SU533376A1 - Способ получени токсоплазменного антигена - Google Patents
Способ получени токсоплазменного антигенаInfo
- Publication number
- SU533376A1 SU533376A1 SU1966651A SU1966651A SU533376A1 SU 533376 A1 SU533376 A1 SU 533376A1 SU 1966651 A SU1966651 A SU 1966651A SU 1966651 A SU1966651 A SU 1966651A SU 533376 A1 SU533376 A1 SU 533376A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- order
- specific activity
- increase
- antigens
- toxoplasma
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
1
Изобретение относитс к области иммунохимии , в частности к способам получени биологических диагностических препаратов, а именно - антигена дл серологической диагностики токсоплазмоза.
Известны способы получени антигенов дл диагностики токсоплазмоза из инвазионного материала путем экстракции его эфиром н спирт-эфирно-фенольной смесью.
Однако этот способ трудоемок и длителен, при этом антиген, получаемый по известному способу, не дает четких положительных серологических реакций с сыворотками крови спонтанно или экспериментально зараженных токсоплазмой сельскохоз йственных и диких животных.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту к предлагаемому изобретению вл етс способ, включающий извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию клеток токсоплазм ультразвуком и выделение из полученного ультразвукового лизата антигенной фракции изоионным фракционированием .
Однако этот способ также оказалс неприемлемым дл получени антигена из токсоплазм , так как получаемые антигенные препараты про вл ют в серологических реакци х недостаточно выраженную снецифичность:
они дают положительные результаты не только с гомологичными токсоплазменными сыворотками крови, но и с антисывороткой на нативный перитонеальный экссудат здоровых белых мыщей, что указывает на наличие в антигенах балластных веществ, снижающих их активность и специфичность.
Цель изобретени состоит в разработке экспресс-способа получени стандартного однородного антигена с высокоактивными и специфическими свойствами, пригодного дл использовани в нескольких иммунологических реакци х: в реакции св зывани комплемента (РСК), реакции непр мой гемагглютинации (РИГА) и реакции ммунодиффузии в агаровом геле (РП-гель) дл серологической диагностики токсоплазмоза.
Постановленна цель достигаетс тем, что в известном способе, включающем извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию токсоплазм обработкой ультразвуком и выделение антигенной фракции изоионным фракционированием , ультразвуковую дезинтеграцию клеток токсоплазм провод т 2-3-х кратно с отделением лизата оболочек токсоплазм и выделением из него антигенной фракции изононным фракционированием при дополнительном воздействии на лизат ультразвуком с последующей очисткой антигенной фракции от
0
неспецифических балластных веществ добавлением к ней а тисыворотки.
Способ получени антигена заключаетс в следующем.
Дл проведени способа необходимы следующие реактивы и растворы: натрий хлористый (х. ч.), едкий натр (х. ч.), серна или сол на кислота (х. ч.), 0,25, 0,5 и 1 н. растворы едкого натра, 0,25, 0,5 « 1 н. растворы серной ИЛИ сол ной кислоты 0,85%-ный раствор хлористого натри (физиологический раствор).
Получение исходного сырь . Материалом дл получени токсоплазменпого антигена служит неритонеальный экссудат белых мыщей, зараженных эталонным щтаммом токсоплазм или одним из вирулентных щтаммов , выделенным от сельскохоз йственных животных. Дл этого белых мышей весом 16-18 г парти ми по 200-250 голов заражают перитонеальным экссудатом от исходных щтаммных токсоплазменных мыщей. Экссудат дл заражени развод т стерильным физиологическим раствором так, чтобы в поле зрепи микроскопа (увеличение 15X40) были видны 1-3 токсоплазмы. Доза заражени мыщей- 0,2 мл. На 4-5 день после заражени мышей наркотизируют эфиром и стерильным шприцом из брюшной нолости извлекают перитонеальный экссудат. Брющную полость каждой мыши дополнительно промывают 0,5 мл физиологического раствора. Собранный материал провер ют на наличие токсоплазм и отсутствие посторонней микрофлоры путем микроскопировани мазков. После проверки экссудат центрифугируют в стерильных пробирках в течение 30-45 мин при 3-4 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость удал ют. Осадок содержит токсоплазмы и примесь лейкоцитов и гистиоцитов перитонеального экссудата мыщей. Чтобы избавитьс от этих клеточных балластных компонентов осадок ресуспензируют в 5-10 мл физиологического раствора и затем многократно пропускают через тонкую иглу щприца дл разрущени клеточных элементов экссудата. К полученной взвеси добавл ют 10-15 мл физиологического раствора, снова пропускают через иглу шприца и после этого центрифугируют при 2- 3 тыс. об/мин в течение 45-60 мин. Надосадочную жидкость отбрасывают, а обработку осадка повтор ют еще 2-3 раза, после чего отмытый осадок токсоплазм пригоден дл приготовлени антигена.
