RU2404812C1 - Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований - Google Patents

Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований Download PDF

Info

Publication number
RU2404812C1
RU2404812C1 RU2009109345/15A RU2009109345A RU2404812C1 RU 2404812 C1 RU2404812 C1 RU 2404812C1 RU 2009109345/15 A RU2009109345/15 A RU 2009109345/15A RU 2009109345 A RU2009109345 A RU 2009109345A RU 2404812 C1 RU2404812 C1 RU 2404812C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
fetoprotein
alpha
iodine
buffer solution
solution
Prior art date
Application number
RU2009109345/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2009109345A (ru
Inventor
Евгений Сергеевич Северин (RU)
Евгений Сергеевич Северин
Виктор Николаевич Кулаков (RU)
Виктор Николаевич Кулаков
Елизавета Юрьевна Москалева (RU)
Елизавета Юрьевна Москалева
Тамара Петровна Климова (RU)
Тамара Петровна Климова
Илья Игоревич Слободяник (RU)
Илья Игоревич Слободяник
Сергей Евгеньевич Северин (RU)
Сергей Евгеньевич Северин
Original Assignee
Автономная некоммерческая организация "Институт молекулярной диагностики" (АНО "ИнМоДи")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Автономная некоммерческая организация "Институт молекулярной диагностики" (АНО "ИнМоДи") filed Critical Автономная некоммерческая организация "Институт молекулярной диагностики" (АНО "ИнМоДи")
Priority to RU2009109345/15A priority Critical patent/RU2404812C1/ru
Publication of RU2009109345A publication Critical patent/RU2009109345A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2404812C1 publication Critical patent/RU2404812C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины, в частности к онкологии. Для приготовления меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина получают раствор альфа-фетопротеина, помещенного в ампулу. Ампулу с радиоактивным йодом-123, йодом-125 (125I-АФП) или йодом-131 промывают фосфатным буферным раствором, который затем вводят в ампулу с альфа-фетопротеином. В результате получают смесь йодида и альфа-фетопротеина. В смесь добавляют раствор хлорамина-Б в фосфатном буферном растворе. Затем полученную смесь перемешивают в течение 2-5 с и вносят в нее натрий сульфит для остановки реакции с продолжением перемешивания в течение 50-70 с. После чего вносят сывороточный альбумин человека в фосфатном буферном растворе и наносят полученную смесь на колонку с сефадексом с последующим объединением фракций, содержащих радиоактивный белок. Для диагностики злокачественных новообразований пациенту вводят внутривенно меченный радионуклидами йода альфа-фетопротеин и в период от 5 до 24 часов после введения производят сцинтиграфию. Использование способа позволяет повысить чувствительность и оперативность диагностики злокачественных новообразований за счет применения полученного в соответствии с вышеуказанным способом меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина, который избирательно накапливается в опухолевой ткани. 2 н.п. ф-лы, 3 ил., 3 табл.

Description

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для получения радиоактивно меченных онкофетальных белков, в том числе альфа-фетопротеина, и их использования для диагностики злокачественных заболеваний.
Известен способ получения препарата альфа-фетопротеина из эмбриональной ткани человека, включающий обработку исходной ткани бутиловым спиртом, центрифугирование при 6000 об/мин в течение 30 минут, диализ водно-белковой фазы против 0.9% раствора хлористого натрия, аффинную хроматографию отдиализованной водно-белковой фазы на иммобилизованных эстрогенах с последующим элюированием альфа-фетопротеина бутиловым спиртом или смесью бутилового спирта с буферным раствором, при этом выход целевого продукта составляет 60-70%, а чистота - 90-95% [SU 583536, A61K 37/02, 05.10.1979].
Недостатками способа являются недостаточный выход и чистота целевого продукта.
Известен также способ получения альфа-фетопротеина, включающий измельчение и гомогенизацию эмбриональной ткани зародышей человека 8-12 недель, полученных при медицинских абортах, центрифугирование гомогената при 5000 об/мин, сбор супернатанта, осветление супернатанта центрифугированием при 12000 об/мин, очистку целевого продукта хроматографией на DE-целлюлозе, очистку целевого продукта хроматографией на сефадексе G-100 с иммобилизованным на нем красителем Цибакрон-голубой F36A, очистку целевого продукта рехроматографией на сефадексе G-100 с иммобилизованным на нем красителем Цибакрон-голубой F36A и доочистку целевого продукта хроматографией на DE-целлюлозе [K. Hause et al. Clinica Chemica Acta, 133, 1983, 335-340].
Недостатками этого технического решения являются длительность и трудоемкость процесса выделения альфа-фетопротеина, значительные изменения состава пула альфа-фетопротеина и денатурация части молекул, приводящие к низкому выходу конечного продукта (25-30%) и к снижению его качества (чистота препарата 85-90%), а также низкая стабильность при хранении.
