TW202204377A

TW202204377A - 蛋白殼變體及其用途

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Publication number: TW202204377A
Application number: TW110111670A
Authority: TW
Inventors: 光平高; 徐光兆; 菲利普泰; 魏于全; 羅李
Original assignee: 麻州大學; 四川大學
Priority date: 2020-03-31
Filing date: 2021-03-30
Publication date: 2022-02-01
Also published as: KR20230113689A; US20230138766A1; IL296765A; AU2021248577A1; AR122404A1; CO2022015313A2; CA3177182A1; EP4126911A1; JP2023529054A; CN115698039A; WO2021202494A1; MX2022012279A; BR112022019304A2

Abstract

本發明態樣係關於用於將轉基因(例如編碼一或多種基因產物之轉基因)遞送至靶細胞中之組合物及方法。本發明部分地係基於特徵在於對某些細胞類型(例如神經元、肌細胞、骨細胞、心臟細胞等)具有向性之腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白變體。在一些實施例中，包含該等蛋白殼蛋白變體(例如AAVv66，SEQ ID NO: 1)之重組AAV (rAAV)比具有某些野生型AAV蛋白殼蛋白之rAAV更有效地包裝。本發明亦闡述遞送包含該等AAV蛋白殼蛋白變體之rAAV之方法。

Description

蛋白殼變體及其用途

本發明態樣係關於用於將轉基因(例如編碼一或多種基因產物之轉基因)遞送至靶細胞中之組合物及方法。本發明部分地係基於特徵在於對某些細胞類型(例如神經元、肌細胞、骨細胞、心臟細胞等)具有向性之腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白變體。在一些實施例中，包含該等蛋白殼蛋白變體(例如AAVv66，SEQ ID NO: 1)之重組AAV (rAAV)較具有某些野生型AAV蛋白殼蛋白之rAAV更有效地包裝。本發明亦闡述遞送包含該等AAV蛋白殼蛋白變體之rAAV之方法。

重組AAV腺相關病毒(rAAV)能夠驅動靶組織中之穩定及持續之轉基因表現而無顯著毒性及宿主免疫原性。因此，rAAV係用於長期治療基因表現之有前景遞送媒劑。然而，當前可用rAAV載體之低轉導效率及受限組織向性可限制其作為可行及有效之療法之應用。另外，衍生自非人類組織之主要治療性AAV血清型之準確臨床轉譯令人擔憂。因此，仍需要用於基因遞送之新AAV載體。

本發明態樣係關於用於將轉基因(例如編碼一或多種基因產物之轉基因)遞送至靶細胞中之組合物及方法。本發明部分地係基於特徵在於對某些細胞類型(例如神經元、肌細胞、骨細胞、心臟細胞等)具有向性之腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白變體。在一些實施例中，包含該等蛋白殼蛋白變體之重組AAV (rAAV)較具有某些野生型AAV蛋白殼蛋白之rAAV更有效地包裝。本發明亦闡述遞送包含該等AAV蛋白殼蛋白變體之rAAV之方法。

在一些態樣中，本發明提供將轉基因遞送至受試者中之靶細胞中之方法，該方法包含向受試者經顱內投與包含以下各項之重組腺相關病毒(rAAV)：經分離核酸，其包含編碼一或多種所關注基因產物之轉基因；及腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白，其具有SEQ ID NO: 1中所陳述之序列。

在一些實施例中，顱內投與包含海馬內注射。

在一些實施例中，靶細胞係中樞神經系統(CNS)細胞。在一些實施例中，CNS細胞係神經元、寡突膠質細胞、星形細胞或小神經膠質細胞。

在一些實施例中，受試者係哺乳動物。在一些實施例中，受試者係人類。在一些實施例中，受試者之特徵在於產生抗AAV2抗體。在一些實施例中，投與rAAV不會在受試者中產生針對rAAV之中和免疫反應。

在一些實施例中，經分離核酸包含側接於轉基因之AAV反向末端重複序列(ITR)。在一些實施例中，編碼一或多種基因產物之核酸序列以可操作方式連接至啟動子。在一些實施例中，一或多種基因產物包含蛋白質或抑制性核酸。

在一些態樣中，本發明提供將轉基因遞送至受試者中之靶細胞中之方法，該方法包含向受試者經靜脈內投與包含以下各項之重組腺相關病毒(rAAV)：經分離核酸，其包含編碼一或多種所關注基因產物之轉基因；及腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白，其具有SEQ ID NO: 1中所陳述之序列，其中該投與使得rAAV穿越受試者之血腦障壁(BBB)。

在一些實施例中，包含本文所闡述蛋白殼蛋白變體(例如AAVv66，SEQ ID NO: 1)之重組AAV (rAAV)之包裝效率高於(例如2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、20倍、30倍、50倍、100倍或更高)具有某些野生型AAV蛋白殼蛋白(例如AAV2蛋白殼蛋白，SEQ ID NO: 2)之rAAV。

本發明態樣係關於用於將轉基因(例如編碼一或多種基因產物之轉基因)遞送至靶細胞中之組合物及方法。本發明部分地係基於特徵在於對某些細胞類型(例如神經元、肌細胞、骨細胞、心臟細胞等)具有向性之腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白變體。在一些實施例中，包含該等蛋白殼蛋白變體之重組AAV (rAAV)之包裝效率高於具有某些野生型AAV蛋白殼蛋白之rAAV。本發明亦闡述遞送包含該等AAV蛋白殼蛋白變體之rAAV之方法。

AAVv66 蛋白殼蛋白在一些態樣中，本發明提供將轉基因遞送至受試者中之靶細胞(例如中樞神經系統(CNS)之靶細胞)之方法，該方法包含向受試者投與(例如經顱內或經靜脈內)包含以下各項之重組腺相關病毒(rAAV)：經分離核酸，其包含編碼一或多種所關注基因產物之轉基因；及腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白，其包含AAVv66蛋白殼蛋白或與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白。在一些實施例中，AAVv66蛋白包含SEQ ID NO: 1中所陳述之胺基酸序列。

在一些實施例中，本文所闡述之AAVv66蛋白殼蛋白相對於AAV2包含選自由以下組成之群之突變：K39Q、V151A、R447K、T450A、Q457M、S492A、E499D、F533Y、G546D、E548G、R585S、R588T及A593T。在一些實施例中，本文所闡述之AAVv66蛋白殼蛋白相對於AAV2包含下列突變中之每一者：K39Q、V151A、R447K、T450A、Q457M、S492A、E499D、F533Y、G546D、E548G、R585S、R588T及A593T。在一些實施例中，與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白相對於AAV2包含一或多個選自由以下組成之群之突變：K39Q、V151A、R447K、T450A、Q457M、S492A、E499D、F533Y、G546D、E548G、R585S、R588T及A593T。在一些實施例中，相對於AAV2，AAVv66蛋白殼蛋白或與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白在其VP1、VP2及/或VP3區中包含一或多個突變。在一些實施例中，相對於AAV2，AAVv66蛋白殼蛋白或與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白在可變區(VR)-IV、VR-V、VR-VI、VT-VII及/或VR-VIII中包含一或多個突變。在一些實施例中，相對於AAV2，AAVv66蛋白殼蛋白或與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白包含一或多個如圖1C中所展示之突變。

「同源性」係指兩個多核苷酸或兩個多肽部分之間之一致性百分比。在提及核酸或其片段時，術語「實質性同源性」指示，在與具有適當核苷酸***或缺失之另一核酸(或其互補鏈)最佳地比對時，所比對序列之核苷酸序列一致性為約90%至100%。在提及多肽或其片段時，術語「實質性同源性」指示，在與具有適當間隙、***或缺失之另一多肽最佳地比對時，所比對序列之核苷酸序列一致性為約90%至100%。術語「高度保守」意指至少80%一致、較佳地至少90%一致及更佳地大於97%一致。在一些情形下，高度保守可係指100%一致。熟習此項技術者易於藉由(例如)使用由熟習此項技術者已知之演算法及電腦程式來測定一致性。

如本文所闡述，使用可經由網際網路上之網路伺服器存取之各種公開或市售多序列比對程式中之任一者(例如「Clustal W」)來比對核酸或多肽的序列。或者，亦可使用Vector NTI實用程序。亦存在諸多可用於量測核苷酸序列一致性之業內已知演算法，包括含於上述程式中者。作為另一實例，可使用BLASTN比較多核苷酸序列，該方式提供查詢序列與搜尋序列之間之最佳重疊區域之比對及序列一致性百分比。可利用類似程式來比較胺基酸序列，例如「Clustal X」程式、BLASTP。通常，在預設設置下使用該等程式中之任一者，但熟習此項技術者可視需要改變該等設置。或者，熟習此項技術者可利用另一演算法或電腦程式，該另一演算法或電腦程式與所提及演算法及程式至少提供相同之一致性程度或比對。可使用比對來鑑別兩種蛋白質或肽之間之相應胺基酸。「相應胺基酸」係與另一蛋白質或肽序列之胺基酸進行比對之某一蛋白質或肽序列之胺基酸。相應胺基酸可相同或不同。作為不同胺基酸之相應胺基酸可稱為變體胺基酸。

在一些態樣中，本發明係關於AAVv66蛋白殼蛋白(例如編碼AAVv66蛋白殼蛋白之經分離核酸、包含AAVv66蛋白殼蛋白之重組腺相關病毒(rAAV)等)或與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白。在一些實施例中，與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白與SEQ ID NO: 1中所陳述之胺基酸序列至少50%、60%、70%、80%、90%、95%或99%一致。在一些實施例中，相對於SEQ ID NO:1中所陳述之胺基酸序列，與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白包含1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49或50個胺基酸取代、***或缺失。在一些實施例中，相對於SEQ ID NO:1中所陳述之胺基酸序列，與AAVv66蛋白殼蛋白具有實質性同源性之蛋白殼蛋白包含大於50個胺基酸取代、***或缺失。

在一些態樣中，本發明係關於令人吃驚之如下發現：相對於具有某些其他AAV蛋白殼蛋白(例如AAV2蛋白殼蛋白、AAV3B蛋白殼蛋白等)之rAAV，包含AAVv66蛋白殼蛋白之rAAV能夠以較高量產生於哺乳動物細胞系(例如HEK-293細胞)中。在一些實施例中，經轉導哺乳動物(例如HEK)生產細胞所產生之具有AAVv66蛋白殼之rAAV係經AAV2蛋白殼蛋白轉導之哺乳動物(例如HEK)生產細胞的約1.5倍至約5倍(例如1.5、2、3、4、5倍)。在一些實施例中，經轉導哺乳動物(例如HEK)生產細胞所產生之具有AAVv66蛋白殼之rAAV多於經AAV3B蛋白殼蛋白轉導之哺乳動物(例如HEK)生產細胞約5%至50% (例如5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%等)。

本發明態樣係關於出人意料地發現，相對於具有AAV2蛋白殼蛋白之rAAV，AAVv66蛋白殼蛋白(例如包含AAVv66蛋白殼蛋白之rAAV)之中樞神經系統(CNS)細胞轉導效率有所改良。在一些實施例中，含有AAVv66之rAAV轉導CNS細胞之效率大於含有AAV2之rAAV至少5%、10%、15%、20%、25%、30%、40%、50%、100%、200%、500%、1000%或更多。在一些實施例中，CNS細胞包含神經元、寡突膠質細胞、星形細胞或小神經膠質細胞。

本發明態樣係關於某些在血清學上不同於其他AAV蛋白殼蛋白(例如AAV1、AAV2、AAV3B、AAV8、AAV9、AAVrh.8、AAVrh.10等)之AAV蛋白殼蛋白(例如AAVv66蛋白殼蛋白)。不期望受限於任何特定理論，包含AAVv66蛋白殼蛋白之rAAV在對於針對某些其他AAV蛋白殼之抗體呈血清陽性之受試者中並不產生中和抗體反應。因此，在一些實施例中，包含AAVv66蛋白殼蛋白之rAAV可用作二線療法以將轉基因遞送至先前已投與AAV療法或對於某些AAV蛋白殼中和抗體呈血清陽性之受試者中。

在一些態樣中，本發明係關於相對於某些野生型AAV蛋白殼蛋白(例如AAV2蛋白殼蛋白)展現增加之熱穩定性之rAAV蛋白殼蛋白(例如AAVv66蛋白殼蛋白)。在一些實施例中，在介於約pH 4至約pH 7之間之pH下，AAVv66蛋白殼蛋白之熱穩定性大於AAV2蛋白殼蛋白。在一些實施例中，藉由計算蛋白殼蛋白之熔融溫度來測定熱穩定性。在一些實施例中，AAVv66蛋白殼蛋白之特徵在於，其在既定pH (例如介於pH 4與pH 7之間)下之熔融溫度高於AAV2蛋白殼蛋白之熔融溫度約5℃至約10℃。

經分離核酸 在一些態樣中，本發明係關於編碼某些AAV蛋白殼蛋白變體(例如AAVv66蛋白殼蛋白)之經分離核酸。「核酸」序列係指DNA或RNA序列。在一些實施例中，術語核酸具有包括DNA及RNA之已知鹼基類似物中之任一者之序列，該等鹼基類似物係例如(但不限於) 4-乙醯基胞嘧啶、8-羥基-N6-甲基腺苷、氮丙啶基胞嘧啶、假異胞嘧啶、5-(羧基羥基-甲基)尿嘧啶、5-氟尿嘧啶、5-溴尿嘧啶、5-羧基甲基胺基甲基-2-硫基尿嘧啶、5-羧基甲基-胺基甲基尿嘧啶、二氫尿嘧啶、肌苷、N6-異戊烯基腺嘌呤、1-甲基腺嘌呤、1-甲基假尿嘧啶、1-甲基鳥嘌呤、1-甲基肌苷、2,2-二甲基-鳥嘌呤、2-甲基腺嘌呤、2-甲基鳥嘌呤、3-甲基-胞嘧啶、5-甲基胞嘧啶、N6-甲基腺嘌呤、7-甲基鳥嘌呤、5-甲基胺基甲基尿嘧啶、5-甲氧基-胺基-甲基-2-硫基尿嘧啶、β-D-甘露糖基辮苷、5'-甲氧基羰基甲基尿嘧啶、5-甲氧基尿嘧啶、2-甲基硫基-N6-異戊烯基腺嘌呤、尿嘧啶-5-氧基乙酸甲酯、尿嘧啶-5-氧基乙酸、氧丁氧核苷(oxybutoxosine)、假尿嘧啶、辮苷、2-硫基胞嘧啶、5-甲基-2-硫基尿嘧啶、2-硫基尿嘧啶、4-硫基尿嘧啶、5-甲基尿嘧啶、-尿嘧啶-5-氧基乙酸甲酯、尿嘧啶-5-氧基乙酸、假尿嘧啶、辮苷、2-硫基胞嘧啶及2,6-二胺基嘌呤。

在一些實施例中，分離本發明之蛋白質及核酸。如本文中所使用，術語「分離」意指人工獲得或產生。如本文中針對核酸所使用，術語「分離」通常意指：(i)在活體外藉由(例如)聚合酶鏈反應(PCR)擴增；(ii)藉由選殖以重組方式產生；(iii)純化，如藉由裂解及凝膠分離；或(iv)藉由(例如)化學合成進行合成。經分離核酸係可易於藉由業內熟知之重組DNA技術操縱者。因此，已知5'及3'限制位點或已揭示聚合酶鏈反應(PCR)引子序列之載體中所含之核苷酸序列可視為經分離的，但以天然狀態存在於天然宿主中之核酸序列則並非經分離的。經分離核酸可實質上經純化，但未必如此。舉例而言，分離於選殖或表現載體內之核酸係不純的，此乃因其可僅佔其駐留細胞中之材料之一小部分。然而，此一核酸係經分離的(在該術語用於本文中時)，此乃因其可易於藉由熟習此項技術者已知之標準技術來操縱。如本文針對蛋白質或肽所使用，術語「經分離」通常係指人工獲得或產生(例如藉由化學合成、藉由重組DNA技術等)蛋白質或肽。

應瞭解，可作出保守胺基酸取代以提供在功能上等效之蛋白殼蛋白變體或同系物。在一些態樣中，本發明涵蓋產生保守胺基酸取代之序列改變。如本文中所使用，保守胺基酸取代係指並不改變進行胺基酸取代之蛋白質中之相對電荷或大小特性之胺基酸取代。可根據熟習此項技術者已知之改變多肽序列之方法來製備變體，例如參見編譯該等方法之參考文獻，例如Molecular Cloning: A Laboratory Manual, J. Sambrook等人編輯，第二版，Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989；或Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausubel等人編輯，John Wiley & Sons, Inc., New York。保守胺基酸取代包括在下列群組內之胺基酸之間進行之取代：(a) M、I、L、V；(b) F、Y、W；(c) K、R、H；(d) A、G；(e) S、T；(f) Q、N；及(g) E、D。因此，可對本文所揭示之蛋白質及多肽之胺基酸序列進行保守胺基酸取代。

重組 AAV (rAAV) 在一些態樣中，本發明提供經分離AAV。如本文中針對AAV所使用，術語「經分離」係指人工獲得或產生AAV。可使用重組方法產生經分離AAV。該等AAV在本文中稱為「重組AAV」。重組AAV (rAAV)較佳地具有組織特異性靶向能力，從而將rAAV之轉基因特異性遞送至一或多個預定組織中。AAV蛋白殼係決定該等組織特異性靶向能力之重要元件。因此，可選擇具有適用於靶向組織之蛋白殼之rAAV。在一些實施例中，rAAV包含AAVv66蛋白殼蛋白。在一些實施例中，rAAV包含具有如SEQ ID NO: 1中所陳述之胺基酸序列之蛋白殼蛋白。

