RU2526125C1 - СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro - Google Patents
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- RU2526125C1 RU2526125C1 RU2013137874/15A RU2013137874A RU2526125C1 RU 2526125 C1 RU2526125 C1 RU 2526125C1 RU 2013137874/15 A RU2013137874/15 A RU 2013137874/15A RU 2013137874 A RU2013137874 A RU 2013137874A RU 2526125 C1 RU2526125 C1 RU 2526125C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- essential oil
- vitro
- rate
- reaction
- activity
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине и может быть использовано, в частности, в фармакологии. Способ заключается в использовании в качестве тест-объектов ферментов глутатионредуктазы и каталазы для определения антиоксидантной активности по соотношению скорости ферментативной реакции на тест-объекте после добавления вещества и скорости ферментативной реакции до добавления вещества, которое должно быть больше 1, причем предварительно перед добавлением в инкубационную среду образцы эфирного масла пихты сибирской разводят диметилсульфоксидом в соотношении 1:1. Достигается повышение точности определения. 2 пр., 1 табл.
Description
Изобретение относится к медицине и может быть использовано, в частности, в фармакологии.
Совершенствование и создание новых методов экспериментальной оценки фармакологических веществ, а также новые источники получения потенциальных лекарственных средств, значительно расширяют принципиальные возможности фармакотерапии основных заболеваний человека.
Эфирные масла - это вещества сложного химического состава, широко использующиеся в производстве косметических товаров, средств гигиены и медицинских препаратов, что обусловлено наличием в них биологически активных компонентов. Например, противокашлевое действие эфирного масла багульника болотного связано с содержанием в эфирном масле сесквитерпенового спирта ледола.
Компонентный состав является важнейшей характеристикой эфирного масла и определяет все его полезные свойства антифунгальные, гипотензивные, цитотоксические, противовоспалительные, противомикробные, рострегулирующие, инсектицидные.
В литературе редко встречается совместное описание состава эфирного масла и его биологического действия, упоминается эфирное масло как таковое и идет речь о его биологических свойствах, при этом полностью отсутствуют данные о химическом составе того образца, с которым проводились те или иные испытания [Белоусова Н.И. Химический состав эфирного масла багульников / Белоусова Н.И., Хан В.А., Ткачев А.В. // Химия растительного сырья. - 1999. - №3. - С.5-38]. Между тем выявление биологической активности эфирных масел, в том числе, выделенного из древесной зелени пихты (Abies Sibirica), осуществимо лишь при условии детального изучения химического состава и его влияния на фармакологическую активность на этапе экспериментальных исследований.
Пихта сибирская является одним из самых распространенных эфироносов в России, при переработке хвои которой можно получить высококачественное эфирное масло, способное влиять на концентрации легких отрицательных ионов, благоприятно действующих на человека, и выполняющее функцию по "обеспечению" атмосферного воздуха биологически активным кислородом.
В настоящее время имеются способы исследования определения биологических свойств эфирных масел, в том числе с использованием микроорганизмов.
Известен стандартный микробиологический метод хемолюминесценции, позволяющий выявлять вещества, обладающие антиоксидантной активностью, с помощью тест-объекта, в качестве которого используют перитонеальные макрофаги [Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ, Минздрав РФ, 2000 г.].
Известен способ определения антиоксидантной активности (пат. РФ №2144674) супероксиддисмутазы и химических соединений путем оценки их способности ингибировать скорость реакции аутоокисления адреналина в щелочной среде, которую оценивали спектрофотометрически по величине оптической плотности продукта аутоокисления адреналина, образующегося в отсутствии и присутствии исследуемых препаратов. Антиоксидантную активность определяют по накоплению продукта аутоокисления адреналина, поглощающего при длине волны 347 нм (волновое число 28,8). Добавляют адреналин, используя готовую аптечную форму 0,1% раствора адреналин гидрохлорида pH среды, в которой проводят реакцию, составляет не менее 10,65 ед. Реакцию проводят при любой комнатной температуре, но не ниже 15°C. Опытным путем было установлено, что коммерческий препарат СОД, гемолизат эритроцитов, известные антиоксиданты (аскорбат, цистеин) способны ингибировать процесс накопления этого соединения, что позволяет использовать этот способ измерения как тест-систему для экспресс оценки антиоксидантных свойств различных препаратов и химических соединений. Существенным преимуществом предлагаемого подхода является возможность использования легкодоступных, недорогих химических реактивов: 0,1% аптечного раствора гидрохлорид адреналина и 0,2 М карбонатного буфера, pH 10,65.
