RU2203317C2 - Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке - Google Patents

Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке Download PDF

Info

Publication number
RU2203317C2
RU2203317C2 RU2001112390/13A RU2001112390A RU2203317C2 RU 2203317 C2 RU2203317 C2 RU 2203317C2 RU 2001112390/13 A RU2001112390/13 A RU 2001112390/13A RU 2001112390 A RU2001112390 A RU 2001112390A RU 2203317 C2 RU2203317 C2 RU 2203317C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
milk
grown
sample
anthrax
detection
Prior art date
Application number
RU2001112390/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2001112390A (ru
Inventor
Н.П. Буравцева
В.А. Проскурина
В.А. Ярощук
Е.В. Лысогора
Original Assignee
Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт filed Critical Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority to RU2001112390/13A priority Critical patent/RU2203317C2/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2203317C2 publication Critical patent/RU2203317C2/ru
Publication of RU2001112390A publication Critical patent/RU2001112390A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано при лабораторном исследовании молока. Пробу смешивают со смесью полимиксина М-сульфата 250 мкг/мл и триметоприма 100-120 мкг/мл в равных пропорциях, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5-5,5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин. Культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, а учет выросших колоний осуществляют в парах аммиака. Способ обеспечивает повышение надежности обнаружения возбудителя сибирской язвы в молоке. 2 табл.