獲得具有期望蛋白殼蛋白之重組AAV之方法在業內已眾所周知。(例如參見US 2003/0138772，其內容以全文引用方式併入本文中)。通常，該等方法涉及培養含有以下各項之宿主細胞：編碼AAV蛋白殼蛋白之核酸序列(例如編碼具有如SEQ ID NO: 1中所陳述之序列之多肽之核酸)或其片段；功能rep 基因；由AAV反向末端重複序列(ITR)及轉基因構成之重組AAV載體；及足夠輔助功能體，其允許將重組AAV載體包裝至AAV蛋白殼蛋白中。在一些實施例中，蛋白殼蛋白係由AAV之cap 基因編碼之結構蛋白。在一些實施例中，AAV包含以下三種蛋白殼蛋白：病毒體蛋白1至3 (稱為VP1、VP2及VP3)，其皆可表現自單一cap 基因。因此，在一些實施例中，VP1、VP2及VP3蛋白共有公用核心序列。在一些實施例中，VP1、VP2及VP3之分子量分別為約87 kDa、約72 kDa及約62 kDa。在一些實施例中，在轉譯後，蛋白殼蛋白在病毒基因體周圍形成球形60聚體蛋白質殼體。在一些實施例中，蛋白質殼體主要包含VP3蛋白殼蛋白。在一些實施例中，蛋白殼蛋白之功能係保護病毒基因體，遞送基因體且與宿主相互作用。在一些態樣中，蛋白殼蛋白以組織特異性方式將病毒基因體遞送至宿主中。在一些實施例中，VP1及/或VP2蛋白殼蛋白可有助於經包裝AAV之組織向性。在一些實施例中，經包裝AAV之組織向性由VP3蛋白殼蛋白決定。在一些實施例中，藉由發生於蛋白殼蛋白中之突變來增強或改變AAV之組織向性。

在一些實施例中，本文所闡述之AAV變體係AAV2變體。AAV2已知可有效轉導人類中樞神經系統(CNS)組織、腎組織、眼部組織(例如感光細胞及視網膜色素上皮(RPE))及其他組織。因此，在一些實施例中，本文所闡述之AAV2變體可用於將基因療法遞送至CNS組織、腎組織或眼部組織中。在一些實施例中，本文所闡述之AAV蛋白殼蛋白可用於靶向其他組織(例如肌肉組織、肝組織或心臟組織)。在一些實施例中，在經靜脈內遞送或全身性注射時，本文所闡述之AAV蛋白殼蛋白(例如AAVv66蛋白殼蛋白)能夠穿越受試者之血腦障壁(BBB)。

在一些態樣中，本文所闡述之AAV變體可用於治療CNS相關病症。如本文中所使用，「CNS相關病症」係中樞神經系統之疾病或病狀。CNS相關病症可影響脊髓(例如脊髓病變)、腦(例如腦病變)或腦及脊髓周圍之組織。CNS相關病症可為基因來源，亦即遺傳或經由體細胞突變獲得。CNS相關病症可為心理學病狀或病症，例如注意力缺陷過動症、自閉症譜系病症、心境病症、精神***症、抑鬱症、蕾特氏症候群(Rett Syndrome)等。CNS相關病症可為自體免疫病症。CNS相關病症亦可為CNS癌症，例如腦癌。作為癌症之CNS相關病症可為原發性CNS癌症(例如星形細胞瘤、神經膠母細胞瘤等)，或可為轉移至CNS組織之癌症(例如轉移至腦之肺癌)。CNS相關病症之其他非限制性實例包括帕金森氏病(Parkinson’s Disease)、溶酶體貯積病、缺血、神經病變性疼痛、肌肉萎縮性脊髓側索硬化症(ALS)、多發性硬化(MS)及卡納萬氏病(Canavan disease，CD)。

在一些實施例中，本文所闡述之AAV變體可靶向肝組織。因此，在一些實施例中，本文所闡述之AAV變體可用於治療肝疾病。如本文中所使用，「肝疾病」係肝之疾病或病狀。肝疾病可為基因來源，亦即遺傳或經由體細胞突變獲得。肝疾病可為肝癌，包括(但不限於)肝細胞癌(HCC)、纖維板層癌、膽管癌、血管肉瘤及肝母細胞瘤。肺疾病之其他非限制性實例包括阿拉吉勒症候群(Alagille Syndrome)、α 1抗胰蛋白酶缺陷、自體免疫肝炎、膽管閉鎖、肝硬化、肝囊性疾病、脂肪肝病、半乳糖血症、膽結石、吉爾伯特氏症候群(Gilbert’s Syndrome)、血色素沈積症、妊娠期肝病、新生兒肝炎、原發性膽管肝硬化、原發性硬化性膽管炎、卟啉病、雷依氏症候群(Reye’s Syndrome)、類肉瘤病、毒性肝炎、1型醣原貯積病、酪胺酸血症、病毒性A、B、C型肝炎、威爾森氏病(Wilson Disease)及血吸蟲病。

在一些實施例中，本文所闡述之AAV變體可用於將基因療法遞送至眼部組織(例如眼睛之組織或細胞)中。因此，在一些實施例中，本文所闡述之AAV變體可用於治療眼部病症。如本文中所使用，「眼部病症」係眼睛之疾病或病狀。眼部疾病可影響眼睛、鞏膜、角膜、前房、後房、虹膜、瞳孔、晶狀體、玻璃體液、視網膜或視神經。眼部病症可為基因來源，亦即遺傳或經由體細胞突變獲得。眼部疾病及病症之非限制性實例包括(但不限於)：年齡相關性黃斑退化、視網膜病變、糖尿病性視網膜病變、黃斑水腫、青光眼、色素性視網膜炎及眼癌。

可將擬培養於宿主細胞中以將rAAV載體包裝於AAV蛋白殼中之組分以反式提供至宿主細胞中。或者，可藉由已使用熟習此項技術者已知之方法進行改造以含有所需組分(例如重組AAV載體、rep序列、cap序列及/或輔助功能體)中之一或多者之穩定宿主細胞來提供所需組分任一者或多者。最適宜地，此一穩定宿主細胞含有處於可誘導啟動子之控制下之所需組分。然而，所需組分可處於組成型啟動子之控制下。適宜可誘導及組成型啟動子之實例在本文中提供於適用於轉基因之調控元件之論述中。在再一替代方式中，所選穩定宿主細胞可含有處於組成型啟動子之控制下之所選組分及處於一或多種可誘導啟動子之控制下之其他所選組分。舉例而言，可生成衍生自293細胞(其含有處於組成型啟動子之控制下之E1輔助功能體)但含有處於可誘導啟動子之控制下之rep及/或cap蛋白的穩定宿主細胞。熟習此項技術者可生成其他穩定宿主細胞。

可使用任何適當遺傳元件(載體)將產生本發明rAAV所需之重組AAV載體、rep序列、cap序列及輔助功能體遞送至包裝宿主細胞中。在一些實施例中，將編碼所有三種蛋白殼蛋白(例如VP1、VP2及VP3)之單一核酸以單一載體遞送至包裝宿主細胞中。在一些實施例中，藉由兩個載體將編碼蛋白殼蛋白之核酸遞送至包裝宿主細胞中；第一載體包含編碼兩種蛋白殼蛋白(例如VP1及VP2)之第一核酸，且第二載體包含編碼單一蛋白殼蛋白(例如VP3)之第二核酸。在一些實施例中，將各自包含編碼不同蛋白殼蛋白之核酸之三種載體遞送至包裝宿主細胞中。可藉由任何適宜方法(包括本文所闡述者)來遞送所選遺傳元件。用於構築本發明之任何實施例之方法為熟習核酸操縱者已知且包括基因改造、重組改造及合成技術。例如參見Sambrook等人，Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, N.Y。類似地，生成rAAV病毒體之方法已眾所周知且適宜方法之選擇並不限於本發明。例如參見K. Fisher等人，J. Virol., 70:520-532 (1993)及美國專利第5,478,745號。

在一些實施例中，可使用三重轉染方法產生重組AAV (詳述於美國專利第6,001,650號中)。通常，藉由使用擬包裝至AAV顆粒中之重組AAV載體(包含轉基因)、AAV輔助功能載體及附屬功能載體轉染宿主細胞來產生重組AAV。AAV輔助功能載體編碼「AAV輔助功能」序列(例如rep及cap)，該等序列反式用於生產性AAV複製及衣殼化。較佳地，AAV輔助功能載體支持有效之AAV載體產生而不生成任何可檢測野生型AAV病毒體(例如含有功能性rep及cap基因之AAV病毒體)。適用於本發明之載體之非限制性實例包括pHLP19 (闡述於美國專利第6,001,650號中)及pRep6cap6載體(闡述於美國專利第6,156,303號中)，該等專利之全部內容皆以引用方式併入本文中。附屬功能載體編碼用於AAV複製所依賴之非AAV源病毒及/或細胞功能(例如「附屬功能」)之核苷酸序列。附屬功能包括AAV複製所需之彼等功能，包括(但不限於)彼等涉及AAV基因轉錄激活、階段特異性AAV mRNA剪接、AAV DNA複製、cap表現產物合成及AAV蛋白殼組裝之部分。基於病毒之附屬功能可衍生自已知輔助病毒中之任一者，例如腺病毒、疱疹病毒(1型單純疱疹病毒除外)及牛痘病毒。

在一些態樣中，本發明提供經轉染宿主細胞。術語「轉染」用於係指藉由細胞攝取外來DNA，且在已將外源性DNA引入細胞內部(例如穿越細胞膜)時細胞已「經轉染」。諸多轉染技術通常為業內已知。例如參見Graham等人(1973) Virology, 52:456；Sambrook等人(1989) Molecular Cloning, a laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratories, New York；Davis等人(1986) Basic Methods in Molecular Biology, Elsevier；及Chu等人(1981) Gene 13:197。可使用該等技術將一或多種外源性核酸(例如核苷酸整合載體及其他核酸分子)引入適宜宿主細胞中。

「宿主細胞」係指任何含有或能夠含有所關注物質之細胞。通常，宿主細胞係哺乳動物細胞。可使用宿主細胞作為AAV輔助構築體、AAV微基因質體、附屬功能載體或其他與重組AAV產生有關之轉移DNA之接受者。該術語包括已經轉染之原始細胞之子代。因此，本文所用之「宿主細胞」可係指已經外源性DNA序列轉染之細胞。應理解，因天然、偶然或特意突變，單一親代細胞之子代之形態或基因體或總DNA補體可能未必與原始親代完全相同。

如本文中所使用，術語「細胞系」係指能夠在活體外連續或延長生長及***之細胞之群體。通常，細胞系係衍生自單一祖細胞之純系群體。業內另外已知，在該等純系群體之儲存或轉移期間，自發性或誘導性變化可出現於核型中。因此，衍生自所提及細胞系之細胞可能並不與祖細胞或培養物完全相同，且所提及細胞系包括該等變體。

如本文中所使用，術語「重組細胞」係指已引入外源性DNA區段(例如使得轉錄生物活性多肽或產生生物活性核酸(例如RNA)之DNA區段)之細胞。

亦可使用向AAV提供輔助功能之載體(例如輔助載體)來轉染細胞。提供輔助功能之載體可提供腺病毒功能，包括(例如) E1a、E1b、E2a及E4ORF6。提供該等功能之腺病毒基因之序列可自任何已知腺病毒血清型(例如血清型2、3、4、7、12及40，且進一步包括當前鑑別之業內已知人類類型中之任一者)獲得。因此，在一些實施例中，該等方法涉及使用表現AAV複製、AAV基因轉錄及/或AAV包裝所需之一或多種基因之載體來轉染細胞。

如本文中所使用，術語「載體」包括任何能夠在與適當控制元件締合時進行複製且可在細胞之間轉移基因序列之遺傳元件，例如質體、噬菌體、轉位子、黏粒、染色體、人工染色體、病毒、病毒體等。因此，該術語包括選殖及表現媒劑以及病毒載體。在一些實施例中，有用載體可考慮彼等其中擬轉錄核酸區段(例如核酸序列)處於啟動子之轉錄控制下之載體。「啟動子」係指由細胞之合成機構或所引入合成機構所識別之開始特異性基因轉錄所需之DNA序列。片語「以可操作方式定位」、「在控制下」或「在轉錄控制下」意指，啟動子相對於核酸處於正確之位置及定向中以控制RNA聚合酶起始及基因表現。術語「表現載體或構築體」意指任何類型之能夠轉錄部分或所有核酸編碼序列之含有核酸之基因構築體。在一些實施例中，表現包括轉錄核酸以(例如)自經轉錄基因生成生物活性多肽產物或抑制性RNA (例如shRNA、miRNA、miRNA抑制劑)。

在一些實施例中，啟動子係巨細胞病毒早期增強子/雞β肌動蛋白(CB6)啟動子。

在一些情形下，可利用業內熟知方法使用經分離殼基因來構築及包裝重組AAV以測定與由該基因編碼之蛋白殼蛋白有關之功能特性。舉例而言，可使用經分離殼基因來構築及包裝包含報告基因(例如B-半乳糖苷酶、GFP、螢光素酶等)之重組AAV (rAAV)。然後可將rAAV遞送至動物(例如小鼠)且可藉由檢驗動物之各種組織(例如心臟、肝、腎)中之報告基因表現來測定新穎經分離殼基因之組織靶向性質。表徵新穎經分離殼基因之其他方法揭示於本文中且再其他者在業內已眾所周知。

將重組載體包裝於期望AAV蛋白殼中以產生本發明rAAV之前述方法並無意具有限制性且熟習此項技術者咸瞭解還有其他適宜方法。

rAAV 載體本發明之「重組AAV (rAAV)載體」通常至少由轉基因及其調控序列以及5'及3' AAV反向末端重複序列(ITR)構成。正是此重組AAV載體被包裝至蛋白殼蛋白中，且遞送至所選靶細胞中。在一些實施例中，轉基因係載體序列之異源性核酸序列，其編碼所關注之多肽、蛋白質、功能性RNA分子(例如miRNA、miRNA抑制劑)或其他基因產物。核酸編碼序列在允許在靶組織之細胞中進行轉基因轉錄、轉譯及/或表現之方式下，以可操作方式連接至調控組分。

載體之AAV序列通常包含順式作用性5'及3'反向末端重複序列(例如參見B. J. Carter, 「Handbook of Parvoviruses」，P. Tijsser編輯，CRC Press, pp. 155 168 (1990))。ITR序列之長度為約145 bp。較佳地，編碼ITR之實質上整個序列皆用於分子中，但可允許對該等序列進行一定程度之輕微修飾。修飾該等ITR序列之能力為業內已知。(例如參見諸如：Sambrook等人，「Molecular Cloning. A Laboratory Manual」，第2版，Cold Spring Harbor Laboratory, New York (1989)；及K. Fisher等人，J Virol., 70:520 532 (1996) 等文獻)。用於本發明中之此一分子之一實例係含有轉基因之「順式作用」質體，其中所選轉基因序列及相關調控元件側接有5'及3' AAV ITR序列。可自任何已知AAV (包括當前已鑑別之哺乳動物AAV類型)獲得AAV ITR序列。

在一些實施例中，本發明提供自我互補性AAV載體。如本文中所使用，術語「自我互補性AAV載體」 (scAAV)係指含有雙鏈載體基因體之載體，該雙鏈載體基因體係藉由自AAV之一個ITR去除末端解析位點(TR)所生成。去除TR可防止在不存在TR之載體末端開始複製。一般而言，scAAV載體產生在每一端處具有野生型(wt) AAV TR且在中間具有突變TR (mTR)之單鏈、反向重複序列基因體。

在一些實施例中，本發明rAAV係假型rAAV。假型化係產生病毒或病毒載體與外來病毒套膜蛋白之組合之過程。此會產生假型病毒顆粒。使用此方法，可使用外來病毒套膜蛋白來改變宿主向性或增加/降低病毒顆粒之穩定性。在一些態樣中，假型rAAV包含來自兩種或更多種不同AAV之核酸，其中來自一種AAV之核酸編碼蛋白殼蛋白且至少一種其他AAV之核酸編碼其他病毒蛋白及/或病毒基因體。在一些實施例中，假型rAAV係指包含一種AAV血清型之反向末端重複序列(ITR)及不同AAV血清型之蛋白殼蛋白之AAV。舉例而言，含有經血清型Y之蛋白質衣殼化之血清型X之ITR的假型AAV載體將稱為AAVX/Y (舉例而言，AAV2/1具有AAV2之ITR及AAV1之蛋白殼)。在一些實施例中，假型rAAV可用於組合來自一種AAV血清型之蛋白殼蛋白之組織特異性靶向能力與來自另一AAV血清型之病毒DNA，由此容許將轉基因靶向遞送至靶組織中。

除上文針對重組AAV載體所鑑別之主要元件外，該載體亦包括必需之習用控制元件，該等控制元件在允許在經質體載體轉染或感染本發明所產生病毒之細胞中轉錄、轉譯及/或表現轉基因之方式下，以可操作方式連接至該轉基因。如本文中所使用，「以可操作方式連接」之序列包括與所關注基因鄰接之表現控制序列及反式或遠距離作用以控制所關注基因之表現控制序列。

表現控制序列包括適當轉錄起始、終止、啟動子及增強子序列；有效RNA處理信號，例如剪接及多聚腺苷酸化(聚A)信號；穩定細胞質mRNA之序列；增強轉譯效率之序列(例如Kozak共有序列)；增強蛋白質穩定性之序列；及視需要增強編碼產物之分泌之序列。大量表現控制序列(包括天然、組成型、可誘導及/或組織特異性之啟動子)為業內已知且可加以利用。

如本文中所使用，在以在調控序列之影響或控制下表現或轉錄核酸序列之方式共價連接時，核酸序列(例如編碼序列)及調控序列可稱為「以可操作方式」連接。在期望將核酸序列轉譯成功能蛋白時，若誘導5’調控序列中之啟動子會轉錄編碼序列且若兩個DNA序列之間之鍵聯之性質並不(1)引入框移突變、(2)干擾啟動子區引導轉錄編碼序列之能力或(3)干擾相應RNA轉錄物轉譯成蛋白質之能力，則兩個DNA序列可稱為以可操作方式連接。因此，若啟動子區能夠實現該DNA序列之轉錄以便所得轉錄物可轉譯成期望蛋白質或多肽，則啟動子區以可操作方式連接至核酸序列。類似地，在兩個或更多個編碼區以自通用啟動子之其轉錄會表現兩種或更多種已框內轉譯之蛋白質之方式連接時，其以可操作方式連接。在一些實施例中，以可操作方式連接之編碼序列產生融合蛋白。在一些實施例中，以可操作方式連接之編碼序列產生功能RNA (例如shRNA、miRNA、miRNA抑制劑)。