Градуированна дезинтеграци токсоплазм. Дезинтеграцию осуществл ют в ноле ультразвуковых волн низкочастотного диспергатора (УЗДН) градуированно в три приема: первые две обработки провод т в физиологическом растворе, последнюю - основную - в дистиллированной воде.
В стекл нный сосуд с вод ным охлаждением внос т 1-2 г отмытых токсоплазм, заливают 50-100 мл физиологического раствора и создают в контактной среде ультразвуковые колебани частотой 22-35 кгц и акустической мощностью 20-50 вт/см в течение 5-10 мин. Взвесь частично разрушенных токсоплазм центрифугируют при В-10 тыс.
об/мин в течение 15 мин. Надосадочную жидкость (лизат I) сливают, а к осадку добавл ют 50-100 мл физиологического раствора и обработку токсоплазм повтор ют также при частоте 22-35 кгц, но мощности 50-75 вт/см
и уже в течение 30-40 мин. Взвесь разрущенных токсоплазм центрифугируют нри 8- 10 тыс. об/мин 15 мин. Надосадочную жидкость (лизат II), представл ющую собой солерастворимую нротоплазматическую часть
токсоплазм, отдел ют от осадка оболочек токсоплазм , который промывают в дистиллированной воде 2-3-х кратным центрифугированием при вышеуказанном режиме. Отмытый осадок ресуспензируют в 20-30 мл дистиллированной воды, среду усредн ют 0,25-0,5 н. раствором едкой щелочи в пределах рН 8,0- 8,2, перенос т в сосуд дл озвучивани и обрабатывают ультразвуком частотой 22- 35 КГЦ, мощностью 40-60 вт/см 5-10 мин.
Небольшое количество нерастворившегос осадка отдел ют от жидкой части центрифугированием .
Полученна надосадочна жидкость - водный раствор оболочек токсоплазм (лизат
III)- вл етс материалом дл получени специфического токсоплазменного антигена.
Ультразвуковое изоионпое фокусирование и выделение специфической антигенной фракции. Фракционирование ультразвукового лизата III начинают с фокусировани балластных фракций , которые могут содержатьс в лизате при недостаточно полной предварительной очистке токсоплазм и недостаточно- тщательном градуированном разделении токсоплазм ультразвуком на лизат III и неспецифические протоплазматические лизаты I и II. Дл этого лизат III перенос т в химический стакан на 50-100 мл и подвергают 2-3-минутному воздействию ультразвуковой частотой 22-35 кгц и мощностью 50-75 вт/см (без применени охлаждающей системы), что приводит к быстрому прогреванию обрабатываемой среды до оптимальной дл последующего фракционировани температуры 35-40°С. Электрометрическим титрованием с помощью рН-метра и 0,5-1,0 н. раствора едкого натра лизат III подщелачивают до рН 10,5-11,5, в пределах которых фокусируетс в виде мелких хлопьев небольшое количество осадка - антигенна фракци «А. Дл полноты осаждени стакан с лизатом III дополнительно выдерживают в термостате при 37°С 20- 30 мин. Сформировавшийс осадок отдел ют
15-20-минутным центрифугированием при 8-10 тыс. об/мин.
Надосадочную жидкость (лизат IV) снова прогревают ультразвуком до оптимальной температуры 35-40°С, медленной нейтрализацией 0,5-1,0 н. раствором серной кислоты
довод т рН среды до 9,0-9,5 и фокусируют антигенную фракцию :В:. Лизат IV выдерживают в термостате 20-30 мин, а затем центрифугируют. Из надосадочной жидкости (лизат V) аналогичным образом при рН 6,8- 7,2 осаждают третий осадок - антигенную фракцию «С и получают основной, очищеииый лизат VI, из которого ультразвуковым фракционированием выдел ют ири рН 3,5-5,5 специфическую антигенную фракцию «/). После центрифугировани специфическую фракцию «D с помощью ультразвука раствор ют в 20-30 мл дистиллированной воды при рН 8,0-8,2 и провод т последующую ее очистку.