Наиболее близким по своей сущности к предложенному способу получения альфа-фетопротеина является способ, включающий осветление исходного сырья центрифугированием и хроматографическую очистку целевого продукта на аффинном сорбенте, причем перед центрифугированием в сырье добавляют хлорид натрия до конечной концентрации 0,5M, а хроматографическую очистку проводят последовательно в три стадии, сначала на иммуноаффинном сорбенте, содержащем поликлональные антитела к альфа-фетопротеину, при этом элюцию альфа-фетопротеина с сорбента осуществляют 4M раствором хлорида магния, полученную фракцию альфа-фетопротеина дополнительно очищают ультрафильтрацией и гель-фильтрацией, а затем проводят хроматографическую очистку элюата на иммуноаффинном сорбенте, содержащем комплекс поликлональных антител против белков сыворотки крови человека и против иммуноглобулинов сыворотки крови животного, далее в целевой продукт вводят хлорид натрия и полисахарид, стерилизуют фильтрацией и лиофильно высушивают или хранят в виде раствора.
Кроме того, для приготовления аффинного сорбента используют BrCN-сефарозу или BrCN-агарозу, иммуноаффинная смола на стадии первой хроматографии содержит 5-10 мг/мл поликлональных антител к альфа-фетопротеину, истощенных против белков сыворотки крови человека, а на стадии второй иммуноаффинной хроматографии содержит 5-10 мг/мл комплекса антител против белков сыворотки крови человека и против иммуноглобулинов сыворотки крови животного, использованного для получения антител к альфа-фетопротеину, в качестве полисахарида используют полисахарид типа декстрана, выбранный из группы: полиглюкин, реополиглюкин, реомакродекс, лиофильное высушивание целевого продукта осуществляют в присутствии 5-50 мг/мл хлорида натрия и 2-30 мг/мл полисахарида, а в жидкую форму препарата альфа-фетопротеина вводят хлорид натрия в концентрации 9-50 мг/мл и полисахарид в концентрации 10-50 мг/мл [RU 2123009, C1, A61K 35/14, 10.12.1998].
Кроме того, альфа-фетопротеин используется для приготовления противоопухолевых препаратов направленного действия для избирательного поражения опухолевых клеток [Конъюгаты биологически активных веществ с альфа-фетопротеином, обладающие избирательным действием по отношению к раковым опухолям, способ их получения (варианты) и фармацевтическая композиция на их основе. Патент 2071351, (21) 96113877/14; (22) 23.07.96; (46) 10.01.96].
Недостатком способа является относительно узкая область применения, поскольку по известному способу не удается получить радиоактивно меченный альфа-фетопротеин, который, как будет показано ниже, может быть эффективно использован при диагностике злокачественных образований.
Требуемый результат относительно способа получения радиоактивно меченного альфа-фетопротеина достигается тем, что по способу, заключающемуся в получении раствора альфа-фетопротеина, помещенного в ампулу, дополнительно промывают ампулу с радиоактивным йодом-123, йодом-125 (125I-АФП) или йодом-131 фосфатным буферным раствором, который затем вводят в ампулу с альфа-фетопротеином, получая смесь йодида и альфа-фетопротеина, в которую добавляют раствор хлорамина-Б в фосфатном буферном растворе, а затем полученную смесь перемешивают в течение 2-5 с и вносят в нее натрий сульфит для остановки реакции с продолжением перемешивания в течение 50-70 с, после чего вносят сывороточный альбумин человека в фосфатном буферном растворе и наносят полученную смесь на колонку с сефадексом с последующим объединением фракций, содержащих радиоактивный белок.
Кроме того, известны способы диагностики и лечения злокачественных новообразований.
Например, известен способ диагностики онкологических заболеваний с помощью радиоизотопного метода, при котором используются радиоактивные изотопы: 32P, 85Sr, 99Tc, после внутривенных инъекций которых млекопитающее сканируют и определяют остаточную дозу излучения и по величине максимального излучения судят о месте расположения опухоли [Долгушин Б.И. Методы лучевой диагностики в онкологии. Энциклопедия клинической онкологии. Главный ред. Давыдов М.И. Москва, РЛС-2004, с.30-33].
Недостатком способа является относительно высокая опасность для здоровья пациента и окружающих.
Наиболее близким по своей сущности к предложенному является способ диагностики злокачественных заболеваний, заключающийся в том, что последовательно внутривенно вводят 1-1000 мкл 1-10% золя декстранферрита в виде наночастиц диаметром 20-900 нм в полиглюкине из расчета не более 2,92 мг Fe/кг веса животного, магневист в дозе 3-12 мкл с последующим проведением магнитно-резонансной томографии тела животного при T1-, Т2-взвешенной градиент-эхопоследовательности и на основании результатов визуального анализа полученных изображений диагностируют наличие опухолей, метастазов и границ инвазии опухолевых клеток в здоровые ткани, при этом декстран феррит вводят за 20-40 ч, а магневист за 4-12 мин до проведения магнитно-резонансной томографии [RU 2343828, C2, A61B 5/055, A61K 49/06, 20.01.2009].
