RU2818470C1 - Method for counting reactive neutrophils in peripheral blood on automatic analyzer with fluorescent flow cytometry technology - Google Patents
Method for counting reactive neutrophils in peripheral blood on automatic analyzer with fluorescent flow cytometry technology Download PDFInfo
- Publication number
- RU2818470C1 RU2818470C1 RU2023116866A RU2023116866A RU2818470C1 RU 2818470 C1 RU2818470 C1 RU 2818470C1 RU 2023116866 A RU2023116866 A RU 2023116866A RU 2023116866 A RU2023116866 A RU 2023116866A RU 2818470 C1 RU2818470 C1 RU 2818470C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- neut
- neutrophils
- total
- seg
- peripheral blood
- Prior art date
Links
- 210000000440 neutrophil Anatomy 0.000 title claims abstract description 68
- 210000005259 peripheral blood Anatomy 0.000 title claims abstract description 25
- 239000011886 peripheral blood Substances 0.000 title claims abstract description 25
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 title claims abstract description 15
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 title claims abstract description 13
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 11
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 22
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 21
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 16
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 16
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims abstract description 14
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 claims abstract description 11
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 7
- 210000003714 granulocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 230000010355 oscillation Effects 0.000 claims description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 230000004913 activation Effects 0.000 abstract 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 5
- 230000002489 hematologic effect Effects 0.000 description 4
- 206010040047 Sepsis Diseases 0.000 description 3
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 3
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 description 2
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 230000002596 correlated effect Effects 0.000 description 2
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 2
- 238000007431 microscopic evaluation Methods 0.000 description 2
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 2
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- 210000003651 basophil Anatomy 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 210000003979 eosinophil Anatomy 0.000 description 1
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 210000002751 lymph Anatomy 0.000 description 1
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 210000001616 monocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000003973 paint Substances 0.000 description 1
- 239000013610 patient sample Substances 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к клинической лабораторной диагностике и может использоваться в рутинной клинической практике специалиста клинической лабораторной диагностике при исследовании образцов цельной или разведенной кровиThe invention relates to medicine, namely to clinical laboratory diagnostics and can be used in routine clinical practice of a clinical laboratory diagnostics specialist when examining whole or diluted blood samples
Сущность предлагаемого способа заключается в полностью автоматизированном измерении абсолютного и относительного количества реактивных нейтрофилов, величины индекса ядерного сдвига, общего количества всех незрелых нейтрофилов и количества сегментоядерных нейтрофилов в образцах цельной крови для получения быстрой и клинически значимой информации лабораторным персоналом и врачом-клиницистом.The essence of the proposed method is a fully automated measurement of the absolute and relative number of reactive neutrophils, the value of the nuclear shift index, the total number of all immature neutrophils and the number of segmented neutrophils in whole blood samples to obtain quick and clinically relevant information for laboratory personnel and clinicians.
Предлагаемый способ осуществляется следующим образом:The proposed method is carried out as follows:
У пациента выполняют сбор периферической крови. Собранный биоматериал собирают в пробирку для гематологических исследований с КЗЭДТА.Peripheral blood is collected from the patient. The collected biomaterial is collected in a test tube for hematological studies with KZEDTA.
После этого данную пробирку устанавливают на борт автоматического гематологического анализатора с технологией измерения лейкоцитов методом флуоресцентной проточной цитометрии для измерения периферической крови в режиме цельной крови (WB).This tube is then installed on board an automated hematology analyzer with fluorescence flow cytometry technology for measuring peripheral blood in whole blood (WB) mode.
