SU533376A1 - Способ получени токсоплазменного антигена - Google Patents

Способ получени токсоплазменного антигена

Info

Publication number
SU533376A1
SU533376A1 SU1966651A SU1966651A SU533376A1 SU 533376 A1 SU533376 A1 SU 533376A1 SU 1966651 A SU1966651 A SU 1966651A SU 1966651 A SU1966651 A SU 1966651A SU 533376 A1 SU533376 A1 SU 533376A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
order
specific activity
increase
antigens
toxoplasma
Prior art date
Application number
SU1966651A
Other languages
English (en)
Inventor
Жангир Касымович Омаров
Альберт Александрович Боровиков
Василий Миронович Красов
Original Assignee
Научно-исследовательский ветеринарный институт
Институт Зоологии Ан Казахской Сср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский ветеринарный институт, Институт Зоологии Ан Казахской Сср filed Critical Научно-исследовательский ветеринарный институт
Priority to SU1966651A priority Critical patent/SU533376A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU533376A1 publication Critical patent/SU533376A1/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

1
Изобретение относитс  к области иммунохимии , в частности к способам получени  биологических диагностических препаратов, а именно - антигена дл  серологической диагностики токсоплазмоза.
Известны способы получени  антигенов дл  диагностики токсоплазмоза из инвазионного материала путем экстракции его эфиром н спирт-эфирно-фенольной смесью.
Однако этот способ трудоемок и длителен, при этом антиген, получаемый по известному способу, не дает четких положительных серологических реакций с сыворотками крови спонтанно или экспериментально зараженных токсоплазмой сельскохоз йственных и диких животных.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту к предлагаемому изобретению  вл етс  способ, включающий извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию клеток токсоплазм ультразвуком и выделение из полученного ультразвукового лизата антигенной фракции изоионным фракционированием .
Однако этот способ также оказалс  неприемлемым дл  получени  антигена из токсоплазм , так как получаемые антигенные препараты про вл ют в серологических реакци х недостаточно выраженную снецифичность:
они дают положительные результаты не только с гомологичными токсоплазменными сыворотками крови, но и с антисывороткой на нативный перитонеальный экссудат здоровых белых мыщей, что указывает на наличие в антигенах балластных веществ, снижающих их активность и специфичность.
Цель изобретени  состоит в разработке экспресс-способа получени  стандартного однородного антигена с высокоактивными и специфическими свойствами, пригодного дл  использовани  в нескольких иммунологических реакци х: в реакции св зывани  комплемента (РСК), реакции непр мой гемагглютинации (РИГА) и реакции  ммунодиффузии в агаровом геле (РП-гель) дл  серологической диагностики токсоплазмоза.
Постановленна  цель достигаетс  тем, что в известном способе, включающем извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию токсоплазм обработкой ультразвуком и выделение антигенной фракции изоионным фракционированием , ультразвуковую дезинтеграцию клеток токсоплазм провод т 2-3-х кратно с отделением лизата оболочек токсоплазм и выделением из него антигенной фракции изононным фракционированием при дополнительном воздействии на лизат ультразвуком с последующей очисткой антигенной фракции от
0
неспецифических балластных веществ добавлением к ней а тисыворотки.
Способ получени  антигена заключаетс  в следующем.
Дл  проведени  способа необходимы следующие реактивы и растворы: натрий хлористый (х. ч.), едкий натр (х. ч.), серна  или сол на  кислота (х. ч.), 0,25, 0,5 и 1 н. растворы едкого натра, 0,25, 0,5 « 1 н. растворы серной ИЛИ сол ной кислоты 0,85%-ный раствор хлористого натри  (физиологический раствор).
Получение исходного сырь . Материалом дл  получени  токсоплазменпого антигена служит неритонеальный экссудат белых мыщей, зараженных эталонным щтаммом токсоплазм или одним из вирулентных щтаммов , выделенным от сельскохоз йственных животных. Дл  этого белых мышей весом 16-18 г парти ми по 200-250 голов заражают перитонеальным экссудатом от исходных щтаммных токсоплазменных мыщей. Экссудат дл  заражени  развод т стерильным физиологическим раствором так, чтобы в поле зрепи  микроскопа (увеличение 15X40) были видны 1-3 токсоплазмы. Доза заражени  мыщей- 0,2 мл. На 4-5 день после заражени  мышей наркотизируют эфиром и стерильным шприцом из брюшной нолости извлекают перитонеальный экссудат. Брющную полость каждой мыши дополнительно промывают 0,5 мл физиологического раствора. Собранный материал провер ют на наличие токсоплазм и отсутствие посторонней микрофлоры путем микроскопировани  мазков. После проверки экссудат центрифугируют в стерильных пробирках в течение 30-45 мин при 3-4 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость удал ют. Осадок содержит токсоплазмы и примесь лейкоцитов и гистиоцитов перитонеального экссудата мыщей. Чтобы избавитьс  от этих клеточных балластных компонентов осадок ресуспензируют в 5-10 мл физиологического раствора и затем многократно пропускают через тонкую иглу щприца дл  разрущени  клеточных элементов экссудата. К полученной взвеси добавл ют 10-15 мл физиологического раствора, снова пропускают через иглу шприца и после этого центрифугируют при 2- 3 тыс. об/мин в течение 45-60 мин. Надосадочную жидкость отбрасывают, а обработку осадка повтор ют еще 2-3 раза, после чего отмытый осадок токсоплазм пригоден дл  приготовлени  антигена.