Иммунохимическа очистка специфической антигенной фракции «/) проводитс с помощью антисыворотки на нативный перитонеальный экссудат белых мыщей (на балластные вещества). Ее получают путем иммунизации кроликов иативиым перитонеальным экссудатом здоровых белых мышей. Мыщам интраиеритоиеально ввод т по 0,2 мл насыщенного раствора хлористого натри . Через 30 мин насыщенный раствор ввод т повторно в дозе 0,4-0,5 мл. По истечении одного часа от момента первого введени насыщенного раствора мышей наркотизируют, вскрывают и затем из брюшной полости извлекают шприцем экссудат. Собранный материал центрифугируют при 3 тыс. об/мии в течение 30 мин. Полученный материал ввод т 4 раза кроликам в возрастающих дозах с интервалом в 2-3 недели между первой и второй инъекци ми и в одну неделю между последующими (I цикл иммунизации). При первой инъекции материал ввод т в смеси с дополнителем Фрейнда под кожу боковой поверхности туловища кролика. Остальные 2-3 инъекции материала производ т внутримышечно без дополнител Фрейнда. Реиммунизацию (И цикл иммунизации) провод т через 30-40 дней с момента последнего введени материала. Она состоит из одной или двух инъекций материала без дополнител в мышцу бедра с интервалом 4-5 дней между введени ми. На 7, 14 и 21 дни после последнего введени материала у животных берут кровь и провер ют титр сыворотки в РСК или РП в агаровом геле. Полный цикл иммунизации 4-5 мес цев, иосле чего антисыворотка готова дл очистки специфической фракции «D.
Специфическую антигенную фракцию «D провер ют на чистоту преципитацией с антисывороткой на нативный перитонеальный экссудат белых мыщей (на балластные вещества ). К пробиркам с прогрессивно уменьшающимс количеством антигенной фракции (0,05, 0,1, 0,2, 0,4, 0,6, 0,8 и 1,0 мл) добавл ют по 0,5 мл цельной или разведенной (в зависимости от титра) антисыворотки на балластные вендества. Смесь в иробнрках тщательио перемешивают и инкубируют при 37°С в течеиие 1,5-2 час, а затем помещают иа 18-24 час в холодильник при 4°С. Контрол ми служат
антисыворотка и антигеина фракци с физиологически .м раствором. Реакци иа балласт считаетс положительной, если в одной или нескольких проб1 рках отмечаетс преципитат (осадок). Если прецииитат отсутствует во всех иробирках (отрицательна реакци ), то антигенную фракцию сразу же используют в качестве специфического токсоплазменного антигена. В случае поло}кительной реакции (наличи преципитата) по пробирке с макси .мальным количеством преципитата высчитывают необходимое количество антисыворотки дл осаждени балласта и добавл ют ее ко всему объему антигенной фракции. Смесь также инкубируют 1,5-2 час в термостате и выдерживают 18-24 час в холодильнике. Образовавшийс преципитат отдел ют центрифугированием в течеиие 20-30 мин при 8- 10 тыс. об/мин. Из надосадочной жидкости ультразвуковым изоионным фокусированием при рН 3,5-5,5 выдел ют очищенную специфическую антигенную фракцию.
Приготовление и стандартизаци т о к с о и л а 3 м е н и о г о антигена. Осадок очищенной от балласта антигенной фракции «D иромывают в дистиллированной воде 2-3-х кратным ультразвуковым растворением при 0,8-8,2 и переосаждением при рИ 3,5-5,5. Отмытый осадок раствор ют в 20-30 у.л дистиллированной воды при рН 8,0-8,2. Этот раствор антигенной фракции вл етс специфическим токсоилазменным антигеном .
Стандартизацию антигена провод т по серологической активности титрацией с гиперимунными токсоплазменными сыворотками, Оитимальный рабочий титр антигеиа в РСК и РИГА 1 :20-- 1 :160, а дл РП в агаровом геле - исходное разведение. Чувствительность токсоплазменного антигена по обнаружению специфических тoкcoплaз :eнныx антител в сыворотке крови гипериммунных, экспериментально зараженных и спонтанно больных животных характеризуетс в РСК в разведении сыворотки 1 : 5 - i : 640 и в РИГ.4 1 ; 40 - 1 : 2560, а в РП в агаровом геле - одной линией преципитации.
Дл стабилизации антиген лиофилизируют в рабочем титре с средой. В высушенном виде, в ампулах, он представл ет собой мелкоиористую таблетку белого цвета, легко раствор ющуюс в дистиллированной воде и физиологическом растворе. Срок годности лиофилизированного антигена 2-3 года .
Приготовлеиный по описанному способу токсоплазменный антиген испытан ко.миссионFO , апробирован в ВГИКИ и в И1ироком производственном опыте и показал высокую специфичность при серолог ческой диагиостике токсоплазмоза.