Исследование биологической активности БАВ из экстрактов растительного сырья описано в пат. РФ №2115425. Так, например, исследования по изучению антиоксидантной активности БАВ проводилось на нейтрофилах крови. Индуцировался зимозаном процесс кислородного взрыва и исследовался процесс его ингибирования исследуемым препаратом. Препараты, ингибирующие индуцированный кислородный взрыв, по литературным данным, обладают антиоксидантной и противовоспалительной активностью. Исследование проводилось на цельной крови донора. Гепаринизированная кровь, полученная из локтевой вены, в количестве 0,1 мл добавлялась в анализатор хемолюминометра, затем добавлялось по 0,1 мл растворов люминола и зимозана (для индуцированного кислородного взрыва в нейтрофилах крови). В клетках крови нарастал кислородный взрыв, что регистрировалось по увеличению хемолюминесценции. На пике кислородного взрыва в анализатор вводился препарат в конечной концентрации 0,5% и замерялось изменение люминесценции. Контролем служила кровь, к которой не добавлялся препарат. В результате было установлено, что БАВ достоверно ингибирует в клетках крови активные формы кислорода, участвующие в воспалительных реакциях в организме. Фоновая люминесценция сыворотки крови и препарата ничтожно мала и не влияет на полученный результат. Так как растительный экстракт БАВ достоверно ингибирует индуцированный зимозаном кислородный взрыв, его можно отнести к группе препаратов, обладающих антиоксидантной, противовоспалительной активностью, и он может быть использован в качестве профилактического средства при воздействии повышенных температур.
Недостатком этих способов выявления веществ, обладающих антиоксидантной активностью, является большая трудоемкость и необходимость постоянного контроля за сохранностью и чистотой стандартных тест-объектов, что значительно увеличивает экономические и временные затраты на первичный скрининг.
Наиболее близким способом к заявляемому относится известный способ выявления веществ (пат. РФ №2181892), обладающих антиоксидантными свойствами, in vitro, заключающийся в использовании тест-объектов. В качестве тест-объекта используют ферменты глутатионредуктазу (ГР) и один из антиоксидантных ферментов супероксиддисмутаза (СОД), глутатионпероксидаза (ГП) и каталаза (КАТ), определяют скорость ферментативной реакции веществ на тест-объектах, при этом соотношение скорости ферментативной реакции на тест-объекте после добавления вещества и скорости ферментативной реакции до добавления вещества должно быть больше 1.
Так как эфирные масла - это вещества сложного химического состава, то недостатком прототипа является невозможность определения биологической активности эфирного масла пихты сибирской, в том числе антиоксидантной активности.
Выявление биологической активности эфирных масел должно сопровождаться детальным исследованием химического состава, изучением биологической активности отдельных фракций эфирного масла.
Использование высокочувствительных ферментных тест-систем in vitro позволяет определять не только антиоксидантную активность эфирного масла в целом, но и фракций, отобранных в процессе отгонки, что позволяет контролировать наличие биологической активности в многокомпонентных эфирных маслах растительного происхождения, в том числе их фракций, т.к. не всегда известно сочетанное действие компонентов и направленность их биологического действия.
Целью данного изобретения является повышение точности определения антиоксидантной активности эфирного масла растительного происхождения с помощью тест-объектов, таких как ГР и КАТ.
Поставленная цель достигается за счет использования способа определения антиоксидантной активности эфирного масла растительного происхождения in vitro, заключающийся в использовании в качестве тест-объектов ферментов ГР и КАТ для определения антиоксидантной активности по соотношению скорости ферментативной реакции на тест-объекте после добавления вещества и скорости ферментативной реакции до добавления вещества, которое должно быть больше 1, при этом предварительно перед добавлением в инкубационную среду образцы эфирного масла разводят диметилсульфоксидом в соотношении 1:1.
Предлагаемый способ позволяет определить биологическую активность таких химически сложных смесей, как эфирные масла растительного происхождения in vitro.
В доступных источниках научно-технической и патентной информации не выявлены сведения об определении биологической активности эфирного масла растительного происхождения с помощью тест систем in vitro. Поэтому предлагаемое техническое решение способа обладает новизной и соответствует критерию патентоспособности "изобретательский уровень".
Способ определения биологической активности эфирного масла растительного происхождения в соответствии с изобретением осуществляется на примере эфирного масла пихты сибирской следующим образом.
