RU2821779C1 - Способ комплексной коррекции нерубцовых алопеций в эксперименте - Google Patents

Способ комплексной коррекции нерубцовых алопеций в эксперименте Download PDF

Info

Publication number
RU2821779C1
RU2821779C1 RU2023118071A RU2023118071A RU2821779C1 RU 2821779 C1 RU2821779 C1 RU 2821779C1 RU 2023118071 A RU2023118071 A RU 2023118071A RU 2023118071 A RU2023118071 A RU 2023118071A RU 2821779 C1 RU2821779 C1 RU 2821779C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
miliacin
anagen
oleanene
methoxy
alopecia
Prior art date
Application number
RU2023118071A
Other languages
English (en)
Inventor
Татьяна Владимировна Николаева
Валентина Сергеевна Полякова
Оксана Владимировна Гусева
Наталия Васильевна Шарапова
Надежда Владимировна Башмалух
Валерий Иргюнович Ким
Александр Дмитриевич Николаев
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2821779C1 publication Critical patent/RU2821779C1/ru

Links

Abstract

Группа изобретений относится к медицине, а именно к экспериментальной дерматологии. В нулевой день эксперимента производят индукцию анагена путем депиляции стержней волос с кожи спины. С первого дня эксперимента на очаг депиляции ежедневно наносят 1% гель тестостерона из расчета 5 мг/кг с последующим нанесением через 30 минут комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбита-олеатом с концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл. При моделировании андрогенной алопеции комплекс наносят в течение 28 суток. При моделировании алопеции, индуцированной циклофосфамидом, комплекс наносят в течение 15-33 дней с введением на девятый день эксперимента однократно внутрибрюшинно 125 мг/кг циклофосфамида. Группа изобретений позволяет изучить влияние комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбита-олеатом в условиях моделирования нерубцовых алопеций с различным этиопатогенезом и характером нарушения цикла волосяного фолликула для разработки новых способов лечения нерубцовых алопеций. 2 н.п. ф-лы, 13 ил., 6 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной дерматологии, и может быть использовано в качестве способа комплексной коррекции нарушений цикла и морфофункциональной регенерации волосяных фолликулов в экспериментальных моделях нерубцовых алопеций.
Нерубцовые алопеции представляют собой гетерогенную группу заболеваний, в основе которых лежит нарушение цикла волосяного фолликула (ВФ) [1]. Наиболее распространенной формой нерубцовых алопеций является андрогенетическая алопеция (АГА) [2]. Цикл ВФ при АГА характеризуется преждевременным вступлением ВФ в фазу катагена и задержкой перехода ВФ из фазы телогена в фазу анагена, что ассоциировано с сокращением продолжительности фазы анагена [3]. Наличие противопоказаний, побочные эффекты, ограниченная эффективность и доступность существующих средств и методов лечения АГА определяют актуальность разработки новых способов лечения этого заболевания [4, 5].
Волосяные фолликулы в фазе анагена чрезвычайно чувствительны к различным токсическим воздействиям, особенно к химиотерапевтическим препаратам, применяемым в онкологической практике. Клинико-патологически алопеция, индуцированная химиотерапией, является сочетанием анагеновой и телогеновой алопеции [6]. Алопеция, индуцированная химиотерапией, остается важной нерешенной клинической проблемой, особенно, учитывая вероятность влияния трихотропных препаратов на эффективность противоопухолевой терапии с увеличением риска метастазов злокачественной опухоли в кожу головы [6, 7]. Несколько классов фармакологических препаратов с различными механизмами действия были оценены на животных моделях алопеции, индуцированной химиотерапией. На сегодняшний день информация об их клинической эффективности не представлена [7].
Независимо от этиологии и клинической разновидности эмоциональный стресс, вызванный выпадением волос, их поредением и отсутствием роста с формированием алопеции, существенно снижает качество жизни [4, 8].
Пентациклические тритерпеноиды обладают широким спектром биологической и фармакологической активности [9, 10]. К числу пентациклических тритерпеноидов относится милиацин, имеющий химическую формулу 3-β-метокси-Δ18-олеанен, и выделяемый из семян проса [11, 12]. В ряде экспериментальных исследований доказана его мембранопротекторная [13, 14], антиоксидантная [15], антимутагенная [16], антиапоптотическая активность, способность регулировать экспрессию генов, отвечающих за редокс-баланс клеток [17], повышать терапевтическую активность противоопухолевых препаратов, в частности метоторексата [18], и другие свойства, наряду с низкой токсичностью [19]. Установлено, что экстракт проса, называемый в ряде работ милиацин [20-22], значительно увеличивает пролиферативную и метаболическую активность кератиноцитов человека, указывая на то, что он может стимулировать рост волос [23].
Приоритетным для коррекции алопеций является топическое введение трихотропных средств, что позволяет создавать их высокие локальные концентрации в очагах поражения кожи [24]. Однако липофильных соединений, к числу которых относится милиацин - 3-β-метокси-Δ18-олеанен, характеризуются низкой трансдермальной проницаемостью. С учетом морфологических особенностей кожи и различной полярности слоев кожи, относительно свободное прохождение липофильных соединений возможно только через роговой слой, обладающий гидрофобными свойствами, с ограниченной проницаемостью в более глубокие слои эпидермиса, дерму и гиподерму, где расположены кровеносные сосуды и луковицы волосяных фолликулов [25].
Уровень техники
Известно средство, предназначенное для предотвращения или замедления выпадения волос (Семейство патентов АТ-173608-Т; DE-69414857-D1; DE-69414857-T2; ЕР-0714276-А1; ЕР-0714276-В1; ES-2126136-Т3; FR-2708854-A1; FR-2708854-B1; WO-9505146-A1 Composition against hair loss and brittle nails» J.-P. Maurice Oury, 13.08.1993). Средство представляет композицию для лечения кожного покрова, в частности против выпадения волос и ломкости ногтей, предпочтительно перорального введения, отличающаяся тем, что содержит эффективную дозу одного, по крайней мере, из следующих компонентов: инозитол, кунжут (сухой экстракт), просо (экстракт), экстракт морских водорослей, цинк и магний, предпочтительно со следующими составляющими: серосодержащими аминокислотами, такими как L-цистин, витаминами, такими как витамин Н (биотин) и/или витамином В5 (пантотеновая кислота) в составе капсул. Недостатком известного технического решения является то, что, во-первых, используется экстракт проса, при этом содержание милиацина, как чистого активного вещества, не указывается, во-вторых, экстракт проса является необязательным компонентом композиции.
