RU2808501C1 - Рекомбинантная плазмида pBU-LipA, обеспечивающая синтез белка липазы А штамма Bacillus natto IAN - Google Patents
Рекомбинантная плазмида pBU-LipA, обеспечивающая синтез белка липазы А штамма Bacillus natto IAN Download PDFInfo
- Publication number
- RU2808501C1 RU2808501C1 RU2023103583A RU2023103583A RU2808501C1 RU 2808501 C1 RU2808501 C1 RU 2808501C1 RU 2023103583 A RU2023103583 A RU 2023103583A RU 2023103583 A RU2023103583 A RU 2023103583A RU 2808501 C1 RU2808501 C1 RU 2808501C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lipase
- pbu
- lipa
- protein
- plasmid
- Prior art date
Links
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 title claims abstract description 40
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 title claims abstract description 31
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 title claims abstract description 23
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 13
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 title claims abstract description 10
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 title claims abstract description 10
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 8
- 108090001060 Lipase Proteins 0.000 title description 4
- 102000004882 Lipase Human genes 0.000 title description 4
- 239000004367 Lipase Substances 0.000 title description 4
- 235000019421 lipase Nutrition 0.000 title description 4
- 101710098556 Lipase A Proteins 0.000 claims abstract description 34
- 101710099648 Lysosomal acid lipase/cholesteryl ester hydrolase Proteins 0.000 claims abstract description 34
- 102100026001 Lysosomal acid lipase/cholesteryl ester hydrolase Human genes 0.000 claims abstract description 29
- 239000013598 vector Substances 0.000 claims abstract description 8
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 claims abstract description 7
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 7
- 238000005303 weighing Methods 0.000 claims abstract description 3
- 108010076504 Protein Sorting Signals Proteins 0.000 claims abstract 2
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 19
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 12
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 claims description 7
- 102000007056 Recombinant Fusion Proteins Human genes 0.000 claims description 5
- 108010008281 Recombinant Fusion Proteins Proteins 0.000 claims description 5
- 230000010076 replication Effects 0.000 claims description 5
- 229960000723 ampicillin Drugs 0.000 claims description 4
- AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N ampicillin Chemical compound C1([C@@H](N)C(=O)N[C@H]2[C@H]3SC([C@@H](N3C2=O)C(O)=O)(C)C)=CC=CC=C1 AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N 0.000 claims description 4
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 3
- 229960005091 chloramphenicol Drugs 0.000 claims description 3
- WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N chloramphenicol Chemical compound ClC(Cl)C(=O)N[C@H](CO)[C@H](O)C1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N 0.000 claims description 3
- FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 4-amino-1-[(2r)-6-amino-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-[[(2r)-2-amino-3-phenylpropanoyl]amino]-3-phenylpropanoyl]amino]-4-methylpentanoyl]amino]hexanoyl]piperidine-4-carboxylic acid Chemical compound C([C@H](C(=O)N[C@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCCCN)C(=O)N1CCC(N)(CC1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C1=CC=CC=C1 FWMNVWWHGCHHJJ-SKKKGAJSSA-N 0.000 claims description 2
- 101100301559 Bacillus anthracis repS gene Proteins 0.000 claims description 2
- 101100247969 Clostridium saccharobutylicum regA gene Proteins 0.000 claims description 2
- 101100412434 Escherichia coli (strain K12) repB gene Proteins 0.000 claims description 2
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 claims description 2
- 101100114425 Streptococcus agalactiae copG gene Proteins 0.000 claims description 2
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 claims description 2
- 101150044854 repA gene Proteins 0.000 claims description 2
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 claims 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000000034 method Methods 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 238000004520 electroporation Methods 0.000 description 4
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 3
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 3
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 3
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 2
- FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N D-Glucitol Natural products OC[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-FSIIMWSLSA-N 0.000 description 2
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 2
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 2
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- -1 glycerol fatty acid esters Chemical class 0.000 description 2
- YMAWOPBAYDPSLA-UHFFFAOYSA-N glycylglycine Chemical compound [NH3+]CC(=O)NCC([O-])=O YMAWOPBAYDPSLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 2
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 2
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 2
- 238000007480 sanger sequencing Methods 0.000 description 2
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 2
- 239000000600 sorbitol Substances 0.000 description 2
