, chlorine ion and phosphate ion.
  • the culture medium can also contain trace elements such as vitamins and acids.
  • concentration of the carbon source in the medium is, for example, about 0.1% to 10%.
  • concentration of the nitrogen source in the medium varies depending on the type, but is, for example, about 0.01% to 5%.
  • concentration of inorganic salts in the medium is, for example, about 0.001% to 1%.
  • acetaldehyde is added to the medium for the purpose of removing contamination with microorganisms that cannot decompose acetaldehyde.
  • concentration of acetaldehyde to be added can be appropriately determined, but is preferably 0.1%.
  • the growth conditions of the microorganism used in the present invention are, for example, 1 to 3 days (preferably 2) at a temperature of 20 ° C. to 30 ° C. (preferably 25 to 28 ° C.) and a pH of 5.0 to 7.0 (preferably pH of 6.0 to 6.5). Day).
  • the microbial cells may be used for the composition according to the present invention in a state suspended in the culture solution after culturing, or collected or concentrated from the culture solution by a usual method such as centrifugation. It may be used.
  • the recovered or concentrated cells can be immobilized on a suitable carrier and used as immobilized cells. Or you may use the collect
  • the composition according to the present invention can be made into a dosage form such as a powder, a tablet, or a capsule by mixing the bacterial cell powder and various excipients, for example.
  • an extract such as a cell extract or an enzyme extract fraction or a disrupted cell body (for example, one containing a cell membrane) is prepared from a microorganism by a conventional method such as ultrasonic disruption or surfactant treatment, and the present invention. It can also be used for the composition which concerns on.
  • extracts and disrupted bacterial cells may be used as they are, or may be immobilized on an appropriate carrier and used as an immobilized enzyme.
  • the composition according to the present invention may be taken so as to take, for example, 5 to 80 mg, preferably 10 to 60 mg, of dry microbial cells of the contained microorganism. it can.
  • the food or drink according to the present invention contains the composition according to the present invention.
  • the microorganism according to the present invention by adding the microorganism according to the present invention to a food or drink, it can be a food or drink that reduces the carcinogenic risk of upper gastrointestinal tract cancer or a food and drink that prevents the ripening odor in the oral cavity.
  • the food and drink according to the present invention are, for example, live cells, dead cells, immobilized cells, cell extracts, disrupted cells, acetaldehyde-degrading enzyme preparations purified from microorganisms, etc. Containing.
  • acetaldehyde present or generated in the body can be removed by ingesting the composition according to the present invention.
  • a sweetener, a sour agent, a fragrance, an antioxidant, and the like may be appropriately added to the food and drink according to the present invention.
  • Specific product forms include lozenges, gums, candies, tablets, powders, drinks, yogurts and the like.
  • the method of adding additives and the method of processing into foods or beverages can be selected and implemented as appropriate in consideration of the properties of the product.
  • the enzyme solution (dialysis internal solution) 50 ⁇ L and beverages (green tea, oolong tea, beer, whiskey) 550 ⁇ L were mixed and incubated at 37 ° C. for 10 minutes.
  • an aqueous solution (3 ppm AcH / 5% EtOH) containing acetaldehyde (3 ppm) and ethanol (5%) at concentrations originally contained in beer was also tested.
  • the reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution.
  • the acetaldehyde concentration in the reaction solution was measured by a headspace gas chromatograph method.
  • Acetaldehyde concentration measurement by headspace gas chromatographic method SHIMADZU GC-2010 model using Perkin Elmer TurboMatrix 40 type headspace autosampler and equipped with INNOWAX 19091N-233 capillary column (length 30m, inner diameter 0.25mm, film 0.25 ⁇ m) This was done by using a gas chromatograph.
  • acetaldehyde (AcH) measurement result is shown in FIG.
  • FIG. 1 particularly significant acetaldehyde production was observed in beer.
  • JCM7642 strain is known as a microorganism with acetaldehyde-degrading ability, but the result is that when this bacterium is taken after drinking beer, the concentration of acetaldehyde in the oral cavity is rather increased due to the strong ethanol oxidation activity that coexists in the microorganism cells. It indicates that there is a risk of doing.
  • the cells of one platinum loop were suspended in 50 ⁇ L of physiological saline. This bacterial cell suspension (50 ⁇ L) was added to 50 mM phosphate buffer (550 ⁇ L) containing 5% ethanol (final concentration), and incubated at 37 ° C. for 10 minutes. The reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution. Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • acetaldehyde (AcH) measurement results are shown in FIG. As shown in FIG. 2, all the microorganisms produced acetaldehyde of 2 ppm or more.
  • Gluconobacter genus bacteria are generally known as microorganisms with acetaldehyde-degrading ability, but the result is that, when these microorganisms are taken after ingestion of alcoholic beverages, the strong ethanol oxidation activity that coexists in these microorganism cells causes the oral cavity This indicates that there is a risk that the concentration of acetaldehyde will rather increase.
  • the cells of one platinum loop were suspended in 50 ⁇ L of physiological saline. This cell suspension (50 ⁇ L) was added to 50 mM phosphate buffer (550 ⁇ L) containing 5% ethanol (final concentration), and incubated at 37 ° C. for 10 minutes. The reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution. Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • the cells of the microorganism produced 17.8 ppm of acetaldehyde.
  • the results show that if you take this microorganism after ingesting an alcoholic beverage, there is a risk that the concentration of acetaldehyde in the oral cavity will rather increase due to the strong ethanol oxidation activity that coexists in these microbial cells. .
  • Example 1 Reaction of microbial cells of Gluconobacter microorganisms and beer G. frateurii JCM20278, G. kondonii NBRC3266 and G. kanchanaburiensis NBRC103587 were cultured in the same manner as described in Comparative Example 1. . Next, these three microorganisms and the five Gluconobacter microorganisms described in Comparative Example 2 were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water so that the optical turbidity at 600 nm was about 0.9.
  • Example 2 Removal of acetaldehyde in saliva using freeze-dried cells of Gluconobacter kondonii G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the resulting cells were subjected to freeze-drying. About 30 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water.
  • 50 ⁇ L of the cell suspension was added to a beer / saliva mixed solution (volume ratio: 1: 1, 550 ⁇ L) containing acetaldehyde (initial concentrations of 2.5 ppm and 9.5 ppm) and incubated at 37 ° C. for 10 minutes.
  • 50 ⁇ L of the same cell suspension was added to 550 ⁇ L of 0.1% ethanol and incubated at 37 ° C. for 10 minutes.
  • the reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution.
  • the acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • acetaldehyde (AcH) measurement results are shown in FIG. As shown in FIG. 3, acetaldehyde was not produced even in 0.1% ethanol or beer / saliva mixed system, and acetaldehyde in the beer / saliva mixed system was efficiently decomposed by freeze-dried cells.
  • the reaction solution (0.6 mL each) obtained in the same manner as above was added to 0.05 mL of 20 mM 2,4-dichlorophenol and 20 mM 4-amino Antipyrine 0.05 mL, water 0.2 mL, and 10 mg / mL horseradish peroxidase 0.1 mL were added, and the mixture was incubated at room temperature for 20 minutes until the absorbance at 505 nm showed a constant value.
  • the concentration of hydrogen peroxide contained in the reaction solution was estimated from the increase in absorbance at 505 nm. As a result, the hydrogen peroxide concentration in all the reaction solutions was below the detection limit of 0.5 ⁇ M (0.02 ppm) of this method.
  • Example 3 Time course and specific activity of acetaldehyde removal G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the obtained cells were subjected to lyophilization. 10 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water.
  • a 1 1 mixture of beer and 50 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) was prepared, and acetaldehyde was added to 7.8 ppm. 50 ⁇ L of cell suspensions having different cell concentrations were added to 550 ⁇ L of this mixed solution (5 in total) and incubated at 37 ° C. After reacting for 0, 1, 3, 5 and 10 minutes, the reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution. Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • Example 4 Effect of the amount of cells on the removal of acetaldehyde G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the resulting cells were subjected to lyophilization. 10 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water. This was further diluted with MillQ water to prepare suspensions with different cell concentrations.