Эфирное масло получали известным способом из древесной зелени пихты сибирской (Abies Sibirica) методом исчерпывающей гидропародистилляции в течение 20 часов с использованием цельнометаллической установки с насадкой Клевенджера. Разовая загрузка воздушно сухого исходного сырья составляла не менее 1,00 кг. Фракции эфирного масла отбирали в процессе получения эфирного масла следующим образом: первую фракцию получали в течение 30 минут от начала выделения масла; вторую - после двух часов; третью - через четыре часа; четвертую - после 5 часов; пятую - через восемь часов.
Состав эфирного масла в его отдельных фракциях определяли методом хроматомасс-спектрометрии на приборе Agilent Technologies 6890.
Биологическую активность исследуемого эфирного масла определяли с помощью молекулярных тест-систем in vitro, в которых в качестве тест-объектов использовали ферменты системы антиоксидантной защиты: ГР и КАТ [пат. РФ №2181892].
Использованы молекулярные тест-системы in vitro прототипа, в которых в качестве тест-объектов применяли ферменты системы антиоксидантной защиты: ГР и КАТ. Эти ферменты играют ключевую роль в обеспечении регуляции свободно радикального окисления клетки и могут служить мишенью для лекарственных средств. Ингибирование ферментов антиоксидантной защиты способствует накоплению радикалов в патогенной клетке, что вызывает пероксидацию белков и нуклеиновых кислот и приводит к остановке роста и гибели клетки, поэтому способность активировать КАТ и ГР связано с наличием антиоксидантных свойств изучаемого эфирного масла, в том числе и пихты сибирской.
Каталитическую активность каталазы определяли по скорости разложения субстрата - перекиси водорода (H2O2). В состав реакционной смеси входил фосфатный буфер (pH 7,8), H2O2 в концентрации - 0,03%, концентрация фермента составляла 0,2 мкг/мл. Продолжительность реакции разложения субстрата (H2O2) ферментом 5-10 мин. Реакцию останавливали добавлением в реакционную смесь аммонния молибденовокислого ((NH4)6Mo7O24·4H2O). Оставшуюся перекись водорода измеряли в виде комплекса с (NH4)6Mo7O24·4H2O на спектрофотометре Shimadzu MPS-2000 при λ=410 нм.
Скорость глутатионредуктазной реакции (ГР) определяли в кварцевых кюветах при спектрофотометрической регистрации убыли НАДФН при λ=340 нм. Инкубационная среда состояла из буфера 0,05М трис-(оксиметил)-аминометан - HCl, содержащего 0,25 mM ЭДТА -Na, pH - 7,4 и 0,033М глутатиона окисленного (Г-SS-Г). Реакцию запускали добавлением 2 mM НАДФН. Продолжительность записи реакции - 1-1,5 мин.
Для эффективного определения биологической активности эфирного масла необходимо провести пробоподготовку. Для улучшения смешиваемости эфирного масла с компонентами инкубационной пробы, эфирное масло разводили в диметилсульфоксиде (ДМСО) перед добавлением в инкубационную среду. Как выяснилось в результате эксперимента, ДМСО в наименьшей степени оказывает влияние на указанные ферменты, что позволяет более точно проводить анализ. Количество ДМСО при разведении эфирного масла, позволяющего в полной мере выявлять биологическую активность эфирного масла определено в соотношении 1:1, что в пробе соответствует количеству - 10 мкл/мл. Также были проведены опыты с использованием спирта и ПАВа в качестве разбавителя тест-объектов. Но при этом выбранные разбавители оказывали влияние на указанные ферменты, что не позволяло объективно определить их биологическую активность.
Сопоставляя полученные данные отобранных фракций эфирного масла и изменения антиоксидантной активности, характеризующиеся скоростями реакции ферментов КАТ, ГР, можно определить влияние химического состава на фармакологическое действие эфирного масла не только пихты сибирской, но и других эфирных масел.
В работе использовали лиофилизированные препараты ферментов - ГР, КАТ.
Ниже приведены примеры с использованием эфирного масла пихты сибирской.