- 108010072641 thermostable lipase Proteins 0.000 description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N α-D-glucopyranosyl-α-D-glucopyranoside Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(O)C(O)C(CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HFEMPWKWYHWPQX-UHFFFAOYSA-N 2-amino-3-[4-(4-hydroxy-3-iodophenoxy)-3,5-diiodophenyl]propanoic acid;hydrochloride Chemical compound Cl.IC1=CC(CC(N)C(O)=O)=CC(I)=C1OC1=CC=C(O)C(I)=C1 HFEMPWKWYHWPQX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HBAQYPYDRFILMT-UHFFFAOYSA-N 8-[3-(1-cyclopropylpyrazol-4-yl)-1H-pyrazolo[4,3-d]pyrimidin-5-yl]-3-methyl-3,8-diazabicyclo[3.2.1]octan-2-one Chemical class C1(CC1)N1N=CC(=C1)C1=NNC2=C1N=C(N=C2)N1C2C(N(CC1CC2)C)=O HBAQYPYDRFILMT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000194108 Bacillus licheniformis Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 241000222173 Candida parapsilosis Species 0.000 description 1
- 101710089384 Extracellular protease Proteins 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 241000626621 Geobacillus Species 0.000 description 1
- 108010008488 Glycylglycine Proteins 0.000 description 1
- 241000235058 Komagataella pastoris Species 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N L-tryptophane Chemical compound C1=CC=C2C(C[C@H](N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- 241000235527 Rhizopus Species 0.000 description 1
- 241000531081 Thermosyntropha lipolytica Species 0.000 description 1
- HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N Trehalose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N Tryptophan Natural products C1=CC=C2C(CC(N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000235015 Yarrowia lipolytica Species 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N alpha,alpha-trehalose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical group 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 229940055022 candida parapsilosis Drugs 0.000 description 1
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 229940043257 glycylglycine Drugs 0.000 description 1
- 230000016507 interphase Effects 0.000 description 1
- 230000002366 lipolytic effect Effects 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 1
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 238000013518 transcription Methods 0.000 description 1
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 238000011426 transformation method Methods 0.000 description 1
- 150000003626 triacylglycerols Chemical class 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к области биотехнологии. Предложена рекомбинантная плазмида pBU-LipA, обеспечивающая синтез рекомбинантного белка липазы А штамма Bacillus natto IAN массой 19,3 кДа в клетках Bacillus subtilis. Размер плазмиды 7444 п. н. Плазмида характеризуется физической и генетической картой, представленной на фиг. 1. Рекомбинантный ген, кодирующий целевой белок липазы A Bacillus natto, встроен по сайтам рестрикции BamHI и AatII в область полилинкера вектора pBU, содержащего сильный промотор и сигнальную последовательность. Изобретение обеспечивает эффективную наработку рекомбинантного белка липазы A и его экспорт в культуральную среду. 2 ил., 1 табл., 3 пр.
Description
Область техники
Изобретение относится к генетической конструкции (плазмиде), обеспечивающей синтез рекомбинантного белка - липазы A Bacillus natto IAN. Способ включает дизайн генетической конструкции и методы трансформации.
Уровень техники
Липазы - ферменты, осуществляющие гидролиз триацилглицеридов с образованием жирных кислот и глицерина. Основными коммерчески-значимыми характеристиками, которыми должны обладать липазы, являются термостабильность, устойчивость к щелочным условиям, органическим растворителям (RU 2508402 С1).
Источником липолитических ферментов являются грибы и бактерии, в частности многие бациллы (RU 2508402 С1). В изобретениях RU 2500812 C1, RU 2475532 C1, RU 2451075 C1, RU 2575804 C1 (Journal of Biotechnology. - 1997. - V. 56. - Р. 89-102), (Protein Expression and Purification. - 2003. - V. 28. -N. 1. - P. 102-1), RU 93042492 A, RU 2508402 C1 приводятся методы получения термостабильных липаз в продуцентах Bacillus licheniformis, Yarrowia lipolytica, Candida parapsilosis, Geobacillus thermocalenulatus, Pichia pastoris, Rhizopus orizae, Escherichia coli. К недостаткам изобретений можно отнести невысокую активность продуцентов, либо трудозатратный способ выделения и очистки ферментного препарата.
Липаза A (LipA) является небольшим белком с массой 19,3 кДа, продуцируемым Bacillus subtilis. В отличие от большинства липаз, LipA не имеет lid домена, закрывающего активный участок фермента, и не проявляет межфазной активации (Borrelli G. М., Trono D., 2015). Оптимальный рН для работы LipA 10,0, температурный интервал 35-40°С. LipA проявляет активность в отношении сложных эфиров глицерина и жирных кислот, длина цепи которых составляет от 6 до 18 атомов углерода, максимальная активность показана для эфиров жирных кислот с длиной цепи С8-С14 (Eggert T. et al. 2002; R. Jing Ma et al. 2017). На практике LipA широко используется при синтезе фармацевтических препаратов, в частности для получения энантиомеров лекарственных веществ (Безбородов А.М., Загустина Н.А., 2014).
Получение LipA проводят в культурах Е. coli и В. subtilis. По сравнению с Е. coli В. subtilis имеет ряд преимуществ: 1) В. subtilis непатогенна; 2) продуцент В. subtilis способен обеспечить синтез и секрецию рекомбинантных белков непосредственно в культуральную среду; 3) культура В. subtilis легко масштабируется, возможно культивирование в больших ферментерах (R. Jing Ma et al. 2017). Однако, несмотря на достоинства, продукция LipA в рекомбинантной В. subtilis все еще ограничена из-за таких проблем, как низкий уровень транскрипции, блокирование секреторного аппарата, деградация внеклеточной протеазы и так далее. Поэтому поиск и конструирование векторов, позволяющих оптимизировать регуляторные элементы экспрессии В. subtilis, являются актуальными научными задачами.
Раскрытие изобретения
Задачей настоящего изобретения является разработка экспрессионной системы и структуры плазмиды для получения липазы А, продуцируемой штаммом Bacillus natto IAN.