對於編碼蛋白質之核酸而言，多聚腺苷酸化序列通常***轉基因序列之後及3' AAV ITR序列之前。可用於本發明中之rAAV構築體亦可含有內含子，該內含子期望地位於啟動子/增強子序列與轉基因之間。一個可能內含子序列衍生自SV-40，且稱為SV-40 T內含子序列。另一可使用之載體元件係內部核糖體進入位點(IRES)。IRES序列用於自單一基因轉錄物產生一種以上多肽。可使用IRES序列產生含有一條以上多肽鏈之蛋白質。按慣例選擇該等及其他常用載體元件且可利用許多該等序列[例如參見Sambrook等人，及其中在(例如)第3.18 3.26及16.17 16.27頁所引用之參考文獻；及Ausubel等人，Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, 1989]。在一些實施例中，***病毒2A序列包括於聚蛋白中；此序列係已展示會調介聚蛋白裂解之小肽(長度為大約18個胺基酸) (Ryan, M D等人，EMBO, 1994；4: 928-933；Mattion, N M等人，J Virology，1996年11月；p. 8124-8127；Furler, S等人，Gene Therapy, 2001；8: 864-873；及Halpin, C等人，The Plant Journal, 1999；4: 453-459)。2A序列之裂解活性先前已證實於包括質體及基因療法載體(AAV及逆轉錄病毒)之人工系統中(Ryan, M D等人，EMBO, 1994；4: 928-933；Mattion, N M等人，J Virology，1996年11月；p. 8124-8127；Furler, S等人，Gene Therapy, 2001；8: 864-873；及Halpin, C等人，The Plant Journal, 1999；4: 453-459；de Felipe, P等人，Gene Therapy, 1999；6: 198-208；de Felipe, P等人，Human Gene Therapy, 2000；11: 1921-1931.；及Klump, H等人，Gene Therapy, 2001；8: 811-817)。

宿主細胞中之基因表現所需之調控序列之精確性質可能在物種、組織或細胞類型之間有所變化，但通常應視需要包括分別涉及轉錄及轉譯之起始之5’非轉錄序列及5’非轉譯序列(例如TATA盒、封端序列、CAAT序列、增強子元件及諸如此類)。尤其而言，該等5’非轉錄調控序列包括含有用於以可操作方式接合之基因之轉錄控制之啟動子序列的啟動子區。調控序列亦可視需要包括增強子序列或上游激活序列。本發明載體可視情況包括5'前導或信號序列。適當載體之選擇及設計應在熟習此項技術者之能力及判斷範圍之內。

組成型啟動子之實例包括(但不限於)逆轉錄病毒勞斯肉瘤病毒(Rous sarcoma virus，RSV) LTR啟動子(視情況具有RSV增強子)、巨細胞病毒(CMV)啟動子(視情況具有CMV增強子) [例如參見Boshart等人，Cell, 41:521-530 (1985)]、SV40啟動子、二氫葉酸還原酶啟動子、β-肌動蛋白啟動子、磷酸甘油激酶(PGK)啟動子及EF1α啟動子[Invitrogen]。

可誘導啟動子容許調控基因表現且可藉由外源供應性化合物、環境因素(例如溫度)或特定生理學狀態(例如急性期、特定細胞分化狀態或僅在複製細胞中)之存在來進行調控。可誘導啟動子及可誘導系統可自各個商業來源(包括(但不限於) Invitrogen、Clontech及Ariad)獲得。已闡述許多其他系統且可易於由熟習此項技術者進行選擇。由外源供應性啟動子調控之可誘導啟動子之實例包括鋅可誘導綿羊金屬硫蛋白(MT)啟動子、***(dexamethasone，Dex)可誘導性小鼠***腫瘤病毒(MMTV)啟動子、T7聚合酶啟動子系統(WO 98/10088)、蛻皮激素昆蟲啟動子(No等人，Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93:3346-3351 (1996))、四環素(tetracycline)抑制系統(Gossen等人，Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89:5547-5551 (1992))、四環素可誘導系統(Gossen等人，Science, 268:1766-1769 (1995)，亦參見Harvey等人，Curr. Opin. Chem. Biol., 2:512-518 (1998))、RU486可誘導系統(Wang等人，Nat. Biotech., 15:239-243 (1997)及Wang等人，Gene Ther., 4:432-441 (1997))及雷帕黴素(rapamycin)可誘導系統(Magari等人，J. Clin. Invest., 100:2865-2872 (1997))。可用於此背景中之其他類型之可誘導啟動子係由特定生理學狀態(例如溫度、急性期、特定細胞分化狀態或僅在複製細胞中)調控者。

在另一實施例中，使用用於轉基因之天然啟動子。在期望轉基因表現應模擬天然表現時，天然啟動子可較佳。天然啟動子可用於必須時間性或發育性或以組織特異性方式或因應於特定轉錄刺激物來調控轉基因表現時。在另一實施例中，亦可使用其他天然表現控制元件(例如增強子元件、多聚腺苷酸化位點或Kozak共有序列)來模擬天然表現。

在一些實施例中，調控序列賦予組織特異性基因表現能力。在一些情形下，組織特異性調控序列結合組織以組織特異性方式誘導轉錄之特異性轉錄因子。該等組織特異性調控序列(例如啟動子、增強子等)在業內已眾所周知。實例性組織特異性調控序列包括(但不限於)下列組織特異性啟動子：肝特異性甲狀腺素結合球蛋白(TBG)啟動子、胰島素啟動子、升糖素啟動子、生長抑制素啟動子、胰臟多肽(PPY)啟動子、突觸蛋白-1 (Syn)啟動子、肌酸激酶(MCK)啟動子、哺乳動物結蛋白(DES)啟動子、α-肌球蛋白重鏈(a-MHC)啟動子、胃腸道特異性黏蛋白-2啟動子、眼睛特異性視網膜劈裂蛋白啟動子、眼睛特異性K12啟動子、呼吸組織特異性CC10啟動子、呼吸組織特異性表面活性劑蛋白C (SP-C)啟動子、***組織特異性PRC1啟動子、***組織特異性RRM2啟動子、泌尿道組織特異性尿路蛋白2 (UPII)啟動子、子宮組織特異性乳鐵蛋白啟動子或心臟肌鈣蛋白T (cTnT)啟動子。其他實例性啟動子包括β肌動蛋白啟動子、B型肝炎病毒核心啟動子(Sandig等人，Gene Ther., 3:1002-9 (1996))、α-胎兒蛋白(AFP)啟動子(Arbuthnot等人，Hum. Gene Ther., 7:1503-14 (1996))、骨鈣化素啟動子(Stein等人，Mol. Biol. Rep., 24:185-96 (1997))、骨唾液蛋白啟動子(Chen等人，J. Bone Miner. Res., 11:654-64 (1996))、CD2啟動子(Hansal等人，J. Immunol., 161:1063-8 (1998)、免疫球蛋白重鏈啟動子、T細胞受體α鏈啟動子、神經元啟動子(例如神經元特異性烯醇酶(NSE)啟動子) (Andersen等人，Cell. Mol. Neurobiol., 13:503-15 (1993))、神經絲輕鏈基因啟動子(Piccioli等人，Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88:5611-5 (1991))及神經元特異性vgf基因啟動子(Piccioli等人，Neuron, 15:373-84 (1995))以及熟習此項技術者所明瞭之其他者。

在一些實施例中，組織特異性調控序列係CNS特異性啟動子。CNS特異性啟動子之實例包括(但不限於)神經元特異性烯醇酶(NSE)啟動子(Andersen等人，Cell. Mol. Neurobiol., 13:503-15 (1993))、神經絲輕鏈基因啟動子(Piccioli等人，Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88:5611-5 (1991))及神經元特異性vgf基因啟動子(Piccioli等人，Neuron, 15:373-84 (1995))。在一些實施例中，CNS特異性啟動子係星形細胞特異性啟動子，例如神經膠質纖維酸性蛋白啟動子。在一些實施例中，CNS特異性啟動子係神經元啟動子，例如突觸蛋白(Syn)啟動子。在一些實施例中，CNS特異性啟動子係選自以下之基因之啟動子：神經元細胞核(NeuN)、神經膠質纖維酸性蛋白(GFAP)、腺瘤性結腸息肉病(APC)蛋白及離子化鈣結合適配分子1 (Iba-1)。在一些實施例中，CNS特異性啟動子係如Kügler S. (2016) Tissue-Specific Promoters in the CNS. Manfredsson F. (編輯) Gene Therapy for Neurological Disorders. Methods in Molecular Biology，第1382卷. Humana Press, New York, NY中所闡述。

在一些實施例中，將用於一或多種miRNA之一或多個結合位點納入rAAV載體之轉基因中以抑制該轉基因在具有該轉基因之受試者之一或多個組織中的表現(例如以細胞類型特異性方式使轉基因表現脫靶)。熟習此項技術者應瞭解，可選擇結合位點，從而以組織特異性方式控制轉基因之表現。舉例而言，可將用於肝特異性miR-122之結合位點納入轉基因中以抑轉基因在肝中之表現。mRNA中之靶位點可位於5' UTR、3' UTR或編碼區中。通常，靶位點位於mRNA之3’ UTR中。另外，可設計轉基因，從而多個miRNA藉由識別相同或多個位點來調控mRNA。存在多個miRNA結合位點可使得多個RISC協同作用且高度有效地抑制表現。靶位點序列可包含總共5-100、10-60或更多個核苷酸。靶位點序列可包含靶基因結合位點序列之至少5個核苷酸。

在一些實施例中，轉基因包含一或多個(例如1、2、3、4、5或更多個)使轉基因在免疫細胞(例如抗原呈遞細胞(APC)，例如巨噬球、樹突細胞等)中之表現脫靶之miRNA結合位點。納入用於免疫相關miRNA之miRNA結合位點可使來自抗原呈遞細胞之轉基因表現脫靶且由此減小或消除受試者中針對轉基因產物所產生之免疫反應(細胞及/或體液)，例如如US 2018/0066279中所闡述，該案件之全部內容以引用方式併入本文中。在一些實施例中，免疫相關miRNA係選自：miR-15a、miR-16-1、miR-17、miR-18a、miR-19a、miR-19b-1、miR-20a、miR-21、miR-29a/b/c、miR-30b、miR-31、miR-34a、miR-92a-1、miR-106a、miR-125a/b、miR-142-3p、miR-146a、miR-150、miR-155、miR-181a、miR-223及miR-424、miR-221、miR-222、let-7i、miR-148及miR-152。

rAAV載體之轉基因序列之組成取決於所得載體之用途。舉例而言，一類轉基因序列包括，該報告基因序列在表現時會產生可檢測信號。在另一實例中，轉基因編碼治療性蛋白或治療性功能RNA。在另一實例中，轉基因編碼意欲用於研究目的(例如產生含有該轉基因之體細胞轉基因動物模型、例如研究轉基因產物之功能)之蛋白質或功能RNA。在另一實例中，轉基因編碼意欲用於產生動物疾病模型之蛋白質或功能RNA。適當轉基因編碼序列為熟習此項技術者所明瞭。

可提供於轉基因中之報告基因序列包括(但不限於)編碼β-內醯胺酶、β-半乳糖苷酶(LacZ)、鹼性磷酸酶、胸苷激酶、綠色螢光蛋白(GFP)、氯黴素乙醯基轉移酶(CAT)、螢光素酶及業內熟知之其他者之DNA序列。報告基因序列在與驅動其表現之調控元件締合時會提供可藉由習用方式檢測之信號，該方式包括酶促、放射學、比色、螢光或其他光譜分析、螢光活化細胞分選分析及免疫學分析(包括酶連免疫吸附分析(ELISA)、放射性免疫分析(RIA)及免疫組織化學)。舉例而言，在標記物序列係LacZ基因之情形下，藉由分析β-半乳糖苷酶活性來檢測是否存在攜載信號之載體。在轉基因係綠色螢光蛋白或螢光素酶之情形下，可藉由發光計中之色彩或光產生來目測量測攜載信號之載體。該等報告基因可(例如)用於驗證rAAV之組織特異性靶向能力及組織特異性啟動子調控活性。

在一些態樣中，本發明提供用於以下方法中之rAAV載體：預防或治療哺乳動物之一或多種基因缺陷或功能障礙，例如哺乳動物之多肽缺陷或多肽過量；及尤其治療顯示一或多種與細胞及組織中該等多肽之缺陷相關之病症之人類的缺陷或減小其嚴重程度或程度。該方法涉及向受試者投與於醫藥上可接受之載劑中之編碼一或多種治療性肽、多肽、siRNA、微RNA、反義核苷酸等的rAAV載體，該投與之量及時間段應足以治療患有此一病症之受試者之缺陷或病症。

因此，本發明涵蓋遞送編碼一或多種可用於治療或預防哺乳動物受試者之疾病狀態之肽、多肽或蛋白質之rAAV載體。實例性治療蛋白包括一或多種選自由以下組成之群之多肽：生長因子、介白素、干擾素、抗細胞凋亡因子、細胞介素、抗糖尿病因子、抗細胞凋亡劑、凝血因子、抗腫瘤因子。治療蛋白之其他非限制性實例包括BDNF、CNTF、CSF、EGF、FGF、G-SCF、GM-CSF、***、IFN、IFG-1、M-CSF、NGF、PDGF、PEDF、TGF、VEGF、TGF-B2、TNF、泌乳素、生長激素、XIAP1、IL-1、IL-2、IL-3、IL-4、IL-5、IL-6、IL-7、IL-8、IL-9、IL-10、IL-10 (187A)、病毒IL-10、IL-11、IL-12、IL-13、IL-14、IL-15、IL-16、IL-17及IL-18。

rAAV載體可包含擬轉移至受試者以治療與基因之表現降低、表現缺乏或功能障礙有關之疾病之該基因。在一些實施例中，使用rAAV載體來治療與中樞神經系統有關之疾病。實例性基因及相關疾病狀態包括(但不限於)：與1A型醣原貯積缺陷有關之葡萄糖-6-磷酸酶；與Pepck缺陷有關之磷酸烯醇丙酮酸-羧基激酶；與半乳糖血症有關之半乳糖-1磷酸尿苷醯基轉移酶；與苯丙酮尿症有關之苯基丙胺酸羥基酶；與楓糖漿尿病有關之具支鏈α-酮酸去氫酶；與1型酪胺酸血症有關之富馬醯乙醯乙酸水解酶；與甲基丙二酸血症有關之甲基丙二醯基-CoA變位酶；與中鏈乙醯基CoA缺陷有關之中鏈醯基CoA去氫酶；與鳥胺酸轉胺甲醯酶缺陷有關之鳥胺酸轉胺甲醯酶；與瓜胺酸血症有關之精胺基琥珀酸合成酶；與家族性高膽固醇血症有關之低密度脂蛋白受體蛋白；與克裡格勒-納賈爾病(Crigler-Najjar disease)有關之UDP-葡萄糖醛酸基轉移酶；與嚴重聯合免疫缺陷疾病有關之腺苷去胺酶；與痛風及萊施-奈恩症候群(Lesch-Nyan syndrome)有關之次黃嘌呤鳥嘌呤磷酸核糖基轉移酶；與生物素酶缺陷有關之生物素酶；與高雪氏病(Gaucher disease)有關之β-葡萄糖腦苷脂酶；與斯萊症候群(Sly syndrome)有關之β-葡萄糖醛酸苷酶；與澤韋格症候群(Zellweger syndrome)有關之70 kDa過氧化物酶體膜蛋白；與急性間歇性卟啉病有關之膽色素原去胺酶；用於治療α-1抗胰蛋白酶缺陷(肺氣腫)之α-1抗胰蛋白酶；用於治療由地中海貧血或腎衰竭所致之貧血之促紅血球生成素；用於治療缺血性疾病之血管內皮生長因子、血管生成素-1及纖維母細胞生長因子；用於治療如可見於(例如)動脈粥樣硬化、血栓形成或栓塞中之血管堵塞之血栓調節蛋白及組織因素路徑抑制因子；用於治療帕金森氏病(Parkinson's disease)之芳香族胺基酸去羧酶(AADC)及酪胺酸羥基酶(TH)；用於治療充血性心臟衰竭之β腎上腺素能受體、受磷蛋白之反義物或突變形式、肌(內)質網腺苷三磷酸酶-2 (SERCA2)及心臟腺苷酸環化酶；用於治療各種癌症之腫瘤抑制基因(例如p53)；用於治療發炎性及免疫性病症及癌症之細胞介素(例如各種介白素中之一者)；用於治療肌肉失養症之肌肉萎縮蛋白(dystrophin)或微小肌肉萎縮蛋白及肌營養相關蛋白(utrophin)或微小肌營養相關蛋白；及用於治療糖尿病之胰島素。

熟習此項技術者亦應認識到，在編碼蛋白質或多肽之轉基因之情形下，可在轉基因中進行產生保守胺基酸取代之突變以提供蛋白質或多肽之功能等效之變體或同系物。在一些態樣中，本發明涵蓋使得轉基因發生保守胺基酸取代之序列改變。在一些實施例中，轉基因包含具有顯性負突變之基因。舉例而言，轉基因可表現同野生型蛋白與相同元件相互作用之突變蛋白，且由此阻斷野生型蛋白之功能之某一態樣。

有用轉基因產物亦包括miRNA。miRNA及其他小干擾核酸經由靶信使RNA (mRNA)之靶RNA轉錄物裂解/降解或轉譯阻抑來調控基因表現。miRNA通常天然表現為最終之19-25種非轉譯RNA產物。miRNA經由與靶mRNA之3'未轉譯區(UTR)之序列特異性相互作用來展現其活性。該等內源性表現之miRNA形成髮夾前體，隨後將該等髮夾前體處理成miRNA雙鏈體且進一步處理成「成熟」單鏈miRNA分子。此成熟miRNA引導多蛋白複合物miRISC，該miRISC基於靶mRNA與成熟miRNA之互補性來鑑別(例如)靶mRNA之3' UTR區中之靶位點。

