RU2476385C1 - Способ очистки сточных вод от фенольных соединений - Google Patents
Способ очистки сточных вод от фенольных соединений Download PDFInfo
- Publication number
- RU2476385C1 RU2476385C1 RU2011131460/10A RU2011131460A RU2476385C1 RU 2476385 C1 RU2476385 C1 RU 2476385C1 RU 2011131460/10 A RU2011131460/10 A RU 2011131460/10A RU 2011131460 A RU2011131460 A RU 2011131460A RU 2476385 C1 RU2476385 C1 RU 2476385C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- phenolic compounds
- strain
- ions
- wastewater
- sulfide
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биохимии. Через реактор колонного типа пропускают сточные воды с повышенным содержанием фенольных соединений 300-1200 мг/л, содержанием сульфид-ионов до 64,1 мг/л и содержанием сульфат-ионов до 401,4 мг/л или 1843,7 мг/л при барботаже воздухом. Реактор содержит адсорбент - нефтяной кокс, на который иммобилизованы клетки штамма аэробных бактерий Pseudomonas putida 131 ВКПМ В-10894. Предварительно в сточных водах растворяют ортофосфорную кислоту или ее соли в качестве биогенной добавки для достижения pH 7-8, оптимального для деструкции фенола штаммом бактерий. Изобретение обеспечивает повышение качества очистки сточных вод, содержащих сульфид-ионы и сульфат-ионы, от фенольных соединений до 0-50 мг/л. 4 з.п. ф-лы, 1 ил., 8 табл., 7 пр.
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к биохимической очистке сточных вод от фенольных соединений.
Известен способ очистки сточных вод от фенолов экстракцией в присутствии углеводородов [А.С. СССР 806616, заявка 2357297 от 10.05.76], однако этот метод приводит к вторичному загрязнению сточных вод и имеет высокие показатели по остаточному фенолу.
Известен способ биологической очистки сточных вод от фенольных соединений с помощью ферментных препаратов, выделенных из гомогенатов растительных тканей [А.С. СССР 939407, заявка 2966341 от 09.06.80]. Недостатком этого метода является трудоемкость процесса приготовления ферментных препаратов путем промывки гомогената растительных тканей ацетоном или растиранием в фосфатном буфере.
Известен биологический способ очистки сточных вод от фенольных соединений с помощью ферментного препарата о-дифенилоксидазы, иммобилизованного на саже [А.С. СССР 914507, заявка 2966313 от 11.06.80], но он затрагивает лишь стадию биоокисления пирокатехина, являющегося метаболитом в промежуточном окислении фенола бактериальными штаммами.
Известен способ биохимической очистки сточных вод от фенолов грибами Botrytis cinerea и Phytoptora infestans [А.С. СССР 912684, заявка 2856399 от 20.12.79].
Известен способ биохимической очистки сточных вод от фенольных соединений при pH 6-8,5 в течение 1-3 суток с помощью дереворазрушающего гриба - белой гнили Polyporus versicolor [А.С. СССР 969684, заявка 3277087 от 20.04.81].
Известен способ биохимической очистки предварительно разбавленных сточных вод от органических соединений путем культивирования микроорганизмов-дрожжей рода Candida в условиях аэрации с последующим отделением микроорганизмов [А.С. СССР 975588, заявка 3006003 от 01.08.80].
Известно применение штамма Pseudomonas aeruginosa №228, разлагающего фенол [А.С. СССР №499227, заявка №203990 от 01.07.74].
Известен способ биохимической очистки сточных вод от фенолов 3-4-суточным инокулятом лигнилитического гриба Panus (Lentinus) tigrinus ВKМ F-3613D [Патент РФ 2345957, заявка 2007123842/13 от 25.06.2007].
Известен способ очистки сточных вод от фенольных соединений с использованием штамма бактерий Mycobacterium stegmalis ВKМ В-1205 [А.С. СССР 1597384, заявка 4368424 от 23.10.87].
Известен способ биохимической очистки сточных вод от фенолсодержащих соединений с применением штамма микроорганизмов Pseudomonas aeruginosa XP-25 и в присутствии пространственно-затрудненных алкилфенолов, депонированного под номером ВКПМ В-8613 [патент РФ №2270807, заявка №2004110627 от 07.04.2004].