  • a 25 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) containing 2.5% ethanol was prepared to dissolve acetaldehyde.
  • 50 ⁇ L of the cell suspension adjusted to each cell concentration was added to 550 ⁇ L of this mixed solution, and reacted at 37 ° C. for 1 minute or 5 minutes.
  • the initial acetaldehyde concentrations in the 1 minute and 5 minute reactions were 10.1 ppm and 11.1 ppm, respectively.
  • the reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution.
  • Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • acetaldehyde (AcH) measurement results are shown in FIG. In FIG. 4, open circles indicate a reaction for 1 minute, and black circles indicate a reaction for 5 minutes.
  • acetaldehyde can be removed by using 0.5 mg of cells in a 5-minute reaction and 1.0 mg of cells in a 1-minute reaction. From this example, the acetaldehyde removal rate of the cells was estimated to be about 3.9 ⁇ g ⁇ min ⁇ 1 ⁇ (mg dry cells) ⁇ 1 .
  • Example 5 Removal of intermittently added acetaldehyde G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the obtained cells were subjected to lyophilization. 30 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MillQ water.
  • a 25 mM potassium phosphate buffer solution (pH 7.0) containing 1.5% ethanol was prepared, and acetaldehyde was dissolved to about 10 ppm and kept at 37 ° C.
  • a cell suspension (200 ⁇ L) was added to this reaction system (1.80 mL), and when incubated at 37 ° C. for 3 minutes, 200 ⁇ L was sampled from the reaction system, mixed with 20 ⁇ L of 6M perchloric acid, The reaction was stopped.
  • the acetaldehyde contained in each stopped reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • a control experiment was carried out using the same procedure except that the addition of aqueous acetaldehyde (200 ⁇ L) after sampling of the reaction solution was replaced with the addition of water (200 ⁇ L).
  • Example 6 Effect of Ethanol Concentration on Acetaldehyde Removal G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the resulting cells were subjected to lyophilization. 10 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water.
  • a 25 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) containing ethanol at each concentration was prepared, and 6 to 8 ppm (final concentration) acetaldehyde was dissolved.
  • a cell suspension (50 ⁇ L) was added to 550 ⁇ L of this mixed solution, and reacted at 37 ° C. for 5 minutes. The reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution. Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • the bacterial cells efficiently decomposed almost all acetaldehyde in the reaction system containing ethanol up to a concentration of 10% (acetaldehyde residual amount: 0.07 ppm to 0.19 ppm).
  • the reaction system containing ethanol at a concentration higher than 20% has reduced AcH decomposition ability, and the residual acetaldehyde in the system containing 20%, 35% and 50% ethanol is 3.4 ppm, 5.5 ppm and 5.2 ppm.
  • Example 7 Effect of pH on removal of acetaldehyde G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the resulting cells were subjected to lyophilization. 10 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water.
  • Buffers with various pH containing 2.5% ethanol were prepared, and 10.5 ⁇ 0.5 ppm (final concentration) acetaldehyde was dissolved.
  • a cell suspension (50 ⁇ L) was added to 550 ⁇ L of this mixed solution, and reacted at 37 ° C. for 5 minutes. The reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution. Acetaldehyde contained in the reaction solution was measured by the method described in Comparative Example 1.
  • FIG. 6 shows the residual concentration of acetaldehyde when acetaldehyde having an initial concentration of 10.5 ⁇ 0.5 ppm is decomposed by Gluconobacter cells.
  • the microbial cells showed the ability to decompose acetaldehyde over a wide range of pH 2-10. Sufficient degradation activity was observed especially in the acidic region, suggesting the possibility that the microbial cells show excellent AcH resolution in the stomach and intestines.
  • the amount of bacterial cells necessary for removing acetaldehyde in the oral cavity after drinking is estimated as follows.
  • the rate of acetaldehyde degradation per mg of freeze-dried cells of G. kondonii NBRC3266 is 4-5 ⁇ g ⁇ min ⁇ 1 ⁇ (mg dry cells) ⁇ 1 .
  • the concentration of acetaldehyde in saliva after drinking is often reported to be in the range of 2-4 ppm (Yokoyama A, Tsutsumi E, Imazeki H, Suwa Y, Nakamura C, Mizukami T, Yokoyama T. Alcohol Clin. Exp. Res. 32, 1607-1614 (2008)).
  • a standard saliva amount (stimulated saliva amount) secreted after chewing gum for 10 minutes has been shown to be 11 ml (Miwa et al., Journal of Japanese Society of Oral Examinations 1, 40-43 (2009)) This shall be regarded as the amount of saliva present in the oral cavity. If 10 ppm acetaldehyde (110 ⁇ g) is present in 11 ml of saliva in the oral cavity after drinking, acetaldehyde can be eliminated within 1 minute if 30 mg of lyophilized cells are present in the oral cavity. It is expected to be.
  • Example 8 Removal of odorous substances G. kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the obtained cells were subjected to lyophilization. 10 mg of freeze-dried cells were suspended in 500 ⁇ L of MilliQ water.
  • the cell suspension (50 ⁇ L) was added to 550 ⁇ L of 25 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) containing 0.5 ppm nonenal or 0.5 ppm hexanal, and reacted at 37 ° C. for 5 minutes.
  • the reaction was stopped by adding 60 ⁇ L of 6M perchloric acid to the reaction solution.
  • Nonenal or hexanal contained in the reaction solution was measured by the same method as described in Comparative Example 1.
  • the bacterial cells efficiently decomposed these aldehydes, and nonenal or hexanal could not be detected in the reaction solution after the reaction was stopped.
  • Example 9 Effect of ingestion of Gluconobacter condonii cells on acetaldehyde removal in the oral cavity after drinking Alcohol (51 years old, weight 70 kg; ALDH2 * 1 / * 1) has breakfast (bread, vegetables, milk) I took it for 11 hours at 6am. Before drinking, chewing gum for saliva collection was sampled and 2 ml of saliva was sampled.
  • Whiskey (Yamazaki 10 years, alcohol content 40 degrees) was diluted with mineral water to prepare water split (alcohol content 13 degrees; acetaldehyde concentration 18.2 ppm). By taking 90 ml of this water split over 8 minutes and repeating this 4 times, a total of 360 ml of water split was taken over 32 minutes (total alcohol consumption: 47 kg; 0.67 g / kg body weight). During this time, I did not take a side meal.
  • the gluconobacter condonii cells (freeze-dried product 30 mg) were immediately taken after the first saliva collection and uniformly dispersed in the oral cavity.
  • chewing gum for collecting saliva was chewed 5 minutes after taking, and 2 ml of saliva was collected together with the cells.
  • chewing gum for saliva collection was chewed and 2 ml of saliva was collected.
  • saliva was collected 15 minutes after the completion of drinking.
  • the specific activity of the Gluconobacter chondoni cells taken was 4 U / mg.
  • FIG. 7 The transition of oral acetaldehyde concentration after drinking is shown in FIG. In FIG. 7, the horizontal axis indicates the time (min) after drinking. Immediately after drinking, a pulsed acetaldehyde concentration increase of about 2.5 ppm was observed. When Gluconobacter condonii cells were not taken (“control” graph in FIG. 7), the acetaldehyde in the oral cavity remained at a concentration of 1.8 ppm over about 1 hour, 1.1 ppm after 90 minutes, 0.9 ppm after 120 minutes, After 180 minutes, it became 0.6 ppm.
  • the acetaldehyde in the oral cavity immediately decreased to 0.5 ppm immediately after taking, and increased again after spitting out or swallowing the cells. After 30 minutes of completion, it became 1.4 ppm, after 1 hour, 1.1 ppm, and after 90 minutes, 0.8 ppm.
  • the concentration of oral acetaldehyde was not significantly different from 120 minutes after drinking and 180 minutes after drinking without Gluconobacter condonii cells, but up to 90 minutes after drinking depending on the consumption of Gluconobacter condonii cells Oral acetaldehyde concentration was significantly lower than non-dose.
  • the formulation of the gluconobacter condonii cells in the oral cavity can be maintained more effectively at a low level if the device formulation is used to establish gluconobacter chondoni cells in the oral cavity for a longer period of time.
  • Example 10 Effect of adding Gluconobacter condonii cells to foods G.
  • kondonii NBRC3266 was cultured by the method described in Example 1, and the resulting cells were subjected to lyophilization.
  • generation by the combination of the obtained microbial cell and the foodstuff shown in following Table 1 was investigated.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Birds (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Cosmetics (AREA)

