SU1435158A3 - Способ получени смеси 5 @ -рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту - Google Patents

Способ получени смеси 5 @ -рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту Download PDF

Info

Publication number
SU1435158A3
SU1435158A3 SU823494005A SU3494005A SU1435158A3 SU 1435158 A3 SU1435158 A3 SU 1435158A3 SU 823494005 A SU823494005 A SU 823494005A SU 3494005 A SU3494005 A SU 3494005A SU 1435158 A3 SU1435158 A3 SU 1435158A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
acid
mixture
column
solution
nucleic acid
Prior art date
Application number
SU823494005A
Other languages
English (en)
Inventor
Келлер Райнхольд
Шлингманн Мертен
Original Assignee
Хехст Аг (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Хехст Аг (Фирма) filed Critical Хехст Аг (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1435158A3 publication Critical patent/SU1435158A3/ru

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H15/00—Compounds containing hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00—Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/02—Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing nitrogen
    • C07H19/04—Heterocyclic radicals containing only nitrogen atoms as ring hetero atom
    • C07H19/16—Purine radicals
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00—Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/02—Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing nitrogen
    • C07H19/04—Heterocyclic radicals containing only nitrogen atoms as ring hetero atom
    • C07H19/16—Purine radicals
    • C07H19/20—Purine radicals with the saccharide radical esterified by phosphoric or polyphosphoric acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/082—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/082—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C12N11/087—Acrylic polymers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
    • C12N11/12—Cellulose or derivatives thereof
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28—N-glycosides
    • C12P19/30—Nucleotides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к медицине , точнее к способам получени  5- рибонуклеотидов. Цель изобретени  - предупреждение разложени  дезокси- рибонуклеиновой кислоты и упрощение способа. Дл  этого фермент 5 -фосфо- диэстеразу иммобилизуют, образу  ко- валентную св зь между ферментом и полимерным носителем с каналами от 100 нм и объемом пор 2-3 м/г (например , эпоксидный носитель R,  вл ющийс  сополимером из глицидилметакрила- та, аллилглицидилового эфирга, метак- риламида и метилен-бис-метакриламида. Раствор природных нуклеиновых кислот, содержащий дезоксирибонуклейновую кислоту с мол.м, более 100000 и рибонуклеиновую с мол.м, менее 50000, пропускают через колонку с 5 -фосфо- диэстеразой. Дп  получени  инозин- монофосфата гидролизат пропускают через колонку с фиксированной на носителе 5 -дезаминазой. Результат соединени  определ ют, измер   ферментативную активность на полимере и в промывочной воде. 1 з.п. ф-лы. СО