Вышеперечисленные способы очистки длительны по времени, трудоемки и обеспечивают невысокую степень очистки сточных вод от фенольных соединений, в частности от фенольных соединений, содержащихся в сульфидно-щелочных стоках нефтеперерабатывающих и нефтехимических заводов, имеющих повышенное содержание сульфид-ионов. Кроме того, отдельные выделенные штаммы являются условно-патогенными и токсичными.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому техническому результату является способ биохимической очистки сточных вод от фенолсодержащих соединений с применением штамма микроорганизмов Pseudomonas aeruginosa XP-25, депонированного под номером ВКПМ В-8613 [патент РФ №2270805, заявка №2004110625 от 07.04.2004]. Однако известный штамм разлагает фенол в сточных водах производства фенольных антиоксидантов или аналогичных по составу, который резко отличается от состава сульфидно-щелочных стоков нефтехимического и нефтеперерабатывающего производств.
Задачей изобретения является повышение качества очистки сточных вод, в частности сульфидно-щелочных стоков нефтехимических и нефтеперерабатывающих заводов, с повышенным содержанием сульфид-ионов, от фенольных соединений, повышение безопасности при эксплуатации штамма, расширение арсенала штаммов микроорганизмов, применяемых для очистки сточных вод.
Поставленная задача решается за счет биохимической очистки сточных вод с помощью штамма Pseudomonas putida 131, предварительно выращенного на феноле и сорбированного на нефтяном прокаленном коксе. Штамм Pseudomonas putida 131 был выделен из фенолзагрязненных почв Нефтеперерабатывающего завода ОАО «Газпром нефтехим Салават» путем культивирования почвенного образца в минерализованной среде и последующего отбора наиболее активных форм и депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под номером В-10894.
Культура штамма Pseudomonas putida 131 эффективно утилизирует фенольные соединения в сточных водах, в том числе в сульфидно-щелочных стоках, в аэробных условиях, используя фенольные соединения в качестве источника углерода.
Морфологические признаки. Палочковидные клетки. Грамотрицательны.
Культуральные признаки. На мясопептонном агаре (МПА) и селективном агаре для бактерий рода Pseudomonas растет обильно. МПА имеет состав, г/л:
Отвар мяса | 500 г свежего мяса, |
отделенного от пленок | |
и жира/литр воды | |
Агар | 20 |
Пептон | 10 |
NaCl | 5 |
На МПА формирует круглые колонии с ровными краями, кремового цвета, выпуклые с возвышением в центре, однородной консистенции, диаметром до 5 мм. На селективной среде для бактерий рода Pseudomonas образует колонии кремового цвета, блестящие, выпуклые, однородной консистенции, с ровными краями и ровной поверхностью, диаметром до 10 мм. Штамм хорошо растет в минеральной среде состава, приведенного в таблице 1.
Таблица 1 | |
Состав минеральной среды для культивирования бактерий | |
Вещество | Содержание, г/л |
KH2PO4 | 0,16 |
Na2HPO4 | 0,55 |
MgSO4 | 0,20 |
(NH4)2SO4 | 0,50 |
FeSO4 | 0,01 |
CaCl2 | 0,01 |
фенол | 0,5 |
вода дистиллированная | до 1 л |
При этом образуется желтый пигмент с зеленоватым оттенком.
Физиологические признаки. Аэроб, оптимальная температура роста 25÷30°C, отсутствие деструкции фенольных соединений при 15°C.
Биохимические признаки. Культура оксидазоположительна, утилизирует глюкозу, сорбит, маннит, инозит, обладает каталазной и аргининдегидрогеназной активностями, дает положительную реакцию на β-галактозидазу, не утилизирует цитрат, малонат, лактозу, сахарозу, не способна к декарбоксилированию лизина и орнитина, не образует индол и сероводород, не обладает уреазной активностью. Штамм не образует поли-β оксибутират, не способен к денитрификации.
При культивировании в минеральной среде состава, указанного в таблице 1, на шейкере со скоростью 180 об/мин и температуре 26°C штамм Pseudomonas putida 131 полностью деструктурирует фенол в концентрации 500 мг/л за 12 часов.
Культура может храниться на селективной среде для бактерий рода
Pseudomonas и МПА, при pH 7,0 при 4÷8°C 3 месяца.