Техническим результатом изобретения является экспрессионная генетическая конструкция pBU-LipA, содержащая нуклеотидную последовательность белка липазы А, обеспечивающая экспрессию белка липазы А штамма Bacillus natto IAN в культуральную среду.
Указанный технический результат достигается получением рекомбинантной плазмиды pBU-LipA, размером 7444 пар нуклеотидов (п.н.), характеризующейся физической и генетической картой, представленной на фиг. 1, имеющей нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1, обеспечивающей синтез рекомбинантного белка липазы А штамма Bacillus natto IAN массой 19,3 кДа в клетках Bacillus subtilis. Рекомбинантный ген белка липазы А, имеющей нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 2 от нуклеотида в положении 1650 п. о. до нуклеотида в положении 2285 п. о., кодирующий целевой белок липазы A Bacillus natto полной аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 3, встроен по сайтам рестрикции BamHI и AatII в область полилинкера вектора pBU, содержащего сильный промотор, что обеспечивает эффективную наработку рекомбинантного белка и его экспорт в культуральную среду.
Изобретение иллюстрируется следующими графическими фигурами. На фиг. 1 представлена физическая и генетическая карта рекомбинантной плазмиды pBU-LipA, предназначенной для синтеза липазы A Bacillus natto в клетках Bacillus subtilis, имеющей следующие основные структурно-функциональные регионы:
- нуклеотидная последовательность, кодирующая устойчивость к хлорамфениколу (cat) (113-763 п. н.);
- нуклеотидная последовательность синтетического промотора Pg100 (1557-1600 п. н.);
- нуклеотидная последовательность, кодирующая ген липазы А (SEQ ID NO: 1) (1650-2285 п. н.);
- нуклеотидная последовательность начала репликации в Bacillus subtilis (repA) (3246-4438 п. н.);
- ген устойчивости к антибиотику ампициллин AmpR (5626-6486 п. н.) и бактериальный промотор гена устойчивости к ампициллину (5521-5625 п. н.), обеспечивающие репликацию плазмиды в E.coli;
- участок начала репликации ori (6657-7245 п. н.).
На фиг. 2. представлена электрофореграмма, иллюстрирующая наработку липазы A Bacillus natto IAN в клетках Bacillus subtilis: 1 - маркер молекулярного веса (Thermo Scientific Unstained Protein Molecular Weight Marker); 2 - культуральная жидкость, содержащая рекомбинантный белок липазы A Bacillus natto IAN; 3 - культуральная жидкость, полученная при культивировании нетрансформированной Bacillus subtilis (отрицательный контроль).
Для лучшего понимания сущности предлагаемого изобретения ниже приведены примеры (1-3) его осуществления.
Пример 1. Конструирование рекомбинантной плазмиды pBU-LipA для синтеза липазы A Bacillus natto IAN в системе Bacillus subtilis
Последовательность гена липазы А была амплифицирована из колонии дикого штамма Bacillus natto из коллекции инжинирингового центра «Промбиотех». Для амплификации использовались праймеры LipA-F и LipA-R (таблица 1). ПЦР-продукт гена липазы А размером 636 п.н. в составе реакционной смеси был нанесен на агарозный гель, выделен из геля с помощью набора «Евроген» Cleanup Standard (Россия) в соответствии с рекомендациями производителя, встроен в состав вектора pJET.2.1, входящего в набор CloneJET PCR Cloning Kit (Thermo Scientific™), в соответствии с инструкциями производителя. Полученной плазмидой pJET-LipA трансформировали культуру Е. coli штамм Stbl3 по общепринятой методике с помощью CaCl2. Далее выделяли плазмидную ДНК pJET-LipA с помощью набора Plasmid Miniprep («Евроген», Москва) в соответствии с инструкцией производителя и проверяли секвенированием по методу Сэнгера с помощью набора CEQ2000Dye Terminator Cycle Sequencing Kit в соответствии с инструкциями производителя.
Далее в нуклеотидную последовательность липазы А вводили сайты рестрикции BamHI и AatII с помощью ПЦР с использованием праймеров LpA-F и LpA-R (таблица 1), в качестве матрицы для амплификации была использована плазмида pJET-LipA.
На основе вектора pBU, оптимизированного под штамм Bacillus subtilis, получали конструкцию pBU-LipA (фиг. 1), содержащую нуклеотидную последовательность LipA. Для этого проводили ферментативный гидролиз вектора pBU и ПЦР-продукта нуклеотидной последовательности, кодирующей липазу А, эндонуклеазами рестрикции BamHI и AatII. Далее проводили лигирование гидролизованных ПЦР-продукта и вектора pBU и последующую трансформацию по общепринятой методике с помощью CaCl2 культуры E.coli штамм Stbl3 полученной плазмидой. Выделяли полученную плазмидную ДНК pBU-LipA с помощью набора Plasmid Miniprep («Евроген», Москва) в соответствии с инструкцией производителя. Идентичность плазмиды pBU-LipA спроектированной подтверждали секвенированием по методу Сэнгера с помощью набора CEQ2000Dye Terminator Cycle Sequencing Kit в соответствии с инструкциями производителя.