Description

4
оо
СП
СП
00
Сл1
I Изобретение относитс  к области едиЦины, в частности к способам по- Ьучепи  5 -рибонуклеотидов. I Целью изобретени   вл етс  преду- Ьреждет1ие разложени  дезоксирибонук- Ьеиновой кислоты ii упрощение способа а счет использовани  природных нук- Ьеиновых кислот, содержащих дезокси- Ьибонуклеиновую кислоту с мол.м. бо- fiee 100,000, и рибонуклеиновую кислоту с мол.м. менее 50000.
Способ осуществл етс  следующим образом.
П р-и м е р 1. Фермент 5 -фосфодиэстеразу иммобилизуют путем образовани  ковалентной св зи между ферментом и полимерн 1м носителем, в качестве которого используют такие полимерные пористые носители, которые имеют каналы диаметром от 100 им и объем 1 пор 2-3 мл/г, предпочтительно 2,5 мл/г Особенно хорошим носителем дл  5- фосфодиэстеразы  вл етс  эпоксидный носитель (R) Ойпергит С, представ- л ющий собой сополимер из глицидил- метакрилата, аллилглицидилового эфи-- ра, метакриламида и метилен-бис-мет акриламида. Фермент соеди г ют с полимерным носителем при услови х, не, вли ющих на стабильность фермента. Результат соединени  определ ют путем измерени  ферментативной активно сти на полимере и в промывочной воде. Троцесс осуществл ют следующим образом .
2 г 5 -фосфодиэст разы (нуклеазы IR р, фирма Амано) раствор ют в 80 мл Л М буферного раствора фосфата с рН ;7,8. Раствор подают в колонку, содер- 20 г эпоксидного носител  (Ой- |пергит с) с каналами диаметром до ilOO нм и объемом пор 2-3 ют/г, слег- |ка перемешивают и оставл ют на 3 дн  1при комнатной температуре. Полимерную :смолу отфильтровывают и промывают следующими жидкост ми: бидистилл том ;1 Ы раствором ЫаНСОз; 0,5 М раствором Nad; бидистилл том; 1 М раствором HCi; бидистилл том. Промытую смолу помещают в 0,05 М ацетато-бу- |ферный раствор и загружают в стекл нную колонку с двойной рубашкой диа- метром 2,6 и высотой 20 см. Дл  измерени  активности иммобилизованной ;5 -фосфодиэстеразы субстрат-раствор, |состо щий из 4% РНК и 0,1 мН раство- ра сульфата цинка и 0,05 М ацетата- буферного раствора с рИ 4,5, про
,,
5 0 5
0 5
0
5
0
5
пускают через колонку со скоростью- протекани  (SV) 20-30h
,при 55 с, Количество мононуклео- - тидов определ ют фотометрически с по- мощ.ью жидкостной хроматографии на колонке (reversed phase сили- кагель, гидрофобизированньп алифатическими соединени ми с углеводной цепочкой , содержащей до 18 атомов углерода ) . Элюирование осуществл ют водой , подкисленной фосфорной кислотой до рН 2,1, при скорости потока 2 мл/ /мин. Про вление осуществл ют с помощью УФ-излучени  с длиной волны 254 нм.
П р и м е р 2. Водный раствор, содержащий 0,9% (вес/обьем) природной нуклеиновой кислоты, в котором количество РЫК и ДНК находитс  в соотношении 4:1 и ДНК имеет мол.м. более 100000, а РНК - менее 50000, довод т до рН 4,5 лед ной уксусной кислотой и пропускают через колонку с иммобилизованной 5 -фосфодиэстеразой (согласно примеру 1) при 55 С. Скорость потока через колонку регулируют таким образом, чтобы осуществл лось 100%-ное превращение РНК. Дл  выделени  5 -рибонуклеотидов разрушенньш раствор нуклеиновых кислот п ропуска- ют через колонку, заполненную слайо- основной нo} ooб eннoй смолой DUOLIIE А 7 в ацетатной форме. Дл  очистки и вьщелени  ДНК элюат с колонны концентрируют с помощью ROMICON-патро- нов с по-лым волокном (полисульфоновое волокно, граница выделени  100000) и подвергают диализу по отношению к воде,, не содержащей солей. .Через мембрану могут проходить молекулы с мо- лекул рным весом менее 50000. ДНК осаждают, довод  рН раствора до 2,0 и после высушивани  получают, в виде белого порошка. Отделение смеси 5.- рибонуклеотидов осуществл ют путем селективной десорбции ацетатными растворами повьшающейс  концентрации: СМР: 0,1 н. уксусна  кислота; AMP: 0,3 н. уксусна  кислота; VMP:. н. ацетат аммони ; GMP: 0,5 н. ацетат аммони . Общий 5 -рибонуклеотидов 75-80%.
П р .и м е Р З. Водный раствор, содержащий 3% (вес/объем) природной нуклеиновой кислоты, в котором количество РНК и ДНК находитс  Б соотношении 4:1 и ДНК имеет мол.м. более 100000, а РНК - менее 50000, довод т