Культивирование в лабораторных условиях. Для деструкции фенольных соединений культуру смывают с поверхности скошенной агаризованной среды в пробирке небольшим объемом 0,5÷1,0 мл стерильной водопроводной воды или 0,9%-ного раствора хлористого натрия и вводят в 3÷5 мл стерильного мясопептонного бульона следующего состава, г/л:
Отвар мяса | 500 г свежего мяса, отделенного от пленок и жира/литр воды |
Пептон | 10 |
Nad | 5 |
Выращивают в течение 12÷18 часов при температуре 25÷30°C. Полученной культурой заражают описанную выше минеральную среду, в которой при культивировании в колбах на качалках полная деструкция фенола проходит за 12 часов.
Штамм относится к группе невирулентных, нетоксигенных и нетоксичных согласно заключению Уфимского НИИ медицины труда и экологии человека Роспотребнадзора.
Способ заключается в следующем. Очищаемые сточные воды подают в биореактор, представляющий собой емкость колонного типа, заполненную иммобилизованным на нефтяной прокаленный кокс штаммом микроорганизмов Pseudomonas putida 131 - биофильтр 1. Для исключения уноса кокса предусмотрена установка сетки в нижней и верхней частях реактора. При прохождении загрязненной фенольными соединениями сточной воды, подаваемой сверху колонны, через реактор происходит деструкция фенольных соединений штаммом микроорганизмов, равномерно распределяющимся в объеме реактора, в присутствии кислорода воздуха, подаваемого через распределитель воздуха 2. Для сохранения активности штамма микроорганизмов в биореактор вносят биогенную добавку, предварительно растворенную в сточной воде. Газы, образовавшиеся в результате жизнедеятельности бактерий, выводятся сверху.
В частном случае сточные воды, подаваемые на очистку, содержат сульфид-ионы до 64,1 мг/л. В качестве биогенной добавки может быть использована ортофосфорная кислота или соли ортофосфорной кислоты.
Клетки штамма микроорганизмов иммобилизованы на нефтяной прокаленный кокс на основе тяжелой смолы пиролиза способом нанесения в воронке, который заключается в прокачивании (с рециклом) суспензии клеток через воронку, заполненную адсорбентом-носителем. Размер фракции кокса 5÷10 мм. Для иммобилизации адсорбент и суспензия клеток использовались в соотношении 800 мл носителя на 3 л суспензии клеток. Адсорбент предварительно промывался водой и стерилизовался при 1 атм. в течение 30 мин. Наиболее оптимальным значением pH для деструкции фенола иммобилизованным штаммом является значение 7÷8, поэтому сульфидно-щелочной сток предварительно нейтрализовали кислотой.
Способ поясняется чертежом, на котором изображен биореактор, представляющий собой емкость колонного типа, внутри которой расположены биофильтр 1 и распределитель воздуха 2.
Способ иллюстрируется примерами.
Пример 1. В образец №1 сульфидно-щелочного стока ОАО «Газпром нефтехим Салават» (состав приведен в таблице 2), предварительно нейтрализованного серной кислотой до pH 7,5, с концентрацией фенольных соединений 300 мг/л, в качестве биогенной добавки вносили соль ортофосфорной кислоты K2HPO4 в конечной концентрации 80 мг/л. Далее образец пропускали через биореактор, изображенный на чертеже, заполненный иммобилизованным на нефтяной прокаленный кокс штаммом микроорганизмов Pseudomonas putida 131, при барботаже воздухом с расходом 2 л/ч, в течение 4 часов. Результаты приведены в таблице 2.
Таблица 2 | ||
Состав образца №1 до и после очистки | ||
Показатели | Сульфидно-щелочной сток, мг/л | |
Исходный | Очищенный | |
pH | 7,5 | 8,9 |
Массовая концентрация сульфид-ионов, мг/л | 28,6 | 8,8 |
Массовая концентрация сульфат-ионов, мг/л | 401,4 | 189,1 |
Массовая концентрация фенольных соединений, мг/л | 300 | 0,8 |
Пример 2. Образец №2 сульфидно-щелочного стока ОАО «Газпром нефтехим Салават» с содержанием сульфид-ионов 64,1 мг/л (состав приведен в таблице 3), предварительно нейтрализованный фосфорной кислотой, с концентрацией фенольных соединений 800 мг/л, пропускали через биореактор, как показано в примере 1, в течение 15 часов. Результаты приведены в таблице 3. Таким образом, показано осуществление изобретения в интервале содержания в сточных водах сульфид-ионов до 64,1 мг/л.