Известно применение композиции для улучшения внешнего вида волос и способ получения блестящих волос (семейство патентов СА-3016934-А1; DK-3453381-T3; ЕР-3453381-А1; ЕР-3453381-В1; ES-2850350-T3 «Method and use of a composition for improving hair арреагапсе» S. Boudon, P. Kurka, C. Gnacke [et al.], 08.09.2017). В указанных патентах раскрывается нетерапевтический метод, характеризующийся приемом пищевой добавки в форме капсул, содержащих экстракт проса, а также биотин, L-цистин, пантотеновую кислоту, для придания волосам блеска.
В качестве прототипа выбран способ применения косметической, фармацевтической или диетической композиции, содержащей масло проса, экстракт пшеницы с полярным органическим растворителем и фармацевтически приемлемую среду, а также способ получения такой композиции (Патент № US-9180135-B2 «Miliacin and sphingolipids and/or phospholipids composition for hair and scalp саге», F. Lamay, I. Lamour, E. Gaillard, 26.04.2013. Семейство патентов EP-2821052-A1 Combination of miliacin and polar lipids, in particular of sphingolipids and/or phospholipids, for care of the hair and scalp»; EP-2821052-B1; ES-2614379-T3 Association of miliacin and polar lipids, specifically sphingolipids and / or phospholipids, for hair and scalp саге»; FR-3004947-A1 «Association of miliacin and polar lipids, in particular sphingolipids and / or phospholipids, for the care of hair and scalp»; FR-3004947-B1; US-2014315864-A1 Association of miliacin and polar lipids, particularly sphingolipids and/or phospholipids, for hair and scalp саге»; US-9180135-B2 «Miliacin and sphingolipids and/or phospholipids composition for hair and scalp саге», F. Lamay, I. Lamour, E. Gaillard, 26.04.2013). В частности, изобретение относится к композиции для перорального введения или для нанесения на кожу, содержащей комбинацию активных веществ для борьбы с выпадением волос и/или стимуляции роста и/или повторного роста волос, и/или улучшения их красоты (блеска, мягкости, силы) и/или повышения комфорта кожи головы, или борьбы с чрезмерным выпадением волос, и/или стимуляции роста волос, и/или улучшения их красоты. Раскрыто, в том числе, в семействе перечисленных патентов, приготовление композиции путем получения масла проса, содержащего милиацин, получение экстракта пшеницы в полярном органическом растворителе, и смешивание масла проса и экстракта пшеницы. Просяное масло присутствует в композиции в количестве, эффективном для получения косметической или диетической композиции, содержащей от 0,01% до 10% по массе милиацина или от 0,1 до 2% по массе милиацина в расчете на общую массу указанной косметической или диетической композиции. Масло проса получают путем измельчения целых или очищенных семян проса Panicum miliaceum с получением муки проса. Затем проводят экстракцию, например, с помощью сверхкритического CO2. Полученный экстракт сушат в вакууме и стабилизируют экстрактом розмарина. Состав получаемого экстракта проса, предпочтительно следующий: от 85 до 99% триглицеридов (включая линолевую, олеиновую и пальмитиновую кислоты), от 0,5 до 2% стеролов, в том числе, β-ситостерол, δ-7-стимастерол и другие стерины, и от 0,1 до 2,0% милиацина. Недостатком данного способа является содержание в композиции триглицеридов с полиненасыщенной линолевой и мононенасыщенной олеиновой жирными кислотами, которые способны подвергаться окислению, как спонтанно, так и при воздействии кислорода воздуха, тепла, а также в случае естественного присутствия следов металлов, в используемых растительных экстрактах. В процессе окисления могут изменяться физико-химические показатели композиции и биологическая активность входящих в состав композиции соединений, сокращаться сроки годности средства. Кроме того, известно, что состав и содержание активных веществ в исходном растительном сырье может изменяться в зависимости от ряда факторов, в том числе, места произрастания и условий выращивания [26], что может приводить к значительным колебаниям количества милиацина в составе композиции. Это особенно важно, с учетом плохой биодоступности, присущей пентациклическим тритерпеноидам [27]. В связи с этим, недостатком способа является недоучет особенностей трансдермальной проницаемости композиции для наружного применения, так как жирные кислоты, в частности цис-олеиновая кислота выступает в основном как усилитель проницаемости только через роговой слой [28]. Кроме того, масло проса помимо милиацина, содержит совокупность других соединений растительного происхождения с известной трихотропной биологической активностью [29, 30]. В связи с этим эффективность известного средства не может быть объяснена только присутствием милиацина.
Задача изобретения.
Основной задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является разработка способа коррекции нерубцовых алопеций у экспериментальных животных, основанного на методике использования комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена и полиоксиэтилированного-20-сорбитаноолеата в фиксированной комбинации.
Раскрытие изобретения
Сущность изобретения заключается в том, что по предлагаемому способу воспроизводятся нерубцовые алопеции с разным этиопатогенезом, а именно, животная модель андрогенетической алопеции и модель алопеции, индуцированной химиотерапией, путем введения циклофосфамида. Комплексная коррекция проявлений патологии волосяных фолликулов проводится топическим однократным ежедневным нанесением на кожу всей поверхности очага поражения милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в концентрации 30 мг/мл в комплексе с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом. Выбор основы обусловлен сложностью трансдермального переноса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена, характеризующегося липофильными свойствами. Полиоксиэтилированный-20-сорбитаноолеат является гидрофильным неионогенным поверхностно активным соединением со свойствами эффективного растворителя липофильных соединений, и отличается стабильностью, биосовместимостью, электронейтральностью, низкой токсичностью [31, 32, 33]. Свойства полиоксиэтилированного-20-сорбитаноолеата определяют его способность преодолевать кожный барьер и усиливать проницаемость введенных в его состав соединений [34]. Методика использования комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом зависит от разновидности экспериментальной нерубцовой алопеции. В модели андрогенетической алопеции комплекс милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом с концентрацией милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл, наносится на весь очаг поражения в течение действия значимого этиопатогенетического фактора, 28 суток. В случае алопеции, индуцированной циклофосфамидом, нанесение комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом с концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл, на очаг депиляции начинается с первых суток после индукции анагена, за 8 суток до введения алкилирующего химиотерапевтического средства циклофосфамида, и длится весь период наблюдения за животными (15 суток и 33 суток). Оценка результатов применения способа проводится морфологически с помощью количественной гистоморфометрии.