Description

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано при лабораторном исследовании молока, контаминированного возбудителем сибирской язвы (Bacillus anthracis) или подозрительного на зараженность.
Сложность бактериологического исследования молока связана с тем, что оно само является прекрасной питательной средой для большинства микроорганизмов, в том числе и спорообразующих сапрофитов, которые попадают в молоко во время доения.
В последнее время при выявлении возбудителя сибирской язвы в объектах внешней среды (пробы почв, корма, шерсть и т.п.), контаминированного примесями сопутствующей микрофлоры, в том числе спорообразующими сапрофитами, успешно используется для культивирования проб дифференциально-диагностическая среда, содержащая питательный агар, ингибиторы роста посторонней микрофлоры (смесь полимиксина с триметопримом) и индикатор фенолфталеинфосфат натрия в количестве 0,01% на 1 мл среды. Эта среда (без фенолфталеинфосфата натрия) в сухом виде выпускается ФГУП "Аллерген" (Буравцева Н.П. Ярощук В.А. Ускоренный метод обнаружения возбудителя сибирской язвы в исследуемом материале // Методические рекомендации. - М., 1989).
Однако использование этой среды при лабораторном исследовании молока, контаминированного малыми концентрациями микробных палочек В.anthracis (1-10 м.к./мл молока), оказалось малоэффективным.
Наиболее близким по назначению является способ обнаружения микробов в молоке с помощью высева пробы в питательные среды (Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования, под ред. М.О. Биргера// М. : Медицина, 1982. - С.422-428). Способ предусматривает смешивание исследуемых проб в различных разведениях с питательной средой, в качестве которой применяют питательный агар с 1% глюкозы на основе из смеси панкреотического перевара молока, мяса или казеина и дрожжевого аутолизата (в отношении 3:1), культивирование смеси при 30-32oС в течение 3-х сут с последующим учетом образовавшихся колоний.
Способ оказался неэффективным при обнаружении возбудителя сибирской язвы, особенно, когда он находится в пробе в малых концентрациях.
Техническим результатом изобретения является повышение надежности обнаружения возбудителя сибирской язвы в молоке, подозрительного на зараженность или контаминированного возбудителем инфекции.
Указанный технический результат достигается тем, что исследуемую пробу предварительно перед посевом смешивают со смесью полимиксина М-сульфат 250 мкг и триметоприма 100-120 мкг в равных пропорциях на 1 мл молока, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5,0-5,5 тыс.об/мин. Культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, учет и дифференциацию выросших колоний проводят в парах аммиака.
По отношению к прототипу заявляемый способ имеет следующие отличительные признаки.
Добавление в исследуемую пробу смеси полимиксина М-сульфата 250 мкг и триметоприма 100-120 мкг в равных пропорциях на 1 мл молока, подращивание смеси в течение 4-6 ч при 37oС. Этот прием обеспечивает ингибирование сапрофитов.
Центрифугирование исследуемой пробы при 5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин необходимо и достаточно для концентрирования микроорганизмов, при этом микроорганизмы переходят в верхний слой, в среднем слое микробов практически не остается.
Культивирование подращенной пробы на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС. Использование дифференциально-диагностической среды, содержащей питательный агар, проверенный на рост сибиреязвенного микроба, и ингибиторы роста сапрофитов обеспечивает достаточно быстрое культивирование возбудителя сибирской язвы при его содержании в исследуемой пробе менее 10 м.кл./мл молока. Учет образования колоний в парах аммиака обеспечивает четкую дифференциацию колоний сибиреязвенного микроба от близкородственных спорообразующих сапрофитов.
Возможность практического использования заявленного способа иллюстрируется примерами конкретного выполнения.
Пример 1. В пробы молока (100 мл) вносили споры и вегетативные палочки 4-х штаммов В. anthracis (81/1, 1 СО, 71/12, 3БК2 ) в таком количестве, чтобы конечная концентрация была 100 и 1000 м.кл на 1 мл молока. Затем часть проб оставляли отстаиваться при комнатной температуре в течение 18 ч, другую часть проб после добавления микробов и смешивания центрифугировали при 5000 тыс. об/мин в течение 30 мин. С помощью пипетки отбирали молоко (1 мл) для лабораторного исследования из верхнего, среднего слоя и из осадка. Посев производили на дифференциально-диагностическую среду по 0,1 мл. С помощью шпателя пробу тщательно втирали в агар и культивировали посевы при 37oС в течение 18 ч. Чашки Петри с выросшими колониями визуально просматривали и в случае наличия подозрительных на рост колоний сибиреязвенного микроба обрабатывали их парами аммиака. С этой целью в крышки от чашки Петри помещали фильтровальную бумагу, которую смачивали водным аммиаком, после этого на несколько секунд помещали на фильтровальную бумагу чашку с выросшими колониями. Под действием паров аммиака колонии сапрофитов изменяли свой цвет и становились розовыми, колонии сибиреязвенного микроба не изменяли своего цвета. Результаты приведены в таблице 1.
Как видно из таблицы 1, концентрирование микробов в молоке в верхнем слое в большей степени происходит при центрифугировании, при этом сроки исследования молока сокращались на сутки, т.к. методом отстаивания необходимо было выдерживать сроки до 18 ч.
Пример 2. Пробы молока с содержанием различных концентраций спор и вегетативных палочек B.anthracis от 1 до 1000 м.кл./мл молока исследовали в лабораторных условиях. В каждую пробу (100 мл) молока после добавления определенной концентрации возбудителя (спор или палочек) добавляли смесь полимиксина и триметоприма, 250 и 100 мкг на 1 мл молока соответственно, перемешивали и помещали в термостат при 37oС на 5 ч. Затем пробу центрифугировали при 5,0 тыс.об/мин, после чего верхний слой молока (1 мл) высевали по 0,1 мл на чашки с дифференциально-диагностической средой. С помощью шпателя пробу тщательно втирали в агар и культивировали посевы при 37oС в течение 18 ч. Чашки Петри с выросшими колониями визуально просматривали и в случае наличия подозрительных на рост колоний сибиреязвенного микроба обрабатывали их парами аммиака. С этой целью в крышки от чашки Петри помещали фильтровальную бумагу, которую смачивали водным аммиаком, после этого на несколько секунд помещали на фильтровальную бумагу чашку с выросшими колониями. Под действием паров аммиака колонии сапрофитов изменяли свой цвет и становились розовыми, колонии сибиреязвенного микроба не изменяли своего цвета. Параллельно высевали контрольные пробы без предварительного подращивания и концентрирования. Результаты приведены в таблице 2.
Из данных таблицы 2 видно, что при предварительном подращивании микроба сибирской язвы с полимиксином и триметопримом и последующем центрифугировании удается выделить единичные особи возбудителя в то время, как при посеве только на дифференциально-диагностическую среду высевается лишь 20 часть внесенных в пробу микробов.
При исследовании молока, подозрительного на загрязненность сибиреязвенным микробом, в лабораторных условиях необходимо соблюдать все меры предосторожности, предусмотренные правилами режима работы с особо опасными инфекциями (Санитарные правила "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности". М., 1994, - 151 с.). Центрифугирование можно проводить только в центрифужных стаканах с плотно завинчивающимися пробками, обеспечивающими надежность защиты от попадания сибиреязвенного микроба в окружающую среду.
Заявляемый способ был испытан в лабораторных исследованиях молока во время эпизоотии сибирской язвы среди коров в Красногвардейском районе Ставропольского края в 1996г.
Таким образом, заявляемый способ может найти широкое применение не только в лабораторных исследованиях молока, но и при эпизоотологическом мониторинге неблагополучных по сибирской язве регионах.