Для измерения лейкоцитов в периферической крови методом флуоресцентной проточной цитометрии гематологический анализатор имеет специальную реакционную камеру 1, в которую автоматически подается биоматериал из пробирки и вступает во взаимодействие с двумя реагентами - лизирующим раствором (для лизиса эритроцитов) и флуоресцентной краской (для флуоресцентного окрашивания лейкоцитов). После этого смесь автоматически подается в проточную ячейку 1 и подвергается излучению красного лазера. Под воздействием излучения лейкоциты рассеивают свет, а флуоресцентная краска испускает свет. Рассеянный свет и свет от флуоресцентной краски собирается тремя детекторами - детектор прямого светорассеяния (FSC - forward scattering), детектор бокового светорассеяния (SSC - side scattering) и детектор боковой флуоресценции (SFL - side fluorescense). Собранные сигналы подвергаются обработке и на основе сигналов строятся скатерограммы(точечные графики). График представлен на фиг. 1. На фиг. 1 показано расположение измеряемых субпопуляций лейкоцитов в периферической крови. График WDF построен на основе сигналов от детекторов SSC и SFL (боковое светорассеяние против боковой флуоресценции). Метод флуоресцентной проточной цитометрии позволяет оценивать общее количество лейкоцитов (WBC) и измерять их субпопуляции - абсолютное и относительное количество лимфоцитов (LYMPH%,#), моноцитов (MONO%,#), нейтрофилов (NEUT%,#), эозинофилов (ЕО%,#), базофилов(ВА80%,#), незрелых гранулоцитов (Ю%,#) и показатели NEUT#& и NEUT%&, где NEUT#&=NEUT# - IG# и NEUT%&=NEUT% - IG%, Дополнительно измеряются показатель реактивной интенсивности нейтрофилов (NE-SFL) и коэффициент осцилляции нейтрофилов по оси Y (NE-WY). На основе показателей NE-SFL и NE-WY рассчитывается показатель NE-width-Y. NE-SFL показывает расстояние от оси абсцисс (SSC) до центроида популяции нейтрофилов, a NE-width-Y показывает размах популяции нейтрофилов по оси Y, а именно разницу между максимальной и минимальной точками популяции нейтрофилов вдоль оси ординат (SFL). Схема измерения показателей NE-SFL и NE-width-Y показана на фиг. 2.To measure leukocytes in peripheral blood using fluorescent flow cytometry, the hematology analyzer has a special reaction chamber 1, into which biomaterial is automatically supplied from a test tube and interacts with two reagents - a lysis solution (for lysis of red blood cells) and fluorescent dye (for fluorescent staining of leukocytes). After this, the mixture is automatically fed into the flow cell 1 and is exposed to red laser radiation. When exposed to radiation, white blood cells scatter light, and fluorescent dye emits light. Scattered light and light from fluorescent paint are collected by three detectors - a forward scattering detector (FSC), a side scattering detector (SSC) and a side fluorescence detector (SFL). The collected signals are processed and scattergrams (dot plots) are built based on the signals. The graph is shown in Fig. 1. In FIG. Figure 1 shows the location of the measured leukocyte subpopulations in the peripheral blood. The WDF plot is based on the signals from the SSC and SFL detectors (side scattering vs side fluorescence). The fluorescent flow cytometry method allows you to estimate the total number of leukocytes (WBC) and measure their subpopulations - the absolute and relative number of lymphocytes (LYMPH%,#), monocytes (MONO%,#), neutrophils (NEUT%,#), eosinophils (EO%, #), basophils (BA80%,#), immature granulocytes (U%,#) and indicators NEUT#& and NEUT%&, where NEUT#&=NEUT# - IG# and NEUT%&=NEUT% - IG%, Additionally, the neutrophil reactive intensity index (NE-SFL) and the neutrophil oscillation factor along the Y axis (NE-WY) are measured. Based on the NE-SFL and NE-WY indicators, the NE-width-Y indicator is calculated. NE-SFL shows the distance from the x-axis (SSC) to the centroid of the neutrophil population, and NE-width-Y shows the range of the neutrophil population along the Y-axis, namely the difference between the maximum and minimum points of the neutrophil population along the y-axis (SFL). The NE-SFL and NE-width-Y measurement diagram is shown in FIG. 2.
