RU2714949C2 - Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс - Google Patents
Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс Download PDFInfo
- Publication number
- RU2714949C2 RU2714949C2 RU2018125571A RU2018125571A RU2714949C2 RU 2714949 C2 RU2714949 C2 RU 2714949C2 RU 2018125571 A RU2018125571 A RU 2018125571A RU 2018125571 A RU2018125571 A RU 2018125571A RU 2714949 C2 RU2714949 C2 RU 2714949C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- peritonitis
- cavity
- abdominal cavity
- animal
- catheter
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Computational Mathematics (AREA)
- Mathematical Analysis (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Algebra (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Mathematical Optimization (AREA)
- Mathematical Physics (AREA)
- Pure & Applied Mathematics (AREA)
- Business, Economics & Management (AREA)
- Educational Administration (AREA)
- Educational Technology (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано в научных исследованиях для моделирования отграниченного гнойно-воспалительного процесса в брюшной полости у крыс. Способ включает введение в брюшную полость животного 15%-ной взвеси фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия из расчета 1 миллилитр на 100 граммов массы животного. Предварительно под контролем УЗИ в правую подвздошную область живота крысы через троакар проводят модифицированный катетер Фолея. После заполнения его баллона производят перевязку и фиксацию дистальной части катетера при помощи кожной дупликатуры. В образовавшуюся полость вводят возбудитель инфекционного процесса. Способ обеспечивает минимальную травматичность, гарантированное формирование местного отграниченного перитонита (МОП) в кратчайший срок, не приводит к ранней гибели животных, что позволяет разрабатывать новые способы эффективного лечения МОП за счет введения в брюшную полость взвеси фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия. 5 ил.
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности к экспериментальной хирургии, и может быть использовано в научных исследованиях для моделирования отграниченного гнойно-воспалительного процесса в брюшной полости у лабораторных животных и поиска новых способов лечения местного отграниченного перитонита (МОП).
Известны различные способы моделирования перитонита. В настоящее время, все существующие модели по воспроизведению экспериментального перитонита можно подразделить на три основные группы.
К первой группе можно отнести модели местного перитонита, для воспроизведения которых в брюшную полость животным вводили инородные тела: куски дерева, пробки, марли. Вероятность развития местного перитонита при данной методике маловероятна, так как инородные тела инкапсулировались, ограничивались от брюшной полости [Сельцовский П.Л., / Разлитые гнойные перитониты. - 1963. - 212 с.], либо развивался спаечные процесс и кишечная непроходимость с последующей гибелью животного (Агаларов П.М Стрижова К.А. / Моделирование отграниченного перитонита//Bulletin of Medical Internet Conferences (ISSN 2224-6150). - 2017. - Volume 7. - C. 1388).
Недостатками данных способов является невозможность моделирования отграниченной полости при введении в брюшную полость инородных тел.
Во второй группе экспериментов моделирование МОП проводят путем перфорации какого-либо отдела желудочно-кишечного тракта по С.А. Шалимову (Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевйч Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. 272 с.), путем рассечения стенки кишки разрезом в 1-2 см. Острый распространенный перитонит развивается через 24-36 часов после операции, а на третий день животные погибают. Аналогично у 80,4% подопытных животных развитие острого перитонита возникало через 8 часов после внутри брюшного введения 1 мл диметилсульфоксида (Р.Д. Магалашвили, Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. - 272 с.
Недостатком данных способов моделирования является то, что во всех группах животных развивался острый распространенный перитонит с последующей скорой гибелью животных. МОП моделировать не удалось.
К третьей группе моделей экспериментального МОП относятся комбинированные способы, при которых кроме введения в брюшную полость патогенного объекта, создают те или иные деструктивные процессы или фоновые заболевания организма с целью его «сенсибилизации». Так, известно введение калово-скипидарной смеси на высоте асептического воспаления брюшины с последующим введением смеси монокультур или каловой взвеси [Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. 272 с. Известна также модель Глухова А.А. [Пат. 2151427 РФ МПК G09B 23/28, A61M 25/01, при которой развитие перитонита заключалось во введении через катетер, установленный в брюшную полость лабораторным животным, аутокрови и микробной взвеси стафилококка, кишечной палочки, сине-зеленого гноя и стрептококка в равных соотношениях.
Недостатками моделей третьей группы является развитие распространенного, а не отграниченного перитонита брюшной полости. Как следует из вышеизложенного, существующие модели экспериментального перитонита, не способны вызвать локальное воспаление брюшины, что обусловлено вариабельностью показателей патогенности и вирулентности микрофлоры, а также не совершенством механизма, клинически и морфологически схожего с местным перитонитом у человека.