Пример 2. Получение рекомбинантного штамма Bacillus subtilis, обеспечивающего синтез липазы A Bacillus natto IAN
Полученной рекомбинантной плазмидой pBU-LipA была проведена трансформация методом электропорации клеток В. subtilis WB800N. Культуру клеток в количестве 50 мл подращивали до ODλ600=0.2 о.е. Затем в культуру добавили 0,5 гр. трионина, 1 гр. глицил-глицина, 0,05 гр. триптофана и 15 мкл TWEEN 80 и инкубировали в течение часа при 30°С. После культуру клеток инкубировали 20 мин на льду. 50 мл культуры центрифугировали 10 мин 5000g при 4°С на центрифуге AvantiJ-301. Осажденную биомассу дважды промыли в 5 мл ЕР Buffer (0,5 М трегалоза, 0,5 М сорбитол, 0,5 М маннитол, 0,7 мМ MgCl, 0,5 мМ K2HPO4, 0,5 мМ KH2PO4, рН=7,4). После промывки ресуспендировали в 0,5 мл ЕР Buffer. 100 мкл суспензии клеток перенесли в 2 мл холодные кюветы для электропорации и добавили ДНК с расчетом 25 нг/мкл. Произвели электропорацию при 2,5 kV на электропораторе MicroPulser. К про электропорированным клеткам добавили питательную среду YTx2 с 0,5 М сорбитолом и 0,38 М маннитолом. Инкубировали 3 часа при 37°С. 50 и 200 мкл культуры высевали на чашки с агаризованной средой YTx2, содержащие 5 мкг/мл хлорамфеникола. Чашки помещали в термостат 30°С и инкубировали в течение ночи. На следующий день были идентифицированы отдельные колонии, содержащие плазмиду pBU-LipA.
Пример 3. Получение рекомбинантного белка липазы A Bacillus natto IAN
Полученные клоны В. subtilis, штамм SVB-1 после электропорации рекомбинантной плазмидой pBU-LipA культивировали в качалочных колбах объемом 750 мл в течение 16 часов при 30°С, 170 об/мин. Биомассу бактериальных клеток отделяли от культуральной среды центрифугированием (7000 об/мин), в течение 10 мин, 4°С. Наличие целевого белка липазы А Bacillus natto IAN (молекулярный вес 19,3 kDa) в культуральной среде анализировали с помощью 12% ПААГ (фиг. 2).
Список использованных источников
1. RU 2508402 С1. Термостабильная липаза из бактерии Thermosyntropha lipolytica, активная в щелочной среде. Гумеров В.М. (RU), Марданов А.В. (RU), Равин Н.В. (RU). Патентообладатель(и): Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Центр "Биоинженерия" Российской академии наук (RU). Заявка: 2012141676/10. Дата подачи заявки: 02.10.2012. Опубликовано: 27.02.2014. Бюл. №6.
2. Borrelli G. М., Trono D. Recombinant lipases and phospholipases and their use as biocatalysts for industrial applications // International journal of molecular sciences. 2015. Vol. 16. №9. P. 20774-20840.
3. T. Eggert, G. van Pouderoyen, G. Pencreac'h, I. Douchet, R. Verger, B. W. Dijkstra, K.-E. Jaeger Biochemical properties and three-dimensional structures of two extracellular lipolytic enzymes from Bacillus subtilis Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 26 (2002) 37-46.
4. R. Jing Ma, Y. H. Wang, L. Liu, L. L. Bai, R. Ban Production enhancement of the extracellular lipase LipA in Bacillus subtilis: Effects of regulatory elements and Sec pathway components. Protein Expression and Purification (2017), doi: 10.1016/j.pep.2017.09.011.
5. Безбородов A.M., Загустина H.А. Липазы в реакциях катализа в органическом синтезе (обзор). Прикладная биохимия и микробиология, 2014, том 50, №4, с. 347-373.