Abstract

　本発明は、アルデヒドを除去するための組成物を提供することを目的とし、具体的には、アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するアルデヒド除去組成物であって、前記グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高いことを特徴とする、前記アルデヒド除去組成物に関する。

Description

アルデヒド除去組成物
　本発明は、例えばアルデヒドを除去するための組成物に関する。
　疫学調査によれば、飲酒習慣によって口腔癌、咽頭癌、喉頭癌、食道癌、肝癌、直腸・結腸癌、乳癌（女性）の罹患リスクが明らかに増大し、この傾向は酒類を問わないことが示されている(非特許文献１)。またWHOの国際癌研究機関IARC（the International Agency for Research on Cancer）の作業委員会では、様々な動物実験の結果に基づいて、アルコール（エタノール）には動物に対して発癌性があるとするに十分な証拠があると結論している。
　飲酒後、アルコールは一般に肝臓でアルコールデヒドロゲナーゼによってアセトアルデヒドに分解され、さらにアルデヒド脱水素酵素(アルデヒドデヒドロゲナーゼ)により酸化されて酢酸になり、最終的には二酸化炭素と水に分解される。このエタノールの異化の過程で中間体として生成するアセトアルデヒドは、顔面紅潮、頭痛、眠気、悪心・嘔吐など、いわゆる「悪酔い」症状の原因物質であるばかりでなく、IARCにおいてGroup Iの発癌性物質（ヒトに対して発癌性がある）と認定されており、アルコールの発癌性も、アルコールから代謝により導かれたアセトアルデヒドが主たる役割を果たすと考えられている。
　また、アセトアルデヒドは、ビールや日本酒等の醸造酒、ビール風アルコール飲料、焼酎等の蒸留酒において青臭さや異臭、変質臭の原因であり、香味阻害物質(オフフレーバー)と呼ばれている。さらに、飲酒により生成する過剰なアセトアルデヒドは、唾液中にも蓄積して酒臭い口臭(「熟柿臭」)の原因ともなる。
　日本国民は、アセトアルデヒドの解毒を司るアルデヒド脱水素酵素のアイソザイムタイプ2（ALDH2）の欠損型の割合が高い（ヘテロ欠損型ALDH2*1/*2：全人口の約40％；ホモ欠損型ALDH2*2/*2：約10％）。この遺伝子型の人々はアセトアルデヒドの代謝速度が遅いため、飲酒により顔が著しく赤くなるフラッシャー（flusher）タイプとなる（非特許文献２）。フラッシャータイプの人は非フラッシャータイプに比べ、飲酒による上部消化器官群（口腔、咽頭及び食道）の発癌リスクが約50倍も高い（非特許文献３）。
　過剰なアセトアルデヒドは、血中に分泌されるとともに呼気によって放出され、唾液中にも蓄積する。また口腔内のアルコールは口腔細菌によってアセトアルデヒドに代謝され、上部消化器官群に蓄積する。アセトアルデヒド代謝の遅いフラッシャータイプのヒトの唾液では、飲酒後アセトアルデヒド濃度が著しく上昇し、数時間～十数時間にわたって上部消化器官内で循環・滞留することが認められている。この飲酒によるアセトアルデヒドの上部消化管内での循環・滞留が、フラッシャーの上部消化管癌発症リスク増大の主原因であることがわかってきた。また、アルコール飲料、特に一部の蒸留酒には元来、微量のアセトアルデヒドが含まれている。アルコールによる癌発症リスクの増大が、アルコール飲料にもともと含まれるアセトアルデヒドによるものなのか、唾液中で新たに生成するアセトアルデヒドによるものなのかについて、一致した見解はない。また、フラッシャータイプの割合が低い（全人口の1％未満）欧米諸国では、飲酒による上部消化器癌の遺伝子多型によるリスク偏在はあまり話題となっていない。しかしながら、フラッシャータイプが多い日本では、この問題を解決することは国民の健康と福祉の向上のためにきわめて重要であり、且つ緊急を要する。
　飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを除去する手段としては、L-システイン(含硫アミノ酸)や大麦青汁等の利用が考えられている(非特許文献４）。当該方法は、L-システインや青汁中のフラボノイドがアセトアルデヒドに付加し、アセトアルデヒドを不活性化するという事実に基づいて考案された方法である。しかしながら、L-システインや青汁中のフラボノイドとアセトアルデヒドの複合体形成反応は可逆反応であり、当該方法はアセトアルデヒドが再生する虞があるという欠点を有する。L-システインや青汁自体はまた、特異な味とにおいを有する物質であり、服用による利用は事実上難しい。
　また、口腔内のアセトアルデヒドを除去する別の手段として、アルデヒド分解活性をもつ微生物を服用して、アセトアルデヒドを分解する方法が考えられる。例えば、特許文献１は、pH3以下でアルコールを分解する酢酸菌を含むアルコール分解性組成物を開示する。特許文献１は、pH3以下でもアルコール酸化酵素活性を示す酢酸菌を、アルコール飲用時又はその前に摂取することで、当該酢酸菌により胃の中でアルコールがアセトアルデヒドを経て酢酸に酸化され、アルコールが消化管で吸収されないことを記載する。しかしながら、実際にはこうした微生物はほとんどの場合エタノールを酸化する活性も併せ持つので、当該方法は服用によって口腔内に残存するアルコールから、服用前よりもむしろ多量のアセトアルデヒドを生成してしまうという欠点を有する。さらに注意すべきことは、ビール等の食品中の成分や唾液中の成分はアセトアルデヒド生成活性を顕著に増大させるといった点である。従って、アルデヒド分解活性をもつ微生物の服用によってむしろアセトアルデヒドが増大してしまうという逆効果がもたらされる。こうした問題は、微生物からアセトアルデヒド生成活性を純化したり、適当な処理を施すことによりアセトアルデヒド生成活性を選択的に失活させたりすることにより解決することができる。しかしながら、それでもなお、アルデヒド分解活性をもつ微生物の使用は、アセトアルデヒド分解酵素反応に有害物質が生成したり、補酵素の添加を必要としたりする等、実用上の欠点が存在する。
　微生物の主なアセトアルデヒド分解酵素として、アルデヒドオキシダーゼとアルデヒドデヒドロゲナーゼが利用できる。アルデヒドオキシダーゼは酸素分子を用いてアルデヒドを酸化し、カルボン酸と過酸化水素を生成する反応を触媒する。反応生成物の一つである過酸化水素は発癌性のある有害物質であり、その生成は好ましいものではない。一方、アルデヒドデヒドロゲナーゼはNAD+やNADP+等を補酵素としてアルデヒドの酸化を触媒する。こうした補酵素はきわめて高価である。実用上は、基質に比べて大過剰な量の補酵素を添加するか、あるいは酸化型補酵素の再生系を組み込む必要があるが、コスト的な点から現実的なものではない。
特開平9-51778号公報
Seitz, H.K., Becker, P., 「Alcohol Research & Health」，2007年，第30巻，pp. 38-47 Takeshita, T., Morimoto, K., 「Environmental Health and Preventive Medicine」，1996年，第1巻，pp. 1-8 横山　顕, 「医学のあゆみ」，2007年，第222巻，pp. 643-647 Salaspuro, V., et al., 「Int. J. Cancer」, 2002年, 第97巻, pp. 361-364
　上述した実情に鑑み、本発明は、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを口腔内から安全な手段で除去する方法を提供することを目的とする。また、本発明は、フラッシャーにおける上部消化管癌の発癌リスク因子であり、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを分解して、その口腔内濃度を発癌濃度（2.2 ppm）以下にまで速やかに低減させる方法を提供することを目的とする。その方法の一つとして、食品微生物や腸内細菌のようにヒトの体内に天然に存在している菌又は環境中に存在するヒトに無害な微生物を用いて、アセトアルデヒドを分解除去する方法が考えられる。ただし、当該方法が満たすべき課題は、i)飲酒・飲食後の口腔内に残存するアルコールからアセトアルデヒドの生成をもたらさないこと、又はアセトアルデヒドを防止することを目的とした特段の処理(精製や熱処理等)を必要としないこと、ii)アセトアルデヒドの分解除去を促すための酸化型補酵素(NAD等)の添加を必要としないこと、及びiii)アセトアルデヒドを分解する過程で有害物質を生成しないこと、又はアセトアルデヒド分解の過程で生成する有害物質の分解を目的とした添加物を加える必要がないことである。特に飲酒後の口腔内ではアルコールの濃度がアセトアルデヒドの濃度の数百倍から数千倍に及び、そのような条件下でアセトアルデヒドを効率よく分解する必要がある。一般にアセトアルデヒド分解能をもつ微生物は強力なエタノール酸化活性をもつため、大過剰のエタノール存在下ではアセトアルデヒドを生成してしまう。このため、飲酒後の口腔内に蓄積するアセトアルデヒドを口腔内から除去しうる微生物製剤は知られていない。
　上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、発癌リスク因子であり、また熟柿臭等の臭いの原因であるアセトアルデヒド等のアルデヒドを大過剰のアルコール存在下で分解できる微生物を探索し、グルコノバクター(Gluconobacter)属に属する微生物の中に本発明の目的に合致した微生物を見出し、本発明を完成するに至った。
　本発明は以下を包含する。
　（１）アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するアルデヒド除去組成物であって、前記グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高いことを特徴とする、前記アルデヒド除去組成物。
　（２）前記グルコノバクター属に属する微生物がアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できることを特徴とする、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（３）前記グルコノバクター属に属する微生物がグルコノバクター・コンドニイ(Gluconobacter kondonii)又はグルコノバクター・カンチャナブリエンシス(Gluconobacter kanchanaburiensis)に属する微生物である、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（４）前記グルコノバクター・コンドニイ又はグルコノバクター・カンチャナブリエンシスに属する微生物がNBRC3266又はNBRC103587で特定される微生物である、（３）記載のアルデヒド除去組成物。
　（５）前記アルデヒドがアセトアルデヒドである、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（６）前記アルコールがエタノールである、（２）記載のアルデヒド除去組成物。
　（７）上部消化管癌罹患リスク低減組成物である、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（８）上部消化管癌が口腔癌、咽頭癌及び食道癌から成る群より選択される、（７）記載のアルデヒド除去組成物。