Недостатком наиболее близкого решения является относительно низкая оперативность диагностики, поскольку она проводится через 20-40 часов после введения первого из препаратов - декстрана феррита.
Требуемый технический результат относительно способа диагностики злокачественных новообразований заключается в повышении оперативности и повышении чувствительности диагностики.
Требуемый технический результат относительно способа диагностики злокачественных новообразований достигается тем, что вводят пациенту внутривенно радиоактивный препарат, после чего производят сцинтиграфию для визуализации злокачественных новообразований, причем в качестве радиоактивного препарата используют радиоактивно меченный радионуклидами йода-123, йода-125 или йода-131 альфа-фетопротеин в форме водно-солевого раствора, содержащего сывороточный альбумин человека, а сцинтиграфию производят в период от 1 до 5 часов после введения пациенту радиоактивно меченного радионуклидами йода-123, йода-125 или йода-131 альфа-фетопротеина.
В качестве графических материалов представлены: таблица 1 - характеристика меченных разными радионуклидами йода препаратов альфа-фетопротеина, таблица 2 - влияние степени йодирования АФП на его иммунохимическую активность, таблица 3 - распределение 125I-АФП в органах и крови (внутривенное введение), фиг.1 - динамика изменения концентрации 125I в мышцах в сравнении с опухолевой тканью, фиг.2 - отношение радиоактивности опухоли и мышц и опухоли и крови, на фиг.3 - скорость выведения 131I-АФП из места инъекции.
Реализуются предложенные способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований следующим образом.
Создание новых высокоэффективных препаратов для диагностики и терапии онкологических заболеваний заставляет искать соединения с высокой тропностью к раковым клеткам. Одним из перспективных путей решения этой проблемы является поиск опухолевых рецепторов, отсутствующих в нормальных тканях, и использование их в качестве специфических мишеней для выявления методами радионуклидной медицины.
В зависимости от особенностей экспрессии различают три группы опухолевых антигенов.
Антигены первой группы кодируются генами, которые экспрессируются в опухолях различных типов, но не в нормальных тканях взрослого организма (за исключением семенников и плаценты). Это семейства генов MAGE, BAGE, GAGE, RAGE и др.
К опухолевым антигенам другой группы относятся белки, гены которых в опухоли мутированы, например ген циклин-зависимой киназы 4 в различных меланомах или ген p53 в различных опухолях.
Опухолевые антигены третьей группы составляют белки, гены которых гиперэкспрессированы в опухоли. К последнему типу могут быть отнесены некоторые тканеспецифические антигены и такие белки, как рецепторы некоторых факторов роста, например эпидермального фактора роста, трансферрина и рецептора альфа-фетопротеина. С этой точки зрения рецептор альфа-фетопротеина представляет большой интерес, т.к. этот белок во взрослом организме обнаруживается исключительно в опухолевых клетках различных типов. Важно подчеркнуть, что его экспрессия не обнаруживается в нормальных клетках даже в зоне опухоли и отсутствует в доброкачественных опухолях, за исключением миксомы сердца - доброкачественной опухоли эмбрионального происхождения. В настоящее время рецептор альфа-фетопротеина рассматривается как универсальный опухолевый маркер. Для выявления этого рецептора, а значит и опухолевых клеток в исследуемых тканях организма, может использоваться природный или рекомбинантный альфа-фетопротеин, или его фрагменты, или антитела к его рецептору, или их фрагметы, способные связываться с рецептором альфа-фетопротеина.
Альфа-фетопротеин - гликопротеин с молекулярной массой 70 кДа, состоящий из одной полипептидной цепи. Альфа-фетопротеин является одним из основных белков периферической крови млекопитающих в период эмбрионального развития. Система альфа-фетопротеин-рецептор альфа-фетопротеина в период эмбрионального развития обеспечивает транспорт пластического материала - жирных кислот - в интенсивно пролиферирующие клетки плода по механизму рецептор-опосредованного эндоцитоза. Этот же механизм функционирует в опухолевых клетках. Альфа-фетопротеин отличается высокой степенью консервативности и незначительными межвидовыми различиями, что позволяет исследовать некоторые свойства альфа-фетопротеина человека на экспериментальных животных.
Важно также подчеркнуть, что для высокого накопления меченого белка в ткани-мишени важно избежать его инактивации в процессе введения радиоактивного йода в результате воздействия окислителя или в результате замены в белке части остатков тирозина на его йодированные аналоги.
Для приготовления радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина в зависимости от задач используют один из радионуклидов йода - йод-123, йод-125 (125I-АФП) или йод-131.
