SU1032401A1 - Способ определени глюкозы - Google Patents

Способ определени глюкозы Download PDF

Info

Publication number
SU1032401A1
SU1032401A1 SU823374891A SU3374891A SU1032401A1 SU 1032401 A1 SU1032401 A1 SU 1032401A1 SU 823374891 A SU823374891 A SU 823374891A SU 3374891 A SU3374891 A SU 3374891A SU 1032401 A1 SU1032401 A1 SU 1032401A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
glucose
membrane
concentration
glucooxidase
peroxidase
Prior art date
Application number
SU823374891A
Other languages
English (en)
Inventor
Юозас Юозович Кулис
Вальдас-Станисловас Альгимантович Лауринавичюс
Видуте Витовна Гурявичене
Марите Винцовна Песлякене
Виктор Липович Калихман
Анатолий Борисович Галицкий
Юрий Васильевич Чирков
Original Assignee
Институт биохимии АН ЛитССР
Предприятие П/Я Г-4444
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биохимии АН ЛитССР, Предприятие П/Я Г-4444 filed Critical Институт биохимии АН ЛитССР
Priority to SU823374891A priority Critical patent/SU1032401A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1032401A1 publication Critical patent/SU1032401A1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Изобретение относитс  к исследованию и анализу материалов путем определени  электрохимических параметров , а точнее, к электрохимическим методам анализа физиологически активных соединений в присутствии ферментов,
Известен способ определени  глюкозы с использованием ферментов, заключающийс  в измерении параметров  чейки Ьри проведении электролиза в растворе 1 .
Недостаток способа св зан с одноразовым использованием ферментов и применением сложной аппаратуры. Определение глюкозы в крови требует удалени  -белков.
Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому  вл етс  способ определени  глюкозы с использованием глюкооксидазной мембраны , заключающийс  в измерении параметров  чейки при проведении электролиза в растворе, содержащем анализируемое вещество 2j.
Недостатки известного способа зак/ ючаютс  в том, что при погруже нии электрода в исследуемый раствор глюкоза, проникает в мембрану, где под действием фермента образуетс  перекись водорода, электрохимическое окисление которого осуществл етс  при 0,9 В. Способ недостаточно селективен и точен, так как при этом потенциале окисл ютс  также другие вещества, наход щиес  в реальных биологических растворах (аскорбинова  кислота, мочева  кислота, аминокислоты и т.д.) .
Цель изобретени  - повышение точности измерений.
Поставленна  цель достигаетс  тем что согласно способу определени  глюкозы с использованием глюкооксидазной мембраны, заключающемус  в измерении параметров  чейки при проведении электролиза в растворе, содержащем анализируемое вещество, перед измерением в глюкооксидазную мембрану ввод т дополнительно пероксидазу а электролиз провод т в слабощелочном растворе, в который ввод т ферроцианид в концентрации, соответствующей предельному току.
Пример 1. 30 мг глюкооксидазы , 50 мг пероксидазы и 100 мг альбумина раствор ют в 1 мл 0,01М фосфатного буферного раствора рН
7,2; О,Ж КС1. Смесь обрабатывают 0,08 мл 25 -ного глутарового альдегида и 0,75 мл выливают на стекл нную подложку площадью 25 см. Высшенную мембрану толщиной 0,1 мм и диаметром 2 мм накладывают на токоподвод щий электрод и покрывают диализной мембраной.
Результаты определени  глюкозы при помощи мембраны, содержащей глюкооксидазу и пероксидазу, в буферных растворах (0,01 М фосфатный буфер рН 7,2; 1 мМ ферроцианида кали , 25 С) представлены в табл.-1 .
Пример 2. Каталитическую мембрану изготавливают из 30 мг глюкооксидазы и 30 мг пероксидазы как в примере 1.
Результаты определени  глюкозы н платиновом электроде в буферном растворе в зависимости от концентрации ферроцианида кали  ( рН 7,2; 25 С; концентраци  глюкозы 1,2 мМ; 0,1 В) представлены в табл.2.
Данные табл.2 показывают, что резка  зависимость от концентрации ферроцианида кали  наблюдаетс  до 1 мМ.