Известен способ моделирования перитонита, предложенный Ю.Ю. Блинковым и соавт. (Патент RU 2338265, G09B 23/28, 10.11.2008. - Способ моделирования острого перитонита), который заключается в инъекционном введении в брюшную полость предварительно наркотизированных крыс каловой взвеси, приготовленной из содержимого слепой кишки.
Недостатком данного способа является то, что используется инъекционный способ введения, при котором каловую взвесь вводят в брюшную полость через одну точку вкола путем перемещения иглы в правое и левое подреберья и в правую и левую подвздошные области. При таком способе возрастает риск травмирования органов брюшной полости. Это в значительной степени влияет на то, что создается острый распространенный перитонит, что приводит к преждевременной гибели животных.
Наиболее близким является способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей (Акулова А.П. Способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей Пат. 2567602. - 10.11.2015). Для этого нелинейным лабораторным мышам массой 20-22 г производят однократное внутрибрюшинное введение 10% каловой взвеси из свежих крысиных фекалий через одну точку вкола по средней линии в пупочной области живота на глубину 2 мм. Взвесь готовят на изотоническом растворе хлорида натрия и однократно фильтруют через двойной слой марли. Для использования модели более 13 дней взвесь вводят в дозе 0,3-0,4 мл, а для использования модели не более 13 дней - в дозе 0,5 мл.
Главным недостатком предложенного способа является образование к шестым суткам эксперимента множества отграниченных абсцессов в нескольких анатомических областях брюшной полости и вовлечение в воспалительный процесс всех отделов брюшной полости с развитием распространенного перитонита, не МОП,
Нами впервые предложен способ формирования МОП в эксперименте, отличающегося наличием сформированной отграниченной полости, окруженной фиброзной капсулой. Настоящее исследование выполнено на базе кафедры оперативной хирургии и топографической анатомии СГМУ им. В.И. Разумовского. В эксперименте на 20 белых лабораторных крысах массой 190±20 г под комбинированным обезболиваем (рометар, золетил) минилапаротомным доступом в правой подвздошной области использовали разработанную на кафедре методику формирования отграниченной гнойной полости. В брюшную полость, после депиляции и антисептической обработки участка кожи размером 3×3 см., транскутанно, под контролем УЗИ, в полость живота вводили троакар диаметром 3 мм. Далее через троакар проводили модифицированный (укороченный до 3 см) катетер Фолея и после заполнения баллона в дистальной части катетера 2,0 мл физиологического раствора (NaCl 0,9%), производили перевязку катетера проксимальнее баллона и фиксацию дистальной части его при помощи кожной дупликатуры, проводили контрастное и УЗ-исследование, при которых установлено, что в подвздошной области определяется сформированная округлая полость диаметром 2 см3 с четкими стенками и подпаянными к ним петлями кишечника, Катетер опорожняли и удаляли. Смотреть Фиг 1.
Моделирование МОП заключалось в инфицировании созданной отграниченной полости. Для этого одному из животных выполняли лапаротомию, вскрывали просвет слепой кишки и из ее содержимого готовили 15% взвесь фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия. Далее смесь дважды фильтровали через двойной слой марли и вводили животным второй группы в созданную кистозную полость через пункционную иглу под контролем УЗИ из расчета 1 миллилитр на 100 граммов массы животных.
Картину развития отграниченного гнойника и местного перитонита после выведения животных из эксперимента, подтверждали клиническими, инструментальными, микробиологическими и морфологическими исследованиями через 6 суток после инфицирования полости и развития классических клинических признаков МОП: животные принимали лежащее положение, плохо реагировали на болевой и звуковой раздражители, отказывались пить и принимать пищу, отмечались выраженная болезненность при пальпации, отечность кожи и местная гипертермия. Первые признаки гнойной интоксикации и органной недостаточности отмечены также уже к шестым суткам эксперимента.
Для комплексной планиметрической оценки полости отграниченного перитонита выполняли исследования с использованием формулы объема шара и использовали ультразвуковой аппарат производства экспертного класса Philips EpiQ7 (США) с конвексными датчиками, работающими с частотой 3,5 МГц. В ходе проведенного УЗИ определяли следующие параметры: диаметр сформированной полости и толщину фиброзной капсулы. Полученные экспериментально планиметрические показатели с применением шприца и результаты ультразвукового исследования показали, что внутренний диаметр полости сформированной полости после опорожнения баллона составлял 2,06±0,7 мл, что соответствует 2,0±0,25 см. При УЗ-исследовании сформированного МОП установлено, что на глубине 9-10 мм от поверхности кожи (граница верхнего края образования) в правой подвздошной области лоцируется образование с четкими гиперэхогенными контурами 16-17 мм на в диаметре овальной формы. Образование умеренно-выражено васкуляризируется с преобладанием артериального кровотока. Линейная скорость кровотока (ЛСК) артерий центрального звена - 5-6 см/сек. Венозная ЛСК - не более 4,3 см/сек. Питающий сосуд отчетливо не лоцируется. Смотреть Фиг 2.