Способ подсчета реактивных нейтрофилов в периферической крови на автоматическом анализаторе с помощью технологии флуоресцентной проточной цитометрии заключается в обработке полученных результатов измерения образца цельной крови на автоматическом гематологическом анализаторе с технологией флуоресцентной проточной цитометрии для анализа лейкоцитов в режиме измерения цельной крови (WB) и получения результата на основе этих данных.A method for counting reactive neutrophils in peripheral blood on an automatic analyzer using fluorescence flow cytometry technology consists in processing the obtained results of measuring a whole blood sample on an automatic hematology analyzer with fluorescence flow cytometry technology for analyzing leukocytes in the whole blood (WB) measurement mode and obtaining a result based on this data.
После выполнения измерения получают таблицу с исходными данными (таб. 1).After performing the measurement, a table with the initial data is obtained (Table 1).
Способ подсчета реактивных нейтрофилов в периферической крови на автоматическом анализаторе с технологией флуоресцентной проточной цитометрии:Method for counting reactive neutrophils in peripheral blood on an automatic analyzer with fluorescent flow cytometry technology:
в процессе вычислений рассчитывают размах популяции нейтрофилов по оси Y NE-width-Y, индекс ядерного сдвига ИЯС, относительное количество реактивных нейтрофилов RE-NEUT%, абсолютное количество реактивных нейтрофилов RE-NEUT#, относительное количество всех незрелых нейтрофилов TOTAL IG%, абсолютное количество всех незрелых нейтрофилов TOTAL IG#, относительное количество сегментоядерных нейтрофилов SEG%, абсолютное количество сегментоядерных нейтрофилов SEG# в периферической крови, сначала находят размах популяции нейтрофилов по оси Y NE-width-Y в периферической крови:during the calculations, the range of the neutrophil population along the Y axis NE-width-Y, the nuclear shift index of the nuclear shift index, the relative number of reactive neutrophils RE-NEUT%, the absolute number of reactive neutrophils RE-NEUT#, the relative number of all immature neutrophils TOTAL IG%, the absolute number are calculated of all immature neutrophils TOTAL IG#, the relative number of segmented neutrophils SEG%, the absolute number of segmented neutrophils SEG# in the peripheral blood, first find the range of the neutrophil population along the Y axis NE-width-Y in the peripheral blood:
далее рассчитывают индекс ядерного сдвига нейтрофилов в периферической крови (ИЯС):Next, the nuclear shift index of neutrophils in peripheral blood (NSI) is calculated:
при этом значение ИЯС по итогам вычисления (2) принимает 2 возможных варианта:in this case, the value of the IAS based on the results of calculation (2) takes 2 possible options:
если ИЯС≤0, то ему присваивают значение 0, так как ИЯС не может быть отрицательным и тогда остальным величинам присваивают следующие значения: RE-NEUT%=0, RE-NEUT#=0, TOTAL IG%=IG%, TOTAL IG#=IG#, SEG%=NEUT%& и SEG#=NEUT%#,if IAS≤0, then it is assigned the value 0, since IAS cannot be negative and then the remaining values are assigned the following values: RE-NEUT%=0, RE-NEUT#=0, TOTAL IG%=IG%, TOTAL IG# =IG#, SEG%=NEUT%& and SEG#=NEUT%#,
если ИЯС>0, то значение ИЯС оставляют без изменений и далее рассчитывают RE-NEUT%, RE-NEUT#, TOTAL IG%, TOTAL IG#, SEG% и SEG#, далее определяют относительное количество реактивных нейтрофилов:if IAS>0, then the IAS value is left unchanged and then RE-NEUT%, RE-NEUT#, TOTAL IG%, TOTAL IG#, SEG% and SEG# are calculated, then the relative number of reactive neutrophils is determined:
при этом значение RE-NEUT% по итогам вычисления (3) принимает 2 возможных варианта:in this case, the value of RE-NEUT% based on the results of calculation (3) takes 2 possible options:
если RE-NEUT%≤0, то ему присваивается значение 0, так как RE-NEUT% не может быть отрицательным и тогда RE-NEUT%=0, RE-NEUT#=0, TOTAL IG%=IG%, TOTAL IG#=IG#, SEG%=NEUT%& и SEG#=NEUT%#,if RE-NEUT%≤0, then it is assigned the value 0, since RE-NEUT% cannot be negative and then RE-NEUT%=0, RE-NEUT#=0, TOTAL IG%=IG%, TOTAL IG# =IG#, SEG%=NEUT%& and SEG#=NEUT%#,
если RE-NEUT%>0, то значение RE-NEUT% оставляют без изменений и далее рассчитывают RE-NEUT#, TOTAL IG%, TOTAL IG#, SEG%h SEG#:if RE-NEUT%>0, then the RE-NEUT% value is left unchanged and then RE-NEUT#, TOTAL IG%, TOTAL IG#, SEG%h SEG# are calculated:
Итоговые данные после проведения вычислений показаны в таб.2. Этими значениями могут пользоваться лабораторный персонал и врач-клиницист.The final data after the calculations are shown in Table 2. These values can be used by laboratory personnel and clinicians.