Градуированна  дезинтеграци  токсоплазм. Дезинтеграцию осуществл ют в ноле ультразвуковых волн низкочастотного диспергатора (УЗДН) градуированно в три приема: первые две обработки провод т в физиологическом растворе, последнюю - основную - в дистиллированной воде.
В стекл нный сосуд с вод ным охлаждением внос т 1-2 г отмытых токсоплазм, заливают 50-100 мл физиологического раствора и создают в контактной среде ультразвуковые колебани  частотой 22-35 кгц и акустической мощностью 20-50 вт/см в течение 5-10 мин. Взвесь частично разрушенных токсоплазм центрифугируют при В-10 тыс.
об/мин в течение 15 мин. Надосадочную жидкость (лизат I) сливают, а к осадку добавл ют 50-100 мл физиологического раствора и обработку токсоплазм повтор ют также при частоте 22-35 кгц, но мощности 50-75 вт/см
и уже в течение 30-40 мин. Взвесь разрущенных токсоплазм центрифугируют нри 8- 10 тыс. об/мин 15 мин. Надосадочную жидкость (лизат II), представл ющую собой солерастворимую нротоплазматическую часть
токсоплазм, отдел ют от осадка оболочек токсоплазм , который промывают в дистиллированной воде 2-3-х кратным центрифугированием при вышеуказанном режиме. Отмытый осадок ресуспензируют в 20-30 мл дистиллированной воды, среду усредн ют 0,25-0,5 н. раствором едкой щелочи в пределах рН 8,0- 8,2, перенос т в сосуд дл  озвучивани  и обрабатывают ультразвуком частотой 22- 35 КГЦ, мощностью 40-60 вт/см 5-10 мин.
Небольшое количество нерастворившегос  осадка отдел ют от жидкой части центрифугированием .
Полученна  надосадочна  жидкость - водный раствор оболочек токсоплазм (лизат
III)- вл етс  материалом дл  получени  специфического токсоплазменного антигена.
Ультразвуковое изоионпое фокусирование и выделение специфической антигенной фракции. Фракционирование ультразвукового лизата III начинают с фокусировани  балластных фракций , которые могут содержатьс  в лизате при недостаточно полной предварительной очистке токсоплазм и недостаточно- тщательном градуированном разделении токсоплазм ультразвуком на лизат III и неспецифические протоплазматические лизаты I и II. Дл  этого лизат III перенос т в химический стакан на 50-100 мл и подвергают 2-3-минутному воздействию ультразвуковой частотой 22-35 кгц и мощностью 50-75 вт/см (без применени  охлаждающей системы), что приводит к быстрому прогреванию обрабатываемой среды до оптимальной дл  последующего фракционировани  температуры 35-40°С. Электрометрическим титрованием с помощью рН-метра и 0,5-1,0 н. раствора едкого натра лизат III подщелачивают до рН 10,5-11,5, в пределах которых фокусируетс  в виде мелких хлопьев небольшое количество осадка - антигенна  фракци  «А. Дл  полноты осаждени  стакан с лизатом III дополнительно выдерживают в термостате при 37°С 20- 30 мин. Сформировавшийс  осадок отдел ют
15-20-минутным центрифугированием при 8-10 тыс. об/мин.
Надосадочную жидкость (лизат IV) снова прогревают ультразвуком до оптимальной температуры 35-40°С, медленной нейтрализацией 0,5-1,0 н. раствором серной кислоты
довод т рН среды до 9,0-9,5 и фокусируют антигенную фракцию :В:. Лизат IV выдерживают в термостате 20-30 мин, а затем центрифугируют. Из надосадочной жидкости (лизат V) аналогичным образом при рН 6,8- 7,2 осаждают третий осадок - антигенную фракцию «С и получают основной, очищеииый лизат VI, из которого ультразвуковым фракционированием выдел ют ири рН 3,5-5,5 специфическую антигенную фракцию «/). После центрифугировани  специфическую фракцию «D с помощью ультразвука раствор ют в 20-30 мл дистиллированной воды при рН 8,0-8,2 и провод т последующую ее очистку.