Пример 1. Каталитическая активность каталазы (КАТ)
Каталитическую активность каталазы определяли по скорости разложения субстрата - перекиси водорода (H2O2) ферментом КАТ в реакционной смеси. Реакционная смесь состояла из фермента, растворенного в фосфатном буфере (pH 7,8), концентрация которого составляла 0,2 мкл/мл., субстрата (H2O2) в концентрации - 0,03% и исследуемого эфирного масла - 10 мкл/мл. При этом для улучшения смешиваемости эфирного масла с компонентами инкубационной пробы, эфирное масло разводили растворителем перед добавлением в инкубационную среду. В качестве растворителя использовали ДМСО (диметилсульфоксид), который в наименьшей степени оказывает влияние на фермент, что позволяет более точно проводить анализ. Количество ДМСО при разведении эфирного масла, позволяющего в полной мере выявлять биологическую активность, определено в соотношении 1:1, что в пробе соответствует количеству - 10 мкл/мл. Продолжительность реакции разложения субстрата ферментом (H2O2) 5-10 мин.
Реакцию останавливали путем добавления в реакционную смесь аммонния молибденовокислого ((NH4)6Mo7O24·4H2O). Оставшуюся после реакции разложения ферментом КАТ перекись водорода измеряли в виде комплекса с (NH4)6Mo7O24·4H2O путем определения оптической плотности на спектрофотометре при λ=410 нм (опыт). Расчет скорости каталазной реакции (КАТ) осуществлялся по следующей формуле:
КАТ=ΔAD(холостая-опыт)/(ε*10 мин*b)/4, где холостая - оптическая плотность пробы без добавления фермента; опыт - оптическая плотность оставшейся перекиси водорода после реакции разложения; ε - коэффициент поглощения перекиси водорода; b - концентрация фермента в реакционной смеси (мкг).
Пример 2. Скорость глутатионредуктазной реакции (ГР)
Скорость глутатионредуктазной реакции (ГР) определяли в кварцевых кюветах при спектрофотометрической регистрации убыли НАДФН при λ=340 нм на двулучевом спектрофотометре Shimadzu MPS-2000. Инкубационная среда состояла из буфера 0,05М трис-(оксиметил)-аминометан - HCl, содержащего 0,25 mM ЭДТА - Na, pH-7,4 и 0,033М глутатиона окисленного (Г-SS-Г). Реакцию запускали добавлением 2 mM ИАДФН и включали запись. Продолжительность записи - 1-1,5 мин. ГР реакцию записывали без добавления испытуемого вещества (контроль) и в присутствии разбавленного эфирного масла в концентрации 10 мкл/мл (опытная проба). Скорость ГР реакции рассчитывали по формуле
v=(ΔD)/(α*t*β), где v - скорость реакции, мкмоль/мин.мг белка; ΔD - измеренная убыль оптической плотности за период измерения; α - коэффициент миллимолярной экстинкции, равный 6,22 mM; β - количество фермента в пробе, мкг/мл.
В качестве растворителя также использовали ДМСО (диметилсульфоксид) в соотношении 1:1, что в пробе соответствует количеству - 10 мкл/мл.
Скорость ферментативных реакций в % для всех анализируемых ферментов рассчитывали по соотношению скорости реакции в опытной пробе и скорости реакции в контроле.
При добавлении в инкубационную среду первых трех фракций эфирного масла пихты сибирской активность ферментов является наивысшей, постепенно снижаясь в 4-й и 5-й фракции. Максимально высокая скорость ферментативных реакций КАТ и ГР составляет соответственно 165,70 и 908,02% и по мере процесса отгонки эфирного масла снижается не значительно, в то время как последние отобранные фракции резко снижают активацию ферментов до 111,41% (КАТ) и 191,44% (ГР) (см. табл.1).
Аналогичные примеры были проведены на эфирном масле багульника болотного, сосны обыкновенной, тысячелистника. Предварительное разбавление тест-объекта в ДМСО позволило определить антиоксидантную активность исследуемых эфирных масел.
Корреляция изменения химического состава и активности ферментов в процессе выделения эфирного масла, определяемая с помощью тест-систем in vitro, позволяет в дальнейшем при наличии значительной базы данных оптимизировать и упростить технологический процесс получения целевой биологической активности, определяя компонентный состав фракций эфирного масла и используя только дешевые и высокоэффективные ферментные тест-системы in vitro.
Таким образом, специфические ферментные биотест-системы in vitro могут быть использованы при оценке антиоксидантной активности различных эфирных масел и их отдельных фракций. Причем биотест-системы позволяют проводить сравнительную оценку биологической активности вместе с предварительным определением химического состава изучаемого объекта, что особенно важно при тестировании веществ сложного химического состава.
Выводы
1. Состав эфирного масла пихты сибирской изменяется в зависимости от времени выделения масла.