在某些方法實施例中，下列非限制性清單中之miRNA基因及其同系物可用作轉基因或用作由轉基因編碼之小干擾核酸(例如miRNA海綿、反義寡核苷酸、TuD RNA)之靶：hsa-let-7a、hsa-let-7a*、hsa-let-7b、hsa-let-7b*、hsa-let-7c、hsa-let-7c*、hsa-let-7d、hsa-let-7d*、hsa-let-7e、hsa-let-7e*、hsa-let-7f、hsa-let-7f-1*、hsa-let-7f-2*、hsa-let-7g、hsa-let-7g*、hsa-let-7i、hsa-let-7i*、hsa-miR-1、hsa-miR-100、hsa-miR-100*、hsa-miR-101、hsa-miR-101*、hsa-miR-103、hsa-miR-105、hsa-miR-105*、hsa-miR-106a、hsa-miR-106a*、hsa-miR-106b、hsa-miR-106b*、hsa-miR-107、hsa-miR-10a、hsa-miR-10a*、hsa-miR-10b、hsa-miR-10b*、hsa-miR-1178、hsa-miR-1179、hsa-miR-1180、hsa-miR-1181、hsa-miR-1182、hsa-miR-1183、hsa-miR-1184、hsa-miR-1185、hsa-miR-1197、hsa-miR-1200、hsa-miR-1201、hsa-miR-1202、hsa-miR-1203、hsa-miR-1204、hsa-miR-1205、hsa-miR-1206、hsa-miR-1207-3p、hsa-miR-1207-5p、hsa-miR-1208、hsa-miR-122、hsa-miR-122*、hsa-miR-1224-3p、hsa-miR-1224-5p、hsa-miR-1225-3p、hsa-miR-1225-5p、hsa-miR-1226、hsa-miR-1226*、hsa-miR-1227、hsa-miR-1228、hsa-miR-1228*、hsa-miR-1229、hsa-miR-1231、hsa-miR-1233、hsa-miR-1234、hsa-miR-1236、hsa-miR-1237、hsa-miR-1238、hsa-miR-124、hsa-miR-124*、hsa-miR-1243、hsa-miR-1244、hsa-miR-1245、hsa-miR-1246、hsa-miR-1247、hsa-miR-1248、hsa-miR-1249、hsa-miR-1250、hsa-miR-1251、hsa-miR-1252、hsa-miR-1253、hsa-miR-1254、hsa-miR-1255a、hsa-miR-1255b、hsa-miR-1256、hsa-miR-1257、hsa-miR-1258、hsa-miR-1259、hsa-miR-125a-3p、hsa-miR-125a-5p、hsa-miR-125b、hsa-miR-125b-1*、hsa-miR-125b-2*、hsa-miR-126、hsa-miR-126*、hsa-miR-1260、hsa-miR-1261、hsa-miR-1262、hsa-miR-1263、hsa-miR-1264、hsa-miR-1265、hsa-miR-1266、hsa-miR-1267、hsa-miR-1268、hsa-miR-1269、hsa-miR-1270、hsa-miR-1271、hsa-miR-1272、hsa-miR-1273、hsa-miR-127-3p、hsa-miR-1274a、hsa-miR-1274b、hsa-miR-1275、hsa-miR-127-5p、hsa-miR-1276、hsa-miR-1277、hsa-miR-1278、hsa-miR-1279、hsa-miR-128、hsa-miR-1280、hsa-miR-1281、hsa-miR-1282、hsa-miR-1283、hsa-miR-1284、hsa-miR-1285、hsa-miR-1286、hsa-miR-1287、hsa-miR-1288、hsa-miR-1289、hsa-miR-129*、hsa-miR-1290、hsa-miR-1291、hsa-miR-1292、hsa-miR-1293、hsa-miR-129-3p、hsa-miR-1294、hsa-miR-1295、hsa-miR-129-5p、hsa-miR-1296、hsa-miR-1297、hsa-miR-1298、hsa-miR-1299、hsa-miR-1300、hsa-miR-1301、hsa-miR-1302、hsa-miR-1303、hsa-miR-1304、hsa-miR-1305、hsa-miR-1306、hsa-miR-1307、hsa-miR-1308、hsa-miR-130a、hsa-miR-130a*、hsa-miR-130b、hsa-miR-130b*、hsa-miR-132、hsa-miR-132*、hsa-miR-1321、hsa-miR-1322、hsa-miR-1323、hsa-miR-1324、hsa-miR-133a、hsa-miR-133b、hsa-miR-134、hsa-miR-135a、hsa-miR-135a*、hsa-miR-135b、hsa-miR-135b*、hsa-miR-136、hsa-miR-136*、hsa-miR-137、hsa-miR-138、hsa-miR-138-1*、hsa-miR-138-2*、hsa-miR-139-3p、hsa-miR-139-5p、hsa-miR-140-3p、hsa-miR-140-5p、hsa-miR-141、hsa-miR-141*、hsa-miR-142-3p、hsa-miR-142-5p、hsa-miR-143、hsa-miR-143*、hsa-miR-144、hsa-miR-144*、hsa-miR-145、hsa-miR-145*、hsa-miR-146a、hsa-miR-146a*、hsa-miR-146b-3p、hsa-miR-146b-5p、hsa-miR-147、hsa-miR-147b、hsa-miR-148a、hsa-miR-148a*、hsa-miR-148b、hsa-miR-148b*、hsa-miR-149、hsa-miR-149*、hsa-miR-150、hsa-miR-150*、hsa-miR-151-3p、hsa-miR-151-5p、hsa-miR-152、hsa-miR-153、hsa-miR-154、hsa-miR-154*、hsa-miR-155、hsa-miR-155*、hsa-miR-15a、hsa-miR-15a*、hsa-miR-15b、hsa-miR-15b*、hsa-miR-16、hsa-miR-16-1*、hsa-miR-16-2*、hsa-miR-17、hsa-miR-17*、hsa-miR-181a、hsa-miR-181a*、hsa-miR-181a-2*、hsa-miR-181b、hsa-miR-181c、hsa-miR-181c*、hsa-miR-181d、hsa-miR-182、hsa-miR-182*、hsa-miR-1825、hsa-miR-1826、hsa-miR-1827、hsa-miR-183、hsa-miR-183*、hsa-miR-184、hsa-miR-185、hsa-miR-185*、hsa-miR-186、hsa-miR-186*、hsa-miR-187、hsa-miR-187*、hsa-miR-188-3p、hsa-miR-188-5p、hsa-miR-18a、hsa-miR-18a*、hsa-miR-18b、hsa-miR-18b*、hsa-miR-190、hsa-miR-190b、hsa-miR-191、hsa-miR-191*、hsa-miR-192、hsa-miR-192*、hsa-miR-193a-3p、hsa-miR-193a-5p、hsa-miR-193b、hsa-miR-193b*、hsa-miR-194、hsa-miR-194*、hsa-miR-195、hsa-miR-195*、hsa-miR-196a、hsa-miR-196a*、hsa-miR-196b、hsa-miR-197、hsa-miR-198、hsa-miR-199a-3p、hsa-miR-199a-5p、hsa-miR-199b-5p、hsa-miR-19a、hsa-miR-19a*、hsa-miR-19b、hsa-miR-19b-1*、hsa-miR-19b-2*、hsa-miR-200a、hsa-miR-200a*、hsa-miR-200b、hsa-miR-200b*、hsa-miR-200c、hsa-miR-200c*、hsa-miR-202、hsa-miR-202*、hsa-miR-203、hsa-miR-204、hsa-miR-205、hsa-miR-206、hsa-miR-208a、hsa-miR-208b、hsa-miR-20a、hsa-miR-20a*、hsa-miR-20b、hsa-miR-20b*、hsa-miR-21、hsa-miR-21*、hsa-miR-210、hsa-miR-211、hsa-miR-212、hsa-miR-214、hsa-miR-214*、hsa-miR-215、hsa-miR-216a、hsa-miR-216b、hsa-miR-217、hsa-miR-218、hsa-miR-218-1*、hsa-miR-218-2*、hsa-miR-219-1-3p、hsa-miR-219-2-3p、hsa-miR-219-5p、hsa-miR-22、hsa-miR-22*、hsa-miR-220a、hsa-miR-220b、hsa-miR-220c、hsa-miR-221、hsa-miR-221*、hsa-miR-222、hsa-miR-222*、hsa-miR-223、hsa-miR-223*、hsa-miR-224、hsa-miR-23a、hsa-miR-23a*、hsa-miR-23b、hsa-miR-23b*、hsa-miR-24、hsa-miR-24-1*、hsa-miR-24-2*、hsa-miR-25、hsa-miR-25*、hsa-miR-26a、hsa-miR-26a-1*、hsa-miR-26a-2*、hsa-miR-26b、hsa-miR-26b*、hsa-miR-27a、hsa-miR-27a*、hsa-miR-27b、hsa-miR-27b*、hsa-miR-28-3p、hsa-miR-28-5p、hsa-miR-296-3p、hsa-miR-296-5p、hsa-miR-297、hsa-miR-298、hsa-miR-299-3p、hsa-miR-299-5p、hsa-miR-29a、hsa-miR-29a*、hsa-miR-29b、hsa-miR-29b-1*、hsa-miR-29b-2*、hsa-miR-29c、hsa-miR-29c*、hsa-miR-300、hsa-miR-301a、hsa-miR-301b、hsa-miR-302a、hsa-miR-302a*、hsa-miR-302b、hsa-miR-302b*、hsa-miR-302c、hsa-miR-302c*、hsa-miR-302d、hsa-miR-302d*、hsa-miR-302e、hsa-miR-302f、hsa-miR-30a、hsa-miR-30a*、hsa-miR-30b、hsa-miR-30b*、hsa-miR-30c、hsa-miR-30c-1*、hsa-miR-30c-2*、hsa-miR-30d、hsa-miR-30d*、hsa-miR-30e、hsa-miR-30e*、hsa-miR-31、hsa-miR-31*、hsa-miR-32、hsa-miR-32*、hsa-miR-320a、hsa-miR-320b、hsa-miR-320c、hsa-miR-320d、hsa-miR-323-3p、hsa-miR-323-5p、hsa-miR-324-3p、hsa-miR-324-5p、hsa-miR-325、hsa-miR-326、hsa-miR-328、hsa-miR-329、hsa-miR-330-3p、hsa-miR-330-5p、hsa-miR-331-3p、hsa-miR-331-5p、hsa-miR-335、hsa-miR-335*、hsa-miR-337-3p、hsa-miR-337-5p、hsa-miR-338-3p、hsa-miR-338-5p、hsa-miR-339-3p、hsa-miR-339-5p、hsa-miR-33a、hsa-miR-33a*、hsa-miR-33b、hsa-miR-33b*、hsa-miR-340、hsa-miR-340*、hsa-miR-342-3p、hsa-miR-342-5p、hsa-miR-345、hsa-miR-346、hsa-miR-34a、hsa-miR-34a*、hsa-miR-34b、hsa-miR-34b*、hsa-miR-34c-3p、hsa-miR-34c-5p、hsa-miR-361-3p、hsa-miR-361-5p、hsa-miR-362-3p、hsa-miR-362-5p、hsa-miR-363、hsa-miR-363*、hsa-miR-365、hsa-miR-367、hsa-miR-367*、hsa-miR-369-3p、hsa-miR-369-5p、hsa-miR-370、hsa-miR-371-3p、hsa-miR-371-5p、hsa-miR-372、hsa-miR-373、hsa-miR-373*、hsa-miR-374a、hsa-miR-374a*、hsa-miR-374b、hsa-miR-374b*、hsa-miR-375、hsa-miR-376a、hsa-miR-376a*、hsa-miR-376b、hsa-miR-376c、hsa-miR-377、hsa-miR-377*、hsa-miR-378、hsa-miR-378*、hsa-miR-379、hsa-miR-379*、hsa-miR-380、hsa-miR-380*、hsa-miR-381、hsa-miR-382、hsa-miR-383、hsa-miR-384、hsa-miR-409-3p、hsa-miR-409-5p、hsa-miR-410、hsa-miR-411、hsa-miR-411*、hsa-miR-412、hsa-miR-421、hsa-miR-422a、hsa-miR-423-3p、hsa-miR-423-5p、hsa-miR-424、hsa-miR-424*、hsa-miR-425、hsa-miR-425*、hsa-miR-429、hsa-miR-431、hsa-miR-431*、hsa-miR-432、hsa-miR-432*、hsa-miR-433、hsa-miR-448、hsa-miR-449a、hsa-miR-449b、hsa-miR-450a、hsa-miR-450b-3p、hsa-miR-450b-5p、hsa-miR-451、hsa-miR-452、hsa-miR-452*、hsa-miR-453、hsa-miR-454、hsa-miR-454*、hsa-miR-455-3p、hsa-miR-455-5p、hsa-miR-483-3p、hsa-miR-483-5p、hsa-miR-484、hsa-miR-485-3p、hsa-miR-485-5p、hsa-miR-486-3p、hsa-miR-486-5p、hsa-miR-487a、hsa-miR-487b、hsa-miR-488、hsa-miR-488*、hsa-miR-489、hsa-miR-490-3p、hsa-miR-490-5p、hsa-miR-491-3p、hsa-miR-491-5p、hsa-miR-492、hsa-miR-493、hsa-miR-493*、hsa-miR-494、hsa-miR-495、hsa-miR-496、hsa-miR-497、hsa-miR-497*、hsa-miR-498、hsa-miR-499-3p、hsa-miR-499-5p、hsa-miR-500、hsa-miR-500*、hsa-miR-501-3p、hsa-miR-501-5p、hsa-miR-502-3p、hsa-miR-502-5p、hsa-miR-503、hsa-miR-504、hsa-miR-505、hsa-miR-505*、hsa-miR-506、hsa-miR-507、hsa-miR-508-3p、hsa-miR-508-5p、hsa-miR-509-3-5p、hsa-miR-509-3p、hsa-miR-509-5p、hsa-miR-510、hsa-miR-511、hsa-miR-512-3p、hsa-miR-512-5p、hsa-miR-513a-3p、hsa-miR-513a-5p、hsa-miR-513b、hsa-miR-513c、hsa-miR-514、hsa-miR-515-3p、hsa-miR-515-5p、hsa-miR-516a-3p、hsa-miR-516a-5p、hsa-miR-516b、hsa-miR-517*、hsa-miR-517a、hsa-miR-517b、hsa-miR-517c、hsa-miR-518a-3p、hsa-miR-518a-5p、hsa-miR-518b、hsa-miR-518c、hsa-miR-518c*、hsa-miR-518d-3p、hsa-miR-518d-5p、hsa-miR-518e、hsa-miR-518e*、hsa-miR-518f、hsa-miR-518f*、hsa-miR-519a、hsa-miR-519b-3p、hsa-miR-519c-3p、hsa-miR-519d、hsa-miR-519e、hsa-miR-519e*、hsa-miR-520a-3p、hsa-miR-520a-5p、hsa-miR-520b、hsa-miR-520c-3p、hsa-miR-520d-3p、hsa-miR-520d-5p、hsa-miR-520e、hsa-miR-520f、hsa-miR-520g、hsa-miR-520h、hsa-miR-521、hsa-miR-522、hsa-miR-523、hsa-miR-524-3p、hsa-miR-524-5p、hsa-miR-525-3p、hsa-miR-525-5p、hsa-miR-526b、hsa-miR-526b*、hsa-miR-532-3p、hsa-miR-532-5p、hsa-miR-539、hsa-miR-541、hsa-miR-541*、hsa-miR-542-3p、hsa-miR-542-5p、hsa-miR-543、hsa-miR-544、hsa-miR-545、hsa-miR-545*、hsa-miR-548a-3p、hsa-miR-548a-5p、hsa-miR-548b-3p、hsa-miR-548b-5p、hsa-miR-548c-3p、hsa-miR-548c-5p、hsa-miR-548d-3p、hsa-miR-548d-5p、hsa-miR-548e、hsa-miR-548f、hsa-miR-548g、hsa-miR-548h、hsa-miR-548i、hsa-miR-548j、hsa-miR-548k、hsa-miR-548l、hsa-miR-548m、hsa-miR-548n、hsa-miR-548o、hsa-miR-548p、hsa-miR-549、hsa-miR-550、hsa-miR-550*、hsa-miR-551a、hsa-miR-551b、hsa-miR-551b*、hsa-miR-552、hsa-miR-553、hsa-miR-554、hsa-miR-555、hsa-miR-556-3p、hsa-miR-556-5p、hsa-miR-557、hsa-miR-558、hsa-miR-559、hsa-miR-561、hsa-miR-562、hsa-miR-563、hsa-miR-564、hsa-miR-566、hsa-miR-567、hsa-miR-568、hsa-miR-569、hsa-miR-570、hsa-miR-571、hsa-miR-572、hsa-miR-573、hsa-miR-574-3p、hsa-miR-574-5p、hsa-miR-575、hsa-miR-576-3p、hsa-miR-576-5p、hsa-miR-577、hsa-miR-578、hsa-miR-579、hsa-miR-580、hsa-miR-581、hsa-miR-582-3p、hsa-miR-582-5p、hsa-miR-583、hsa-miR-584、hsa-miR-585、hsa-miR-586、hsa-miR-587、hsa-miR-588、hsa-miR-589、hsa-miR-589*、hsa-miR-590-3p、hsa-miR-590-5p、hsa-miR-591、hsa-miR-592、hsa-miR-593、hsa-miR-593*、hsa-miR-595、hsa-miR-596、hsa-miR-597、hsa-miR-598、hsa-miR-599、hsa-miR-600、hsa-miR-601、hsa-miR-602、hsa-miR-603、hsa-miR-604、hsa-miR-605、hsa-miR-606、hsa-miR-607、hsa-miR-608、hsa-miR-609、hsa-miR-610、hsa-miR-611、hsa-miR-612、hsa-miR-613、hsa-miR-614、hsa-miR-615-3p、hsa-miR-615-5p、hsa-miR-616、hsa-miR-616*、hsa-miR-617、hsa-miR-618、hsa-miR-619、hsa-miR-620、hsa-miR-621、hsa-miR-622、hsa-miR-623、hsa-miR-624、hsa-miR-624*、hsa-miR-625、hsa-miR-625*、hsa-miR-626、hsa-miR-627、hsa-miR-628-3p、hsa-miR-628-5p、hsa-miR-629、hsa-miR-629*、hsa-miR-630、hsa-miR-631、hsa-miR-632、hsa-miR-633、hsa-miR-634、hsa-miR-635、hsa-miR-636、hsa-miR-637、hsa-miR-638、hsa-miR-639、hsa-miR-640、hsa-miR-641、hsa-miR-642、hsa-miR-643、hsa-miR-644、hsa-miR-645、hsa-miR-646、hsa-miR-647、hsa-miR-648、hsa-miR-649、hsa-miR-650、hsa-miR-651、hsa-miR-652、hsa-miR-653、hsa-miR-654-3p、hsa-miR-654-5p、hsa-miR-655、hsa-miR-656、hsa-miR-657、hsa-miR-658、hsa-miR-659、hsa-miR-660、hsa-miR-661、hsa-miR-662、hsa-miR-663、hsa-miR-663b、hsa-miR-664、hsa-miR-664*、hsa-miR-665、hsa-miR-668、hsa-miR-671-3p、hsa-miR-671-5p、hsa-miR-675、hsa-miR-7、hsa-miR-708、hsa-miR-708*、hsa-miR-7-1*、hsa-miR-7-2*、hsa-miR-720、hsa-miR-744、hsa-miR-744*、hsa-miR-758、hsa-miR-760、hsa-miR-765、hsa-miR-766、hsa-miR-767-3p、hsa-miR-767-5p、hsa-miR-768-3p、hsa-miR-768-5p、hsa-miR-769-3p、hsa-miR-769-5p、hsa-miR-770-5p、hsa-miR-802、hsa-miR-873、hsa-miR-874、hsa-miR-875-3p、hsa-miR-875-5p、hsa-miR-876-3p、hsa-miR-876-5p、hsa-miR-877、hsa-miR-877*、hsa-miR-885-3p、hsa-miR-885-5p、hsa-miR-886-3p、hsa-miR-886-5p、hsa-miR-887、hsa-miR-888、hsa-miR-888*、hsa-miR-889、hsa-miR-890、hsa-miR-891a、hsa-miR-891b、hsa-miR-892a、hsa-miR-892b、hsa-miR-9、hsa-miR-9*、hsa-miR-920、hsa-miR-921、hsa-miR-922、hsa-miR-923、hsa-miR-924、hsa-miR-92a、hsa-miR-92a-1*、hsa-miR-92a-2*、hsa-miR-92b、hsa-miR-92b*、hsa-miR-93、hsa-miR-93*、hsa-miR-933、hsa-miR-934、hsa-miR-935、hsa-miR-936、hsa-miR-937、hsa-miR-938、hsa-miR-939、hsa-miR-940、hsa-miR-941、hsa-miR-942、hsa-miR-943、hsa-miR-944、hsa-miR-95、hsa-miR-96、hsa-miR-96*、hsa-miR-98、hsa-miR-99a、hsa-miR-99a*、hsa-miR-99b及hsa-miR-99b*。

miRNA抑制其靶mRNA之功能且由此抑制由mRNA編碼之多肽之表現。因此，阻斷(部分地或完全) miRNA之活性(例如使miRNA沉默)可有效地誘導或恢復表現受抑制之多肽之表現(使多肽去阻抑)。在一實施例中，藉由經由各種方法中之任一者抑制細胞中之miRNA活性來使由miRNA之mRNA靶編碼的多肽去阻抑。舉例而言，可藉由與同miRNA互補或實質上互補之小干擾核酸(例如反義寡核苷酸、miRNA海綿、TuD RNA)雜交來阻斷miRNA之活性，由此阻斷miRNA與其靶mRNA之相互作用。如本文中所使用，與miRNA實質上互補之小干擾核酸係能夠與miRNA雜交且阻斷miRNA活性者。在一些實施例中，與miRNA實質上互補之小干擾核酸係與miRNA在所有(1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17或18個鹼基除外)鹼基處互補之小干擾核酸。在一些實施例中，與miRNA實質上互補之小干擾核酸序列係與具有至少一個鹼基之miRNA互補之小干擾核酸序列。