Осуществление способа
Эксперимент 1 проведен на мышиной модели андрогенетической алопеции. В стандартных условиях вивария 30 мышам-самцам линии C57BL/6 в возрасте 6-7 недель, был индуцирован анаген путем депиляции стержней волос с кожи спины. Длительность эксперимента составила 28 дней, день индукции анагена считался нулевым днем. Моделирование андрогенетической алопеции проводилось путем ежедневного нанесения всем животным опытных групп 1% геля тестостерона из расчета 5 мг/кг. Использовался препарат Андрогель® (производитель Besins-Healthcare), обеспечивающий непрерывную трансдермальную доставку тестостерона на протяжении 24 ч после однократного нанесения [35]. Способ коррекции включал топическое однократное нанесение на весь очаг поражения комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом. Концентрация милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в составе равнялась 30 мг/мл. Для приготовления состава использовали кристаллы химически чистого милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена, полученные стандартным способом [12].
Животных разделили на 5 групп по 6 животных в каждой:
- контрольная группа - интактная;
- I опытная группа - мыши, получавшие 1% гель тестостерона 5 мг/кг наружно (модель андрогенетической алопеции);
- II опытная группа - мыши, получавшие наружно 1% гель тестостерона 5 мг/кг наружно с последующим нанесением 2% раствора миноксидила (положительный контроль);
- III опытная группа - мыши, получавшие наружно 1% гель тестостерона 5 мг/кг наружно однократно с последующим, через 30 минут, нанесением комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом;
- IV опытная группа - мыши получали наружно 1% гель тестостерона 5 мг/кг наружно с последующим, через 30 минут, нанесением полиоксиэтилированного-20-сорбитаноолеата (плацебо) на всю площадь поражения.
Животных выводили из эксперимента на 28 сутки после индукции анагена путем смещения шейных позвонков. Эксперименты с животными проводились с соблюдением «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных». Полученные образцы кожи области депиляции помещали в забуференный 10% нейтральный формалин и фиксировали при комнатной температуре в течение суток. После стандартной гистологической проводки материал заливали в парафиновые блоки, полученные срезы толщиной 5 мкм, окрашивали гематоксилином Майера и эозином. Стадии цикла волосяных фолликулов определяли исходя из данных, представленных S. Müller-Röver et al. [36]. Путем проведения гистоморфометрического анализа рассчитывался удельный вес волосяных фолликулов в каждой из фаз цикла волосяного фолликула и индекс цикла волосяного фолликула для каждой исследуемой группы, как описано Maurer М. et al. (1998) [37], с учетом следующего соответствия: фаза фаза раннего анагена=1, фаза среднего анагена=2, фаза позднего анагена=3, фаза катагена=4, телогена=5. Морфометрический анализ изображений фрагментов кожи проводился с помощью программного обеспечения ImageJ. Диаметры наружных корневых влагалищ измерялись на уровне впадения сальной железы. Статистический анализ полученных данных выполнялся с использованием таблиц Excel и программы Statistica 10.0. Количественные данные представлены в виде средней арифметической и стандартной ошибки среднего (М±m), 95% доверительные интервалы рассчитаны по методу Уилсона. Для сравнения показателей нескольких независимых групп использовали критерий Краскела-Уоллиса, попарные сравнения проводили с помощью критерия Манна-Уитни. Различия считались статистически значимыми при р≤0,05. Уровень изменчивости морфологических признаков оценивали с помощью коэффициента вариации (Cv).
Осуществление способа в экспериментальной модели андрогенетической алопеции привело к повышению плотности волосяных фолликулов на единицу площади (табл. 1); увеличению диаметра наружных корневых влагалищ при снижении показателя их вариабельности (табл. 2); увеличению удельного веса волосяных фолликулов в фазе анагена и увеличению соотношения количества ВФ в фазе анагена к таковому в фазе телогена (табл. 3, фиг. 1, фиг. 2).
Применение комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеаненом с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, с концентрацией милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл, увеличивает продолжительность фазы анагена. Об этом свидетельствуют значения индекса цикла ВФ, соответствующие о средней фазе цикла ВФ. Максимальное значение индекса ВФ, равное 5,0, соответствует фазе телогена ВФ кожи мышей контрольной группы и I опытной группы. Значения индекса ВФ кожи животных II и IV опытных группы свидетельствуют об анаген-катагеновой и катаген-телогеновой трансформации ВФ соответственно. В отличие от индексов цикла ВФ указанных выше, данный показатель в коже мышей III опытной группы говорит о переходе ВФ из подфазы среднего анагена в подфазу позднего анагена, таким образом, свидетельствует о продлении фазы анагена (табл. 4).
Эксперимент 2 выполнен на мышиной модели алопеции, индуцированной химиотерапией. В стандартных условиях вивария 30 мышам-самцам линии C57BL/6 в возрасте 6-7 недель, был индуцирован анаген путем депиляции стержней волос с кожи спины. День эпиляции считали нулевым днем эксперимента. Моделирование алопеции, индуцированной химиотерапией, осуществлялось путем однократного внутрибрюшинного введения животным 125 мг/кг циклофосфамида на 9-е сутки после индукции анагена, когда ВФ кожи мышей вступили в финальную стадию фазы роста, в фазу анагена VI [37]. Способ коррекции включал предварительное начало топического нанесения поражения комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, которое начиналось на первые сутки после индукции анагена, то есть за восемь дней до введения циклофосфамида, и продолжалось до завершения эксперимента. Методика аппликации заключалась в ежедневном однократном нанесении комбинации на очаг алопеции. Концентрация милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в составе равнялась 30 мг/мл. Для приготовления состава использовали кристаллы химически чистого милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена, полученные стандартным способом [12].
Животных разделили на 3 группы по 10 животных в каждой:
- I группа (контроль) - животные получили однократную инъекцию 0,9% раствора натрия хлорида в количестве еквиобъемном вводимому количеству циклофосфамида;
- II группа (группа сравнения) - мыши получили 125 мг/кг циклофосфамида внутрибрюшинно однократно на 9-е сутки после индукции анагена и, начиная с 1-х суток после индукции анагена на кожу области депиляции наружно ежедневно им наносили полиоксиэтилированный-20-сорбитаноолеат (плацебо);
- III группа (опытная группа) - животные получили 125 мг/кг циклофосфамида внутрибрюшинно однократно на 9-е сутки после депиляции и начиная с 1-х суток после индукции анагена на кожу области депиляции ежедневно наружно им наносили милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в комбинации с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом.