--->
<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing
1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">
<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="RU-pBU-LipA.xml"
softwareName="WIPO Sequence" softwareVersion="2.1.2"
productionDate="2022-12-16">
<ApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>RU-1-pBU-LipA</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2022-12-14</FilingDate>
</ApplicationIdentification>
<ApplicantFileReference>RU-1-pBU-LipA</ApplicantFileReference>
<EarliestPriorityApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>RU-1-pBU-LipA</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2022-12-14</FilingDate>
</EarliestPriorityApplicationIdentification>
<ApplicantName languageCode="ru">ФГБОУ ВО
«Алтайский государстРIенный
СѓРЅРёРIерситет»</ApplicantName>
<ApplicantNameLatin>Altai State University</ApplicantNameLatin>
<InventionTitle languageCode="ru">Рекомбинантная
плаЕмида pBU-LipA, обеспечиРIающая синтеЕ
белка липаЕы А штамма Bacillus natto
IAN</InventionTitle>
<SequenceTotalQuantity>3</SequenceTotalQuantity>
<SequenceData sequenceIDNumber="1">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>7444</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..7444</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q2">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>ttaagttattggtatgactggttttaagcgcaaaaaaagttgctttttc
gtacctattaatgtatcgttttagaaaaccgactgtaaaaagtacagtcggcattatctcatattataaa
agccagtcattaggcctatctgacaattcctgaatagagttcataaacaatcctgcatgataaccatcac
aaacagaatgatgtacctgtaaagatagcggtaaatatattgaattacctttattaatgaattttcctgc
tgtaataatgggtagaaggtaattactattattattgatatttaagttaaacccagtaaatgaagtccat
ggaataatagaaagagaaaaagcattttcaggtataggtgttttgggaaacaatttccccgaaccattat
atttctctacatcagaaaggtataaatcataaaactctttgaagtcattctttacaggagtccaaatacc
agagaatgttttagatacaccatcaaaaattgtataaagtggctctaacttatcccaataacctaactct
ccgtcgctattgtaaccagttctaaaagctgtatttgagtttatcacccttgtcactaagaaaataaatg
cagggtaaaatttatatccttcttgttttatgtttcggtataaaacactaatatcaatttctgtggttat
actaaaagtcgtttgttggttcaaataatgattaaatatctcttttctcttccaattgtctaaatcaatt
ttattaaagttcatttgatatgcctcctaaatttttatctaaagtgaatttaggaggcttacttgtctgc
tttcttcattagaatcaatccttttttaaaagtcaatattactgtaacataaatatatattttaaaaata
tcccactttatccaattttcgtttgttgaactaatgggtgctttagttgaagaataaagaccacattaaa
aaatgtggtcttttgtgtttttttaaaggatttgagcgtagcgaaaaatccttttctttcttatcttgat
aataagggtaactattgccgatcgtccattccgacagcatcgccagtcactatggcgtgctgctagcgcc
attcgccattcaggctgcgcaactgttgggaagggcgatcggtgcgggcctcttcgctattacgccagct
ggcgaaagggggatgtgctgcaaggcgattaagttgggtaacgccagggttttcccagtcacgacgttgt
aaaacgacggccagtgaattcgagctcaggccttaactcacattaattgcgttgcgctcactgcccgctt
tccagtcgggaaacctgtcgtgccagctgcattaatgaatcggccaacgcgcggggagaggcggtttgcg
tattgggcgtacgatctttcagccgactcaaacatcaaatcttacaaatgtagtctttgaaagtattaca
tatgtaagatttaaatgcaaccgttttttcggaaggaaatgatgacctcgtttccaccggaattagcttg
gtaccaaaggaggtaaggatcactagaaaattttttaaaaaatctcttgacattggaagggagatatgtt
attataagaattgcggaattgtgagcggataacaattcccatataaaggaggaaggatccatgaaatttg
taaaaagaaggatcattgcacttgtaacaattttgatgctgtctgttacatcgctgtttgcgttgcagcc
gtcagtaaaagccgctgaacacaatccagtcgttatggttcacggcattggaggggcatcattcaatttt
gcgggaattaagagctatctcgtatctcagggctggtcgcgggacaagctgtatgcagttgatttttggg
acaagacaggcacaaattataacaatggcccggtattgtcacgatttgtgcaaaaggttttagatgaaac
gggtgcgaaaaaagtggatattgtcgctcacagtatggggggcgcgaacacactttactacataaaaaat
ctggacggcggaaataaagttgaaaacgtcgtgacgcttggcggcgccaaccgtttgacgacaggcaagg
cgcttccgggaacagatccaaatcaaaagattttatacacatccatttacagcagtgccgatatgattgt
catgaattatttatcaagattagacggtgctagaaacgttcaaatccatggcgttggacacatcggcctt
ctgtacagcagccaagtcaacagcctgattaaagaagggctgaacggcgggggccagaatacaaaccatc
atcaccatcaccactaagacgtccccggggcagcccgcctaatgagcgggcttttttcacgtcacgcgtc
catggagatctttgtctgcaactgaaaagtttataccttacctggaacaaatggttgaaacatacgaggc
taatatcggcttattaggaatagtccctgtactaataaaatcaggtggatcagttgatcagtatattttg
gacgaagctcggaaagaatttggagatgacttgcttaattccacaattaaattaagggaaagaataaagc