「miRNA抑制劑」係阻斷miRNA之功能、表現及/或處理之藥劑。舉例而言，該等分子包括(但不限於)抑制miRNA與Drosha複合物之相互作用之微RNA特異性反義物、微RNA海綿、堅韌誘餌RNA (TuD RNA)及微RNA寡核苷酸(雙鏈、髮夾、短寡核苷酸)。微小RNA抑制劑可自rAAV載體之轉基因表現於細胞中，如上文所論述。微小RNA海綿經由互補七聚體晶種序列來特異性抑制miRNA (Ebert, M.S. Nature Methods, Epub，2007年8月12日)。在一些實施例中，可使用單一海綿序列使整個miRNA家族沉默。TuD RNA可有效且長期地抑制哺乳動物細胞中之特定miRNA (例如參見Takeshi Haraguchi等人，Nucleic Acids Research, 2009，第37卷，第6期，e43，該文獻中關於TuD RNA之內容以引用方式併入本文中)。使細胞中之miRNA功能沉默(使miRNA靶去阻抑)之其他方法為熟習此項技術者所明瞭。

在一些實施例中，重組RNA載體之選殖能力可限制期望編碼序列且可能需要完全代替病毒之4.8千鹼基基因體。因此，在一些情形下，大基因可能不適用於標準重組AAV載體。熟習此項技術者應瞭解，業內可提供用於克服有限編碼能力之選擇。舉例而言，可使兩個基因體之AAV ITR退火以形成頭對尾序連體，從而使載體之能力倍增。***剪接位點可自轉錄物去除ITR。用於克服有限選殖能力之其他選擇為熟習此項技術者所明瞭。

投與可根據業內已知之任何適當方法將rAAV以組合物形式遞送至受試者中。可將較佳地懸浮於生理上相容之載劑中(例如呈組合物形式)之rAAV投與受試者(例如宿主動物，例如人類、小鼠、大鼠、貓、狗、綿羊、兔、馬、牛、山羊、豬、天竺鼠、倉鼠、雞、火雞或非人類靈長類動物(例如獼猴))。在一些實施例中，宿主動物不包括人類。

可藉由(例如)肌內注射或藉由投與哺乳動物受試者之血流中來將rAAV遞送至哺乳動物受試者中。可藉由注射至靜脈、動脈或任何其他血管中來投與血流中。在一些實施例中，藉由隔離肢體灌注(手術領域中熟知之技術)之方式來將rAAV投與血流中，該方法基本上能夠使技術人員在投與rAAV病毒體之前即隔離肢體與全身循環。熟習此項技術者亦可採用隔離肢體灌注技術之變化形式(闡述於美國專利第6,177,403號中)來將病毒體投與隔離肢體之血管系統中以潛在地增強肌細胞或組織中之轉導。此外，在某些情況下，可期望將病毒體遞送至受試者之CNS中。「CNS」意指脊椎動物之腦及脊髓之所有細胞及組織。因此，該術語包括(但不限於)神經元細胞、神經膠質細胞、星形細胞、腦脊髓液(CSF)、間質空間、骨、軟骨及諸如此類。可藉由使用業內已知之神經外科技術(例如藉由立體定位注射)利用針、導管或相關器件注射至(例如)心室區及紋狀體(例如紋狀體尾狀核或豆狀核殼)、脊髓及神經肌肉接頭或小腦小葉中來將重組AAV直接遞送至CNS或腦中(例如參見Stein等人，J Virol 73:3424-3429, 1999；Davidson等人，PNAS 97:3428-3432, 2000；Davidson等人，Nat. Genet. 3:219-223, 1993；以及Alisky及Davidson, Hum. Gene Ther. 11:2315-2329, 2000)。

本發明組合物可包含單獨之rAAV或rAAV與一或多種其他病毒(例如編碼(具有)一或多種不同轉基因之第二rAAV)之組合。在一些實施例中，組合物包含1、2、3、4、5、6、7、8、9、10或更多種各自具有一或多種不同轉基因之不同rAAV。

熟習此項技術者可易於根據rAAV所針對之適應症來選擇適宜載劑。舉例而言，一種適宜載劑包括鹽水，其可與各種緩衝溶液(例如磷酸鹽緩衝鹽水)一起調配。其他實例性載劑包括無菌鹽水、乳糖、蔗糖、磷酸鈣、明膠、右旋糖酐、瓊脂、果膠、花生油、芝麻油及水。載劑之選擇並不限制本發明。

視情況，除rAAV及載劑外，本發明組合物亦可含有其他習用醫藥成分(例如防腐劑或化學穩定劑)。適宜實例性防腐劑包括氯丁醇、山梨酸鉀、山梨酸、二氧化硫、沒食子酸丙酯、對羥基苯甲酸酯、乙基香草醛、甘油、苯酚及對氯苯酚。適宜化學穩定劑包括明膠及白蛋白。

足量投與rAAV以轉染期望組織之細胞且提供足夠程度之基因轉移及表現，而無過多不良效應。醫藥上可接受之習用投與途徑包括(但不限於)直接遞送至所選器官中(例如經門靜脈內遞送至肝中)、經口、吸入(包括鼻內及氣管內遞送)、眼內、靜脈內、肌內、皮下、真皮內、腫瘤內、顱內(例如海馬內)及其他非經腸投與途徑。可視需要組合投與途徑。

達成特定「治療效應」所需之rAAV病毒體之劑量(例如以基因體拷貝/公斤體重(GC/kg)形式之劑量單位)將基於若干因素而有所變化，該等因素包括(但不限於)：rAAV病毒體投與途徑、達成治療效應所需之基因或RNA表現程度、所治療之具體疾病或病症及基因或RNA產物之穩定性。基於上文所提及因素以及業內熟知之其他因素，熟習此項技術者可易於確定用以治療患有特定疾病或病症之患者之rAAV病毒體劑量範圍。

rAAV之有效量係足以靶向感染動物、靶向期望組織之量。在一些實施例中，rAAV之有效量係足以產生穩定體細胞轉基因動物模型之量。有效量主要取決於諸如物種、年齡、體重、受試者健康狀況及擬靶向組織等因素，且可由此在動物或組織之間有所變化。舉例而言，rAAV之有效量通常在約1 ml至約100 ml含有約10⁹ 至10¹⁶ 個基因體拷貝之溶液之範圍內。在一些實施例中，以10¹⁰ 、10¹¹ 、10¹² 、10¹³ 、10¹⁴ 或10¹⁵ 個基因體拷貝/受試者之劑量來投與rAAV。在一些實施例中，以10¹⁰ 、10¹¹ 、10¹² 、10¹³ 或10¹⁴ 個基因體拷貝/kg之劑量來投與rAAV。在一些情形下，介於約10¹¹ 至10¹² 個rAAV基因體拷貝之間之劑量較為適當。在某些實施例中，10¹² 個rAAV基因體拷貝可有效靶向心臟、肝及胰臟組織。在一些情形下，藉由多個劑量之rAAV來產生穩定轉基因動物。

在一些實施例中，調配rAAV組合物以減少AAV顆粒在組合物中之聚集，尤其在存在高rAAV濃度(例如約10¹³ GC/ml或更高)之情形下。減少rAAV聚集之方法在業內已眾所周知且包括(例如)添加表面活性劑、pH調節、鹽濃度調節等(例如參見Wright FR等人，Molecular Therapy (2005) 12, 171-178，其內容以引用方式併入本文中)。

醫藥上可接受之賦形劑及載劑溶液之調配為熟習此項技術者所熟知，且熟知用於在各種治療方案中使用本文所闡述之特定組合物之適宜投藥及治療方案之研發。

通常，該等調配物可含有至少約0.1%或更多之活性化合物，但活性成分之百分比當然可有所變化且可便利地介於總調配物之重量或體積之約1%或2%與約70%或80%之間(或更高)。自然地，活性化合物在每一治療有用性組合物中之量可經準備以使得將以該化合物之任何既定單位劑量獲得適宜劑量。熟習製備該等醫藥調配物之技術者應考慮諸如溶解性、生物可用性、生物半衰期、投與途徑、產物儲放壽命以及其他藥理學考慮等因素，且由此可期望各種劑量及治療方案。

在某些情況下，期望以本文所揭示之適當調配之醫藥組合物形式藉由以下方式來遞送基於rAAV之治療構築體：經皮下、經胰臟內、經鼻內、非經腸、經靜脈內、經顱內(例如經海馬內)、經肌內、經鞘內或經口、經腹膜腔內或藉由吸入。在一些實施例中，可使用如美國專利第5,543,158號、第5,641,515號及第5,399,363號(其全部內容各自以引用方式特定地併入本文中)中所闡述之投與方式來遞送rAAV。在一些實施例中，較佳投與模式係藉由門靜脈注射。

適用於可注射應用之醫藥形式包括無菌水溶液或分散液及用於臨時製備無菌可注射溶液或分散液之無菌粉末。分散液亦可在甘油、液體聚乙二醇及其混合物中及在油中製備。在普通儲存及使用條件下，該等製劑含有防腐劑以防止微生物生長。在許多情形下，該形式無菌且為存在容易可注射性之流體程度。其必須在製造及儲存條件下穩定且必須針對諸如細菌及真菌等微生物之污染作用進行防腐。載劑可為溶劑或分散液培養基，其含有(例如)水、乙醇、多元醇(例如甘油、丙二醇及液體聚乙二醇以及諸如此類)、其適宜混合物及/或植物油。可藉由(例如)以下方式來維持適當流動性：使用諸如卵磷酯等包衣，在分散液情形下維持所需粒徑，及使用表面活性劑。可藉由各種抗細菌劑及抗真菌劑(例如對羥基苯甲酸酯、氯丁醇、苯酚、山梨酸、硫柳汞及諸如此類)來防止微生物作用。在許多情形下，將較佳包括等滲劑，例如糖或氯化鈉。可藉由在組合物中使用吸收延遲劑(例如單硬脂酸鋁及明膠)來實現可注射組合物之延長吸收。

為投與可注射水溶液，舉例而言，可視需要適宜地將溶液加以緩衝，且液體稀釋劑首先致使與足夠鹽水或葡萄糖等滲。該等特定水溶液尤其適於靜脈內、肌內、皮下及腹膜腔內投與。就此而言，可採用之無菌水性培養基為熟習此項技術者所已知。舉例而言，可將一個劑量溶於1 ml等滲NaCl溶液中且添加至1000 ml皮下灌注液中或在所提出之輸注位點處注射(例如參見「Remington's Pharmaceutical Sciences」，第15版，第1035-1038及1570-1580頁)。端視宿主狀況，必然發生一定之劑量變化。在任何情況下，投與負責人將確定用於個別宿主之適當劑量。

無菌可注射溶液係藉由以下方式進行製備：將所需量之活性rAAV納入視需要具有本文所列舉各種其他成分之適當溶劑中，隨後過濾滅菌。通常，藉由將各種經滅菌活性成分納入含有基本分散介質及來自上文所列舉者之所需其他成分之無菌媒劑中來製備分散液。在使用無菌粉末來製備無菌可注射溶液之情形下，較佳製備方法係真空乾燥及冷凍乾燥技術，此自預先經無菌過濾之溶液產生具有活性成分加上任何其他期望成分之粉末。

本文所揭示之rAAV組合物亦可調配成中性或鹽形式。醫藥上可接受之鹽包括酸加成鹽(與蛋白質之游離胺基形成者)及與無機酸(例如鹽酸或磷酸)或有機酸(例如乙酸、草酸、酒石酸、苦杏仁酸及諸如此類)形成者。使用游離羧基形成之鹽亦可源自諸如氫氧化鈉、氫氧化鉀、氫氧化銨、氫氧化鈣或氫氧化鐵等無機鹼或諸如異丙胺、三甲胺、組胺酸或普魯卡因(procaine)及諸如此類等有機鹼。在調配後，將以與劑量調配物相容之方式並以治療有效之量來投與溶液。易於以各種劑型來投與調配物，例如可注射溶液、藥物釋放膠囊及諸如此類。

如本文中所使用，「載劑」包括任何及所有溶劑、分散介質、媒劑、包衣、稀釋劑、抗細菌及抗真菌劑、等滲及吸收延遲劑、緩衝劑、載劑溶液、懸浮液、膠體及諸如此類。用於醫藥活性物質之該等介質及試劑之使用在業內已眾所周知。亦可將補充活性成分納入組合物中。片語「醫藥上可接受」係指分子實體及組合物在投與宿主時不會產生過敏性或類似不利反應。

可使用遞送媒劑(例如脂質體、奈米膠囊、微粒、微球體、脂質粒子、囊泡及諸如此類)將本發明組合物引入適宜宿主細胞中。特定而言，經rAAV載體遞送之轉基因可經調配以囊封於脂質粒子、脂質體、囊泡、奈米球或奈米粒子或諸如此類中之形式來遞送。

該等調配物可較佳用於引入本文所揭示之核酸或rAAV構築體之醫藥上可接受之調配物。脂質體之形成及使用通常為熟習此項技術者所已知。最近，研發具有改良之血清穩定性及循環半衰期之脂質體(美國專利第5,741,516號)。另外，已闡述脂質體及類似脂質體之製劑作為有潛力之藥物載劑之各種方法(美國專利第5,567,434號、第5,552,157號、第5,565,213號、第5,738,868號及第5,795,587號)。

脂質體已成功地與諸多通常抵抗其他程序之轉染之細胞類型一起使用。另外，脂質體並無基於病毒之遞送系統之典型DNA長度限制。脂質體已有效地用於將基因、藥物、放射性治療劑、病毒、轉錄因子及異位效應物引入各種培養細胞系及動物中。另外，已經完成若干檢驗脂質體調介性藥物遞送之有效性之成功臨床試驗。

脂質體係由分散於水性介質中且自發形成多層同心雙層囊泡(亦稱為多層囊泡(MLV))之磷脂形成。MLV通常具有25 nm至4 µm之直徑。對MLV進行超音波處理可形成單層小囊泡(SUV)，該等單層小囊泡之直徑在200 .ANG.至500 .ANG.之範圍內且在核心中含有水溶液。

或者，可使用rAAV之奈米膠囊調配物。奈米膠囊通常可以穩定且再現之方式囊封物質。為避免因細胞內聚合物過載而產生之副效應，應使用能夠在活體內降解之聚合物來設計該等超細顆粒(大小約為0.1 μm)。考慮使用符合該等需求之生物可降解聚烷基-氰基丙烯酸酯奈米顆粒。

除上述遞送方法外，亦考慮使用下列技術作為將rAAV組合物遞送至宿主中之替代方法。已使用超音促滲法(亦即超音波)且在美國專利第5,656,016號中闡述用於增強藥物滲透進入且超過循環系統之速率及效能之器件。所考慮之其他藥物遞送替代方式係骨內注射(美國專利第5,779,708號)、微晶片器件(美國專利第5,797,898號)、眼部調配物(Bourlais等人，1998)、經真皮基質(美國專利第5,770,219號及第5,783,208號)及反饋受控遞送(美國專利第5,697,899號)。

實例實例 1 作為安全及可靠之基因遞送媒劑，重組腺相關病毒(rAAV)最近已在人類基因療法領域內引起一定關注。AAV2當前最常用於臨床前及臨床研究中。然而，基於AAV2之藥物盧克特納(Luxturna)係唯一經FDA批準之基於病毒之生物治療劑，因此改良AAV之醫藥性質至關重要。