П р .и м е р 3- Смесь изготавливают из 30 мг глюкооксидазы и 0 мг пероксидазы аналогично примеру 1, но поливают не на стекл нную подложку , а на диализную мембрану. Высушенную мембрану толщиной 0.05 мм накладывают пр мо на токоотвод щий материал и прикрепл ют резиновым кольцом. Определ ют количество глюк дес тикратно разбавленной 0,01 мМ ффатным буфером ( рН 7,2; 0,1 М КС1) крови. Дл  определени  остаточного тока в крови 2 мл дес тикратно разбавленной крови обрабатывают 1 мг глюкооксидазы и 1 мг каталазы до полного удалени  глюкозы в течение 20 мин. Определение глюкозы провод  как в других примерах.
Результаты определени  глюкозы в крови (стеклоуглеродный электрод, 08, концентраци  (CN) 1 мМ; 0,01 М фосфатный буфер рН 7,2; п 5) представлены в табл. табл.З видно, что величина остаточного тока не превышает II, так как основные электрохимически активные вещества - аскорбинова , мочева  кислоты - не окисл ютс  при нулевом потенциале. Способ определени  глюкозы обладает высокои точностью, коэффициент вариации не превышает 2% при п 5. Пример . Ферментную мембра ну из 30 иг глюкооксидазы и 50 мг пероксидазы изготавливают и накладывают на платиновый электрод аналогично примеру 3. Мембрану по прототипу готов т в отсутствии перокси дазы. Предлагаемый способ определени  глюкозы по сравнению с прототипом предлагаемый способ - 1мМ ферроцианида кали , ОВ,стеклоуглеродный электрод)отличаетс  селективностью и точностью. Данные табл. показывают, что согласно предлагаемому способу аскорби -нова  и мочева  кислоты не мешают определению глюкозы, тогда как согласно прототипу концентраци  глюкозы , определенна  в смес х, в три раза превышает в буферных растворах. В глюкооксидазной мембране, содержащей пероксидазу и ферроцианид кали , происход т следующие процессы: Глюкоза + 02+ Глюкооксидаза - Глю- конолактон + ,ч 2 Fe(CN) + ZH- -+Пероксидаза - Fe(CN) + . Восстановление образующегос  ферроцианида приводит к генерации тока в  чейке.Катодный ток восстановлени  ферроцианида мало мен етс  (до 0,1В), однако резко падает при более высоки значени х потенциала. Это определ ет наибольший потенци ал Со, 18) действи   чейки. Нало;; ение отрицательного потенциала, к примеру 0,1 В, приводит к катодному восстановлению кислорода, поэтому  вл етс  значительным остаточный ток, величина которого мен етс  от концентрации глюкозы. Именно этим определ етс  по 014 тенциал действи   чейки 0-0,1 8 отн. насыщенного Ag/AgCl электрода. Так как потенциал Ag/AqC1 электрода мен етс  при изменении концентрации КС 1 от насыщенного раствора до О,Ж в интервале 0,201-0,31 В отн.и.в.э., то требование проведени  электрол 1за при нулевом потенциале отн. Aq/AgCl электрода полностью и однозначно задает услови  реализации способа. Очевидно, вместо Aq/AgCt электрода могут быть применены другие электроды: каломельный, водородный и т.д. Но тогда способ будет (еализован, когда электролит выполн етс  при 0, (нормальный, каломельный электрод), + 0,201 В (нормальный водородный электрод)и т.д. Выбор рН 7,2 обусловлен физиологическим значением этого параметра. Способ применим и при более высоких рН. однако в более щелочной области уменьшаетс  каталитическа  активность ферментов. С этим св зано уменьшение тока.Так,если при рН 7,2 и 0,8 мМ глюкозы ток  чейки равен мкА/см , то при рН 7,3б он равен 8,7 мкА/см, а при рН 7р5 6,3 мкА/см. Ток  чейки, реализующий предлагаемый способ, зависит от концентрации ферроцианида кали . Из данных табл.2. видно, что при увеличении концентрации ферроцианида до 1 мМ ток увеличиваетс , а при концентраци х соединени  выше 1 мМ практически перестает мен тьс . Дл  того, чтобы ток  чейки не зависел от концентрации медиатора, примен ютс  такие его количества, которые соответствуют предельному определении глюкозы в проточных датчиках с целью экономии реагента примен етс  1 мМ раствор, но система также хорошо-действует с использованием 2 или 3 мМ ферроцианида. Таблица 1
8.7
10,1 10,1
8.7
1С,1 ,8
9,0
0,8
-0,1 -0,2
Х )
1 мМ; Концентраци 
Концентраци 
0,125 0,25 0,50 1,02,0 3,0 ферроцианида кали , мМ Ток  чейки,мкА/см 2,64 6, 7,92 10,32
Продолжение табл.1
5,5 7,5
Таблица
5,0 10,0 10,68 11,04 11,10 11,10 Таблица 3