Ниже подробно рассмотрен пример для йода-125. Для этого ампулу с радиоактивным йодом (йод-125 в щелочном растворе без восстановителей, в химической форме йодид, общая радиоактивность 185 МБк) промывали 0,5 мл фосфатного буферного раствора (PBS - ионная сила 0,1, pH 7,2) последовательно порциями по 0,2, 0,2 и 0,1 мл. Полученный раствор (содержание йодида - 185 МБк) добавляли во флакон с 1 мг альфа-фетопротеина (АФП) и затем в смесь йодида и АФП добавляли раствор, содержащий 100 мкг хлорамина-Б в 0,1 мл PBS. Через 3 с перемешивания в раствор вносили 40 мкл водного раствора с 400 мкг натрия сульфита для остановки реакции. Через 1 мин перемешивания в реакционную смесь вносили 1 мг сывороточного альбумина человека (HSA) в 0,5 мл PBS. Смесь наносили на колонку PD-10 (Pharmacia) с сефадексом G-25 (средний). На всех этапах использовали стерильные растворы, приготовленные на апирогенной воде. Фракции, содержащие радиоактивный белок, объединяли. Общий объем раствора, меченного иодом-125 АФП, - 6,5 мл, выход - 60,2%.
Очистку от оставшегося несвязанного с АФП радиоактивного йодида осуществляли методом «ловушек», внося в раствор меченного йодом-125 белка анионообменную смолу MSA-1 в Cl--форме [Bajenova T.L., Mojaisky A.M., Kulakov V.N. et al. Получение радиоактивных препаратов. IV. Выбор оптимального адсорбента для очистки меченых микроагрегатов альбумина от неорганических форм йода. // Isotopenpraxis, 1972, Bd. 8, №11-12, 460-462]. Полученный препарат стерилизовали с помощью фильтрования через стерилизующий фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Радиохимическую чистоту 125I-АФП определяли с помощью электрофореза на бумаге [Кулаков В.Н. Экспресс-метод определения радиохимической чистоты радиофармацевтических препаратов на основе белков. Экспресс-метод определения радиохимической чистоты радиофармацевтических препаратов на основе белков. // Хим.-фарм. журнал, 1988, № 4, 503-506] (350 B, 30 мин, фосфатный буферный раствор, pH 8,0).
Сущность предложенного способа приготовления радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина заключается в следующем.
Альфа-фетопротеин человека выделяют из ретроплацентарной сыворотки рожениц с помощью аффинной хроматографии после осаждения высокомолекулярных белков с использованием моноклональных антител к альфа-фетопротеину [Severin S.Е., Е.Yu.Moskaleva, G.A.Posypanova et al. In vivo antitumor activity of cytotoxic drugs conjugated with human alfa-fetoprotein. Tumor targeting 1996, 2, 299-306; Северин C.E., Посыпанова Г.A., Сотниченко А.И., Посыпанова Г.А., Москалева Е.Ю., Григорьев М.И., Северин Е.С., Петров Р.В. "Противоопухолевая активность ковалентного конъюгата ендиинового антибиотика эсперамицина A1b, с α-фетопротеином человека" Доклады Академии наук, 1999, т.366, № 4, стр.561-564]. Очищенный белок стерилизуют с помощью фильтрования через стерилизующий фильтр с диаметром пор 0,2 мкм, лиофилизируют и хранят при +4°C.
Пример приготовления радиоактивно меченного альфа-фетопротеина 125I-АФП.
Для приготовления 125I-АФП ампулу с радиоактивным йодом (йод-125 в щелочном растворе без восстановителей, в химической форме йодид, общая радиоактивность 185 МБк, промывали 0,5 мл фосфатного буферного раствора (PBS, ионная сила 0,1; pH 7,2) последовательно порциями по 0,2, 0,2 и 0,1 мл. Полученный раствор (содержание йодида - 185 МБк) добавляли во флакон с 1 мг АФП и затем в смесь йодида и АФП добавляли раствор, содержащий 100 мкг хлорамина-Б в 0,1 мл PBS. Через 3 с перемешивания в раствор вносили 40 мкл водного раствора с 400 мкг натрия сульфита для остановки реакции. Через 1 мин перемешивания в реакционную смесь вносили 1 мг сывороточного альбумина человека (HSA) в 0,5 мл PBS. Смесь наносили на колонку PD-10 (Pharmacia) с сефадексом G-25 (средний). Фракции, содержащие радиоактивный белок, объединяли. Общий объем раствора, меченного иодом-125 АФП, - 6,5 мл, выход - 60,2%. Очистку от оставшегося несвязанного с АФП радиоактивного йодида осуществляли методом «ловушек», внося в раствор меченного йодом-125 белка анионообменную смолу MSA-1 в Cl--форме. Радиохимическую чистоту 125I-АФП определяли с помощью электрофореза на бумаге (350 B, 30 мин, фосфатный буферный раствор, pH 8,0).
При изучении влияния степени модификации АФП йодом по остаткам тирозина на его иммунохимическую активность были выполнены эксперименты с использованием для йодирования АФП нерадиоактивного монохлористого йода. Количество модифицированных остатков тирозина в АФП определяли с помощью метода разностной спектрофотометрии.