Иммунохимическа  очистка специфической антигенной фракции «/) проводитс  с помощью антисыворотки на нативный перитонеальный экссудат белых мыщей (на балластные вещества). Ее получают путем иммунизации кроликов иативиым перитонеальным экссудатом здоровых белых мышей. Мыщам интраиеритоиеально ввод т по 0,2 мл насыщенного раствора хлористого натри . Через 30 мин насыщенный раствор ввод т повторно в дозе 0,4-0,5 мл. По истечении одного часа от момента первого введени  насыщенного раствора мышей наркотизируют, вскрывают и затем из брюшной полости извлекают шприцем экссудат. Собранный материал центрифугируют при 3 тыс. об/мии в течение 30 мин. Полученный материал ввод т 4 раза кроликам в возрастающих дозах с интервалом в 2-3 недели между первой и второй инъекци ми и в одну неделю между последующими (I цикл иммунизации). При первой инъекции материал ввод т в смеси с дополнителем Фрейнда под кожу боковой поверхности туловища кролика. Остальные 2-3 инъекции материала производ т внутримышечно без дополнител  Фрейнда. Реиммунизацию (И цикл иммунизации) провод т через 30-40 дней с момента последнего введени  материала. Она состоит из одной или двух инъекций материала без дополнител  в мышцу бедра с интервалом 4-5 дней между введени ми. На 7, 14 и 21 дни после последнего введени  материала у животных берут кровь и провер ют титр сыворотки в РСК или РП в агаровом геле. Полный цикл иммунизации 4-5 мес цев, иосле чего антисыворотка готова дл  очистки специфической фракции «D.
Специфическую антигенную фракцию «D провер ют на чистоту преципитацией с антисывороткой на нативный перитонеальный экссудат белых мыщей (на балластные вещества ). К пробиркам с прогрессивно уменьшающимс  количеством антигенной фракции (0,05, 0,1, 0,2, 0,4, 0,6, 0,8 и 1,0 мл) добавл ют по 0,5 мл цельной или разведенной (в зависимости от титра) антисыворотки на балластные вендества. Смесь в иробнрках тщательио перемешивают и инкубируют при 37°С в течеиие 1,5-2 час, а затем помещают иа 18-24 час в холодильник при 4°С. Контрол ми служат
антисыворотка и антигеина  фракци  с физиологически .м раствором. Реакци  иа балласт считаетс  положительной, если в одной или нескольких проб1 рках отмечаетс  преципитат (осадок). Если прецииитат отсутствует во всех иробирках (отрицательна  реакци ), то антигенную фракцию сразу же используют в качестве специфического токсоплазменного антигена. В случае поло}кительной реакции (наличи  преципитата) по пробирке с макси .мальным количеством преципитата высчитывают необходимое количество антисыворотки дл  осаждени  балласта и добавл ют ее ко всему объему антигенной фракции. Смесь также инкубируют 1,5-2 час в термостате и выдерживают 18-24 час в холодильнике. Образовавшийс  преципитат отдел ют центрифугированием в течеиие 20-30 мин при 8- 10 тыс. об/мин. Из надосадочной жидкости ультразвуковым изоионным фокусированием при рН 3,5-5,5 выдел ют очищенную специфическую антигенную фракцию.
Приготовление и стандартизаци  т о к с о и л а 3 м е н и о г о антигена. Осадок очищенной от балласта антигенной фракции «D иромывают в дистиллированной воде 2-3-х кратным ультразвуковым растворением при 0,8-8,2 и переосаждением при рИ 3,5-5,5. Отмытый осадок раствор ют в 20-30 у.л дистиллированной воды при рН 8,0-8,2. Этот раствор антигенной фракции  вл етс  специфическим токсоилазменным антигеном .
Стандартизацию антигена провод т по серологической активности титрацией с гиперимунными токсоплазменными сыворотками, Оитимальный рабочий титр антигеиа в РСК и РИГА 1 :20-- 1 :160, а дл  РП в агаровом геле - исходное разведение. Чувствительность токсоплазменного антигена по обнаружению специфических тoкcoплaз :eнныx антител в сыворотке крови гипериммунных, экспериментально зараженных и спонтанно больных животных характеризуетс  в РСК в разведении сыворотки 1 : 5 - i : 640 и в РИГ.4 1 ; 40 - 1 : 2560, а в РП в агаровом геле - одной линией преципитации.
Дл  стабилизации антиген лиофилизируют в рабочем титре с средой. В высушенном виде, в ампулах, он представл ет собой мелкоиористую таблетку белого цвета, легко раствор ющуюс  в дистиллированной воде и физиологическом растворе. Срок годности лиофилизированного антигена 2-3 года .
Приготовлеиный по описанному способу токсоплазменный антиген испытан ко.миссионFO , апробирован в ВГИКИ и в И1ироком производственном опыте и показал высокую специфичность при серолог ческой диагиостике токсоплазмоза.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  токсоплазменного антигена дл  серологической диагностики, вклю7 чающий извлечение и отмывку токсоплазм от клеточных элементов исходного сырь , дезинтеграцию токсоплазм обработкой ультразвуком и выделение антигенной фракции «зоионным фракционированием, отличающийс 5 тем, что, с целью повыщени  специфической активности антигена, ультразвуковую дезинтеграцию клеток токсоплазм провод т 2-38 кратно с отделением лизата оболочек токсоплазм и выделением из него антигенной фракции изоионинм фракционированием при дополнительном воздействии на лизат ультразвуком с последующей очисткой антигенной фракции от неспецифических балластных не ществ добавлением к ней антисыворотки.
SU1966651A 1973-08-31 1973-08-31 Способ получени токсоплазменного антигена SU533376A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1966651A SU533376A1 (ru) 1973-08-31 1973-08-31 Способ получени токсоплазменного антигена