При микробиологических исследованиях МОП оценивали количество микробных клеток в полученном отделяемом смоделированной полости, для чего содержимое полости эвакуировали и 0,1 мл его использовали для приготовления трех последовательных десятикратных разведений в стерильном физиологическом растворе хлорида натрия. Из последнего разведения 0,1 мл засевали на чашки Петри с МПА и через сутки инкубации в термостате при температуре 37°С подсчитывали количество выросших колоний. Исходя из полученных значений, рассчитывали количество колоний образующих единиц (КОЕ) в 1 мл содержимого полости. Анализ микробиологических данных показал, что через 6 суток после инфицирования полости у животных высевается моноштамм Staphylococcus aureus и кишной палочки со средним количеством бактериальных клеток 5,2±0,6*109 КОЕ/мл.
Морфологическое исследование проводили после выведения животных из эксперимента на шестые сутки исследования. У животных иссекали стенки и перифокальные ткани в области МОП. Полученные биоптаты ткани фиксировали в растворе 10% нейтрального формалина. Готовили парафиновые блоки по общепринятой методике после обезвоживания в серии спиртов возрастающей концентрации. Срезы препаратов толщиной 3-5 мкм депарафинизировали, окрашивали гематоксилином и эозином. Морфологический анализ препаратов тканей при МОП показал, что у животных сформирована плотная стенка отграниченной полости толщиной до 540 мкм. Перифокально, на границе стенки, выявлялась клеточная инфильтрация, представленная макрофагами, клетками инородных тел. К зоне клеточной инфильтрации прилежала грануляционная ткань, переходящая в рыхлую соединительную ткань. Смотреть Фиг 3, Фиг 4, Фиг 5.
Пример. В эксперименте на белой лабораторной крысе массой 198 г под комбинированным обезболиваем (рометар, золетил) после депиляции и антисептической обработки участка кожи размером 3×3 см в правой подвздошной области, транскутанно, под контролем УЗИ, в полость живота введен троакар диаметром 3 мм. Далее через троакар проведен катетер Фолея и после заполнения баллона в дистальной части катетера 2,0 мл физиологического раствора (NaCl 0,9%), произведена перевязка катетера проксимальнее баллона и фиксация дистальной части его при помощи кожной дупликатуры. Через 6 суток после проведения манипуляции, катетер опорожнен, проведено контрастное и УЗ-исследование, после чего катетер удален. Инструментальные исследования показали, что в подвздошной области определяется сформированная полость округлой формы диаметром 2 см с четкими стенками и подпаянными к ним петлями кишечника. К 6-м суткам эксперимента, после инфицирования полости 15%-ной взвесью фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия, получена модель МОП. Смотреть Фиг 1.
При оценке планиметрических данных и результатов ультразвукового исследования выявлено, что внутренний диметр полости сформированной полости после опорожнения баллона составлял 2,0±0,6 мл. По данным УЗИ на глубине 10 мм от поверхности кожи в правой подвздошной области определяется образование с четкими гиперэхогенными контурами 17 мм × 10 мм × 8 мм овальной формы. Анализ микробиологических данных показал, из полости высевается моноштамм Staphylococcus aureus и кишечной палочки 5,0±0,1*109 КОЕ/мл, а при морфологическом исследовании к 6-м суткам у животного в созданной отграниченной полости отмечалось незначительное количество мутного экссудата и сформированная стенка тол щиной 510 мкм. Смотреть Фиг 2.
Таким образом, к 6-м суткам после введения в сформированную отграниченную полость в правой подвздошной области животных 15%-ной взвеси фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия во всех проведенных экспериментах формировался МОП со всеми характерными его клиническими признаками, что подтверждено планиметрическими, инструментальными, микробиологическими и морфологическими исследованиями. Как видно из описания и приведенного примера, предложенный способ является экономически и технически выгодным, минимально травматичным, обеспечивающим гарантированное формирование абсцесса в кратчайший срок, позволяет моделировать именно местный отграниченный перитонит, что не приводит к ранней гибели крыс и позволяет разрабатывать новые способы эффективного лечения МОП.