Мыши выводились из эксперимента на 15-е и 33-и сутки после индукции анагена путем смещения шейных позвонков. Эксперименты с животными проводились с соблюдением «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных». Полученные образцы кожи области депиляции помещали в забуференный 10% нейтральный формалин и фиксировали при комнатной температуре в течение суток. После стандартной гистологической проводки материал заливали в парафиновые блоки, полученные срезы толщиной 5 мкм, окрашивали гематоксилином Майера и эозином. На 15-е сутки после индукции анагена оценивалась ранняя ответная реакция волосяных фолликулов на химическое повреждение циклофосфамидом. Количественная гистоморфометрия с расчетом индекса дистрофии ВФ проводилась исходя из данных и по методике, изложенной в работах Maurer, 1997; Bichsel, 2013 [37, 38], с учетом следующего соответствия: дистрофический анаген VI=1, ранний дистрофический катаген=2, средний дистрофический катаген=3, поздний дистрофический катаген=4, анаген I=4, анаген II=5, средний анаген=6, анаген VI=8.
На 33-и сутки оценивалась регенерация волосяных фолликулов в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. Количественная гистоморфометрия с расчетом индекса цикла ВФ выполнена исходя из данных и методики, представленных Maurer, 1997; Bichsel, 2013 [37, 38], с учетом следующего соответствия: дистрофический анаген VI=1, ранний дистрофический катаген=2, средний дистрофический катаген=3, анаген I=4, анаген II=5, анаген III=6, анаген VI=7, катаген=8, телоген=9. Морфометрический анализ изображений фрагментов кожи проводился с помощью программного обеспечения ImageJ. Статистический анализ полученных данных выполнялся с использованием таблиц Excel и программы Statistica 10.0. Нормальность распределения данных определяли с использованием критерия Шапиро-Уилка. Количественные данные представлены в виде средней арифметической и стандартной ошибки среднего (М±m). Для сравнения показателей нескольких независимых групп использовали критерий Краскела-Уоллиса, попарные сравнения проводили с помощью критерия Манна-Уитни. Различия считались статистически значимыми при р≤0,05.
Осуществление способа на примере экспериментальной модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом, привело к модификации цикла ВФ с ускорением морфофункциональной регенерации химически поврежденных ВФ.
В опытной группе животных, получавших милиацин - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в комбинации с полиоксиэтилированным-20- сорбитаноолеатом, удельный вес дистрофических форм ВФ, представленных ВФ в фазе дистрофического катагена, было статистически значимо меньше и составило лишь 9,2±3,2%, остальные ВФ находились в фазах раннего и среднего анагена и не имели признаков химически индуцированной дистрофии (табл. 5, фиг. 3, фиг. 4). Это свидетельствует о том, что заявляемый способ коррекции способствует быстрой трансформации химически поврежденных ВФ в фазу дистрофического катагена, значительно укороченного телогена и последующей полной регенерацией ВФ с началом нового цикла. Последнее подтверждается расчетом индекса дистрофии ВФ (фиг. 5).
При анализе структурно-функциональных изменений ВФ кожи мышей, выявленных на 33-и сутки после индукции анагена, также получены данные, подтверждающие ускорение регенерации химически поврежденных ВФ при коррекции алопеции заявляемым способом. В коже мышей группы сравнения сохранялись ВФ в прогнозируемо длительном дистрофическом анагене VI, наряду ВФ, вступившие в новый цикл ВФ. В коже мышей опытной группы дистрофических форм ВФ не встречается (табл. 6, фиг. 6, фиг. 7).
Расчет индекса цикла ВФ свидетельствует о катаген-телогеновой трансформации ВФ кожи мышей опытной группы, в то время как средняя фаза цикла ВФ в коже мышей группы сравнения соответствует переходу ВФ из фазы дистрофического катагена в фазу раннего анагена, то есть началу вступления ВФ в новый цикл и начало полной их регенерации только к 33-м суткам после индукции анагена (фиг. 8).
Таким образом, реализация способа комплексной коррекции в модели андрогенетической алопеции и модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом, имеющих разный патогенез, позволила выявить новые свойства милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена и установить влияния этого вещества на структурно-функциональную реорганизацию ВФ в условиях моделирования нарушений цикла ВФ и регенеративную способность ВФ при химически индуцированном повреждении.
Новизной изобретения является то, что впервые использована методика топического применения комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, с фиксированной концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена, равной 30 мг/мл, в условиях моделирования нерубцовых алопеций с различным этиопатогенезом и характером нарушения цикла волосяного фолликула.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является реализация способа комплексной коррекции нерубцовых алопеций с применением методики ежедневного однократного топического нанесения на весь очаг поражения комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена в с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, с фиксированной концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена, равной 30 мг/мл.
Преимуществами способа является, во-первых, использование чистого вещества милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена, что позволяет стандартизировать состав и получать фиксированную концентрацию милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена, с возможностью изучать его фармакокинетический профиль; во-вторых, учет физико-химических особенностей милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена, а именно его липофильности и связанной с этим трудности его трансдермального переноса, что обосновало использование комплекса милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, являющимся усилителем проницаемости; в-третьих, химическая стабильность комплекса милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом, его устойчивость к окислению, и, следовательно, удлинению сроков годности.
Способ иллюстрируется приведенными ниже примерами.