2. Показана возможность применения тест-систем in vitro для анализа биологической активности цельного эфирного масла и фракций с измененным количественным составом компонентов эфирного масла пихты сибирской.
3. Данный способ оценки биологически активных веществ позволяет находить новые источники получения потенциальных лекарственных средств и значительно расширять принципиальные возможности фармакотерапии основных заболеваний человека.
Таблица 1 | ||||||
Влияние эфирного масла пихты сибирской на скорость ферментативных реакций | ||||||
Эфирное масло пихты сибирской | ГР | КАТ | ||||
нмоль мин мг | % отн | Отношение скорости ферментативной реакции | нмоль мин мг | % отн | Отношение скорости ферментативной реакции | |
Контроль без эфирного масла | 7,3±0,22 | 100,0 | - | 3,6±0,01 | 100,0 | - |
1-ая фракция | 66,3±1,65 | 908,0±27,2 | 9.08 | 5,9±0,018 | 165,7±6,1 | 1,65 |
2-ая фракция | 63,1±1,70 | 864,4±25,9 | 8.64 | 5,7±0,015 | 167,8±7,0 | 1.67 |
3-ая фракция | 22,7±0,70 | 310,2±9,3 | 3.10 | 5,9±0,019 | 164,8±7,9 | 1.64 |
4-ая фракция | 22,4±0,56 | 306,1±9,2 | 3.06 | 4,06±0,101 | 113,5±3,4 | 1.13 |
5-ая фракция | 14,0±0,40 | 191,4±5,7 | 1.91 | 3,98±0,103 | 111,4±3,3 | 1.11 |
Цельное эфирное масло | 63,8±1,60 | 873,9±31,1 | 8.73 | 8,27±0,03 | 231,6±7,2 | 2.31 |
Claims (1)
- Способ определения антиоксидантной активности эфирного масла пихты сибирской (Abies Sibirica) in vitro, заключающийся в использовании в качестве тест-объектов ферментов глутатионредуктазы и каталазы для определения антиоксидантной активности по соотношению скорости ферментативной реакции на тест-объекте после добавления вещества и скорости ферментативной реакции до добавления вещества, которое должно быть больше 1, отличающийся тем, что предварительно перед добавлением в инкубационную среду образцы эфирного масла пихты сибирской разводят диметилсульфоксидом в соотношении 1:1.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013137874/15A RU2526125C1 (ru) | 2013-08-14 | 2013-08-14 | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013137874/15A RU2526125C1 (ru) | 2013-08-14 | 2013-08-14 | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2526125C1 true RU2526125C1 (ru) | 2014-08-20 |
Family
ID=51384752
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013137874/15A RU2526125C1 (ru) | 2013-08-14 | 2013-08-14 | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2526125C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112912062A (zh) * | 2018-10-16 | 2021-06-04 | 株式会社爱茉莉太平洋 | 含有西伯利亚冷杉油的皮肤屏障强化用组合物 |
RU2757873C2 (ru) * | 2019-12-03 | 2021-10-22 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Инитиум-Фарм" | Липосомальная форма смолы Abies sibirica для неинвазивной доставки биологически активного вещества живицы Abies sibirica в мозг, обладающая антиоксидантной, цитотоксической активностью в отношении раковых клеток шейки матки, и способ ее получения |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2157531C1 (ru) * | 1999-09-13 | 2000-10-10 | Саратовский научно-исследовательский институт кардиологии при Саратовском государственном медицинском университете | Способ определения суммарной антиоксидантной активности крови |
RU2181892C1 (ru) * | 2001-06-06 | 2002-04-27 | Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР | Способ выявления веществ, обладающих антиоксидантными свойствами, in vitro |
RU2199749C1 (ru) * | 2001-08-03 | 2003-02-27 | Научно-исследовательский институт кардиологии Томского научного центра СО РАМН | Способ определения антирадикальной активности биологических жидкостей |
RU2465593C1 (ru) * | 2011-07-06 | 2012-10-27 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кемеровская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Способ количественного определения антиоксидантной активности микроорганизмов |
-
2013
- 2013-08-14 RU RU2013137874/15A patent/RU2526125C1/ru active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2157531C1 (ru) * | 1999-09-13 | 2000-10-10 | Саратовский научно-исследовательский институт кардиологии при Саратовском государственном медицинском университете | Способ определения суммарной антиоксидантной активности крови |
RU2181892C1 (ru) * | 2001-06-06 | 2002-04-27 | Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР | Способ выявления веществ, обладающих антиоксидантными свойствами, in vitro |