AAV2已知係載體產生之「較差產生者」且在許多組織及細胞類型中「表現不佳」。分離具有改良性質之病毒變體。

將名為AAVv66之變體鑑別為臨床胰臟贅瘤試樣中之最豐富之前病毒蛋白殼變體。AAVv66蛋白殼含有13個不同於AAV2之殘基(相對於AAV2之突變包括：K39Q、V151A、R447K、T450A、Q457M、S492A、E499D、F533Y、G546D、E548G、R585S、R588T及A593T)。該變體在顱內(例如顱下)注射後於CNS中展現有益向性。另外，AAVv66顯示優於原型AAV2之包裝效率。使用差示掃描螢光法(DSF)觀察到，在跨越pH4 - pH7之pH範圍內，AAVv66之熔融溫度高於AAV2約6℃。另外，DSF分析展示，在pH4下，AAVv66在高於AAV2之溫度下清除其載體DNA。

亦觀察到，相對於AAV2，AAVv66賦予優良之CNS轉導。2.9Å解析度下之低溫EM結構揭示AAV2與AAVv66之間在3重突出處及在5重對稱軸之界面處的結構差異，從而指示該等位置處之殘基改良了載體轉導之穩定性及功能。

實例 2 作為有效及證實之基因療法載體，AAV最近已引起關注。當前種類之AAV載體賦予穩定之長期基因表現，具有寬範圍之組織向性，且展現相對較低之病原性。迄今為止，三種血清型蛋白殼(AAV1、AAV2及AAV9)已獲得在商業上用於患者中之監管批准。不幸的是，所發現及改造之AAV蛋白殼之當前庫不足以用於需要靶向特定組織或細胞類型之某些臨床應用。另外，患者可經由中和抗體對載體具有預存在免疫性，此會限制治療效能。另外，已知某些蛋白殼會在標準產生方案下存在問題，從而無法生成滿足治療劑量所需之高產量效價。因應於該等缺點，需要尋找及研發展現較佳載體產量、可逃避先天性免疫性且擁有獨特向性特徵之新穎蛋白殼。

此實例闡述蛋白殼蛋白變體AAVv66 (SEQ ID NO: 1)，該變體係藉由高通量單分子實時(SMRT)定序所鑑別且其性質實質上不同於AAV2之性質(儘管具有高(98%)序列類似性)。首先，與原型AAV2相比，AAVv66展現較佳之載體產量且更為熱穩定。其次，在藉由顱內注射投與時，AAVv66在腦組織內具有較佳分佈。最後，AAVv66在抗原性上不同於AAV2。

為更佳地理解AAVv66與AAV2之不同之處，實施低溫電子顯微術(低溫EM)以探索定義AAVv66之結構及功能特性。AAVv66蛋白殼之2.5-Å解析度結構揭示了與AAV2結構之差異且可瞭解蛋白殼之功能性質。總而言之，該等觀察闡述了AAVv66之機制性質。

材料及方法 DNA 提取在腫瘤切除術後自71歲女性患者獲取胰臟贅瘤試樣且藉由冷凍切片檢驗及手術中冷凍切片診斷來分析組織病理學。將試樣儲存於液氮中直至DNA提取。為避免AAV DNA交叉污染，在經UV輻照之無菌生物安全櫃中實施DNA提取及PCR程序。使用DNA-Exitus Plus (Applichem，目錄號：A7089)噴塗所有表面及設備並在15分鐘之後使用milli-Q水擦拭乾淨。然後將冷凍組織在室溫下解凍，使用可棄式解剖刀迅速切割至約25 mg之組織並置於2 mL管中。根據製造商推薦程序使用QIAamp DNA Mini套組(Qiagen，第51306號)自組織提取DNA。

SMRT 定序藉由標準PCR程序自基因體DNA生成擴增子庫。為擴增AAV基因體，使用Platinum™ PCR SuperMix High Fidelity (Invitrogen)利用下列循環條件來實施PCR：在97℃下1 min，46個循環之98℃/10 s，在60℃下15 s，且在68℃下2 min 30 s；且在68℃下10min。使用PureLink™ PCR純化套組(Thermo Fisher)凝膠純化正確大小之PCR產物且用於第二輪15循環PCR以供條碼化。所用引子對如下：第一輪引子：CapF 5’-GACTGCATCTTTGAACAATAAATGA-3’ (SEQ ID NO: 3)及CapR 5’-GAAACGAATTAACCGGTTTATTGATTAA-3’ (SEQ ID NO: 4) 第二輪引子：EF 5’-CATCACTACGCTAGATGACTGCATCTTTGAACAATAAATGA-3’ (SEQ ID NO: 5)及ER 5’-TAGTATATCGAGACTCGAAACGAATTAACCGGTTTATTGATTAA-3’ (SEQ ID NO: 6) 對代表蛋白殼變體ORF之擴增子實施標準SMRT定序庫生成。在RSII平臺上實施定序。SMRT定序使用BWA-MEM演算法返回17,727個映射於AAV2 Cap ORF之DNA讀段。為排除人造序列，然後篩選讀段以排除長度小於1,800 nt且大於2,500 nt者，且然後針對讀段品質進行篩選(費力德分數(Phred score) ＞30)。此篩選將讀段減少至14,500。最後，經由InDelFixer處理讀段以去除可源自易錯PCR或定序誤差之單一核苷酸***及缺失。為僅考慮獨特蛋白殼序列且排除低置信度變體，對經篩選讀段實施重新組裝(Geneious R9)以群集具有99%序列類似性之讀段。僅由至少10個讀段代表之讀段簇可視為獨特DNA蛋白殼序列。然後將DNA序列轉譯成胺基酸序列以定義獨特AAV蛋白殼之最終清單。

自NCBI獲得來自當前AAV血清型(用於AAV2/3之hu.2)之完整AAV Cap ORF且使用MUSCLE演算法比對預測胺基酸序列，迭代直至達到收斂為止。然後使用PhyML且使用來自SeaView55內之預設參數生成系統發生樹，且然後經由Life在線工具之交互式樹進行觀察。

病毒載體產生 使用三重轉染方法在HEK293細胞中產生病毒並藉由CsCl梯度離心進行純化。使用表現增強型綠色螢光蛋白之自我互補性AAV載體(scAAV-CB6-EGFP)、表現螢火蟲螢光素酶之單鏈載體(ssAAV-CB6-Fluc)、表現分泌性人類α1-抗胰蛋白酶之單鏈載體(ssAAV-CB6-hA1AT)或表現LacZ之單鏈載體來包裝所闡述之所有載體。所有轉基因皆係由CMV早期增強子/雞β肌動蛋白(CB6)普遍性啟動子驅動。

動物藉由經靜脈內(IV)、經肌內(IM)或經顱內投與來向6至8週齡雄性C57BL/6J小鼠(Jackson實驗室)注射測試載體。向實施靜脈內注射之小鼠投與經ssAAV-CB6-Fluc轉基因包裝之載體(1.0E11 vg/小鼠)，且在注射後第14天處死小鼠。向實施肌內注射(TA肌肉)之小鼠投與經ssAAV-CB6-Fluc轉基因包裝之載體(4.0E10 vg/小鼠)，且在注射後第28天處死小鼠。每週且直至處死時，經腹膜腔內向動物注射D-螢光素受質並使用異氟醚進行鎮靜，且使用IVIS SpectrumCT成像平臺在1 min暴露下量化螢光素酶活性。使用Living Image軟體獲取影像。向實施海馬內注射之小鼠投與經scAAV-CB6-Egfp轉基因包裝之載體(3.6E9 vg/小鼠)。在右半球中使用立體定位架(Stoelting Co. Wood Dale, IL)、漢密爾頓注射器(Hamilton Syringe) (1207K95, Thomas Scientific)及漢密爾頓針(Hamilton Needle) (77602-06, Hamilton)來實施單側注射。使用下列相對座標進行所有海馬內注射：x: -1.5mm, y: -2mm, z: -2mm。

免疫染色 在注射後4週，向動物穿心灌注1X磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)，隨後灌注4%低聚甲醛(PFA)。提取腦且隨後在4℃下於4% PFA中固定過夜。然後將腦在4℃下浸漬於30%蔗糖(製備於1X PBS中)中，直至平衡於蔗糖混合物中為止。將腦包埋於1:2 OCT (Tissue Tek, Torrance, CA)及30%蔗糖混合物中，並以40 µm低溫切片(Cryostar NX70, ThermoScientific, Waltham, MA)。將切片在0.5% TritonX-100中滲透1 hr，在5%山羊血清(10%正常山羊血清，50062Z, Life Technologies)中阻斷1 hr，且然後在4℃下於一級抗體(抗NeuN, 1:1000, EMD Millipore MAB377；抗Gfap, 1:500, EMD Millipore MAB360；抗Olig2, 1:200, Abcam ab109186；抗Iba1, 1:1000, Wako Chemicals NC9288364)中培育過夜。將切片在1X PBS中洗滌三次並在室溫下於二級抗體(抗小鼠，Invitrogen A32744；或抗兔，Invitrogen A32740)中培育1小時。將切片在1X PBS中洗滌三次並加載含有DAPI之Vectashield (Vector實驗室，Burlingame, CA)。

顯微術 在Leica SP8 Lightning High Resolution Confocal (Leica Microsystems, Wetzlar, Germany)上獲取腦切片影像。針對每一各別放大率，在相同強度及暴露臨限值下收集整體腦影像(10X平鋪腦切片)及高放大率影像(63X區域特異性區)。對於高放大率影像而言，以0.29 z-大小收集40-50個z-堆疊步階。使用Imaris 9.3軟體(Bitplane Inc., Zurich, Switzerland)實施分析。對每一影像進行3D渲染且人工確立臨限值。為確保一致性，使用與DAPI體積及細胞類型特異性染色劑共定位之總子解剖EGFP體積之無偏3D渲染來代表細胞計數及陽性轉導細胞數。量化每一同側子解剖區內之不同細胞類型之百分比，隨後量化每一細胞類型之百分比。藉由將共定位EGFP體積正規化至每一區域內進行細胞類型特異性染色之總體積來測定轉導百分比。根據細胞特異性染色，分析n =3隻小鼠。在Prism 7 (GraphPad Software, Inc., San Diego, CA)中實施圖2B之統計學計算且使用司徒登氏未配對t測試實施分析。

DSF 分析在蛋白殼穩定性實驗中，將5 µL SYPRO Orange 5000X (Thermo Fisher Scientific)稀釋於495 µL PBS (Corning)中以製備50X儲備液。混合45 µL病毒與5 µL 50X SYPRO Orange (最終SYPRO Orange濃度為5X)。使用ViiA 7實時PCR儀器(Thermo Fisher Scientific)利用下列參數來量化螢光：將試樣在25℃下培育2 min，隨後施加溫度梯度(25℃至99℃，每一步階0.4℃且在每一步階保持2 min)。為監測每一溫階處之SYPRO Orange之螢光，使用並無無源參考之ROX濾波器。為探究pH對AAV載體之熔融溫度之效應，混合5 µL病毒載體、5 µL 50X SYBR Orange及40 µL 0.6M乙酸鹽緩衝液(pH自pH7調節至pH4)。此研究中所報告之Tm值定義為在25℃與95℃之間檢測之最大Dsignal/Dtemp。為探究載體基因體釋放，將SYBRO Orange染料更換為SYBR Gold (Thermo Fisher Scientific)。

定點誘變 為在AAVv66蛋白殼ORF中生成點突變，使用Q5定點誘變套組(New England Biolabs)及下列誘變引子對：表1：

AAVv66 中之突變	F. 引子 ( 小寫字母 = 突變鹼基 ) (SEQ ID NO: 7-19)	R. 引子(SEQ ID NO: 20-32)
Q39K	AGAGCGGCATaagGACGACAGCA	GCGGGCTTTGGTGGTGGT
A151V	GCATTCTCCTgtgGAGCCAGACT	TCTACCGGCCTCTTTTTTCC
K447R	TTACTTGAGCagaACAAACGCTC	TACAGATACTGGTCGATC
A450T	CAAAACAAACactCCAAGCGGAAC	CTCAAGTAATACAGATACTGG
M457Q	AACCACCACGcagTCCAGGCTTC	CCGCTTGGAGCGTTTGTT
A492S	ATCAAAAACAtctGCGGATAACAACAACAGTG	ACTCGCTGCTGGCGGTAA
D499E	CAACAACAGTgaaTATTCGTGGAC	TTATCCGCAGCTGTTTTTG
Y533F	TGAAGAAAAAtttTTTCCTCAGAGCGGGGTTC	TCGTCCTTGTGGCTGGCC
D546G	TGGAAAACAAggcTCGGGAAAAA	AAGATGAGAACCCCGCTC
G548E	ACAAGACTCGgagAAAACTAATGTG	TTTCCAAAGATGAGAACC
S585R	CAACCTCCAGagaGGCAACACAC	GTAGATACAGAACCATACTGCTC
T588R	GAGCGGCAACagaCAGGCAGCCA	TGGAGGTTGGTAGATACAGAACCATACTG
T593A	GGCAGCCACCgcaGATGTCAACA	TGTGTGTTGCCGCTCTGG

低溫 EM 將AAVv66準備於具有蕾絲碳支撐膜之柵格(01824G, Ted Pella, Inc.)上用於低溫EM。首先，將柵格用乙酸乙醯基酯洗滌並乾燥過夜。接下來，在PELCO easiGlow輝光放電單元中使用具有負極性之20 mA電流將柵格輝光放電60 sec。將3 µL於緩衝液(於PBS中之5%山梨醇、0.001%普羅尼克酸(pluronic acid) F68)中之1E13 vg/mL AAVv66-CB6-Egfp載體置於加載於Vitrobot Mark IV (ThermoFisher)低溫EM下沖裝置之柵格上。使用Whatman 1號濾紙將柵格在10℃及95%相對濕度下印漬6至6.5秒，然後在液體乙烷中快速冷凍。

使用SerialEM在Titan Krios電子顯微鏡(FEI)上收集由2,033個影片組成之資料組，該電子顯微鏡使用0.5-2.2 µm弱焦點、在300 kV下操作且配備有Gatan影像濾波器(GIF)及K2 Summit直接電子檢測器(Gatan Inc.)。每一影片收集50個圖框，且以1.43 e-/Å2/框使用34個圖框以在試樣上達成48.62 e-/Å2之總劑量。試樣上之像素大小為1.0588 Å。將影片輸入至cisTEM中並與劑量篩選進行比對，且測定CTF參數。接下來，將總共52,874個顆粒自動挑選至cisTEM內(特徵性半徑及最大半徑：130 Å及140 Å)。應注意，使用囊封載體轉基因之顆粒及較小百分比之空蛋白殼來確定最終結構。在cisTEM內，使用Ab initio 3D重建函數自所有顆粒生成用於比對之初始參考。使用自動精修迭代精修此參考及所有顆粒以獲得2.95-Å解析度圖，如自0.143之FSC_part截止值所測定。以手動模式進行一輪每顆粒CTF精修可將圖解析度改良至2.62 Å。最後，進行一輪光束傾斜精修及重建可將圖解析度改良至2.46 Å。3D分類並不改良圖。藉由應用-32.92 Å2之B因子使用PHENIX自動銳化函數來對最終圖進行B因子銳化。

使用AAV2 (PDB ID: 1LP3)之低溫EM結構作為結構精修之起始模型。使用PyMOL (The PyMOL Molecular Graphics System，第2.0版，Schrödinger, LLC.)對變體殘基建模。使用PHENIX59針對低溫EM圖精修含有60個VP3拷貝之所得AAVv66模型。PHENIX中之實空間模擬退火及B因子精修會產生立體化學最佳之模型。精修結果匯總於表2中。檢查模型，且使用PyMOL製圖。

將載體稀釋至濃度為約1.0E9 vg/mL以使用Zetasizer Nano ZS系統(Malvern)進行ζ電位分析。將500 µL試樣添加至通用浸式單元(Malvern)中。在量測之前，使系統穩定2 min。每一試樣記錄三個量測值。表2低溫 EM 數據收集、精修及驗證統計學

#1名稱(EMDB-20630) (PDB 6U3Q)
數據收集及處理
放大率	47,214
電壓(kV)	300
電子暴露(e-/A² )	48.62
散焦範圍(μm)	0.4-5.0
像素大小(A)	1.059
施加對稱性	I
初始顆粒影像(數量)	52,874
最終顆粒影像(數量)	52,874
圖解析度(A)	2.46
FSC臨限值	0.143
精修
所用初始模型(PDB代碼)	1LP3
模型解析度(A)	Z6
FSC臨限值	0.5
圖銳化B因子 (A² )	32.92
模型組成
非氫原子	248,280
蛋白質殘基	31,140
配體	0
B因子(A² )
蛋白質	86.48
配體	0
r.m.s.偏差
鍵長(Å)	0.009
鍵角(°)	0.603
驗證
MolProbity分數	1.66
Clashscore	2.25
較差旋轉異構體(%)	4.15
Ramachandran繪圖
有益 (%)	96.91
容許(%)	4.15
不容許(%)	0.00

免疫學研究 將1.0E11 vg/小鼠之scAAV-CB6-Egfp經肌內投與C57BL/6J小鼠之左/右脛骨前肌中。4週後，將1.0E11 vg/小鼠之ssAAVv66-CB6-hA1AT或ssAAV2-CB6-hA1AT遞送至對側腿中。在第4、5、6、7及8週藉由面靜脈採血收集血清以藉由ELISA評價中和抗體效價及A1AT含量。

在轉導之前24 hr，將Huh-7.5 (5.0E4細胞/孔)在37℃下接種於96孔板上。然後以100:1之感染複數(MOI)將Ad輔助病毒添加至細胞單層中並培育至少一小時。在V形底96孔板中製備血清及ssAAV2-LacZ或ssAAVv66-LacZ混合溶液之連續稀釋液並在37℃下培育1 hr。然後將血清-AAV混合溶液添加至細胞中並在37℃下培育24 hr。溶解細胞並利用β-半乳糖苷酶受質使用Galacto-Star一步分析系統(Invitrogen)進行處理。藉由Synergy HT微量板讀數儀(BioTek, Winooski, VT)檢測發光信號。

A1AT ELISA 首先使用抗A1AT抗體在4℃下塗覆96孔板過夜，且將孔與阻斷緩衝液(於PBS緩衝液中之1%非脂乳及0.05% Tween-20)在室溫下一起培育1 hr。在96孔板中使用試樣緩衝液(於PBS緩衝液中之0.05% Tween-20)以及陽性對照(100、50、25、12.5、6.25及3.125 ng/mL A1AT)實施1/20、1/200及1/2,000血清稀釋。在將板洗滌3次之後，將血清添加至每一孔中並在4℃下培育過夜。然後將板洗滌3次並與山羊抗胰蛋白酶-HRP抗體(於試樣緩衝液中之1:5,500稀釋液)一起培育2 hr。在與受質反應之前，將板洗滌6次以去除所有殘餘蛋白質。最後，將ABTS受質添加至孔中且藉由Synergy HT微量板讀數儀(BioTek)讀取信號。