Таблица 3 | ||
Состав образца №2 до и после очистки | ||
Показатели | Сульфидно-щелочной сток, мг/л | |
Исходный | Очищенный | |
pH | 7,5 | 8,8 |
Массовая концентрация сульфид-ионов, мг/л | 64,1 | 25,6 |
Массовая концентрация сульфат-ионов, мг/л | 1843,7 | 544,8 |
Массовая концентрация фенольных соединений, мг/л | 800 | 50 |
Пример 3. Образец №3 минеральной среды (состав приведен в таблице 4), с концентрацией фенольных соединений 300 мг/л, пропускали через биореактор, как показано в предыдущих примерах. Через 4 часа концентрация фенольных соединений составляет менее 50 мг/л.
Таблица 4 | |
Состав минеральной среды, содержащей фенольные соединения | |
Вещество | Содержание, мг/л |
KH2PO4 | 160 |
Na2HPO4 | 550 |
MgSO4 | 200 |
(NH4)2SO4 | 500 |
FeSO4 | 010 |
CaCl2 | 010 |
Фенольные соединения | 300 |
Пример 4. В образцы сульфидно-щелочного стока, предварительно нейтрализованные соляной кислотой до pH 7,5, с содержанием фенольных соединений 500 мг/л, добавляли в качестве биогенной добавки соли соляной, серной и ортофосфорной кислот NaCl, Na2SO4, Na2HPO4, KH2PO4. Один образец нейтрализовали ортофосфорной кислотой и соль в него не добавляли. Очистку от фенольных соединений проводили, как показано в предыдущих примерах. Результаты приведены в таблице 5.
Таблица 5 | |||
Влияние различных солей на активность деструкции фенольных соединений с помощью штамма микроорганизмов Pseudomonas putida 131 | |||
Вид и количество соли, мг/л | Содержание фенольных соединений, мг/л | ||
Через 12 ч | Через 18 ч | Через 24 ч | |
NaCl - 4650 | 354,0 | 142,2 | 0,5 |
Na2SO4 - 1650 | 385,7 | 324,8 | 0,4 |
Na2HPO4 - 650 | 0,3 | 0,3 | 0,2 |
KH2PO4 - 650 | 0,3 | 0,2 | 0,1 |
Образец нейтрализован ортофосфорной кислотой | 100,0 | 0,3 | 0,3 |
Пример 5. Образец №5 сульфидно-щелочного стока ОАО «Газпром нефтехим Салават» (состав приведен в таблице 6) разбавляли в 2 раза в конической колбе нестерильной водопроводной водой до конечного объема, равного 30%-ному объему колбы. Затем добавляли соль K2HPO4 в конечной концентрации 300 мг/л и 10% по объему культуры штамма Pseudomonas putida 131, выращенной, как описано выше, на минеральной среде с фенолом. Затем бактерии культивировали на качалке 12 ч при температуре 25°C и скорости качания 180 об/мин. Результаты приведены в таблице 6.
Таблица 6 | ||
Пример деструкции фенольных соединений в сульфидно-щелочном стоке штаммом Pseudomonas putida 131 | ||
Показатели | Сульфидно-щелочной сток | |
Исходный | После деструкции | |
pH среды | 7,5 | 8,9 |
Массовая концентрация сульфид-ионов, мг/л | 29,8 | 9,6 |
Массовая концентрация фенольных соединений, мг/л | 204,6 | Отсутствие |
Пример 6. Образец №6 сульфидно-щелочного стока ОАО «Газпром нефтехим Салават», содержащего фенольные соединения в концентрации 1200 мг/л, разбавляли в два раза водопроводной водой и доводили значение pH до 7,5 концентрированной серной кислотой. Затем вносили соль Na2SO4 так, что конечная ее концентрация составляла 4650 мг/л (в пересчете на сульфат-ион 3143 мг/л), а общая минерализация - 5400 мг/л. Бактерии штамма Pseudomonas putida 131 культивировали на качалках, как описано в примере 5. Результаты приведены в таблице 7.