p no 4,5 лед ной уксусно 1 кислотой и при 55 С пропускают чере ч колонку с иммoбнлизoIзaf нoй 5 -фосфоднэстера- зой соглаС Но примеру 1 . Скорость потока через колонку регулируют таким образом, чтобы осуществл лось 100%- ное превращение РНК (например, при активности 265 г РНК на 1 л фиксированного фермента в час раствор пропускают через колонку с помощью насоса со скоростью 2,12 л/ч). В полученном растворе содержитс  также 5 -аде- нозинмонофосфат. Дл  получени  из него 5 -инозинмонофосфата раствор пропускают через вторую колонку с иммобилизованной 5 -дезаминазой (также согласно примеру 1). Элюат с колонки концентрируют с помощью мембран на основе полых волокон и прошедшую через мембрану часть довод т до рН 1,5- 2,0 концентрированной сол ной кислотой , затем пропускают через колонку, заполненную гранулированным активированным углем, адсорбируют 5 -рибо- нуклеотиды. Из оставшейс  части при рН 2,0 осаждают ДНК и затем высушивают . Выделение смеси 5 -рибонуклеоти- дов осуществл ют путем селективной
10
кис. итой, Осажденнук ДИК отфипьт- ровывают и высушивают.
Общий вьгход смрси З -рибонуклеоти- дрв, содержащей ДНК, составл ет 75- 80Z. . . , Таким образом, способ получени  5 -рибонуклеоТидов не требует предварительной очистки РНК.и тем самым не влечет за собой разрушение ДНК. Кроме того, раствор, полученный гидролизом нар ду с 5 -рибонуклеотидами и неразрушенной ДНК содержит также еще примеси протеинов и солей ферментов , которые можно выдел ть очисткой.
Раствор, полученный гидролизом природных нуклеиновых кислот, содержащий также 5 -аденозинионофосфат, можно испольаовать непосредственно дл  получени  5 -инозинмонофосфата, примен емого в качестве усилител  вкусовых свойств, при этом не требуетс  предварительное вьщеление ДНК.
25 Форм у, л а изобретени 
15
20
1. Способ получени  смеси 5 -рибо- нуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибону- десорбции щелочными метанольн ыми раст- о клеиновую кислоту, путем гидролиза ворами следующего состава: 50 об.ч. рибонуклеиновой кислоты с последующим метанола, 49 об.ч. воды и 1 об.ч. концентрированного водного раствора амвыделением продукта ионообменной или адсорбционной хроматографией, о т - личаю.щийс  тем, что, с целью предупреждени  разложени  дезокси- рибонуклеиновой кислоты и упрощени  способа, раствор природных нуклеино- (вес/объем) природной нуклеиновой кис- вых кислот, содержащий дезоксирибо- лоты (РНК),ДНК 1:1, мол.м. ДНК более нуклеиновую кислоту с мрл.м. более ЮООРО, РНК - менее 50000) обрабаты- 100000 и рибонуклеиновую кислоту с вают., по примеру 2 и дл  разложени  :мол.м. менее 50000, пропускают через
миака. Общий выход 5 -рибонуклеоти- дов 75-80%.
П-р и м е р 4. Водньй раствор 2%
пропускают через колонку с и мoбнли- зованной 5 -фосфодиэстеразой. Элюат с помощью NaOH довод т до рН 8,5 и
с целью адсорбции нуклеотидов пропускают через колонку, заполненную силь-
0
кис. итой, Осажденнук ДИК отфипьт- ровывают и высушивают.
Общий вьгход смрси З -рибонуклеоти- дрв, содержащей ДНК, составл ет 75- 80Z. . . , Таким образом, способ получени  5 -рибонуклеоТидов не требует предварительной очистки РНК.и тем самым не влечет за собой разрушение ДНК. Кроме того, раствор, полученный гидролизом нар ду с 5 -рибонуклеотидами и неразрушенной ДНК содержит также еще примеси протеинов и солей ферментов , которые можно выдел ть очисткой.
Раствор, полученный гидролизом природных нуклеиновых кислот, содержащий также 5 -аденозинионофосфат, можно испольаовать непосредственно дл  получени  5 -инозинмонофосфата, примен емого в качестве усилител  вкусовых свойств, при этом не требуетс  предварительное вьщеление ДНК.
5
25 Форм у, л а изобретени 
выделением продукта ионообменной или адсорбционной хроматографией, о т - личаю.щийс  тем, что, с целью предупреждени  разложени  дезокс рибонуклеиновой кислоты и упрощени  способа, раствор природных нуклеино- вых кислот, содержащий дезоксирибо- нуклеиновую кислоту с мрл.м. более 100000 и рибонуклеиновую кислоту с мол.м. менее 50000, пропускают через
пор 2-3 мл/г.
колонку с 5 фосфодиэстеразой, предварительно иммобилизованной .на макропористом полимерном носителе с каналами диаметром до 100 нм и объемом