　（９）臭い除去組成物である、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（１０）臭いが熟柿臭である、（９）記載のアルデヒド除去組成物。
　（１１）飲酒後の口腔内アセトアルデヒド除去に使用するための、（１）記載のアルデヒド除去組成物。
　（１２）（１）～（１１）のいずれか１記載のアルデヒド除去組成物を含有する飲食品。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2010-114008号の明細書及び/又は図面に記載される内容を包含する。
　本発明によれば、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒド及び臭いの原因であるアルデヒドを分解除去し、上部消化管の発癌リスク因子及び臭いの原因を根本的に除去することができる組成物が提供される。
Gluconobacter oxydans JCM7642株の細胞抽出液を様々な飲料に懸濁し、37℃で10分間インキュベートした場合における飲料中のアセトアルデヒドの生成を示すグラフである。 Gluconobacter属菌体とエタノールの反応におけるアセトアルデヒドの生成を示すグラフである。 ビール・唾液混合系でのGluconobacter属菌体によるアセトアルデヒド分解を示すグラフである。 アセトアルデヒドの除去における菌体量の影響を示すグラフである。 間欠的に添加されたアセトアルデヒドのGluconobacter属菌体による除去を示すグラフである。 Gluconobacter属菌体によるアセトアルデヒドの除去のpH依存性を示すグラフである。 飲酒後の口腔内のアセトアルデヒド除去におけるグルコノバクター・コンドニイ細胞摂取の効果を示すグラフである。
　以下、本発明を詳細に説明する。
　本発明に係るアルデヒド除去組成物(以下、「本発明に係る組成物」という)は、アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するものである。該グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高く、またアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できるものである。本発明に係る組成物は、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒド及び臭いの原因であるアルデヒドの分解除去のために使用でき、上部消化管癌罹患リスク低減組成物又は臭い除去組成物として使用することができる。
　ここで、上部消化管癌としては、例えば口腔癌、咽頭癌及び食道癌が挙げられる。WHOのIARCによる発癌物質の分類表によれば、飲酒に伴うアセトアルデヒドは2010年にGroup 1に分類され、ヒトに対して確実に発癌性があると認められている。飲酒に伴うアセトアルデヒドの発癌濃度は2 ppm（50 microM）と見積もられている。従って、本発明に係るアルデヒド除去組成物により口腔内のアセトアルデヒドを即座に2 ppm以下に下げることができれば、本発明に係る組成物は発癌リスクを低減できると見なすことができる。本発明に係る組成物によれば、服用により飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを分解除去し、飲酒習慣に伴う上部消化管の発癌リスクを高めるアセトアルデヒドを根本的に除去することができる。
　一方、臭いとしては、例えばアセトアルデヒドを原因とする熟柿臭、ノネナールを原因とする加齢臭等の体臭、ヘキサナールを原因とする青臭さが挙げられる。例えば、本発明に係る組成物によれば、服用により飲酒後の口腔内の熟柿臭物質であるアセトアルデヒドを分解除去し、臭いの原因を根本的に除去することができる。また、本発明に係る組成物を体臭除去に使用することもできる。さらに、本発明に係る組成物を豆乳等の飲食品における青臭さ除去に使用することもできる。
　また、本発明においてアルデヒド化合物としては、例えばアセトアルデヒド、ノネナール、ヘキサナール等が挙げられる。
　本発明に使用する微生物は、アルデヒド(例えば、アセトアルデヒド)生成活性よりもアルデヒド分解活性が高く、またアルデヒド(例えば、アセトアルデヒド)濃度と比較してアルコール(例えば、エタノール)濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できるものである。換言すれば、本発明に使用する微生物は、アセトアルデヒド等のアルデヒドに対して大過剰(例えば、モル比にして数百倍～数千倍)のエタノール等のアルコールが存在する条件下でもアルデヒドを効率的に分解できるものである。例えばエタノール存在下でもアセトアルデヒドを生成せず、また飲酒後の口腔内の状態を模倣した酒類(例えば、ビール)・唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解することができ、且つ分解反応中に過酸化水素等の有害物質を生成することがないグルコノバクター属に属する微生物である。このようなグルコノバクター属に属する微生物としては、例えばGluconobacter kondonii、Gluconobacter kanchanaburiensis等の種に属する微生物が挙げられる。また、本発明に使用できる代表的な菌株としては、Gluconobacter kondonii NBRC3266及びGluconobacter kanchanaburiensis NBRC103587が挙げられる。これら菌株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の生物遺伝資源部門(NBRC)(日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8)から入手することができる。
　さらに、本発明に使用する微生物としては、グルコノバクター属細菌であって、エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成せずアセトアルデヒドを効率よく分解しうる微生物、又は酒類・唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解し、且つ分解反応中に過酸化水素等の有害物質を生成することがない微生物であれば、野生株、変異株のいずれであってもよい。
　ここで、「エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成しない」とは、エタノールを全く酸化しないか、又は弱いエタノール酸化活性(すなわち、アセトアルデヒド生成活性)を有していてもそれがアセトアルデヒド酸化活性(すなわち、アセトアルデヒド分解活性)に比べて極めて弱いことをいう。例えば、エタノール酸化活性がアセトアルデヒド酸化活性の1/10程度、好ましくは1/50程度である。
　また、変異株は、例えば従来からよく用いられている変異剤であるエチルメタンスルホン酸による変異処理、ニトロソグアニジン、メチルメタンスルホン酸等の他の化学物質処理、紫外線照射、あるいは変異剤処理なしで得られる自然突然変異によって取得することができる。
　一方、多数の微生物種の中からアセトアルデヒド分解能の高い微生物を探索し、多くの酢酸菌・グルコン酸菌とシュードモナス(Pseudomonas)属細菌に強い活性を認めた。しかしながら、これらの微生物はエタノール存在下ではアセトアルデヒド生成能を示し、また、ビール等の食品中の成分や唾液中の成分がこうしたアセトアルデヒド生成活性をさらに増大させることが判った。
　そこで、さらに本発明に係る組成物に使用する微生物は、例えば、以下のようにして同定することができる。例えば、酒類・唾液混合系において、エタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを特異的に分解する微生物を探索する。これらの要件を満たす菌株は、一例として次のようにスクリーニングすることによって得ることができる。1）果実表皮の洗浄液、発酵食品、ヒトの腸内容物等を適切な選択培地に塗布し、2）生育したコロニーを分離し、3）エタノール存在下でアセトアルデヒドを生成せずアセトアルデヒドを効率よく分解しうる微生物株を選別する。さらに、4）酒類・唾液混合系においてもエタノールからアセトアルデヒドを生成することなくアセトアルデヒドを分解することができる微生物を得る。5）アセトアルデヒド分解反応中の過酸化水素の生成の有無を、ペルオキシダーゼを用いた比色定量法により確認する。
　また、本発明においては、アセトアルデヒドの他に、臭いの原因物質であるノネナール、ヘキサナール等の他のアルデヒド分解活性を有する微生物を使用することもできる。当該微生物は、上記アセトアルデヒド分解活性を有する微生物のスクリーニングに準じて同定することができる。
　本発明に使用する微生物の生育に使用する培地は、例えば当該微生物が資化しうる炭素源(例えば、グルコース等)及び窒素源を含有するものとすることができる。窒素源としては、例えば有機窒素源(ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーン・スチープ・リカー等）、無機窒素源(硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム等)等が挙げられる。さらに所望により、培地はナトリウムイオン、カリウムイオン、カルシウムイオン、マグネシウムイオン等の陽イオンと硫酸イオン、塩素イオン、リン酸イオン等の陰イオンとから成る塩類を含んでもよい。さらに、培地は、ビタミン類、各酸類等の微量要素を含有することもできる。培地における炭素源の濃度は、例えば0.1％～10％程度である。また、培地における窒素源の濃度は、種類により異なるが、例えば0.01％～5％程度である。さらに、培地における無機塩類の濃度は、例えば0.001％～1％程度である。好ましくは、アセトアルデヒドを分解できない微生物の混入を除く目的で、培地中にアセトアルデヒドを添加する。添加するアセトアルデヒドの濃度は適宜決定できるが、0.1％が好ましい。
　本発明に使用する微生物の生育条件としては、例えば温度20℃～30℃(好ましくは25～28℃)及びpH 5.0～7.0(好ましくはpH 6.0～6.5)下で1～3日間(好ましくは2日間)が挙げられる。
　微生物の菌体は、培養後の培養液に懸濁した状態で本発明に係る組成物のために用いてもよいし、あるいは遠心分離等の通常の方法によって培養液から回収又は濃縮したものを用いてもよい。回収又は濃縮した菌体は、適当な担体に固定化し、固定化菌体として用いることもできる。あるいは、回収又は濃縮した菌体は、凍結乾燥等の通常の方法によって粉末状として用いてもよい。本発明に係る組成物は、例えば当該菌体粉末と各種賦形剤とを混合し、散剤、錠剤、カプセル剤等の剤形とすることができる。
　また、微生物から、例えば超音波破砕や界面活性剤処理等の通常の方法によって細胞抽出物又は酵素抽出画分等の抽出物あるいは菌体破砕物(例えば細胞膜を含むもの)を調製し、本発明に係る組成物に使用することもできる。これら抽出物及び菌体破砕物はそのまま用いてもよいし、あるいは適当な担体に固定化して固定化酵素として用いてもよい。
　飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを除去すべく、例えば含有する微生物の乾燥菌体5 mg～80 mg、好ましくは10 mg～60 mgを服用するように、本発明に係る組成物を服用することができる。