Предлагаемый способ иллюстрируется следующими примерами:The proposed method is illustrated by the following examples:
Пример 1Example 1
5126 образцов пациентов были проанализированы в режиме цельной крови (WB) на автоматическом гематологическом анализаторе с технологией флуоресцентной проточной цитометрии для анализа лейкоцитов. После проведения исследования на гематологическом анализаторе проводился ручной подсчет лейкоцитарной формулы в мазках крови для получения информации о концентрации палочкоядерных нейтрофилов (п/я%). После обработки данных для каждого диапазона п/я% строились коробчатые графики для показателя RE-NEUT%. Итоговые данные отображены на фиг. 3. Каждый столбец на фиг. 3-это разброс значений RE-NEUT% для конкретного диапазона п/я%. Значения RE-NEUT% постепенно повышались с ростом п/я%. В табл. 3 приведены средние значения и медианы для п/я% и RE-NEUT% для каждого диапазона п/я%.5126 patient samples were analyzed in whole blood (WB) mode on an automated hematology analyzer with fluorescence flow cytometry technology for white blood cell analysis. After the study was carried out on a hematological analyzer, a manual count of the leukocyte formula in blood smears was carried out to obtain information on the concentration of band neutrophils (p/n%). After processing the data, box plots for the RE-NEUT% indicator were constructed for each n/i% range. The resulting data is shown in FIG. 3. Each column in FIG. 3 is the spread of RE-NEUT% values for a specific p/i% range. RE-NEUT% values gradually increased with increasing p/i%. In table Table 3 shows the means and medians for p/i% and RE-NEUT% for each p/i% range.
Пример 2Example 2
У пациента 65 лет с развивающимся сепсисом в течение двух суток 7 раз выполняли забор периферической крови в пробирки с антикоагулянтом КЗЭДТА. После этого кровь была проанализирована в режиме цельной крови (WB) на автоматическом гематологическом анализаторе с технологией флуоресцентной проточной цитометрии для анализа лейкоцитов. После проведения исследования на гематологическом анализаторе проводился ручной подсчет лейкоцитарной формулы в мазках крови. После проведенных измерений была сформирована таблица исходных данных(табл. 4):In a 65-year-old patient with developing sepsis, peripheral blood was collected 7 times over the course of two days into tubes with the anticoagulant KZEDTA. The blood was then analyzed in whole blood (WB) mode on an automated hematology analyzer with fluorescence flow cytometry technology for white blood cell analysis. After the study was carried out on a hematological analyzer, a manual count of the leukocyte formula in blood smears was carried out. After the measurements were taken, a table of initial data was generated (Table 4):
После проведения вычислений были получены данные по количеству реактивных нейтрофилов и всех незрелых нейтрофилов, которые сранивались с количеством палочкоядерных нейтрофилов (п/я), определенных с помощью микроскопического анализа (табл. 5):After calculations, data were obtained on the number of reactive neutrophils and all immature neutrophils, which were compared with the number of band neutrophils (n/n), determined using microscopic analysis (Table 5):
Из табл.4 наблюдалось нарастание концентрации реактивных нейтрофилов (RE-NEUT%) в течение двух суток, которое коррелировало с нарастанием палочкоядерных нейтрофилов и развитием сепсиса. Показатель NE-SFL (табл. 3) в измерениях 1-6 находился в диапазоне 43.8-47.2 и показал значимое повышение только в измерении 7.From Table 4, an increase in the concentration of reactive neutrophils (RE-NEUT%) was observed over two days, which correlated with an increase in band neutrophils and the development of sepsis. The NE-SFL indicator (Table 3) in measurements 1-6 was in the range of 43.8-47.2 and showed a significant increase only in measurement 7.