RU2199749C1 (ru) * | 2001-08-03 | 2003-02-27 | Научно-исследовательский институт кардиологии Томского научного центра СО РАМН | Способ определения антирадикальной активности биологических жидкостей |
RU2465593C1 (ru) * | 2011-07-06 | 2012-10-27 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кемеровская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Способ количественного определения антиоксидантной активности микроорганизмов |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112912062A (zh) * | 2018-10-16 | 2021-06-04 | 株式会社爱茉莉太平洋 | 含有西伯利亚冷杉油的皮肤屏障强化用组合物 |
RU2757873C2 (ru) * | 2019-12-03 | 2021-10-22 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Инитиум-Фарм" | Липосомальная форма смолы Abies sibirica для неинвазивной доставки биологически активного вещества живицы Abies sibirica в мозг, обладающая антиоксидантной, цитотоксической активностью в отношении раковых клеток шейки матки, и способ ее получения |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Abo‐Khatwa et al. | Lichen acids as uncouplers of oxidative phosphorylation of mouse‐liver mitochondria | |
Lundqvist‐Gustafsson et al. | Activation of the granule pool of the NADPH oxidase accelerates apoptosis in human neutrophils | |
Lahnsteiner et al. | Antioxidant systems of brown trout (Salmo trutta f. fario) semen | |
Oh-Hashi et al. | Mitogen-activated protein kinase pathway mediates peroxynitrite-induced apoptosis in human dopaminergic neuroblastoma SH-SY5Y cells | |
Saleh et al. | Effects of anti-inflammatory drugs upon nitrate and myeloperoxidase levels in the mouse pleurisy induced by carrageenan☆ | |
Topal et al. | Evaluation of the in vitro antioxidant, antidiabetic and anticholinergic properties of rosmarinic acid from rosemary (Rosmarinus officinalis L.) | |
Sowndhararajan et al. | Antioxidant and free radical scavenging capacity of the underutilized legume, Vigna vexillata (L.) A. Rich | |
Boudiaf et al. | Thymoquinone strongly inhibits fMLF-induced neutrophil functions and exhibits anti-inflammatory properties in vivo | |
Li et al. | Antifungal effect of nerol via transcriptome analysis and cell growth repression in sweet potato spoilage fungi Ceratocystis fimbriata | |
Greene et al. | Rabbit sciatic nerve fascicle and ‘endoneurial’preparations for in vitro studies of peripheral nerve glucose metabolism | |
RU2526125C1 (ru) | СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ ЭФИРНОГО МАСЛА РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ in vitro | |
Rossoni-Júnior et al. | Annato extract and β-carotene modulate the production of reactive oxygen species/nitric oxide in neutrophils from diabetic rats | |
Saha et al. | Comparative evaluation of the medicinal activities of methanolic extract of seeds, fruit pulps and fresh juice of Syzygium cumini in vitro | |
Kazemirad et al. | Nitric oxide plays a pivotal role in cardioprotection induced by pomegranate juice against myocardial ischemia and reperfusion | |
Piechowiak et al. | One-time ozone treatment improves the postharvest quality and antioxidant activity of Actinidia arguta fruit | |
YAPÇA et al. | The effect of agomelatine on oxidative stress induced with ischemia/reperfusion in rat ovaries | |
US20150353987A1 (en) | Rapid Tests for the Detection of Inhibitors of Enzymes and Human Exposure to the Same | |
Song et al. | p97 dysfunction underlies a loss of quality control of damaged membrane proteins and promotes oxidative stress and sickling in sickle cell disease | |
Back et al. | A simplified hydroethidine method for fast and accurate detection of superoxide production in isolated mitochondria | |
Marioni et al. | Reduction of Candida tropicalis biofilm by photoactivation of a Heterophyllaea pustulata extract | |
Maccaglia et al. | Differential effects of quercetin and resveratrol on Band 3 tyrosine phosphorylation signalling of red blood cells | |
Kupaeva et al. | Current view on the assessment of antioxidant and antiradical activities: A mini review | |
Oltica et al. | Examination of antioxidant capacity of beebread extracts by different complementary assays | |
Mamajanov et al. | Effect Of Cinoroside And Thermopsoside On Respiration And Phosphorylation Of Mitochondria | |
da Silva et al. | Prolonged erythrocyte auto-incubation as an alternative model for oxidant generation system |