Claims (3)

1. Способ получения смеси 51-рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту, путем гидролиза рибонуклеиновой кислоты с последующим выделением продукта ионообменной или адсорбционной хроматографией, о т личаю.щийся тем, что, с целью предупреждения разложения дезоксирибонуклеиновой кислоты и упрощения способа, раствор природных нуклеиновых кислот, содержащий дезоксирибонуклеиновую кислоту с мол.м. более 100000 и рибонуклеиновую кислоту с :мод.м. менее 50000, пропускают через колонку с 51-фосфодиэстеразой, предварительно иммобилизованной .на макропористом полимерном носителе с каналами диаметром до 100 нм и объемом пор 2-3 мл/г.
2. Способ по п.1/ о т л и ч а rout и й. с я тем, что для получения
5'-инозинмонофосфата: гидролизат пропускают через колонку с фиксированной на носителе 5'-дезаминазой.
SU823494005A 1981-09-17 1982-09-16 Способ получени смеси 5 @ -рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту SU1435158A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19813136940 DE3136940A1 (de) 1981-09-17 1981-09-17 "verfahren zur herstellung von 5'-ribonucleotiden"

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1435158A3 true SU1435158A3 (ru) 1988-10-30

Family

ID=6141916

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823494005A SU1435158A3 (ru) 1981-09-17 1982-09-16 Способ получени смеси 5 @ -рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту

Country Status (12)

Country Link
US (1) US4649111A (ru)
EP (1) EP0075262B1 (ru)
JP (1) JPS5867192A (ru)
KR (1) KR840001593A (ru)
AT (1) ATE24019T1 (ru)
AU (1) AU551838B2 (ru)
CA (1) CA1191102A (ru)
DE (2) DE3136940A1 (ru)
ES (1) ES515775A0 (ru)
RO (1) RO84708B (ru)
SU (1) SU1435158A3 (ru)
ZA (1) ZA826796B (ru)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL90600A0 (en) * 1988-06-16 1990-01-18 Du Pont Polynucleotide phosphorylase immobilized on epoxy-activated beads
WO1991000346A1 (en) * 1989-07-03 1991-01-10 E.I. Du Pont De Nemours And Company Polynucleotide phosphorylase immobilized on tris(hydroxymethyl)methylacrylamide polymer beads
US6277562B1 (en) * 1993-01-26 2001-08-21 Robert-A. Ollar Method for paraffinophilic isolation and identification from a body specimen
CA2365780C (en) 1999-03-05 2012-01-31 Mitsubishi Rayon Co., Ltd. Carriers having biological substance
BRPI0406903A (pt) * 2003-01-27 2006-01-03 Dsm Ip Assets Bv Produtos de 5'-ribonucleotìdeos
WO2004078342A1 (ja) 2003-03-04 2004-09-16 Manac Inc. アニオン性置換基を有する物質の捕捉剤
AU2003902303A0 (en) * 2003-05-14 2003-05-29 Protech Research Pty Ltd Extracting and purifying enzymes
WO2008128209A1 (en) * 2007-04-12 2008-10-23 Designer Molecules, Inc. Polyfunctional epoxy oligomers
ITUA20161550A1 (it) * 2016-03-10 2017-09-10 Prosol S P A Procedimento per la produzione di RNA
EP4166665A1 (en) * 2021-10-12 2023-04-19 Prosol S.p.A. Process for the production of rna and 5'-ribonucleotides with a high degree of purity