Таблица 7 | |||
Деструкция фенольных соединений бактериями Pseudomonas putida 131 в сульфидно-щелочном стоке с высоким содержанием сульфат-ионов | |||
Вариант | Содержание фенольных соединений, мг/л, через | ||
12 часов | 18 часов | 24 часа | |
Pseudomonas putida 131 | 459,0 | 437,8 | 0,6 |
Без бактерий | 598,7 | 563,9 | 524,8 |
Пример 7. Для примера деструкции фенольных соединений использовалась минеральная среда состава, указанного в таблице 8. Бактерии штамма Pseudomonas putida 131 культивировали на качалках, как описано в примере 5. После 40 часов культивирования на минеральной среде методом высокоэффективной жидкостной хроматографии фенольные соединения не определялись.
Таблица 8 | |
Состав минеральной среды, содержащей фенольные соединения | |
Вещество | Содержание, мг/л |
KH2PO4 | 160 |
Na2HPO4 | 550 |
MgSO4 | 200 |
(NH4)2SO4 | 500 |
FeSO4 | 010 |
CaCl2 | 010 |
Фенол | 352 |
П-крезол | 029 |
O-крезол | 017 |
Вода дистиллированная | до 1 л |
Эффективная деструкция фенольных соединений в различных средах говорит о возможности быстрой адаптации штамма к изменяющимся условиям среды, т.е. подтверждает высокую адаптационную способность штамма Pseudomonas putida 131.
Определение содержания фенольных соединений проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии.
Таким образом, использование штамма Pseudomonas putida 131 обеспечивает повышение качества очистки сточных вод от фенольных соединений. Очищенные с помощью штамма сточные воды могут быть использованы для дальнейшей очистки с бытовыми сточными водами.
Claims (5)
1. Способ очистки сточных вод от фенольных соединений с помощью штамма аэробных бактерий и биогенной добавки, отличающийся тем, что в качестве штамма аэробных бактерий используют штамм Pseudomonas putida 131 ВКПМ В-10894.
2. Способ очистки сточных вод от фенольных соединений по п.1, отличающийся тем, что сточные воды содержат сульфид-ионы до 64,1 мг/л.
3. Способ очистки сточных вод от фенольных соединений по п.1, отличающийся тем, что сточные воды содержат сульфат-ионы в количестве 401,4 или 1843,7 мг/л.
4. Способ очистки сточных вод от фенольных соединений по п.1, отличающийся тем, что в качестве биогенной добавки используют ортофосфорную кислоту.
5. Способ очистки сточных вод от фенольных соединений по п.1, отличающийся тем, что в качестве биогенной добавки используют соли ортофосфорной кислоты.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011131460/10A RU2476385C1 (ru) | 2011-07-26 | 2011-07-26 | Способ очистки сточных вод от фенольных соединений |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011131460/10A RU2476385C1 (ru) | 2011-07-26 | 2011-07-26 | Способ очистки сточных вод от фенольных соединений |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2011131460A RU2011131460A (ru) | 2013-02-10 |
RU2476385C1 true RU2476385C1 (ru) | 2013-02-27 |
Family
ID=49119336
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011131460/10A RU2476385C1 (ru) | 2011-07-26 | 2011-07-26 | Способ очистки сточных вод от фенольных соединений |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2476385C1 (ru) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2661679C2 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-07-18 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ООО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от фенола |
RU2661767C2 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-07-19 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ОАО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от сульфидов |
CN108840510A (zh) * | 2018-06-12 | 2018-11-20 | 江南大学 | 一种短流程含油废水中烷烃类物质的处理方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU1792925C (ru) * | 1991-02-08 | 1993-02-07 | Саратовский филиал Всесоюзного научно-исследовательского института генетики и селекции промышленных микроорганизмов | Штамм бактерий РSеUDомоNаS рUтIDа - деструктор ароматических соединений и окиси мезитила |
SU1686799A1 (ru) * | 1989-04-14 | 1997-06-27 | Казанский государственный университет им.В.И.Ульянова-Ленина | Способ предварительной очистки сточных вод, содержащих фенол и другие ароматические углеводороды |
US6521444B1 (en) * | 1996-08-19 | 2003-02-18 | Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha | Microorganism and method for environmental purification using the same |