Claims (1)

  1. СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ГЛЮКОЗЫ с, использованием глюкооксидазной мембраны, заключающийся в измерении параметров ячейки при проведении электролиза в растворе, содержащем анализируемое вещество, отличающийся тем, что, с целью повы- . шения точности измерений, перед измерениями в глюкооксидазную мембрану вводят дополнительно пероксидазу, а электролиз проводят в слабощелочном растворе, в который вводят ферроцианид калия в концентрации, соответствующей предельному току.
SU823374891A 1982-01-05 1982-01-05 Способ определени глюкозы SU1032401A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823374891A SU1032401A1 (ru) 1982-01-05 1982-01-05 Способ определени глюкозы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823374891A SU1032401A1 (ru) 1982-01-05 1982-01-05 Способ определени глюкозы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1032401A1 true SU1032401A1 (ru) 1983-07-30

Family

ID=20989872

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823374891A SU1032401A1 (ru) 1982-01-05 1982-01-05 Способ определени глюкозы

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1032401A1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Shi et al. Determination of uric acid at electrochemically activated glassy carbon electrode
US5746898A (en) Electrochemical-enzymatic sensor
US4127448A (en) Amperometric-non-enzymatic method of determining sugars and other polyhydroxy compounds
Zen et al. Square-wave voltammetric determination of uric acid by catalytic oxidation at a perfluorosulfonated ionomer/ruthenium oxide pyrochlore chemically modified electrode
Palleschi et al. Amperometric tetrathiafulvalene-mediated lactate electrode using lactate oxidase absorbed on carbon foil
EP0266432A1 (en) Microelectrode for electrochemical analysis
JPH04233446A (ja) 電気化学的酵素センサ
Karube et al. Microbiosensors for acetylcholine and glucose
Milardović et al. Glucose determination in blood samples using flow injection analysis and an amperometric biosensor based on glucose oxidase immobilized on hexacyanoferrate modified nickel electrode
JPH01114746A (ja) バイオセンサ
Nowall et al. Detection of hydrogen peroxide and other molecules of biologicl importance at an electrocataltic surface on a carbon fiber microelectrode
Schick et al. Amperometric nonenzymatic determination of serum glucose by means of a nickel-catalyst electrode.
Hikima et al. Enzyme sensor for L-lactate with a chitosan-mercury film electrode
SU1032401A1 (ru) Способ определени глюкозы
JPH0529062B2 (ru)
RU2049991C1 (ru) Способ определения метаболитов в биологических жидкостях, активный элемент для его осуществления
Khurana et al. Detection mechanism of metallized carbon epoxy oxidase enzyme based sensors
JP2781980B2 (ja) 測定電極並びに該電極を用いた過酸化物濃度の測定方法及び基質又は有機物濃度の測定方法
SU1180771A1 (ru) Способ электрохимического определени глюкозы и электрод дл его осуществлени
SU1326978A1 (ru) Способ электрохимического определени этилового спирта и ферментный электрод дл его осуществлени
He et al. Differential pulse adsorptive anodic stripping voltammetric determination of pipemidic acid in tablets at a carbon fiber microdisk electrode
JP3035572B2 (ja) コレステロールセンサ
SU1242803A1 (ru) Способ определени концентрации лактата
Godjevargova et al. Immobilization of glucose oxidase and acetylcholinesterase onto modified polyamide sorbent
Kojima et al. Enzyme electrode for determination of glycerophosphate by combined use of glycerophosphate oxidase and peroxidase