Claims (1)
- Формула изобретениСпособ получени токсоплазменного антигена дл серологической диагностики, вклю7 чающий извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию токсоплазм обработкой ультразвуком и выделение антигенной фракции «зоионным фракционированием, отличающийс 5 тем, что, с целью повыщени специфической активности антигена, ультразвуковую дезинтеграцию клеток токсоплазм провод т 2-38 кратно с отделением лизата оболочек токсоплазм и выделением из него антигенной фракции изоионинм фракционированием при дополнительном воздействии на лизат ультразвуком с последующей очисткой антигенной фракции от неспецифических балластных не ществ добавлением к ней антисыворотки.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1966651A SU533376A1 (ru) | 1973-08-31 | 1973-08-31 | Способ получени токсоплазменного антигена |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1966651A SU533376A1 (ru) | 1973-08-31 | 1973-08-31 | Способ получени токсоплазменного антигена |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU533376A1 true SU533376A1 (ru) | 1976-10-30 |
Family
ID=20566655
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1966651A SU533376A1 (ru) | 1973-08-31 | 1973-08-31 | Способ получени токсоплазменного антигена |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU533376A1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7790187B2 (en) | 2005-03-08 | 2010-09-07 | Kenton S.R.L. | Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii |
RU2704973C1 (ru) * | 2018-09-04 | 2019-11-01 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-внедренческий центр Агроветзащита" (ООО "НВЦ Агроветзащита") | Способ подготовки компонентов для проведения экспресс-теста на токсоплазмоз животных и экспресс-тест на токсоплазмоз |
-
1973
- 1973-08-31 SU SU1966651A patent/SU533376A1/ru active
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7790187B2 (en) | 2005-03-08 | 2010-09-07 | Kenton S.R.L. | Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii |
US7867503B2 (en) | 2005-03-08 | 2011-01-11 | Sigma-Tau Industrie Farmaceutiche Riunite S.P.A. | Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii |
RU2704973C1 (ru) * | 2018-09-04 | 2019-11-01 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-внедренческий центр Агроветзащита" (ООО "НВЦ Агроветзащита") | Способ подготовки компонентов для проведения экспресс-теста на токсоплазмоз животных и экспресс-тест на токсоплазмоз |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4396630A (en) | Process for preparing lipoid-biologically active particles | |
Frenkel | Dermal hypersensitivity to Toxoplasma antigens (toxoplasmins) | |
Van Furth et al. | The immunological development of the human fetus | |
Olson et al. | Abnormalities of in vitro lymphocyte responses during rubella virus infections | |
Rowe et al. | Characterization of a factor formed in the course of adenovirus infection of tissue cultures causing detachment of cells from glass | |
Mårdh et al. | Antibodies to Mycoplasma hominis in patients with genital infections and in healthy controls. | |
Schaffer et al. | Purification and properties of poliovirus | |
Barwell | Some observations on the antigenic structure of psittacosis and lymphogranuloma venereum viruses. II. Treatment of virus suspensions by various reagents and the specific activity of acid extracts | |
Burrell et al. | Lung antibodies in patients with pulmonary disease | |
Lamoureux et al. | Immunological features in multiple sclerosis. | |
Hildemann et al. | Relationship between skin transplantation immunity and the formation of humoral isoantibodies in mice | |
SU533376A1 (ru) | Способ получени токсоплазменного антигена | |
Batcup et al. | Placental and fetal pathology in Coxsackie virus A9 infection: a case report | |
Turner et al. | Hemagglutinating virus isolated from cat scratch disease | |
JPS58183627A (ja) | 免疫生物学的調製物 | |
Schmidt et al. | Immunodiffusion reactions with rubella antigens | |
US4609630A (en) | Method for improving the specificity of immunoassays | |
Terpstra | The Use of Immunoelectro‐Osmophoresis as a Possible Aid in the Diagnosis of Swine Fever | |
US4150107A (en) | Antigen from schistosomes and process for obtaining same | |
Nakajima et al. | Preparation of equine infectious anemia virus antigen for immunodiffusion test | |
Fowler | The demonstration of complement-fixing antibodies to herpes febrilis virus. | |
Svartz | Macroglobulins in Rheumatoid Arthritis and Other Diseases: Their Dissociation and Differentiation | |
Nishioka et al. | STUDIES ON VIRAL ONCOLYSIS 3. IMMUNOCHEMICAL AND ELECTRON-MICROSCOPIC CHANGES OF EHRLICH ASCITES TUMOR CELLS INFECTED WITH ED VIRUS | |
ANDO et al. | Studies on the immunological diagnosis of the animals suspected of rabies (second report) | |
US2439229A (en) | Rocky mountain spotted fever diagnostic antigen and preparation of the same |