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3139385A (en) * 1960-12-20 1964-06-30 Takeda Chemical Industries Ltd Method for the production of 5'-nucleotides
GB940660A (en) * 1961-02-04 1963-10-30 Waldhof Zellstoff Fab Improvements in and relating to the production of 5-nucleotides
DE2215539C2 (de) * 1972-03-30 1984-08-02 Bayer Ag, 5090 Leverkusen Neue wasserunlösliche Enzym-, insbesondere Penicillinacylase-oder Enzyminhibitor-Präparate
US4044196A (en) * 1972-03-30 1977-08-23 Bayer Aktiengesellschaft Crosslinked copolymers of α,β-olefinically unsaturated dicarboxylic anhydrides
FR2308636A1 (fr) * 1975-04-23 1976-11-19 Choay Sa Matrices portant simultanement plusieurs fonctions enzymatiques differentes, leur procede de production, et procede de preparation d'oligonucleotides et de polynucleotides a terminaisons specifiques, a l'aide desdites matrices
JPS5218892A (en) * 1975-08-04 1977-02-12 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd Process for preparing 5'-ribonucleotides
US4206243A (en) * 1976-07-27 1980-06-03 Hoechst Aktiengesellschaft Process for reducing the contents of lipids and nucleic acid in microbial cell masses
DE2722751C2 (de) * 1977-05-20 1990-06-21 Röhm GmbH, 6100 Darmstadt Perlpolymerisat mit einem Teilchendurchmesser von 5 bis 1000 μm und innerem Hohlraum
US4208309A (en) * 1977-05-20 1980-06-17 Rohm Gmbh Pearl polymer containing hollow pearls
US4342833A (en) * 1977-05-31 1982-08-03 Bethesda Research Laboratory Immobilized restriction endonucleases
DE2732301C3 (de) * 1977-07-16 1980-12-11 Roehm Gmbh, 6100 Darmstadt Verfahren zur Herstellung von stabilisierten trägergebundenen Proteinen
JPS5592672A (en) * 1979-01-05 1980-07-14 Ajinomoto Co Inc Preparation of yeast extract

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патент JP № 53-20496, кл. С 07 С 103/85, 1978. *

Also Published As

Publication number Publication date
KR840001593A (ko) 1984-05-07
JPS5867192A (ja) 1983-04-21
ES8306163A1 (es) 1983-05-01
AU8844782A (en) 1983-03-24
ATE24019T1 (de) 1986-12-15
ES515775A0 (es) 1983-05-01
RO84708A (ro) 1984-07-17
US4649111A (en) 1987-03-10
DE3136940A1 (de) 1983-03-31
EP0075262B1 (de) 1986-12-03
AU551838B2 (en) 1986-05-15
DE3274560D1 (en) 1987-01-15
RO84708B (ro) 1984-09-30
EP0075262A3 (en) 1984-10-10
ZA826796B (en) 1983-07-27
EP0075262A2 (de) 1983-03-30
CA1191102A (en) 1985-07-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SU1435158A3 (ru) Способ получени смеси 5 @ -рибонуклеотидов из раствора нуклеиновых кислот, содержащего дезоксирибонуклеиновую кислоту
JP6510074B2 (ja) Ｎａｄｐｈの精製プロセス
KR890003956A (ko) L-아미노산 함유 발효액으로부터 l-아미노산을 회수하는 방법
US4335209A (en) Process for preparation of L-tryptophan by enzyme
CA1228601A (en) Purification of l-phenylalanine
EP0330217B1 (en) Process for the continuous biotechnological preparation of optical isomer S(+) of 2-(6-methoxy-2-naphthyl)propionic acid
CN105238841A (zh) 头孢菌素c吸附废液中dcpc的回收与转化方法
CN104313071B (zh) 高纯L‑α‑氨基酸的生物合成方法
CN1059356C (zh) 一种改性聚砜超滤膜及其制备和应用
JP2010095450A (ja) モノカルボン酸の製造方法
CN109836468A (zh) 一种从微生物发酵液中分离纯化胞二磷胆碱钠的方法
JP3315158B2 (ja) グルタチオンの精製法
Chibata et al. Continuous enzyme reactions by immobilized microbial cells
JPS62249956A (ja) カルニチンの精製方法
JPS6216497A (ja) シチジン―５′―ジリン酸コリン１水和物結晶の製造法
JPS6094087A (ja) 固定された５′‐ホスホジエステラーゼおよびその製法
CN101085798B (zh) 一种三磷酸胞苷的晶胶吸附层析分离方法
CN102153605B (zh) 一种咪唑立宾的提纯方法
JPH05308984A (ja) Ｌ−タガトースの製造方法
KR20240036673A (ko) 시티딘-5'-이인산 화합물의 제조 방법
JPH0956390A (ja) Ｌ−プシコースの製造方法
Danenberg et al. [64] Purification of thymidylate synthetase with 2′-deoxyuridylate-agarose
RU2230119C1 (ru) Способ получения дисахарида
Samejima et al. Production of 5’-Mononucleotides Using Immobilized 5’-Phosphodiesterase and 5’-AMP Deaminase
CN116731990A (zh) D-氨基酸氧化酶及其应用和酶法制备l-正缬氨酸的方法