　一方、本発明に係る飲食品は、本発明に係る組成物を含有するものである。例えば、本発明に係る微生物を飲食品に添加することで、上部消化管癌の発癌リスクを低減する飲食品又は口腔内における熟柿臭予防飲食品とすることができる。
　本発明に係る飲食品は、例えば、生菌体、死菌体、固定化菌体、細胞抽出液、菌体破砕物、微生物から精製されたアセトアルデヒド分解酵素標品等の本発明に係る組成物を含有する。本発明に係る飲食品によれば、本発明に係る組成物を摂取することによって、体内に存在するか又は発生したアセトアルデヒドを除去することができる。本発明に係る飲食品には、アセトアルデヒド除去効果を有する限りにおいて、甘味料、酸味料、香料、酸化防止剤等を適宜加えても良い。具体的な製品形態としては、例えばトローチ、ガム、キャンデー、錠剤、散剤、ドリンク剤、ヨーグルト等が挙げられる。添加物の添加法や食品又は飲料等への加工法は、製品の性質等を考慮しつつ、適宜選択し、実施することができる。
　以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
〔比較例１〕グルコノバクター・オキシダンス(Gluconobacter oxydans)細胞抽出液による様々な飲料中でのアセトアルデヒド生成
　グルコン酸培地（2％グルコン酸ナトリウム、0.3％グルコース、0.3％酵母エキス、0.2％ペプトン)50mLを用いて、Gluconobacter oxydans JCM7642株を30℃で3日間前培養した。次いで、前培養後の培養液10mLを同組成の培地1Lに加え、30℃で3日間培養した。培養後、菌体は遠心分離(3,000×g)により回収した。
　菌体1g(湿重量)を100mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)に懸濁し、細胞を超音波破砕した(強度2、50サイクル、5分間）。遠心分離により上清を回収した後、同緩衝液に対して4℃で十分に透析した。透析内液のタンパク濃度は22mg/mLであった。
　得られた酵素液(透析内液)50μLと飲料(緑茶、ウーロン茶、ビール、ウィスキー)550μLを混合し、37℃で10分間インキュベートした。コントロールとして、ビールにもともと含まれる濃度のアセトアルデヒド(3ppm)とエタノール（5％）を含有する水溶液(3ppm AcH/5％EtOH)も試験した。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。
　反応液中のアセトアルデヒド濃度はヘッドスペースガスクロマトグラフ法によって測定した。ヘッドスペースガスクロマトグラフ法によるアセトアルデヒド濃度測定は、Perkin Elmer TurboMatrix 40型ヘッドスペースオートサンプラーを使用し、INNOWAX 19091N-233キャピラリーカラム（長さ30m、内径0.25mm、フィルム0.25μm)を装着したSHIMADZU GC-2010型ガスクロマトグラフを使用することにより行った。
　アセトアルデヒド(AcH)測定結果を図１に示す。図１に示すように、ビールにおいて特に著しいアセトアルデヒドの生成が見られた。JCM7642株はアセトアルデヒド分解能を有する微生物として知られているが、当該結果は、ビールの飲酒後に本菌を服用すると、この微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。
〔比較例２〕各種のGluconobacter属微生物の菌体とエタノールの反応
　5種のGluconobacter属微生物(グルコノバクター・アサイ(G. asaii)JCM21279、グルコノバクター・セリナス(G.cerinus)JCM20277、グルコノバクター・エスピー(Gluconobacter sp.)JCM20280、グルコノバクター・タイランディカス(G. thailandicus)JCM12310及びG.oxydans JCM7642)を、アセトバクター寒天培地（10％グルコース、1％酵母エキス、3％炭酸カルシウム、1.5％寒天)上で30℃で3日間培養した。
　培養後、一白金耳分の菌体を生理食塩水50μLに懸濁した。5％エタノール(終濃度)を含む50mMリン酸緩衝液(550μL)にこの菌体懸濁液（50μL)を添加し、37℃で10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　アセトアルデヒド(AcH)測定結果を図２に示す。図２に示すように、いずれの微生物も2ppm以上のアセトアルデヒドを生成した。Gluconobacter属細菌は一般にアセトアルデヒド分解能を有する微生物として知られているが、当該結果は、アルコール飲料の摂取後にこれらの微生物を服用すると、これらの微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。
〔比較例３〕Pseudomonas属微生物の菌体とエタノールの反応
　アセトアルデヒド分解微生物として知られるPseudomonas sp. AL-5株を培地（1.5％寒天）上で30℃で3日間培養した。
　培養後、一白金耳分の菌体を生理食塩水50μLに懸濁した。5％エタノール(終濃度)を含む50mMリン酸緩衝液(550μL)にこの菌体懸濁液（50μL）を添加し、37℃で10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　測定の結果、同微生物の菌体は17.8 ppmのアセトアルデヒドを生成した。当該結果は、アルコール飲料の摂取後にこの微生物を服用すると、これらの微生物細胞内に共存する強いエタノール酸化活性によって、口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。
〔実施例１〕Gluconobacter属微生物の菌体とビールの反応
　グルコノバクター・フラツリイ(G. frateurii)JCM20278、G. kondonii NBRC3266及びG. kanchanaburiensis NBRC103587を比較例１で述べた方法と同様にして培養した。次いで、これら3種の微生物並びに比較例２で述べた5種のGluconobacter属微生物を、それぞれ600nmにおける光学濁度が約0.9となるように500μLのMilliQ水に懸濁した。
　250μLの50mMリン酸緩衝液(pH7.0)と300μlのビールを混合し、50μLの菌体懸濁液を添加して37℃で10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。各反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。その結果、G. asaii、G. cerinus、G. frateurii、Gluconobacter sp.、G. thailandicus及びG. oxydans添加系では、それぞれ22 ppm、8 ppm、32 ppm、9 ppm、43 ppm及び17 ppmのアセトアルデヒドの生成が認められた。このことは、これら6種のグルコノバクターについては、ビール中の未知成分(おそらくビタミンあるいはそれらの誘導体)により、微生物細胞内に共存するエタノール酸化活性が高度に活性化され、飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドの濃度がむしろ上昇してしまう危険性があることを示している。一方、G. kondonii NBRC3266及びG. kanchanaburiensis NBRC103587については、そうした未知成分の存在下でもアセトアルデヒド分解活性がアセトアルデヒド生成活性を大幅に上回っており、ビールにもともと含まれていたアセトアルデヒド（3.5 ppm）を分解した（残存アセトアルデヒド濃度：0.2 ppm）。このことは以下の実施例２においてもさらに再現性よく確認された。
〔実施例２〕Gluconobacter kondoniiの凍結乾燥菌体を用いる唾液中のアセトアルデヒドの除去
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体約30mgをMilliQ水500μLに懸濁した。
　アセトアルデヒド（初濃度2.5ppm 及び9.5ppm)を含有するビール・唾液混合液(容量比：1：1、550μL）に菌体懸濁液50μLを添加して37℃で10分間インキュベートした。また、比較のため、0.1％エタノール550μLにも同菌体懸濁液50μLを添加して37℃で10分間インキュベートした。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。さらに、反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　アセトアルデヒド(AcH)測定結果を図３に示す。図３に示すように、0.1％エタノールやビール・唾液混合系でもアセトアルデヒドの生成はなく、ビール・唾液混合系中のアセトアルデヒドは凍結乾燥菌体によって効率よく分解された。
　一方、反応時間を0、2、5、10分間に設定した以外は、上記と同様にして得られた反応液(各0.6mL)に、20mM 2,4-ジクロロフェノール0.05mL、20mM 4-アミノアンチピリン0.05mL、水0.2mL及び10mg/mL西洋ワサビペルオキシダーゼ0.1mLを添加し、この反応液の505nmにおける吸光度が一定値を示すまで、室温で20分間インキュベートした。505nmにおける吸光度の増加から反応液に含まれる過酸化水素の濃度を見積もった。その結果、全ての反応液中の過酸化水素濃度は本方法の検出限界0.5μM(0.02ppm)以下であった。
〔実施例３〕アセトアルデヒドの除去のタイムコースと比活性
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。
　ビールと50mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)の1：1混合液を調製し、アセトアルデヒドを7.8ppmとなるように添加した。この混合液550μL(計5本)にそれぞれ異なる菌体濃度の菌体懸濁液50μLを添加して37℃でインキュベートした。0、1、3、5及び10分間反応後、反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　アセトアルデヒド測定の結果、反応系中のアセトアルデヒドは、この菌体量では1分間でほぼ完全に分解することがわかった。このことから、当該条件下(37℃)におけるG. kondonii NBRC3266の凍結乾燥菌体1mgあたりのアセトアルデヒド分解速度は3.9μg・min-1・(mg dry cells)-1と見積もられた。
〔実施例４〕アセトアルデヒドの除去における菌体量の影響
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。これをさらにMillQ水で希釈することにより異なる菌体濃度の懸濁液を調製した。
　2.5％エタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)を調製し、アセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに各菌体濃度に調整した菌体懸濁液50μLを添加して、37℃で1分間又は5分間反応させた。1分間及び5分間反応におけるアセトアルデヒド初濃度はそれぞれ10.1ppm及び11.1ppmであった。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　アセトアルデヒド(AcH)測定結果を図４に示す。図４において、白抜きの丸は1分間反応を示し、黒塗りの丸は5分間反応を示す。