藉由長讀段定序來鑑別人類組織試樣中之新穎 AAV 變體為鑑別來自人類組織之新穎全長蛋白殼序列，實施SMRT定序以獲得跨越整個蛋白殼開放閱讀框之長DNA讀段(圖1A)。此方法可解析長DNA片段序列，而無需進行短讀段定序方式中所需之序列組裝。以此方式，可針對跨越整個蛋白殼ORF之個別完整分子評價由點突變及重組事件定義之蛋白殼多樣性。為探索AAV多樣性，自約800個人類手術試樣選擇單一組織。使用在已知血清型中以保守序列側接於蛋白殼ORF之引子，產生靶PCR擴增子以供SMRT定序分析。分離由自單一組織所鑑別所有序列之約45%構成之一個蛋白殼序列(圖1B)。名為「變體66」之此主要蛋白殼(AAVv66)與AAV2展現最接近之同源性(98%序列類似性；圖1C-1D)。據觀察，AAVv66含有13個不同於AAV2之胺基酸殘基(圖1C及圖8)：一個位於VP1u區域內(K39Q)，一個位於VP2結構域內(V151A)，且11個位於VP3內(R447K、T450A、Q457M、S492A、E499D、F533Y、G546D、E548G、R585S、R588T及A593T)。值得注意地，VP3內之獨特胺基酸殘基皆位於可變區VR-IV至VR-VIII內或靠近該等區域。

將AAVv66之VP3區域與其他當前AAV血清型(AAV1-AAV9)之彼等區域進行比較。最顯著差異出現於4個位置(499、533、585及588)處，該等位置在AAV血清型中高度保守(圖8)。在位置499處，大部分血清型含有天門冬醯胺酸，而AAVv66、AAV2、AAV4及AAV9具有帶負電之天門冬胺酸或麩胺酸。位置533處之高度保守之苯基丙胺酸在AAVv66中變為酪胺酸(在AAV5中亦為T533)。最後，不同於AAV2 (其在位置585及58823處含有定義AAV2結合硫酸乙醯肝素蛋白多糖(HSPG)之能力之帶正電精胺酸殘基)，AAVv66含有S585及T588 (與AAV1、AAV3、AAV5及AAV6相同)。

AAVv66 載體產生及細胞感染性與 AAV2 之彼等不同 AAV2對肝素之強親和力及其所得強細胞表面締合預計會導致病毒之包裝效價相對較差。據信，AAV2之有限載體產量源自在產生期間載體顆粒對包裝細胞之非生產性結合及再感染。對AAVv66之載體產生及細胞感染性與AAV2及AAV3b之彼等進行比較。應注意，AAV3b係最接近AAV2之獨特表親(89%序列類似性)，但在3重突出處使用不同靜電表面電荷以弱結合肝素。AAV3b與AAV2之間之此差異可能闡釋AAV3b在HEK生產細胞轉導中之增加之包裝效價。

藉由量測細胞溶解物中之衣殼化載體基因體產量來比較AAVv66之包裝特徵與AAV2及AAV3b之彼等。為此，合成AAVv66蛋白殼ORF並選殖至在AAV2 p5啟動子下表現AAV2 Rep之反式質體中(pAAV2/v66)。使用AAVv66、AAV2及AAV3b之小規模載體製劑來包裝由藉由普遍性雞-β肌動蛋白啟動子驅動之螢火蟲螢光素酶轉基因(AAV-CB6-Fluc)組成之單鏈載體。藉由粗製溶解物qPCR29量化病毒載體產量揭示，AAVv66載體之衣殼化DNase抗性基因體之產量係AAV2產量之約2.4倍且高於AAV3b產量約30% (圖9，「組合」試樣)。

接下來探究AAVv66在粗製溶解物中之較高豐度是否係由顆粒與包裝細胞之非生產性結合所致，該非生產性結合表現為AAVv66顆粒在培養基中而非在細胞溶解物部分中佔優勢。PCR分析揭示，培養基內之衣殼化AAVv66基因體之豐度係細胞溶解物中之約3倍(圖9)。與之相比，在包裝細胞之培養基中檢測到極少AAV2顆粒。為測試AAVv66產生較大DNase抗性之基因體之能力是否與包裝細胞由較差HSPG結合所致之弱再感染性相關，實施肝素競爭分析(圖10)。出於此目的，使用標準氯化銫純化方案產生同樣包裝CB6-Fluc之大規模AAVv66及AAV2載體。AAVv66轉導不受肝素之存在影響，而1.25 µg/孔之肝素會將AAV2轉導阻斷50%且5 µg/孔之肝素則完全消除轉導。該等結果指示，AAVv66之改良之產生效率至少部分地源於較差肝素結合。

為測定AAVv66與AAV2相比對肝素之較低親和力是否與較小細胞轉導有關，使用經純化AAVv66、AAV2及AAV3b載體來感染HEK293細胞。數據指示，AAV2所展現之轉導大於AAVv66 (約65倍)及AAV3b (約7.5倍) (圖11)。載體化AAVv66前病毒蛋白殼序列能夠有效地在活體外轉導細胞，但其載體產生及細胞感染性性質與其最接近血清型親戚AAV2之彼等不同。

AAVv66 展現不同於 AAV2 之 CNS 轉導經由不同投與途徑測試AAVv66轉導所選靶組織之能力。為此，在小鼠中經由多個遞送途徑評價AAVv66之生物分佈(圖12A-13D)。在所測試之所有途徑中，在經顱內遞送至中樞神經系統(CNS)之靶細胞中後，AAVv66之轉導特徵最為顯著(圖2A-2D)。為測定AAVv66是否相對於AAV2在CNS中具有增加之向性，將由普遍性雞-β肌動蛋白啟動子驅動之Egfp轉基因包裝至AAVv66及AAV2蛋白殼中。以3.6E9 vg/動物之劑量將載體單側注射至海馬體之右半球中。在注射後4週，經處理腦之低溫切片展示，AAVv66所轉導之CNS細胞係AAV2之約13倍，如藉由遍及組織之增強之擴散所證實，而AAV2往往保持局部化至注射位點(圖2A-2B)。注射位點之對側區之高放大率成像展示，腦之所有子解剖區(海馬角[CA1、CA2、CA3及CA4]、齒狀回及胼胝體，圖2C)皆展現可檢測之EGFP表現含量(圖2D)，從而指示AAVv66可有效地擴散至整個海馬體半球中。

探究由AAVv66轉導之特定細胞類型。使用細胞類型特異性標記物抗NEUN (神經元)、抗GFAP (星形細胞)、抗IBA1 (小神經膠質細胞)及抗OLIG2 (寡突膠質細胞)實施抗體染色(圖3A、3E、3I及3M)。子解剖CNS區域之3D體積重建證實，EGFP表現與每一所探究細胞類型共定位(圖3B、3J、3F、3N)。神經元係發現於皮質及CA1區域中之主要細胞類型(圖3C)。有趣的是，CA2-4區域及齒狀回展現最大轉導(約20-40%)。星形細胞及小神經膠質細胞共有類似分佈模式，亦即在齒狀回中展示最高富集(圖3G及3K)。星形細胞在所有區域中展示大約1-7%之轉導(圖3H)，而小神經膠質細胞展現略高之轉導效率(2-12%) (圖3L)。寡突膠質細胞富集於胼胝體中(圖3O)且在所有區域中由AAVv66轉導大約1-7% (圖3P)。該等數據指示，在海馬內注射後，AAVv66可轉導CNS之所有主要細胞類型。

AAVv66 在血清學上與 AAV2 不同 AAV由宿主免疫系統中和係AAV載體轉導效能之主要限制因素。針對用作治療載體中之蛋白殼之AAV血清型含有預存在抗體之個體處於發生不良效應及無效治療的較大風險下。另外，需要重複投與AAV基因療法之患者冒著具有較差轉導效率及較強免疫反應之風險，從而需要替代載體。

探究AAVv66轉導是否可由AAV2預免疫化阻斷之問題。為在循環中產生預存在抗AAV2抗體，將AAV2-Egfp載體(1E11 vg/小鼠)經肌內遞送至小鼠中。在4週之後收集血清以評價活體外之中和抗體(NAb)效價(圖13A-13D及圖14A-14B)。僅需低NAb效價即可在Huh-7.5細胞中達成AAV2感染之50%中和(NAb50) (1/1,280~1/2,560)，從而指示自AAV2預免疫化生成之抗體足以抑制AAV2轉導。與之相比，經AAV2處理之小鼠血清之AAVv66感染之NAb50為1/20~1/40，從而指示AAVv66能夠感染細胞，即使存在針對AAV2所生成之NAb。

為使用分泌性治療轉基因產物在活體內測試該等發現，向AAV2免疫化小鼠再投用經α-1抗胰蛋白酶轉基因包裝之AAV2或AAVv66 (AAV2-A1AT或AAVv66-A1AT)。在第5、6、7及8週收集血清，且藉由ELISA31量化分泌性A1AT含量(圖14C)。低A1AT表現表明，自第一載體劑量生成之NAb會防止第二載體劑量之轉導。為確立「最大」 A1AT表現之基線，亦以相同方式處理初始小鼠。在第6及7週，經AAV2-Egfp及然後AAVv66-A1AT處理之小鼠中之A1AT表現達到初始小鼠之A1AT表現的約90%，而再投用AAV2-A1AT之小鼠僅達到初始含量之約40% (圖14C)。該等結果與在活體外觀察到AAVv66在來自經AAV2蛋白殼預免疫化之小鼠之血清存在下具有穩定感染性一致。

亦測試預免疫性以探究寬範圍之AAV血清型(AAV1、AAV2、AAV3b、AAV8、AAV9、AAV-DJ、AAVrh.8及AAVrh.10)是否可損害AAVv66載體轉導。針對AAVv66載體中和來篩選經8種血清型單獨預免疫化之兔之抗血清。據觀察，AAV1、AAV3b及AAV-DJ與AAVv66相比展現約一個數量級之NAb50效價差異，而AAV2、AAV8、AAVrh.8及AAVrh.10展現兩個數量級差異，且AAV9具有三個數量級差異(圖14D)。總而言之，該等數據指示，AAVv66在血清學上與AAV2及一些其他當前AAV蛋白殼不同。

AAVv66 蛋白殼在多個 pH 下之熱穩定性大於 AAV2 蛋白殼之有效形成及結構穩定性對於病毒載體之產生、純化及儲存至關重要。另外，為發生生產性感染，載體顆粒必須亦在整個進入過程中維持穩定性且僅在遞送基因體酬載可轉導細胞之條件下脫殼。儘管已廣泛研究AAV載體且因其強轉導特徵而用於多種組織中，但細胞內輸送、胞內體逃逸及蛋白殼在細胞核中之傳輸之過程並未完全理解。在影響依賴於蛋白殼動力學之AAV細胞內輸送及轉導之假定細胞內檢查點中，可最佳地理解胞內體逃逸。據信，此過程係由蛋白殼之pH依賴性結構變化所觸發。酸化胞內體管腔會引起VP1結構域之構形變化且暴露VP1內之PLA2結構域，此會觸發自胞內體腔室之逃逸。原則上，可在整個細胞內輸送中保持穩定性之載體蛋白殼係期望的且可展現高轉導能力。

為測定AAVv66蛋白殼之整體穩定性，使用差示掃描螢光法(DSF)分析來量測AAVv66蛋白殼在多個生理學pH (pH7-pH4)中之熱穩定性(圖4)。此範圍包括pH 4.5，且在晚期胞內體及溶酶體之管腔中進行觀察。在此分析中，將載體顆粒懸浮於SYPRO Orange染料中，該染料在結合至蛋白質中之疏水性殘基時會發螢光。因此，峰螢光信號係在蛋白質去摺疊後暴露之最大結合疏水區之間接讀出。在所測試之所有pH條件中，AAVv66之熔融溫度(最大斜率值[Dsignal/Dtemp], Tm)高於AAV2 5度以上。最大差異觀察於pH 7下，其中AAVv66之Tm (75.29 ± 0.34℃)高於AAV2 (65.85 ± 0.18℃)接近10度(圖4A)。因此，AAVv66蛋白殼之熱穩定性及pH抗性大於AAV2。

探究AAVv66蛋白殼穩定性對載體基因體釋放之效應。藉由計量隨溫度範圍而變化之載體基因體釋放來代替由核仁環境施加之壓力驅動性DNA擠壓。在不同pH下比較AAVv66與AAV2之基因體釋放之溫度依賴性。為此，採用使用SYBR Gold染料之DSF分析，該染料在結合至DNA時會發螢光。峰螢光係衣殼化基因體對染料溶液之最大可及性之間接量度。據觀察，pH 7下之載體基因體釋放伴有蛋白殼穩定性，從而展示AAV2在約65℃下及AAVv66在約74℃下之信號峰。然而，在較低pH下，染料可及性DNA之峰螢光之檢測溫度低於未摺疊蛋白殼蛋白之峰螢光(圖4B)。另外，AAVv66之DNA可及性較AAV2更為明顯-其中AAV2在pH 5及4下之峰DNA可及性分別出現於約53℃及約42℃下；且AAVv66在25℃下展現峰信號。此令人吃驚之觀察展示，在AAVv66蛋白殼中，DNA在低pH (4-5)下尤其可及，即使在室溫下。

然後探究AAVv66特異性胺基酸殘基是否有助於在AAVv66與AAV2之間觀察到之結構及功能差異之問題。使13個定義AAVv66之胺基酸殘基突變至AAV2之彼等且測試其對在使用HEK293細胞產生期間之載體基因體包裝的影響(圖4C)。另外，評價突變蛋白殼之熱蛋白殼穩定性及載體基因體釋放(圖4D及4E)。除4種突變(A151V、K447R、Y533F及S585R)外，所有突變皆降低DNase抗性基因體之產量，且類似於或低於AAV2之彼等(圖4C)。顯而易見，相對保守之突變D499E (其不涉及電荷變化)將包裝產率降至AAV2產率之約5%。該修飾亦影響蛋白殼穩定性，此乃因D499E以及S585R及S585R/T588R雙重突變將Tm分別降低5.9℃、3.8℃及5.4℃(圖4D)，而其他突變僅影響Tm 1~2℃。相同胺基酸突變之載體基因體可及性展現降低之峰信號溫度，而其他突變則產生較小變化或並無變化(圖4E)。值得注意地，並不顯著影響經純化載體之整體效價(表3)。因此，AAVv66之包裝產率僅部分地依賴於蛋白殼穩定性，從而表明部分蛋白殼去穩定可足以促進基因體釋放。僅殘基D499顯著影響包裝及蛋白殼穩定性。表3

AAVv66 與 AAV2 之間之蛋白殼差異之低溫 EM 結構分析 為表徵AAVv66之結構性質，純化AAV2v66-Egfp載體以供低溫EM分析。在2.5 Å解析度下獲得產生低溫EM圖之52,874個顆粒影像(圖5E及圖16)，且獲得具有最佳實空間擬合及立體化學參數之結構模型(表2)。總而言之，AAVv66結構類似於AAV2 (原子座標之均方根偏差(RMSD) = 0.456 Å) (圖16)。因此，AAVv66展現AAV蛋白殼之特異性特徵，包括兩重軸凹陷、由3重突出界定之三重對稱及包含形成用於Rep結合之界面及孔隙之5個單體的5重孔隙(圖5A)。應注意，在每一顆粒中，VP1u結構域及VP2結構域各自佔VP3結構域之大約十二分之一，且類似於先前之其他AAV結構未解析於對稱低溫EM圖中。因此，僅殘基219- 736確定地解析於低溫EM圖內，包括13個定義AAVv66之殘基中之11個(圖5B)。

比較AAVv66結構與AAV2結構可揭示若干結構差異，此可有助於改良DNA包裝及/或蛋白殼穩定性。主要差異出現於3重軸周圍突出處之VP3單體之間之界面處。D499突變至較長麩胺酸鹽殘基會在載體基因體包裝中產生顯著缺陷(圖4C)，且與S501形成靜電相互作用及/或氫鍵(圖5D)。此區域抵靠相鄰VP3單體緊密堆積(圖5D)。在此處，D499及S501之主鏈原子分別與對稱相關性N449及T448之側鏈相互作用，而S501氫鍵之羥基則與對稱相關性S446之主鏈羰基相互作用。D499突變之強效應由此可能係由於破壞了VP3單體之間之界面，從而使蛋白殼去穩定。在相同區域中，相鄰單體之殘基K447及A450消除了在相應AAV2-R447及T450側鏈之間發生靜電相互作用之可能(圖6D)。胺基酸M457位於AAVv66之可變區IV處之三重突出上，其中側鏈朝向溶劑定位(圖6E)。有趣的是，此甲硫胺酸係其他血清型中之獨特特徵(圖8)，從而表明蛋白殼與細胞受體、宿主因子或抗體具有潛在之獨特相互作用。AAVv66-Y533 (AAV2-F533)中之極性羥基可能會穩定R487及K532之側鏈之間的極性環境，且可有助於於對稱相關單體之L583之相互作用(圖6A)。AAVv66-D546及G548可重新分配由AAV2-G546及E548賦予之表面電荷(圖6B)且係AAVv66之又一典型特徵。

AAV2之關鍵功能區涉及位置585及588處之帶正電之精胺酸殘基。該等殘基位於三重突出之表面處且控制蛋白殼與HSPG受體之相互作用，此對於在許多細胞類型中之附接及進入極其重要。與之相比，類似於AAV3b之S586及T589 (圖8)，AAVv66蛋白殼中之S585及T588係電中性極性殘基(圖5D及圖6)。AAV3b與HSPG之物理及功能性相互作用依賴於由殘基R447及R594 (AAV2中之R447及A593)賦予之靜電相互作用，但AAVv66亦缺乏該等精胺酸殘基(K447及T593)。相對於AAV2及AAV3b之該等差異表明，AAVv66以不同方式與通常由AAV進化枝B及C蛋白殼利用之規範細胞表面受體進行締合，此與AAVv66並無肝素結合之發現一致。