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1966651A SU533376A1 (ru) 1973-08-31 1973-08-31 Способ получени токсоплазменного антигена

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU533376A1 true SU533376A1 (ru) 1976-10-30

Family

ID=20566655

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1966651A SU533376A1 (ru) 1973-08-31 1973-08-31 Способ получени токсоплазменного антигена

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU533376A1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7790187B2 (en) 2005-03-08 2010-09-07 Kenton S.R.L. Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii
RU2704973C1 (ru) * 2018-09-04 2019-11-01 Общество с ограниченной ответственностью "Научно-внедренческий центр Агроветзащита" (ООО "НВЦ Агроветзащита") Способ подготовки компонентов для проведения экспресс-теста на токсоплазмоз животных и экспресс-тест на токсоплазмоз

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7790187B2 (en) 2005-03-08 2010-09-07 Kenton S.R.L. Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii
US7867503B2 (en) 2005-03-08 2011-01-11 Sigma-Tau Industrie Farmaceutiche Riunite S.P.A. Chimeric recombinant antigens of Toxoplasma gondii
RU2704973C1 (ru) * 2018-09-04 2019-11-01 Общество с ограниченной ответственностью "Научно-внедренческий центр Агроветзащита" (ООО "НВЦ Агроветзащита") Способ подготовки компонентов для проведения экспресс-теста на токсоплазмоз животных и экспресс-тест на токсоплазмоз

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4396630A (en) Process for preparing lipoid-biologically active particles
Frenkel Dermal hypersensitivity to Toxoplasma antigens (toxoplasmins)
Van Furth et al. The immunological development of the human fetus
Olson et al. Abnormalities of in vitro lymphocyte responses during rubella virus infections
Rowe et al. Characterization of a factor formed in the course of adenovirus infection of tissue cultures causing detachment of cells from glass
Mårdh et al. Antibodies to Mycoplasma hominis in patients with genital infections and in healthy controls.
Schaffer et al. Purification and properties of poliovirus
Barwell Some observations on the antigenic structure of psittacosis and lymphogranuloma venereum viruses. II. Treatment of virus suspensions by various reagents and the specific activity of acid extracts
Burrell et al. Lung antibodies in patients with pulmonary disease
Lamoureux et al. Immunological features in multiple sclerosis.
Hildemann et al. Relationship between skin transplantation immunity and the formation of humoral isoantibodies in mice
SU533376A1 (ru) Способ получени токсоплазменного антигена
Batcup et al. Placental and fetal pathology in Coxsackie virus A9 infection: a case report
Turner et al. Hemagglutinating virus isolated from cat scratch disease
JPS58183627A (ja) 免疫生物学的調製物
Schmidt et al. Immunodiffusion reactions with rubella antigens
US4609630A (en) Method for improving the specificity of immunoassays
Terpstra The Use of Immunoelectro‐Osmophoresis as a Possible Aid in the Diagnosis of Swine Fever
US4150107A (en) Antigen from schistosomes and process for obtaining same
Nakajima et al. Preparation of equine infectious anemia virus antigen for immunodiffusion test
Fowler The demonstration of complement-fixing antibodies to herpes febrilis virus.
Svartz Macroglobulins in Rheumatoid Arthritis and Other Diseases: Their Dissociation and Differentiation
Nishioka et al. STUDIES ON VIRAL ONCOLYSIS 3. IMMUNOCHEMICAL AND ELECTRON-MICROSCOPIC CHANGES OF EHRLICH ASCITES TUMOR CELLS INFECTED WITH ED VIRUS
ANDO et al. Studies on the immunological diagnosis of the animals suspected of rabies (second report)
US2439229A (en) Rocky mountain spotted fever diagnostic antigen and preparation of the same