Известно, что в молекуле АФП содержится 17 остатков тирозина. Полученные результаты представлены в таблице 1 и из них следует, что обнаруженное статистически малозначимое изменение иммунохимической активности АФП практически не зависит от количества модифицированных остатков при йодировании от 1 до 10 из 17 остатков тирозина, присутствующих в молекуле этого белка. Наблюдаемое при йодировании небольшое снижение иммунохимических свойств АФП, возможно, связано с действием окислителей, присутствующих в реакционной смеси. Полученные результаты позволяют полагать, что модификация остатков тирозина АФП при введении в его молекулу радиоактивного йода не приведет к необратимым структурным повреждениям белковой молекулы, а следовательно, и его способности связываться со своим специфическим рецептором на опухолевых клетках. Для введения йода-125 в молекулу белка использован хлорамин-Б, который является более слабым окислителем, чем монохлористый йод, что позволяет проводить йодирование в более мягких условиях и снизить риск повреждения белка в процессе введения радиоактивного йода.
Приготовленный стерильный раствор меченного радиоактивным йодом-125 препарата АФП - 1251-АФП - имел следующие характеристики: pH - 7,2; ионная сила - 0,1; общая радиоактивность - 111 МБк; удельная радиоактивность - 17,2 МБк/мл, концентрация АФП - 91 мкг/мл. Образец 125I-АФП, предназначенный для исследования фармакокинетики, характеризовали, кроме того, по уровню радиохимической чистоты. Радиохимическая чистота препарата 125I-АФП, определенная с помощью электрофореза на бумаге, составила 98,5%.
Сущность способа диагностики злокачественных новообразований заключается в следующем.
Эффект от применения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина для диагностики злокачественных новообразований был выявлен при проведении радиоизотопных фармакокинетических исследований и заключается в следующем.
Полученный описанным выше способом радиоактивно меченный радионуклидами йода альфа-фетопротеин в форме стерильного водно-солевого раствора, содержащего сывороточный альбумин человека в качестве стабилизатора, вводят пациенту внутривенно, после чего в период от 5 до 24 часов после введения производят сцинтиграфию для визуализации злокачественных образований.
Для проведения радиоизотопных фармакокинетических исследований мышам-самкам линии DBA2 весом 20 г прививали опухолевые клетки лимфолейкоза мыши линии P388 (1 млн/мл в 0,1 мл физиологического раствора под кожу в область спины).
Животных содержали в стандартных клетках и кормили гранулированным кормом ad libitum. Спустя 2 недели у них развивались выявляемые при пальпации опухоли диаметром 1-2 мм. Для исследования распределения меченного иодом-125 альфа-фетопротеина человека в органах интактных мышей и мышей с привитой опухолью им внутривенно в хвостовую вену вводили 125I-АФП в форме водно-солевого раствора, содержащего сывороточный альбумин человека в качестве стабилизатора. Вводимая доза: 0,1 мл раствора радиоактивного маркера (9 мкг белка). Полученные результаты представлены в таблице 2.
Таким образом, при использовании описанного способа приготовления стерильного радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина у животных с привитой опухолью наблюдается замедление скорости выведения маркера из организма и существенное накопление 125I-альфа-фетопротеина в опухоли. Закономерности накопления радиоактивного альфа-фетопротеина в опухоли в поздние сроки (3 сутки) согласуются с известными литературными данными. В то же время, выявленные особенности фармакокинетики 125I-альфа-фетопротеина в ранние сроки - до 5-24 часов после его введения - обнаружены впервые и позволяют полагать, что уже в период от 5 до 24 часов после введения препарата исследование его содержания в разных тканях и органах с помощью сцинтиграфии является информативным для визуализации опухолей.
Примеры осуществления способа диагностики злокачественных новообразований.
Пример 1.
К препарату нативного альфа-фетопротеина (1 мг), полученного из ретроплацентарной сыворотки рожениц, добавляли раствор йодида-125 (содержание йодида - 185 МБк) и затем в смесь йодида и альфа-фетопротеина добавляли раствор, содержащий 100 мкг хлорамина-Б в 0,1 мл PBS. Через 3 с перемешивания в раствор вносили 40 мкл водного раствора с 400 мкг натрия сульфита и через 1 мин перемешивания вносили 1 мг сывороточного альбумина человека (HSA) в 0,5 мл PBS. Радиоактивный белок выделяли на колонке PD-10 (Pharmacia) с сефадексом G-25 (средний). Радиохимическая чистота 125I-альфа-фетопротеина составляла 97,5%.