gatttgatgttcaaggaatcacggaagaagatactcatgataaagaagctctaaaactattcaataacct
tacaatggaattgatcgaaagggtggaaggttaatggtacgaaaattaggggatctacctagaaagccac
aaggcgataggtcaagcttaaagaacccttacatggatcttacagattctgaaagtaaagaaacaacaga
ggttaaacaaacagaaccaaaaagaaaaaaagcattgttgaaaacaatgaaagttgatgtttcaatccat
aataagattaaatcgctgcacgaaattctggcagcatccgaagggaattcatattacttagaggatacta
ttgagagagctattgataagatggttgagacattacctgagagccaaaaaactttttatgaatatgaatt
aaaaaaaagaaccaacaaaggctgagacagactccaaacgagtctgtttttttaaaaaaaatattaggag
cattgaatatatattagagaattaagaaagacatgggaataaaaatattttaaatccagtaaaaatatga
taagattatttcagaatatgaagaactctgtttgtttttgatgaaaaaacaaacaaaaaaaatccaccta
acggaatctcaatttaactaacagcggccaaactgagaagttaaatttgagaaggggaaaaggcggattt
atacttgtatttaactatctccattttaacattttattaaaccccatacaagtgaaaatcctcttttaca
ctgttcctttaggtgatcgcggagggacattatgagtgaagtaaacctaaaaggaaatacagatgaatta
gtgtattatcgacagcaaaccactggaaataaaatcgccaggaagagaatcaaaaaagggaaagaagaag
tttattatgttgctgaaacggaagagaagatatggacagaagagcaaataaaaaacttttctttagacaa
atttggtacgcatataccttacatagaaggtcattatacaatcttaaataattacttctttgatttttgg
ggctattttttaggtgctgaaggaattgcgctctatgctcacctaactcgttatgcatacggcagcaaag
acttttgctttcctagtctacaaacaatcgctaaaaaaatggacaagactcctgttacagttagaggcta
cttgaaactgcttgaaaggtacggttttatttggaaggtaaacgtccgtaataaaaccaaggataacaca
gaggaatccccgatttttaagattagacgtaaggttcctttgctttcagaagaacttttaaatggaaacc
ctaatattgaaattccagatgacgaggaagcacatgtaaagaaggctttaaaaaaggaaaaagagggtct
tccaaaggttttgaaaaaagagcacgatgaatttgttaaaaaaatgatggatgagtcagaaacaattaat
attccagaggccttacaatatgacacaatgtatgaagatatactcagtaaaggagaaattcgaaaagaaa
tcaaaaaacaaatacctaatcctacaacatcttttgagagtatatcaatgacaactgaagaggaaaaagt
cgacagtactttaaaaagcgaaatgcaaaatcgtgtctctaagccttcttttgatacctggtttaaaaac
actaagatcaaaattgaaaataaaaattgtttattacttgtaccgagtgaatttgcatttgaatggatta
agaaaagatatttagaaacaattaaaacagtccttgaagaagctggatatgttttcgaaaaaatcgaact
aagaaaagtgcaataaactgctgaagtatttcagcagttttttttatttagaaatagtgaaaaaaatata
atcagggaggtatcaatatttaatgagtactgatttaaatttatttagactggaattaataattaacacg
tagactaattaaaatttaatgagggataaagaggatacaaaaatattaatttcaatccctattaaatttt
aacaagggggggattaaaatttaattagaggtttatccacaagaaaagaccctaataaaatttttactag
ggttataacactgattaatttcttaatgggggagggattaaaatttaatgacaaagaaaacaatctttta
agaaaagcttttaaaagataataataaaaagagctttgcgattaagcaaaactctttactttttcattga
cattatcaaattcatcgatttcaaattgttgttgtatcataaagttaattctgttttgcacaaccttttc
aggaatataaaacacatctgaggcttgttttataaactcagggtcgctaaagtcaatgtaacgtagcata
tgatatggtatagcttccacccaagttagcctttctgcttcttctgaatgtttttcatatacttccatgg
gtatctctaaatgattttcctcatgtagcaaggtatgagcaaaaagtttatggaattgatagttcctctc
tttttcttcaacttttttatctaaaacaaacactttaacatctgagtcaatgtaagcataagatgttttt
ccagtcataatttcaatcccaaatcttttagacagaaattctggacgtaaatcttttggtgaaagaattt
ttttatgtagcaatatatccgatacagcaccttctaaaagcgttggtgaatagggcattttacctatctc
ctctcattttgtggaataaaaatagtcatattcgtccatctacctatcctattatcgaacagttgaactt
tttaatcaaggatcagtcctttttttcattattcttaaactgtgctcttaactttaacaactcgatttgt
ttttccagatctcgagggtaactagcctcgccgatcccgcaagaggcccggcagtcaggtggcacttttc
ggggaaatgtgcgcggaacccctatttgtttatttttctaaatacattcaaatatgtatccgctcatgag
acaataaccctgataaatgcttcaataatattgaaaaaggaagagtatgagtattcaacatttccgtgtc
gcccttattcccttttttgcggcattttgccttcctgtttttgctcacccagaaacgctggtgaaagtaa
aagatgctgaagatcagttgggtgcacgagtgggttacatcgaactggatctcaacagcggtaagatcct
tgagagttttcgccccgaagaacgttttccaatgatgagcacttttaaagttctgctatgtggcgcggta
ttatcccgtattgacgccgggcaagagcaactcggtcgccgcatacactattctcagaatgacttggttg
agtactcaccagtcacagaaaagcatcttacggatggcatgacagtaagagaattatgcagtgctgccat
aaccatgagtgataacactgcggccaacttacttctgacaacgatcggaggaccgaaggagctaaccgct
tttttgcacaacatgggggatcatgtaactcgccttgatcgttgggaaccggagctgaatgaagccatac
caaacgacgagcgtgacaccacgatgcctgtagcaatggcaacaacgttgcgcaaactattaactggcga
actacttactctagcttcccggcaacaattaatagactggatggaggcggataaagttgcaggaccactt
ctgcgctcggcccttccggctggctggtttattgctgataaatctggagccggtgagcgtgggtctcgcg
gtatcattgcagcactggggccagatggtaagccctcccgtatcgtagttatctacacgacggggagtca
ggcaactatggatgaacgaaatagacagatcgctgagataggtgcctcactgattaagcattggtaactg
tcagaccaagtttactcatatatactttagattgatttaaaacttcatttttaatttaaaaggatctagg