Claims (1)

  1. Способ обнаружения Bacillus anthracis в молоке, включающий культивирование исследуемой пробы с последующим учетом выросших колоний, отличающийся тем, что исследуемую пробу предварительно смешивают со смесью полимиксина М-сульфата 250 мкг/мл и триметоприма 100-120 мкг/мл в равных пропорциях, подращивают в течение 4-6 ч при 37oС, затем центрифугируют при 5-5,5 тыс. об/мин в течение 30-40 мин, культивирование верхнего слоя подращенной пробы ведут на дифференциально-диагностической среде в течение 18-20 ч при 37oС, а учет выросших колоний осуществляют в парах аммиака.
RU2001112390/13A 2001-05-04 2001-05-04 Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке RU2203317C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) 2001-05-04 2001-05-04 Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) 2001-05-04 2001-05-04 Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2203317C2 true RU2203317C2 (ru) 2003-04-27
RU2001112390A RU2001112390A (ru) 2003-05-10

Family

ID=20249352

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2001112390/13A RU2203317C2 (ru) 2001-05-04 2001-05-04 Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2203317C2 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7951913B2 (en) 2006-06-02 2011-05-31 Biotika A.S. Method of polymyxin B recovery from fermentation broth
US8119371B2 (en) 2006-06-15 2012-02-21 Biotika A.S. Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
БИРГЕР М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, с.422-428. ПРОСКУРИНА В.А. и др. Определение чувствительности сибиреязвенного микроба к антибиотикам для дифференциации от спрообразующих сапрофитов. - Антибиотики и химиотерапия, 1992, т.37, № 2, с.23-25. СИДОРОВ М.А. и др. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: Колос, 1995, с.105-108. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7951913B2 (en) 2006-06-02 2011-05-31 Biotika A.S. Method of polymyxin B recovery from fermentation broth
US8119371B2 (en) 2006-06-15 2012-02-21 Biotika A.S. Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5627045A (en) Multi-test format with gel-forming matrix for characterization of microorganisms
AU609794B2 (en) A test set and a process for the determination of antibiotics in milk and a novel streptococcus thermophilus strain to be used therein
US8828682B2 (en) Methods and articles for detecting hemolytic microorganisms
EP2245179B1 (en) Method and medium for detecting the presence or absence of staphylococcus aureus in a test sample
Yagupsky et al. Comparison of BACTEC 9240 Peds Plus medium and isolator 1.5 microbial tube for detection of Brucella melitensis from blood cultures
EP2789692B1 (en) Method for measuring cells, and reagent for cell measurement
US4421849A (en) Method for biological screening
Donnison Isolation of thermotolerant Campylobacter–Review & methods for New Zealand laboratories
RU2203317C2 (ru) Спрособ обнаружения bacillus anthracis в молоке
Feeley Isolation techniques for Yersinia enterocolitica
Doern et al. Screening for bacteriuria with the LN strip test
WO1988008037A1 (en) Method for the detection of bacteria and fungi
Koenraad et al. Methods for the detection of Campylobacter in sewage: evaluation of efficacy of enrichment and isolation media, applicability of polymerase chain reaction and latex agglutination assay
WO2008002156A1 (en) Mastitis and bacterial detection media
Tortorello et al. Rapid identification of Escherichia coli O157: H7 in bovine feces using the antibody-direct epifluorescent filter technique (Ab-DEFT)
Atanda et al. Microbiological quality of nono
RU2786394C1 (ru) СПОСОБ СНИЖЕНИЯ УРОВНЯ КОНТАМИНАЦИИ КЛИНИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ПРИ ПОСЕВЕ НА ПЛОТНЫЕ ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ Mycobacterium tuberculosis complex
RU2063030C1 (ru) Способ определения ингибирующих веществ в молоке
Mistry et al. Microbial analysis of water system for veterinary vaccine manufacturing facility
RU2125610C1 (ru) Плотная питательная среда для выявления возбудителя сибирской язвы
Maroff Determination of the inhibitory activity of some biological extracts agaiast multi rrsistans antibiotic Staphylococcus specis which and isolated from different sources of infechtion
RU2238316C2 (ru) Способ определения гемолитической активности и ее типа у b.anthracis
RU2267537C2 (ru) Питательная среда для микробиологического исследования крови
RU2154105C1 (ru) Способ количественной оценки содержания бифидобактерий в смешанных культурах микроорганизмов
Yeboah-Manu et al. Primary Isolation of Mycobacterium ulcerans

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20030505