　図４から判るように、5分間の反応では0.5 mgの菌体を、また1分間の反応では1.0 mgの菌体を用いることにより90％以上のアセトアルデヒドを除去することができる。また、この実施例から菌体のアセトアルデヒド除去速度はおよそ3.9μg・min-1・(mg dry cells)-1と見積もられた。
〔実施例５〕間欠的に添加されたアセトアルデヒドの除去
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体30mgをMillQ水500μLに懸濁した。
　1.5％エタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)を調製し、アセトアルデヒドを約10ppmとなるように溶解し、37℃に保った。この反応系(1.80mL）に菌体懸濁液（200μL)を添加し、37℃で3分間インキュベートしたところで、反応系から200μLをサンプリングして、これを20μLの6M過塩素酸と混合し、反応を停止した。
　また、残りの反応液(1.80ml）に100ppmアセトアルデヒド水溶液200μLを加え、37℃でさらに3分間インキュベートを続けた。この反応系から200μLをサンプリングして、20μLの6M過塩素酸と混合し、反応を停止した。この操作を3分ごとに全部で3回繰り返した。
　停止した各反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。なお、反応液サンプリング後のアセトアルデヒド水溶液(200μL)の添加を水(200μL）の添加で置き換えた以外は、同一の操作を行ったものをコントロール実験とした。
　各反応時間において反応液に含まれていたアセトアルデヒド(AcH)濃度をプロットした結果を図５に示す。コントロール実験では、アセトアルデヒド添加のたびにその濃度が累積的に増加していくのに対し、菌体添加系ではアセトアルデヒドの濃度は0.1～0.8ppmに保たれた。
〔実施例６〕アセトアルデヒドの除去におけるエタノール濃度の影響
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。
　各濃度のエタノールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液(pH 7.0)を調製し、6～8ppm(終濃度)のアセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに菌体懸濁液(50μL)を添加して、37℃で5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　その結果、同菌体は、10％までの濃度のエタノールを含有する反応系では、ほぼ全量のアセトアルデヒドを効率よく分解した(アセトアルデヒド残存量：0.07ppm～0.19ppm）。しかしながら、20％よりも高濃度のエタノールを含有する反応系ではAcH分解能力が減少し、20％、35％及び50％のエタノールを含有する系におけるアセトアルデヒド残存量は、それぞれ3.4ppm、5.5ppm及び5.2ppmであった。
〔実施例７〕アセトアルデヒドの除去におけるpHの影響
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。
　2.5％エタノールを含有する各種のpHの緩衝液を調製し、10.5±0.5ppm(終濃度)のアセトアルデヒドを溶解した。この混合液550μLに菌体懸濁液(50μL)を添加して、37℃で5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるアセトアルデヒドを比較例１で述べた方法によって測定した。
　アセトアルデヒド(AcH)測定結果を図６に示す。図６は、初濃度10.5±0.5ppmのアセトアルデヒドをGluconobacter属菌体で分解したときのアセトアルデヒドの残存濃度を示す。図６に示すように、同菌体はpH2～10の幅広い範囲にわたってアセトアルデヒド分解能力を示した。特に酸性領域で十分な分解活性が認められ、胃や腸内でも同菌体は優れたAcH分解能を示す可能性が示唆された。
　以上の実施例の結果から、飲酒後の口腔内のアセトアルデヒドを除去するために必要な菌体量が次のように見積もられる。
　G. kondonii NBRC3266の凍結乾燥菌体1 mgあたりのアセトアルデヒド分解速度は4～5μg・min-1・(mg dry cells)-1である。飲酒後の唾液中のアセトアルデヒドの濃度は、多くの場合2～4 ppmの範囲にあると報告されている(Yokoyama A, Tsutsumi E, Imazeki H, Suwa Y, Nakamura C, Mizukami T, Yokoyama T. Alcohol Clin. Exp. Res. 32, 1607-1614 (2008))。また、例えば10分間のガムをかんだ後に分泌される標準的な唾液量(刺激唾液量)として11mlという値が示されており(三輪ら，日本口腔検査学会誌1，40-43 (2009))、これを口腔内に存在する唾液量と見なすものとする。仮に、飲酒後の口腔内の11mlの唾液中に10ppmのアセトアルデヒド(110μg)が存在するとき、30mgの凍結乾燥菌体を口腔内に存在させれば、1分以内にアセトアルデヒドを消去することができると予想される。さらに、実施例５の結果から、10 ppmのアセトアルデヒドを含有する唾液が唾液腺から1分間あたり1mlの割合で分泌されるとしても、その間60mgの凍結乾燥菌体が口腔内に存在していれば、口腔内アセトアルデヒド濃度は0.2ppm程度以下に保たれることが予想される。
〔実施例８〕臭い物質の除去
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。凍結乾燥菌体10mgをMilliQ水500μLに懸濁した。
　0.5ppmノネナール又は0.5ppmヘキサナールを含有する25mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)550μLに菌体懸濁液(50μL)を添加して、37℃で5分間反応させた。反応液に60μLの6M過塩素酸を加えることにより反応を停止した。反応液に含まれるノネナール又はヘキサナールを比較例１で述べた方法と同じ方法によって測定した。
　その結果、菌体はこれらのアルデヒドを効率よく分解し、反応停止後の反応液にノネナール又はヘキサナールを検出することはできなかった。
〔実施例９〕飲酒後の口腔内のアセトアルデヒド除去におけるグルコノバクター・コンドニイ細胞摂取の効果
　被験者（51歳、体重70 kg；ALDH2*1/*1）は、朝食（食パン、野菜、牛乳）を朝6時にとり、11時間絶食した。飲酒前に唾液採取用のチューインガムを噛み、唾液2 mlをサンプリングした。
　ウイスキー（山崎10年、アルコール度数40度）をミネラルウオーターで希釈し、水割り（アルコール度数13度；アセトアルデヒド濃度18.2 ppm）を調製した。この水割り90 mlを8分間かけて摂取し、これを4回繰り返すことにより、32分間で合計360 mlの水割りを摂取した（アルコール摂取総量：47 g；0.67g/体重kg）。この間、副食（おつまみ）はとらなかった。
　全量飲酒後、直ちに唾液採取用のチューインガムを噛み、2 mlの唾液を採取した。採取した唾液は直ちに氷冷し、その500μlを50μlの6 M過塩素酸と混合した。グルコノバクター・コンドニイ細胞非服用区（2回：control）では、飲酒完了5分、30分、60分、90分、120分、180分後にそれぞれ2 mlの唾液を採取した。
　一方、グルコノバクター・コンドニイ細胞(G. kondonii NBRC3266)服用区では、最初の唾液採取後直ちにグルコノバクター・コンドニイ細胞（凍結乾燥品30 mg）を服用し、口腔内に均一に分散させた。第1回目の実験では、服用5分間後に唾液採取用のチューインガムを噛み、2 mlの唾液を菌体とともに採取した。第2回目の実験では、服用5分間後に菌体を飲み込んでから、唾液採取用のチューインガムを噛み、2 mlの唾液を採取した。飲酒完了30分、60分、90分、120分、180分後に、それぞれ2 mlの唾液を採取した。第2回目の実験では、飲酒完了15分後にも唾液を採取した。
　採取した唾液中のアセトアルデヒド濃度をヘッドスペースガスクロマトグラフィーで測定した（n=2）。なお、実験は全て同一の被験者により実施され、次の実験まで2日以上の間隔が設けられた。また服用したグルコノバクター・コンドニイ細胞の比活性は4 U/mgであった。
　飲酒後の口腔内アセトアルデヒド濃度の推移を図７に示す。図７において、横軸は飲酒後の時間(min)を示す。飲酒直後に2.5 ppm程度のパルス的なアセトアルデヒドの濃度上昇が見られた。グルコノバクター・コンドニイ細胞非服用(図７において「control」のグラフ)では、その後およそ1時間にわたって口腔内のアセトアルデヒドは1.8 ppmの濃度で推移し、90分後に1.1 ppm、120分後に0.9 ppm、180分後に0.6 ppmとなった。
　一方、グルコノバクター・コンドニイ細胞服用区(図７において「30mg服用」のグラフ)では、服用後直ちに口腔内のアセトアルデヒドは0.5 ppmにまで減少し、菌体の吐き出し又は飲み込み後に再び上昇し、飲酒完了30分後に1.4 ppm、1時間後に1.1 ppm、90分後に0.8 ppmとなった。口腔内アセトアルデヒドの濃度は、飲酒120分後及び180分後においてグルコノバクター・コンドニイ細胞非服用の場合と有意な差はなかったが、飲酒後90分間まではグルコノバクター・コンドニイ細胞の服用による口腔内アセトアルデヒド濃度は、非服用よりも有意に低かった。
　本実験により、口腔内アセトアルデヒドがいったん除去された後、菌体が除去されればアセトアルデヒド濃度は再び上昇に転じることが初めてわかった。これは、体内平衡濃度のアセトアルデヒド（1～1.5 ppm）を含む唾液が唾液腺から持続的に分泌されるためか、あるいは体内の残存エタノールからアセトアルデヒドが持続的に生成するためであると思われる。しかしながら、飲酒後90分間まではグルコノバクター・コンドニイ細胞の服用時の口腔内アセトアルデヒド濃度は非服用時よりも有意に低いことは注目に値する。これは口腔内の微細構造にグルコノバクター・コンドニイ細胞が捕捉されるなどして残存し、アセトアルデヒドを分解するためではないかと推察される。
　剤型処方により口腔内にグルコノバクター・コンドニイ細胞をより長時間定着させるような工夫を施せば、口腔内アセトアルデヒド濃度をより効果的に低レベルに維持できる可能性が示唆された。
〔実施例１０〕食品へのグルコノバクター・コンドニイ細胞添加による影響
　G. kondonii NBRC3266を実施例１で述べた方法により培養し、得られた菌体を凍結乾燥に供した。得られた菌体と下記の表１に示す食品との組み合わせによるアセトアルデヒド(AcH)生成の可能性を調べた。
　予め37℃でプレインキュベートした食品（400 μl）に菌体懸濁液（20 mg dry wt/mL）50μl（dry wt, 1 mg）を加え、37℃で5分間反応させ、50μlの6M過塩素酸と混合した。
　次いで、AcH含有量の変化をヘッドスペースガスクロマトグラフィーにて測定した。その結果、表１に挙げた食品と菌体との混合で有意なAcH生成は認められなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