tgaagatcctttttgataatctcatgaccaaaatcccttaacgtgagttttcgttccactgagcgtcaga
ccccgtagaaaagatcaaaggatcttcttgagatcctttttttctgcgcgtaatctgctgcttgcaaaca
aaaaaaccaccgctaccagcggtggtttgtttgccggatcaagagctaccaactctttttccgaaggtaa
ctggcttcagcagagcgcagataccaaatactgtccttctagtgtagccgtagttaggccaccacttcaa
gaactctgtagcaccgcctacatacctcgctctgctaatcctgttaccagtggctgctgccagtggcgat
aagtcgtgtcttaccgggttggactcaagacgatagttaccggataaggcgcagcggtcgggctgaacgg
ggggttcgtgcacacagcccagcttggagcgaacgacctacaccgaactgagatacctacagcgtgagct
atgagaaagcgccacgcttcccgaagggagaaaggcggacaggtatccggtaagcggcagggtcggaaca
ggagagcgcacgagggagcttccagggggaaacgcctggtatctttatagtcctgtcgggtttcgccacc
tctgacttgagcgtcgatttttgtgatgctcgtcaggggggcggagcctatggaaaaacgccagcaacgc
ggcctttttacggttcctggccttttgctggccttttgctcacatgttctttcctgcgttatcccctgat
tctgtggataaccgtattaccgcctttgagtgagctgataccgctcgccgcagccgaacgaccgagcgca
gcgagtcagtgagcgaggaagcggaagagcgcccaatacgcatgc</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
<SequenceData sequenceIDNumber="2">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>636</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..636</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q3">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>atgaaatttgtaaaaagaaggatcattgcacttgtaacaattttgatgc
tgtctgttacatcgctgtttgcgttgcagccgtcagtaaaagccgctgaacacaatccagtcgttatggt
tcacggcattggaggggcatcattcaattttgcgggaattaagagctatctcgtatctcagggctggtcg
cgggacaagctgtatgcagttgatttttgggacaagacaggcacaaattataacaatggcccggtattgt
cacgatttgtgcaaaaggttttagatgaaacgggtgcgaaaaaagtggatattgtcgctcacagtatggg
gggcgcgaacacactttactacataaaaaatctggacggcggaaataaagttgaaaacgtcgtgacgctt
ggcggcgccaaccgtttgacgacaggcaaggcgcttccgggaacagatccaaatcaaaagattttataca
catccatttacagcagtgccgatatgattgtcatgaattatttatcaagattagacggtgctagaaacgt
tcaaatccatggcgttggacacatcggccttctgtacagcagccaagtcaacagcctgattaaagaaggg
ctgaacggcgggggccagaatacaaac</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
<SequenceData sequenceIDNumber="3">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>212</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>AA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..212</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>protein</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q4">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>MKFVKRRIIALVTILMLSVTSLFALQPSVKAAEHNPVVMVHGIGGASFN
FAGIKSYLVSQGWSRDKLYAVDFWDKTGTNYNNGPVLSRFVQKVLDETGAKKVDIVAHSMGGANTLYYIK
NLDGGNKVENVVTLGGANRLTTGKALPGTDPNQKILYTSIYSSADMIVMNYLSRLDGARNVQIHGVGHIG
LLYSSQVNSLIKEGLNGGGQNTN</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
</ST26SequenceListing>
<---
Claims (7)
- Рекомбинантная плазмида pBU-LipA, обеспечивающая синтез рекомбинантного белка липазы А штамма Bacillus natto IAN массой 19,3 кДа в клетках Bacillus subtilis, имеющая нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1 размером 7444 п. н. и содержащая в соответствии с физической и генетической картой следующие структурно-функциональные регионы:
- - нуклеотидная последовательность, кодирующая устойчивость к хлорамфениколу (cat) (113-763 п. н.);
- - нуклеотидная последовательность синтетического промотора Pg100 (1557-1600 п. н.);
- - ген липазы А с нуклеотидной последовательностью SEQ ID NO: 2 от нуклеотида в положении 1650 по 2285 п. н., кодирующий целевой белок липазы A Bacillus natto полной аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 3 и встроенный по сайтам рестрикции BamHI и AatII в область полилинкера вектора pBU, содержащего сильный промотор и сигнальную последовательность, что обеспечивает эффективную наработку рекомбинантного белка и его экспорт в культуральную среду;
- - нуклеотидная последовательность начала репликации в Bacillus subtilis (repA) (3246-4438 п. н.);
- - ген устойчивости к антибиотику ампициллину AmpR (5626-6486 п. н.) и бактериальный промотор гена устойчивости к ампициллину (5521-5625 п. н.), позволяющие проводить препаративную наработку плазмиды в Е. coli;
- - участок начала репликации ori (6657-7245 п. н.).