Мышам-самкам линии C57Вlаск весом 22 г прививали опухолевые клетки рака молочной железы мыши линии Ca755 (1 млн/мл в 0,1 мл физиологического раствора под кожу в область подмышечной впадины). Животных содержали в стандартных клетках и кормили гранулированным кормом ad libitum. Спустя 2 недели у них развивались выявляемые при пальпации опухоли диаметром 1-2 мм. Для исследования распределения меченного иодом-125 альфа-фетопротеина человека в органах интактных мышей и мышей с привитой опухолью им внутривенно в хвостовую вену вводили 125I-альфа-фетопротеин в форме водно-солевого раствора, содержащего сывороточный альбумин человека в качестве стабилизатора. Вводимая доза: 0,1 мл раствора радиоактивного маркера (10 мкг 125I-альфа-фетопротеин, 0,72 МБк/мышь). Исследовали динамику изменения концентрации 125I в мышцах мышей в сравнении с опухолевой тканью. Полученные результаты представлены на фиг.1.
Изменение концентрации 125I в мышцах мышей в сравнении с опухолевой тканью свидетельствует о высокой избирательности содержания препарата в ткани опухоли в период от 1 до 72 часов включительно при максимальной концентрации в опухоли в период от 1 до 5 час.
При анализе отношения радиоактивности проб опухоли и мышц и опухоли и крови мышей с имплантированной опухолью Ca755 в динамике после в/в введения 125I-альфа-фетопротеина, представленного на фиг.2 показано, что радиоактивный маркер накапливается в опухоли. Содержание радиоактивности в опухоли уже через 1 час после введения меченого альфа-фетопротеина превышает ее содержание в мышце более чем в 3 раза.
Полученные различия достаточны для хорошей визуализации опухоли. В то же время величина отношения радиоактивности опухоль/кровь достигает 1 только через 1 сутки после введения маркера и продолжает возрастать в течение нескольких последующих суток.
Пример 2.
Саркому S-45 прививали крысам в мышцу задней конечности путем введения 0,5 млн опухолевых клеток и после развития опухоли животным интратуморально - в центр опухоли - вводили 0,1 мл раствора радиоактивного маркера 131I-альфа-фетопротеин (0,68 МБк, 7 мкг белка). Скорость элиминации радиоактивного препарата после внутримышечного и интратуморального введения раствора 131I-альфа-фетопротеина регистрировали с помощью интенсиметра фирмы Гамма (Венгрия). Животных закрепляли на станке, помещали под коллимированный детектор и затем инъецировали маркер. Сразу после инъекции начинали регистрацию изменения радиоактивности в месте введения. Распределение введенного внутривенно 131I-альфа-фетопротеина по органам и тканям экспериментальных животных проводили прямой радиометрией биологических образцов, выделенных из тушек забитых животных в разные сроки после инъекции маркера с помощью пересчетного устройства фирмы Гамма (Венгрия).
Такое исследование позволяет путем сравнительного изучения скорости выведения меченого маркера, введенного в мышцу и опухоль крысы (саркома S-45), оценить специфичность накопления и удержания альфа-фетопротеина в опухоли.
Полученные результаты представлены на фиг.3. Они показывают, что меченный иодом 131I альфа-фетопротеин избирательно накапливается и удерживается в опухолевой ткани. Так через 10 мин после введения 131I-альфа-фетопротеина в опухоль в месте инъекции обнаруживается 50% радиоактивности, через 30 мин - 42%, в то время как после введения в мышцу уже спустя 10 мин в этом месте обнаруживается только 24% радиоактивности, и этот же уровень сохраняется и через 30 мин.
Таким образом, предложен способ приготовления меченного радионуклидом йода стерильного препарата альфа-фетопротеина, который избирательно накапливается в опухолевой ткани и может быть использован в качестве основы радиофармпрепарата для раннего выявления опухолей с помощью радионуклидной сцинтиграфии и других методов ядерной медицины. Использование препарата позволяет повысить оперативность диагностики.
