SU369137A1 - METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE - Google Patents

METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE

Info

Publication number
SU369137A1
SU369137A1 SU1657571A SU1657571A SU369137A1 SU 369137 A1 SU369137 A1 SU 369137A1 SU 1657571 A SU1657571 A SU 1657571A SU 1657571 A SU1657571 A SU 1657571A SU 369137 A1 SU369137 A1 SU 369137A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
butyrylcholinesterase
stabilization
butirylholinesterase
activity
solution
Prior art date
Application number
SU1657571A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
В. П. Комов Н. В. Кириллова Г. А. Витовска витель Н. П. Блинов
Original Assignee
Ленинградский химико фармацевтический институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ленинградский химико фармацевтический институт filed Critical Ленинградский химико фармацевтический институт
Priority to SU1657571A priority Critical patent/SU369137A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU369137A1 publication Critical patent/SU369137A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

1one

Изобретение относитс  iK ферментной промышленности , а именно к способам стабилизации бутирилхолинэстеразы.This invention relates to the iK enzyme industry, and specifically to methods for stabilizing butyrylcholinesterase.

Известен способ стабилизации бутирилХОлинэстеразы с использо-ваеием полисахарида. В ка1чеСТ1ве последнего используют высушенный крахмальный гель.There is a method of stabilizing butyrylHOLIesterase using polysaccharide. The dried starch gel is used in the ka-hlstl of the latter.

С целью увеличени  сроков годности и активности бутирилхоли1нэстеразы по предлагаемому способу в качестве стабилизатора июпользуют аннаНЫ.In order to increase the shelf life and activity of butyrylchol1esterase by the proposed method, the annunciators are used as a stabilizer.

Ио;следние ввод т в .фермент в 1ВИде раствора , Шри этом соотношение мапнана ai бутирилхолииэстеразы составл ет 1 :2.Io; the latter are introduced into the enzyme in 1 Vide of the solution; Sri, the ratio of mapnan ai butyrylcholium esterase is 1: 2.

По .предлагаемому спосо бу используют внеклеточные маннаны, полученные микробиологическим синтезом с помошью микроорганизмов Rhodotorula rubra ВКМу 341 и Rhod pilimana .e.According to the proposed method, extracellular mannans obtained by microbiological synthesis with the help of microorganisms Rhodotorula rubra VKMu 341 and Rhod pilimana .e are used.

К раствору фермента, концентраци  «оторото равна 2 мг/мл, доба.вл ют такое же количество раствора маннана с конце.нтрацией 2 мг/мл. Получениую смесь номешают в термостат при 40-60°С, выдерживают 2 час, охлаждают и определ ют а.ктивнасть бутирилхолинэстеразы нотенциометрическим титрованием .To the enzyme solution, the concentration of the sprout is equal to 2 mg / ml, and the same amount of the mannan solution with the end of 2 mg / ml is added. The preparation of the mixture was incubated in a thermostat at 40-60 ° C, held for 2 hours, cooled, and the a. Activity of butyrylcholinesterase was determined by non-potentiometric titration.

Пример 1. В 2 мл раствора бутирилхолинэстеразы (концентраци  1 ) добавл ют 2 мл раствора маннанов Rh. pilimanae Example 1. In 2 ml of a solution of butyrylcholinesterase (concentration 1), 2 ml of a solution of mannans Rh are added. pilimanae

(Концентраци  2 мг/мл). Полученную смесь выдерживают при 55°С.(Concentration 2 mg / ml). The resulting mixture was kept at 55 ° C.

Пачальна  активность бутирилхолинэстеразы Е (1,18±0,594) 10- ммоль/мл.Broken activity of butyrylcholinesterase E (1.18 ± 0.594) 10-mmol / ml.

После выдерж1ки при указанной тем.пературе активность фермента в контроле со-стаВл ет (2,228±0,175)-10-3, а в олытНОМ образце 4,73-10- ммоль/мл.After incubation at the indicated temperature, the enzyme activity in the control was (2.228 ± 0.175) -10-3, and in the test sample 4.73-10 mmol / ml.

П р и м е р 2. Опыт прОвод т в тех же услови х , но используют маннаны Rh. rubra.EXAMPLE 2. The experiment was carried out under the same conditions, but using Rh mannans. rubra.

В .контрольном опыте активность бутирилхолинэстеразы (3,228±1,78) Ю-з, а в опытном (4,691±0,162) ммоль/мл.In the control experiment, the activity of butyrylcholinesterase (3.228 ± 1.78) U-s, and in the experimental (4.691 ± 0.162) mmol / ml.