Пример 1. Самцам мышей линии C57BL/6 в возрасте 6-7 недель, которые содержались в стандартных условиях вивария, индуцировали анаген путем депиляции стержней волос с кожи спины восковыми полосками под эфирным наркозом (нулевой день эксперимента). Модель андрогенетической алопеции воспроизводили путем нанесения на кожу области депиляции 1% геля тестостерона. С целью оценки возможности использования милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена для комплексной коррекции андрогенетической алопеции в модельном эксперименте была разработана методика применения комплекса милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным (20) сорбитаноолеатом, с концентрацией милиацина 30 мг/мл. С 1-го по 28-й день эксперимента на кожу области депиляции наносили 1% гель тестостерона из расчета 5 мг/кг (препарат Андрогель®, производитель Besins-Healthcare), спустя полчаса - комплекса милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным (20) сорбитаноолеатом, с концентрацией милиацина 30 мг/мл. На 28-й день после депиляции животных под эфирным наркозом умерщвляли. Отбор образцов кожи проводили с межлопаточной области, затем помещали их в 10% нейтральный формалин и фиксировали при комнатной температуре в течение суток. После стандартной гистологической проводки материал заливали в парафин. Гистосрезы толщиной 5 мкм окрашивали гематоксилином Майера и эозином. Морфометрический анализ изображений фрагментов кожи проводили с помощью программного обеспечения ImageJ. На микрофотографиях поперечных срезов проводили подсчет количества ВФ на единицу площади; на уровне впадения сальной железы проводили измерение диаметров наружных корневых влагалищ (фиг. 9). На продольных срезах оценивали морфологические признаки принадлежности ВФ к отдельным фазам цикла ВФ (фигура 10). Плотность волосяных фолликулов на единицу площади в коже мышей составила 5,33±0,12 (табл. 1, фиг. 11), средний диаметр наружных корневых влагалищ был равен 77,98±2,14 (табл. 2, фиг. 9), волосяных фолликулов в фазе анагена было 77,26±2,39, катагена - 1,24±0,42, телогена - 21,72±2,57, соотношение количества ВФ в фазе анагена к таковому в фазе телогена - 3,8±0,52 (табл. 3, фиг. 10, 11). Индекс фазы цикла, характеризующий среднюю фазу цикла ВФ в коже исследуемых мышей, составил 2,9±0,04 (табл. 4).
Пример 2. Самцам мышей линии C57BL/6 в возрасте 6-7 недель, которые содержались в стандартных условиях вивария, индуцировали анаген путем депиляции стержней волос с кожи спины восковыми полосками под эфирным наркозом (нулевой день эксперимента). С 1-х суток эксперимента мышам на кожу области депиляции наносили комплекс милиацина-3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным (20) сорбитаноолеатом, с концентрацией милиацина 30 мг/мл. С целью моделирования алопеции, индуцированной химиотерапией, мышам внутрибрюшинно был введен алкилирующий цитостатический препарат циклофосфамид из расчета 125 мг/кг веса животного. Препарат вводился на 9-й день после депиляции, что у данной линии мышей соответствует раннему анагену VI. На 15-й день после депиляции половину животных умерщвляли под эфирным наркозом с целью оценки ранней ответной реакции ВФ кожи мышей на химическое повреждении циклофосфамидом. Оставшихся животных выводили из эксперимента на 33-и сутки после депиляции для изучения фазы регенерации химически поврежденных ВФ. Отбор образцов кожи проводили с межлопаточной области, затем помещали их в 10% нейтральный формалин и фиксировали при комнатной температуре в течение суток. После стандартной гистологической проводки материал заливали в парафин. Гистосрезы толщиной 5 мкм окрашивали гематоксилином Майера и эозином. Морфометрический анализ изображений фрагментов кожи проводили с помощью программного обеспечения ImageJ. На 15-е сутки после индукции анагена в коже мышей подавляющее большинство ВФ находилось в фазах анагена и не имело признаков химического повреждения: 14,2±2,66% - в фазе анагена I, 61,82±5,84% - в фазе анагена II, 14,78±4,3% - в фазе анагена III. Оставшиеся ВФ, составившие лишь 9,2±3,2% от общего числа классифицированных ВФ находилось в фазе позднего дистрофического катагена (табл. 5, фиг. 6, фиг. 12). На 33-и сутки после индукции анагена в коже мышей было обнаружено 11,34±2,7% ВФ в фазе анагена VI, 51,1±6,65% ВФ - в фазе катагена и 37,55±5,49% ВФ - в фазе телогена (табл. 6, фиг. 6, фиг. 13). Признаков дистрофических изменений обнаружено не было (табл.6). Индекс фазы дистрофии составил 5,16 на 15-е сутки, индекс цикла ВФ на 33-и сутки после индукции анагена был равен 8,28 (фиг. 8).
Результаты исследования поясняются графическими материалами:
На фиг. 1 показан удельный вес волосяных фолликулов в отдельных фазах цикла волосяного фолликула в контрольной и опытных группах в модели андрогенетической алопеции (* - попарные различия удельного веса ВФ в фазе анагена между опытными группами при уровне значимости р<0,01; ** - попарные различия удельного веса ВФ в фазе телогена между опытными группами при уровне значимости р<0,01)
Фигура 2. Фрагменты кожи спины мышей контрольной и опытных групп, 28-е сутки после индукции анагена. Модель андрогенетической алопеции. Окраска гематоксилином Майера и эозином. Ув. 300. (ВФ - волосяной фолликул): А. Контрольная группа. ВФ в фазе телогена. В. I опытная группа. ВФ в фазе телогена. С. II опытная группа. ВФ в фазе позднего анагена (анагена VI). D. II опытная группа. ВФ в фазе телогена. Е. III опытная группа. ВФ в фазе катагена. F. III опытная группа. ВФ в фазе раннего анагена (анаген II). G. III опытная группа. ВФ в фазе среднего анагена (анаген III). Н. IV опытная группа. Волосяные фолликулы в фазе телогена.
На фиг. 3 изображены репрезентативные микрофотографии волосяных фолликулов (ВФ) кожи мышей контрольной группы, группы сравнения и опытной группы на 15-е сутки после индукции анагена в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. Окраска гематоксилином Майера и эозином. Ув. 300. А. Контрольная группа - ВФ в фазе анагена VI; Группа сравнения (В - Е) наблюдаются ВФ с признаками химически индуцированного повреждения: В. - ВФ в фазе дистрофического анагена VI, наблюдаются эктопированные гранулы меланина, сокращение зоны меланогенеза, искажение ВФ, нарушение пигментации стержня волоса; С. ВФ в фазе позднего дистрофического катагена, компактный округлый дермальный сосочек окружен конгломератами меланина; D. Расширение канала волоса, прерывание хода стержня волоса, нарушение пигментации стержня волоса; Е. Стержни волос с нарушенной пигментацией и структурой в каналах волос. Опытная группа (F - Н): ВФ в фазах раннего и среднего анагена не имеют признаков химического повреждения. F. ВФ в фазе позднего дистрофического катагена, конгломераты меланина окружают округлый дермальный сосочек; G. ВФ в фазе раннего анагена (анагена II), кератиноциты в виде полулуния окружают дермальный сосочек более чем на половину его объема; Н. ВФ в фазе среднего анагена (анаген IIIb), над верхним полюсом дермального сосочка наблюдается зона меланогенеза.