Figure 00000001
Таблица 2
№ п/п Количество введенного ICl Количество модифицированных остатков тирозина в молекуле АФП Иммунохимическая активность, %
Объем (мкл) Конечная концентрация (мМ) МИТ ДИТ МИТ+ДИТ
1 0 0 0 0 0 100,0±8,0
2 20 4 0,43±0,18 0,37±0,22 0,79±0,12 74,2±3,5
3 20 20 4,50±2,10 3,10±0,22 7,70±3,90 78,7±9,5
Таблица 3
Орган/ткань Накопление АФП-125I в разные сроки после введения, % от введенной радиоактивности
3 мин 15 мин 30 мин 60 мин 3 час 5 час 1 сут 2 сут 3 сут
Интактные мыши
Кровь 56.5±1.8 50.0±3.2 50.4±1.0 42.1±3.4 32.9±2.7 21.0±1.2 4.2±0.7 0.5±0.0 0
Печень 12.7±1.0 11.5±0.3 10.7±0.5 8.8±0.7 5.8±0.3 4.8±0.2 1.3±0.1 0.9±.0.2 0.8±0.1
Почки 3.1±0.1 3.0±0.2 2.6±0.2 2.2±0.1 1.8±0.1 1.6±0.0 0.2±0.0 0 0
Селезенка 0.8±0.1 0.6±0.0 1.0±0.2 0.6±0.1 0.5±0.0 0.6±0.1 0 0 0
Легкие 8.5±1.0 8.3±1.6 8.7±1.4 4.2±0.4 3.2±0.8 3.0±0.3 0.7±0.1 0 0
Желудок 1.5±0.2 3.2±0.3 2.7±0.3 2.5±0.1 4.1±0.4 2.1±0.2 0.9±0.1 0 0
Кишечник (%/г) 4.6±0.4 7.0±0.7 7.9±0.5 7.8±0.4 8.5±0.4 6.5±0.1 2.1±0.1 1.2±0.2 1.0±0.2
Мышца (%/г) 0.3±0.0 1.5±0.2 1.7±0.2 1.5±0.1 1.8±0.2 2.0±0.1 0 0 0
Щитовидная железа - - - - 8.2±0.1 - 21.3±3.5 21.4±3.1 15.2±2.7
Головной мозг 0.6±0.0 0.4±0.0 0.3±0.1 0.4±0.0 0.2±0.0 0.2±0.0 0 0 0
Моча - - - - 5.5±2.3 16.3±1.1 - - -
Бедро 0.6±0.0 0.6±0.0 0.6±0.0 0.5±0.0 0.4±0.1 0.7±0.1 0 - -
Мыши с привитой опухолью (лимфолейкоз мыши P388)
Кровь 72.0±5.5 53.0±4.4 51.0±6.8 39.7±1.6 31.1±25 19.0±1.2 3.3±0.2 0.6±0.0 0.9±0.1
Печень 8.3±0.5 11.2±0.3 10.0±1.0 6.3±0.4 7.6±0.4 3.3±0.1 - 0.6±0.0 0.6±0.0
Почки 1.7±0.1 2.7±0.1 2.0±0.1 0.6±0.1 0.4±0.0 1.6±0.0 - 0 0
Селезенка 0.8±0.1 0.8±0.0 0.5±0.1 0.5±0.1 0.6±0.1 0.4±0.0 - 0 0
Легкие 4.6±1.0 6.5±0.7 3.2±0.2 3.3±0.7 2.3±0.6 1.8±0.1 - 0.1±0.0 0.1±0.0
Желудок 0.7±0.1 1.0±0.1 1.2±0.2 2.0±0.1 1.6±0.3 3.2±0.5 - 0.1±0.0 0.1±0.0
Кишечник (%/г) 2.1±0.2 4.7±0.4 3.4±0.2 4.9±0.3 5.5±0.6 5.2±0.2 - 0.5±0.0 0.5±0.0
Мышца (%/г) 1.1±0.1 1.4±0.1 1.3±0.1 1.6±0.2 1.9±0.1 1.5±0.1 0 0 0
Щитовидная железа - - - - 1.6±0.1 2.4±0.6 8.0±0.3 8.3±0.2 7.4±0.1
Головной мозг 0.3±0.0 0.4±0.0 0.3±0.0 0.3±0.0 0.2±0.0 0.1±0.0 0 0 0
Моча - - - - - 1.7±0.7 - - -
Бедро 0.4±0.1 0.4±0.0 0.6±0.1 0.5±0.1 0.5±0.0 0.4±0.0 - - -
Опухоль 2.9±0.5 3.7±0.2 4.2±0.2 5.5±0.4 6.0±0.5 5.0±0.4 1.2±0.1 0.8±0.1 0.7±0.1

Claims (2)

1. Способ получения радиоактивного меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина, заключающийся в получении раствора альфа-фетопротеина, помещенного в ампулу, для чего промывают ампулу с радиоактивным йодом-123, йодом-125 (125I-АФП) или йодом-131 буферным раствором, который затем вводят в ампулу с альфа-фетопротеином, получая смесь йодида и альфа-фетопротеина, в которую добавляют хлорамин в буферном растворе, а затем в полученную смесь вносят натрий сульфит для остановки реакции, после чего через 50-70 с вносят сывороточный альбумин человека в буферном растворе и наносят полученную смесь на колонку с сефадексом с последующим объединением фракций, содержащих радиоактивный белок, отличающийся тем, что в качестве хлорамина в буферном растворе используют раствор хлорамина-Б в фосфатном буферном растворе, смесь йодида и альфа-фетопротеина с хлорамином в буферном растворе перед внесением в нее натрий сульфита для остановки реакции перемешивают в течение 2-5 с, а после внесения натрий сульфита перед внесением сывороточного альбумина человека в буферном растворе проводят перемешивание в течение 50-70 с, а в качестве буферного раствора используют фосфатный буферный раствор, а для дополнительной очистки после очистки на сефадексе используют метод ловушек с анионообменной смолой в Сl--форме.