Claims (12)

  1. 　アルデヒド分解活性を有するグルコノバクター属に属する微生物又はその抽出物若しくは菌体破砕物を含有するアルデヒド除去組成物であって、前記グルコノバクター属に属する微生物はアルデヒド生成活性よりもアルデヒド分解活性が高いことを特徴とする、前記アルデヒド除去組成物。
  2. 　前記グルコノバクター属に属する微生物がアルデヒド濃度と比較してアルコール濃度が高い条件下でアルデヒドを分解できることを特徴とする、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  3. 　前記グルコノバクター属に属する微生物がグルコノバクター・コンドニイ(Gluconobacter kondonii)又はグルコノバクター・カンチャナブリエンシス(Gluconobacter kanchanaburiensis)に属する微生物である、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  4. 　前記グルコノバクター・コンドニイ又はグルコノバクター・カンチャナブリエンシスに属する微生物がNBRC3266又はNBRC103587で特定される微生物である、請求項３記載のアルデヒド除去組成物。
  5. 　前記アルデヒドがアセトアルデヒドである、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  6. 　前記アルコールがエタノールである、請求項２記載のアルデヒド除去組成物。
  7. 　上部消化管癌罹患リスク低減組成物である、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  8. 　上部消化管癌が口腔癌、咽頭癌及び食道癌から成る群より選択される、請求項７記載のアルデヒド除去組成物。
  9. 　臭い除去組成物である、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  10. 　臭いが熟柿臭である、請求項９記載のアルデヒド除去組成物。
  11. 　飲酒後の口腔内アセトアルデヒド除去に使用するための、請求項１記載のアルデヒド除去組成物。
  12. 　請求項１～１１のいずれか１項記載のアルデヒド除去組成物を含有する飲食品。
PCT/JP2011/061048 2010-05-18 2011-05-13 アルデヒド除去組成物 WO2011145518A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2012515860A JP5637209B2 (ja) 2010-05-18 2011-05-13 アルデヒド除去組成物
KR1020127033072A KR20130043114A (ko) 2010-05-18 2011-05-13 알데하이드 제거 조성물
US13/698,331 US20130058887A1 (en) 2010-05-18 2011-05-13 Aldehyde-removing composition
EP11783452.3A EP2572590A4 (en) 2010-05-18 2011-05-13 ALDEHYDE REMOVAL COMPOSITION

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010114008 2010-05-18
JP2010-114008 2010-05-18

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2011145518A1 true WO2011145518A1 (ja) 2011-11-24