AAV2 及 AAVv66 展示表面電荷差異 因病毒之靜電性質對於蛋白殼-受體相互作用較為重要，故探究AAVv66蛋白殼相對於AAV2之正電荷淨損失對蛋白殼之靜電性質之影響。首先，對AAV2及AAVv66結構之計算靜電位值進行比較(圖7A)。AAVv66表面上之靜電位分佈與AAV2之靜電位分佈不同。最顯著差異位於三重突出處，其中由AAV2中之R585及R588賦予之正電荷由AAVv66中之S585及T588顯著減小(圖7B)。

然後探究AAVv66之不同結構及表面靜電是否影響蛋白殼之電荷依賴性顆粒遷移(ζ電位) (圖7C)。AAVv66之ζ電位(-10 mV)與AAV2之ζ電位(-3.5 mV)顯著不同，此與蛋白殼之間之靜電位差異一致。為測試個別取代之貢獻，量測含有將殘基轉化成相應AAV2殘基之單一胺基酸取代之AAVv66之顆粒遷移(圖7C)。單一突變S585R及T588R使得ζ電位產生最顯著變化(各自變化約3 mV)，從而使ζ電位較為接近AAV2之ζ電位(圖7C)。該等觀察指示，AAVv66之靜電性質與AAV2之彼等不同且該差異主要係由位置585及588處之取代所致。因此，蛋白殼AAVv66與受體、抗體及其他蛋白質之相互作用可能與其他密切相關蛋白殼之彼等實質上不同。

所選序列 AAVv66胺基酸序列(SEQ ID NO: 1) MAADGYLPDWLEDTLSEGIRQWWKLKPGPPPPKPAERHQDDSRGLVLPGYKYLGPFNGLDKGEPVNEADAAALEHDKAYDRQLDSGDNPYLKYNHADAEFQERLKEDTSFGGNLGRAVFQAKKRVLEPLGLVEEPVKTAPGKKRPVEHSPAEPDSSSGTGKAGQQPARKRLNFGQTGDADSVPDPQPLGQPPAAPSGLGTNTMATGSGAPMADNNEGADGVGNSSGNWHCDSTWMGDRVITTSTRTWALPTYNNHLYKQISSQSGASNDNHYFGYSTPWGYFDFNRFHCHFSPRDWQRLINNNWGFRPKRLNFKLFNIQVKEVTQNDGTTTIANNLTSTVQVFTDSEYQLPYVLGSAHQGCLPPFPADVFMVPQYGYLTLNNGSQAVGRSSFYCLEYFPSQMLRTGNNFTFSYTFEDVPFHSSYAHSQSLDRLMNPLIDQYLYYLSKTNAPSGTTTMSRLQFSQAGASDIRDQSRNWLPGPCYRQQRVSKTAADNNNSDYSWTGATKYHLNGRDSLVNPGPAMASHKDDEEKYFPQSGVLIFGKQDSGKTNVDIEKVMITDEEEIRTTNPVATEQYGSVSTNLQSGNTQAATTDVNTQGVLPGMVWQDRDVYLQGPIWAKIPHTDGHFHPSPLMGGFGLKHPPPQILIKNTPVPANPSTTFSAAKFASFITQYSTGQVSVEIEWELQKENSKRWNPEIQYTSNYNKSVNVDFTVDTNGVYSEPRPIGTRYLTRNL 野生型AAV2蛋白殼蛋白胺基酸序列(SEQ ID NO: 2) MAADGYLPDWLEDTLSEGIRQWWKLKPGPPPPKPAERHKDDSRGLVLPGYKYLGPFNGLDKGEPVNEADAAALEHDKAYDRQLDSGDNPYLKYNHADAEFQERLKEDTSFGGNLGRAVFQAKKRVLEPLGLVEEPVKTAPGKKRPVEHSPVEPDSSSGTGKAGQQPARKRLNFGQTGDADSVPDPQPLGQPPAAPSGLGTNTMATGSGAPMADNNEGADGVGNSSGNWHCDSTWMGDRVITTSTRTWALPTYNNHLYKQISSQSGASNDNHYFGYSTPWGYFDFNRFHCHFSPRDWQRLINNNWGFRPKRLNFKLFNIQVKEVTQNDGTTTIANNLTSTVQVFTDSEYQLPYVLGSAHQGCLPPFPADVFMVPQYGYLTLNNGSQAVGRSSFYCLEYFPSQMLRTGNNFTFSYTFEDVPFHSSYAHSQSLDRLMNPLIDQYLYYLSRTNTPSGTTTQSRLQFSQAGASDIRDQSRNWLPGPCYRQQRVSKTSADNNNSEYSWTGATKYHLNGRDSLVNPGPAMASHKDDEEKFFPQSGVLIFGKQGSEKTNVDIEKVMITDEEEIRTTNPVATEQYGSVSTNLQRGNRQAATADVNTQGVLPGMVWQDRDVYLQGPIWAKIPHTDGHFHPSPLMGGFGLKHPPPQILIKNTPVPANPSTTFSAAKFASFITQYSTGQVSVEIEWELQKENSKRWNPEIQYTSNYNKSVNVDFTVDTNGVYSEPRPIGTRYLTRNL

圖1A-1D展示來自人類手術試樣之新穎前病毒AAV蛋白殼序列之鑑別。圖1A展示，首先使用側接於AAV Cap ORF之引子自人類手術試樣PCR擴增AAV蛋白殼前病毒序列。對擴增子實施單分子實時(SMRT)定序且藉由BWA-MEM比對(相對於當前AAV血清型序列)、InDelFixer (用以去除與PCR或SMRT定序誤差相關之***/缺失)及重新組裝(用以群集具有高序列類似性之讀段)分析所得讀段。圖1B展示，發現變體AAVv66之cap序列在分析中最為豐富(45%)。圖1C展示AAVv66蛋白殼序列中不同於AAV2之13種獨特殘基之匯總。(d) AAV2變體(包括AAVv66)及當前血清型之系統發生樹。圖2A-2D展示rAAV2及rAAVv66在海馬內注射後之轉導擴散。圖2A展示在經由單側海馬內投與注射rAAV2-CB6-Egfp或rAAVv66-CB6-Egfp後之天然EGFP表現。比例尺= 700 µm。圖2B展示正規化至DAPI陽性表面之EGFP陽性表面之量化。數據呈現為平均值±SD；n=3。****P＜0.0001。圖2C展示繪示對側及同側半球中之所關注子解剖區之冠狀腦示意圖。海馬角(CA1、CA2、CA3、CA4)、齒狀回(DG)、胼胝體(CC)及皮質(CTX)。圖2C展示經rAAVv66轉導之子解剖區之高放大率影像。比例尺= 50 µm。圖3A-3P展示rAAVv66對主要腦細胞類型之轉導。圖3A、3E、3I及3M展示經rAAVv66-CB6-Egfp轉導之小鼠腦之冠狀切面。具有針對NEUN (圖3A，神經元)、GFAP (圖3E，星形細胞)、IBA1 (圖3I，小神經膠質細胞)或OLIG2 (圖3M，寡突膠質細胞)之抗體之IF染色切片指示各細胞類型在腦中之分佈。與IF染色共定位之天然EGFP表現指示經陽性轉導之細胞類型。比例尺= 700 µm。圖3B、3F、3J及3N展示來自冠狀切面圖內之虛線矩形盒之單一代表性框架(上圖)與來自由虛線正方形盒所界定區域之單細胞代表(下方三圖)之子解剖區的3D渲染。左圖，總區域EGFP及細胞標記物IF染色；中圖，共定位EGFP與總細胞標記物IF染色；右圖，共定位EGFP及細胞標記物IF染色。比例尺= 50 µm (上圖)，5 µm (下方三圖)。圖3C、3G、3K及3O展示所指示海馬區(x軸)中之細胞類型特異性IF染色之量化(正規化至DAPI信號)。圖3D、3H、3L及3P展示所指示區域中之細胞類型特異性轉導之量化(正規化至總細胞類型IF及DAPI信號)。數據呈現為平均值±SD；n=3。海馬角(CA1、CA2、CA3、CA4)、齒狀回(DG)、胼胝體(CC)及皮質(CTX)。圖4A-4E展示AAVv66之生物物理分析。熱圖顯示pH 7、6、5及4下之差示掃描螢光法(DSF)分析以查詢蛋白殼蛋白去摺疊(脫殼) (圖4A)及DNA可及性(載體基因體擠壓) (圖4B)。藉由定點誘變將AAVv66之每一指定胺基酸殘基轉化成AAV2之彼等且檢驗在pH 7下之包裝產率(圖4C)、蛋白殼穩定性(圖4D)及基因體釋放(圖4D)之變化。值代表平均值± SD。藉由單因子ANOVA測定p值。*p ＜ 0.05, **p ＜ 0.01, ***p ＜ 0.001, ****p ＜ 0.0001。n ³ 3。圖5A-5E展示AAVv66之低溫EM主要指標、圖重建及模型生成。圖5A展示AAVv66之密度圖。灰階結構標定距中心之拓撲距離(Å)。圖5B展示經精修AAVv66蛋白殼單體之帶狀結構。突出顯示與AAV2不同之胺基酸。標注2重(卵形)、3重(三角形)及5重(五角形)對稱。展示靠近(圖5C) L583、R487、Y533及K532、(圖5D) S446、D499及S501以及(圖5E) N407-T414之區域之部分AAVv66電子密度(深灰色網)及殘基。圖6展示AAVv66與AAV2之間之結構差異。在中心處係AAVv66 60聚體結構(灰色)。以綠色突出顯示AAVv66之獨特胺基酸殘基，而單一單體中與AAV2共有之胺基酸殘基標為彩色。原子模型展示在AAVv66與AAV2之間具有實質性差異之所選區域之殘基側鏈。使用AAV2 (1lp3)及AAVv66之單體進行比對，其中以灰色顯示相鄰殘基之建模側鏈。所展示胺基酸之標注指示為屬AAVv66者、位置號且然後係屬AAV2者。圖7A-7C展示AAV2與AAVv66之間之蛋白殼表面靜電差異。圖7A展示AAV2及AAVv66 60聚體、三聚體(3重對稱)及五聚體(5重對稱之外部及內部)結構之表面正電荷及負電荷。AAV2 60聚體及三聚體結構處之黑色箭頭指示單一3重突出處之R585及R588之近似位置。圖7B展示AAV2及AAVv66之585-588處胺基酸殘基之放大圖。圖7C展示經純化載體之ζ電位之條形圖，如藉由zetasizer所量測。值代表平均值± SD，n=3。圖8展示相對於所提供AAV2具有突變之AAVv66蛋白殼蛋白之胺基酸序列。突出顯示AAV2與AAVv66之間之胺基酸差異。藉由短條表示可變區(VR)殘基。藉由虛條標定aH結構域，且使用黑色箭頭標誌形成b摺疊之殘基。藉由大於號(＞)標誌VP1、VP2及VP3之起始位置。藉由線條表示VP1內之PLA結構域。圖9展示，AAVv66產生高於AAV2之載體產量。對HEK239細胞之培養基及細胞溶解物實施粗製溶解物PCR分析，該等HEK239細胞經受pAAV及AAV2或AAVv66之包裝質體之三重轉染。值代表平均基因體拷貝± SD，n=3。圖10展示，AAVv66並無強肝素結合。肝素競爭分析展示在增加量之肝素(x軸)存在下AAV2-CB6-FLuc及AAVv66-CB6-FLuc在HEK293細胞中之轉導效率。將發光值縮放至針對缺乏肝素之孔所獲得之值且設定於1 (y軸)。值代表平均值± SD，n=3。**, p ＜ 0.01，根據2因子ANOVA。圖11展示AAV2、AAV3b及AAVv66在HEK293細胞中之活體外感染效率。使用CB6-FLuc包裝載體。在感染後48-hr溶解細胞以經由檢測螢光素酶活性(RLU，相對光單位)來評價載體感染性。以對數標度顯示數據。值代表平均值± SD，***p ＜ 0.0001，根據單因子ANOVA，n=3。圖12A-12D展示，經靜脈內投與AAVv66載體會展示肝轉導。全身性注射AAVv66-CB6-Fluc會引起肝轉導。藉由尾部靜脈投與將rAAV2-CB6-Fluc或AAVv66-CB6-Fluc (1.0E11 GC/小鼠)注射至小鼠中。在14天之後，經腹膜腔內向小鼠注射螢光素受質並成像(圖12A)。儘管量化螢光素酶活性之全身活生物發光並不揭示AAVv66-CB6-Fluc與AAV2-CB6-Fluc之間之肝轉導的顯著差異，但分離肝組織且藉由qPCR量化螢光素酶活性並檢測載體基因體拷貝展示，AAVv66係顯著弱於AAV2之肝轉導劑。記錄所獲取影像中之總腹部通量(圖12B)。收穫組織並藉由qPCR分析螢光素酶活性(圖12C)及載體基因體豐度(圖12D)。值代表平均值± SD，n=3。*, p ＜ 0.05，根據司徒登氏t測試(Student’s t test)。圖13A-13D展示，經肌內投與AAVv66載體會展示肌肉轉導。與AAV2轉導相比，將AAVv66經肌內注射至脛骨前肌產生極小轉導能力差異。藉由經肌內投與一條後肢(脛骨前肌)中來將AAV2-CB6-FLuc或AAVv66-CB6-FLuc (4.0E10 GC/小鼠)注射至小鼠中。在14天之後，經腹膜腔內向小鼠注射螢光素受質並成像(圖13A)。記錄所獲取影像中之經注射後肢之總通量(圖13B)。收穫組織並藉由qPCR分析螢光素酶活性(圖13C)及載體基因體豐度(圖13D)。值代表平均值± SD，n=3。*, p ＜ 0.05，根據司徒登氏t測試。圖14A-14D展示AAVv66之免疫學表徵。經肌內向小鼠投與AAV2-CB6-Egfp載體(1E11 GC/小鼠)。在投與之後4週，收集血清以測試針對AAV2或AAVv66感染之中和抗體(NAb)效價。AAV2 (圖14A)及AAVv66 (圖14B)之NAb50值定義為可阻斷可藉由經LacZ報告基因包裝之載體所達成總轉導之50%的效價稀釋度。左圖：所測試個別動物之NAb表格匯總。右圖：針對不同血清稀釋度對轉導效率繪圖。值代表平均值±SD。虛線指示平均NAb50血清效價。在4週時段之後，在對側後肢上經肌內向小鼠投與AAV2-hA1AT或AAVv66-hA1AT (1E11 GC/小鼠)。在第5、6、7及8週藉由ELISA量測血清A1AT含量(圖14C)。值代表平均值±SD，n=3。n.s.，不顯著；*, p ＜ 0.05；**, p ＜ 0.01；及***, p ＜ 0.001，根據橫截面數據點之2因子ANOVA。圖14D展示兔抗AAV血清交叉反應性。使用AAVv66與同源AAV血清型，測試針對AAV血清型產生之兔抗血清之NAb以評價相對交叉反應性。Log2值代表達成50%轉導抑制之最高抗體稀釋度。圖15A-15B展示AAVv66之低溫EM主要指標、圖重建及模型生成。圖15A展示AAVv66之低溫電子顯微照片。比例尺代表100 Å。圖15B展示AAVv66之偶數個顆粒及奇數個顆粒之傅裡葉殼層相關性(FSC_part)。圖16展示比較AAVv66與AAV2或AAV3b之RMSD (Å)統計學。在藉由PyMOL內之rms_cur函數計算之所有指示α碳對(AAV2編號)中所量測AAVv66與AAV2 (1LP3)或AAV3b (3KIC)之間之總及區域RMSD (Å)的匯總。經由AAVv66之低溫EM密度圖內之最佳化擬合比對AAV2、3b及AAVv66之完整蛋白殼結構。使用PyMOL內之定製腳本，定量轉變AAV2 (上)或AAV3b (下)之個別α碳對之間之距離值(Å)，從而表示為AAVv66之相應殘基之色彩及徑向厚度。

Claims

一種將轉基因遞送至受試者中之靶細胞中之方法，該方法包含向該受試者經顱內投與包含以下各項之重組腺相關病毒(rAAV)： (i) 經分離核酸，其包含編碼一或多種所關注基因產物之轉基因；及 (ii) 腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白，其具有SEQ ID NO: 1中所陳述之序列。
如請求項1之方法，其中該顱內投與包含海馬內注射。
如請求項1或2之方法，其中該靶細胞係中樞神經系統(CNS)細胞。
如請求項1至3中任一項之方法，其中該CNS細胞係神經元、寡突膠質細胞、星形細胞或小神經膠質細胞。
如請求項1至4中任一項之方法，其中該受試者係哺乳動物，視情況其中該哺乳動物係人類。
如請求項1至5中任一項之方法，其中該受試者之特徵在於產生抗AAV2抗體。
如請求項6之方法，其中在投與該rAAV之後，該受試者不誘發針對該rAAV之中和免疫反應。
如請求項1至7中任一項之方法，其中該經分離核酸包含側接於該轉基因之AAV反向末端重複序列(ITR)。
如請求項1至8中任一項之方法，其中編碼該一或多種基因產物之核酸序列以可操作方式連接至啟動子。
如請求項1至9中任一項之方法，其中該一或多種基因產物包含蛋白質或抑制性核酸。
一種將轉基因遞送至受試者中之靶細胞中之方法，該方法包含向該受試者經靜脈內投與包含以下各項之重組腺相關病毒(rAAV)： (i) 經分離核酸，其包含編碼一或多種所關注基因產物之轉基因；及 (ii) 腺相關病毒(AAV)蛋白殼蛋白，其具有SEQ ID NO: 1中所陳述之序列，其中該投與使得rAAV穿越該受試者之血腦障壁(BBB)。
如請求項11之方法，其中該靶細胞係中樞神經系統(CNS)細胞。
如請求項12之方法，其中該CNS細胞係神經元、寡突膠質細胞、星形細胞或小神經膠質細胞。
如請求項11至13中任一項之方法，其中相對於投與具有AAV2蛋白殼蛋白之rAAV，該投與會降低肝細胞轉導。
如請求項11至14中任一項之方法，其中該受試者係哺乳動物，視情況其中該哺乳動物係人類。
如請求項11至15中任一項之方法，其中該受試者之特徵在於產生抗AAV2抗體。
如請求項16之方法，其中在投與該rAAV之後，該受試者不誘發針對該rAAV之中和免疫反應。
如請求項11至17中任一項之方法，其中該經分離核酸包含側接於該轉基因之AAV反向末端重複序列(ITR)。
如請求項11至18中任一項之方法，其中編碼該一或多種基因產物之核酸序列以可操作方式連接至啟動子。
如請求項11至19中任一項之方法，其中該一或多種基因產物包含蛋白質或抑制性核酸。