Фигура 4. Удельный вес волосяных фолликулов на разных стадиях цикла в коже мышей на 15-е сутки после депиляции в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. Планки погрешностей отражают стандартную ошибку среднего; * - различия по удельному весу волосяных фолликулов фазе дистрофического катагена в коже мышей группы сравнения и опытной группы на уровне р<0,01.
Фигура 5. Индексы дистрофии волосяных фолликулов кожи мышей на 15-е сутки после депиляции в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. Индекс дистрофии ВФ кожи мышей группы сравнения, равный 2,78, соответствует прогрессированию ВФ из фазы раннего дистрофического катагена в фазу позднего дистрофического катагена. Индекс дистрофии ВФ кожи мышей опытной группы, равный 5,16 означал трансформацию ВФ из фазы раннего анагена в фазу среднего анагена нового цикла ВФ. Планки погрешностей отражают стандартную ошибку среднего; - различия с индексом дистрофии волосяного фолликула контрольной группы с показателем опытной группы на уровне р<0,01; * - различия с индексом дистрофии волосяного фолликула группы сравнения с показателем опытной группы на уровне р<0,01.
Фигура 6. Удельный вес волосяных фолликулов на разных стадиях цикла в коже мышей на 33-и сутки после депиляции. Планки погрешностей отражают стандартную ошибку среднего; * - различия по удельному весу волосяных фолликулов в отдельных стадиях цикла в коже мышей группы сравнения и опытной группы на уровне р<0,01.
На фиг. 7 изображены репрезентативные микрофотографии волосяных фолликулов (ВФ) кожи мышей контрольной группы, группы сравнения и опытной группы на 33-и сутки после индукции анагена в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. Окраска гематоксилином Майера и эозином. Ув. 300. *Ув. 150. А. Контрольная группа - ВФ в фазе телогена; Группа сравнения (В - Е) наблюдаются ВФ с как с признаками химически индуцированного повреждения, так и без них: В. - ВФ в фазе телогена; С. ВФ в фазе среднего анагена (анагена III); D. ВФ в фазе дистрофического анагена VI, расширение канала волоса, сокращение зоны меланогенеза в отдельных ВФ; Е. ВФ в фазе дистрофического анагена VI, искажение структуры ВФ. Опытная группа (F - Н): ВФ в фазах анагена, катагена и телогена не имеют признаков химического повреждения. F. ВФ в фазе телогена; G. ВФ в фазе среднего катагена; Н. ВФ в фазе анагена VI.
Фигура 8. Индексы цикла волосяных фолликулов кожи мышей на 33-и сутки после депиляции. Планки погрешностей отражают стандартную ошибку среднего; * - различия с индексом цикла волосяного фолликула контрольной группы на уровне р<0,01; - различия с индексом цикла волосяного фолликула группы сравнения на уровне р<0,01.
Фигура 9. Фрагмент кожи спины мыши, получавшей комплекс милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом в модели андрогенетической алопеции. 28-е сутки после индукции анагена. Поперечный срез на уровне впадения сальных желез, наружные корневые влагалища волосяных фолликулов. Окраска гематоксилин Майера и эозин. Ув. 300.
Фигура 10. Фрагмент кожи спины мыши, получавшей комплекс милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом в модели андрогенетической алопеции. 28-е сутки после индукции анагена. Продольный срез, волосяной фолликул в фазе анагена I. Окраска гематоксилин Майера и эозин. Ув. 300.
Фигура 11. Фрагмент кожи спины мыши, получавшей комплекс милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом в модели андрогенетической алопеции. 28-е сутки после индукции анагена. Продольный срез, волосяные фолликулы в фазе телогена. Окраска гематоксилин Майера и эозин. Ув. 300.
Фигура 12. Фрагмент кожи спины мыши, получавшей комплекс милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. 15-е сутки после индукции анагена. Продольный срез, волосяные фолликулы в фазе позднего дистрофического катагена. Окраска гематоксилин Майера и эозин. Ув. 300.
Фигура 13. Фрагмент кожи спины мыши, получавшей комплекс милиацина -3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбитаноолеатом в модели алопеции, индуцированной циклофосфамидом. 33-и сутки после индукции анагена. Продольный срез, волосяные фолликулы в фазе анагена VI. Окраска гематоксилин Майера и эозин. У в. 300.
Список литературы:
1. Resting no more: re-defining telogen, the maintenance stage of the hair growth cycle / M. Geyfman [et al.] // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. - 2015. - Vol. 90. - N4. - P. 1179-96.
2. Physiopathology and current treatments of androgenetic alopecia: Going beyond androgens and antiandrogens / T. Katzer [et al.] // Dermatologic Therapy. - 2019. - Vol. 32. - P. e13059.
3. Ramos, P.M. Female Pattern Hair Loss: a clinical and pathophysiological review / P.M. Ramos, H.A. Miot // An. Bras. Dermatol. - 2015. - Vol. 90. - N4. - P. 529-43.
4. Choi, B.Y. Targeting Wnt/β-Catenin Pathway for Developing Therapies for Hair Loss / B.Y. Choi // Int. J. Mol. Sci. - 2020. - Vol. 21. - N14. - P. 4915.
5. The Hair Growth-Promoting Effect of Rumex japonicus Houtt. Extract / H. Lee [et al.] // Evid Based Complement Alternat Med. - 2016. - Vol. 2016. - P. 1873746.
6. Chemotherapy-Induced Alopecia / A.C. Villasante [et al.] // J. Clin. Investigat. Dermatol. - 2014. - Vol. 2. - N2. - P. 8.
7. A Clinical and Biological Guide for Understanding Chemotherapy-Induced Alopecia and Its Prevention / C.J. Dunnill [et al.] //Oncologist. - 2018. - Vol. 23. - N1. - P. 84-96.
8. Сложный пациент трихолога: руководство по эффективному лечений алопеций и сопутствующих заболеваний / Ральф М. Трюб; пер. с англ. под ред. Н.Г. Баруновой, В.П. Ткачева. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018. - 392.
9. The Potential Application of Pentacyclic Triterpenoids in the Prevention and Treatment of Retinal Diseases / Z. Cheng [et al.] // Planta Med. - 2021. - Vol. 87. - N7. - P. 511-527.
10. Tetracyclic and Pentacyclic Triterpenes with High Therapeutic Efficiency in Wound Healing Approaches / R. Ghiulai [et al.] // Molecules. - 2020. - Vol. 26. - N25(23). - P. 5557.