Та1ким образом, под действием маннана Rh. rubra бутилхолинэстераза стабНЛизируетс  против тепло.вой и активации на 45,2%.Thus, under the action of mannan Rh. rubra butylcholinesterase stabilizes against heat and your activation by 45.2%.

Пример 3. Опыт провод т в тех же услови х , но смесь в термостате выдержи.вают при 25°С В течение 1 час.Example 3. The experiment was carried out under the same conditions, but the mixture in the thermostat was kept at 25 ° C for 1 hour.

При применении маннана Rh. pilimanae активность фермента в контроле составл ет 7,81-10, а в опыте 10,63-10 ммоль/мл.When using mannan Rh. pilimanae enzyme activity in the control is 7.81-10, and in the experiment 10.63-10 mmol / ml.

При применении маннана Rh. rubra активность фермента в контроле (11,51 + ±0,391)-10-3, а в опытном (14,16+0,480) 10 ммоль/мл.When using mannan Rh. rubra enzyme activity in the control (11.51 + ± 0.391) -10-3, and in the experimental (14.16 + 0.480) 10 mmol / ml.

Таким образом, актив1ность фермента после тепловой обработки на 23% выше чем в контрольном опыте. 3 Предмет изобретени  1. Опасоб- стабилизации бутирилхолинэстеразы , отличающийс  тем, что, с целью увеличени  сроков гаднасти и актиено сти бутирил-5 холинэстеразы, в качестве стабилизатора используют маннаНы. 4 2. On особ ио п. 1, отличающийс  тем, что маИНаны ввод т IB виде раствора. 3. Опасоб гоо  п. 1 и 2, отличающийс  тем, что соотношение вводимого маннана к бутирилхолинэстеразы составл ет 1 :2. Thus, the enzyme activity after heat treatment is 23% higher than in the control experiment. 3 Subject of the invention 1. The hazardous stabilization of butyrylcholinesterase, characterized in that, in order to increase the timing of the cipher and actuality of the butyryl-5 cholinesterase, manna is used as a stabilizer. 4 2. On particulars of claim 1, characterized in that the MAINANs are administered in an IB form of solution. 3. A hazard of paragraphs 1 and 2, characterized in that the ratio of mannan to butyrylcholinesterase administered is 1: 2.

SU1657571A 1971-05-03 1971-05-03 METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE SU369137A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1657571A SU369137A1 (en) 1971-05-03 1971-05-03 METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1657571A SU369137A1 (en) 1971-05-03 1971-05-03 METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU369137A1 true SU369137A1 (en) 1973-02-08

Family

ID=20475510

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1657571A SU369137A1 (en) 1971-05-03 1971-05-03 METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU369137A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Reithel 1 Ureases
Cooper The theory of antibiotic inhibition zones
Evans et al. The accelerating effect of sublethal heat on spore germination in mesophilic aerobic bacteria
GB1373562A (en) Process for the conversion of glucose into gluconic acid
Miyairi et al. Immobilization of β-glucosidase in fibroin membrane
KR880011330A (en) Maltotetraose producing amiase and preparation method thereof and use thereof
SU369137A1 (en) METHOD OF STABILIZATION BUTIRYLHOLINESTERASE
US4433054A (en) Enzymatic active substance immobilized in a polysaccharide gel matrix
JPS6214274B2 (en)
Woolley et al. Some growth factors for hemolytic streptococci
ES8405841A1 (en) Stabilization of serratiopeptidase
Chibata et al. New method for immobilization of microbial cells and its industrial application
Rexová-Benková On the character of the interaction of endopolygalacturonase with cross-linked pectic acid
Zobell et al. Metabolism studies on the Brucella Group: IX. Physicochemical requirements in synthetic mediums
RU2054481C1 (en) Method of immobilized enzyme preparing
Quastel et al. Reduction potential, energy exchange and cell growth: Experiments with B. coli.
Isobe et al. Determination of polyamines with immobilized beef plasma amine oxidase
Havinga et al. The effect of certain biologically active substances upon photosynthesis and dark CO2 fixation
SE7603167L (en) CONTINUOUS PROCEDURE FOR ISOMERIZATION OF GLUCOSE SYRUP TO A MIXTURE OF GLUCOSE AND FRUCTOS
SU1634715A1 (en) Method for producing immobilized cells exhibiting glucosoisomerase activity
Sato et al. An Acid-and Heat-stable β-Fructofuranosidase from Corticium rolfsii
JPS5911185A (en) Low-temperature immobilization of enzyme or mold
Feldman Physiochemical processes in sterol absorption
Kopper The assimilation of glucose by resting cells of Escherichia coli
JPS5754597A (en) Improvement of concentration of glucose