RU2270807C2 (ru) * | 2004-04-07 | 2006-02-27 | ЗАО "Стерлитамакский нефтехимический завод" | Способ биохимической очистки сточных вод от фенолсодержащих соединений |
-
2011
- 2011-07-26 RU RU2011131460/10A patent/RU2476385C1/ru active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1686799A1 (ru) * | 1989-04-14 | 1997-06-27 | Казанский государственный университет им.В.И.Ульянова-Ленина | Способ предварительной очистки сточных вод, содержащих фенол и другие ароматические углеводороды |
RU1792925C (ru) * | 1991-02-08 | 1993-02-07 | Саратовский филиал Всесоюзного научно-исследовательского института генетики и селекции промышленных микроорганизмов | Штамм бактерий РSеUDомоNаS рUтIDа - деструктор ароматических соединений и окиси мезитила |
US6521444B1 (en) * | 1996-08-19 | 2003-02-18 | Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha | Microorganism and method for environmental purification using the same |
RU2270807C2 (ru) * | 2004-04-07 | 2006-02-27 | ЗАО "Стерлитамакский нефтехимический завод" | Способ биохимической очистки сточных вод от фенолсодержащих соединений |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2661679C2 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-07-18 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ООО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от фенола |
RU2661767C2 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-07-19 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ОАО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от сульфидов |
RU2661767C9 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-09-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ООО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от сульфидов |
RU2661679C9 (ru) * | 2016-07-13 | 2018-09-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром нефтехим Салават" (ООО "Газпром нефтехим Салават") | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от фенола |
CN108840510A (zh) * | 2018-06-12 | 2018-11-20 | 江南大学 | 一种短流程含油废水中烷烃类物质的处理方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2011131460A (ru) | 2013-02-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101857847A (zh) | 一株铜绿假单胞菌菌株的分离纯化及其驯化方法与用途 | |
CN109055282B (zh) | 一株肺炎克雷伯氏菌新菌株及其分离方法和应用 | |
CN109576187A (zh) | 一株氰化物降解菌株及利用该菌株降解氰化物的方法 | |
Sharma et al. | Batch biodegradation of phenol of paper and pulp effluent by Aspergillus niger | |
CN113215033A (zh) | 一种磺胺类抗生素降解菌及其应用 | |
RU2476385C1 (ru) | Способ очистки сточных вод от фенольных соединений | |
CN114381402A (zh) | 一株耐酸耐碱快速脱氮的好氧反硝化细菌、菌剂及其应用 | |
Lallai et al. | pH variation during phenol biodegradation in mixed cultures of microorganisms | |
CN102031228B (zh) | 一株高效降解多种酚类化合物的假单胞菌xq23 | |
RU2661679C2 (ru) | Способ очистки сточных вод нефтеперерабатывающих и нефтехимических производств от фенола | |
RU2270805C2 (ru) | Способ очистки сточных вод от фенольных соединений | |
RU2270807C2 (ru) | Способ биохимической очистки сточных вод от фенолсодержащих соединений | |
CN107760636A (zh) | 以低品质碳源苯酚为电子供体的反硝化菌株及其应用 | |
RU2270806C2 (ru) | Штамм pseudomonas aeruginosa xp-25, осуществляющий биодеградацию ароматических соединений | |
RU2463344C1 (ru) | Штамм pseudomonas putida 131, осуществляющий деструкцию фенольных соединений | |
KR0154294B1 (ko) | 신균주 캔디다 트로피카리스 | |
RU2489485C1 (ru) | ШТАММ Rhodococcus Erythropolis, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ РАЗЛОЖЕНИЯ НЕФТИ | |
CN115029275B (zh) | 一种氯苯降解菌及其应用 | |
KR20020009059A (ko) | 테트라메틸 암모늄 하이드록사이드를 분해하는 신규한바실러스 세레우스 ibn-h4 및 전기 균주를 이용한폐수처리방법 | |
CN107858309B (zh) | 三氮唑降解芽孢杆菌及其应用 | |
RU2396340C2 (ru) | ШТАММ Gordona terrae ВКПМ Ас-1741 ДЛЯ РАЗЛОЖЕНИЯ НЕФТИ И НЕФТЕПРОДУКТОВ | |
RU2126041C1 (ru) | Штамм микромицета fusarium sp. n 56 для очистки воды и почвы от нефти и нефтепродуктов | |
Zhang et al. | Screening of high concentration phenol degrading strain and optimization of its phenol degradation performance | |
El Asli et al. | Effect of cell immobilization on the treatment of olive mill wastewater by a total phenols, acetic acid and formic acid degrading bacterium strain | |
RU2314267C2 (ru) | Способ биологической очистки серосодержащих сточных вод |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20170222 |