11. Олифсон, Л.Е. Химическая природа и биологическая активность милиацина /Л.Е. Олифсон, Н.Д. Осадчая, Б.Г. Нузов, [и др.] // Вопросы питания. - 1991. - №2. - С. 57-59.
12. Павлова, Маргарита Михайловна. Изучение влияния биологически активного стероида проса (3-β-метокси-Δ18-олеанена) при токсическом поражении печени четыреххлористым углеродом в эксперименте: диссертация … кандидата биологических наук: 03.00.04. - Оренбург, 1984. - 154 с.: ил.
13. Патент РФ на изобретение №1043860. «Средство, стабилизирующее биологические мембраны. Чернов А.Н., Павлова М.М., Олифсон Л.Е., 1983.
14. Фролов Б.А., Кириллова А.В. Милиацин как мембранопротектор. Защитное действие милиацина при детергент-индуцированной иммуносупрессии // Российский аллергологический журнал. - 2011. - Т. 4. - №1. - С. 402-403.
15. Панфилова, Т.В. Тритерпеноид милиацин снижает индуцируемое стрессом ПОЛ / Т.В. Панфилова, А.А. Штиль, Б.А. Фролов // Бюлл. экспер. биол и мед. - 2006. - Т. 141. - №6. - С. 633-635.
16. Сарычева Ю.А., Токарева А.А., Панфилова Т.В., Железнова А.Д., Штиль А.А., Красиков СИ., Фролов Б.А. Патент на изобретение RU 2698204 С1 от 23.08.2019. Заявка №2019111740 от 17.04.2019.
17. Природный тритерпеноид милиацин возбудительный метотрексатом окислительный стресс и форсирует экспрессию генов Syp 2e1 и глутатионредуктазы в печени / О.В. Калинина [и др.] // Патол. физиол. и экспер. терапия. - 2013а. - №1. - С. 70-74.
18. Калинина О.В., Фролов Б.А., Штиль А.А., Перетолчина НМ., Смирнова З.С.Патент на изобретение RU 2411947 С1 от 27.04.2009. Заявка №2009122188/15 от 09.06.2009.
19. Олифсон, Л.Е. Химическая природа и биологическая активность милиацина /Л.Е. Олифсон, Н.Д. Осадчая, Б.Г. Нузов, [и др.] // Вопросы питания. - 1991. - №2. - С. 57-59.
20. Патент №US-9180135-B2 «Miliacin and sphingolipids and/or phospholipids composition for hair and scalp саге», F. Lamay, I. Lamour, E. Gaillard, 26.04.2013.
21. Семейство патентов EP-2821052-A1 «Combination of miliacin and polar lipids, in particular of sphingolipids and/or phospholipids, for care of the hair and scalp»; F. Lamay, I. Lamour, E. Gaillard, 26.04.2013
22. Патент EP-2821052-B1; ES-2614379-T3 Association of miliacin and polar lipids, specifically sphingolipids and / or phospholipids, for hair and scalp саге» F. Lamay, I. Lamour, E. Gaillard, 26.04.2013
23. Патент Canada №EP-3453381-B1 «Method and use of a composition for improving hair арреагапсе» S. Boudon, P. Kurka, C. Gnacke [et al.], 08.09.2017
24. Yang, G. Transdermal Drug Delivery for Hair Regrowth / G. Yang, G. Chen, Z. Gu // Mol. Pharm. - 2021. - Vol.18. - N2. - P. 483-490.
25. Barry B.W. Skin transport // Dermatological formulations. Ed. Barry B.W. -New York: Marcel&Dekker, 1983. - P. 95-126.
26. Biostimulants in Plant Science: A Global Perspective / O.I. Yakhin [et al.] // Front. Plant. Sci. - 2017. - Vol. 26. - N7. - P. 2049.
27. Pentacyclic Triterpenoids with Nitrogen-Containing Heterocyclic Moiety, Privileged Hybrids in Anticancer Drug Discovery / V. Khwaza [et al.] // Molecules. - 2021. - Vol. 26. - N9. - P. 2401.
28. Lane, ME. Skin penetration enhancers/ ME. Lane // Int. J. Pharm. - 2013. - Vol. 447. - N1-2. - P. 12-21.
29. Upadhyay, K. Development and characterization of phyto-vesicles of β-sitosterol for the treatment of androgenetic alopecia / K. Upadhyay, N.K. Gupta, V.K. Dixit // Arch. Dermatol. Res. - 2012. - Vol. 304. - N7. - P. 511-9.
30. A Systemic Review on Topical Marketed Formulations, Natural Products, and Oral Supplements to Prevent Androgenic Alopecia: A Review / S. Ashique [et al.] // Nat. Prod. Bioprospect. - 2020. - Vol.10. - N6. - P. 345-365.
31. Шенфельд, H. Поверхностно-активные вещества на основе оксида этилена. - М.: Химия, 1982. - 748 с.
32. Som, I. Status of surfactants as penetration enhancers in transdermal drug delivery / I. Som, K. Bhatia, M. Yasir // J. Pharmacy Bioallied Sci. - 2012. - Vol. 4. - N1. - P. 2-9.
33. Задымова H.M., Ямпольская Г.П. Термодинамически устойчивые дисперсные системы // Практикум по коллоидной химии. Ред. Куличихин В.Г. - М.: Вузовский учебник: ИНФРА-М, 2012. Гл. 6. С. 141-172.
34. Akhtar N., Rehman M.U., Khan H.M.S., Rasool F., Saeed Т., Murtaza G. Penetration enhancing effect of polysorbate 20 and 80 on the in vitro percutaneous absorption of L-ascorbic acid // Tropical J. Of Pharmaceutical Research. - 2011. - Vol. 10. - N3. - P. 281-288.
35. Винаров, А.З. Влияние терапии тестостероном (1% трансдермальный гель) на качество жизни мужчин с андрогенодефицитом в условиях рутинной клинической практики: 6-месячное наблюдательное исследование / А.З. Винаров [и др.] // Андрология и генитальная хирургия. - 2016. - Т. 17 - №4. - С. 59-67.
36. Müller-Röver, S. A comprehensive guide for the accurate classification of murine hair follicles in distinct hair cycle stages / S. Muller-Rover [et al.] // J. Invest. Dermatol. - 2001. - Vol. 117. - N1. - P. 3-15.