Пример 3Example 3
У пациента 53 лет с развивающимся сепсисом в течение четырех суток 3 раза выполняли забор периферической крови в пробирки с антикоагулянтом КЗЭДТА. После этого кровь была проанализирована в режиме цельной крови (WB) на автоматическом гематологическом анализаторе с технологией флуоресцентной проточной цитометрии для анализа лейкоцитов. После проведения исследования на гематологическом анализаторе проводился ручной подсчет лейкоцитарной формулы в мазках крови. На фиг. 4 показаны результаты трех измерений. Наблюдается постепенное увеличение показателей NE-SFL, NE-width-Y, RE-NEUT% и TOTAL IG%. Параметр RE-NEUT% коррелировал с нарастанием палочкоядерных нейтрофилов (п/я, %).In a 53-year-old patient with developing sepsis, peripheral blood was collected 3 times over four days into tubes with the anticoagulant KZEDTA. The blood was then analyzed in whole blood (WB) mode on an automated hematology analyzer with fluorescence flow cytometry technology for white blood cell analysis. After the study was carried out on a hematological analyzer, a manual count of the leukocyte formula in blood smears was carried out. In fig. Figure 4 shows the results of three measurements. There is a gradual increase in NE-SFL, NE-width-Y, RE-NEUT% and TOTAL IG%. The RE-NEUT% parameter correlated with the increase in band neutrophils (p/n, %).
Общие выводы по использованию изобретения и его преимущества.General conclusions on the use of the invention and its advantages.
Представленный способ позволяет подробно оценить количество реактивных нейтрофилов и всех незрелых нейтрофилов полностью в автоматическом режиме без необходимости дополнительных измерений и микроскопического анализаThe presented method allows a detailed assessment of the number of reactive neutrophils and all immature neutrophils in a completely automatic mode without the need for additional measurements and microscopic analysis
Автоматизированное измерение реактивных нейтрофилов позволяет решить проблему со стандартизацией оценки левого сдвига и оценки реактивности нейтрофилов на автоматических анализаторах с технологией флуоресцентной проточной цитометрии для анализа лейкоцитов, в том числе решая проблему оценки нейтрофильного сдвига влево на основе показателя NE-SFL у пациентов разных возрастов и на разных измерительных модулях. При этом в течение одной минуты проводят подробный анализ и диагностику клеток нейтрофильного ряда. Данная информация является быстрой и клинически значимой для использования лабораторным персоналом и врачом-клиницистом.Automated measurement of reactive neutrophils allows us to solve the problem of standardizing the assessment of left shift and assessment of neutrophil reactivity on automatic analyzers with fluorescent flow cytometry technology for the analysis of leukocytes, including solving the problem of assessing neutrophil left shift based on the NE-SFL indicator in patients of different ages and at different measuring modules. In this case, a detailed analysis and diagnosis of neutrophil cells is carried out within one minute. This information is rapid and clinically relevant for use by laboratory personnel and clinicians.