2. Способ диагностики злокачественных новообразований, основанный на введении пациенту внутривенно радиоактивного меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина, полученного по способу п.1, после чего производят сцинтиграфию для визуализации злокачественных новообразований, отличающийся тем, что сцинтиграфию производят в период от 5 до 24 ч после введения пациенту внутривенно указанного радиоактивного меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина.
RU2009109345/15A 2009-03-16 2009-03-16 Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований RU2404812C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009109345/15A RU2404812C1 (ru) 2009-03-16 2009-03-16 Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009109345/15A RU2404812C1 (ru) 2009-03-16 2009-03-16 Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2009109345A RU2009109345A (ru) 2010-09-27
RU2404812C1 true RU2404812C1 (ru) 2010-11-27

Family

ID=42939742

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009109345/15A RU2404812C1 (ru) 2009-03-16 2009-03-16 Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2404812C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
US 4195073 (HOFFMANN-LA ROCHE INC.), 25.03.1980. GREENWOOD FC et al. The preparation of 131I-labelled human growth hormone of high specific radioactivity. Biochem J. 1963, 89, p.114-123, найдено 14.04.2010, найдено в Интернет: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1202279/pdf/biochemj00786-0124.pdf. URIEL J et al. Uptake of radiolabeled alpha-fetoprotein by mouse mammary carcinomas and its usefulness in tumor scintigraphy. Cancer Res. 1984, 44(11), p.5314-9, найдено 14.04.2010, найдено в Интернет: http://cancerres.aacrjournals.Org/cgi/reprint/44/11/5314. Lee DS et al. Comparative studies of Iodo-bead and chloramine-T methods for the radioiodination of human alpha-fetoprotein. J Immunol Methods, 1984, 74(1), p.181-9, PMID: 6209336, реф., найдено в PubMed, найдено 14.04.2010. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2009109345A (ru) 2010-09-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Becker et al. The use of monoclonal antibodies and antibody fragments in the imaging of infectious lesions
US4895714A (en) Radioiodinated apotransferrin for use in tumor diagnosis, imaging, localization or treatment
CN112074526B (zh) 作为治疗性放射性药物的177Lu-DOTA-HYNIC-iPSMA
US20240100204A1 (en) Compositions and methods for cancer imaging and radiotherapy
CN108434468B (zh) 一种放射性碘标记的蛋白结合配体及其应用
Wilbanks et al. Localization of mammary tumors in vivo with 131i‐labeled fab fragments of antibodies against mouse mammary epithelial (mme) antigens
EP2658581B1 (en) A conjugate of human albumin and 2-(4-isothiocyanatobenzyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid useful for the localization of radionuclides for diagnostic and therapeutic purposes
Li et al. ImmunoPET/NIRF/Cerenkov multimodality imaging of ICAM-1 in pancreatic ductal adenocarcinoma
CN112043839A (zh) 靶向转铁蛋白受体的放射性同位素标记多肽显像剂及其应用
Qiu et al. A pretargeted imaging strategy for immune checkpoint ligand PD-L1 expression in tumor based on bioorthogonal Diels-Alder click chemistry
US20180361000A1 (en) Dextran nanoparticles for macrophage specific imaging and therapy
CN109316609A (zh) 选择患者的方法
WO2023143612A1 (zh) 一种肽脲素衍生物、含其的药物组合物及其应用
RU2404812C1 (ru) Способ получения радиоактивно меченного радионуклидами йода альфа-фетопротеина и способ его применения для диагностики злокачественных новообразований
CN112661812B (zh) 一种kk-lc-1抗原靶向结合肽及其衍生物、探针与应用
JPH05500953A (ja) 免疫共役体およびその代謝物の非標的保持量を減少させる方法
JP2001514237A (ja) 映像化する方法および組成物
EP1482981A1 (en) Avidin dimers effective in increasing the concentration of radioactive biotin in pretargeted radioimmunotherapy
EP3056221A1 (en) Spect radionuclide-labeled trimeric cyclic rgd peptide, preparation method thereof and imaging method thereof
CN113143854B (zh) 人血白蛋白在制备放射性碘标金丝桃素药物制剂中的应用
Mishra et al. [68 Ga] Ga-THP-tetrazine for bioorthogonal click radiolabelling: pretargeted PET imaging of liposomal nanomedicines
Mukhopadhyay et al. 64Cu-Bevacizumab as a better PET imaging agent in detecting breast cancer in MDA-MB-231 orthotopic and bone metastasis mice model compared to 18FDG
KR20240105380A (ko) Psma 항원을 표적으로 하는 리간드 화합물, 이의 킬레이트 및 전립선암의 진단 및 치료를 위한 이의 응용
Li et al. 131I-recombinant human EGF has antitumor effects against MCF-7 human breast cancer xenografts with low levels of EGFR
Alhabardi et al. Synthesis, Radiolabeling, and Biological Evaluation of 68Ga‐Mucin1 and Its Folate Hybrid Peptide Conjugates for the Diagnosis of Ovarian Cancer

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180317