37. Maurer, M. Intact hair follicle innervation is not essential for anagen induction and development / M. Maurer [et al.] // Arch. Dermatol. Res. - 1998. - Vol. 290. - N10. - P. 574-8.
38. Role for the Epidermal Growth Factor Receptor in Chemotherapy-Induced Alopecia / K.J. Bichsel [et al.] // PLoS ONE. - 2013. - Vol. 8. - N7. - P. e69368.

Claims (2)

1. Способ комплексной коррекции нерубцовой алопеции у мышей в эксперименте, отличающийся тем, что моделируют андрогенную алопецию, при этом в нулевой день эксперимента производят индукцию анагена путем депиляции стержней волос с кожи спины, с первого дня эксперимента на очаг депиляции ежедневно наносят 1% гель тестостерона из расчета 5 мг/кг с последующим нанесением через 30 минут комплекса милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбита-олеатом с концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл в течение 28 суток.
2. Способ комплексной коррекции нерубцовой алопеции у мышей в эксперименте, отличающийся тем, что моделируют алопецию, индуцированную циклофосфамидом, при этом в нулевой день эксперимента производят индукцию анагена путем депиляции стержней волос с кожи спины, с первого дня эксперимента на очаг депиляции ежедневно наносят комплекс милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена с полиоксиэтилированным-20-сорбита-олеатом с концентрацией милиацина - 3-β-метокси-Δ18-олеанена 30 мг/мл в течение 15-33 дней с введением на девятый день эксперимента однократно внутрибрюшинно 125 мг/кг циклофосфамида.
RU2023118071A 2023-07-07 Способ комплексной коррекции нерубцовых алопеций в эксперименте RU2821779C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2821779C1 true RU2821779C1 (ru) 2024-06-26

Family

ID=

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU95105982A (ru) * 1993-05-07 1997-02-27 Л'Ореаль (FR) Композиция для усиления возобновления роста волос и/или для уменьшения выпадения волос
RU2381786C2 (ru) * 2005-06-24 2010-02-20 Аризона Борд Оф Риджентс Он Бихаф Оф Дзе Юниверсити Оф Аризона Способ лечения нарушений роста волос, таких как облысение по женскому типу, и применяемые в нем композиции
US9180135B2 (en) * 2013-04-26 2015-11-10 Arco S.A.S. Miliacin and sphingolipids and/or phospholipids composition for hair and scalp care
CN106880693A (zh) * 2017-03-22 2017-06-23 广州国草夏方生物科技有限公司 一种治疗脂溢性脱发的生发液组合物及其制备方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU95105982A (ru) * 1993-05-07 1997-02-27 Л'Ореаль (FR) Композиция для усиления возобновления роста волос и/или для уменьшения выпадения волос
RU2381786C2 (ru) * 2005-06-24 2010-02-20 Аризона Борд Оф Риджентс Он Бихаф Оф Дзе Юниверсити Оф Аризона Способ лечения нарушений роста волос, таких как облысение по женскому типу, и применяемые в нем композиции
US9180135B2 (en) * 2013-04-26 2015-11-10 Arco S.A.S. Miliacin and sphingolipids and/or phospholipids composition for hair and scalp care
CN106880693A (zh) * 2017-03-22 2017-06-23 广州国草夏方生物科技有限公司 一种治疗脂溢性脱发的生发液组合物及其制备方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LEE E. et al. Millet seed oil activates β-catenin signaling and promotes hair growth. Front Pharmacol. 2023 May 9; 14:1172084. *
КАЛИНИНА О.В. и др. Влияние милиацина на противоопухолевую активность метотрексата на модели перевиваемой карциномы легких Льюис. Российский биотерапевтический журнал, 2009, vol. 8, no. 4, с. 45-48. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4563521B2 (ja) コラーゲン産生促進剤および皮膚外用剤
EP2001460A2 (en) Compositions for promoting hair growth
JP2009545587A (ja) エステル化レシチンを用いたナノリポソーム及びその製造方法、及びこれを含む皮膚疾患の予防又は治療用組成物
KR20100018119A (ko) 탈모의 예방, 치료, 또는 육모용 조성물
TW200306209A (en) Medicament for curing itching rough skin or sensitive skin and for skin whitening based on reducing production and/or release of stem cell factor
KR101443180B1 (ko) 신규한 경피흡수용 약물전달체, 그를 이용한 탈모방지 외용제 조성물 및 화장료
EP2255782A1 (en) Composition for the prevention or treatment of hair loss, and method of preparation
JP2007262012A (ja) ヒアルロン酸産生促進剤、並びにそのヒアルロン酸産生促進剤を含む皮膚外用剤、化粧料、医薬部外品、肌荒れ改善剤、及びしわ改善剤
JPH11500145A (ja) 毛髪の成長の刺激または促進および/または脱毛を抑制するブラジキニン拮抗薬の使用
KR20150010691A (ko) 호의초, 황련, 어성초, 인삼, 작약, 모란, 효모액기스, 하수오를 함유하는 피부 및 두피보호, 탈모방지용 한방 화장료 조성물 및 그 제조방법
KR101621194B1 (ko) 마유 포접 리포좀, 그 제조방법 및 이를 포함하는 화상 치료 또는 자외선 차단용 조성물
ES2311727T3 (es) Procedimiento de estimulacion del crecimiento del cabello usando benzopiranos.
RU2821779C1 (ru) Способ комплексной коррекции нерубцовых алопеций в эксперименте
CN113057964A (zh) 一种动物模型构建方法及其用途
JP3908953B2 (ja) 皮膚外用剤及び薬剤
JP7135106B2 (ja) 頭皮頭髪用組成物
JPH10175868A (ja) 津液改善組成物
KR20020008268A (ko) 오배자 추출물을 함유하는 테스토스테론 5알파-리덕타아제저해제
JP4586178B2 (ja) 火傷による損傷皮膚改善用外用剤
JP6656890B2 (ja) フィラグリン産生促進剤
RU2813104C1 (ru) Средство для лечения алопеции на основе четвертичного аммониевого соединения, содержащего фрагмент пиридоксина
US20180318184A1 (en) Method and composition for inhibiting aged skin
WO2023191015A1 (ja) コラーゲン産生促進剤、化粧料組成物又は皮膚外用剤、及び経口投与剤
JP2013144651A (ja) ケラチン産生促進剤、食品、皮膚外用剤及び育毛剤
RU2799324C2 (ru) Экстракт леспедецы головчатой для применения в области ухода за волосами