Claims (28)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2818470C1 true RU2818470C1 (en) | 2024-05-02 |
Family
ID=
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6599713B1 (en) * | 1999-03-29 | 2003-07-29 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Method for quantitating leukocyte count in whole blood sample |
| WO2020196074A1 (en) * | 2019-03-22 | 2020-10-01 | シスメックス株式会社 | Cell analysis method, training method for deep learning algorithm, cell analysis device, training method for deep learning algorithm, cell analysis program, and training program for deep learning algorithm |
| US11293852B2 (en) * | 2016-04-07 | 2022-04-05 | The General Hospital Corporation | White blood cell population dynamics |
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6599713B1 (en) * | 1999-03-29 | 2003-07-29 | Asahi Kasei Kabushiki Kaisha | Method for quantitating leukocyte count in whole blood sample |
| US11293852B2 (en) * | 2016-04-07 | 2022-04-05 | The General Hospital Corporation | White blood cell population dynamics |
| WO2020196074A1 (en) * | 2019-03-22 | 2020-10-01 | シスメックス株式会社 | Cell analysis method, training method for deep learning algorithm, cell analysis device, training method for deep learning algorithm, cell analysis program, and training program for deep learning algorithm |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| CORNET E. et al. Contribution of the new XN-1000 parameters NEUT-RI and NEUT-WY for managing patients with immature granulocytes. Int J Lab Hematol. 2015, 37(5), p.e123-126. * |
| УСТЬЯНЦЕВА И.М. и др. Инновационные лабораторные технологии в диагностике сепсиса. Политравма. 2018, 1, стр.53-59. MAENHOUT T.M. et al. Immature granulocyte count in peripheral blood by the Sysmex haematology XN series compared to microscopic differentiation. J. Clin. Pathol. 2014, 67, p.648-650. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP1840571B1 (en) | apparatus and method for measuring a hematological sample | |
| Bain et al. | Basic haematological techniques | |
| Harris et al. | The ADVIA 2120 hematology system: flow cytometry-based analysis of blood and body fluids in the routine hematology laboratory | |
| EP1714146B1 (en) | Method of measurement of nucleated red blood cells | |
| EP1062495B1 (en) | Calibration of a whole blood sample analyser | |
| CN111542744B (en) | Blood analyzer, blood analysis method, and computer-readable storage medium | |
| EP1049919B1 (en) | Method for differentiation of nucleated red blood cells | |
| Grimaldi et al. | Evaluation of the Abbott CELL-DYN 4000 hematology analyzer | |
| Aune et al. | Automated flow cytometric analysis of blood cells in cerebrospinal fluid: analytic performance | |
| JP3725553B2 (en) | Reagent system and method for differentiating and identifying reticulocytes | |
| JP7291337B2 (en) | Bone marrow fluid analysis method, sample analyzer and computer program | |
| US8349256B2 (en) | Blood cell analyzer, blood cell analyzing method, and computer program product | |
| Longanbach et al. | Automated blood cell analysis | |
| CN104749108A (en) | Method of detecting filarial larvae in blood, blood analyzer and information processing system | |
| CN113567327A (en) | Method, device and system for testing blood | |
| RU2818470C1 (en) | Method for counting reactive neutrophils in peripheral blood on automatic analyzer with fluorescent flow cytometry technology | |
| Williams et al. | Gaining Efficiency in the Laboratory-Automated Body Fluid Cell Counts: Evaluation of the Body Fluid Application on the Sysmex XE-5000 Hematology Analyzer. | |
| Sugiyama et al. | Performance evaluation of Celltac G: a new automated hematology analyzer | |
| Lee et al. | Performance Evaluation of the Mindray BC-6200 Hematology Analyzer; Comparison with Sysmex XE-2100 and Manual Microscopy | |
| Ahmed et al. | PERFORMANCE EVALUATION OF NUCLEATED RED BLOOD CELL (NRBC) COUNT USING A FULLY AUTOMATED HAEMATOLOGY ANALYZER VERSUS MANUAL COUNTING: Nucleated Red Blood Cell Count | |
| EP3654014B1 (en) | Bone marrow fluid analysis method, sample analyzer, and non-transitory storage medium | |
| Jianying | The preliminary study of nucleated red blood cell counting by automated hematology analyzer | |
| Kausar et al. | Frequency of Causes of Spurious Platelets Count on Routine Complete Blood Count by an Automated Hematology Cell Analyser | |
| US20230194411A1 (en) | Sample analysis apparatus and sample analysis method | |
| Suljević et al. | Evaluation of haematology analyzer CELL-DYN 3700 SL |