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2808501C1 true RU2808501C1 (ru) | 2023-11-28 |
Family
ID=
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009094084A1 (en) * | 2007-12-21 | 2009-07-30 | Danisco Us Inc., Genencor Division | Enhanced protein production in bacillus |
RU2500812C1 (ru) * | 2012-10-10 | 2013-12-10 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") | Рекомбинантный штамм бактерий bacillus licheniformis - продуцент термостабильной липазы |
RU2507261C1 (ru) * | 2012-06-04 | 2014-02-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Новосибирский национальный исследовательский государственный университет" (НГУ) | РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pYP2, КОДИРУЮЩАЯ ФЕРМЕНТАТИВНО-АКТИВНУЮ ЧАСТЬ ПОЛИПЕПТИДА ЛИПАЗЫ, БЕЛКА ПИЩЕВАРИТЕЛЬНОГО ТРАКТА ПЧЕЛИНОЙ ОГНЕВКИ |
RU2540873C1 (ru) * | 2013-09-23 | 2015-02-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиг СО РАН) | ШТАММ БАКТЕРИИ Escerichia coli XL1-blue/pQS-G3, ПРОДУЦЕНТ ТЕРМОСТАБИЛЬНОЙ ЛИПАЗЫ БАКТЕРИИ Geobacillus stearothermophilus G3 |
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009094084A1 (en) * | 2007-12-21 | 2009-07-30 | Danisco Us Inc., Genencor Division | Enhanced protein production in bacillus |
RU2507261C1 (ru) * | 2012-06-04 | 2014-02-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Новосибирский национальный исследовательский государственный университет" (НГУ) | РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pYP2, КОДИРУЮЩАЯ ФЕРМЕНТАТИВНО-АКТИВНУЮ ЧАСТЬ ПОЛИПЕПТИДА ЛИПАЗЫ, БЕЛКА ПИЩЕВАРИТЕЛЬНОГО ТРАКТА ПЧЕЛИНОЙ ОГНЕВКИ |
RU2500812C1 (ru) * | 2012-10-10 | 2013-12-10 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") | Рекомбинантный штамм бактерий bacillus licheniformis - продуцент термостабильной липазы |
RU2540873C1 (ru) * | 2013-09-23 | 2015-02-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиг СО РАН) | ШТАММ БАКТЕРИИ Escerichia coli XL1-blue/pQS-G3, ПРОДУЦЕНТ ТЕРМОСТАБИЛЬНОЙ ЛИПАЗЫ БАКТЕРИИ Geobacillus stearothermophilus G3 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
JISHENG MA et al., Overexpression and characterization of a lipase from Bacillus subtilis, Protein Expression and Purification, 2006, Volume 45, Issue 1, pp.22-29. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kim et al. | Screening and characterization of a novel esterase from a metagenomic library | |
Lee et al. | Screening for novel lipolytic enzymes from uncultured soil microorganisms | |
Hattori et al. | The catalytic subunit of bovine brain platelet-activating factor acetylhydrolase is a novel type of serine esterase. | |
US7247463B2 (en) | Enzymes with lipase/acyltransferase activity, nucleic acids encoding the same and methods of use thereof | |
Sunna et al. | Biochemical characterization of a recombinant thermoalkalophilic lipase and assessment of its substrate enantioselectivity | |
Madan et al. | Co-expression of the lipase and foldase of Pseudomonas aeruginosa to a functional lipase in Escherichia coli | |
CN109971734A (zh) | 一种pH不敏感高温耐受性HSL家族脂类水解酶及应用 | |
Zhang et al. | Thermostable esterase from Thermoanaerobacter tengcongensis: high-level expression, purification and characterization | |
RU2808501C1 (ru) | Рекомбинантная плазмида pBU-LipA, обеспечивающая синтез белка липазы А штамма Bacillus natto IAN | |
US20240002453A1 (en) | Compositions and methods using methanotrophic s-layer proteins for expression of heterologous proteins | |
US20160298095A1 (en) | Nucleic acid molecules for increased protein production | |
CN101641437B (zh) | 猪肝酯酶的同工型 | |
Lee et al. | Altering the substrate specificity of Candida rugosa LIP4 by engineering the substrate-binding sites | |
ES2421188T3 (es) | Esterasas de hígado de cerdo recombinantes, su uso así como un procedimiento para su preparación | |
CN111117980B (zh) | 一种南极土壤来源的酯酶及其编码基因和应用 | |
ES2333201T3 (es) | Butinol 1 esterasa. | |
CN111088240B (zh) | 一种酯酶及其编码基因和应用 | |
CN110951711B (zh) | 一种具有降解手性酯活性的酯酶及其编码基因和应用 | |
CN111057691B (zh) | 一种新型gdsl家族脂类水解酶eii-3及其编码基因与应用 | |
Fan et al. | Cloning, sequence analysis and expression of bacterial lipase-coding DNA fragments from environment in Escherichia coli | |
KR100784151B1 (ko) | 스핑고비움 충북켄스 유래 지질분해효소 | |
CN106434512B (zh) | 一种来源于Aquifex aeolicus菌株的嗜热酯酶及其表达 | |
RU2816513C1 (ru) | Рекомбинантная плазмида pBU-Sav, обеспечивающая синтез и секрецию белка щелочной протеазы в системе Bacillus subtilis | |
Wicka-Grochocka et al. | Cloning, expression in Komagataella phaffii, and biochemical characterization of recombinant sequence variants of Pseudomonas sp. S9 GDSL-esterase | |
KR100365838B1 (ko) | 브레비바실러스 보스테렌시스 bcs-1 에서 유래한 신규내열성 d-입체특이적 디펩티다아제 및 이를 이용한d-아미노산 함유 펩타이드의 합성 방법 |