Family

ID=44991624

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2011/061048 WO2011145518A1 (ja) 2010-05-18 2011-05-13 アルデヒド除去組成物

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20130058887A1 (ja)
EP (1) EP2572590A4 (ja)
JP (1) JP5637209B2 (ja)
KR (1) KR20130043114A (ja)
WO (1) WO2011145518A1 (ja)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102526166A (zh) * 2012-01-21 2012-07-04 赵庭义 一种治疗小儿口疮的外用药物及其制备方法
JP2015199701A (ja) * 2014-03-31 2015-11-12 キユーピー株式会社 酢酸菌由来アルデヒド脱水素酵素含有物を配合した化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2015205862A (ja) * 2014-04-09 2015-11-19 キユーピー株式会社 化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2016160203A (ja) * 2015-02-27 2016-09-05 キユーピー株式会社 化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2017075130A (ja) * 2015-10-16 2017-04-20 サッポロホールディングス株式会社 アセトアルデヒド除去剤
JP2019083771A (ja) * 2017-11-08 2019-06-06 アサヒビール株式会社 微生物培養用培地及び酢酸菌の検出方法

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2946575A1 (en) * 2014-04-21 2015-10-29 Devin Grant PETERSON Methods of making modified alcohol containing products

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0951778A (ja) 1995-08-17 1997-02-25 House Foods Corp アルコール分解性組成物
JP2010114008A (ja) 2008-11-07 2010-05-20 Sharp Corp 照明装置、照明システム及び照明制御方法
JP2010110248A (ja) * 2008-11-05 2010-05-20 Tohoku Univ スーパーオキシドディスムターゼを用いるアセトアルデヒド分解方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0822220B2 (ja) * 1987-03-09 1996-03-06 ハウス食品株式会社 酢酸菌を利用した酒類の不快臭の低減方法
KR890004902B1 (ko) * 1986-06-13 1989-11-30 하우스쇼꾸힝고오교 가부시끼가이샤 초산균을 사용한 식료품에서의 불쾌한 풍미의 감소 방법
US5776742A (en) * 1996-02-19 1998-07-07 Roche Vitamins Inc. Aldehyde dehydrogenase enzyme
DK0922759T3 (da) * 1997-12-01 2004-06-01 Dsm Ip Assets Bv Aldehyddehydrogenase

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0951778A (ja) 1995-08-17 1997-02-25 House Foods Corp アルコール分解性組成物
JP2010110248A (ja) * 2008-11-05 2010-05-20 Tohoku Univ スーパーオキシドディスムターゼを用いるアセトアルデヒド分解方法
JP2010114008A (ja) 2008-11-07 2010-05-20 Sharp Corp 照明装置、照明システム及び照明制御方法

Non-Patent Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AKIRA YOKOYAMA, JOURNAL OF CLINICAL AND EXPERIMENTAL MEDICINE (IGAKU NO AYUMI, vol. 222, 2007, pages 643 - 647
JO IIMURA ET AL.: "Koteika Kojikin ni yoru Seishu kara no Tokuishu no Jokyo", J. BREW. SOC. JAPAN., vol. 83, no. 8, 1988, pages 555 - 558, XP008169126 *
MALIMAS T. ET AL.: "Gluconobacter kanchanaburiensis sp. nov., a brown pigment- producing acetic acid bacterium for Thai isolates in the Alphaproteobacteria.", J. GEN. APPL. MICROBIOL., vol. 55, 2009, pages 247 - 254, XP055069368 *
MALIMAS T. ET AL.: "Gluconobacter kondonii sp. nov., an acetic acid bacterium in the a-Proteobacteria.", J. GEN. APPL. MICROBIOL., vol. 53, 2007, pages 301 - 307, XP055069370 *
MIWA ET AL., JOURNAL OF JAPANESE SOCIETY FOR EVIDENCE AND THE DENTAL PROFESSIONAL, vol. 1, 2009, pages 40 - 43
OSBORNE J. P. ET AL.: "Acetaldehyde metabolism by wine lactic acid bacteria.", FEMS MICROBIOLOGY LETTERS, vol. 191, 2000, pages 51 - 55, XP055069371 *
SALASPURO, V. ET AL., INT. J. CANCER, vol. 97, 2002, pages 361 - 364
See also references of EP2572590A4
SEITZ, H. K.; BECKER, P., ALCOHOL RESEARCH & HEALTH, vol. 30, 2007, pages 38 - 47
TAKESHITA, T.; MORIMOTO, K., ENVIRONMENTAL HEALTH AND PREVENTIVE MEDICINE, vol. 1, 1996, pages 1 - 8
YOKOYAMA A; TSUTSUMI E; IMAZEKI H; SUWA Y; NAKAMURA C; MIZUKAMI T; YOKOYAMA T, ALCOHOL CLIN. EXP. RES., vol. 32, 2008, pages 1607 - 1614

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102526166A (zh) * 2012-01-21 2012-07-04 赵庭义 一种治疗小儿口疮的外用药物及其制备方法
JP2015199701A (ja) * 2014-03-31 2015-11-12 キユーピー株式会社 酢酸菌由来アルデヒド脱水素酵素含有物を配合した化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2015205862A (ja) * 2014-04-09 2015-11-19 キユーピー株式会社 化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2016160203A (ja) * 2015-02-27 2016-09-05 キユーピー株式会社 化粧料及び加齢臭抑制剤
JP2017075130A (ja) * 2015-10-16 2017-04-20 サッポロホールディングス株式会社 アセトアルデヒド除去剤
JP2019083771A (ja) * 2017-11-08 2019-06-06 アサヒビール株式会社 微生物培養用培地及び酢酸菌の検出方法

Also Published As

Publication number Publication date
KR20130043114A (ko) 2013-04-29
EP2572590A4 (en) 2015-01-21
EP2572590A1 (en) 2013-03-27
JPWO2011145518A1 (ja) 2013-07-22
JP5637209B2 (ja) 2014-12-10
US20130058887A1 (en) 2013-03-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5637209B2 (ja) アルデヒド除去組成物
CA2793665C (fr) Souche de lactobacillus plantarum utilisee comme agent probiotique dans des produits alimentaires appauvris en acides organiques
AU2013331133A1 (en) Compositions and methods for reduced carbohydrates and increased erythritol in beverages
US20150257427A1 (en) Compositions and methods for vitamin-rich fermentates
US9168274B1 (en) Method to reduce intoxication from ethanol in humans
JP4382295B2 (ja) ウレアーゼ不活性化組成物及び飲食品
JP5351495B2 (ja) スーパーオキシドディスムターゼを用いるアセトアルデヒド分解方法
JP2021164436A (ja) γ−アミノ酪酸とシクロアリインを富化したタマネギ及びその製造方法
WO2010140348A1 (ja) γ－アミノ酪酸の製造方法
JP4563358B2 (ja) γ−アミノ酪酸高生産能を有する新規乳酸菌、ならびにそれを使用したγ−アミノ酪酸および乳酸発酵食品の製造方法
KR100192618B1 (ko) Sod 활성이 높은 균주를 이용하는 알콜내성부여 발효물의 제조방법
JP2002161045A (ja) アルコール代謝向上剤及び肝障害低減剤
Aziz et al. Biotransformation of pineapple juice sugars into dietetic derivatives by using a cell free oxidoreductase from Zymomonas mobilis together with commercial invertase
JPH07285881A (ja) アルコール代謝促進剤
JP5466453B2 (ja) 脂肪族アルデヒド分解微生物
Yamaguchi et al. Catalytic removal of acetaldehyde in saliva by a Gluconobacter strain
JP3029986B2 (ja) アルコール分解性組成物
Talwalkar Studies on the oxygen toxicity of probiotic bacteria with reference to Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium spp.
TW202304487A (zh) 能用於加速代謝酒精之解酒組合物及其用途
JP2000197468A (ja) ビフィズス菌含有飲食物／素材
KR20210026951A (ko) 미감수를 발효시킨 유산균용액의 제조 방법
JP2006006992A (ja) 酢酸菌の細胞質膜の酵素系を利用したホルムアルデヒドの除去方法
JPH01191684A (ja) ウレアーゼの製造法
Rütti Biotechnological production of antimicrobial 3-hydroxypropionaldehyde from glycerol using free and immobilised Lactobacillus reuteri cells and its reactive extraction
Stratford Alternative formats

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 11783452

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2012515860

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 13698331

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2011783452

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20127033072

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A