Claims (1)
- Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс, включающий введение в брюшную полость животного 15%-ной взвеси фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия из расчета 1 миллилитр на 100 граммов массы животного, отличающийся тем, что предварительно под контролем УЗИ в правую подвздошную область живота животного через троакар проводят модифицированный катетер Фолея и после заполнения его баллона производят перевязку и фиксацию дистальной части катетера при помощи кожной дупликатуры, затем в образовавшуюся полость вводят возбудитель инфекционного процесса.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018125571A RU2714949C2 (ru) | 2018-07-11 | 2018-07-11 | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018125571A RU2714949C2 (ru) | 2018-07-11 | 2018-07-11 | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2018125571A3 RU2018125571A3 (ru) | 2020-01-13 |
RU2018125571A RU2018125571A (ru) | 2020-01-13 |
RU2714949C2 true RU2714949C2 (ru) | 2020-02-21 |
Family
ID=69171122
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2018125571A RU2714949C2 (ru) | 2018-07-11 | 2018-07-11 | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2714949C2 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2740942C1 (ru) * | 2020-02-28 | 2021-01-21 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се | Способ создания экспериментальной модели воспаленной толстой кишки в условиях перитонита |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2151427C1 (ru) * | 1998-02-16 | 2000-06-20 | Глухов Александр Анатольевич | Способ моделирования острого перитонита |
UA64941A (en) * | 2003-03-07 | 2004-03-15 | Ihor Yuliiovych Polianskyi | Method for modelling circumscribed peritonitis |
JP2008278830A (ja) * | 2007-05-13 | 2008-11-20 | Univ Nagoya | 腹膜透析下での腹膜障害モデル動物及びその利用 |
RU2567602C1 (ru) * | 2014-08-28 | 2015-11-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | Способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей |
-
2018
- 2018-07-11 RU RU2018125571A patent/RU2714949C2/ru active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2151427C1 (ru) * | 1998-02-16 | 2000-06-20 | Глухов Александр Анатольевич | Способ моделирования острого перитонита |
UA64941A (en) * | 2003-03-07 | 2004-03-15 | Ihor Yuliiovych Polianskyi | Method for modelling circumscribed peritonitis |
JP2008278830A (ja) * | 2007-05-13 | 2008-11-20 | Univ Nagoya | 腹膜透析下での腹膜障害モデル動物及びその利用 |
RU2567602C1 (ru) * | 2014-08-28 | 2015-11-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | Способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Шалимов С. А. и др., Руководство по экспериментальной хирургии. М., 1989, 272 с. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2740942C1 (ru) * | 2020-02-28 | 2021-01-21 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се | Способ создания экспериментальной модели воспаленной толстой кишки в условиях перитонита |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2018125571A3 (ru) | 2020-01-13 |
RU2018125571A (ru) | 2020-01-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2714949C2 (ru) | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс | |
Furneaux | A series of six cases of sphincter of Oddi pathology in the cat (2008–2009) | |
US20070207215A1 (en) | Medicament On The Basis Of Honey, Preparation And Use Thereof | |
Espiritu et al. | Complications of heroin injections of the neck | |
RU2749435C1 (ru) | Способ лечения энтеральной недостаточности при воспалительных и травматических повреждениях брюшины | |
RU2355436C1 (ru) | Способ хирургического лечения эхинококкоза печени | |
RU2739666C1 (ru) | Способ эндоскопического транслюминального лечения инфицированного панкреонекроза | |
Boss | Societies. | |
Bryant | Suppurative pylephlebitis | |
Gravena et al. | Clinical and laboratorial changes in horses subjected to a high-pressure modified model of small colon distention | |
RU2772397C1 (ru) | Способ моделирования отграниченного острого гнойного мастита в эксперименте | |
RU2432944C2 (ru) | Способ профилактики послеоперационного спаечного процесса в брюшной полости | |
RU2600926C2 (ru) | Способ моделирования туберкулеза женских половых органов | |
RU2547697C1 (ru) | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза | |
RU2581255C1 (ru) | Способ получения лабораторной модели артифициального флегмонозного воспаления мягких тканей у крыс на фоне искусственной иммуносупрессии | |
RU2232430C1 (ru) | Способ моделирования острого гнойного холангита у экспериментальных животных | |
Toirovich | CHRONIC OSTEOMYELITIS, CAUSES, SYMPTOMS, DIAGNOSIS, TREATMENT | |
Rakhimov | The experimental model of acute pancreatitis | |
RU2401081C2 (ru) | Способ лечения гнойно-деструктивного пиелонефрита | |
Rahman et al. | A case report on successful surgical management of a large subcutaneous abscess in a bull in Ishurdi upazila, pabna, Bangladesh. | |
Gold et al. | Experimental pyelonephritis in dogs | |
CN116918760A (zh) | 一种小鼠严重创伤/全身炎症反应模型的构建方法及其应用 | |
Knaus et al. | Echinococcus Cysts of the Liver: Observations and Reflections Based on a Medical Student's Summer Spent in Turkey, 1971 | |
MacGOWAN | The Uses of Bacterial Vaccines in Urinary Disease | |
Trevelyan | SOME POINTS IN THE PATHOLOGY OF DIPHTHERIA. 1 |